Post on 05-Dec-2014
Fac. Cs. Qs. Dpto. De FARMACIA LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA II
Q.F.B
BENEMÉRITA UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE PUEBLA
FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMICAS LICENCIATURA: QUÍMICO FARMACOBIÓLOGO
ÁREA ESPECÍFICA DE: FARMACIA
NOMBRE DE LA ASIGNATURA: FARMACOLOGÍA II CÓDIGO: FAR 532L FECHA DE ELABORACIÓN: MARZO 2001 NIVEL EN EL MAPA CURRICULAR: FORMATIVO TIPO DE ASIGNATURA: CIENCIA DISCIPLINARIA PROFESORES QUE PARTICIPARON EN SU ELABORACIÓN:
DC. ISABEL MARTINEZ GARCIA MC. DANIEL ILHUICAMINA LIMON PEREZ DE LEON MC. FELIX LUNA MORALES
HORAS DE TEORÍA: HORAS PRÁCTICA: 2 CRÉDITOS:
Fac. Cs. Qs. Dpto. De FARMACIA LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA II
Q.F.B
ÍNDICE PRÁCTICA No.1 NEUROTRANSMISIÓN…………………………. 1 PRÁCTICA No. 2 EVALUACIÓN DE DROGAS ANSIOLÍTICAS… 3
PRÁCTICA No. 3 ANTAGONISMO FARMACOLÓGICO
EN TEJIDO AISLADO…………………………………………………. 11
PRÁCTICA No. 4 ESTIMULANTES SNC…………………………… 15
PRÁCTICA No. 5 EFECTO DEL ÁCIDO ACETILSALICÍLICO
EN EL TIEMPO DE SANGRADO……………………………………. 20
PRÁCTICA No. 6 ANTICONVULSIVANTES……………………….. 23
PRÁCTICA No. 7 ANALGESIA………………………………………. 29
PRACTICA No 8 EFECTOS DE LA ADMINISTRACIÓN DE
ESTRÓGENOS SOBRE ÓRGANOS REPRODUCTORES……….. 32
PRÁCTICA No. 9 HIPOGLUCEMIANTES………………………….. 36
1
PRÁCTICA No.1
NEUROTRANSMISIÓN INTRODUCCIÓN
En el estudio de la biología celular neuronal hemos visto que las neuronas
utilizan dos tipos de canales para la comunicación intracelular: los canales de reposo
que producen el potencial de reposo y los canales activados por voltaje que producen
el potencial de acción. Ahora abordamos la transmisión sináptica, el proceso de
comunicación entre las células, donde estudiaremos los dos tipos de canales
adicionales: los canales en la unión íntima y los activados por ligandos.
Durante el desarrollo individual, las neuronas establecen conexiones sinápticas
muy específicas con otras neuronas. La percepción, la emoción y el aprendizaje se
basan en la especificidad de las conexiones sinápticas que se realizan entre las
neuronas durante su desarrollo.
Una neurona realiza un promedio de 1.000 conexiones sinápticas y recibe
muchas más. Por lo tanto, el encéfalo humano, que contiene alrededor de 1011
neuronas, establece 1014 conexiones. Afortunadamente, mediante el examen detallado
de unas cuantas sinapsis, podemos alcanzar una comprensión global de toda la
transmisión sináptica general.
La sinapsis es el lugar de interacción entre dos células, está constituida por tres
elementos: la terminal presináptica, la terminal postsináptica y una zona de aposición
(hendidura sináptica).
En virtud de sus zonas de aposición, las sinapsis se clasifican en dos grupos
principales: eléctrica y química. En la sinapsis eléctrica la hendidura sináptica es
pequeña, y la corriente generada por el potencial de acción en la neurona presináptica
pasa directamente hacia la célula postsináptica gracias a los canales de unión
especializados, denominados canales de la unión íntima. En la sinapsis química la
hendidura sináptica es mayor y no existe éste tipo de canales. Un cambio en el
potencial de membrana en la célula presináptica conduce a la liberación de un
transmisor químico desde la terminal presináptica. El transmisor químico difunde a
través de la hendidura sináptica uniéndose a las moléculas receptor, situadas en la
membrana celular postsináptica, abriendo los canales iónicos a través de los cuales
para corriente.
El receptor del transmisor puede clasificarse en dos grupos fundamentales, en
virtud de cómo controle el receptor de un canal iónico de la célula posináptica. Uno de
los tipos de Receptores forma una estructura común con un canal iónico que controla
2
directamente. El segundo tipo, actúa directamente en el canal por medio del segundo
mensajero y otras reacciones moleculares internas en la célula postsináptica. A su
vez, a cada uno de estos grupos pertenecen múltiples tipos de receptores, debido a
las diferentes combinaciones de las moléculas isomórficas.
Ambos grupos de receptores pueden producir excitación e inhibición. El sentido
de la acción sináptica dependerá de la interacción receptor-transmisor. No de las
propiedades del transmisor, pues el mismo transmisor puede producir efectos
diferentes dependiendo del subtipo receptorial con el que interactué. Como en el caso
del glutamato, que es el transmisor químico encefálico excitador por excelencia, que
produce diferentes acciones según el tipo de receptor glutametérgico al que se una.
No obstante, a pesar de la pequeña cantidad de transmisores que hay, son capaces
de producir una gran variedad de acciones sinápticas.
Como consecuencia de la complejidad estructural y de la arquitectura
molecular de las sinapsis químicas, pueden existir gran variedad de enfermedades
debidas a la alteración de éste tipo de sinapsis.
OBJETIVO Conocer los fenómenos eléctricos y químicos que favorecen o bloquean la
neurotransmisión.
PROCEDIMIENTO Y CUESTIONARIO
Empleando el programa interactivo NEURON, explora Y RESPONDE :
1. La participación de los canales iónicos en la generación del potencial de acción
2. El mecanismo de los canales iónicos sensibles a ligando
3. El mecanismo de los canales iónicos sensibles a voltaje
4. El origen del potencial de membrana en reposo
5. El potencial de acción postsináptico inhibitorio
6. El potencial de acción postsináptico excitatorio
7. El mecanismo de libración del neurotransmisor
8. El mecanismo de segundos mensajeros
9. El mecanismo de recaptación de neurotransmisor
10. Como sale calcio intracelular.
Investigación
3
A) Realiza un esquema en donde expliques e indiques como se incrementa el calcio.
B) Se trata de una fármaco que incrementa la salida de calcio intracelular. Consideras
que ayudaría a mantener la presión arterial en un paciente que tenga hipertensión
arterial.
