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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO E HISTOTECNOLÓGICO
TEMA:
“DETERMINACIÓN DE VALORES DE GLUCOSA EN SANGRE EN RECIÉN
NACIDOS A TÉRMINO SIN FACTORES DE RIESGO A LAS SEIS HORAS DE
VIDA EXTRAUTERINA EN LA UNIDAD METROPOLITANA DE SALUD
SUR DE LA CIUDAD DE QUITO A 2850 METROS SOBRE EL NIVEL DEL
MAR DURANTE EL PERÍODO ENERO A JUNIO 2015”
Trabajo de fin de carrera previo a la obtención del título de Licenciado en Laboratorio
Clínico e Histotecnológico
AUTOR: Molina Yaguana Christian Alexander
TUTOR: Dr. Milton Patricio Tapia Calvopiña
Quito, Abril 2016
ii
DEDICATORIA
Dedico este trabajo a mis padres Pablo y Vilma por ser quienes me
han ayudado y apoyado incondicionalmente durante toda mi vida, y
ser uno de los pilares de mi vida. A mi esposa Cristina quien ha
estado junto a mí en todo el camino de la universidad y quien junto a
nuestra hija Victoria son el otro pilar de mi vida.
Christian Alexander Molina Yaguana
iii
AGRADECIMIENTOS
Le agradezco a toda mi familia por estar junto a mi durante todo mi
vida estudiantil y darme su apoyo incondicional y moral ante las
adversidades que se fueron presentando a lo largo del camino.
Agradezco a mis padres quienes con su apoyo y consejos me han dado
ánimos y alentado a seguir adelante y conseguir las metas que me he
propuesto en mi vida.
Agradezco al Doctor Milton Tapia, tutor de mi proyecto de
investigación por su valiosa guía y asesoramiento durante toda la
realización del mismo.
Christian Alexander Molina Yaguana
iv
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL
Yo, Christian Alexander Molina Yaguana, en calidad de autor del trabajo de investigación o
tesis realizada sobre “DETERMINACIÓN DE VALORES DE GLUCOSA EN SANGRE EN
RECIÉN NACIDOS A TÉRMINO SIN FACTORES DE RIESGO A LAS SEIS HORAS DE
VIDA EXTRAUTERINA EN LA UNIDAD METROPOLITANA DE SALUD SUR DE LA
CIUDAD DE QUITO A 2850 METROS SOBRE EL NIVEL DEL MAR DURANTE EL
PERÍODO ENERO A JUNIO 2015”, por la presente autorizo a la Universidad Central Del
Ecuador, hacer uso de todos los contenidos que me pertenecen o de parte de los que contienen
esta obra, con fines estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autor que me corresponden, con excepción de la presente autorización,
seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8, 19 y
demás pertinentes de la ley de Propiedad intelectual y su Reglamento.
Quito, DM 12 de febrero del 2016
Molina Yaguana Christian Alexander
CC. 171491087-2
Telf. 0998634695
Email:chris_alexandermolina@hotmail.com
v
APROBACIÓN DEL TUTOR
En mi carácter de tutor del Trabajo de Grado, presentado por el señor CHRISTIAN
ALEXANDER MOLINA YAGUANA, para optar por el Título de Licenciado en Laboratorio
Clínico e Histotecnológico cuyo título es “DETERMINACIÓN DE VALORES DE
GLUCOSA EN SANGRE EN RECIÉN NACIDOS A TÉRMINO SIN FACTORES DE
RIESGO A LAS SEIS HORAS DE VIDA EXTRAUTERINA EN LA UNIDAD
METROPOLITANA DE SALUD SUR DE LA CIUDAD DE QUITO A 2850 METROS
SOBRE EL NIVEL DEL MAR DURANTE EL PERÍODO ENERO A JUNIO 2015”.
Considero que dicho Trabajo reúne los requisitos y méritos suficientes para ser sometido a la
presentación pública y evaluación por parte del jurado examinador que se designe.
En la ciudad de Quito a los 05 días del mes de Febrero de 2016.
Dr. Milton Patricio Tapia Calvopiña
C.C. 170445980-7
vi
ÍNDICE DE CONTENIDOS Págs.
DEDICATORIA ........................................................................................................................ ii
AGRADECIMIENTOS.……………………………….……………………………………..iii
AUTORIZACIÓN DE AUTORÍA INTELECTUAL…………………………………...……iv
APROBACIÓN DEL TUTOR………………………………………………………………...v
ÍNDICE DE CONTENIDOS…………………...………………………………….………...vi
LISTA DE ANEXOS……………………………………………………..........……...……...ix
LISTA DE TABLAS ……………………………………………………….………………….x
LISTA DE GRÁFICOS ………………………………………………….………………. ….xi
Resumen…………………………………………………...…………………………………xii
Abstract……………………………………………………………………………………...xiii
INTRODUCCIÓN .................................................................................................................... 1
CAPÍTULO I ............................................................................................................................. 3
EL PROBLEMA ........................................................................................................................ 3
1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ............................................................................. 3
1.2 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA ................................................................................. 4
1.3 OBJETIVOS ........................................................................................................................ 4
1.3.1 OBJETIVO GENERAL ........................................................................................................... 4
1.3.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ..................................................................................................... 4
1.4 JUSTIFICACIÓN ................................................................................................................ 4
CAPÍTULO II ............................................................................................................................ 6
vii
MARCO TEÓRICO................................................................................................................... 6
2.1 MARCO LEGAL ...................................................................................................................... 6
2.2 ANATOMÍA Y FISIOLOGÍA DEL PÁNCREAS ............................................................................ 7
2.3 GLUCOSA ............................................................................................................................ 11
2.4 GLUCÓGENO ....................................................................................................................... 12
2.5 GLUCAGÓN E INSULINA ....................................................................................................... 13
2.6 METABOLISMO DE LOS CARBOHIDRATOS ............................................................................ 15
2.7 METABOLISMO DE LOS CARBOHIDRATOS EN RECIÉN NACIDOS .......................................... 16
2.8 RUTAS METABÓLICAS ......................................................................................................... 17
2.8.1 Glucólisis ........................................................................................................................ 17
2.8.2 Gluconeogénesis ............................................................................................................. 18
2.9 FISIOLOGÍA FETAL Y NEONATAL .......................................................................................... 19
2.9.1 CRECIMIENTO Y DESARROLLO FUNCIONAL DEL FETO ....................................................... 19
2.9.2 ADAPTACIÓN DEL NEONATO A LA VIDA EXTRAUTERINA .................................................. 20
2.9.3 NUTRICIÓN DEL RECIÉN NACIDO ...................................................................................... 20
CAPÍTULO III ......................................................................................................................... 22
METODOLOGÍA .................................................................................................................... 22
3.1 TIPO DE ESTUDIO ........................................................................................................... 22
3.2 NIVEL DE INVESTIGACIÓN .......................................................................................... 22
3.3 TÉCNICAS E INSTRUMENTOS DE INVESTIGACIÓN ............................................... 22
3.4 UNIVERSO Y MUESTRA ................................................................................................ 23
3.4.1 UNIVERSO ....................................................................................................................... 23
3.4.2 MUESTREO ...................................................................................................................... 23
3.4.3 CRITERIOS DE INCLUSIÓN ................................................................................................ 23
3.4.4 CRITERIOS DE EXCLUSIÓN ............................................................................................... 23
viii
3.5 TÉCNICA E INSTRUMENTO DE RECOLECCIÓN DE DATOS................................... 23
3.6 DETERMINACIÓN DE LABORATORIO ....................................................................... 24
3.6.1 MÉTODO .......................................................................................................................... 24
3.6.2 PRINCIPIO ......................................................................................................................... 24
3.6.3 PROCEDIMIENTO .............................................................................................................. 24
Procedimiento del substrato .................................................................................................... 25
Procedimiento de medida con reactivo de uso y muestra........................................................ 25
3.7 TIPOS DE ANÁLISIS ....................................................................................................... 26
3.8 CONSIDERACIONES ÉTICAS ........................................................................................ 26
CAPÍTULO IV......................................................................................................................... 27
RESULTADOS........................................................................................................................ 27
4.1 ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS .................................................. 27
4.2 DISCUSIÓN ...................................................................................................................... 34
4.3 CONCLUSIONES ............................................................................................................. 37
4.4 RECOMENDACIONES .................................................................................................... 39
CAPÍTULO V .......................................................................................................................... 40
LA PROPUESTA .................................................................................................................... 40
5.1 TÍTULO ............................................................................................................................. 40
5.2 JUSTIFICACIÓN .............................................................................................................. 40
5.3 BENEFICIOS ..................................................................................................................... 40
5.4 OBJETIVO ......................................................................................................................... 40
5.5 DESARROLLO ................................................................................................................. 40
BIBLIOGRAFÍA ..................................................................................................................... 43
ANEXOS ................................................................................................................................. 47
ix
LISTA DE ANEXOS Págs.
Anexo 1.-Hoja de base de datos ............................................................................................... 47
Anexo 2.-Unidad Metropolitana de Salud Sur ......................................................................... 48
Anexo 3.-Extracción de Sangre ............................................................................................... 48
Anexo 4.- Toma de Muestra de Sangre Periférica ................................................................... 49
Anexo 5.- Hoja de recursos y costos ........................................................................................ 49
Anexo 6.- Cronograma de actividades ..................................................................................... 50
x
LISTA DE TABLAS Págs.
Tabla 1.- Valores de glucosa en sangre de acuerdo al género. ................................................ 27
Tabla 2.- Valores de glucosa en sangre de acuerdo al peso. .................................................... 27
Tabla 3.-Distribución de glucosa en Sangre en recién nacidos. .............................................. 28
Tabla 4.- Distribución de recién nacidos de acuerdo al género. .............................................. 29
Tabla 5.- Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos de acuerdo al género. ............ 29
Tabla 6.- Distribución de peso en recién nacidos. ................................................................... 30
Tabla 7.-Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso bajo al nacer. ........... 31
Tabla 8.- Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso adecuado al nacer. . 32
Tabla 9.-Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso elevado al nacer. ..... 33
xi
LISTA DE GRÁFICOS Págs.
