Claves para el diagnóstico y control vacunal del aborto ... · vacunal del aborto infeccioso...

Jaime Maldonado. MV, MSc, ECPHM Diplomate

Unidad Científica de Apoyo a Marketing - [email protected]

Julio 15 de 2016

Claves para el diagnóstico y controlvacunal del aborto infeccioso porcino

• Preguntas.

• Mensajes.

• Algunos conceptos a tener en cuenta.

• Principales patógenos abortígenos en porcino.� Acerca de su diagnóstico.� Acerca de su control (papel de la vacunación).

CONTENIDO

• Diversas causas infecciosas y no infecciosas.

• El diagnóstico del AP es habitualmente frustrante.

• ↑↑↑ % no diagnosticado.

• Siempre hay un mayor o menor grado de autolisis

en útero.

G E S T A C I O NFallo en la implantación Retorno a estros irregulares

Fallo en el progreso de la preñezExpulsión de los embriones o fetos

↑ no viables al partoCamadas reducidas

ABORTO

1. Aspectos generales.

Causas de aborto en porcino

No infecciosas

Infecciosas

Venéreas

Ascendentes

Oportunistas, ambientales

Patógenos presentes en material

abortado

Primarios

Secundarios

Son pocos los patógenos de los cuales hay evidencia de ser abortígenos primarios en porcino.

2. Causas de aborto.

Patógenos abortígenos en porcino: Virus (6/11)

Patógeno

Parvovirus porcino

Virus del PRRS

Virus de Aujeszky

Virus Influenza (?)

Circovirus porcino tipo 2

Virus de la peste porcina clásica

Virus de la peste porcina africana

Virus de la fiebre aftosa

Enterovirus, Teschovirus, Citomegalovirus, Rubulavirus,

Virus de la encéfalomiocarditis

Virus de la encefalitis japonesa B

Vacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Si Si

Si Si

Si Si

Si +/-

Si Si

Si Si

No -

Si No

No -

No -

No -

Observaciones

PPV1

Varios subtipos

Eficacia vacunal?

No económicamente importante

No económicamente importante

Australasia

Patógenos abortígenos en porcino: Bacterias – parásitos (2/7)

*Subdiagnosticadas?: Basso et al. 2015. Suiza.

37,3% de 58 granjas (infertilidad) alojan cerdas seropositivas a T. gondii. Fetos PCR*

Patógeno

Leptospiras

Erisipelas

Brucelas (B. suis)

Bacterias varias

Clamidias (C. abortus y otras)

Micobacterias

Toxoplasma gondii

Vacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Si Si

Si Si

No -

No -

No -

No -

Observaciones

Serovares Pomona, Bratislava yTarrasovi. Otros menos frecuentes

Infección ascendente → metritis: S. aureus, Streptococcus spp,

Salmonella spp, P. multocida,

Trueperella spp,

L. monocytogenes, E. coli.

Subestimadas?*

Mycobacterium avium subspecies

hominissuis. Esporádico*

Esporádico. Zoonosis*

Que se persigue con las vacunaciones?

PatógenoVacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Proteger a la

cerda?

Proteger al

feto?

Parvovirus porcino Si Si

Virus del PRRS Si Si

Virus de Aujeszky Si Si

Virus Influenza Si +/-

Circovirus porcino tipo 2

Si Si


Si Si

Leptospiras Si Si

Erisipelas Si Si

3. Objetivo de las vacunaciones

• ¿Afecta solo a la cerda?

• ¿Atraviesa la placenta y afectan al feto?

• ¿Afecta a la cerda y al feto?

Infección de la cerda gestante con bacteremia o

viremia.

Clasificación según morfología macroscópica

Clasificación según relación corion - pared uterina

Tipos de placenta en algunas especies animales domésticas

Furukawa, et al. 2014

Clasificación según morfología macroscópica

Clasificación según relación corion - pared uterina

Furukawa, et al. 2014

Tipo de placenta en el cerdo

Difusa

Epiteliocorial

Karniychuk, et al. 2013

Corion

fetal

Placenta

materna

En porcino la sangre fetal y la materna se separan por seis capas de tejido “yuxtapuestos”, es decir sin superposición ni nexo de unión.

• El transporte de substancias a través de la barrera placentariadepende en gran medida de su grosor y extensión (y demecanismos de transporte activo).

• En porcino (y otras especies) los anticuerpos no se transfierenpor la placenta (calostro).