C) Que diseño experimental realizarías para estudiar un fármaco que bloquea la
recaptura de Dopamina.
D) Que utilidad tiene un fármaco que bloquea la recaptura de Noradrenalina
E) Que utilidad clínica tiene un fármaco que bloquea la recaptura de GABA.
F) Explica los efectos periféricos de un fármaco que bloquea los receptores
muscarinicos.
H) Que utilidad tendría una fármaco que bloquea la enzima biotransformante de la
acetilcolina (anticolinesterasico).
i) Explica las diferencias farmacologicas y farmacoterapueticas de un inhibidor de la
acetilcolinesterasa reversible de uno no reversible.
J) Si bloqueamos los receptores α2 presináptico, cuales serian las consecuencias
sobre los niveles de noradrenalina y sus efectos periféricos.
K) Se trata de un fármaco que bloquea los receptores µi y µ2 . Explica y esquemática
las secuencias de sus efectos farmacologicos y que utilidad tendria.
4
PRÁCTICA No. 2 EVALUACIÓN DE DROGAS ANSIOLÍTICAS
OBJETIVO
Demostrar el efecto ansiolítico del diacepam en el modelo de Vogel .
Demostrar el efecto ansiolítico del diacepam en el modelo elevado en cruz
INTRODUCCIÓN
En el hombre los desórdenes mentales están asociados con el estrés, la
ansiedad y la depresión. En un estado de ansiedad ocurren diversos cambios
fisiológicos en el organismo, como es el caso, de sudación, taquicardía, temor,
ira, tristeza, alegría, trastornos psico-motores y trastornos de pánico,
agorafobia y otros tipos de fobia. Actualmente es necesario que se administre
una serie de fármacos para contrarrestar la ansiedad. Se sabe que al año se
produce 8000 toneladas de benzodiacepinas por lo que son necesarios
modelos experimentales para evaluar los nuevos ansiolíticos. Además la
administración de algunas benzodiacepinas o nuevos ansiolíticos en algún
núcleo del SNC nos daría información sobre la participación de diferentes
núcleos en el estado de ansiedad.
CONOCIMIENTOS PREVIOS.
Conocimiento del manejo y cuidado de los animales de laboratorio. Conocimiento de la administración subcutánea e intraperitoneal . Conocimiento de los fármacos ansiolíticos.
DESARROLLO DE LA PRÁCTICA
Material 4 jeringas de 1ml
Una balanza para roedores
Fármaco: Diacepam (VALIUM 10 mg/2ml )
Soluciones: Solución Salina Isotónica NaCl al 0.9 %
5
MODELO DE VOGEL
Este modelo esta constituido por una caja de acrílico de 33 cm de largo,
25 cm de ancho y 25 cm de altura además de que cuenta con un cubo posterior
de 8 cm de ancho por 11 cm de altura con un soporte de 8cm de largo
formando un ángulo de 60º. En la parte superior del cubo se encuentra un
bebedero que esta conectado a un electrodo de referencia (corriente). Otro
electrodo se conecta a una rejilla que esta localizada en la parte inferior de la
caja. Cuando el roedor sorbe agua cada 20 veces recibe un choque eléctrico de 0.7 mA/1seg que es regulado mediante un generador que a su vez se
encuentra conectado a un contador de pulsos, eventos y a una medidor de
voltaje (0.5, 0. 6, 0.7, 0.8, 0.9, 1.0 mA).
6
DIAGRAMA DE TRABAJO PARA LA ADMINISTRACIÓN
SISTÉMICA DE ANSIOLÍTICOS (MODELO DE VOGEL)
SUJETOS DE EXPERIMENTACIÓN
CONTROL PROBLEMA
SUPRESIÓN DE AGUA X 48 HRS
ADMINISTRACIÓN DE DIACEPAM
EVALUACIÓN DE PARAMETROS
RESULTADOS
7
LABERINTO ELEVADO EN CRUZ El proceso de ansiedad se realizará en un laberinto “T“ el cual esta
compuesto de 4 brazos con una longitud de 50 cm cada uno: 2 brazos
cerrados, con paredes de 15 cm, y 2 brazos abiertos. El centro del laberinto
mide 10 cm de largo por 10 cm de ancho y la base del laberinto se encuentra
a un metro del nivel del piso. (Figura 1 y 2)
FIGURA No. 2
FIGURA No. 1
8
DIAGRAMA DE TRABAJO PARA LA ADMINISTRACIÓN SISTÉMICA DE ANSIOLITICOS
( LABERINTO ELEVADO EN CRUZ )
SUJETOS DE EXPERIMENTACIÓN
CONTROL PROBLEMA
ADAPTACIÓN AL LABERINTO
ADMINISTRACIÓN DE ANSIOLÍTICOS
EVALUACIÓN DE PARAMETROS
RESULTADOS
9
PROCEDIMIENTO
Para ambos modelos de experimentación, se emplearán ratas
macho de la cepa Wistar, de peso 200- 250 gr, provenientes del
Bioterio Claude Bernard de esta Universidad
(MODELO DE VOGEL)
Nota: Antes de la prueba de situación de conflicto (Modelo Vogel) se
privarán de agua por 48 hrs, además de mantenerse en un ciclo luz-oscuridad
de 12/12 hrs/día.
1. Al grupo 1 (control) se le administrará solución salina isotónica a razón
de 0.1ml /10gr de peso por vía subcutánea. Al grupo 2 (problema)
se les administrará Diacepam a una dosis de 0.8 mg/Kg por vía
subcutánea y a una concentración de 10 mg/2 ml.
2. Se administrará 1 µl en el hipocampo SSI al grupo control y 1 µl de
diacepam (1µg/µl) al grupo problema y se efectuará la prueba de Vogel
3 minutos después de la administración.
3.- Evaluar los siguientes parámetros durante 20 minutos:
A) Tiempo de Latencia al primer sorbo en segundos (TL1S)
B) Número de pulsos (NP)
C) Número de eventos (NE)
4.- Recopilar los datos por sección y llenar la tabla No.1
5.- Graficar los parámetros contra fármaco en forma de barras.
TABLA No. 1
RATA TL1S (seg)
NP NE
10
(MODELO LABERINTO ELEVADO EN CRUZ)
Nota: La adaptación al laberinto se realizará un día antes de comenzar los
ensayos. El objetivo será familiarizar al roedor con el laberinto elevado en
“cruz “. El procedimiento será el siguiente:
a. Se colocará al roedor en el centro del laberinto cubriéndolo con
un contenedor.
b. b) Al retirar el contenedor la rata quedará liberada para llevar a
cabo la actividad exploratoria en el laberinto durante un tiempo de
10 minutos, este procedimiento se repetirá para cada roedor.
