Bss 3120 03 centrifugacion de la sangre[1]

GUIA DE TALLERCentrifugación de la Sangre.

Dirigido a:Alumnos de la carrera de Técnico de Laboratorio Clínico y Banco de Sangre en la asignatura de “Banco de Sangre II”

Requisito:Guía de Taller “Centrifugas”, asignatura InstrumentaciónGuía de Taller “Flebotomía en Donantes de Sangre”Norma para la Extracción de Sangre de Donantes de Sangre Completa, MINSAL. Circular 4C/ 25, de abril del 2000.

Autor: Fernando ZamoranoDuocUC

Realizado por:Tecnólogo Medico (con la especialidad de Laboratorio y Banco de Sangre).

Duración del Taller:3 módulos.

Numero de Participantes:10 alumnos

Introducción.

La sangre ha sido transfundida con éxito durante unos 60 años. Sin embargo, con el paso del tiempo la práctica transfusional ha cambiado radicalmente, en lo que respecta al procesamiento de sangre total1 y los productos obtenidos.

Las primeras transfusiones corresponden a sangre completa, procedimiento que se realiza de brazo a brazo y que soluciona solo uno de los problemas que padecen los pacientes, aquel asociado a la capacidad transportadora de oxigeno2, mientras que, el resto de hemocomponentes se encuentra en pequeña cantidad o pierden su funcionalidad producto de la extracción o el almacenamiento.

Separar la sangre en sus componentes debe haber sido una idea que nace de observar lo que ocurre en forma natural, cuando ella permanecer almacenada, pero, como este proceso se extiende por un tiempo superior al que algunos hemocomponentes se mantienen viables, fue necesario utilizar una herramienta que lo facilitara (lograr la separación en menor tiempo), lo que se logra con la centrifugación.

La centrifugación corresponde a

una técnica ampliamente usada en los bancos de sangre, que permite obtener Glóbulos Rojos, Plasma, Plaquetas (ver imagen nro. 1), Leucocitos y Crioprecipitado3.

1 También puede ser nombrada como Sangre Completa o Sangre Entera.2 Función desempeñada por los glóbulos rojos.3 Para obtener Crioprecipitado es necesario incorporar una etapa de congelación rápida y descongelación del plasma.

Autor: TM. Fernando ZamoranoDuocUC

El plasma puede ser separado en otros componentes (conocidos también como hemoderivados), si además de la centrifugación se agregan técnicas como el fraccionamiento alcohólico de Cohn, de Cohn – Oncley o la ultra-filtración. La utilización de estos procedimientos permite obtener factores de la coagulación, albúmina, inmunoglobulinas, etc. La producción de hemoderivados es un proceso industrializado que necesita de grandes cantidades de plasma, lo que implica que existan plantas para el fraccionamiento fuera de los bancos de sangre o centros de sangre.

Por último, una forma alternativa para separar los componentes de la sangre es la aféresis, que puede ser aplicada para obtener solo plasma “plasmaferesis”, solo plaquetas “plaquetoferesis” o algunas de las células presentes en al sangre “citoferesis”, etc.

La transfusión sanguínea es más que extraer sangre a un donante, para luego, administrarla a un paciente, hoy, se procura reponer a cada paciente solo el componente deficiente. La “terapia por componente” disminuye el riesgo de efectos adversos a la transfusión, pues no se administran componentes que el paciente no necesita y permite aprovechar cada uno de los componentes de la sangre, o sea, de cada unidad donada se logra el mayor rendimiento.

Objetivos.

Al finalizar el taller el alumno será capaz de: Conocerá las técnicas de centrifugación de la sangre para obtener hemocomponentes (Los producidos mas frecuentemente en los Bancos de Sangre). Conocerá los procedimientos adecuados que mantienen la viabilidad y la funcionalidad de los hemocomponentes.

Marco Teórico.

El fraccionamiento de la sangre es el proceso mediante el cual se efectúa la separación de los componentes de una unidad de sangre fresca a través de una centrifugación diferencial. Los diferentes componentes sanguíneos al poseer distintas gravedades son separados en diferentes capas por centrifugación, dependiendo de tres factores: el peso específico de cada componente, la fuerza centrífuga relativa (velocidad) y la duración de la centrifugación o sea el tiempo determinado en revoluciones por minuto (rpm) además de la temperatura, aceleración y la desaceleración. Estas últimas comprenden la aceleración o desaceleración de la velocidad en cada una de las centrifugaciones.


