caracterización de los efluentes en los estanques de piscicultura del ...

UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA

FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES

DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE CIENCIAS AMBIENTALES

INFORME FINAL DE PRÁCTICA PRE PROFESIONAL

“CARACTERIZACIÓN DE LOS EFLUENTES EN LOS ESTANQUES DE

PISCICULTURA DEL IIAP - HUANUCO”

EJECUTOR : GARCÍA NAMUCHE, Josué Junnior

ASESOR : Ing. PAREDES SALAZAR, José Luis

INSTITUCIÓN : INSTITUTO DE INVESTIGACION DE

LA AMAZONIA PERUANA

(IIAP) - HUANUCO

LUGAR DE EJECUCIÓN : Saipai – Santa Lucia

DURACIÓN DEL TRABAJO : 15 de Enero al 15 de Abril del 2014

TINGO MARÍA – PERÚ

2014

2

INDICE

Página

I. INTRODUCCIÓN ..................................................................................... 1

1.1. Objetivo general ................................................................................ 2

1.2. Objetivo Específicos ......................................................................... 2

II. REVISIÓN LITERARIA ............................................................................ 3

2.1. Ley de recursos hídricos N° 29338 ................................................... 3

2.1.1. TítuloIII usos de los recursos hídricos ..................................... 3

2.2. Acuicultura ........................................................................................ 4

2.2.1. Aspectos básicos para la crianza de peces ............................. 4

2.3. Definición de calidad de agua ........................................................... 5

2.4. Parámetros fisicoquímicos de calidad del agua ................................ 7

2.4.1. Temperatura ............................................................................ 8

2.4.2. Oxígeno disuelto ...................................................................... 8

2.4.3. pH .......................................................................................... 10

2.4.4. Conductividad eléctrica .......................................................... 11

2.4.5. Sólidos Suspendidos Totales ................................................ 12

2.4.6. Demanda Bioquímicade Oxígeno .......................................... 13

2.5. Aspectos generales del centrode prácticas..................................... 14

2.5.1. Programa AQUAREC ............................................................ 14

2.5.2. Características del área de estudio ....................................... 15

III. MATERIALES Y MÉTODOS ................................................................. 16

3.1. Ubicación de la zona de estudio ..................................................... 16

3.1.1. Ubicación política................................................................... 16

3.1.2. Ubicación geográfica de la estación experimental ................. 16

3.1.3. Clima ..................................................................................... 18

3.1.4. Hidrografía ............................................................................. 18

3.1.5. Fisiografía .............................................................................. 18

3.2. Materiales y Equipos ....................................................................... 18

3.2.1. Materiales .............................................................................. 18

3.2.2. Equipos .................................................................................. 19

3.3. Metodología .................................................................................... 19

3

3.3.1. Medición de los parámetros de calidad del agua ................... 19

3.3.2. Determinación de temperatura .............................................. 20

3.3.3. Determinación de pH y conductividad ................................... 20

3.3.4. Determinación de oxígeno disuelto........................................ 21

3.3.5. Determinación de sólidos suspendidos totales ...................... 21

3.3.6. Determinación de demanda bioquímicade oxígeno ............... 22

3.3.7. Estadística descriptiva de los parámetros de calidad de

agua ............................................................................................ 22

IV. RESULTADOS ..................................................................................... 23

4.1. Valores obtenidos por cada semana de muestreo .......................... 23

4.2. Análisis a través de la metodología deestadística descriptiva ........ 30

4.3. Comparación de los valores obtenidos con la normativa nacional . 33

V. DISCUSIÓN ........................................................................................... 37

VI. CONCLUSIONES ................................................................................. 39

VII. RECOMENDACIONES........................................................................ 40

VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS .................................................. 41

IX. ANEXOS ............................................................................................... 43

4

INDICE DE CUADROS

Cuadro Página

1. Calidad del agua por el nivel de oxígeno disuelto (OD) ......................... 10

2.Ubicación geográfica ............................................................................... 16

3. Estanques de la estación experimental .................................................. 17

4. Parámetros de calidad de agua que se determinarón ............................ 20

5. Valores de los parámetros del efluente del estanque 1 evaluados

semanalmente ....................................................................................... 23


semanalmente ....................................................................................... 23


semanalmente ....................................................................................... 24


semanalmente ....................................................................................... 24


semanalmente ....................................................................................... 25

10. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del

estanque 1 ............................................................................................. 30


estanque 2 ............................................................................................. 30


estanque 3 ............................................................................................. 31


estanque 4 ............................................................................................. 31


estanque 6 ............................................................................................. 32

15. Normativa nacional de descarga de efluentes ..................................... 33

5

INDICE DE FIGURAS

Figura Página

1. Croquis de los estanques de piscicultura de la estación experimental .. 17

2. Variación del pH de los efluentes en cada semana ............................... 25

3. Variación de la temperatura de los efluentes en cada semana .............. 26

4. Variación del oxígeno disuelto de los efluentes en cada semana .......... 27

5. Variación de la conductividad de los efluentes en cada semana ........... 27

6. Variación de la DBO5 de los efluentes en cada semana ....................... 28

7. Variación de los SST de los efluentes en cada semana ........................ 29

8. Comparación de los valores obtenidos de DBO5 de cada efluente con la

normativa nacional ................................................................................. 33

9. Comparación de los valores obtenidos de pH de cada efluente con la


10. Comparación de los valores obtenidos de temperatura de cada efluente

con la normativa nacional ...................................................................... 35

11. Comparación de los valores obtenidos de SST de cada efluente con la


12. Vista panorámica de los estanques de estación experimental ............. 44

13. Toma de muestras en los enfluentes de los estanques ....................... 44

14.Obtención de datos de parámetros fisicoquímicos in-situ ..................... 45

15. Muestras recolectadas de los efluentes de los estanques ................... 45

16. Proceso para la medición de los solidos suspendidos totales .............. 46

17.Paso de la muestra por los filtros para la determinación de los SST .... 46

18. Mapa de ubicación de los estanques de la estación experimental ....... 47

1

I. INTRODUCCIÓN

El agua es una importante fuente para muchas personas alrededor

del mundo, especialmente en zonas rurales. El agua puede contaminarse de

forma natural mediante la descomposición orgánica o artificialmente con las

actividades humanas como actividades extractivas agrícolas y/o minerales. La

contaminación del agua puede resultar de baja calidad para consumo, pérdida

de fuente de agua, costos extremos de limpieza y remediación, además de los

costos altos para el uso de fuentes alternativas de agua y problemas de salud.