1. Al grupo control se le administrará solución salina y al grupo problema el
ansiolítico a evaluar, ambos por vía subcutánea y se esperará 3 minutos
antes de efectuar el ensayo.
2. Por otra parte a otro grupo se le administrará 1 µg/µl del ansiolítico a
evaluar y a otro grupo SSI ambos en el hipocampo y después de 3
minutos de la aplicación experimental se tomarán los siguientes
parámetros experimentales para cada rata durante 15min.
Número de veces al brazo abierto = # VBA
Número de veces al brazo cerrado =# VBC
Tiempo de latencia al brazo abierto= TLBA
Tiempo de latencia al brazo cerrado =TLBC
Tiempo de persistencia en el brazo abierto =TPBA
Tiempo de persistencia en el brazo cerrado =TPBC
11
3. Llenar la tabla No. 2 con sus datos
TABLA No. 2 RATA TLBA TLBC TPBA TPBC #VBA #VBC
4. Se recopilarán los datos por sección, para después graficar los resultados en
forma de barras parámetro contra fármaco
CUESTIONARIO 1. Explica el mecanismo de acción de las Benzodiacepinas.
2. ¿Qué otro modelo propones para evaluar los ansiolíticos?
3. ¿Como se clasifican los ansiolíticos?
4. ¿Que estructuras del SNC están relacionadas con la ansiedad?
5. ¿Como se define a la ansiedad?
6. Menciona las propiedades farmacocinéticas de:
A) Diacepam
B) Pracepam
C) Clordiacepóxido
12
PRÁCTICA No. 3 ANTAGONISMO FARMACOLÓGICO EN TEJIDO AISLADO
OBJETIVOS Analizar las características del uso de las preparaciones en tejido
aislado para el análisis del antagonismo farmacológico.
Realizar la curva dosis respuesta de un agonista con el antagonista y
encontrar el efecto máximo, en ambas curvas.
INTRODUCCIÓN
Una de las características importantes de la prescripción médica es la
administración de fármacos en forma conjunta. Sin embargo la interacción de
esos fármacos pudiese ser benéfica o en el último de los casos inocua. El
estudio de esas interacciones se puede realizar a diferentes niveles como es el
caso en animal integro, en una preparación aislada o en su defecto en tejido o
en cultivo de células. El estudio de la interacción pudiese ser con la finalidad de
bloquear un efecto endógeno exagerado, por una determinada patología o en
su defecto aumentar la capacidad fisiológica de un tejido. Las interacciones son
de tipo sinérgico o antagónico. En el primer caso se trata de que dos o más
fármacos produzcan un efecto mayor que cuando se administran por sí solas.
En el caso del antagonismo se trata del bloqueo del efecto, desde un punto de
vista fisiológico, farmacológico o químico. El bloqueo fisiológico es
contrarrestar el efecto de un estado fisiológico mediante la administración de
fármacos que ejercen acciones diferentes. En el caso de la interacción química
es por medio de la interacción de fármacos pero solo desde el punto de vista
químico. Por último en el bloqueo farmacológico se trata de administrar un
fármaco que se una al sitio de acción de la sustancia endógena y con ello
disminuir el efecto agonista.
13
DESARROLLO DE LA PRÁCTICA
Material Sujetos de experimentación Quimógrafo Rata para toda la sección
Estuche de Disección
6 vasos de precipitado de 1000 ml
6 vasos de precipitado de 100 ml
6 pipetas de 1 ml
Cajas petri ( tapa o base )
Bomba de aire
Termómetro
Soluciones Acetilcolina 50 mg/5 ml y diluir 1:2 siete veces
Histamina 50 mg/5mL y diluir 1:2 siete veces
1.5 lt de Solución Hartman por equipo.
PROCEDIMIENTO
1. Prepare y monte el ileón de rata fijando uno de los extremos en el alambre
de tapón de hule, y el otro extremo a la pajilla del quimógrafo.
2. Llene la cámara con solución Hartman hasta un nivel donde cubra todo el
músculo.
3. Administre la concentración inicial de acetilcolina 0.1 mL por cada 10 ml de
solución Hartman. Observe que la pajilla va subiendo hasta una meseta.
Continúe registrando y en este punto agregue 0.1 ml de histamina (1mg/2ml) y
observe como disminuye la respuesta. Agregue la concentración mas diluida de
acetilcolina, registre por 10 seg y continúe agregando las subsecuentes
concentraciones de acetilcolina. Se detiene el quimógrafo y se retira la pajilla,
se drena la cámara con nueva solución a 370C y se lava el intestino dos veces,
dejando entre cada lavado 1 minuto.
4. Se repiten estos mismos pasos hasta que se complete las concentraciones
descritas.
5. Tabula tus registros en la Tabla No. 1 los registros de todo el grupo.
14
RESULTADOS
TABLA No. 1
Fármaco Concentración
µg/µl Logaritmo
Conc. Respuesta
(mm) Respuesta
(mm)
Acetilcolina
Acetilcolina + histamina
DISCUSIÓN
En relación a la revisión bibliográfica del tema y de los resultados obtenidos
discuta lo resultados obtenidos. Analice cada uno de los elementos de la curva
dosis respuesta, del fármaco agonista y del antagonismo. Analice además la
importancia de este tipo de experimentos farmacológicos, en la búsqueda de
nuevos fármacos.
15
CUESTIONARIO
1. ¿Cuáles son las acciones fisiológicas de la acetilcolina?
2. ¿Por qué la histamina disminuye la contracción del músculo liso?
3. ¿Cómo actúa la histamina y su relación con sus usos clínicos?
4. ¿Por qué al aumentar la concentración de acetilcolina aun no se revirtió el
efecto de la atropina?
5. ¿Por qué la acetilcolina a concentraciones altas si revirtió el efecto de la
histamina?
6. Realiza un esquema de la acción de la acetilcolina.
7. La atropina ejerce su acción sobre los receptores muscarínicos. ¿Qué son
estos receptores? ¿cuántos tipos existen? Y ¿cuáles son sus mecanismos de
transducción de señales?
8.- Si la concentración de histamina es demasiada, explica que está
sucediendo a nivel de receptores y sus efectos clínicos.