La fuerza centrifuga relativa (FCR-g) es el producto de:

FCR-g = 0.00001118 x r x N2

Donde “r” es el radio del rotor de la centrifuga en centímetros y N, el número de revoluciones por minuto.

Los distintos rotores tienen radios diferentes4

(ver imagen nro. 2. Radio destacado por rectángulo rojo), por lo tanto, se utilizaran diferentes velocidades para obtener la misma FCR en cada centrifuga.

La velocidad y el tiempo de centrifugación son los elementos clave en la separación de los componentes, los que varían según la centrífuga, el modelo y la posición del cabezal. Para cada centrifuga se deben calcular las distintas variables (FCR y tiempo) para obtener productos de una buena calidad y no puede utilizar un mismo valor para todas.

Recuerde que cuando la centrífuga está funcionando a altas velocidades, el cabezal y las copas desarrollan una fuerza de gravedad de miles de libras, debido a ello es importante que los capachos tengan igual peso, de lo contrario la máquina se desajusta, se daña, vibra y la separación de los componentes será pobre, por el inadecuado balanceo.

El adecuado balanceo se puede lograr mediante discos de goma o lastre (material no punzocortante) de distintos pesos. No es recomendable utilizar agua, ni otros materiales rígidos que puedan romper la bolsa. Por otro lado, tanto el agua como dichos materiales se desplazan durante la aceleración y desaceleración produciendo resuspensión de las células, por eso, no es conveniente centrifugar sangre y colocar como contrapeso bolsas de plástico conteniendo agua.

Con la centrifugación se obtienen ventajas como: Mejora la supervivencia los componentes de la sangre, pues, permite almacenarlos en las condiciones requeridas para mantener su nivel óptimo de funcionalidad. Mejora la práctica transfusional, al hacerla más específica y acorde con las necesidades del receptor.

Para la producción de hemocomponentes es recomendable el uso de equipos de extracción de sangre (bolsas para la extracción de sangre) dobles, triples (ver imagen nro. 3) o cuádruples, que al ser sistemas interconectados y estériles aseguran riesgo de contaminación de los productos, situación que ocurre con mas frecuencia al usar equipos simples y transfer.

4 El largo del rotor desde el centro al extremo.


Imagen nro. 2 Rotor de una Centrifuga.

Imagen nro. 3 Equipo de Extracción de Sangre Triple

Descripción del Taller.

El docente hará una demostración simulada de las técnicas para producir hemocomponentes. Los alumnos realizaran el procedimiento en forma simulada.

Materiales para el Taller.

Bolsas para la extracción de sangre de distinto tipo Extractor de plasma Clips de metal y sellador manual Pinzas Tijeras Balanza Lápiz marcador Centrifuga Refrigerada

Procedimientos.

I. Encendido y Carga de la Centrifuga.

1 Encender la centrifuga unos 10 minutos antes de su uso, para que la unidad refrigerante alcance la temperatura adecuada según el hemocomponente que será producido (en caso de plasma fresco 2° a 6° C y en el caso de plaquetas 20° a 24° C).

2 Determinar el peso (gramos) de la unidad de sangre total (bolsa principal + bolsas satélites + sangre), regístrelo.

3 Calcule el volumen de sangre extraído, proceda de la siguiente forma: Reste al peso determinado en el punto 2 (bolsa principal, satélites y sangre) el peso del equipo de extracción vacío5 (bolsa principal y satélites). Aplique formula de densidad6, despejando volumen (v).

d = m/v

El valor obtenido corresponde al volumen de sangre extraído, el que debe oscilar en el rango de 405 a 495 ml solo así puede ser considerado para la producción de hemocomponentes, regístrelo.

4 Habrá la centrífuga, retire los capachos (ver imagen nro. 4). Los capachos deben ser hermanados7 por peso (igual o semejante).

5 Debe ser una bolsa de la misma marca, modelo que la bolsa con sangre total.6 Densidad de la sangre es 1,06


5 Introduzca una bolsa de sangre al interior del capacho y busque una bolsa con peso semejante para colocarla al interior del capacho hermano, en ambos casos todos los dispositivos de conexión de la bolsa deben quedar hacia afuera8 (ver imagen nro. 4).

6 Iguale el peso de capachos hermanos, agregue trozos de goma de distinto tamaño entre la bolsa satélite y la pared del capacho, nunca en el fondo, pues durante la centrifugación pueden romper la bolsa de sangre.