SANGRE MATERNAendotelio materno

tejido conectivo endometrial

epitelio uterino

trofoblasto

mesénquima placental fetal

Endotelio fetal

SANGRE FETAL


• ¿Cuales de los patógenos afectan a la cerda?

• ¿Cuales de los patógenos atraviesan la placenta yafectan al feto?

• ¿Como se produce la infección en el útero?

• ¿En este contexto, que persiguen las vacunaciones?


SANGRE MATERNAendotelio materno

tejido conectivo endometrial

epitelio uterino

trofoblasto

mesénquima placental fetal

Endotelio fetal

SANGRE FETAL

PatógenoVacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Proteger a la

cerda?

Proteger

al feto?Observaciones

Parvovirus porcino Si Si No Si Transplancentaria

Virus del PRRS Si Si Si?

(HP-PRRSV)

Si Transplancentaria

Virus de Aujeszky Si Si Si Si Transplancentaria

Virus Influenza Si +/- Si? No No transplacentaria

Circovirus porcino tipo 2 Si Si Si? Si Transplacentaria


Si Si Si Si Transplancentaria

Leptospiras Si Si Si Si Transplancentaria

Erisipelas Si Si Si Si ?

Nathues 2011 (Alm) Maldonado 2005 (Esp)

Parvovirus porcino 2,2* 0*

Virus del PRRS 6,8* 9*

Virus de Aujeszky - 0*

Virus Influenza - -

Circovirus porcino tipo 2 14,7* 1*

Leptospiras 0,8*

Erisipelas - -

Brucelas (B. suis) - -

Bacterias varias 75** 60***

Clamidias spp. 1,0*

Micobacterias - -

Toxoplasma gondii - -

*material abortado, **hisopos cervicales, ***urogenital

• Muestras tomadas, guardadas a Tºambiente.• Analizadas por aislamiento vírico y PCR, tanto frescas como a los 1, 2, 3, 4,

7, 14 y 21 días después de tomarlas.

• Resultados:• La PCR fue más sensible que el aislamiento en muestras frescas.• La PCR fue más sensible que el aislamiento en muestras autolíticas.

� Vida media del RNA intacto en tejidos = 0.95 to 2.55 días.

� Vida media del virus infectivo = 0.21 to 0.31 días.

The effect of tissue degradation on detection of infectious virus and viral RNA to diagnose classical swine fever virus.

Weesendorp 2010.

Como afecta la degradación de las muestras sobre la infectividad del PPCv y la estabilidad del RNA viral?.

Condiciones de conservación de las muestras

PatógenoVacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Proteger a

la cerda?

Proteger al

feto?Observaciones

Parvovirus porcino Si Si No Si Transplacentaria

Acerca del diagnóstico

• En la cerda: Subclínico. No se realiza de rutina.• Serología IHA/ELISA para seguimiento de

vacunaciones.

• En el material abortado: Rutina en fetos• PCR PPV1. Prevalencia baja → Resultado de la

vacunación sistemática?

PatógenoVacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Proteger a

la cerda?

Proteger al

feto?Observaciones

Parvovirus porcino

Si Si No Si

Acerca de la vacunas

• Multivalentes: PVP-ERY; PVP-ERY-Leptospiras.

• Inactivadas, intramusculares, revacunaciones 2X-21d.

• ↑↑↑ tiempo en el mercado.• Protegen frente a virus actuales?• Protegen frente a “nuevos virus”?• Del todo seguras?

Protegen frente a virus actuales?: Prueba in vitro trasvacunación (PPV-ERY) – desafío con cepas recientes (>2010).

1. PCR→Aislamiento vírico en CC a partir de casos >2010 España.o Abortos con sospecha clínica de PPV.

2. Caracterización molecular (seq.)o PPV1 “clásicos actuales”.

3. Inhibición de la hemaglutinación cepas virus 1, 2 y 3.

con suero post-vacunación (NADL-2).

Búsqueda activa de cepas actuales (casos de diagnóstico HIPRA >2010)

GRUPO A

-12 cerdas vacunadas (NADL-2) 2x-No desafiadas.-Vacuna PPV-ERY (NADL-2)

GRUPO B

-5 cerdas vacunadas (NADL-2) 2x-Desafiadas (NADL8) a los 51dpv.-Sueros a los 48dpd

Ensayo cruzado de inhibición de la hemaglutinación.

Valores de media geométricaMaldonado, 2012.