16
PRÁCTICA NO. 4 ESTIMULANTES SISTEMA NERVIOSO CENTRAL
OBJETIVO
Demostrar el efecto estimulante de anfetamina, cafeína y L-dopa en
campo cerrado.
Demostrar el efecto estimulante de anfetamina, cafeína y L-dopa en
campo abierto.
INTRODUCCIÓN Los estimulantes del SNC incluyen sustancias como las anfetaminas, la
cocaína y el metilfenidato. Si bien muchos estimulantes comparten una
estructura que se asemeja a la anfetamina, esto no siempre es así. Por tanto
existen, si bien existen muchas similitudes farmacológicas entre los diversos
compuestos, cada estimulante tiene efectos que son únicos.
El uso crónico de niveles relativamente bajos de un estimulante, así
como altas dosis en forma aguda pueden dar como resultado un síndrome
parecido a una psicosis. La agitación y la paranoia son características y pueden
acompañarse de alucinaciones táctiles de insectos arrastrándose debajo de la
piel. Este síndrome se ve a menudo en personas que toman estimulantes para
mantener un rendimiento laboral adecuado.
Las evidencias experimentales demuestran que todos los estimulantes
bloquean en forma aguda la recaptación de los neurotransmisores con
monoaminas y algunos también causan la liberación de estas sustancias
químicas. Con el uso prolongado se produce depleción de los
neurotransmisores y la regulación ascendente compensadora del número de
los receptores, con lo cual los sistemas se vuelven más sensibles. Se ha
sugerido el tratamiento de la intoxicación con estimulantes con agentes
antipsicóticos, sobre la base de los cambios neuroquímicos en el cerebro, pero
es preferible proporcionar sostén clínico y protección. La acidificación de la
orina en teoría tiene valor pero no ha sido útil en la práctica para incrementar la
eliminación de los estimulantes.
17
La cafeína es el estimulante mas consumido en el mundo. Es capaz de
incrementar el estado de alerta y el estado de ánimo, potenciar el sentimiento
de bienestar, facilitar el sentimiento de bienestar, facilitar las tareas
psicomotoras, aumentar la motivación del trabajo, la energía y la concentración
y retrasar el inicio del sueño.
DESARROLLO DE LA PRÁCTICA
Material Caja de actividad motora en campo cerrado 3 Jeringas de 1 mL
Soluciones
Solución Salina Isotónica NaCl (0.9%)
Fármacos Cafeína Anfetamina (Clobenzorex) L-dopa Haloperidol
Sujetos de experimentación Ratas macho cepa Wistar
CAJAS DE ACTIVIDAD MOTORA EN CAMPO CERRADO Se representa con una caja de acrílico de color negro, en la parte inferior
se encuentra una rejilla y en las paredes de la caja están distribuidos ocho
fotodiodos por los cuales se hace pasar una haz de luz a lo ancho de caja.
Cada vez que la trayectoria de la luz se interrumpa por el movimiento del
animal se contabiliza en un dispositivo electrónico; este dispositivo se
encuentra adaptado a la caja y los datos obtenidos se almacenan en la
memoria de la caja para su posterior lectura y gratificación al término del
experimento.
18
PROCEDIMIENTO 1. A una rata se le administra 5 mg/Kg (10mg/1mL) de cafeína vía
intraperitoneal.
2. Transcurridos 20 minutos después de la administración del fármaco la
rata se coloca en la caja de campo cerrado por 6 periodos de 10
minutos.
3. Al finalizar los seis periodos se anotan el número de cuentas
acumuladas y se anotan en la tabla No. 1.
4. A otra rata se le administra 5 mg/Kg (4 mg/mL) de anfetamina vía
subcutánea.
5. Transcurridos 10 minutos después de la administración del fármaco la
rata se coloca en la caja de campo cerrado por 6 periodos de 10 minutos
y se anotan el número de cuentas acumuladas.
6. A otra rata se le administra 200 mg/Kg de L-dopa vía oral.
7. Transcurridos 15 minutos después de la administración del fármaco la
rata se coloca en la caja de campo cerrado por 6 periodos de 10 minutos
y se anotan el número de cuentas acumuladas.
8. A otra rata se le administra el haloperidol (50mg/1mL) un depresor del
SNC por vía intraperitoneal.
9. Transcurridos 15 minutos después de la administración del fármaco la
rata se coloca en la caja de campo cerrado por 6 periodos de 10 minutos
y se anotan el número de cuentas acumuladas.
10. Lo mismo se hace para la rata control solo que en este caso se
administra solución salina isotónica.
19
CAJAS DE ACTIVIDAD MOTORA EN CAMPO ABIERTO
PROCEDIMIENTO 1. A una rata se le administra 5 mg/Kg (10mg/1mL) de cafeína por vía
subcutánea.
2. La caja se debe de dividir en 9 partes iguales y 4 compañeros deben
estar colocados a los lados de la caja como se muestra en la figura:
3. Transcurridos 20 minutos después de la administración del fármaco se
coloca la rata en la caja de campo abierto durante 1 hora y se observará
lo siguiente:
NC: Número de cuadrantes visitados
NA: Número de acilaciones
NR: Número de rearing
4. El mismo procedimiento se hace para las ratas de anfetamina (5 mg/Kg),
L-dopa (200 mg/Kg) y solución salina isotónica solo que en estos casos
se deja transcurrir 10 minutos después de la administración.
5. Los resultados se anotan en la tabla 2.
RESULTADOS
TABLA NO. 1
Periodos 10
minutos 20
minutos30
minutos40
minutos50
minutos 60
minutos
Rata con cafeína
Rata con anfetamina
Rata con L-
20
dopa
Haloperidol
Rata con SSI
TABLA NO. 2
Ratas NE NA NR
Cafeína
Anfetamina
L-dopa
Haloperidol
SSI
CUESTIONARIO
1. Grafica tus parámetros contra el fármaco.
2. Explica el mecanismo de acción de los estimulantes utilizados.
3. Menciona las propiedades fisicoquímicas de los fármacos utilizados.
4. ¿Cuál es la utilidad clínica de los estimulantes del SNC?
5. ¿Cuáles son los protocolos clínicos para la administración de los
estimulantes?
21
PRÁCTICA NO. 5
EFECTO DEL ÁCIDO ACETILSALICÍLICO
EN EL TIEMPO DE SANGRADO
OBJETIVO
• Determinar el efecto del Ácido acetilsalicílico en el tiempo de
sangrado.