Gráfico 1. Páncreas .................................................................................................................... 8
Gráfico 2. El Páncreas Exócrino y Endócrino ......................................................................... 10
Gráfico 3. Estructura de la Glucosa ......................................................................................... 12
Gráfico 4. Crecimiento del feto ............................................................................................... 20
Gráfico 5. Distribución de glucosa en Sangre en Recién Nacidos .......................................... 28
Gráfico 6. Distribución de recién nacidos de acuerdo al género. ............................................ 29
Gráfico 7. Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos de acuerdo al género. .......... 30
Gráfico 8. Distribución de peso en Recién Nacidos ................................................................ 31
Gráfico 9. Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso bajo al nacer. ........ 31
Gráfico 10.Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso adecuado al nacer…
.................................................................................................................................................. 32
Gráfico 11. Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso elevado al nacer. 33
xii
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO E HISTOTECNOLÓGICO
TEMA: DETERMINACIÓN DE VALORES DE GLUCOSA EN SANGRE EN RECIÉN
NACIDOS A TÉRMINO SIN FACTORES DE RIESGO A LAS SEIS HORAS DE VIDA
EXTRAUTERINA EN LA UNIDAD METROPOLITANA DE SALUD SUR DE LA
CIUDAD DE QUITO A 2850 METROS SOBRE EL NIVEL DEL MAR DURANTE EL
PERÍODO ENERO A JUNIO 2015.
AUTOR: Molina Yaguana Christian Alexander
TUTOR: Dr. Milton Patricio Tapia Calvopiña
Resumen
En el Estudio observacional de corte transversal realizado en 110 recién nacidos a término sin
factores de riesgo en la Unidad Metropolitana de Salud Sur. El análisis de resultados se lo
realizó mediante estadística descriptiva con gráficos, tablas y valores porcentuales cuyos
resultados fueron manejados en el programa Microsoft Excel. De los 110 recién nacidos 53
fueron hombres los cuales corresponden al 48,18% y 57 fueron mujeres que corresponden al
51,82%. Se aprecia que de los 110 recién nacidos 14 tienen hipoglicemia que corresponde al
12,72 % y 96 tienen normoglicemia que corresponden al 87,28%, siendo el de menor valor de
18 mg/dL y el de mayor valor de 103 mg/dL. Se observa que de los 110 recién nacidos 74
presentan un peso adecuado al nacer lo que representa un 67,28%, 12 presentan un peso bajo
al nacer lo que representa un 10,90% y 24 presentan un peso elevado al nacer lo que representa
un 21,82%.
Palabras claves. GLUCOSA/ HIPOGLICEMIA/ NORMOGLICEMIA/ HIPERGLICEMIA.
xiii
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
SCHOOL OF MEDICAL SCIENCES
CLINICAL AND HISTO-TECHNOLOGIC LABORATORY
THEME: DETERMINATION OF GLUCOSE VALUES IN THE BLOOD OF TERM NEW
BORN WITHOUT RISK FACTORS AT SIX HOURS OF EXTRA UTERINE LIFE IN THE
UNIDAD METROPOLITANA DE SALUD SUR, QUITO CITY, AT 2850 METERS OVER
THE SEA LEVEL, DURING PERIOD JANUARY TO JUNE 2015
AUTHOR: Molina Yaguana Christian Alexander
TUTOR: Dr. Milton Patricio Tapia Calvopiña
Abstract
It was a transversal observational study conducted on 110 term newborn babies without risk
factors in Unidad Metropolitana de Salud Sur, from January to June 2015. The results analysis
was conducted through descriptive statistics with graphic tables and percent values, whose
values were processed through Microsoft Excel. Out of 110 newborn babies, 53 were male
gender, with 48,18% and 57 were female, with 51,82%. It was found that out of 110 newborn,
14 had hypoglycemia with 12,72% and 96 had normal glycemic values, with 87, 28%, the
lowest value was 18 mg/dL and the highest figure 103 mg/dL. It was found that out of 110
newborn babies, 74 had an adequate weight at birth, with 67,28%, 12 had low weight at birth,
with 10,90% and 24 had a high weight at birth with 21,82%.
Keywords. GLUCOSE/ HYPOGLYCEMIA/ NORMAL- GLYCAEMIA/ HYPER-
GLYCAEMIA.
1
INTRODUCCIÓN
En la vida fetal la mayor fuente de energía es la glucosa proporcionada por la madre. Si el
aporte de glucosa materna es el adecuado y la transferencia a través de la placenta es normal,
se puede detectar, ya en la novena semana de vida intrauterina, depósitos de glucógeno en el
hígado, musculo esquelético y el miocardio que aumentan en forma lineal hasta el final de la
gestación (Fanaroff A y col, 1987).
El hígado por otra parte, es capaz de responder con gluconeogénesis y glucogenolisis en casos
de ayuno o de no disponibilidad de glucosa a partir del tercer mes de embarazo (Fanaroff A y
col, 1987).
La lactasa, enzima encargada de hidrolizar a la lactosa en glucosa y galactosa, aparece durante
el tercer mes de la gestación, permanece en niveles bajos hasta el sexto mes, aumenta durante
el tercer trimestre y alcanza sus valores máximos en torno al nacimiento. (Krause. 1995; Allué
IP, 1998).
La glucosa fetal se deriva de la circulación materna, la cual atraviesa la placenta por difusión
facilitada, por lo que hay una alta correlación entre las concentraciones de glucosa plasmática
fetal y materna.
La glucosa es esencial para la nutrición del cerebro y del sistema nervioso periférico, para las
células de la sangre y la médula renal. La glucosa se almacena en forma de glucógeno en el
hígado y, en el recién nacido a término, este glucógeno puede llegar al 5% (Cornblath M y col,
2000).
En un estudio realizado en la Ciudad de “San José, Costa Rica” en el que se realizó
determinaciones de glicemia en recién nacidos se obtuvo estos resultados.
2
En los niños pequeños para su edad gestacional mostraron tendencia hacia glicemias bajas, lo
mismo que aquéllos con pesos inferiores a 2500 g o superiores a 3500 g, así como los de pre y
pos término, los nacidos por cesárea, los hijos de gran multípara y los de madres añosas (Saenz
C y col, 1971).
En otro estudio realizado en la ciudad de la “Paz, Bolivia” en el cual se determinó glicemia en
el recién nacido en la Altura en el cual se estudió las concentraciones sanguíneas de 104 recién
nacidos en la altura (3650 m.s.n.m), y la incidencia de hipoglicemia relacionado con ciertos
factores neonatales y maternos (Jusbasche S y col, 1991).
No se apreció relación significativa entre los valores de glucosa obtenidos y el peso de
nacimiento, edad gestacional tipo de parto, hora de nacimiento y/ó paridad.
La frecuencia de hipoglicemia encontrada en este estudio fue del 23.07%.
3
CAPÍTULO I
EL PROBLEMA
1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
Los niveles de Glucosa en Sangre de los neonatos extienden a través de un amplio rango
durante los primeros días de vida; los niveles de Glucosa en Sangre durante las primeras 24
horas de vida típicamente son más bajos que los de un niño o adolescente.
Existe asociación entre la reducción del crecimiento fetal y el consumo de glucosa, debido al
incremento en su consumo por parte de la placenta como causa de la disminución del
transporte al feto. En la placenta de altura, es posible que el mecanismo conocido como
reprogramación metabólica (inhibición activa del metabolismo oxidativo impulsado por la
hipoxia) esté combinada con un aumento anaeróbico del uso de la glucosa (Zamudio S y col,
2007).
En altura, las mujeres no gestantes tienen valores menores que a nivel del mar, donde la glucosa
disminuye aproximadamente en 10 a 15% durante la gestación y se mantiene así hasta el final
(Forbes WH y col; 1936; Mills J y col, 1998).
Las probables causas de ello son la hemodilución en el embarazo temprano y el aumento de la
secreción de insulina, a lo cual se suma la posibilidad de que haya una disminución en la
producción de glucosa. En nativos de altura, la glucosa en ayunas es menor marginalmente
durante el primer trimestre, pero continúa el descenso a través del embarazo hasta el final,
cuando es 10% menor al valor de la no gestante (Mills J y col, 1998).
La falla en la disminución de la glucosa en ayunas en el embarazo temprano podría ser
consecuencia de una falla o retraso en la hemodilución en la gestación (Krampl E y col,
2001).
4
La glicemia en mujeres nativas de 3200 metros es similar a la encontrada a nivel del mar,
mientras que a 4340 metros resulta ser menor (Gonzales y col, 1992).
No se conoce la altura mínima a partir de la cual la glicemia en mujeres difiere de las de nivel
del mar; sin embargo existen datos de que la glicemia en mujeres gestantes a 3800m es similar
a la obtenida a nivel del mar (Llerena y col, 1971).
1.2 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA
¿Cuáles son los valores de glucosa en sangre en recién nacidos a término sin factores de riesgo
en la U.M.S.S de la ciudad de Quito?
1.3 OBJETIVOS
1.3.1 Objetivo general
Determinar los valores de glucosa en sangre en recién nacidos a término sin factores de riesgo
en la U.M.S.S de la ciudad de Quito durante el período Enero – Junio 2015.
1.3.2 Objetivos específicos
Identificar los valores de glucosa en sangre de acuerdo al género, en recién nacidos a término
sin factores de riesgo.
Determinar los valores de glucosa en sangre de acuerdo al peso, en recién nacidos a término
sin factores de riesgo.
1.4 JUSTIFICACIÓN
En el mundo son más de 140 millones de personas que viven por encima de los 2000 metros
de altitud (Krampl E. 2002.)
Nivel que corresponde a una presión arterial de oxígeno (PaO2) de 60 a 70 mm Hg, punto en
el cual la saturación arterial de oxígeno empieza a disminuir exponencialmente según la caída
de la PaO2 (Julian C, 2011).
5
También se ha planteado una menor disponibilidad de glucosa debido a la restricción en el
crecimiento intrauterino en gestantes de altura. (Zamudio S y col, 2010.)
Existen varios estudios acerca de los valores de glucosa en sangre en recién nacidos en ciudades
de altura pero tan solo realizados en países como Bolivia, Perú, pero no hay datos con respecto
a nuestro país.
