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REPORTE EPIDEMIOLÓGICO DE PLAGAS CUARENTENARIAS DE LA PAPANEMATODO AGALLADOR DE LA PAPA Meloidogyne Chitwoodi

1. Generalidades (Notificaciones de primeros reportes)M. chitwoodi fue primeramente descrito en el noreste del pacifico en Estados Unidos en 1980, no está claro si esta es su área de origen. Fue detectado primeramente en la región de EPPO en 1980, en Netherlands, pero la revisión de viejas ilustraciones y viejos especímenes de M. chitwoodi sugieren que pudo haber ocurrido cerca de 1930 y pudo haber estado presente durante el periodo de intervención (EPPO, 1991). Es posible que M. chitwoodi tenga una amplia distribución, sin detecciones, en Europa.

2. Estatus fitosanitario en México y regulación fitosanitariaEl nematodo enquistado de la papa (M. chitwoodi) es considerado como plaga A2 por la EPPO (OEPP, 1981). Para la APPPC, NAPO, CPPC y IAPSC es una plaga de importancia cuarentenaria. En México, M. chitwoodi se encuentra en la hoja de requisito, la Norma Oficial Mexicana NOM-007-FITO-1995, establece que el material propagativo de importación debe de estar libre de esta plaga. Mientras que la NOM-041-FITO-2002, no permite niveles de tolerancia para el material propagativo. De igual forma la Norma Oficial Mexicana NOM-040-FITO-2002, establece las zonas bajo control.

3. Biología y ecología

Dominio: Eucarionta

Reino: Metazoa

Philum: Nematoda

Familia: Meloidogynidae

Género: Meloidogyne

(CABI, 2007)

Morfología

Los machos adultos y el segundo estado juvenil son vermiformes, motiles, en general similares en apariencia con nematodos de vida-libre. Las hembras son en forma de pera, blanco-aperlado y sedentarias. Los machos son de 887-1268µ en longitud y 22-37 µm de ancho con un cono en cada extremo. La cola es corta, de 4.7 a 9.0µ y redondeada. Los ánulos cuticulares y prominentes son distintivos cerca de cada extremo. La hembra tiene 430-740 µm en longitud y 344-518 µm a lo ancho. El segundo estado juvenil es 336-417 µm de largo y 12.5-15.5 µm de ancho, cola corta, 39-47µm, apenas cónico y hialino. Los huevos son de 79-92 µm en longitud y 40-46 µm de ancho (CABI, 2007).

Ciclo biológico

El ciclo de vida de M. Chitwoodi dura aproximadamente de 3-4 semanas bajo condiciones favorables. Los huevos emergen del suelo o de la superficie de la raíz. El segundo estado juvenil (estado infectivo) penetra en la punta de la raíz, en las células epidermales o de heridas y pasa a la región cortical. Después de ingresar, estimulan el crecimiento celular y formación de agallas en el tejido hospedero. Las lesiones necróticas ocurren en la corteza. Los estados juveniles se engrosan hasta adquirir la forma de

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una salchicha, dejan de alimentarse y se someten a tres mudas sucesivas rápidas para convertirse en hembras y machos adultos. Los machos adultos tienen cuerpos delgados, vermiformes (Fig.1), salen de la raíz y se encuentran libres en la rizosfera o cerca del cuerpo de la hembra que sobresale. Sin embargo como en el caso de otras especies de Meloidogynae, es probable que los machos sean menos funcionales y casi siempre son partenogenéticas las reproducciones. Las hembras característicamente tienen formas de pera, cuerpos blancos aperlados y se encuentran integrados al tejido hospedante. Los huevos son depositados por las hembras en un saco gelatinoso cerca de la superficie de la raíz. En tubérculos de papa, las células del hospedero modificadas forman una capa protectora o “cesto” alrededor de la masa de huevecillos y juveniles. La cascara del huevo es hialino sin marcas visibles (CABI, 2007)En estudios realizados por Viaene y colaboradores (2007) encontraron a la mayoría de los nematodos en los primeros 5.25 mm del tubérculo, correspondiente a la profundidad del anillo vascular. Alrededor de la mitad fueron encontrados entre 1.75 y 3.50 mm de profundidad.