INTRODUCCIÓN
Cuando se produce la apertura de un vaso sanguíneo la sangre se
derrama, pero por lo general dicha hemorragia cesa espontáneamente
mediante un mecanismo fisiológico denominado hemostasia, que es la
detención espontánea de la hemorragia de vasos sanguíneos dañados. En esta
intervienen tres procesos la contracción de los vasos, la adherencia y
agregación plaquetaria y la coagulación sanguínea.
Un método de estudio para evaluar la fase vascular y plaquetaria de la
hemostasia es el tiempo de sangría. Se determina midiendo el tiempo que
transcurre desde el momento en que se hace una punción (dedo u oreja) hasta
que la sangre deja de brotar de la herida. Se consideran normales los
comprendidos entre 1 y 3 minutos.
El ácido acetilsalicílico inhibe la liberación de ADP de las plaquetas y la
agregación plaquetaria por acetilación de las enzimas plaquetarias que
sintetizan los precursores de las prostaglandinas y del tromboxano A2
(sustancia que estimula más la agregación).
CONOCIMIENTOS PREVIOS
Mecanismos de coagulación de la sangre.
Acciones cardiovasculares de los salicilatos.
Método de Duke.
22
DESARROLLO DE LA PRÁCTICA
Material Cronómetro
Una lanceta estéril y desechable
Papel filtro
Torundas de algodón impregnadas de alcohol
2 tabletas de ácido acetilsalicílico de 500mg
PROCEDIMIENTO
1. Determinar en 5 voluntarios sanos la duración de tiempo de sangrado
(valores controles).
Nota: Los voluntarios sanos no deben ingerir alimentos cuando menos
cinco horas antes de la administración del ácido acetilsalicílico.
2. Administrar a cada uno de los voluntarios dos tabletas de AAS (1g).
3. Transcurrida 4 horas, determinar nuevamente en los cinco voluntarios la
duración del tiempo de sangrado.
4. Anotar los resultados en tabla No. 1
5. Graficar sus resultados del promedio del tiempo de sangrado de sus valores
controles y los valores problema en forma de barra.
TABLA No. 1
TIEMPO DE SANGRADO
VOLUNTARIO VALORES
CONTROLES
DESPUÉS DE LA ADMINISTRACIÓN
DE AAS 1
2
3
4
5
Promedio
23
CUESTIONARIO
1. ¿Cuáles son las utilidades del AAS además de analgésico?
2. ¿Cuál es el mecanismo de acción del AAS como analgésico, antipirético
y
antiinflamatorio?
3. ¿Cómo afecta el AAS a nivel cardiovascular?
4. ¿Cuáles son los efectos tóxicos del AAS?
5. Investigar modelos experimentales para valorar
Analgesia
Antipiresis
6. De sus datos obtenidos. ¿Cuál es el efecto que observa sobre el tiempo
de
sangría? y ¿Explique a que se debe?
7. ¿Cómo actúa el AAS sobre la coagulación? (Esquema)
24
PRÁCTICA No. 6
ANTICONVULSIVANTES
OBJETIVOS
• Evaluar la combinación de drogas antiepilépticas administradas en el
hipocampo de rata sobre crisis convulsivas de tipo generalizadas
inducidas por pentilentetrazol.
• Demostrar el efecto anticonvulsivo del Diazepam en un modelo
biológico.
• Conocer las características de las crisis convulsivas INTRODUCCIÓN La epilepsia es una enfermedad que afecta entre 0.5 -1.0 % de la
población en general. Su manifestación más importante es la presencia de
crisis, muchas veces convulsivas. Las convulsiones epilépticas suelen producir
alteración transitoria del conocimiento, dejan al individuo en riesgo de lesión
corporal y a veces obstaculizan las actividades de estudio y trabajo de éste.
El término convulsión se refiere a un trastorno transitorio de la conducta,
causado por la activación desordenada, sincrónica y rítmica de poblaciones
enteras de neuronas cerebrales. Si bien se sabe, no se cuenta con una
profilaxis eficaz, ni con métodos de curación, pero si se cuenta con una serie
de fármacos disponibles que inhiben las convulsiones, entre los cuales
encontramos a los barbitúricos anticonvulsivos, hidantoínas, desoxibarbitúricos,
iminoestilbenos, succinimidas, benzodiacepinas, etc.
Como la epilepsia es una enfermedad frecuente y que tiene alteraciones
secundarias en algunos individuos, no es extraño que la investigación sea
intensa en esta rama de la Farmacología y se busquen nuevos fármacos con
propiedades anticonvulsivas.
25
CONOCIMIENTOS PREVIOS.
Conocimiento del manejo y cuidado de los animales de laboratorio
Conocimiento de la administración intrahipocampal e intraperitoneal .
Conocimiento de los anticonvulsivos.
DESARROLLO DE LA PRÁCTICA
Material.
Ratas
4 jeringas de 1ml
Balanza para roedores
Soluciones.
Pentilentetrazol 100 mg/5ml
Diazepam 10 mg/2ml
Difenilhidantoína
Solución fisiológica
26
DIAGRAMA DE TRABAJO PARA LA ADMINISTRACIÓN DE ANTIEPILÉPTICOS
Sujetos de experimentación
Cirugía estereotáxica
Administración sistémicadel Convulsionante
Evaluación Conductual
Reportar y Graficar
Evaluación del implante
Grupo problemaadministración
anticonvulsivantes
Grupo control SSI
27
PROCEDIMIENTO
Nota: Se emplearán ratas adultas de la cepa Wistar de peso 200-250 g,
provenientes del bioterio Claude Bernard de esta Universidad.
ADMINISTRACION LOCAL
1. A un grupo de ratas se les realizará la cirugía estereotáxica, después de
la cirugía los animales serán colocados individualmente en cajas esperando
un lapso de 5 días para su recuperación, las cuales se dividirán en dos
grupos:
A) Al primer grupo (control) se le administrará en el hipocampo 1 µl SSI
y después de 3 minutos se administrará el convulsionante
(Pentilentetrazol) por vía intraperitoneal a una dosis de 37 mg/kg de
peso.
B) Al segundo grupo (problema) se le administrará en el hipocampo el
anticonvulsivante (Diacepam 1µl) a una concentración de 1µg/µl
esperando 3 minutos para administrar el convulsionante
(Pentilentetrazol) por vía i.p. a una dosis de 37 mg/kg de peso
ADMINISTRACIÓN SISTÉMICA
Por otra parte:
1. A otro grupo de ratas (control) se le administrará SSI por vía intraperitoneal a
razón de 0.1ml/10g de peso, se esperarán 3 minutos y se les administrará el
convulsionante (Pentilentetrazol) por vía i.p., a una dosis de 37 mg/Kg de peso.
