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  • 7/23/2019 Bacilo Koch

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    CARACTERISTICAS MORFOLGICAS Y ESTRUCTURALES DEMycobacterium tuberculosis.

    Las mycobacterias en general pueden variar mucho en su morfologa, desde formas

    cocoides pequeas a largos filamentos, M. tuberculosis suele tener una morfologacaracterstica, bacilo delgado de forma recta o ligeramente curvada en frotis teidos, y su

    tamao suele ser de 1-4 micras de largo por 0,3-0, micras de ancho! "casionalmente,

    forma ramificaciones verdaderas que se observan en cultivos enriquecidos y en frotis deganglios linf#ticos gaseosos!

    $on bacilos no formadores de esporas, sin flagelos ni c#psula! La estructura celular de M.

    tuberculosisconsta de una gruesa pared, separada de la membrana celular por el espacioperipl#smico, con cuatro capas! La m#s interna es el glicop%ptido o peptidoglicano con

    mol%culas de &-acetilglucosamina y #cido-&-glucolilmur#mico 'en lugar del habitual &-

    acetilmur#mico( con cortas cadenas de alanina! )sta capa es el esqueleto de la bacteria quele da forma y rigide*! )+ternamente, hay otras 3 capas compuestas, una por polmeros dearabinosa y galactosa, otra formada por #cidos miclicos 'que son #cidos grasos derivados(

    y otra superficial formada por lpidos como los sulfolpidos, el cord factor,llamado as por

    su aparente asociacin con la forma acordonada con que se agrupan las mycobacteriasvirulentas, y los micsidos que son al igual que el anterior glicolpidos! &o difiere del resto

    de las bacterias en cuanto al citoplasma y el .& nuclear! Las mycobacterias son aerobios

    estrictos y no crecen en ausencia de o+geno!La M. tuberculosisse desarrolla de forma adecuada en medios simples que contienen una

    fuente de carbono, una de nitrgeno e iones de metales esenciales entre ellos hierro y

    magnesio! /ara su cultivo, se requiere un medio m#s compleo que contenga una base de

    patata-huevo o una base de agar-suero! Los bacilos tuberculosos tienen un crecimiento muylento incluso en condiciones ptimas y requiere de 10 a 0 das de incubacin a 32!

    unque la proliferacin puede tener lugar a un p5 que oscila entre 6 a 2!6, el p5 ptimo de

    crecimiento es de 2!

    Las mycobacterias son muy resistentes a la desecacin! )l medio ambiente en el que se

    encuentran constituye un factor muy importante para su viabilidad! /or eemplo, cuando see+ponen a la lu* solar directa, los bacilos tuberculosos de los cultivos son destruidos en

    horas, pero si estos est#n presentes en el esputo, pueden permanecer viables durante

    periodos m#s largos!

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    Las mycobacterias son m#s resistentes a la desinfeccin con productos qumicos que otros

    microorganismos no formadores de esporas, probablemente como consecuencia de sucontenido en lpidos! $on sensibles al calor h7medo y son destruidos por las temperaturas

    de pasteuri*acin!

    MTODO DE COLORACI! DE "IE#L !EELSE!

    La tincin de 8iehl &eelsen fue desarrollada inicialmente por /aul )hrlich para poner de

    manifiesto la presencia de los bacilos causantes de la tuberculosis en muestras clnicas de

    pacientes!

    )sta t%cnica es capa* de diferenciar los bacilos cido lcohol 9esistentes ':9(!

    La t%cnica de 8-& fuer*a la penetracin de la fucsina b#sica en la pared celular mediante la

    accin combinada del fenol y el calor, que aumentan la fluide* de la capa de #cidos

    miclicos; el calor o se elimina el e+ceso de fenol mediante un

    lavado con agua, la pared recupera su consistencia cerosa, pero las mol%culas de fucsina

    quedan atrapadas en su espesor!

    on la coloracin de 8iehl &eelsen se observan como bastoncitos delgados, ligeramente

    curvos, roo fucsia, destac#ndose claramente contra el fondo a*ul!

    Coloraci$%&

    .isponer dos varillas de vidrio en forma paralela, a una distancia de apro+imadamente

    cm entre una y otra, una sobre un soporte dentro del lavabo>pileta de coloracin!

    ?iltrar la cantidad de fucsina necesaria para las tinciones a reali*ar en la ornada! $i el

    n7mero de baciloscopia a colorear es pequeo, se puede filtrar la fucsina directamente

    cuando se la deposita sobre el e+tendido a trav%s de un pequeo embudo con papel de filtro!

    olocar sobre el soporte las l#minas fiadas conservando el orden num%rico con el

    e+tendido hacia arriba y manteniendo una separacin de al menos 1cm entre ellas!

    ubrir totalmente la superficie del e+tendido con fucsina b#sica fenicada reci%n filtrada!

    .ispensar el colorante con suavidad, sin salpicar y sin tocar con el gotero o con el embudo

    los e+tendidos!

    http://demostraciondelbacilodekoch.blogspot.com/2011/06/metodo-de-coloracion-de-ziehl-neelsen_03.htmlhttp://demostraciondelbacilodekoch.blogspot.com/2011/06/metodo-de-coloracion-de-ziehl-neelsen_03.html
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    on la llama de un hisopo embebido en alcohol calentar suavemente por debao de los

    e+tendidos, con movimientos de vaiv%n, hasta que observe que se desprenden los primeros

    vapores blancos! &o calentar con mechero!