Suero post-vacunación++ Suero post-vacunación/desafío+++

Virus campo >2010 Virus desafío Virus vacunal

Suero V1 V2 V3 NADL-8a NADL-2b

Grupo A

NADL-2b

108 85 192 161 171

Grupo B

NADL-2b

NADL-8a

776 1783 1024 3569 1552

Reacción heteróloga

Reacción homóloga


Grupo B

NADL-2b

NADL-8a

776 1783 1024 3569 1552

Virus campo >2010 Virus desafío Virus vacunal


Grupo A

NADL-2b

108 85 192 161 171

• Las vacuna* es capaz de inducir respuesta de

anticuerpos suficiente frente a cepas actuales

(heterólogas) del virus “clásico”.

Conclusiones:

• Los animales vacunados, al “reinfectarse” en la granjageneran un importante incremento de título de

anticuerpos (booster).

6 cerdas vacunadas 2x con vacuna PPV-ERY (NADL-2) → Sueros a los 51dpv → HI y seroneutralización.

Cepa genotipo 2 (27ª) y análisis: Prof. U. Truyen, Leipzig, Alemania.

Nuevos virus: Protección heteróloga?: Prueba in vitro tras vacunación (PPV-MR) – desafío con cepas variantes (27ª)*

Maldonado 2012.

Inhibición de la hemaglutinación y seroneutralización homólogas y heterólogas

HI positivo ≥ 1:80; HI= inhibición hemaglutinación; VN= seroneutralización ; * Cepa homóloga; ** cepa heteróloga

• La vacuna comercial (NADL-2) indujo una

respuesta inmune humoral neutralizante frentea un virus (27a) genéticamente divergente.

Conclusiones:

• Se observan diferencias individuales frente a un

misma vacuna, independientemente del virusempleado en el análisis serológico.

Nuevos virus: Protección heteróloga?: Prueba in vitro tras vacunación (PPV-MR) – desafío con cepas variantes (27ª)*

• Las 5 principales vacunas del mercado EU. 2X separadas 21 días• 66 cerdas naïve, 12 por cada vacuna y 6 animales control.• SerologíaELISA Erisipelas y ELISA PPV.

UCAM – HIPRA 2016.

….y al emplear diferentes vacunas hay diferencias en larespuesta humoral?. Prueba comparativa de vacunas

Los anticuerpos son muy

importantes en la respuesta

inmune neutralizante frente

al virus.

% animales seropositivos vacuna A

% animales seropositivos vacuna B

% animales seropositivos vacuna C

% animales seropositivos vacuna D

% animales seropositivos grupo control

Porcentaje de animales seropositivos a PPV1

mediante ELISA a lo largo del tiempo (107dpv)

Media del título de anticuerpos en

los animales seropositivos a PPV1


Cut off del ensayo

A

B

C

D

Promedio de títulos ELISA vacuna A

Promedio de títulos ELISA vacuna B

Promedio de títulos ELISA vacuna C

Promedio de títulos ELISA vacuna D

Promedio de títulos ELISA grupo control

Conclusiones:

• No todas las vacunas frente a PPV (2x-21d) inducen elmismo nivel y duración de seroconversión en animalesnaïve, no infectados.

• Influencia del adyuvante (?).

% animales seropositivos vacuna A

% animales seropositivos vacuna B

% animales seropositivos vacuna C

% animales seropositivos vacuna D

% animales seropositivos grupo control

Promedio títulos ELISA vacuna A

Promedio títulos ELISA vacuna B

Promedio títulos ELISA vacuna C

Promedio títulos ELISA vacuna D

Promedio títulos grupo control

A

B

C

D

Porcentaje de animales seropositivos a Erisipelas

mediante ELISA a lo largo del tiempo (107dpv).

Media del título de anticuerpos a Erispelas

en los animales seropositivos a PPV1

• Similar comportamiento para Erisipelas

= Diferencias en la composición de lavacuna (?).


• ELISA 1 y ELISA 2

• Panel de 458 sueros conocidos• Grupo 1: 111 negativos

• Grupo 2: 122 positivos porinfección

� 87 de vacunación-desafío� 35 de infección natural.

• Grupos 3A-3E: 225 positivos porvacunación

� con 5 vacunas comerciales.

Es fiable la serología comercial ELISA para Erisipelas?

EXPERIMENTAL AND FIELD EVALUATION OF THE PERFORMANCE OF TWO ELISA

METHODS TO DETECT SEROCONVERSION AGAINST SWINE ERYSIPELAS IN PIGS.Sánchez-Matamoros, 2016 (IPVS Dublin).