2. Finalmente a otro grupo experimental se le administrará el anticonvulsivante
Diacepam a una dosis de 1mg/Kg y a una concentración de 10 mg/2 ml por vía
intraperitoneal. A otro animal administrarle en las mismas condiciones 10 mg/kg
de difenilhidantoina.
3. Evaluar los siguientes parámetros durante un tiempo de 15 minutos:
A) Número de sacudidas (NS) o convulsiones mioclónicas, estas
sacudidas son únicas, breves y que van de leves a violentas de una
parte o de todo el cuerpo sin pérdida de la conciencia.
B) Número de convulsiones tónico-clónicas (NCTC). Contracciones
musculares tónicas generalizadas con flexión de las extremidades
28
superiores y extensión forzada de las extremidades inferiores, seguidas
por contracciones rítmicas de los miembros. Usualmente duran varios
minutos y hay pérdida de la conciencia.
C) Duración de cada convulsión tónico-clónica (DCTC).
D) Tiempo de latencia a la primera sacudida mioclónica (TL1SM).
E) Tiempo de latencia a la primera convulsión tónico-clónica
(TL1CTC).
5. Llenar las tablas No.1 y No. 2
6. Graficar los resultados en forma de barras: parámetros contra fármaco
TABLA No.1 ADMINISTRACION LOCAL
RATAS NS NCTC DCTC TL1SM TL1CTC
TABLA No.2 ADMINISTRACION SISTEMICA
RATAS NS NCTC DCTC TL1SM TL1CTC
29
CUESTIONARIO
1. ¿Cuáles son los métodos de estudio de las drogas anticonvulsivantes?
2. ¿Cuáles son los mecanismos de acción de las drogas anticonvulsivas?
3. ¿Cuál es la clasificación de las convulsiones epilépticas y las características
que estas presentan?
4. ¿Cuál es el mecanismo de desarrollo de las convulsiones?
5. ¿Cuáles son los efectos indeseables de los anticonvulsivos?
6. ¿Cuáles son los requisitos de una droga antiepiléptica ideal?
30
Práctica No. 7
Analgesia INTRODUCCIÓN
Un analgésico es una sustancia que a través de su acción sobre el
Sistema Nervioso Central (SNC), o bien en la periferia, sirve para reducir o
abolir el dolor sin producir inconsciencia.
Los fármacos analgésicos empleados en la clínica se dividen en dos
grupos: los analgésicos opioides y los analgésicos no opioides.
Analgésicos opioides
Son un amplio grupo de sustancias tanto de origen natural como
sintético que incluye agonistas semejantes a la morfina y sus antagonistas que
pueden bloquear estos efectos. Además de incluir a los opioides de origen
endógeno.
La morfina es el analgésico por excelencia y el mejor representante de
este grupo, se obtiene del opio, el cual además de la morfina contiene otros
alcaloides con propiedades analgésicas y estimulantes del SNC.
Los analgésicos no opioides Los analgésicos tipo aspirina o también llamados antiinflamatorios no
esteroidales (AINEs) están entre los más empleados en el mundo. En la práctica
clínica se utilizan para aliviar el dolor de leve a moderado. Su mecanismo de acción es
a través de la inhibición de la ciclooxigenasa 1 (COX-1 constitutiva) y ciclooxigenasa 2
(COX-2 inducida) en el sitio de la inflamación, y con ello la reducción de la síntesis de
prostaglandinas y tromboxanos. En este grupo se incluyen a la aspirina, el ibuprofeno,
el naproxeno, el ketoprofeno, la indometacina, el piroxicam y el ketorolaco, entre otros.
OBJETIVO Producir un cuadro analgésico con el opioide sintético fentanil empleando el modelo
experimental de choque térmico.
31
DESARROLLO DE LA PRÁCTICA Material
• Naloxona (25 UI) • Fentanil (70µg/Kg) • Metamizol sódico
Procedimiento 1. Habituar a la rata. La habituación consiste en introducir a cada roedor en un
contenedor durante 30 minutos por tres días y a la hora que se realizará el
experimento. Durante los 30 minutos el animal deberá mantener la cola en
posición perpendicular con respecto a la mesa donde se encuentre el
contenedor.
2. El día del experimento, pesar a la rata.
3. Llenar con agua un vaso de precipitado de 400 mL, calentar a una
temperatura de 58 ºC (estrictamente).
4. En un sólo movimiento introducir la mayor parte de la cola de la rata en el
vaso, instantáneamente con un cronometro tomar el tiempo que tarda la rata en
sacudir la cola o realizar movimientos corporales.
5. Dejar pasar dos minutos y repetir el mismo proceso hasta tener 5 lecturas
basales.
6. Obtener el promedio de las lecturas y anotar los datos en la tabla No. 1.
7. Administrar por vía intraperitoneal el fentanil en una dosis de 70mg/kg de
peso. La concentración del fentanil es de 0.05 mg/ml.
8. Esperar 6 minutos de latencia y realizar 5 mediciones con espacios de 2
minutos entre cada una. Obtener el valor promedio y anotar los datos en la
tabla No. 1.
9. Administrar el antagonista naloxona en una dosis de 25 UI esperar 5 minutos
de latencia y hacer 5 mediciones.
10. Por último administrar el metamizol sódico (200mg/Kg) esperar 5 minutos
de latencia y hacer 5 mediciones.
32
TABLA No. 1 Lecturas Basal
(tiempo en seg) Fentanil
(tiempo en seg) Naloxona
(tiempo en seg) Metamizol sòdico (tiempo en seg)
1
2
3
4
5
Promedio
CUESTIONARIO 1. Describe el mecanismo de acción propuesto para los analgésicos opioides.
2. Describe el tipo de antagonismo producido por la naloxona.
3. Describe otros modelos experimentales para medir analgesia.
4. ¿Qué son los opioides endógenos?
5. Indica los usos clínicos de los opioides
6. ¿Qué es el dolor?
7. Describe el sistema de transmisión de los mensajes nociceptivos.
8. Menciona tres diferencias entre los analgésicos opioides y no opioides.
9. ¿Qué es la analgesia?
10. Investiga 5 nombres de analgésicos opioides y 5 de analgésicos no
opioides.
11. ¿Qué es analgesia y la neuroleptoanalgesia?
12. ¿En qué consiste la farmacodependencia de los opiáceos?
13. ¿Qué es la hipnoanalgesia y qué explicación daría en caso de que se
presente en pacientes que consumen un opiáceo?