7 En el caso de que el capacho disponga de tapa, colóquela.

8 Los capachos hermanados son depositados en la centrifuga, uno frente al otro, para mantener equilibrada la centrifuga (balanceo).

9 En el caso que no cuente con bolsas con sangre suficientes para todos los capachos de la centrifuga:

Si dispone de una bolsa de sangre, en el capacho hermano coloque una bolsa de extracción a la que ha introducido agua y para igualar el peso, agregue trozos de goma. Si no dispone de bolsas para un par de capachos, colóquelos vacíos en la centrifugas, nunca utilice una centrifuga sin su capachos.10 Cierre la centrífuga y observe que se alcanza la temperatura que se necesita.11 Proceda programar el tiempo y RPM al cual debe funcionar la centrífuga, para

lograr el producto que desea obtener. A menos que este indicado en la técnica, no utilice el freno de la centrifuga.

A continuación se describe en forma general los procedimientos para obtener los hemocomponentes más comunes.

II. Producción de Concentrado de Glóbulos Rojos (CGR).

El CGR se obtiene por eliminación del plasma sobrenadante de la unidad la sangre total, luego que ha sido centrifugada.

1. Centrifugar la sangre total con una “centrifugación pesada”9 a una temperatura de 4° C.

7 Se habla de capachos hermanos en el caso de capachos de un mismo peso o que en la centrifuga se ubican uno frente al otro. 8 Las bolsas satélites se colocan extendidas detrás de la bolsa principal, con la tubuladura que las une entre ellas. La tubuladura que conectaba con la aguja se coloca alrededor de las bolsas, de forma que compacte bolsas y tubuladuras, evitando que durante la centrifugación estas salgan del capacho y se rompan (pero no se debe formar una cintura en la bolsa de sangre).9 Una Centrifugación Pesada, Liviana o Leve deberá ser determinada para cada centrifuga, por lo tanto, debe buscar los datos de las variables en los manuales técnicos de cada unidad o centro productivo.


Imagen nro. 4 Capacho y Equipo de extracción de

sangre

2. Luego de centrifugar coloque la bolsa principal que contiene la sangre en un Desplasmatizador. Manipule con cuidado la bolsa de sangre, para no mezcla las distintas capas en que ha separado.

3. Suelte el muelle del Desplasmatizado (ver imagen nro. 5), deje que la placa entre en contacto, suavemente, con la bolsa (ver imagen nro. 6).

4. Realice nudos flojos (2) en la tubuladura, entre la bolsa primaria y la bifurcación en “Y” de la tubuladura10.

5. Si son dos o más las bolsas satélites, pinzar la tubuladura de aquellas a las que no debe ingresar Plasma.

6. Rotular la bolsa satélite, que contendrá el Plasma con la misma identificación de la bolsa principal.

7. Rompa el sello de la bolsa principal que la comunica con las bolsas satélites (ver imagen nro. 7), deje pasar el plasma a la bolsa satélite.

8. La bolsa principal que contiene los glóbulos rojos debe mantener plasma (aproximadamente unos 50 ml)11, al evaluar el CGR su microhematocrito debe ser de 70 hasta 80% (ver imagen nro. 8).

9. Pinzar la tubuladura cuando haya trasladado el plasma. Sellar la comunicación entre la bolsa principal y las satélites, cerrando los nudos flojos o aplicando sellos a la tubuladura, cortar la tubuladura y observar que en los extremos no existan filtraciones.

10.Calcule el volumen de CGR obtenido, aplique la misma formula de densidad utilizada en el procedimiento I punto 3 (solo que la densidad del Glóbulo Rojos es de 1,1). Regístrelo.

11.Almacenar el hemocomponente obtenido a la temperatura adecuada (ver imagen nro. 9).

Nota: Se puede producir hemocomponentes en un equipo simple, siempre y cuando, se prevenga toda posibilidad de contaminación bacteriana, se trabaje en un ambiente limpio, utilizando materiales estériles y técnicas de manejo aséptico, manteniendo una presión positiva sobre la bolsa original hasta que sea sellada.

La esterilidad de los componentes preparados en un sistema abierto debe ser monitoreada, utilizando métodos

10 Si dispone de un sellador de tubuladura no requiere realizar nudos flojos.11 Excepto si trabaja con bolsas que contengan solución aditiva, en cuyo caso se extrae prácticamente todo el plasma.