Uno de los mayores problemas de la producción acuícola es el

aumento de materia orgánica producida por las excreciones de los peces, por el

alimento no consumido y por otros insumos adicionados en los estanques

(TACON Y FORSTER, 2003). El efluente del estanque va hacia una fuente

natural, generando variaciones como disminución en la concentración de

oxígeno (OD), aumento en la concentración de sólidos en suspensión (SST),

aumento en la demanda biológica de oxígeno (DBO), aumento en la demanda

química de oxígeno (DQO), formas variadas de nitrógeno y fósforo, crecimiento

exagerado de algas, eutrofización, entre otras (TROELL Y NEORI, 2005).

2

El presente estudio está encaminado a caracterizar

fisicoquímicamente los efluentes de los estanques de piscicultura del IIAP. Con

los resultados se podrá establecer algunas medidas preventivas y correctivas.

La caracterización de los efluentes de los estanques de piscicultura

será de gran utilidad para conocer la influencia del efluente sobre la calidad del

agua, a fin de identificar la concentración de materia orgánica para que la

institución defina políticas y planes de desarrollo para el manejo del agua.

1.1. Objetivo general

- Realizar la caracterización fisicoquímica de los efluentes de los

estanques de piscicultura de la estación experimental del IIAP.

1.2. Objetivos específicos

- Medir los parámetros de calidad in situ de los efluentes de los

estanques como temperatura, pH, conductividad y oxígeno disuelto.

- Medir los parámetros de calidad ex situ de los efluentes de los

estanques como sólidos suspendidos totales y demanda bioquímica de oxígeno.

- Comparar los valores obtenidos en las mediciones de los parámetros

de los efluentes de los estanques con los valores establecidos en los límites de

descarga a un cuerpo de agua dulce.

3

II. REVISIÓN DE LITERATURA

2.1. Ley de recursos hídricos N° 29338

2.1.1. Título III usos de los recursos hídricos

Artículo 35°.- Clases de usos de agua y orden de prioridad: La

ley reconoce las siguientes clases de uso de agua:

1. Uso primario. 2. Uso poblacional. 3. Uso productivo.

La prioridad para el otorgamiento y el ejercicio de los usos

anteriormente señalados sigue el orden en que han sido enunciados.

Artículo 42°.- Uso productivo del agua: El uso productivo del agua

consiste en la utilización de la misma en procesos de producción o previos a los

mismos. Se ejerce mediante derechos de uso de agua otorgados por la Autoridad

Nacional.

Artículo 43°.- Tipos de uso productivo del agua: Son tipos de uso

productivo del agua: 1. Agrario: Pecuario y agrícola; 2. Acuícola y pesquero; 3.

Energético; 4. Industrial; 5. Medicinal; 6. Minero; 7. Recreativo; 8. Turístico y 9.

De transporte.

4

2.2. La Acuicultura

Es el conjunto de actividades, técnicas y conocimientos de cultivo de

especies acuáticas vegetales y animales. Es una importante actividad

económica de producción de alimentos, materias primas de uso industrial y

farmacéutico, y organismos vivos para repoblación u ornamentación (IIAP,

2007).

2.2.1. Aspectos básicos para la crianza de peces

La construcción de estanques y de estructuras hidráulicas

representa el mayor esfuerzo en la inversión, el costo de construcción depende

de las características del sitio o área del diseño (topografía, tipo de suelo,

cobertura vegetal y necesidades de drenaje), de la estrategia de construcción de

los estanques, demás instalaciones y también de factores climáticos, entre otros.

Para minimizar los costos es necesaria una adecuada planificación

de las acciones y de las etapas de implementación.

La fase de planificación merece especial atención, pues posibilita

una buena evaluación de los riesgos en cuanto a la inviabilidad económica,

esclarece las dudas en cuanto a la concepción, diseño y operaciones de las

instalaciones, ahorrando gastos innecesarios en la construcción y

funcionamiento.

La construcción de estanques en lugares de difícil acceso, exige el

uso más intenso de mano de obra en las cosechas y el traslado de los peces e

insumos.

http://es.wikipedia.org/wiki/Vegetal

http://es.wikipedia.org/wiki/Animal

http://es.wikipedia.org/wiki/Alimento

http://es.wikipedia.org/wiki/Materias_primas

http://es.wikipedia.org/wiki/Industria

http://es.wikipedia.org/wiki/Ser_vivo

http://es.wikipedia.org/wiki/Repoblaci%C3%B3n

http://es.wikipedia.org/wiki/Ornamentaci%C3%B3n

5

Las cosechas representan el punto crítico del manejo de una

actividad acuícola y se repiten diversas veces a lo largo del año y en toda la vida

útil de las instalaciones, imponiendo esfuerzos en mano de obra y una inversión

considerable que elevaría los costos de la producción (IIAP ,2007).

Según IIAP, (2007) la planificación para el inicio de la actividad

acuícola, demanda los siguientes aspectos básicos:

- Inspección ocular del terreno: topografía, textura de suelo,

disponibilidad del agua (cantidad y calidad).

- Construcción de estanques: de acuerdo a la disponibilidad del

terreno.

- Disponibilidad de semilla: de ambientes naturales o de centros de

producción cercanos.

- Conocer sus hábitos: Planificar qué tipo de pez sembrar: carnívoro,

omnívoro o herbívoro.

- Disponibilidad de insumos: lo más recomendable es utilizar insumos

de la región para abaratar los costos de transporte.

2.3. Definición de calidad del agua

En vista de la complejidad de los factores que determinan la calidad

del agua y la gran cantidad de variables utilizadas para describir el estado de los

cuerpos de agua en términos cuantitativos, es difícil dar una definición simple de

“calidad del agua”.

6

Además, los conocimientos sobre calidad del agua han

evolucionado a través del tiempo a medida que ha aumentado su demanda en

diferentes usos y han mejorado los métodos para analizar e interpretar sus

características (SIERRA, 2011).

La calidad de un ambiente acuático se puede definir como:

a) Una lista de concentraciones, especificaciones y aspectos físicos de

sustancias orgánicas e inorgánicas.

b) La composición y el estado de la biota acuática presente en el

cuerpo de agua. La calidad presenta variaciones espaciales y temporales debido

a factores externos e internos al cuerpo de agua.

La contaminación de un ambiente acuático significa la introducción

por el hombre directa o indirectamente de sustancias o energía lo cual resulta

en problemas como: daños en los organismos vivos, efectos sobre la salud de

los humanos, impedimento de actividades acuáticas como pesca, etc., e

interferencia sobre actividades económicas como el riego, el abastecimiento de

agua para la industria, etc. La descripción de la calidad del agua puede realizarse

básicamente de dos formas:

- Midiendo variables físicas (turbiedad, solidos totales, temperatura,

etc.), químicos (pH, acidez, etc.), o biológicos (bioensayos).