14. Investigar los métodos de estudio que se ocupan para estudiar la evolución
de la analgesia.
16. ¿En qué consiste el método de la placa caliente? Indica un diagrama
experimental con este método para la determinación de la analgesia de una
droga.
17. ¿Cuál es el mecanismo de acción de los opiáceos?
18. ¿Cuáles son las propiedades de un analgésico ideal?
19. Indica la localización de los diferentes subtipos de receptores a los
fármacos opiáceos.
33
PRACTICA No 8
EFECTOS DE LA ADMINISTRACIÓN DE ESTRÓGENOS SOBRE ÓRGANOS REPRODUCTORES
INTRODUCCIÓN
Los estrógenos son hormonas endógenas que producen muchos
efectos fisiológicos; dichos efectos comprenden acciones vinculadas con el
desarrollo, efectos neuroendocrinos, preparación cíclica de las vías de
reproducción para la fecundación e implantación, y efectos sobre el
metabolismo de minerales, carbohidratos, proteínas y lípidos. Se han aislado
del plasma sanguíneo hasta seis estrógenos naturales, pero solo tres en
cantidades notables: ß-estradiol, estrona y estriol
La disminución de estrógenos se ha asociado a un incremento en el
riesgo de padecer enfermedades cardiovasculares, osteoporosis, estados de
depresión y demencia, en particular enfermedades degenerativas. Existen
evidencias que sugieren que la disminución o pérdida de estradiol y estrona
después de la menopausia puede revertirse con el uso de la terapia de
reemplazo hormonal.
El uso terapéutico de los estrógenos se halla extremadamente difundido, y
sus efectos farmacológicos son un reflejo de sus acciones fisiológicas. Las
aplicaciones más frecuentes de esos compuestos son la terapia de reemplazo
hormonal y la anticoncepción, aunque los medicamentos y las dosificaciones
específicos que se utilizan en esas dos situaciones son diferentes.
En los roedores se presentan características diferentes de acuerdo a la
presencia o no de estrógenos; estas se dividen en fases que son:
• Proestro: La vagina se torna seca y se comienza a producir la
cornificación de las células de las paredes. Gran numero de células
epiteliales nucleadas, no hay presencia de leucocitos.
• Estro: La vagina se ve cornificada y seca, aparece un flujo vaginal
abundante. Los estrógenos circulantes provocan cambios en el útero.
Hay presencia de células epiteliales grandes y cornificadas (no
nucleadas).
• Metaestro: En esta etapa la vagina se ve húmeda, Presencia de
leucocitos y células cornificadas
34
• Diestro: El pH vaginal es de 6.1, el diámetro de la luz uterina es de 2.5
mm. Se encuentran especialmente leucocitos y algunas células
epiteliales nucleadas.
OBJETIVO
• Determinar el ciclo estro de la rata y los efectos provocados por la
administración de ß-estradiol-3-benzoato (E2) sobre órganos reproductores
de roedores.
DETERMINACIÓN DEL CICLO OVARICO EN RATA Material 3 ratas hembra adultas jóvenes
Asa bacteriológica
Porta objetos
Colorante de Write
Alcohol etílico al 70% Lámpara de alcohol
Éter
PROCEDIMIENTO 1. Tomar frotis vaginales diariamente a cada rata.
• En un portaobjetos limpio se coloca una gota de agua destilada,
posteriormente se introduce una asa estéril en la vagina de la rata y se da
un giro de el asa para hacer un ligero raspado vaginal, solo se debe tomar
la muestra en la parte mas externa de la vagina para no provocar una
pseudopreñez en la rata. Colocar la muestra obtenida sobre el portaobjetos
y extenderla hasta obtener una capa fina de la misma. Se fija al calor y se
tiñe con colorante de Write. Se observa al microscopio en seco fuerte
(40X).
2. Una vez que se hayan observado y registrado los cambios en el frotis
vaginal de todas las fases del ciclo estral, seleccionar y sacrificar una
rata en fase estro y otra en fase metaestro o diestro.3. Pesar a las ratas
muertas y realizar una incisión en la parte dorsal.4. Observa y registra
las diferencias encontradas en el útero. 5. Separa el útero de la vagina,
35
seccionando la cerviz, saca el útero y las trompas uterinas sobre un
papel filtro y extrae todo el líquido intrauterino.6. Pesa el útero y calcula
los mg de peso uterino por 100g de peso corporal.
EFECTOS DE LA ADMINISTRACIÓN DE ESTRÓGENOS EN RATAS
OVARIECTOMIZADAS.
Material
4 ratas hembras adultas jóvenes
Material para cirugía
Jeringas para insulina
Anestésico(Ketamina)
Antibióticoβ-estradiol-3-benzoato[50mg/20ml]
Balanza
Cubreobjetos
PROCEDIMIENTO
1. Pesar las ratas, realizar frotis vaginales y calcular la dosis de anestésico
(pentobarbital 45 mg/Kg)
2. Se coloca al animal en posición ventro-dorsal sobre un campo quirúrgico
estéril, realizar una asepsia en la zona ubicada entre la última costilla y
la columna vertebral, a nivel de los dos ijares.
3. Rasurar la zona y desinfectar, realizar una incisión en piel con tijera de
punta roma; al localizar el músculo se separan las facias posteriormente
se introduce una pinza y se separa el tejido adiposo con el fin de
localizar el ovario y el cuerno uterino.
4. Después se liga con hilo Nylon entre el cuerno uterino y los ovarios
5. Posteriormente se introduce el tejido a la cavidad para después suturar
el músculo.
6. Se realiza el mismo procedimiento en el lado contrario.
7. Finalmente se sutura la piel y se administran 20UI de antibiótico (IM) por
tres días y realizar limpieza diaria de las heridas con isodine para evitar
posibles infecciones.
8. Dejar las ratas en recuperación dos días.
36
9. Dividir el grupo en dos:
OVX + E2 (Problema)
OVX + Vehículo (Control)
10. Después de empezar la administración del β-estradiol-3-benzoato
(500mg/20mL) por 7 días a las ratas problema y DMSO a las ratas
control; tomar frotis vaginales de las 4 ratas cada 24 horas hasta que
aparezca la fase estro en las ratas administradas con E2.
11. Sacrificar las ratas y comparar los órganos reproductores de ambos
grupos, extirpa el útero y calcula los mg de peso uterino por 100 g de
peso corporal.
CUESTIONARIO
1. ¿Cual es mecanismo de acción de estrógenos?