Por lo que mediante este estudio se dará a conocer los valores de glucosa en sangre tomadas de
sangre periférica a las seis horas de vida extrauterina para recién nacidos a término en la ciudad
de Quito a 2850 metros sobre el nivel del mar, ya que no existen estudios que determinen esta
situación, realizados en nuestro país en ciudades de altura, con lo cual este será un aporte
importante científico para el personal de salud que trata con neonatos en su trabajo diario y
también como fuente bibliográfica de consulta.
6
CAPÍTULO II
MARCO TEÓRICO
2.1 Marco Legal
El desarrollo del Proyecto de Investigación de Fin de Carrera, se halla sustentado por las leyes
ecuatorianas las cuales promueven el desarrollo de la investigación y la adquisición de nuevos
conocimientos. Además, como parte de su función, el Estado asegura el bienestar de sus
pobladores, de tal manera que contempla en sus leyes el incentivo a la promoción de nuevos
conocimientos en beneficio de aquellos.
Constitución de la República del Ecuador
Art. 343:El sistema nacional de educación tendrá como finalidad el desarrollo de capacidades
y potencialidades individuales y colectivas de la población, que posibiliten el aprendizaje, y la
generación y utilización de conocimientos, técnicas, saberes, artes y cultura. El sistema tendrá
como centro al sujeto que aprende, y funcionará de manera flexible y dinámica, incluyente,
eficaz y eficiente. (República del Ecuador. Constitución 2008).
Art. 350: El sistema de educación superior tiene como finalidad la formación académica y
profesional con visión científica y humanista; la investigación científica y tecnológica; la
innovación, promoción, desarrollo y difusión de los saberes y las culturas; la construcción de
soluciones para los problemas del país, en relación con los objetivos del régimen de desarrollo.
(República del Ecuador. Constitución 2008).
Art 360: El sistema garantizará, a través de las instituciones que lo conforman, la promoción
de la salud, prevención y atención integral, familiar y comunitaria, con base en la atención
primaria de salud; articulará los diferentes niveles de atención; y promoverá la
complementariedad con las medicinas ancestrales y alternativas. (República del Ecuador.
Constitución 2008).
7
Art. 385: El sistema nacional de ciencia, tecnología, innovación y saberes ancestrales, en el
marco del respeto al ambiente, la naturaleza, la vida, las culturas y la soberanía, tendrá como
finalidad: 1. Generar, adaptar y difundir conocimientos científicos y tecnológicos. 2.
Recuperar, fortalecer y potenciar los saberes ancestrales. 3. Desarrollar tecnologías e
innovaciones que impulsen la producción nacional, eleven la eficiencia y productividad,
mejoren la calidad de vida y contribuyan a la realización del buen vivir. (República del
Ecuador. Constitución 2008).
El estatuto de la Universidad Central del Ecuador también contempla y ampara la realización
del Proyecto de Investigación de Fin de Carrera, como medio para fomentar la investigación
científica y como requisito para la obtención del título al que aspira el estudiante al finalizar la
carrera. (http://www.uce.edu.ec/upload/estatuto%20aprobado.pdf).
Art. 212: El trabajo de graduación o titulación constituye un requisito obligatorio para la
obtención del título o grado para cualquiera de los niveles de formación. Dichos trabajos
pueden ser estructurados de manera independiente o como consecuencia de un seminario de
fin de carrera. Para la obtención del grado académico de licenciado o del título profesional
universitario de pre o posgrado, el estudiante debe realizar y defender un proyecto de
investigación conducente a una propuesta que resolverá un problema o situación práctica, con
característica de viabilidad, rentabilidad y originalidad en los aspectos de aplicación, recursos,
tiempos y resultados esperados. (Constitución del Ecuador, 2008).
2.2 Anatomía y Fisiología del Páncreas
El páncreas es un órgano profundo y exclusivamente retroperitoneal, de color blanco rosáceo
y de consistencia firme, mide de 15 a 20 cm de longitud, es aplanado de delante hacia atrás y
pesa unos 80 g. Se localiza por detrás de la parte abdominal, anterior a los cuerpos
8
vertebrales, la aorta y la vena cava inferior, situado entre el duodeno y el bazo. (Ahumada J y
col, 2002).
Gráfico 1. Páncreas
Fuente: http://www.nature.com/nrmicro/journal/v12/n3/box/nrmicro3215_BX1.html
Se distingue en el cuatro partes:
Cabeza: a la derecha de la línea medial. Es la parte más gruesa y más grande del páncreas.
Forma parte del cuadro duodenal que está atravesada por el conducto colédoco que penetra a
media altura de su cara posterior.
Cuello o itsmo: segmento intermedio entre la cabeza y cuerpo. Está en contacto con el bulbo
duodenal por delante y por arriba, los vasos mesentéricos superiores lo cruzan por abajo y por
detrás.
Cuerpo: se extiende transversalmente hacia el surco paravertebral izquierdo y retro gástrico.
Cubre por detrás los plexos nerviosos cólico y solar, la suprarrenal y el riñón izquierdo. Por
detrás y por arriba esta bordeado por la arteria esplénica que es muy sinuosa.
9
Cola: ligeramente móvil, constituida por el extremo izquierdo del páncreas. Se localiza en la
región del hilio del bazo. El páncreas está constituido por lóbulos que se encuentran dispersados
en racimos alrededor de los conductos excretores y contienen tejido exocrino (los acinos) y
tejido endocrino (islotes de Langerhans) (Gal, Beatriz, 2007).
Posee como promedio aproximadamente un millón de islotes, cada uno de los cuales está
rodeado por una capa de tejido conjuntivo que lo separa anatómicamente del tejido acinar
circundante. Posee cuatro tipos diferentes de células cada uno de los cuales está asociado con
la secreción de una hormona peptídica:
Células alfa, las cuales secretan la hormona glucagón, que aumenta la concentración de
azúcar en la sangre.
Células beta, las cuales secretan la hormona insulina que disminuye la concentración de
azúcar en la sangre.
Células delta, las cuales secretan la hormona inhibidora del crecimiento somatostatina, esta
hormona inhibe la secreción de la insulina y el glucagón.
Células PP o células F, que producen el polipéptido pancreático, cuya importancia
funcional todavía se desconoce. (Gal, Beatriz, 2007).
El páncreas es una glándula mixta:
Su secreción externa, el jugo pancreático, es vertida en el duodeno por los conductos
pancreático y pancreático accesorio.
Su secreción interna (insulina, glucagón, somatostatina y polipéptido pancreático), se vierte
en la sangre. Estas hormonas tienen una acción esencial en la regulación del metabolismo
(Jiménez L y col, 2004).
10
El páncreas tiene dos funciones, una endocrina y otra exocrina:
La función endocrina es la encargada de producir y segregar insulina y glucagón a partir de
los islotes de Langerhans. En estos, las células α producen glucagón, es una hormona
hipoglucemiante; las células β producen insulina, es una hormona hipoglucemiante, su misión
es facilitar que la glucosa que circula en la sangre penetre en las células y sea aprovechada
como energía. (Gal, Beatriz, 2007).
La glucosa se puede considerar como la "gasolina" que hace funcionar al "motor" de nuestro
cuerpo. Las células β miden los niveles de azúcar constantemente y entregan la cantidad exacta
de insulina para que la glucosa pueda entrar a las células, manteniendo así el azúcar en el rango
normal de 70 a 110 mg (Sanders S, 2004).
El exceso de glucosa es guardado en los músculos o en el hígado como glucógeno. Entre
comidas, cuando el azúcar en sangre está bajo y las células necesitan combustible, el glucógeno
del hígado es convertido en glucosa; y las células delta producen somatostatina (que previene
la liberación de las otras dos hormonas (Sanders S, 2004).
Gráfico 2. El Páncreas Exócrino y Endócrino
Fuente: http://image.slidesharecdn.com/sistemadigestivo-091118123859-phpapp01/95/sistema-digestivo-37-
728.jpg?cb=1258547988
11
La función exocrina consiste en la producción del Jugo pancreático que se vuelca a la segunda
porción del duodeno a través de dos conductos excretores: uno principal llamado Conducto de
Varg y otro accesorio llamado Conducto de Maihem. Además regula el metabolismo de las
grasas (ARI, Eckman. 2010).
Se segrega diariamente por término medio 1,5 L de jugo pancreático que presenta la misma
presión osmótica que el plasma sanguíneo. El jugo pancreático segregado durante la ingestión
de alimento tiene un pH de 8 a 8,4 y está formado por agua, bicarbonato, y numerosas enzimas
digestivas, como la Tripsina y Quimotripsina (digieren proteínas), Amilasa (digiere
polisacáridos), Lipasa (digiere triglicéridos o lípidos), Ribonucleasa (digiere ARN) y
Desoxirribonucleasa (digiere ADN). (Thews G, 1983).
Las enzimas secretadas por el tejido exocrino del páncreas ayudan a la degradación de
carbohidratos, grasas, proteínas y ácidos en el duodeno. Estas enzimas son transportadas por el
conducto pancreático hacia el conducto biliar en forma inactiva (ARI, Eckman. 2010).
Cuando entran en el duodeno, se vuelven activas. El tejido exocrino también secreta un
bicarbonato para neutralizar el ácido del estómago en el duodeno (Thews G, 1983).
2.3 Glucosa
La glucosa (compuesto orgánico perteneciente al grupo de los azúcares) es un hidrato de
carbono, monosacárido, hexosa (6 moléculas de carbono). En disolución acuosa, la glucosa se
cierra formando unos anillos de 6 lados, llamados piranos (Latarjet, Michel y col, 2008).
La glucosa es el carbohidrato más abundante, se le llama azúcar de uva y en la sangre se
encuentra en concentraciones de un gramo por litro. Al polimerizarse (unirse a otras moléculas
idénticas formando cadenas o polímeros) da lugar a polisacáridos con función
12
energética (almidón y glucógeno) o con función estructural, como la celulosa de las plantas
(Latarjet, Michel y col, 2008).
Estas fórmulas representan a la glucosa en su forma lineal y cíclica, en este
caso el anillo formado tiene 6 lados y corresponde al esqueleto pirano.
Gráfico 3. Estructura de la Glucosa
Fuente: http://www.profesorenlinea.cl/imagenciencias/Glucosa_image001.gif
2.4 Glucógeno
Es un hidrato de carbono de reserva que se encuentra en los organismos animales. El glucógeno
es un polisacárido equivalente al almidón de las células vegetales.