- Utilizando un índice de calidad del agua.

Ambas formas son aceptadas y las mediciones que se requieren se

realizan, ya sea en el campo o en el laboratorio, y producen varios tipos de datos

que luego es necesario interpretar (SIERRA, 2011).

7

Los peces dependen directamente de una buena calidad de agua

para la supervivencia y su crecimiento, y entre los factores que destacan en este

aspecto, son el tenor de oxígeno disuelto en el medio, la temperatura y el

potencial de hidrogeno ya que son los reguladores de sus actividades

metabólicas (SENHORINI Y FRANSOZO, 1994).

2.4. Parámetros fisicoquímicos de calidad del agua

Para saber qué tan pura o qué tan contaminada está el agua es

necesario medir ciertos parámetros. Los parámetros de calidad del agua están

clasificados en físicos, químicos y microbiológicos. Como se puede intuir existen

muchos parámetros, muchas formas y varios métodos para medir dichos

parámetros. Para obviar estos problemas, las agencias internacionales

encargadas de vigilar y estudiar la calidad del agua han estandarizado

(unificado) los criterios y los métodos para realizar los análisis del agua (EPA,

1999).

Las diferentes variables que intervienen es un estanque como son

las relaciones tróficas, biocenosis establecidas, capacidad de reciclaje de los

nutrientes, autoproducción y autodepuración de los mismos y los parámetros

físico-químicos del agua determinan la variación, cantidad y calidad de los

organismos que viven en él. Toda especie tiene un rango óptimo para

desarrollarse normalmente, el cual está básicamente dado por la temperatura,

oxígeno, tipo y cantidad de nutrientes sólidos disueltos, salinidad, pH, dureza,

alcalinidad, etc. (RODRIGUEZ et al., 2001).

8

2.4.1. Temperatura

Según BARRENECHEA (2004), la temperatura es uno de los

parámetros físicos más importantes en el agua, pues por lo general influye en el

retardo o aceleración de la actividad biológica, la absorción de oxígeno, la

precipitación de compuestos, la formación de depósitos, la desinfección y los

procesos de mezcla, floculación, sedimentación y filtración.

Múltiples factores, principalmente ambientales, pueden hacer que la

temperatura del agua varíe continuamente.

Según DIGESA (2007), la temperatura es un indicador de la calidad

del agua, que influye en el comportamiento de otros indicadores de la calidad del

recurso hídrico, como el pH, el déficit de oxígeno, la conductividad eléctrica y

otras variables fisicoquímicas. El oxígeno es menos soluble en agua caliente que

en agua fría. Es causa frecuente del oxígeno presente en las aguas superficiales,

reduciéndose más en los meses de verano. La temperatura aceptable para el

consumo humano para una concentración máxima aceptable de 15°C, en

temperaturas altas disminuye la concentración de OD, y otras legislaciones

consideran la temperatura del agua de la zona con una variación de 3°C. La

temperatura recomendable en periodos extendidos de inmersión entre 15-35°C.

2.4.2. Oxígeno Disuelto

Según DIGESA (2007), la concentración del oxígeno en el agua

depende, de la presión parcial del oxígeno en la atmósfera y de la temperatura

del agua, se deduce que la concentración del oxígeno en agua a 25°C es 8.32

mg/L.

9

Según ROMERO (1998), el oxígeno disuelto (OD) es la cantidad de

oxígeno que esta disuelto en el agua y que es esencial para los riachuelos y

lagos saludables. El nivel de oxígeno disuelto puede ser un indicador de

contaminación del agua y de los organismos que pueda soportar desarrollen en

ella. Generalmente un nivel más alto de oxígeno disuelto indica agua de mejor

calidad. Si los niveles de oxígeno disuelto son demasiado bajos, algunos peces

y otros organismos no pueden sobrevivir.

Gran parte del OD en el agua proviene del oxígeno en el aire que se

ha disuelto en el agua. Parte del OD en el agua es el resultado de la fotosíntesis

de las plantas acuáticas. Otros factores también afectan los niveles de OD, por

ejemplo, en un día soleado se producen altos niveles de OD en áreas donde hay

muchas algas o plantas debido a la fotosíntesis.

Además, la cantidad de oxígeno que puede disolverse en el agua

depende de la temperatura también. El agua más fría puede guardar más

oxígeno en ella que el agua caliente. Una diferencia en los niveles de OD puede

detectarse en el sitio de la prueba si se hace la prueba temprano en la mañana

cuando el agua está fría y luego se repite en la tarde en un día soleado cuando

la temperatura del agua haya subido (ROMERO, 1998).

El nivel de oxígeno disuelto (OD) presente en un estanque de

acuicultura es el parámetro más importante en la calidad del agua. Si no hay una

buena concentración de oxígeno disuelto los organismos pueden ser vulnerables

a enfermedades, parásitos, o morir por falta de este elemento.

10

Además se ha comprobado que no aceptan el alimento cuando se

presentan niveles bajos de oxígeno, lo cual conlleva a la pérdida de este insumo,

afectando el crecimiento y la tasa de conversión alimenticia (RODRIGUEZ et al.,

2001).

Cuadro 1. Calidad del agua por el nivel de oxígeno disuelto (OD)

Nivel de OD (mg/L) Calidad del agua

0.00 – 4.90 Mala: Algunas poblaciones de peces y macro

invertebrados empezarán a bajar

5.00 – 7.90 Aceptable

8.00 – 12.00 Buena

12.00 a más Muy buena o al agua puede airearse artificialmente

Fuente: Romero (1998.)

2.4.3. pH

Nos indica el comportamiento acido básico del agua. Es una

propiedad de carácter químico de vital importancia para el desarrollo de la vida

acuática. Es un buen parámetro de carácter general para determinar la calidad

de un agua. Habitualmente las aguas naturales tiene un cierto carácter básico

con unos valores de pH correspondidos entre 6.5 a 8.5 (ROMERO, 1998).

Según DIGESA (2007), el pH es uno de los parámetros indicadores

de la calidad del agua. Para que la desinfección con cloro sea eficaz es preferible

que sea un pH inferior a 8, es recomendable la medición in situ, de modo que no

se modifique los equilibrios iónicos. Debido al trasporte o una permanencia

prolongada en recipientes cambia cuando es llevado al laboratorio.

11

Según la EPA los valores recomendados son de 6.5 a 8.5 unidades

de pH. Según la OMS el pH recomendable de 6.5 y 9.5.