    )n caso de derrame del colorante, reponer la fucsina, no dear secar el preparado!

    )n el t%rmino de apro+imadamente cinco minutos calentar tres veces hasta emisin de

    vapores@ esto es suficiente para que la fucsina penetre adecuadamente en el bacilo y se fie a

    sus lpidos! &o hervir la fucsina porque la pared de los bacilos puede destruirse y colorearsemal!

    on una pin*a, levantar cuidadosamente la l#mina portaobetos desde el e+tremo m#s

    cercano al operador! )nuagar con abundante agua a baa presin, con un frasco o un grifo!Lavar muy suave y cuidadosamente la superficie eliminando totalmente la solucin de

    fucsina! Airar el e+tendido y lavar con cuidado tambi%n la parte posterior!

    Bnclinar el portaobetos para eliminar el e+ceso de agua y as evitar diluir los reactivos quese utili*ar#n a continuacin!

    Decoloraci$%&

    ubrir la totalidad del e+tendido con solucin decolorante y dear actuar apro+imadamente

    3 minutos!

    )nuagar con abundante agua a baa presin!

    Cerificar que el e+tendido se ha decolorado 'las partes m#s gruesas del e+tendido a lo

    sumo conservan un leve tinte rosado(! $i se observan c7mulos roos o coloracin rosada

    intensa, volver a cubrir con solucin decolorante, dearla actuar entre uno y tres minutos y

    enuagar nuevamente!

    )liminar el e+ceso de agua inclinando el portaobetos

    Coloraci$% 'e (o%'o&

    ubrir todo el e+tendido con solucin de a*ul de metileno!

    .ear actuar durante un minuto!

    )nuagar las l#minas en ambas caras con agua a baa presin y limpiar parte inferior con

    un algodn si ha quedado coloreada!

    "bservar si las l#minas conservan la numeracin clara y visible! $i no es as volver a

    numerarlas!

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    .ear secar las l#minas a temperatura ambiente, apoy#ndolas en posicin vertical en un

    soporte sobre un papel absorbente! &o apoyar papel absorbente sobre el e+tendido!

    )ACILOSCO*IA& O)SER+ACI! DE LOS )ACILOS TU)ERCULOSOS

    La baciloscopia, es la t%cnica fundamental en toda investigacin bacteriolgica de la

    tuberculosis, en la deteccin de casos y control de tratamiento, con un costo bao y de

    r#pida eecucin!

    La baciloscopia es una t%cnica que permite identificar al 20-D0E de los casos pulmonares

    positivos, es decir, es muy bao el riesgo de equivocarse al diagnosticar tuberculosis!

    La baciloscopia puede ser reali*ada en laboratorios de cualquier compleidad, que posean

    un microscopio con lente de inmersin en buenas condiciones, algunos insumos de bao

    costo e instalaciones simples en el laboratorio! .eben seguirse normas b#sicas sencillas queaseguren calidad y minimicen los riesgos, )s recomendable que el #rea sea e+clusiva, pero

    no siempre es posible!

    Lectura de extendidos coloreados por Ziehl Neelsen

    Fbicar cerca del microscopio todos los elementos necesarios;

    -aceite de inmersin!-pauelos o tro*os de papel suave!

    -el 9egistro del Laboratorio!

    -una lapicera!

    -una caa para guardar portaobetos!-un frasco con +ilol o con etanol a 20E!

    .epositar una gota de aceite de inmersin en un e+tremo del frotis, sin tocar el preparado

    con el gotero!

    )nfocar el e+tendido donde ha colocado la gota de aceite, con la lente 100+ de inmersin!

    "bservar cada campo microscpico en superficie y profundidad, moviendo

    permanentemente el tornillo microm%trico, antes de despla*arse al campo contiguo!

    $eguir un recorrido en lneas rectas, sistem#tico para recorrer el e+tendido evitando repetir

    la lectura de algunos campos!

    "bservar la calidad del e+tendido y de la coloracin! $i no fuesen buenas, repetir

    nuevamente la baciloscopia de esa muestra!

    $i se observan anormalidades, identificar las ausas!

    ontar el n7mero de campos que ha ledo y el n7mero de :9 que ha identificado!

    http://demostraciondelbacilodekoch.blogspot.com/2011/06/baciloscopia-observacion-de-los-bacilos_03.htmlhttp://demostraciondelbacilodekoch.blogspot.com/2011/06/baciloscopia-observacion-de-los-bacilos_03.html
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    /ara calcular el promedio de :9 encontrados por campo, sumar el total de :9

    contados y dividir ese total por el n7mero de campos observados! uando los bacilos se

    presentan agrupados, una estimacin apro+imada del n7mero de bacilos presentes en el

    c7mulo es suficiente para calcular este promedio!

    Los campos ledos deben ser

  • 7/23/2019 Bacilo Koch

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    Las bacterias que resisten la decoloracin son de color roo y las que no, se observan de

    color a*ul, ya que se utili*a a*ul de metileno como tincin de contraste!