El glucógeno se encuentra en los músculos y en el hígado de todos los animales superiores; el
que se encuentra en el hígado tiene la función de mantener constante la cantidad de glucosa en
la sangre; el glucógeno de los músculos se degrada durante la actividad muscular en ácido
láctico a través de una serie de reacciones sumamente parecidas a la
fermentación alcohólica (ARI, Eckman. 2010).
Durante el ejercicio físico, el cuerpo humano requiere energía, la cual es obtenida de la
glucosa almacenada en nuestro organismo. La obtención de la energía se hace mediante una
13
cadena de procesos bioquímicos que ocurren en las células de nuestro cuerpo (ARI, Eckman.
2010).
Todo parte con la fermentación láctica, que se produce a nivel muscular y que es simplemente,
la degradación de glucosa a ácido láctico, debido a que existe un déficit de oxígeno a ese nivel;
esto determina que baje el nivel de glucosa del músculo lo que constituye una señal para el
inicio de la degradación del glucógeno (molécula que almacena glucosa) mediante la glucólisis
o glicólisis a nivel citoplasmático (Murray R, 2007).
De esta degradación se obtiene el primer intermediario de la cadena llamado ácido pirúvico, el
cual pasa a la siguiente etapa, previa formación de acetil CoA que es el ciclo de Krebs (a nivel
mitocondrial), donde se obtendrán los últimos intermediarios llamados NADH y
FADH, que se transformarán dentro de la mitocondria en moléculas energéticas llamadas ATP,
mediante el proceso de fosforilación oxidativa o simplemente cadena
respiratoria (Murray R, 2007).
El ATP es la forma en que nuestro organismo ocupa la energía; por lo tanto al realizar cualquier
actividad debemos obtener moléculas de ATP para poder desarrollarla.
2.5 Glucagón e Insulina
El glucagón y la insulina son secretados por el páncreas, el primero por las células alfa y la
segunda por las células beta. Estas secreciones endocrinas pasan a la vena porta de forma que
el hígado está sometido a niveles altos de estas hormonas (Murray R, 2007).
El glucagón aumenta el AMP-cíclico del hepatocito desencadenando la gluconeogénesis; la
insulina produce el efecto contrario, disminuyendo la concentración intrahepatica del
AMPcíclico e impidiendo la gluconeogénesis. Además el glucagón aumenta la
14
glucogenolisis, lipolisis y la cetogénesis hepática en el hígado durante el ayuno y la
cetoacidosis diabética (Jiménez L y col, 2004).
En condiciones fisiológicas normales, la glucosa y los aminoácidos ejercen un control
importante sobre la liberación del glucagón, mientras que en situaciones de estrés son los
mecanismos humorales y nerviosos de regulación hormonal los más importantes en este
control. El índice glucagón-insulina es el mayor determinante del grado de gluconeogénesis
(Murray R, 2007).
Durante el ayuno, este índice está aumentado favoreciéndose la gluconeogénesis, mientras
que con la alimentación se produce la situación contraria (Jiménez L y col, 2004).
A pesar de que el papel del glucagón como hormona de estrés está bien establecido y que una
serie de autores han observado que durante cirugía mayor se produce un aumento del
glucagón plasmático. Durante la cirugía, los niveles de insulina están disminuidos debido a
los niveles elevados de catecolaminas unido a un aumento de las pérdidas urinarias (Murray
R, 2007).
Esta disminución puede ser abolida por un bloqueo alfa adrenérgico, además el índice
glucagón-insulina está aumentado y sus valores máximos se alcanzan más tardíamente que con
el cortisol (entre 18 y 48 horas después de la cirugía). Se cree que un medio hormonal con la
insulina baja y las hormonas contrarreguladoras elevadas puede ser un estímulo para la
gluconeogénesis (Murray R, 2007).
Durante el postoperatorio, existe un incremento de la insulina probablemente debido al
aumento de los niveles plasmáticos de glucosa y adrenalina inducido por la estimulación beta
adrenérgica. Sin embargo, a diferencia del ayuno, los niveles de insulina plasmática están a
15
menudo muy aumentados respecto a las basales, aunque son inapropiadamente bajos respecto
a los niveles circulantes de glicemia (Jiménez L y col, 2004).
2.6 Metabolismo de los Carbohidratos
La mayor fuente de energía en el ser humano es la glucosa, la cual ingresa en la circulación
procedente de fuentes endógenas (glucogenolisis y gluconeogénesis) y de fuentes exógenas (a
través del tracto digestivo o Intravenoso), puede metabolizarse a dióxido de carbono, agua y
energía (ATP) o convertirse y almacenarse en forma de glucógeno o de grasa (lipogénesis). La
insulina facilita la captación de la glucosa por las células, favorece la glucogénesis y
contrarresta la gluconeogénesis (Murray R, 2007).
Las catecolaminas y el glucagón estimulan la glucogenolisis y la gluconeogénesis, ésta última
también es estimulada por el cortisol. Por ello, a las catecolaminas, cortisol y glucagón se les
llaman hormonas contrarreguladoras, ya que se oponen en sus efectos a la insulina y actúan
sinérgicamente para aumentar la producción de glucosa hepática. Una característica de la
respuesta al estrés es la disglucemia. El aumento inicial de la glucosa en sangre ante el estrés
es debido a la movilización del glucógeno hepático. La disglucemia persiste después del
agotamiento de glucógeno debido a un aumento marcado de la producción de la glucosa
hepática junto a una disminución de su aclaramiento.(Jimenez L, 2004).
Este aumento en la producción de glucosa se debe a la gluconeogénesis hepática que utiliza
aminoácidos, lactato, piruvato y glicerol como sustratos. El lactato y piruvato proceden de la
glicogénesis y glicolisis que tiene lugar en los tejidos periféricos, especialmente en el músculo.
Los aminoácidos provienen de la destrucción muscular y el glicerol del metabolismo de los
triglicéridos (Perlemuter L, 1999).
El aumento en la producción de glucosa hepática es marcado, así en un individuo normal se
producen unos 200 mg/dl de glucosa, en un quemado no infectado alrededor de 320 mg/dl y
16
en pacientes con sepsis unos 400 mg/dl. La adrenalina inhibe la secreción de insulina, lo cual
puede que mejore los efectos del glucagón. El cortisol no inhibe la liberación de la insulina, de
ahí que no se produzca un hiperglicemia severa (Perlemuter L, 1999).
El mecanismo por el cual la adrenalina inhibe la insulina parece ser la inhibición de la
exocitosis de la insulina y a su vez puede ser revertido con un bloqueo alfa adrenérgico. La
actividad adrenérgica es responsable del aumento de la producción de la glucosa hepática. El
aumento de la gluconeogénesis y de la resistencia a la insulina produce una mala utilización de
los carbohidratos tanto endógenos como exógenos en pacientes estresados. La administración
de glucosa exógena que disminuye la gluconeogénesis hepática en individuos normales, solo
produce disminuciones mínimas en los pacientes traumatizados o sépticos (Perlemuter L,
1999).
2.7 Metabolismo de los Carbohidratos en Recién Nacidos
La capacidad del recién nacido para comenzar su vida extrauterina, desarrollando todo su
potencial genético y posterior consecución del desarrollo físico e intelectual, depende de gran
parte de su posibilidad de superar diversas situaciones de estrés durante la gestación y parto.
El tiempo relativamente corto del parto representa el período más peligroso de la vida del recién
nacido (Jimenez y col, 2004).
Después de un período de desarrollo intrauterino cuya duración normal es de 38 a 42
semanas, tiene lugar el nacimiento, proceso por el cual el recién nacido pasa de un ambiente
acuático, homeotermo, oscuro y casi sin ruido a un medio aéreo, heterotermo, luminoso y con
ruido. Pasa de una alimentación parenteral con recambio gaseoso placentario a una
alimentación digestiva con recambio de gases a nivel pulmonar (Jimenez y col, 2004).
Estos cambios se producen a pesar de lo complejo de la situación en un margen reducido de
tiempo y suponen las circunstancias fisiológicas de mayor riesgo con que se enfrentará el
recién nacido hasta su muerte. Del funcionamiento y capacidad de adaptación de los
17
diferentes órganos, aparatos y sistemas dependerá la sobrevivencia del recién nacido, pero
ninguna función alcanzará un valor tan vital como es el de mantener un aporte adecuado de
oxígeno y calorías a las células para lo cual requieren un sistema respiratorio
cardiocirculatorio que se ajuste rápidamente a las necesidades del niño evitando de esta
forma lesiones celulares irreversibles especialmente en el sistema nervios (Murray R y col,
2007).
El paso de glucosa a través de la placenta esta mediado por una familia de proteínas “GLUT”
que facilitan el transporte de la glucosa, la GLUT-1 está presente tanto en microvellosidades
como en las membranas basales del sincitiotrofoblasto humano. La GLUT-3 está presente en
el epitelio de los capilares fetales. Estas proteínas son las responsables de controlar el paso de
la mayor parte de glucosa a través del sincitiotrofoblasto. Hay proteínas a nivel del
ARN en el tejido placentario, que probablemente también ayuden en el transporte de glucosa
de la madre al feto (Perlemuter L, 1999).
El consumo fetal de energía es elevado debido a las necesidades de crecimiento y a las que
refieren al almacenamiento de energía y el mantenimiento del metabolismo. El feto recibe
energía de manera continua en forma de glucosa, lactato derivado de la glucosa, y aminoácidos
agregados. Ya en la vida intrauterina puede ocurrir la gluconeogénesis hepática del lactato, la
cual es activa en el momento del nacimiento, pero no se produce la conversión de los
aminoácidos a glucosa y ni los ácidos grasos ni las cetonas suministran energía en cantidad
apreciable (Perlemuter L, 1999).
2.8 Rutas Metabólicas
2.8.1 Glucólisis
La glucosa 6-fosfato es un compuesto importante en la unión de varias vías metabólicas. En la
glucólisis, se transforma en fructosa 6-fosfato por medio de la fosfohexosaisomerasa, que
efectúa una isomerización de aldosacetosa. Después de esta reacción hay una fosforilación
18
catalizada por la enzima fosfofructocinasa y se forma el 1,6-bisfosfato de fructosa. La aldolasa
segmenta a la fructosa 1,6-bisfosfato en dos fosfatos de triosa, el gliceraldehído 3-fosfato y el
fosfato dedihidroxiacetona. (Murray, R y col, 2007).
