Silabo y primera clase odontología microbiología oral dra. lily gutierrez

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Presentación del sílabo Presentación del sílabo

CONCEPTO Y CONTENIDOS DE LA CONCEPTO Y CONTENIDOS DE LA MICROBIOLOGÍA ORAL MICROBIOLOGÍA ORAL

MICROBIOLOGÍA

Microbiología Médica Microbiología Clínica

Microbiología General Microbiología Sistemática

Inmunología

Contenidos de la microbiología oral Contenidos de la microbiología oral

Estructura Imperios o dominios

Reinos Organismos Microbiología oral

Evolución histórica de la microbiología Evolución histórica de la microbiología

1632-1723 Antony van Leeuwenhoek

Descubridor del mundo microbiano

1822-1895 Louis Pasteur Rebatió la teoría de la generación espontánea

1843-1910 Robert Koch Formuló los postulados de Koch

1729 Pier Micheli Nova Plantarum

1898 Martinus Beijerinck Acuña el término virus

1890 S.B. Prusiner Descubrió los priones

1849 Gros Descubre a Entamoeba gingivalis

1773 Mueller Descubrió a Trichomonas tenax

1867 Lister Asepsia y antisepsia

1929 Alexander Fleming Observó a Penicillum notatum

1942 Ernest Chain y Howard Florey

Aislaron y purificaron la penicilina

Desarrollo de la microbiología oral Desarrollo de la microbiología oral 1632-1723 Antony van

LeeuwenhoekObservó en la materia alba animálculos

1890 Willoughby Miller The microorganism of the human mouth. Teoría quimioparasitaria MOHidratos de carbono dieta ácidos desmineralización del diente.

1891 W. Miller Formuló teoría las bacterias bucales a partir de la cavidad oral originan procesos infecciosos en otros lugares del organismo

1897 León Williams Encontró en zonas de caries insipientes acumulaciones de bacterias adheridas al esmalte careado.

1898 Greene y V. Black Descubrió acumulaciones de bacterias constituidas por estreptococos. Introdujo el término placa y sugirió que las bacterias producían una sustancia gelatinosas para adherirse a la superficie del diente.

1924 J. K. Clark Descubre la bacteria Stroptococcus mutans

Desarrollo de la microbiología oral Desarrollo de la microbiología oral 1950-1960 Paúl Keyes Demostraron la capacidad de S. mutans de

producir caries

1745 Pierre Fauchard Relación placa y sarro afección del periodonto como gingivitis y periodontitis (piorreas)

1773 John Hunter Las gingivitis y piorreas repercuten en otras zonas del organismo

1890 W. Miller Relacionó los procesos anteriores con los microorganismos

1934 H.A. Gins Bacterias en zonas afectadas del periodonto

1956 J. S. MacDanal Bacterias anaerobias formadoras de pigmento negro.

1965 Max Lisgarten Estudió por microscopia electrónica los microorganismos periodonto patógenos.

1979 Sigmund Sockransky

Emitió postulados que establecen características que debe reunir un microorganismo para ser asociado a enfermedades periodontales.

Morfología de Morfología de las bacterias las bacterias

A. Cocos

B. Bacilos

B. Helicoidales o formas incurvadas

Redondeados Ovoideos Lanceolados Reniformes

2. Agrupaciones

Diplococos Tétradas Sarcinas Estafilococos Estreptococos

1. Individualizados

2. Extremos 3. Agrupaciones

Cocobacilos

Diplobacilos Empalizadas Estreptobacilos

Vibrios Espirilos Espiroquetas

1. Individualizados

Tamaño Tamaño

• Micrometro (µm) = 1/1.000.000 = 0.000001m = 10-6m• Micrometro (µm) = 1/1.000 = 0.001 mm = 10-3 mm

0.5 µm 1.0 µm

1-10 µm

1.2 µm

Observación de las bacterias Observación de las bacterias Tipos de microscopios

Microscopio Características Utilidad

De fondo claro •Luz visible•Hasta 0.23 µm•Muestra sobre fondo brillante

•Tinciones•Fácil uso

De fondo oscuro •Luz visible difractada•Muestra brillante sobre fondo oscuro.

•Microorganismos de difícil tinción.

De contraste de fases

•Luz difractada•Muestra con diferentes grado de brillo y contraste.

•Estructuras internas.

De fluorescencia •Luz UV•Muestra fluorescente sobre fondo no fluorescente.

•Inmunofluorescencia•auramina-

Electrónico •Haces de electrones.•Estructuras menores de 0.23 µm.

•Virus•Ultraestructuras

Microscopio óptico compuesto de fondo claro Microscopio óptico compuesto de fondo claro

Métodos microscópicos para la Métodos microscópicos para la observación de las bacterias observación de las bacterias

1. Examen en frescoPermite visualizar las bacterias vivas, moviéndose.Muestras: bacterias presentes en un productos patológico líquido (p. ej. orina) , bacterias en un caldo de cultivo. Cuando las bacterias proceden de un medio sólido se incorporarán a un líquido isotónico (p. ej. Solución salina con 0.9% de NaCl)Técnicas:

a) Técnica simpleb) Técnica de la gota pendiente

1. Exámenes Tintoreales

Permiten visualizar las bacterias teñidas con colorante básicos.

Muestras: Igual que para el examen en fresco.

Preparación del frotis de la muestra

Extensión del cultivo en una película delgada sobre el portaobjetos.

Secar al aire

Fijar la preparación a la llama

Cubrir la preparación con el colorante azul de metileno, lavar y secar en block de papel filtro

Aplicar una gota de aceite de inmersión, observar con el

objetivo de 100x

Tipos de tincionesTipos de tinciones2.1 Tinción simple

Utilizan un solo colorante (p. ej. Azul de metileno).Permiten visualizar la morfología de las bacterias.las tinciones simples se llevan a cabo con la fijación de la muestra, se añade el colorante, transcurrido un tiempo de 10 minutos se elimina el colorante con agua, y después de secar se observa con el microscopio.

2.2 Tinciones diferenciales o compuestas Tinción de gram

Preparación del frotis.Fijar la preparación por calor.Teñir con cristal violeta, 15 segundos, lavar.Aplicar el mordiente (solución de yodo, 15 segundos, lavar.Decolorar con alcohol – acetona, 15 segundos, lavar.Teñir con el colorante de contraste, safranina, 15 segundos, lavar.Secar la preparación.Visualizar.

Las bacterias gram positivas de color violeta.

Las bacterias gram negativas de color rojo.

Tinción de Ziehl – Neelsen

Preparar el frotis

Fijación de la muestra por calor.

Teñir con fucsina fenicada en caliente, 3 vapores, lavar.

Decolorar con alcohol ácido, lavar.

Teñir con Azul de metileno, 30 segundos, lavar.

Secar.

Visualizar las bacterias ácido alcohol-resistentes (BAAR) de color rojo y los no ácidos alcohol-resistentes de color azul.

Otras Tinciones

Tinción de giemsa para células eucariotas (también permite observar bacterias).

Tinción argéntica de sales de plata para visualizar espiroquetas.