Figura 1. Macho de Meloidogyne chitwoodi. Créditos: J.D. Eisenback/Nemapix Vol. 1

4. SíntomasLos síntomas ocasionados por M. Chitwoodi no son fáciles de detectar y son más aparentes en algunos cultivos que en otros, los tubérculos, en algunos casos son afectados, sin presentar síntomas visibles. Cuando están presentes, las agallas aparecen como pequeñas hinchazones insertadas en la superficie del tubérculo por encima de los nematodos desarrollados (Fig. 2 y Fig. 3). Un número de agallas se pueden concentrar en un área del tubérculo o solo pueden estar dispersas cerca de las lesiones. El tejido interno debajo de la agalla es necrótico y de color marrón. Las hembras adultas son visibles solo debajo de la superficie como un cuerpo en forma de pera, brillante, blanco, rodeado por una capa de tejido marrón del tejido hospedero, La raíz de la papa puede ser infectada, pero esto es difícil de detectar sin una lupa, como pequeñas o no presencia de agallas, solo en fuertes infestaciones. El cuerpo esférico de las hembras puede sobresalir de la superficie en las raíces pequeñas, rodeado posteriormente por un gran saco lleno de huevos que se convierte con el tiempo en café-negruzco (CABI, 2007).

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5. Detección y diagnosticoM. chitwoodi puede ser distinguido de M. fallax mediante patrones de esterasa y deshidrogenasa de malato y métodos de ADN. Un numero de metodologías moleculares se han desarrollado para caracterizar a las especies y ayudar a diferenciarlas con los nematodos enquistadores (CABI, 2007).

6. HospederosM. chitwoodi cuenta con un amplio rango de hospedantes, entre diversas familias de plantas (Santo et al., 1980; O'Bannon et al., 1982), incluyendo plantas cultivadas y especies de malezas. La papa (Solanum tuberosum) y tomates (Lycopersicon esculentum) son buenos hospederos, mientras que el trigo (Hordeum vulgare), maíz (Zea mays), avena (Avena sativa), remolacha (Beta vulgaris var. saccharifera), trigo (Triticum aestivum) y varias Poaceae (pastos y malezas) mantendrán al nematodo. Los hospederos moderados o pobres se presentan en las Brassicaceae, Cucurbitaceae, Fabaceae, Lamiaceae, Liliaceae, Umbelliferae y Vitaceae. Capsicum annuum y tabaco (Nicotiana tabacum y N. rustica) no son hospederos de M. chitwoodi.

7. Mecanismos de dispersiónM. chitwoodi tiene un muy limitado potencial para el movimiento natural, únicamente el segundo estado juvenil puede moverse en el suelo y a lo mucho en los primeros diez centímetros. El método más probable de introducción del nematodo hacia nuevas áreas es a través del movimiento de material vegetal infectado o contaminado. Las plantas hospederas infectadas o productos hospedantes como los bulbos o tubérculos pueden transportar fácilmente al nematodo. El movimiento de plántulas hospederas no-hospedantes, viveros, maquinaria u otros productos que son contaminados con el suelo infestado de M. chitwoodi puede resultar en la dispersión del nematodo. Los nematodos infectivos de este género son persistentes por más de un año en la ausencia de plantas hospederas. El movimiento del nematodo se puede facilitar mediante el riego de agua contaminada (CABI, 2007).

8. Prevalencia y distribución geográfica de la enfermedad

África: Sudáfrica.

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Figura 2. Tubérculo de papa con crecimiento de agallas por la infección del nematodo M. Chitwoodi. Créditos: CSL/Crown

Figura 3. Tubérculo de papa pelado (el mismo que la Fig. 1 ) que muestra la infección del nematodo (Los puntos cafes son las hembras y huevos). Créditos: CSL/Crown

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Norte América: México, EUA (California, Colorado, Idaho, Nevada, Oregón, Utah, Washington - Walters & Barker, 1994; aislados en Virginia - Eisenback et al., 1986).

Figura 4. Prevalencia y distribución del nemato agallador de la papa Meloidogyne chitwoodi. Créditos CABI, 2007.

9. Potencial económico, impacto ambiental e implicaciones comercialesM. chitwoodi reduce el valor de la papa en el mercado resultado de necrosis interna y agallas externas. El 5% de las manchas necróticas en el tejido del tubérculo lo hace comercialmente inaceptable. En general el rendimiento de los tubérculos también se reduce. Estas especies son consideradas por ser la mayor plaga de papas en los estados del Noreste del Pacifico de Estados Unidos y la predicción anual de perdidas seria de 40 millones de dólares si no se aplicaran medidas de control. No existe información disponible sobre el impacto económico de la plaga en países Europeos (CABI, 2007).