La glucólisis continúa con la oxidación de gliceraldehído 3-fosfato a 1,3-bisfosfoglicerato. La
enzima que cataliza esta oxidación, la gliceraldehído 3-fosfato deshidrogenasa, depende de
NAD.
En la reacción siguiente, catalizada con fosfogliceratocinasa, se transfiere un grupo fosfato
desde el 1,3-bisfosfoglicerato a ADP, con la cual se forma ATP y 3-fosfoglicerato. La 3-
fosfoglicerato se isomeriza a 2-fosfoglicerato por medio de la enzima fosfogliceratomutasa.
La enolasa cataliza el paso posterior en el que hay deshidratación para formar
fosfoenolpiruvato. El fluoruro inhibe la enolasa, y cuando se toman muestras sanguíneas para
medición de glucosa, se recolecta en tubos que contienen fluoruro para inhibir la glucólisis.
La piruvato cinasa transfiere el fosfato del fosfoenol piruvato al ADP para generar dos
moléculas de ATP por molécula de glucosa oxidada (Murray, R y col, 2007).
El estado redox del tejido determina entonces cuál de las dos vías se sigue. En condiciones
anaerobias se evita la reoxidación de NADH a través de la cadena respiratoria a oxígeno. El
NADH reduce a lactato el piruvato, en donde el catalizador es lactato deshidrogenasa. En
condiciones aerobias, las mitocondrias captan piruvato y después de su conversión a acetil-
CoA se oxida a CO2en el ciclo del ácido cítrico. La glucólisis en los eritrocitos hasta en
condiciones aerobias, siempre termina en lactato porque las reacciones posteriores del
piruvato son mitocondriales y los eritrocitos carecen de mitocondrias (Murray, R y col,
2007).
2.8.2 Gluconeogénesis
La gluconeogénesis es el proceso de convertir los precursores que no son carbohidratos en
19
glucosa o glucógeno. Los sustratos principales son los aminoácidos glucogénicos y el lactato,
el glicerol y el propionato. El hígado y los riñones son los tejidos gluconeogénicos.
Con la gluconeogénesis se cumple las necesidades corporales de glucosa cuando no hay
cantidad suficiente de carbohidratos provenientes de la dieta o de las reservas de glucógeno. El
abastecimiento de glucosa es necesario particularmente para el sistema nervioso y los
eritrocitos (Murray, R y col, 2007).
2.9 Fisiología fetal y neonatal
2.9.1 Crecimiento y desarrollo funcional del feto
Al principio la placenta y las membranas fetales se desarrollan con mayor rapidez que el propio
feto. Durante las dos a tres semanas siguientes a la implantación del blastocito, el feto presenta
un tamaño casi microscópico, pero a continuación se desarrolla casi en proporción a la edad.
A las 12 semanas mide unos diez centímetros, a las 20 semanas ya mide unos 25 centímetros
y al final del embarazo alrededor de 38 a 42 semanas de gestación en un recién nacido a término
mide aproximadamente 53 centímetros (Guyton y Hall, 2011).
20
Gráfico 4. Crecimiento del feto
Fuente: Tratado de Fisiología Médica Guyton y Hall, Decimo Segunda Edición
2.9.2 Adaptación del neonato a la vida extrauterina
El efecto más evidente que conlleva el nacimiento para el niño consiste en la perdida de la
comunicación con la madre a través de la placenta y por consiguiente la carencia del sustento
metabólico.
Tras un parto normal, si la madre no ha estado sometida al efecto depresor de los anestésicos,
el niño suele respirar en unos segundos y su ritmo respiratorio se normaliza en menos de un
minuto (Salinas, R, 2002).
En el momento del nacimiento, las paredes de los alveolos están, primero colapsadas debido a
la tensión superficial del líquido viscoso que contienen. Por lo general, se precisa una presión
inspiratoria negativa superior a 25 mm de Hg para contrarrestar los efectos de esta tensión
superficial y abrir los alveolos por primera vez (Salinas, R, 2002).
2.9.3 Nutrición del recién nacido
Antes de nacer el feto obtiene casi toda su energía de la glucosa de la sangre materna. Después
del nacimiento la cantidad de glucosa almacenada en el cuerpo del recién nacido en forma de
21
glucógeno hepático y muscular cubre sus necesidades durante solo unas horas. La función del
hígado del recién nacido todavía es insuficiente, lo que impide que se produzca una
gluconeogénesis importante (Gomella, E, 2002).
Por consiguiente la glucosa en sangre de los recién nacidos suele disminuir el primer día de
vida hasta 30 – 40 mg/dL, lo que supone menos de la mitad de los valores normales.
Afortunadamente el recién nacido dispone de mecanismos adecuados para poder emplear el
metabolismo de los lípidos y las proteínas almacenadas, hasta poder administrarle leche
materna después (Gomella, E, 2002).
Resulta difícil suministrar un aporte adecuado al recién nacido, debido a que la velocidad de
recambio de los líquidos corporales supera siete veces la de los adultos. Extraordinariamente
el peso del recién nacido disminuye entre el 5% y el 10 % y en algunas ocasiones hasta el 20
% en los dos o tres primeros días de vida. Casi toda esta disminución ponderal se da debido a
la perdida de líquidos y no de solidos corporales (Salinas, R, 2002).
22
CAPÍTULO III
METODOLOGÍA
3.1 TIPO DE ESTUDIO
El diseño de este estudio es observacional de corte transversal, realizado en 110 recién nacidos
a término sin factores de riesgo en la Unidad Metropolitana de Salud Sur en el período
comprendido entre Enero 2015 a Junio 2015.
3.2 NIVEL DE INVESTIGACIÓN
El estudio tuvo un nivel descriptivo
3.3 TÉCNICAS E INSTRUMENTOS DE INVESTIGACIÓN
Se procedió a elaborar una hoja de datos la cual contenía información como género, peso y
edad gestacional de la madre, para obtener la información necesaria para el estudio se hizo uso
del repositorio de pedidos ubicado en la bodega del laboratorio de la Unidad Metropolitana de
Salud Sur y los valores de los exámenes de glucosa del sistema informático utilizado por la
institución “OMEGA” así como los datos de peso y género de los recién nacidos a término sin
factores de riesgo.
El método utilizado fue espectrofotometría, en la cual se aplicó controles de calidad,
calibraciones para determinar valores de glucosa en sangre en recién nacidos a término a las
seis horas de vida extrauterina en la Unidad Metropolitana de Salud Sur en el período Enero a
Junio de 2015.
Para el análisis estadístico se elaboró una base de datos en Excel.
23
3.4 UNIVERSO Y MUESTRA
3.4.1 Universo
Para la realización de la investigación sobre los valores de glucosa en recién nacidos a término
se tomó como universo a todos los recién nacidos a término sin factores de riesgo nacidos en
la Unidad Metropolitana de Salud Sur en el período comprendido entre Enero 2015 a Junio
2015.
3.4.2 Muestreo
Se tomó en cuenta para el estudio todo el universo de niños, recién nacidos a término sin
factores de riesgo de la Unidad Metropolitana de Salud Sur en el período Enero a Junio de
2015.
3.4.3 Criterios de inclusión
Ser recién nacido a término sin factores de riesgo
3.4.4 Criterios de Exclusión
Ser recién nacido pre termino o pos termino.
Tener algún factor de riesgo como: Sepsis, Hiperbilirrubinemia, Síndrome Metabólico,
Anomalías Congénitas.
3.5 TÉCNICA E INSTRUMENTO DE RECOLECCIÓN DE DATOS
La técnica utilizada fue el análisis documental, para la recolección de datos se hizo uso del
repositorio de pedidos ubicados en las bodegas del laboratorio, el instrumento utilizado fue la
Hoja de Recolección de Datos, para la obtención de los valores de glucosa se utilizó el sistema
informático “OMEGA” del laboratorio de la Unidad Metropolitana de Salud Sur y para la
tabulación de datos, realización de tablas y gráficos se utilizó el sistema informático Microsoft
Excel 2013.
24
3.6 DETERMINACIÓN DE LABORATORIO
3.6.1 Método
La determinación de valores de glucosa en sangre fue realizada mediante el Analizador
automático para química clínica Miura 500, Kit Glucosa Hexoquinasa FS de la marca DiaSys
utilizando el Método Test UV enzimático con hexocinasa, cuyo principio se basa en la siguiente
reacción: Glucosa + ATP HK > glucosa-6-fosfato + ADP
Glucosa-6-fosfato + NAD+ G6P-DH > gluconato-6-P + NADH + H+
(DiaSys Diagnostic Systems GmbH, 2007)
3.6.2 Principio
La glucosa es fosforilada con adenosintrifosfato (ATP) en la reacción que es catalizada por
hexoquinasa. El producto Glucosa-6-Fosfato se oxida con la reducción de la NAD a NADH,
en la reacción cataliza la Glucosa-6-Fosfato Deshidrogenasa la formación del NADH
ocasiona un aumento en la absorción a 340nm, el aumento es proporcional a la cantidad de
glucosa presente en la muestra. (Pointe Scientific, 2012).
3.6.3 Procedimiento
Longitud de onda 340 nm (Hg 334 nm, Hg 365 nm)
Paso Óptico 1 cm
Temperatura de 20 a 25 °C/37 °C
Medida Respecto blanco de reactivo
25
Procedimiento del substrato
BLANCO MUESTRA/CALIBRADOR
MUESTRA/CALIBRADOR - 10 uL
AGUA DESTILADA 10 uL -
REACTIVO 1 1000 uL 1000 uL
Mezclar, incubar 5 min. a 37 C o 10 min. entre 20 y 25 ºC, leer la absorbancia A1 y, a
continuación añadir:
REACTIVO 2 250 uL 250 uL
Mezclar, incubar durante 5 min. a 37 ºC o 10 min. entre 20 y 25 ºC.
Leer la absorbancia A2 al cabo de 30 min. Comparando con el blanco del reactivo.