Ensayo Sensibilidad Especificidad PPV 1 NPV 2

ELISA 1 100% 100% 1 1

ELISA 2 97.54% 98.73% 0.99 0.961 valor predictivo de los positivos; 2 valor predictivo de los negativos

Comportamiento delos ELISAs 1 y 2.

Dos ELISAs comercialesampliamente utilizadospresentan excelentescaracterísticas analíticas

PatógenoVacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Proteger a la

cerda?

Proteger


Virus del PRRS Si Si No? (Fever)(HP-PRRSV)



• EN LA CERDA: Serología masiva• Serología ELISA de rutina para determinar “status”

sanitario y para seguimiento vacunal.

• EN EL MATERIAL ABORTADO: Rutina en fetos• PCR PRRSV tipos 1 o 2. Prevalencia de infección en

fetos variable.

Es el material abortado una buena muestra para detectar PRRSv?

• Tailandia (n= 89)o Abortoo Momificadoso Nacidos

muertos

• PCR ORF7• Órganos y CU

Prevalence of porcine reproductive and respiratory syndrome virus detection in aborted fetuses, mummified fetuses and stillborn piglets using quantitative polymerase chain reaction.OLANRATMANEE. J. Vet. Med. Sci. 77(9). 2015

= 65.6%PCR+EU/US

• Alemania (n= 2328)

o Abortoo Sueroo Genital cerda

• PCR ORF7

• 60-70% de los casos de falloreproductivo no son infecciosos.

• Desaconseja usar fetos u otromaterial abortado para el diagnostico (suero de nacidosdábiles).

Infectious agent detection in reproductive disorders in swine herds. Retrospective evaluation of diagnostic laboratory examinations.Nathues, 2011


= 6.8% PCR+US

= 1.8% PCR+EU

• Españao Abortos

• PCR ORF7• Órganos

• 293 fetos y nacidosmuertos de 100 granjascon fallo reproductivo.

Identification of viral pathogens in aborted fetuses and stillborn piglets from cases of swine reproductive failure in Spain.Maldonado. Vet J. 169(3). 2005.


= 9% PCR+

Seguimiento sistemático semanal de una empresaintegradora española.

Diagnos - Hipra

• Españao Abortos

• PCR ORF7• Órganos

= 0% PCR+

• 2220 fetos y nacidos muertos

diversas granjas con falloreproductivo. “status positivo”


� Desafío (alta virulencia) y observación durante 21 díasdespués de la exposición.

� 114 cerdas� 85 (+/-1) dg

Variation in Fetal Outcome, Viral Load and ORF5 Sequence Mutations in a Large Scale Study of Phenotypic Responses to Late Gestation Exposure to Type 2 Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome VirusLadinig 2014

Cuales y cuantos fetos?, la placenta? El CU?

• 9% de los fetos vivos manchados de

meconio (MEC).

• > RNA de virus en fetos MEC.• Timo, suero y endometrio.

• Grupo control sin fetos MEC.

Se postula MEC como indicador tempranode infección por PRRSV

• La infección por PRRSv:• Redujo el peso de los fetos viables en aprox. 17%.• Causó mortalidad en 41±22.8%

Feto manchado de meconioHIPRA

Ladinig 2014

Cuerno izquierdo Cuerno derecho

Gross and microscopic lesions inporcine fetuses infected withporcine reproductive and respiratorysyndrome virus.Kelly 1996

• En infección transplacentaria por PRSSV:• Lesiones hemorrágicas en cordón umbilical (VIREMICOS)

o En tramos.o Todo el cordón.o Arteritis umbilical necrotizante.

• Distensión de cordón 2-3 veces su grosor.

• Endometritis y miometritis en cerdas.

MEC

Se corta flujo sanguíneo y mueren por hipoxia

• Recomendaciones de toma de muestras en casos de aborto y sospecha de PRRS:

• Fetos MEC: 3-5. Indicador de estres (Rootwelt 2015) e indicador temprano de infección por PRRSv (Ladinig2014).

• Fetos MEC y fetos DEC: 3-5 (de color blanco, sin sangre en el cordón umbilical).

• Evitar autolíticos y momificados (<20cm L).

• Evitar viables de apariencia normal

• 25.6% de fetos inoculados negativos en timo y suero. AUNQUE positivos en endometrio asociado• 97.7% de apariencia normal

PatógenoVacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Proteger a la

cerda?