Según BARRENECHEA (2004), el pH del agua es de suma

importancia para la vida de los microorganismos acuáticos, ya que valores muy

altos o muy bajos ofrecen a los microorganismos un medio adverso, con

excepción de los quistes de amebas, que soportan pH tan altos como 13 o tan

bajos como 1. Por otra parte, la acción de los desinfectantes es fuertemente

influenciada por el pH del agua. De acuerdo con su naturaleza, cada

desinfectante tiene un rango de pH de mayor efectividad. Sin embargo, la

práctica demuestra que cuanto más alcalina es el agua requiere mayor dosis de

desinfectante para una misma temperatura y tiempo de contacto.

2.4.4. Conductividad eléctrica

Depende de la actividad de los tipos de iones disueltos y de la

temperatura a la que se realiza la medida.

La conductividad es una expresión numérica de la capacidad de una solución

para transportar una corriente eléctrica. Esta capacidad depende de la presencia

de iones y de su concentración total, de su movilidad, valencia y concentraciones

relativas, así como la temperatura de la medición.

El agua pura tiene muy poca conductividad, por lo que la medida de

la conductividad de un agua nos da una idea de los sólidos disueltos en la misma.

12

De la conductividad eléctrica, que indica la presencia de sales en el

agua, lo que hace aumentar su capacidad de transmitir una corriente eléctrica,

propiedad que se utiliza en mediciones de campo o de laboratorio, expresadas

en micro Siemens/l (µS/l) (DIGESA, 2007).

2.4.5. Sólidos Suspendidos Totales.

Según DIGESA (2007), los sólidos suspendidos totales son

productos de la erosión de los suelos, tales como limo, arena y virus, son

generalmente responsables de impurezas visibles. La materia suspendida

consiste en partículas muy pequeñas, que no se pueden quitar por medio de

deposición. Pueden ser identificadas con la descripción de características

visibles del agua, incluyendo turbidez y claridad, gusto, color y olor del agua. Los

sólidos totales pueden afectar negativamente a la calidad del agua o a su

suministro de varias maneras. Las aguas con abundantes sólidos totales sueles

ser de inferior potabilidad y pueden inducir una reacción fisiológica desfavorable

en el consumidor ocasional.

Teóricamente, los sólidos suspendidos totales contenidos en las

aguas son los residuos secos de los productos disueltos que las aguas poseen

en el momento de tomarse la muestra para análisis, es decir partículas como

arcillas, limo y otras, que son arrastradas por el agua de dos maneras: en

suspensión estable (disolución coloidales) o en suspensión que solo dura

mientras el movimiento del agua las arrastra.

13

Todo lo que el agua contenga, excepto el agua misma, puede

considerarse materia sólida. Sin embargo, la definición de sólido se refiere a la

materia que queda como residuos después de la evaporación y del secamiento

(JIMENO, 1998).

2.4.6. Demanda Bioquímica de Oxigeno

La Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO) mide la cantidad de

oxígeno necesaria o consumida para la descomposición microbiológica

(oxidación) de la materia orgánica en el agua, se define como la cantidad total

de oxígeno requerido por los microorganismos para oxidar la materia orgánica

biodegradable (CAN, 2005).

La DBO es un indicador importante para el control de la

contaminación de las corrientes donde la carga orgánica se debe restringir para

mantener los niveles deseados de oxígeno disuelto (SAWYER y MCCARTY,

2001). El aporte de carga orgánica acelera la proliferación de bacterias que

agotan el oxígeno, provocando que algunas especies de peces y otras especies

acuáticas deseables ya no puedan vivir en las aguas donde están presentes

dichos microorganismos (CAN, 2005).

Es útil para medir la capacidad de purificación de las corrientes

monitoreadas y sirve para orientar normas de control de calidad de los efluentes

descargados a estas aguas (SAWYER y MCCARTY, 2001).

14

Según DIGESA (2007), la DBO5 expresa la materia orgánica en

términos generales, pero no indican su composición, la cual es muy variada.

Como su origen proviene de organismos, y sus productos de degradación o de

metabolismo, se puede afirmar que la componen proteínas, carbohidratos y

lípidos y/o sus productos de degradación: aminoácidos, monosacáridos,

hidrocarburos, ácidos grasos, alcoholes, más otros componentes propios de los

vegetales como pigmentos. Determina la cantidad aproximada de oxígeno que

se requerirá para estabilizar biológicamente la materia orgánica presente.

Se define la DBO5 como el monto de oxígeno consumido por

microorganismos para oxidar biológicamente la materia orgánica, cuando se

incuba una muestra en la oscuridad durante 5 días a 20°C. Es un indicador de

consumo de oxigeno por microorganismo, el consumo de esta agua con alto

contenido de DBO5 presenta riesgos a la salud.

2.5. Aspectos generales del centro de prácticas

2.5.1. Programa AQUAREC

La finalidad del programa AQUAREC es desarrollar tecnologías y

herramientas de gestión para el uso y conservación del agua y sus recursos, así

también mejorar los sistemas acuícolas de producción en la Amazonía Peruana,

las cuales tienen como objetivos:

- Fomentar conocimientos e información para el establecimiento de

políticas de gestión del desarrollo que contribuyan al uso y conservación de

cuencas en la Amazonía Peruana.

15

- Generar conocimientos biológicos y pesqueros que contribuyan a la

identificación y adopción de medidas de manejo dirigidas a la conservación y uso

responsable de los recursos pesqueros en la Amazonía Peruana.

- Desarrollar tecnología económica, social, cultural y ambientalmente

viables, que contribuyan al desarrollo de la acuicultura en la Amazonía Peruana.

2.5.2. Características del área de estudio

El IIAP- Tingo María tiene una extensión de 11.5 ha, incluyendo

ambientes acuáticos y terrestres. Constituyen la infraestructura para el manejo

de cultivo de peces amazónicos, donde se desarrollan actividades de

investigación y producción de alevines de Piaractus brachypomus “paco” y

Colossoma Macropomum “gamitana” en convenio con el Municipio Provincial de

Leoncio Prado y la Universidad Nacional Agraria de la Selva así como también

se está iniciando el manejo y mejora del valor agregado de especies forestales

de la región Huánuco.

16

III. MATERIALES Y MÉTODOS

3.1. Ubicación de la zona de estudio

3.1.1. Ubicación política

La zona de estudio (Estación experimental del IIAP) se encuentra

ubicado en la región Huánuco, provincia de Leoncio Prado, distrito de José

Crespo y Castillo, accediendo por la localidad de Santa Lucia (Km. 25 de la

carretera Tingo María – Auca yacu), siguiendo una vía carrozable de

aproximadamente 2 km en sentido Este, próxima al caserío Saipai.

Cuadro 2. Ubicación geográfica.