ΔA = (A2 – A1) Muestra/calibrador
Procedimiento de medida con reactivo de uso y muestra
BLANCO MUESTRA/CALIBRADOR
MUESTRA/CALIBRADOR - 10 uL
AGUA DESTILADA 10 uL -
REACTIVO DE USO 1000 uL 1000 uL
Mezclar, incubar 5 min. a 37 ºC o 10 min. a 20 y 25 ºC.
Leer la absorbancia al cabo de 30 min. Comparando con el blanco del reactivo.
Cálculo
Con factor
Para calcular la concentración de glucosa se multiplica ΔE
con el correspondiente factor f de la siguiente tabla:
Procedimiento del substrato f [mg/dL] f [mmol/L]
340 nm 361 20,0
Hg 334 nm 367 20,5
Hg 365 nm 667 37,1
Procedimiento de medida
con reactivo de uso y
muestra f [mg/dL] f [mmol/L]
340 nm 289 16,0
Hg 334 nm 294 16,4
Hg 365 nm 535 29,7
Con estándar o con calibrador
conc. Est. / Cal. [mg / dL]
A Est. / Cal.
A Muestra
Glucos a [mg / dL] ×
Δ
Δ
=
Factor de conversión
Glucosa [mg/dL] x 0,05551= Glucosa [mmol/L]
26
3.7 TIPOS DE ANÁLISIS
El análisis que se utilizó para la elaboración de esta investigación será de tipo cuantitativo, se
realizó estadística descriptiva con gráficos, tablas y valores porcentuales.
3.8 CONSIDERACIONES ÉTICAS
Para la recolección de datos se contó con la autorización del Jefe del Laboratorio de la Unidad
Metropolitana de Salud Sur, y para el estudio de los mismos se lo manejo bajo normas de
manejo ético, moral y profesional. Siguiendo lo estipulado en la declaración de Helsinki de la
AMM.
27
CAPÍTULO IV
RESULTADOS
4.1 ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
En el estudio se obtuvo que del total de la población, la cual estuvo conformada por 110
recién nacidos, el promedio de valores de glucosa en sangre fue de 55,24 mg/dL y la
desviación estándar fue de ± 18,08 mg/dL.
Tabla 1.- Valores de glucosa en sangre de acuerdo al género.
Elaboración: Christian Molina 2016
En la tabla 1 el promedio de valores de glucosa en sangre en el género masculino fue de
54,31 mg/dL con una desviación estándar de ± 18,12 mg/dL y en el género femenino fue de
56,26 mg/dL con una desviación estándar de ± 16,63 mg/dL.
El valor de p en el estudio de acuerdo al género fue -0.0641, el cual no es estadísticamente
representativo.
Tabla 2.- Valores de glucosa en sangre de acuerdo al peso.
PESO PROMEDIO DESVIACION ESTANDAR t
PESO ADECUADO AL NACER
52,93 mg/dL
16,77 mg/dL -0.0641
PESO BAJO AL NACER
66,83 mg/dL 15,10 mg/dL -0.0641
PESO ELEVADO AL NACER
56,50 mg/dL 18,42 mg/dL -0.0641
Elaboración: Christian Molina 2016
GENERO
PROMEDIO DESVIACION ESTANDAR t
MASCULINO
54,31 mg/dL 18,12 mg/dL -0.0641
FEMENINO
56,26 mg/dL 16,63 mg/dL -0.0641
28
En la tabla 2 los valores de glucosa de acuerdo al peso se halló que el promedio de valores de
glucosa en el grupo con peso adecuado al nacer fue 52,93 mg/dL con una desviación estándar
de ± 16,77 mg/dL, en el grupo con peso bajo al nacer fue 66,83 mg/dL con una desviación
estándar de ± 15,10 y en el grupo con peso elevado al nacer fue 56,50 mg/dL con una
desviación estándar de ± 18,42 mg/dL.
El valor de p en el estudio de acuerdo al peso fue -0.0641, el cual tampoco es
estadísticamente representativo.
Tabla 3.-Distribución de glucosa en Sangre en recién nacidos.
Glucosa en Sangre Numero de Recién Nacidos Porcentajes
HIPOGLICEMIA < 35 mg/dL 14 12,72%
NORMOGLICEMIA 35 a 120 mg/dL 96 87,28%
HIPERGLICEMIA > 120 mg/dL 0 0%
TOTAL 110 100%
Elaboración: Christian Molina 2016
Gráfico 5. Distribución de glucosa en Sangre en Recién Nacidos
Elaboración: Christian Molina 2016
En la tabla 3 grafico 5, se aprecia que de los 110 recién nacidos 14 tienen hipoglicemia lo que
corresponde al 12.72 % y 96 tienen normoglicemia lo que corresponde al 87.28 %, siendo el
12.72 %
87.28 %
DISTRIBUCIÓN DE GLUCOSA EN SANGRE EN RECIÉN NACIDOS
HIPOGLICEMIA
NORMOGLICEMIA
HIPERGLICEMIA
29
de menor valor de 18mg/dL y el de mayor valor de 103 mg/dL. En el estudio ninguno de los
recién nacidos presento hiperglicemia.
Tabla 4.- Distribución de recién nacidos de acuerdo al género.
Género Numero de Recién Nacidos Porcentajes
MASCULINO 53 48,18%
FEMENINO 57 51,82%
TOTAL 110 100%
Elaboración: Christian Molina 2016
Gráfico 6. Distribución de recién nacidos de acuerdo al género.
Elaboración: Christian Molina 2016
En la tabla 4 grafico 6 se puede ver que de los 110 recién nacidos 53 fueron hombres los
cuales corresponden al 48.18 % y 57 fueron mujeres que corresponden al 51.82%.
Tabla 5.- Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos de acuerdo al género.
GENERO
HIPOGLICEMIA
NORMOGLICEMIA
HIPERGLICEMIA TOTAL
Numero Porcentajes Numero Porcentajes Numero Porcentajes
HOMBRES 6 11% 47 88.68% 0 0% 100%
MUJERES 8 14.03% 49 85.97% 0 0% 100%
14 96 0 110
Elaboración: Christian Molina 2016
48.18 %51.82 %
DISTRIBUCIÓN DE RECIÉN NACIDOS DE ACUERDO AL GÉNERO
MASCULINO
FEMENINO
30
Gráfico 7. Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos de acuerdo al género.
Elaboración: Christian Molina 2016
En la tabla 5 grafico 7, se aprecia que de los 110 recién nacidos a término 53 fueron hombres
y 57 fueron mujeres los cuales comparando con sus valores de glucosa se obtuvo los siguientes
resultados:
De los 53 hombres 6 presentaron hipoglicemia que corresponden al 11.32 % y 47 presentaron
normoglicemia que corresponden al 88.68 %.
De las 57 mujeres 8 presentaron hipoglicemia que corresponden al 14.03 % y 49
presentaron normoglicemia que corresponden al 85.97 %.
En el estudio ninguno de los recién nacidos presentaron hiperglicemia.
Tabla 6.- Distribución de peso en recién nacidos.
Peso Numero de Recién Nacidos Porcentajes
PESO ADECUADO AL NACER 2500 a 3500 gr
74 67,28%
PESO BAJO AL NACER <2500 gr 12 10,90%
PESO ELEVADO AL NACER >3500 gr 24 21,82%
TOTAL 110 100%
Elaboración: Christian Molina 2016
11%
88,68%
0% 14,03%
85,97%
0%
PORCENTAJE
DISTRIBUCIÓN DE GLUCOSA EN RECIÉN NACIDOS DE ACUERDO AL GÉNERO
HOMBRES HIPOGLICEMIA HOMBRES NORMOGLICEMIA HOMBRES HIPERGLICEMIA
MUJERES HIPOGLICEMIA MUJERES NORMOGLICEMIA MUJERES HIPERGLICEMIA
31
Gráfico 8. Distribución de peso en Recién Nacidos
Elaboración: Christian Molina 2016
En la tabla 6 grafico 8, se observa que de los 110 recién nacidos 74 presentaron un peso
adecuado al nacer lo que representa un 67.28 %, 12 presentan un peso bajo al nacer lo que
representa un 10.90% y 24 presentan un peso elevado al nacer lo que representa un 21.82%.
Tabla 7.-Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso bajo al nacer.
Peso Numero de Recién Nacidos Porcentajes
PESO BAJO CON HIPOGLCIEMIA O 0,00%
PESO BAJO CON NORMOGLCIEMIA 12 100%
PESO BAJO CON HIPERGLICEMIA O 0,00%
TOTAL 12 100% Elaboración: Christian Molina 2016
Gráfico 9. Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso bajo al nacer.
Elaboración: Christian Molina 2016
67.28 %
10.90 %
21.82 %
DISTRIBUCIÓN DE PESO EN RECIÉN NACIDOS
PESO ADECUADO ALNACER
PESO BAJO AL NACER
PESO ELEVADO AL NACER
100%
DISTRIBUCIÓN DE GLUCOSA EN SANGRE EN RECIÉN NACIDOS CON PESO BAJO AL NACER
PESO BAJO AL NACER CONHIPOGLICEMIA
PESO BAJO AL NACER CONNORMOGLCIEMIA
PESO BAJO AL NACER CONHIPERGLCIEMIA
32
En la tabla 7 y grafico 9, se puede ver que de los 110 recién nacidos a término 12 presentaron
un peso bajo al nacer, quienes ninguno presentaron hipoglicemia lo que representa un 0 % y
12 presentan normoglicemia lo que representa un 100 %. En el estudio ninguno de los recién
nacidos presento hiperglicemia.
Tabla 8.- Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso adecuado al
nacer.
Peso Numero de Recién Nacidos Porcentajes
PESO ADECUADO CON HIPOGLICEMIA 11 14,87%
PESO ADECUADO CON NORMOGLICEMIA 63 85,13%
PESO ADECUADO CON HIPERGLICEMIA 0 0%
TOTAL 74 100% Elaboración: Christian Molina 2016
Gráfico 10. Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso adecuado al
nacer.
Elaboración: Christian Molina 2016
En la tabla 8 y grafico 10, se puede ver que de los 110 recién nacidos a término 74
presentaron un peso adecuado al nacer, de los cuales 11 presentaron hipoglicemia lo que
representa un 14,87% y 63 presentan normoglicemia lo que representa un 85,13 %. En el
estudio ninguno de los recién nacidos presento hiperglicemia.