Proteger


Virus del PRRS Si Si No? (Fever)(HP-PRRSV)


Acerca de las vacunas

“Maximum shelf-life after reconstitution”.

Margen de tiempo máximo que puede transcurrir desde la mezcla hasta la vacunación, dentro del cual se puede garantizar que el virus no pierde viabilidad por debajo del título mínimo inmunizante (“Cut-off”)

Incremento del uso de vacunas de PRRS “combinadas” con otros patógenos en una misma inyección.

Es normal que el título baje una vez la vacuna se lleva a Tº ambiente o se resuspende .

Shelf-life

3,5h

Para la vacunación de PRRS en mezclas de vacunas esmuy importante seguir las indicaciones del fabricantereferentes al “shelf-life” para asegurar una correctainmunización.

• Vacuna MLV de PRRS: “shelf-life” de 3,5h (1,00E+04).• 4 mezclas de la vacuna liofilizada de PRRS.

• Medición del título de virus tras reconstituir (T’0) y T’0 + 1-4h.• Titulación mediante cultivo celular.

Ensayo “In vitro”.

PatógenoVacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Proteger a la

cerda?

Proteger


Virus de Aujeszky Si Si Si Si Transplancentaria


• EN LA CERDA:• Serología ELISA de rutina para determinar “status”

sanitario y para seguimiento vacunal: anti-gE, gB,totales (DIVA).

• EN EL MATERIAL ABORTADO: Rutina en fetos(lechones).

• PCR (gD, gE), AV. Parte de planes de erradicación y

control.

- 35 años después del desarrollo de la vacuna marcada.

-12 años tras su erradicación en los EEUU.

• Sigue siendo endémica en

muchas partes del mundo.• Erradicada de algunas

zonas (NA, EU, NZ). Presente en cerdo salvaje.

• Difícil de determinar en otras áreas como Af, e-EU, se-EU, AL, As.

http://www.cabi.org/isc/. Last modified 14 May 2015

Interfaz de la base de datos del sistema mundial de informaciónzoosanitaria (WAHIS Interface)

• Programa nacional de erradicación.

• Estudio de prevalencia nacional.

• vacunaciones.

Aujeszky’s Disease Control and Eradication Program in Hungary

PAFF 01/2015

• Declaración obligatoria.• Vacunación y test DIVA.• Eliminación de positivos,

limitación de lasvacunaciones.

Emerging Infectious Diseases • www.cdc.gov/eid • Vol. 20, No. 1, 2014

• Brotes en animales vacunados.

• Se detectan cambios genéticos, pero no se logran asociar con la clínica observada.

• Aborto en ≈35% de cerdas de 70–90d de gestación.

• Vacunación con cepas Bartha-K61???

Emerging Infectious Diseases • www.cdc.gov/eid • Vol. 20, No. 1,

2014

• Crisis del sistema DIVA basado en gE(-)?

• Mismo enfoque DIVA.• Uso de vacunas locales?• …o vacunación y otras medidas de control?

PatógenoVacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Proteger a la

cerda?

Proteger


Virus Influenza Si +/- Si No No transplacentaria

Que se persigue con las vacunaciones?


• EN LA CERDA: Serología de rutina

• Serología ELISA de rutina para determinar“status” sanitario y para seguimiento vacunal.

• PCR o aislamiento a partir hisopo nasal.

• EN EL MATERIAL ABORTADO???

• Hisopo nasal de cerda abortada:• Muestra adecuada para detectar el virus

• Virus detectable en cerdas:

• 2-3 días en seropositivas con título de anticuerpos alto (multíparas).

• 5-7 días en seronegativas o título de anticuerpos bajo (primíparas).

• 15 primerizas (8m). 58d de gestación.

• Negativas a VIP/PRRS/ADV/Leptospiras.

• H1N2 como inóculo (IN, IT).

• 3-6x107,3 TCID50

Kwit 2014

• Material abortado:• Muestra NO adecuada para detectar el virus

Efecto

Parámetro Medido Si No Observaciones

Tº rectal cerdas. X Moderado (38-39,3ºC).

Sangre/suero cerdas: hemograma, proliferación Linf-T, citoquinas, PFA. Anticuerpos.

X

↓linf, ↑↑↑granulocitoslinf-T+, ↑anti-VIP, ↑↑↑ citoquinas, ↑↑ Haptoglobina.

Hisopo nasal cerdas: PCR-VIP. X Solo 5 dpi.