Imagen nro 8. CGR y Plasma Fresco

Imagen nro 5. Desplasmatizador

Imagen nro 6. Placa del Desplasmatizador

Imagen nro 7. Bolsa Principal

Imagen nro 9. CGR

validados. Los componentes sanguíneos obtenidos por medio de un sistema abierto deben ser utilizados tan pronto como sea posible. Los hemocomponentes cuya temperatura de almacenamiento es de 2° a 6° C deben ser transfundidos antes de 24 horas; la nueva fecha y hora de vencimiento se debe anotar en al etiqueta y en los registros.

Producción de Concentrado de Glóbulos Rojos en Solución Aditiva.

La recolección de sangre con una solución aditiva permite la remoción de un volumen mayor de plasma. Una vez removido el plasma, se permite que el aditivo fluya desde la bolsa satélite con el aditivo a la bolsa con los glóbulos rojos.

Producción de Concentrado de Glóbulos Rojos Leucodepletados.

Durante la filtración en línea de la sangre entera anticoagulada, ésta pasa a través se un filtro de leucorreducción colocado dentro del equipo de extracción de sangre. La sangre obtenida puede ser manufacturada para obtener CGR leucorreducidos. De este producto no pueden prepararse Concentrado Plaquetario debido a que la filtración de sangre entera reduce el número de plaquetas en ellas.

Producción de Concentrado de Glóbulos Rojos Leucoreducidos.

El Alumno debe investigar sobre la Preparación de este Hemocomponente.

Producción de Concentrado de Glóbulos Rojos Lavados


Producción de Concentrado de Glóbulos Rojos Irradiados


III. Producción de Concentrado de Plasma Fresco Congelado (PFC).El plasma se separa de los elementos celulares de la sangre y se congela

para preservar la actividad de los factores lábiles de la coagulación.

El Plasma no debe ser producido a partir de unidades lipémicas, ictéricas o contaminadas con glóbulos rojos.

1. La unidad extraída se debe refrigerar a 4° C (2 – 6° C) si no se procesa de inmediato, hasta por un máximo de 8 horas desde la extracción.

2. Al ejecutar el procedimiento II, obtiene CGR y Plasma Fresco (puntos 7, 9 y 10), al traspasa el Plasma Fresco sobrenadante a una bolsa satélite.


3. Deje pasar unos 230-250 grs12 de plasma a la bolsa satélite.4. Calcule el volumen de Plasma Fresco obtenido, aplique la misma formula de

densidad utilizada en el procedimiento I punto 3 (solo que la densidad del Plasma Fresco es de 1,03). Regístrelo.

5. El Plasma Fresco se debe congelar a –18° C o menos, para mantenerlo en la condición de Plasma Fresco Congelado, todo el procedimiento debe realizarse en no mas de 8 horas desde al extracción.

6. Al almacenar el PFC es recomendable usar un sistema que permita detectar eventos de descongelación no programados, se describen los siguientes:6.1.Durante la congelación del Plasma coloque un tubo contra la bolsa que

contiene el Plasma, permanecerá la marca una vez congelado. En caso de descongelación ello desaparecerá.

6.2.Durante la congelación del Plasma, coloque la bolsa en posición horizontal, la burbuja de aire al interior de ella se ubicara mas o menos en la posición indicada en la imagen nro 10; luego al ser almacenado ubicarlo en posición vertical, en caso que se descongele la burbuja se desplaza a la parte mas alta de la bolsa.

IV. Producción de Concentrado de Plaquetas.Como primer paso se debe obtener Plasma Rico en Plaquetas (PRP),

desde sangre total con una “centrifugación liviana”, luego, las plaquetas son concentradas por “centrifugación pesada”.

Un concentrado de plaquetas no debe ser producido a partir de unidades lipémicas, ictéricas o contaminadas con glóbulos rojos.

1. Para producir un concentrado de Plaquetas se requiere:1.1.Que la unidad de sangre total haya sido extraída en bolsa triple o

cuádruple.1.2.Que la bolsa satélite que almacenara las plaquetas sea de un plástico

aprobado para la conservación de ellas.1.3.Si la unidad de sangre total no es procesada de inmediato, sea

almacenada a una temperatura de 20 a 24° C, hasta por 8 horas de extraída.

2. Centrifugar la unidad de sangre total con una “centrifugación leve” y temperatura de 20 a 24° C.

3. Proceder de acuerdo con el procedimiento II (puntos 2 a 7). Manipule con cuidado para no dispersar las plaquetas que se encuentran suspendidas en el plasma. La solución obtenida en la bolsa satélite corresponde a Plasma Rico en Plaquetas (PRP).