85.13%
14.87%
DISTRIBUCIÓN DE GLUCOSA EN SANGRE EN RECIÉN NACIDOS CON PESO ADECUADO AL NACER
PESO ADECUADO CONHIPOGLICEMIA
PESO ADECUADO CONNORMOGLICEMIA
PESO ADECUADO CONHIPERGLICEMIA
33
Tabla 9.-Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso elevado al nacer.
Peso Numero de Recién Nacidos Porcentajes
PESO ELEVADO CON HIPOGLICEMIA 3 12,50%
PESO ELEVADO CON NORMOGLICEMIA 21 87,50%
PESO ELEVADO CON HIPERGLICEMIA 0 0% TOTAL 24 100%
Elaboración: Christian Molina 2016
Gráfico 11. Distribución de glucosa en sangre en recién nacidos con peso elevado al nacer.
Elaboración: Christian Molina 2016
En la tabla 9 y grafico 11, se puede ver que de los 110 recién nacidos a término 24 presentan
un peso elevado al nacer, que presentaron hipoglicemia lo que representa un 12.50 % y 21
presentan normoglicemia lo que representa un 87.50 %. En el estudio ninguno de los recién
nacidos presento hiperglicemia.
12.50%
87.50%
DISTRIBUCIÓN DE GLUCOSA EN SANGRE EN RECIÉN NACIDOS CON PESO ELEVADO AL NACER.
PESO ELEVADO CONHIPOGLICEMIA
PESO ELEVADO CONNORMOGLICEMIA
PESO ELEVADO CONHIPERGLICEMIA
34
4.2 DISCUSIÓN
Este estudio es de tipo descriptivo de corte transversal, fue realizado en 110 recién nacidos a
término sin factores de riesgo en la Unidad Metropolitana de Salud Sur de la ciudad de Quito
a 2850 metros sobre el nivel del mar en el período comprendido entre Enero a Junio de 2015.
En el análisis realizado se encontró que el promedio de glucosa en la población de recién
nacidos es de 55,24 mg/dL con una desviación estándar de ± 18,08 mg/dL.
Al realizar el análisis de los valores de glucosa de acuerdo al género el promedio de valor de
glucosa en sangre en el género masculino fue 56,26mg/dL con una desviación estándar de ±
16,63 mg/dL y en el género femenino fue 54,31 mg/dL con una desviación estándar de ± 18,12
mg/dL, con un valor de p = -0.0641 el cual no es estadísticamente representativo.
Con relación al peso se encontró que estos valores poseen un valor de p= -0.0641 los cuales
tampoco son estadísticamente representativos.
En el estudio se encontró que de los 110 recién nacidos, 53 fueros hombres que corresponden
al 48,18% y 57 fueron mujeres que corresponden al 51.82%, con un discreto predominio del
género femenino, que concuerda con las datos de las estadísticas nacionales INEC Censo de
Población y Vivienda 2010.
En lo que respecta a los niveles de glucosa en sangre se encontró que de los 110 recién nacidos,
14 presentaron hipoglicemia que corresponden al 12.72% y 96 presentaron normoglicemia que
corresponden al 87.28%. Valores similares a los del estudio de la Dra. Sugra Jusbashe
realizados en el Hospital San Gabriel de La Paz, Bolivia en el año 1991, en el cual estudiaron
104 recién nacidos en la altura 3650 (m.s.n.m), reporto un 21.82% de recién nacidos a termino
con hipoglicemia.
En el estudio ninguno de los recién nacidos presentó hiperglicemia.
35
En lo que tiene que ver con el peso, se puede apreciar que de los 110 recién nacidos 74
presentaron un peso adecuado al nacer lo que representa un 67.28 %, 12 presentan un peso bajo
al nacer lo que representa un 10.90% y 24 presentan un peso elevado al nacer lo que representa
un 21.82%.Valores similares a los del estudio de la Dra. Sugra Jusbashe realizados en el
Hospital San Gabriel de La Paz, Bolivia en el año 1991, en el cual estudiaron 104 recién
nacidos en la altura 3650 (m.s.n.m), reporto un 81.63% de recién nacidos con peso adecuado
al nacer, un 12.24% con peso elevado al nacer y un 6.13% con peso bajo al nacer.
Como se puede ver de los 12 recién nacidos que presentaron un peso bajo al nacer (menor a
2500 g), ninguno tuvo hipoglicemia lo que representa un 0 % y 12 presentan normoglicemia lo
que representa un 100 %. Valores que concuerdan con el estudio realizado por Andrea Torres
en la ciudad de Zamora (Ecuador) en el año 2011, en el cual estudio 107 recién nacidos,
reportando 82% de recién nacidos con peso bajo al nacer con normoglicemia y 18% con
hiperglicemia.
Como se puede ver de los 74 recién nacidos que presentaron un peso adecuado al nacer (2500
g a 3500 g), 11 tuvieron hipoglicemia lo que representa un 14,87% y 63 presentan
normoglicemia lo que representa un 85,13 %. En el estudio ninguno de los recién nacidos
presento hiperglicemia. Valores que concuerdan con el estudio realizado por Andrea Torres
en la ciudad de Zamora (Ecuador) en el año 2011, en el cual estudio 107 recién nacidos,
reportando 17% con peso bajo al nacer con hipoglicemia y 83% de recién nacidos con peso
adecuado al nacer con normoglicemia.
Como se puede ver de los 24 recién nacidos que presentaron un peso elevado al nacer (mayor
a 3500 g), 3 presentan hipoglicemia lo que representa un 12.50 % y 21 presentan
normoglicemia lo que representa un 87.50 %. En el estudio ninguno de los recién nacidos
presento hiperglicemia. Datos que concuerdan con el estudio realizado por GF Gonzales,
36
Metabolismo en las grandes Alturas en el año 2001, en el cual sostiene que debido a la menor
disponibilidad de glucosa en la altura, se asocia la baja tasa de hiperglicemia encontrada en
recién nacidos en ellas.
Con respecto a los valores de glicemia de acuerdo al género de los 110 recién nacidos, en el
grupo masculino de los 53 hombres se encontró un 11.32 % con hipoglicemia y un 88.68 %
con normoglicemia, en lo que respecta al grupo femenino de las 57 mujeres se encontró un
14.03 %con hipoglicemia y un 85.97 % con normoglicemia, no encontrándose diferencia
estadísticamente significativa entre ambos grupos.
En el estudio ninguno de los recién nacidos presentaron hiperglicemia.
37
4.3 CONCLUSIONES
En el estudio realizado en la Unidad Metropolitana de Salud Sur que corresponde a
una ciudad ubicada en la altura de Quito a 2850 metros sobre el nivel del mar se pudo
evidenciar que la población predominante con un discreto 51.82% es en mujeres.
En el estudio se encontró que el promedio de glucosa en la población de recién nacidos
fue de 55,24 mg/dL, es decir que la media aritmética se ubicó en valores de glicemia
normal, con una desviación estándar de ± 18,08 mg/dL, lo cual nos dice que el rango de la
mayoría de valores se encontró entre los 37, 16 mg/dL y los 73, 32 mg /dL es decir que la
mayoría de recién nacidos no presenta alteraciones relacionadas al metabolismo de la
glucosa.
En el estudio aproximadamente un 13% presentaron variaciones hacia abajo
(hipoglicemia), lo cual demuestra que en las ciudades de altura si bien es bajo el porcentaje
de recién nacidos a término sin factores de riesgo que pueden desarrollar hipoglicemia, se
hace necesario los estudios de glucosa en sangre para su diagnóstico precoz y debido
control.
Igualmente en relación al peso de los recién nacidos un importante porcentaje cerca
del 68% tuvo un peso adecuado al nacer , además cerca de un 11% presento un peso
bajo, llamando la atención que cerca de un 23% presento un peso elevado en los
cuales se hace más necesario los estudios de glucosa en sangre.
En los recién nacidos que presentaron peso bajo contrario a lo que se podría pensar no
se encontró hipoglicemia y en todos hubo normoglicemia lo cual corresponde a
mecanismos compensatorios fetales y maternos.
En el mayor grupo de recién nacidos que corresponde a los recién nacidos con peso
adecuado al nacer se encontró un 15% de hipoglicemia, lo cual significa que
38
obligatoriamente en todos los niños debe monitorearse los niveles de glucosa en
sangre.
En el grupo de recién nacidos que presentaron peso elevado al nacer el hallazgo de
hipoglicemia en aproximadamente un 13% de ellos resulta importante. Primero por
los riesgos que implica la hipoglicemia en recién nacidos, y por el riesgo que tiene un
niño de elevado peso de desarrollar diabetes.
39
4.4 RECOMENDACIONES
Debería establecerse obligatoriamente la realización de exámenes de glucosa en
sangre post prandial y curvas de tolerancia con la finalidad de diagnosticar
precozmente una hipoglicemia y evitar sus complicaciones.
Se recomienda tener protocolos de manejo para recién nacidos con hipoglicemia
estandarizados en todo el país.
Se sugiere realizar más estudios similares a este en todo el país y en todos los centros
dependientes del Ministerio de Salud Pública con la finalidad de obtener valores
nacionales estandarizados
Al personal de salud que trabaja con recién nacidos incluyendo personal de
laboratorio se recomienda adiestrarles y capacitarles en el manejo de estos casos.
40
CAPÍTULO V
LA PROPUESTA
5.1 TÍTULO
EXAMENES DE GLUCOSA EN SANGRE
5.2 JUSTIFICACIÓN
La incidencia de enfermedades relacionadas al metabolismo de la glucosa en recién nacidos
en nuestro medio es significativa por lo cual se hace necesario tener una alternativa para
contrarrestar esta situación. Para evitar estas enfermedades se propone la realización de
protocolos estandarizados para el manejo de hipoglicemias e hiperglicemias y a su vez el
debido entrenamiento y capacitación al personal de salud que trabaja con recién nacidos en su
día a día.
5.3 BENEFICIOS
La población que se beneficiara de esto será el personal de salud los cuales se encontraran
mejor capacitados para resolver y atender cualesquier caso que se pudiera presentar,
relacionado a enfermedades del metabolismo de la glucosa en recién nacidos.