Signos clínicos. X Ni en cerdas ni en lechones.

Suero cerda: PCR-VIP. X

Sangre lechón no encalostrado: PCR-VIP. X

Placenta: PCR-VIP. X

Lechones débiles: PCR-VIP. X

Parámetros reproductivos y productivos .

X

• El VIP por si solo difícilmente induce abortos en cerdas.

• El aborto observado en casos agudos puede deberse al

incremento en las citoquinas pro-inflamatorias y a lasintomatología respiratoria.

• La infección de los fetos en útero es poco frecuente (siocurre), y la viremia en la cerda es indetectable.

• La magnitud de la clínica y los abortos puede variarsegún la fase de gestación, la cepa infectante, lascoinfecciones, la dosis infectiva, etc.

Romagosa 2011

Acerca del las vacunas

El nivel, variedad y homogeneidad de losanticuerpos están directamente relacionados con laprotección clínica.

En Influenza la inmunidadconferida por anticuerpos(humoral) es muy importantepara valorar vacunas o infección.

Nauta 2009

Para medir los anticuerpos dirigidoscontra la hemaglutinina (HA) serealiza la inhibición de lahemaglutinación (IHA).

AnticuerposAnti-HA

Titulo IHA

<20

40

80

160

320

640

1280

2560

5120

• Las vacunas deben induciranticuerpos IHA y ELISA.

• La vacuna que induzcaniveles adecuados deanticuerpos IHA será eficaz

Titulo IHA

<20

40

80

160

320

640

1280

2560

5120

Nauta 2009

PatógenoVacuna

disponible?

Vacunación

de rutina

Proteger a la

cerda?

Proteger


Circovirus porcino tipo 2 Si Si Si? Si Transplacentaria


SMEDI (no estrictamente abortígeno)

• Implantación: Muerte embrionaria, pseudopreñez (<70d).• Parto: ↑↑momificados, ↑↑macerados, ↑↑ nacidos débiles,

↑↑ nacidos muertos (>70d).Kim 2004, Mateusen 2007, Karuppannan 2016.

∞∞∞∞∞∞∞∞∞∞∞∞∞∞∞∞

• En órganos reproductivos de la cerda: ubícuota?, coinfecciones?.Pearodwong 2015

• Camadas normalesMadson 2009

Siempre realizar el panel diferencial (PPV,

PRRSv y otras causas)

Antigeno o genoma

Silva 2015 Brasil 29,1% casos ?

Handke 2012 Suiza 4% casos IHQ

de Castro 2012 Brasil 10,7 % (muestras) PCR

Ritzmann 2005 Alemania 21,7 % (muestras) ?

Kim 2004 Corea 13,1 % (muestras) PCR

• Inmunohistoquímica (IHQ).

• PCR en tiempo real.

• Medición de inmunoglobulinG (IgG) en cavidad pleural.

• IHQ positiva en casos agudos.

• PCR más sensible*.

• Medición de IgG con poco valor predictivo de infección en útero.

Selection of method is crucial for the

diagnosis of porcine circovirus type 2

associated reproductive failures.Hansen 2010

38 casos

13 controles

Fuente: Madson 2009

Acerca de la vacunación

¿Previene o reduce la infección transplacentaria?

Hipótesis: Elevados niveles de anticuerpos en las cerdas (por vacunacióno infección natural) reducirían o impedirían la transmisión transplcentaria.

No hay evidencia definitiva

Fetal infections and

antibody profiles in pigs

naturally infected with

porcine circovirus type 2

(PCV2).Gerber 2012

Se encontraron anticuerposy DNA en suero de neonatos

deprivados de calostro.

Hubo infección intrauterina>70d de gestación aunquelas cerdas eran seropositivas

Mensajes

• Es importante conocer la biología de los microorganismos

implicados en el aborto (fallo de fertilidad) para dirigiradecuadamente los esfuerzos de diagnóstico y controlvacunal.

• Un elevado porcentaje de casos de aborto porcino no se

diagnostican en el laboratorio (no se envían muestras).

• El panel de patógenos incluido en el estudio de laboratorio

es habitualmente limitado, lo cual limita el estudio demicroorganismos que pueden ser emergentes o estar sub-diagnosticados.

• Las características de los métodos de detección influyen en

los resultados y en su interpretación.

Jaime Maldonado. MV, MSc, ECPHM Diplomate

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Julio 15 de 2016

Preguntas?

Muchas gracias por su atención

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