2. Explica los efectso farmacologicos de la administración de estrógenos
sobre los cambios de los estrógenos.
3. Investiga las consecuencias de los estrógenos sobre la liposisis y la
glucolisis.
4. Investiga y explica los protocolos terapéuticos de los estrógenos.
37
PRÁCTICA No. 9 HIPOGLUCEMIANTES
OBJETIVO
Determinar los cambios de los niveles de glucosa sanguínea en rata con
hipoglucemiantes.
INTRODUCCIÓN
Los hipoglucemiantes orales son un conjunto heterogéneo de drogas
que se caracterizan por producir una disminución de los niveles de glucemia
luego de su administración por vía oral.
Los fármacos orales son medicamentos de utilidad sólo para tratar la
Diabetes Mellitus Tipo 2 (DM2). Realmente el mejor hipoglucemiante que se
conoce es el binomio Dieta-Ejercicio, de modo que el lugar de los fármacos
debe ser siempre secundario. Solo aquellos pacientes que no respondan
adecuadamente a un régimen dietético y de actividad física deberán ser
tratados con estos fármacos.
Los hipoglucemiantes orales abarcan cuatro familias de drogas bien
definidas:
Sulfonilureas (glibenclamida, acetohexamida, clorpropamida)
Biguanidas (buformina, metformina, fenformina)
Inhibidores de las � - glucosidasas (miglitol, acarbosa)
Tiazolidinedionas (troglitazona, pioglitazona, ciglitazona)
Las sulfonilureas y las tiazolidinedionas son realmente hipoglucemiantes,
mientras que las biguanidas y los inhibidores de las alfa-glucosidasas son
antihiperglucemiantes, necesitando todos de la presencia de insulina para
poder ejercer su acción. Para su correcto manejo es preciso tener presente sus
características farmacocinéticas, vías de eliminación, potenciación de sus
efectos por otros medicamentos, efectos secundarios y toxicidad.
38
Otro hipoglucemiante que se puede mencionar es la Insulina la cual es
una hormona producida por el páncreas. La insulina ayuda a que los azúcares
obtenidos a partir del alimento que ingerimos lleguen a las células del
organismo para suministrar energía.
Hoy en día todas las insulinas del mercado son insulinas humanas
sintetizadas por ingeniería genética (DNA recombinante).
Las insulinas de origen bovino o porcino han desaparecido
prácticamente del mercado. Todas ellas están muy purificadas y tan solo
contienen proteínas de insulina y no contaminaciones de otro tipo. El único
factor que las diferencia es la duración de acción.
Insulina de acción ultrarrápida; que comienza a hacer efecto a los 15
minutos de haberse inyectado, actuando con mayor intensidad entre los 30 y
los 70 minutos.
Insulina de acción rápida que empieza a hacer efecto a los 30 minutos
de haberse inyectado, actuando con mayor intensidad entre la 1 y 3 horas
después de la inyección.
Insulinas de acción intermedia o lenta; que empieza a hacer efecto a los
60 minutos de haberse inyectado, actuando con mayor intensidad entre la 3 y 6
horas después de la inyección.
CONOCIMIENTOS PREVIOS
Conocer la NOM-015-SSA2-1999, para la prevención, tratamiento y
control de la Diabetes Mellitus.
Conocer el manejo del glucómetro Ascencia EliteTM, y la forma de
toma de muestra para roedores.
Conocer los diferentes efectos que producen los hipoglucemiantes.
DESARROLLO DE LA PRÁCTICA
Material Ratas de 250g-300g de peso.
Balanza para roedores.
Glucómetro Ascencia EliteTM.
Tiras reactivas para el glucómetro Ascencia EliteTM.
39
Tijeras.
Cánula.
Isodine.
Agua purificada.
Fármaco:
Insulina de acción corta.
PROCEDIMIENTO 1. Cada equipo utilizará dos ratas las cuales hay que pesar y marcar.
2. Calibrar el medidor.
* Insertar la tira de codificación en la ranura del instrumento (el medidor
emitirá 2 pitidos y en la pantalla aparecerá “F-#”)
* Quitar la tira de codificación. El medidor está listo para usarse.
3. Insertar la tira reactiva en el medidor. Comprobar que en la pantalla aparece
el mismo “F-#” de la tira de codificación.
4. Introducir a las ratas en la jaula de inmovilización y limpiar la zona de corte
de la cola para la toma de muestra.
5. Realizar el corte de cola y obtener una muestra de sangre.
6. Poner en contacto la gota de sangre con el extremo de la tira reactiva y
esperar hasta que los resultados aparezcan en la pantalla. Los resultados
se indican en miligramos de glucosa por decilitro (mg/dL). Tomar la lectura
la cual corresponderá a la medida de la glucosa basal.
7. A una rata se le administrará la Glibenclamida 2.5 mg/Metformina 500 mg
V.O. y esperar ½ hora; tomar nuevamente una muestra de sangre y medir
los niveles de glucosa.
8. Realizar esto cada hora hasta completar 4 lecturas en total.
9. Repetir este procedimiento para la administración de la Insulina.
Glibenclamida 2.5 mg
Metformina 500 mg
40
RESULTADOS
TABLA DE SEGUIMIENTO GLIBENCLAMIDA /METFORMINA.
Glucosa (mg/dL)
No.
Peso (g)
Dosis
(mg/Kg) Basal ½H 1H 1½H
TABLA DE SEGUIMIENTO INSULINA DE ACCIÓN CORTA.
Glucosa (mg/dL)
No.
Peso (g)
Dosis
(mg/Kg) Basal ½H 1H 1½H
41
CUESTIONARIO
1. Graficar los niveles de glucosa en mg/dL contra el tiempo con los resultados
de toda la sección. (Explicar los resultados).
2. Investiga las estructura generales así como las propiedades fisicoquímicas
de las sulfonilureas y biguanidas.
3. ¿Crees que exista alguna influencia de la vía de administración sobre el
efecto hipoglucemiante del fármaco?
4. Investiga el mecanismo de acción de las biguanidas.
5. Concuerdan los resultados obtenidos con lo esperado teóricamente. Da una
explicación.
6. ¿Qué otros métodos conoces para la determinación de la glucosa.
Menciona por lo menos dos?
7. ¿Cuál es la cinética de las biguanidas?
8. Explica la relación Ejercicio-Glibenclamida con respecto a los niveles de
Glucosa sanguínea.
9. ¿Cuáles son los efectos tóxicos de la Glibenclamida y de la Insulina?