12 Recuerde que al peso del Plasma Fresco debe agregar el peso de la bolsa satelite.


Imagen nro 10. Plasma para congelar en posición Horizontal

4. Al PRP junto a la(s) otra(s) bolsa(s) satélite sométalo a una Centrifugación Pesada, siempre a temperatura de 20 a 24° C.

5. Extraer el Plasma Fresco sobrenadante a una bolsa satélite vacía y deje en bolsa satélite el botón plaquetario con solo 50 a 60 ml de plasma. Sellar la tubuladura en dos puntos, entre ambas bolsas y cortar entre ellos.

6. Resuspender las Plaquetas. Las plaquetas en el boton plaquetario se agregan en forma irreversible si son sometidas a una agitación brusca, por ello es necesario realizar los siguientes pasos para suspenderlas:6.1.La bolsa satélite con el botón plaquetario debe permanecer sin

movimiento, con el lado que tiene la etiqueta hacia abajo, a temperatura de 20 a 24° C por 1 hora.

6.2.Resuspenda las plaquetas de una de las siguientes formas:6.2.1. Manipule la bolsa satélite con plaquetas, manualmente, para lograr

una resuspensión uniforme, hasta lograr que una solución de plasma con plaquetas suspendidas en el.

6.2.2. Coloque la bolsa satélite con plaquetas en un agitado, a temperatura de 20 a 24° C. La agitación lenta y suave logra una resuspensión uniforme de las plaquetas en unas 2 horas.

7. Almacene las unidades de plaquetas a una temperatura entre 20 – 24° C con agitación suave y continua.

8. Calcule el volumen de Plaquetas obtenido, aplique la misma formula de densidad utilizada en el procedimiento I punto 3 (solo que la densidad del Plasma es 1,03). Regístrelo.

9. El plasma pobre en plaquetas puede congelarse rápidamente y conservar como PFC.

V. Producción de Crioprecipitado (CPP) Globulina anti hemofílica o Factor VIII, factor antihemofilico (FAH). Se puede concentrar el factor VIII de la coagulación, desde el PFC, por crioprecipitación. La crioprecipitación se alcanza mediante el descongelamiento lento (2 – 6° C) del PFC.

1. Para producir Crioprecipitado se requiere:1.1.Que la unidad de sangre total haya sido extraída en bolsa triple o

cuádruple.1.2.Que, si la unidad de sangre total no es procesada de inmediato, se debe

almacenar a una temperatura de 2 a 6° C, hasta por 8 horas desde la extracción.

2. Procesar de acuerdo con el procedimiento III (Producción de PFC). La cantidad mínima de PFC para producir CPP debe ser 205 gramos (200 ml).

3. Coloque de inmediato el Plasma Fresco en un dispositivo de congelamiento, con el objetivo que antes de que se cumplan 8 horas desde la extracción, la unidad esta completamente congelada. Existen las siguientes alternativas:3.1.Congelador de aire forzado o congeladores mecánicos capaces de

mantener temperaturas de – 65° C o menos,


3.2.Hielo seco o un baño de etanol-hielo seco. Las bolsas de plasma sumergidas en líquido deben estar protegidas con una envoltura de plástico.

4. Coloque el PFC a una temperatura de 2 a 6° C, puede usar:4.1.Un refrigerador a 4° C.4.2.Un baño de agua con una temperatura de 4° C, en este caso utilizar una

envoltura de plástico u otro medio para mantener secas la unidad de PFC.5. El PFC se descongelara, hasta que el plasma logre una consistencia fangosa,

luego deberá separar el plasma liquido del crioprecipitado, de una de las siguientes formas:5.1.Centrifugar el plasma a una temperatura de 2 a 6° C, utilice una

centrifugación pesada. Colgar la bolsa satélite que contiene el plasma en posición invertida, deje que el plasma fluya rápidamente a otra bolsa satélite, el crioprecipitado se adhiere a los costados de la bolsa. Separe rápidamente, para evitar que el crioprecipitado se disuelva y pase con el plasma sobrenadante a la bolsa satélite.

5.2.Coloque el plasma descongelando en un desplasmatizador. Con la bolsa en posición vertical, deje que el plasma sobrenadante fluya lentamente a la bolsa satélite, utilice los cristales de hielo de PFC como filtro. La pasta de crioprecipitado se adhiere a los costados de la bolsa o al hielo. La bolsa satélite contiene plasma pobre en crioprecipitado.