Departamento: Huánuco

Provincia: Leoncio Prado

Distrito: José Crespo y Castillo

Localidad: Santa Lucía

3.1.2. Ubicación geográfica de la estación experimental del IIAP

La zona de estudio posee un área de 11.4792 hectáreas ubicadas

en la provincia de Leoncio Prado, departamento de Huánuco, el centroide de la

zona de estudio tiene como coordenadas geográficas:

Norte : 388020 m.

Este : 8990999 m.

17

La estación experimental cuenta con 6 estanques de piscicultura

para la investigación y producción de alevines de Piaractus brachypomus “paco”

y Colossoma Macropomum “gamitana”.

Cuadro 3. Estanques de la estación experimental.

Estanques Área (m2) Profundidad(m)

Estanque 1 1619 100

Estanque 2 1026 100

Estanque 3 1138 80

Estanque 4 1122 80

Estanque 5 1112 80

Estanque 6 1031 50

Figura 1. Croquis de los estanques de piscicultura de la estación experimental.

A

A

A

A

A

E6

E4

E3

E2

E1

A = Afluente

E = Efluente

18

3.1.3. Clima

Según el SENAMHI el área de estudio se encuentra ubicado en la

zona de selva alta, por lo que posee un clima tropical, cálido, húmedo y su

morfología nos da como resultado climas que varían de acuerdo a su altitud y

época del año, con características homogéneas en cuanto a su alta precipitación

pluvial.

3.1.4. Hidrografía

El área de estudio se encuentra en la cuenca del río Huallaga, sub

cuenca del río Tulumayo y micro cuenca Cruz de Motupe.

3.1.5. Fisiografía

La fisiografía de la zona corresponde a terrazas medias y altas de 0-

10 % de pendiente, colinas bajas de 10 – 35 % de pendiente.

3.2. Materiales y Equipos

3.2.1. Materiales

- Papel filtro

- Embudo de vidrio

- Matraz erlenmeyer

- Cooler de tecnopor

- Vasos precipitados

- Botellas de plástico y vidrio

- Etiquetas para rotulado

- Cuaderno de campo

19

3.2.2. Equipos

- Balanza analítica

- Multiparámetro Thermo, Orion 4 Star

- Oxímetro DO 6 PLUS

- GPS GARMIN 60 CSX

- Cámara digital

- Estufa

- Termómetro digital

3.3. Metodología

3.3.1. Medición de los parámetros de calidad del agua

Se midió los parámetros de calidad del agua in situ tales como el

oxígeno disuelto, temperatura, pH y conductividad y se colectó las muestras de

efluentes en botellas de vidrio de 500 ml (al borde) de cada uno de los estanques

para la determinación de la demanda bioquímica de oxígeno y sólidos

suspendidos totales en el laboratorio de la especialidad de conservación de

suelos y agua. La frecuencia de muestreo fue una vez por semana. Se trasladó

hacia el laboratorio las muestras en un cooler de tecnopor a 4-8°C para su

conservación. Los parámetros que se determinaron son:

20

Cuadro 4. Parámetros de calidad de agua que se determinaron

Parámetros Unidad de

medida Método usado

Referencia del método

Temperatura °C Campo 2250 B. Standard Methods

APHA-AWWA-WEF.

pH Valor de pH Potenciométrico

4500-H+ B. Standard

Methods APHA-AWWA-WEF.

Conductividad uS/cm Potenciométrico

2510 B. Standard Methods APHA-AWWA-WEF.

Oxígeno Disuelto

mg/L Electrodo de membrana

4500-O G. Standard

Methods APHA-AWWA-WEF.

Sólidos Suspendidos Totales

mg/L Gravimétrico 2540 D. Standard Methods

APHA-AWWA-WEF.

Demanda Bioquímica de Oxígeno

mg/L Prueba de 5 días 5210 B. Standard Methods

APHA-AWWA-WEF.

3.3.2. Determinación de temperatura

Se realizó la medición de la temperatura con un termómetro digital,

esta medición se realizó in situ, en los efluentes de los estanques, esto se realizó

cada semana, por un periodo de 1 mes y medio.

3.3.3. Determinación de pH y conductividad

Se realizó la medición del pH y conductividad utilizando el equipo

Multiparámetro marca Thermo, Orion 4 Star, esta medición se realizó in situ, en

los efluentes de los estanques, esto se realizó cada semana, por un periodo de

1 mes y medio.

21

3.3.4. Determinación de oxígeno disuelto

Se realizó la medición del OD utilizando el método de electrodo de

membrana, in situ con un oxímetro DO 6 PLUS, en los efluentes de los

estanques, esto se realizó cada semana, por un periodo de 1 mes y medio.

3.3.5. Determinación de sólidos suspendidos totales

Este parámetro se realizó en el laboratorio de la especialidad de

conservación de suelos y agua, en el cual se utilizó el método de Solidos totales

secados a 103°C- 105°C.)

Secar el papel filtro durante una hora a 103 - 105 °C hasta

obtener peso constante

Colocar en desecador durante 30 minutos

Pesar el papel filtro antes de usarlo

Colocar el filtro en el embudo y pasar 100 ml de muestra

Secar el filtro en un horno a 103 - 105 °C

Llevarlo al desecador durante 30 minutos y pesar hasta

alcanzar peso constante

SST (mg

l) =

(A − B)x106

muestra(ml)

Donde:

A = Peso filtro + residuo (g)

B = Peso filtro (g)

22

3.3.6. Determinación de la demanda bioquímica de oxigeno

Este parámetro se realizó en el laboratorio de la especialidad de

conservación de suelos y agua, en el cual se utilizó el método de ensayo de DBO

a cinco días.

Medir el OD de la muestra de agua y el OD de agua

destilada

Tomar 10 ml de muestra y colocar en una botella de DBO

de 500 ml y luego aforar hasta el borde con agua destilada.

Incubar a una temperatura constante de 20 °C por 5 días

Medir el OD final.

DBO5 = (ODi − ODb) +Vb

Vm(ODb − ODf)

Donde:

ODi = Oxígeno disuelto inicial de la muestra

ODb = Oxígeno disuelto del agua destilada

ODf = Oxigeno final

Vb =Volumen de botella

Vm =Volumen de la muestra

3.3.7. Estadística descriptiva de los parámetros de calidad de agua

Utilizando los valores obtenidos se realizó un análisis a través de

estadística descriptiva. Los resultados del procesamiento descriptivo de los

datos se colocaron en tablas que muestran para cada parámetro de calidad y

efluente los siguientes elementos estadísticos: Media aritmética, valor máximo,

valor mínimo, desviación estándar y coeficiente de variación.