5.4 OBJETIVO
Difundir al personal de salud por medio de trípticos acerca de los beneficios que conlleva el
diagnosticar precozmente enfermedades relacionadas al metabolismo de la glucosa como son
la hipoglicemia e hiperglicemia.
5.5 DESARROLLO
41
En condiciones normales el feto no produce
glucosa, existe una transferencia continua de la
glucosa materna a través de la placenta.
Al nacer la concentración de glucosa es
alrededor del 80 % de los niveles de la sangre
materna. Los niveles caen rápidamente
alcanzando su valor más bajo a la hora de vida,
luego incrementan y se estabilizan alrededor de
las 3 horas después del nacimiento.
Los RN alimentados al pecho presentan
menores niveles de glicemia que los
alimentados con formula.
Alrededor de un 14 % de RN sanos, con pecho
exclusivo tienen glicemia < de 45 mg/dl durante
primeros 3 días.
Se denomina a los niveles bajos de azúcar en la
sangre en los bebés recién nacidos también se
llaman hipoglucemia neonatal. Se refiere a un
nivel bajo de azúcar (glucosa) en sangre en las
primeras horas después del nacimiento.
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO E
HISTOTECNOLÓGICO
Autor: Christian Molina
(2016)
Quito, 2016
Hipoglicemia Neonatal
Glucosa en Sangre en recién
nacidos alimentados con leche
materna
Concentración de Glucosa al
Nacer
Hipoglicemia
42
El nivel de glucosa puede bajar si:
Hay demasiada insulina (hiperinsulinismo) en
la sangre. La insulina es una hormona que
extrae la glucosa de la sangre.
El bebé no está produciendo suficiente
glucosa.
El cuerpo del bebé está usando más glucosa de
la que se está produciendo.
El bebé no es capaz de alimentarse lo
suficiente como para mantener la glucosa en
subir de nivel.
Piel de color azulado o pálido
Problemas respiratorios, como pausas en la
respiración (apnea), respiración rápida o
sonidos de gruñidos
Irritabilidad o desgano
Músculos flojos o flácidos
Alimentación deficiente o vómitos
Problemas para mantener el calor corporal
Sudoración, escalofríos, temblores o
convulsiones
A los recién nacidos en riesgo de sufrir
hipoglucemia se les debe practicar un examen
de sangre con intervalos de pocas horas después
del nacimiento, con el fin de medir el nivel de
azúcar en la sangre. Esto se hace mediante una
punción en el talón. Se debe seguir practicando
los exámenes de sangre hasta que el nivel de
azúcar en la sangre del bebé permanezca normal
durante aproximadamente 12 a 24 horas.
El nivel de hipoglucemia grave o persistente
puede afectar la función mental del bebé. En
casos excepcionales, se puede
presentar insuficiencia cardíaca o convulsiones.
Si usted sufre de diabetes durante el embarazo,
este en permanente contacto con el
médico para controlar su nivel de
azúcar en la sangre. Verifique que los
niveles de azúcar en sangre en el recién
nacido se vigilen después del
nacimiento.
Causas
SIGNOS Y SINTOMAS
PRUEBAS Y EXAMENES
COMPLICACIONES
PREVENCIÓN
43
BIBLIOGRAFÍA
Ahumada, j.; santana, maría; serrano, josé. 2002. Farmacología práctica. Madrid. Díaz
de santos. P. 330
American diabetes association. 2003. Diabetes de la a a la z. Nueva york. Paidós. Pp.
173-175
Cornblath M, Hawdon JM, Williams AF, Aynsley-Green A, Ward-Platt MP, Schwartz
R, et al, 2000. Controversies regarding definition of neonatal hypoglycemia: suggested
operational thresholds. Pediatrics.; 105 (5):1141-5.
Cornblath M, Ichord R, 2000. Hypoglycemia in the neonate. Seminars in Perinatology.;
24(2):136-49.
Economydes DL, Nicolaides KH, 1989 Feb. Blood glucose and oxygentension levels
in small-for-gestational-age fetuses. Am J ObstetGynecol.;160(2):385-9.
Economides DL, Proudler A, Nicolaides KH, 1989 May. Plasma insulin in appropriate-
and small-for-gestational-age fetuses. Am J ObstetGynecol.; 160 (5 Pt 1):1091-4.
Estatuto de la Universidad Central del Ecuador. Recuperado de
http://www.uce.edu.ec/upload/estatuto%20aprobado.pdf
Fanaroff and Martin's, 2011. Neonatal-Perinatal Medicine: Diseases of the Fetus and
Infant (Expert Consult - Online and Print) (2-Volume Set), 9e (Neonatal-Perinatal
Medicine (Fanaroff)) 9th Edition.
Forbes WH, Mills JL, Jovanocic L, Knopp R, Aarons J, Conley M, Park E, Lee YJ,
Holmes L, 1998. Blood sugar and glucose tolerance at high altitude.Am J Physiol.
1998;119:309-16.
Gal, beatriz. 2007. Bases de la fisiología. 2da ed. Barcelona. Tebar. P. 441
44
Galan Hl, Rigano S, Radaelli T, Cetin I, Bozzo M, Chyu J, Hobbins Jc, Ferrazzi E,
2001. Reduction of subcutaneous mass but notlean mass, in normal fetuses in denver,
colorado. Am j obstetgynecol.; 185:839-44.
Gomella, E, 2002. Neonatología Manejo Básico. 3ra Edición. Editorial. Buenos Aires
Panamericana. Págs. 286.
Guyton y Hall. Tratado de Fisiología Médica, 2011. Décimo Segunda Edición.
Jimenez, luis; montero, f. 2004. Medicina de urgencias y emergencias. 3ra. Ed.
Barcelona. Elsevier. P. 414thews, gerhard. 1983. Anatomía, fisiología y patofisiología
del hombre. Barcelona. Reverté. P. 377
Julian CG, Subudhi AW, Hill RC, Wilson MJ, Dimmen AC, Hansen KC, and RC, 2013
Nov 21. Roach. Exploratory proteomic analysis of acute mountain sickness and
hypobaric hypoxia in humans [J ApplPhysiol. [PMID: 24265281]
Krampl E, Kametas N, Cacho-Zegarra AM, Roden M, Nicolaides KH. Maternal, 2001
Mar. Plasma glucose at high altitude. Br J ObstetGynaecol.; 108(3):254-7.
Krampl E, 2002 June. Pregnancy at high altitude
Krause. Nutrición y Dietoterapia, 1995. 8va edición. México: Ed. Interamericana
McGraw-Hill;
La Tarjet, Michel; Ruiz Alfredo. 2008. Anatomía Humana. 4ta. ed. Buenos Aires.
Médica Panamericana. p. 1410
Llerena LA, Muñoz JM, Muñoz T, 1971. Ácidos grasos no esterificados en sueros de
gestantes, recién nacidos y hombres normales de altura. Ginecol. Obst. (Lima,Perú)
17:103.
Mills JL, Jovanocic L, Knopp R, Aarons J, Conley M, Park E, Lee YJ, Holmes L, 1998
Sep. Physiological reduction in fasting plasma glucose concentration in the first
45
trimester of normal pregnancy: the diabetes in nearly pregnancy study. Metabolism.;
47(9):1140-44.
Murray, Robert; Granner, Daryl; Rodwell, Victor. 2007. Harper. Bioquímica
ilustrada. 17a ed. DF. El Manual Moderno. pp. 121, 142, 143, 161, 162, 164, 177,
182, 183, 184
Perlemuter, léon; bilweis, christophe, 1999. Anatomo-fisiología. Barcelona. Elsevier.
P. 85, 86
República del Ecuador. Constitución, 2008. Recuperado de
http://www.asambleanacional.gov.ec/documentos/constitucion_de_bolsillo.pdf
Salinas, R, 2002. Trastornos Metabólicos del Recién Nacido. Neonatología Capitulo
25. 1ra Edición. Chile. Editorial LS. Pág. 191.
Vaucher Y, Harrison G, Udall J, Morrow G, 1984. Skinfold thickness in North
American infants 24-41 weeks´ gestation. Hum Biol.;56:713-31.
Villamonte W, Escalante D, Yabar J, Jerí M, Peralta P, 2014. Ochoa R. Gases en sangre
de arteria umbilical de neonatos a término en altura. Revperumedexp salud
publica.;31(1):84-7.
Villamonte W, Jerí M, Lajo L, Monteagudo Y, Diez G, 2011. Peso al nacer en recién
nacidos a término en diferentes niveles de altura en el Perú.
Revperuginecolobstet.;57:144-51.
Villamonte W, Jerí M, 2013.Crecimiento fetal y peso al nacer en la altura,
Revperumedexp salud publica.;30(1):153-4.
Zamudio S, Palmer SK, DahmsTe, Berman JC, McCullough RG, et al. Blood volumen,
1993. Expansion, preeclampsia and infant birth weight at high altitude. J
AppliPhysiol.;75:1566-73.
46
Zamudio S, Postigo L, Illsley NP, Ro¬driguez C, Heredia G, et al, 2007. Maternal
oxygen delivery is not related to alti¬tude –and ancestry-associated differ¬ences in
human fetal growth. J Physiol.;582(Pt 2):883-95.
47
ANEXOS
Anexo 1.-Hoja de base de datos
NUMERO CÓDIGO SEXO PESO AL
NACER
VALORES DE
GLUCOSA EN
SANGRE
48
Anexo 2.-Unidad Metropolitana de Salud Sur
Anexo 3.-Extracción de Sangre
49
Anexo 4.- Toma de Muestra de Sangre Periférica
Anexo 5.- Hoja de recursos y costos
DESCRIPCIÓN VALOR
Internet 80,00
Material de oficina 70.00
Gastos de impresión 60.00
Computador 400.00
Otros 300.00
COSTO APROXIMADO 910.00
50
Anexo 6.- Cronograma de actividades
Nº ACTIVIDAD
TIEMPO
Septiembre Octubre Noviembre Diciembre Enero Febrero
1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4
1 Elección del tema
2 Elección del tutor
3 Elaboración del protocolo
4 Aprobación del tema
5 Desarrollo del marco teórico
6 Recolección de datos
7 Análisis de los datos
10 Conclusiones y recomendaciones
11 Diseño de la propuesta
12 Redacción del Informe
13 Entrega del informe final