6. La bolsa que contiene el CPP debe mantener unos 10 a 15 ml de plasma sobrenadante para resuspenderlo.

7. Pinzar la tubuladura cuando se haya extraído aproximadamente el 90% del plasma pobre en crioprecipitado.

8. Comprobar que la bolsa de CPP este correctamente rotulada (numero de donante, fecha elaboración, tipo de componente).

9. Sellar la tubuladura entre ambas bolsas en dos lugares y cortar en esa zona.10.Calcule el volumen de CPP obtenido, aplique la misma formula de densidad

utilizada en el procedimiento I punto 3 (solo que la densidad del Plasma Fresco es de 1,03). Regístrelo.

11.Almacenar a -18° C o menos, de preferencia a -30° C o menos hasta 12 meses desde la fecha de colección del la sangre.

Nota: Puede preparar CPP desde unidades de PFC hasta 12 meses después de la extracción y congelación. La fecha de expiración del crioprecipitado es de 12 meses, desde la fecha de la flebotomía y no desde la fecha en que fue producido.


Características de los Hemocomponentes

HemocomponenteConservación Volumen

(ml)Contenido

Control de Calidad Medio Días

Concentrados Glóbulos Rojos

CPDCPD-A

HeparinaCircuito abierto

2135224

280 ± 60

CGR 55 a 75%, plasma 45 a

25%, algunas plaquetas y

Glóbulos Blancos

Hematocrito y Volumen de la

unidad Temperatura 2 - 6°C


Leucodepletados

CPDCPD-A

HeparinaCircuito abierto

2135224 270 ± 50

CGR 55 – 75%, plasma 45 a

25%Leucocitos

<5,6x106 por unidad

Hematocrito, Contenido de Hemoglobina, Volumen de la

unidad y Recuento de Leucocitos

Temperatura 2- 6°C

Concentrados Glóbulos Rojos en

solución aditiva

ADSOLNUTRICELOPTISOL

42350 ± 70


30%

Hematocrito y Volumen de las unidad

Temperatura 2 - 6°C


solución aditiva Leucodepletados


42280 ± 60


25%Leucocitos

<5,6x106 por unidad

Hematocrito, Contenido de Hemoglobina volumen de la

unidad y Recuento de LeucocitosTemperatura 2- 6°C


solución aditiva Leucoreducidos


42280 ± 60


30%Leucocitos <1,2x10 por

unidad

Hematocrito, Contenido de Hemoglobina, volumen de la

unidad y Recuento de LeucocitosTemperatura 2 - 6°C


lavados

Usar lo más rápido posible

24 horas

Rango definido

localmente

CGR, Proteínas residuales

Hematocrito, Contenido de Hemoglobina, volumen de la

unidad, concentración

proteínas

Temperatura 2 - 6°C

Concentrado de Plaquetas

Dependiendo del plástico

Circuito abierto

3 – 5

24 horas 50 – 70

Plaquetas, Plasma,

Leucocitos

Recuento Plaquetas y Leucocitos,

pHTemperatura

20 a 22°C


Características de los Hemocomponentes

HemocomponenteConservación Volumen

(ml)Contenido

Control de Calidad Medio Días

Plasma Fresco Congelado

Temperatura < -30°C

20° a 24°C 1 año

4 horas

Definido localmente

todos los factores de la coagulación,

albúmina.

Volumen de la unidad,

Plaquetas, Factor VIII:C, recuento de leucocitos

Plasma pobre en Crioprecipitado

Temperatura < -30°C

20° a 24°C 1 año

4 horas

Definido localmente

Volumen de la unidad,

recuento de leucocitos

Plasma Conservado

CongeladoLiquido

5 años5 días mas

que la sangre

150 a 250Plasma solo

factores establesConservación

< 18°C

Temperatura - 20°C

CrioprecipitadoTemperatura

< -30°C20° a 24°C

1 año4 horas

Definido Localmente

Factor VIII C, Factor XIII,

Fibrinogeno, Factor von W, Fibronectina

Volumen, Fibrinogeno,

FVIII:C; recuento de Leucocitos

BIBLIOGRAFIA

1. Orientaciones y Regulaciones para Centros de Sangre en Chile. Ministerio de Salud Chile 2004.

2. Manual Técnico. 15° edición. Asociación Argentina de Hemoterapia e Inmunohematologia. American Association of Blood Banks 2003.

3. Guía Practica Inmunohematologia y Banco de Sangre. Carrera de Tecnología Médica. Universidad de Chile. 1997.


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