23

IV. RESULTADOS

4.1. Valores obtenidos por cada semana de muestro.

Cuadro 5. Valores de los parámetros del efluente del estanque 1 evaluados

semanalmente.

Fecha Hora

Valores de los parámetros del efluente del estanque 1

pH Temperatura

°C

Oxígeno Disuelto (mg/L)

Conductividad (uS/cm)

DBO (mg/L)

SST (mg/L)

20/02/2014 8:30 6.79 28.9 5.67 84.1 63.24 268.2

26/02/2014 8:36 6.73 30 5.38 90 49.68 183.9

07/03/2014 8:41 6.95 29.6 3.38 102.9 77.4 190

13/03/2014 8:45 6.89 28.6 2.62 103.5 101.36 226.5

20/03/2014 6:50 6.63 29.8 3.92 103.6 85.44 242.5

28/03/2014 8:55 6.81 29.4 3.78 97.8 76.28 232.6


semanalmente.

Fecha Hora


pH Temperatura

°C



DBO (mg/L)

SST (mg/L)

20/02/2014 13:48 6.46 28.6 2.52 163.1 55.59 192.7

26/02/2014 14:00 6.79 31.4 6.18 172.6 52.37 145.6

07/03/2014 14:10 7.2 29.7 2.85 181.9 87.66 168.7

13/03/2014 14:15 6.99 28.6 3.73 183.4 73.29 146

20/03/2014 14:18 6.95 30 4.82 185.2 46.84 171.4

28/03/2014 14:23 6.79 29.7 3.67 176.6 62.67 156.2

24


semanalmente.

Fecha Hora


pH Temperatura

°C



DBO (mg/L)

SST (mg/L)

20/02/2014 10:16 6.37 28.1 4.13 76.6 101.7 255.3

26/02/2014 10:21 6.53 31 5.43 90.7 56.62 219

07/03/2014 10:28 7.13 29.4 4.1 88.3 94.41 203.3

13/03/2014 10:35 6.91 28 5.59 93.2 74.65 225.3

20/03/2014 10:42 6.89 29.6 4.65 97.8 62.67 196.1

28/03/2014 10:47 6.56 29.3 4.28 91.3 78.28 227.7

Cuadro 8. Parámetros Valores de los parámetros del efluente del estanque 4

evaluados semanalmente.

Fecha Hora


pH Temperatura

°C



DBO (mg/L)

SST (mg/L)

20/02/2014 8:14 6.53 27.7 4.76 87.9 73.33 245.7

26/02/2014 8:25 6.75 31.7 4.44 104.5 65.67 193.2

07/03/2014 8:35 7.21 28.5 4.15 109.4 105.42 179.8

13/03/2014 8:40 7.36 27.4 6.42 113.5 52.98 222.8

20/03/2014 8:46 6.96 28.3 4.54 103.8 82.06 206.8

28/03/2014 8:59 7.15 27.9 4.38 106.3 76.88 189.9

25


semanalmente.

Fecha Hora


pH Temperatura

°C



DBO (mg/L)

SST (mg/L)

20/02/2014 11:22 7.12 29 7.85 157.3 77.52 128.3

26/02/2014 11:26 8.19 32 8.1 121.2 52.2 123.6

07/03/2014 11:32 7.91 28.9 7.18 151 102.08 134

13/03/2014 11:38 7.89 28.1 7.77 129.8 51.83 157.3

20/03/2014 11:45 8.76 30.4 8.6 119.6 107.85 109.9

28/03/2014 11:52 7.96 29.9 7.83 145.5 80.33 120.5

Figura 2. Variación del pH de los efluentes en cada semana.

6

6.5

7

7.5

8

8.5

9

1 2 3 4 5 6

pH

Semanas

E1

E2

E3

E4

E6

26

Interpretación:

Según la figura 2 los valores más altos de pH lo obtuvo el efluente

del estanque 6, los cuales fueron variando en el transcurso de las semanas

obteniendo un valor máximo de 8.76 y un mínimo de 7.12, el efluente estanque

3 obtuvo el valor mínimo de 6.37 en la primera semana.

Figura 3. Variación de la temperatura de los efluentes en cada semana.

Interpretación:

Según la figura 3 la temperatura presenta valores variados, el

efluente del estanque 6 registró el valor más alto de 32 °C en la segunda

semana y el efluente del estanque 4 registró el valor más bajo de 27.4 °C en

la cuarta semana.

26

27

28

29

30

31

32

1 2 3 4 5 6

Tem

per

atu

ra (

°C)

Semanas

E1

E2

E3

E4

E6

27

Figura 4. Variación del oxígeno disuelto de los efluentes en cada semana.

Interpretación:

Según la figura 4 los valores más altos de OD lo obtuvo el efluente

del estanque 6, los cuales fueron variando en el transcurso de las semanas

obteniendo un valor máximo de 8.6 mg/L y un mínimo de 7.18mg/L, el efluente

del estanque 1 obtuvo el valor mínimo de 2.62 mg/L en la primera semana.

Figura 5. Variación de la conductividad de los efluentes en cada semana.

2

3

4

5

6

7

8

9

1 2 3 4 5 6

Oxi

gen

o D

isu

elto

(m

g/L)

Semanas

E1

E2

E3

E4

E6

70

90

110

130

150

170

190

210

1 2 3 4 5 6

Co

nd

uct

ivid

ad (

uS/

cm)

Semanas

E1

E2

E3

E4

E6

28

Interpretación:

Según la figura 5 el valor más alto de conductividad lo obtuvo el

efluente del estanque 2, los cuales fueron variando en el transcurso de las

semanas obteniendo un valor máximo de 185.2 uS/cm y un mínimo de 163.1

uS/cm, el efluente del estanque 3 obtuvo el valor mínimo de 76.6 uS/cm en la

primera semana.

Figura 6. Variación de la DBO5 de los efluentes en cada semana.

Interpretación:

Según la figura 6 la DBO5 presentan valores variados, el efluente

del estanque 6 registró el valor más alto de 107.62 mg/L en la quinta semana

y el efluente del estanque 2 registró el valor más bajo de 46.84mg/L en la

quinta se semana.

40

50

60

70

80

90

100

110

1 2 3 4 5 6

DB

O5(

mg/

L)

Semanas

E1

E2

E3

E4

E6

29

Figura 7. Variación de los SST de los efluentes en cada semana.

Interpretación:

Según la figura 6 los SST presentan valores variados, el efluente

del estanque 1 registró el valor más alto de 268.2 mg/L en la primera semana

y el efluente del estanque 6 registró el valor más bajo de 109.9 mg/L en la

quinta semana.