En Alemania las agallas de los tubérculos de papa son ocasionados por M. chitwoodi. Además dos poblaciones de Meloidogyne de Alemania, podrían ser identificados como M. chitwoodi. Braasch y colaboradores (1996), determinaron mediante el análisis de los parámetros como viabilidad de plantas hospederas y la influencia de la temperatura en conexión con las características biológicas de M. chitwoodi que el nematodo puede establecerse en diversos lugares de Alemania.

Chávez y Torres (2000) reportan la presencia de M. chitwoodi en muestras de suelo tomadas de 1995 a 1999 en Necochea Golfo Club. Chaves y Torres (2001) reportan la presencia de M. chitwoodi (12.5%) en áreas productoras de Catamarca, Chubut, Mendoza, Río Negro, Santa Cruz y Santa Fe provinces, Argentina.

México cuenta con una superficie sembrada de papa (papa y semilla) de 61,069 hectáreas, de las cuales se cosechan 60,241 con una producción de 1,670,148 toneladas, cuyo valor de producción es de aproximadamente 7,844,706 miles de pesos (SIAP, 2008).

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Tabla 1. Principales estados productores de papa (SIAP, 2008)

Ubicación 

Sup. Sembrada(Ha)

Sup. Cosechada(Ha)

Producción(Ton)

Rendimiento(Ton/Ha)

PMR($/Ton)

Valor Producción(Miles de Pesos)

SINALOA 14,014.00 14,013.00 343,992.00 24.55 4,644.67 1,597,730.00

SONORA 11,648.00 11,645.00 386,850.58 33.22 5,547.18 2,145,930.14

CHIHUAHUA 5,257.00 5,103.00 131,482.57 25.77 5,386.56 708,239.07PUEBLA 4,857.00 4,360.00 94,578.00 21.69 3,346.30 316,486.00MEXICO 4,554.50 4,544.50 129,441.95 28.48 3,659.06 473,635.43

10. Estrategias para la vigilancia, alerta, monitoreo y detección La presencia del nematodo en suelo infestado se puede determinar mediante una simple extracción del segundo estado juvenil utilizando procedimientos para la extracción de nematodos de vida libre. Los síntomas externos en los tubérculos son evidentes en el caso de severas infestaciones, pero cuando el número de nematodos es pequeño o en las etapas tempranas de infección, tales síntomas no son evidentes. El aclaramiento y tinción de los tejidos puede mostrar la presencia de nematodos (Hooper, 1986).La principal estrategia de vigilancia del nematodo, es mediante recorridos mensuales, en zonas productoras del cultivo de papa, para buscar síntomas sospechosos a los ocasionados por M. chitwoodi auxiliándose de una guía de síntomas donde se muestran los daños característicos ocasionados por el nematodo. En los casos donde se presenten síntomas similares a los ocasionados por el nematodo, se procederá a la toma de muestra de acuerdo a lo mencionado en el protocolo para la toma de muestra de plagas cuarentenarias de la papa y dichas muestras serán enviadas al Centro Nacional de Referencia Fitosanitaria (CNRF) para su análisis.

De esta manera se podrá detectar de manera oportuna la presencia del nematodo M. chitwoodi y efectuar las acciones para el manejo, confinamiento y erradicación de la enfermedad.

11. Control

Control QuímicoLas medidas de control frecuentemente utilizadas contra otros nematodos agalladores de la raíz, son menos efectivos contra M. chitwoodi. Por ejemplo en ensayos con los nematicidas aldicarb, dicloropropeno, etopropeno y metam-sodio no son consistentes como contra M. hapla (Pinkerton et al., 1986; Santo Y Wilson, 1990). En el Noroeste de EUA, las pérdidas de cultivos en diversos campos de papa han sido atribuidas a M. chitwoodi, a pesar de utilizar fumigaciones al suelo Hafez y Sundararaj (2002).

Control CulturalLa rotación de cultivo con cereales es frecuentemente utilizado para reducir las poblaciones de M. hapla. Sin embargo, M. chitwoodi se reproduce bien en trigo, avena, cebada y maíz. Por lo tanto, la rotación con alguno de estos cultivos puede favorecer más una acumulación que una disminución de poblaciones de M. chitwoodi en suelos infestados. Sin embargo existen otros cultivos que pueden reducir las poblaciones y que pueden ser utilizados en rotaciones. Brinkman y colaboradores (1996) sugieren que cultivos como achicoria (Cichorium intybus), dalia (cv. Vuurvogel) y borraja (Borago officinalis) soportan bajas poblaciones de M. chitwoodi y pueden ofrecer alternativas en la rotación de cultivo. Sin embargo, son

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necesarios más estudios para colectar más información en cultivos que pueden ser utilizados en la rotación para disminuir la población de nematodos.Control legalEn México, M. chitwoodi se encuentra en la hoja de requisito, la Norma Oficial Mexicana NOM-007-FITO-1995, establece que el material propagativo de importación debe de estar libre de esta plaga. Mientras que la NOM-041-FITO-2002, no permite niveles de tolerancia para el material propagativo. De igual forma la Norma Oficial Mexicana NOM-040-FITO-2002, establece las zonas bajo control.