100

120

140

160

180

200

220

240

260

1 2 3 4 5 6

SST

(mg/

L)

Semanas

E1

E2

E3

E4

E6

30

4.2. Análisis a través de la metodología de estadística descriptiva.

Cuadro 10. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 1.

Parámetro pH Temperatura

°C



DBO5 (mg/L)

Solidos Suspendidos Totales (mg/L)

Media 6.80 29.38 4.13 96.98 75.57 223.95

Desviación estándar 0.11 0.54 1.18 8.21 17.83 32.06

Máximo 6.95 30.00 5.67 103.60 101.36 268.20

Mínimo 6.63 28.60 2.62 84.10 49.68 183.90

Coeficiente de Variación 1.67% 1.83% 28.57% 8.46% 23.59% 14.32%



°C



DBO5

(mg/L)


Media 6.86 29.67 3.96 177.13 63.07 163.43


Máximo 7.20 31.40 6.18 185.20 87.66 192.70

Mínimo 6.46 28.60 2.52 163.10 46.84 145.60


31



°C Oxígeno Disuelto

(mg/L) Conductividad

(uS/cm) DBO5 (mg/L)


Media 6.73 29.23 4.70 89.65 78.06 221.12


Máximo 7.13 31.00 5.59 97.80 101.70 255.30

Mínimo 6.37 28.00 4.10 76.60 56.62 196.10






(uS/cm) DBO5

(mg/L)


Media 6.99 28.58 4.78 104.23 76.06 206.37


Máximo 7.36 31.70 6.42 113.50 105.42 245.70

Mínimo 6.53 27.40 4.15 87.90 52.98 179.80


32

Cuadro 14. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente estanque 6.




(uS/cm)

DBO5

(mg/L) Solidos Suspendidos

Totales (mg/L)

Media 7.97 29.72 7.89 137.40 78.64 128.93


Máximo 8.76 32.00 8.60 157.30 107.85 157.30

Mínimo 7.12 28.10 7.18 119.60 51.83 109.90


33

4.3. Comparación de los valores obtenidos con la normatividad nacional

Cuadro 15. Normativa nacional de descarga de efluentes

Parámetro

Límites de descarga a un

cuerpo de agua dulce.

DBO5

(mg/L) ≤ 100

OD (mg/L)

***

pH 5 a 9

Temperatura (°C)

≤ 35


***

SST (mg/L)

≤ 100

Fuente: MINAM, Normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes: recurso agua

Figura 8. Comparación de los valores obtenidos de DBO5 cada efluente con la

normativa nacional.

0.00

20.00

40.00

60.00

80.00

100.00

120.00

E1 E2 E3 E4 E6

DBO5 (mg/L)

Limite de descarga

34

Interpretación:

Los valores promedio obtenidos de DBO5 durante todo el tiempo

de muestreo de los efluentes de cada estanque cumplen con lo establecido

en los límites de descarga a un cuerpo de agua dulce, siendo el efluente del

estanque 6 con mayor valor promedio en DBO5 en el agua (78.64 mg/L).

Figura 9. Comparación de los valores obtenidos de pH de cada efluente con la

normativa nacional

Interpretación:

Los valores promedio obtenidos de pH todos los efluentes

cumplen con lo establecido en los límites de descarga a un cuerpo de agua

dulce ya que no sobrepasan el rango establecido.

0.00

1.00

2.00

3.00

4.00

5.00

6.00

7.00

8.00

9.00

10.00

E1 E2 E3 E4 E6

pH

35

Figura 10. Comparación de los valores obtenidos de temperatura de cada

efluente con la normativa nacional

Interpretación:

Los valores promedio obtenidos de Temperatura todos los

efluentes cumplen con lo establecido en los límites de descarga a un cuerpo

de agua dulce ya que no sobrepasan el límite establecido.

0.00

5.00

10.00

15.00

20.00

25.00

30.00

35.00

E1 E2 E3 E4 E6

Temperatura (°C)

36

Figura 11. Comparación de los valores obtenidos de Sólidos suspendidos totales

de cada estanque con la normativa nacional

Interpretación:

Los valores promedio obtenidos de SST, todos los estanques no

cumplen con lo establecido en el Límites de descarga a un cuerpo de agua

dulce ya que sobrepasan el límite establecido en la normativa.

0.00

25.00

50.00

75.00

100.00

125.00

150.00

175.00

200.00

225.00

E1 E2 E3 E4 E6

SST (mg/L)

37

V. DISCUSIÓN

Según las normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes:

recurso agua, los valores de pH, temperatura y DBO5 obtenidos para los efluentes de

los estanques están dentro de los rangos establecidos en el criterio de límite de

descarga a un cuerpo de agua dulce. Los valores de SST obtenidos en los efluentes

exceden los rangos establecidos en el criterio de límite de descarga a un cuerpo de

agua dulce.

Según (ROMERO, 1998), la calidad del agua por el nivel de oxígeno

disuelto (cuadro 1) en el rango de O.D. de 0 – 4.9 mg/L se considera agua de calidad

mala y de 5 – 7.9 mg/L se considera agua aceptable. El valor de O.D. del efluente del

estanque 6 es de 7.89 mg/L se encuentra dentro de lo aceptable y los demás efluentes

se encuentran dentro del rango agua de mala calidad.

Los datos de pH en las semanas muestreadas en los efluentes de los

estanques muestran valores menores de dispersión, estas variaciones pueden

deberse a que el pH del agua se debe sobre todo al equilibrio carbónico y a la actividad

vital de los microorganismos acuáticos. La secuencia de equilibrios de disolución de

CO2 en el agua, y la subsiguiente disolución de carbonatos e insolubilización de

bicarbonatos, alteran drásticamente el pH de cualquier agua. Asimismo, la respiración

de los organismos heterótrofos en el agua produce dióxido de carbono modificando el

pH del medio acuático, (ALVAREZ, 2006).

38

La variación de los valores obtenidos por cada semana de temperatura en

los efluentes de cada estanque tiene menor dispersión, estas variaciones pueden

verse influenciadas por la relación de la intensidad de la radiación con la profundidad

del agua, las capas superiores se calientan más que las capas de agua profunda. Ello

causa una diferencia de temperatura a medida que aumenta la profundidad de la

columna de agua y eventualmente se produce una estratificación vertical de las

diferentes masas de agua (CHANG, 2009).

EL oxígeno disuelto, también presenta mayor variación en los efluentes

de cada estanque, esto se debe a la que el oxígeno disuelto es un gas muy relevante

en dinámica de aguas. Su solubilidad es función de varios factores: temperatura,

presión, coeficiente de solubilidad, tensión de vapor, salinidad y composición

fisicoquímica del agua. Además, el porcentaje de saturación del oxígeno en agua

depende de la turbulencia y de la superficie de contacto entre el gas y el agua

(ALVAREZ, 2006).

Según (BOYD Y GAUTIER 2000), las descargas durante el intercambio

de agua y la cosecha contienen nutrientes, materia orgánica y sólidos en suspensión.

Estas substancias representan un potencial de contaminación ya que pueden

deteriorar la calidad de agua en los cuerpos receptores. Estos efluentes son

considerados como el mayor problema ambiental en el cultivo de los peces; A pesar

de que el agua de los efluentes de los estanques no tienen altas concentraciones de

contaminantes de materia orgánica y generalmente posee valores aceptables en el

pH y temperatura, la variable que parece ser más problemática en cuanto a la calidad

del agua en los efluentes es la cantidad de partículas sólidas en suspensión tiende a

ser algo más alto a lo establecido a la normatividad.

39

VI. CONCLUSIONES

1. Los valores de DBO5, pH y de la temperatura de los efluentes de los estanques

cumple con las Normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes. Los

valores obtenidos de solidos suspendidos totales de los efluentes de los estanques

no cumplen con las normas de calidad ambiental y descargas de efluentes

2. Los valores promedio de O.D. del efluente del estanque 6, fluctuaron dentro del

rango aceptable de calidad de agua, mientras que los valores de promedio O.D.

de los efluentes de los otros estanques rango de mala calidad de agua.

3. Los valores obtenidos de los parámetros de pH, temperatura y oxígeno disuelto en

el efluente del estanque 6, son mayores a comparación de los valores de los otros

efluentes, esto se debe a que el estanque 6 presenta menor profundidad.

40

VII. RECOMENDACIONES

1. Deben aplicarse los conceptos y recursos de las tecnologías limpias, emisión

cero y los estudios de impacto ambiental, e incentivar la investigación científica,

procurando una piscicultura sostenible o responsable. Con esto se evitarían

problemas a la salud humana y de los peces cultivados.

2. Aplicar métodos que pueden ser utilizados para disminuir el impacto ambiental

causado por los efluentes; uno de los método a aplicar seria la disminución de

la cantidad de efluentes aplicando mejores prácticas de manejo, como no usar

tasa de siembra ni de alimentación superiores a la capacidad de carga del

efluente, fertilizar solamente lo necesario para promover el fitoplancton y

reducir el recambio de agua tanto como sea posible, esta práctica es efectiva

para reducir impactos ambientales en la calidad del agua.

3. Mejorar la calidad del efluente de los estanques antes de ser vertidos al

ambiente, las técnicas a utilizar serian la sedimentación, remoción de sólidos

hasta la filtración del efluente a través de manglares artificiales, plantas, algas,

moluscos, éstos últimos métodos conocidos como biotransformación; un dato

importante para la toma de decisiones es que la descarga de un estanque es

principalmente contaminante al final del volumen del efluente (20 – 25%)

cuando llevan las mayores cantidades de nutrientes y STS.

41

VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ALVAREZ, 2006. Calidad del Agua .Panamá. ACP. 240 p.

ANA 2009. Ley de Recursos Hídricos N° 29338 [En línea]:

(http://www.ana.gob.pe/media/532864/ley%2029338.pdf, 20May. 2014).

APHA, AWWA, WPCF. 1992. Métodos Normalizados Para El Análisis De Aguas

Potables y Residuales. España Ediciones Díaz de Santos, S.A.. 1143p.

BARRENECHEA, A. 2004. Aspectos fisicoquímicos de la calidad de agua. Lima, Perú.

58p.

BOYD, C. Y GAUTIER, D. 2000. Effluent composition and water quality standards.

Global Aquaculture Advocate.66p.

CHANG, J. 2009.Limnologia. Guayaquil, Ecuador. ESPOL. 38p

EPA. 2002. Office of Water. National Recommended Eater Quality Criteria-Correction.

Abril de 2002. EPA-822-R-02-047, ítem 1.4, p. 18.

DIGESA. 2007. Análisis Microbiológico de Aguas Residuales por Técnicas de los

Tubos Múltiples de Fermentación (NMP). Lima, Perú. 31p.

IIAP, 2004. Avances del Desarrollo en la Acuicultura. Editorial R&F, Perú. 57p.

IIAP, 2007. Manual de Construcción de Estanques para Piscicultura. Tingo María,

Perú. 19p.

http://www.ana.gob.pe/media/532864/ley%2029338.pdf

42

JIMENO, E. 1998. Análisis de aguas y desagües. Universidad Nacional de Ingeniería.

Lima, Perú. 76p.

MINAM, Normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes: recurso agua. [En

línea]:(http://cdam.minam.gob.pe/publielectro/calidad%20ambiental/normasr

ecursoagua.pdf, 20May.2014)

RODRIGUEZ, G., VICTORIA, D., CARRILLO, A. 2001. Fundamentos de Acuicultura

continental. 2ed. Bogotá, Colombia, Grafimpresos Quinteros. P. 418.

ROMERO, J. A. 1998. Calidad de Aguas. Editorial, NOMOS S.A. Madrid, España. 410

p.

SENHORINI, J. Y FRANZOSO, A. 1994. Influencia da productividad dos viveiros e a

contribuicao da racao na larvicultura do “pacu” Piaractus mesopotamicus. Bol

tec. CEPTA. 7 (único):27, 40 p.

SIERRA, R. 2011. Calidad del agua; Evaluación y diagnóstico. 1ed. Bogotá,

Colombia, Ediciones de la U. p. 460.

TACON A, Y FORSTER I. 2003. Aquafeeds and the environment: policy implications.

Aquaculture. 226p.

TROELL M Y NEORI A. 2005. Biological wastewater treatment in aquaculture–more

than just bacteria. World Aquaculture. 36 p.

http://cdam.minam.gob.pe/publielectro/calidad%20ambiental/normasrecursoagua.pdf

http://cdam.minam.gob.pe/publielectro/calidad%20ambiental/normasrecursoagua.pdf

42

IX. ANEXOS

44

Figura 12. Vista panorámica de los estanques en la estación experimental.

Figura 13. Toma de muestras en los efluentes de los estanques.

45

Figura 14. Obtención de datos de parámetros fisicoquímicos in-situ.

Figura 15. Muestras recolectadas de los efluentes de los estanques.

46

Figura 16. Proceso para la medición de solidos suspendidos totales.

Figura 17. Paso de la muestra por los filtros para la determinación de los SST.

47

Figura 18. Mapa de ubicación de los estanques de la estación experimental.

caracterización de los efluentes en los estanques de piscicultura del ...

Documents

Transcript of caracterización de los efluentes en los estanques de piscicultura del ...