12. Recomendaciones Divulgación de la importancia y daños del nematodo, a los productores del cultivo de papa,

Organismos Auxiliares de Sanidad Vegetal en México y público en general.

Utilizar de semilla certificada, para prevenir la introducción del nematodo

Regular el movimiento de material vegetal proveniente de áreas que presenten el problema del nematodo.

Regular el movimiento de plántulas hospederas no-hospedantes, viveros, maquinaria u otros productos contaminados con el suelo infestado de M. chitwoodi, lo cual puede resultar en la dispersión del nematodo.

Realizar estudios sobre cultivos que puedan ser implementados en la rotación de cultivo para reducir las poblaciones de los nematodos.

Capacitar a los técnicos encargados de realizar las inspecciones visuales sobre la biología, síntomas y daños ocasionados por el nematodo.

Realizar investigaciones sobre nematicidas efectivos contra el combate del nematodo, que puedan ser utilizados en México, para el cultivo de papa.

Ante la sospecha de la presencia del nematodo en base a los síntomas que presenta el cultivo. La Dirección General de Sanidad Vegetal a través del Centro Nacional de Referencia Fitosanitaria, ha establecido la comunicación pública mediante el servicio telefónico 01 800 987 987 9 para la atención personalizada.

13. Literatura Braasch H, Wittchen U, Unger JG, 1996. Establishment potential and damage probability of Meloidogyne chitwoodi in Germany. Bulletin OEPP, 26(3/4):495-509.

Brinkman H, Goossens JJM, Riel HRvan, 1996. Comparative host suitability of selected crop plants to Meloidogyne chitwoodi Golden et al. 1980 and M. fallax Karssen 1996. Anzeiger für Schädlingskunde, Pflanzenschutz, Umweltschutz, 69(6):127-129.

CABI. 2007. Crop Protection Compendium. Global Module 7nd. Edition. CAB Internacional. UNK.

Chaves E, Torres MS, 2000. Nematode fauna associated with golf courses in the south-eastern region of the Buenos Aires province. Revista de la Facultad de Agronomía (Universidad de Buenos Aires), 20(3):379-386.

Chaves E, Torres MS, 2001. Potato parasitic nematodes in the seed potato producing areas of Argentina. Revista de la Facultad de Agronomía (Universidad de Buenos Aires), 21(3):245-259.

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Hafez SL, Sundararaj P, 2002. Evaluation of autumn or spring applications of ethoprop for the management of Meloidogyne chitwoodi on potato. Nematologia Mediterranea, 30(2):181-183.

Hooper DJ, 1986. Preserving and staining nematodes in plant tissues. In: Southey JF, ed. Laboratory methods for work with plant and soil nematodes. London, UK: HMSO.

Müller J, Sturhan D, Rumpenhorst HJ, Braasch H, Unger JG, 1996. On the occurrence of a root-knot nematode (Meloidogyne chitwoodi) new to Germany. Nachrichtenblatt des Deutschen Pflanzenschutzdienstes, 48(6):126-131.

O'Bannon JH, Santo GS, Nyczepir AP, 1982. Host range of the Columbia root-knot nematode. Plant Disease, 66(11):1045-1048.

Pinkerton JN, Santo GS, Ponti RP, Wilson JH, 1986. Control of Meloidogyne chitwoodi in commercially grown Russet Burbank potatoes. Plant Disease 70, 860-863.

Santo GS, O'Bannon JH, Finley AM, Golden AM, 1980. Occurrence and host range of a new root-knot nematode (Meloidogyne chitwoodi) in the Pacific northwest. Plant Disease, 64(10):951-952.

Santo GS, Wilson JH, 1990. Evaluation of ethoprop and cadusafos for control of Meloidogyne chitwoodi on potato. Nematropica, 20(2):137-142.

SIAP, 2008. Anuarios Estadísticos de la Producción Agrícola en México. Secretaria de Agricultura, Ganadera, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación. Versión Electrónica.

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