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Fig.1.- Fragmento de pelecípodo mostrando un detalle de la comisura de unión entre ambas valvas. Esparita rellenando el fragmento en una matriz micrítica oscura. Formación Fox Hills, Cretácico Superior. South Dakota (USA). Fig.2.- Pequeños fragmentos de conchas de moluscos. Mesozoico (?), China. Fig.3.- Sección transversal de una valva individual de pelecípodo en uan caliza micrítica con pequeños detritos de cuarzo. Formación Fox Hills, Cretácico Superior. South Dakota (USA). Fig.4.- Detalle de la Fig. 6 para determinar la micro estructura perpendicular (cross- lamellar) de la concha de los moluscos. Formación Fox Hills, Cretácico Superior. South Dakota (USA). Fig.5.- Sección transversal de las valvas de un pelecípodo en una matriz micrítica. Formación Fox Hills, Cretácico Superior. South Dakota (USA).

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Fig.1.- Fragmento de pelecípodo mostrando un detalle de la comisura de unión entre ambas

valvas. Esparita rellenando el fragmento en una matriz micrítica oscura. Formación Fox

Hills, Cretácico Superior. South Dakota (USA). Fig.2.- Pequeños fragmentos de conchas de moluscos. Mesozoico (?), China.

Fig.3.- Sección transversal de una valva individual de pelecípodo en uan caliza micrítica

con pequeños detritos de cuarzo. Formación Fox Hills, Cretácico Superior. South Dakota

(USA).

Fig.4.- Detalle de la Fig. 6 para determinar la micro estructura perpendicular (cross-

lamellar) de la concha de los moluscos. Formación Fox Hills, Cretácico Superior. South

Dakota (USA).

Fig.5.- Sección transversal de las valvas de un pelecípodo en una matriz micrítica.

Formación Fox Hills, Cretácico Superior. South Dakota (USA).

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Fig.6.- Sección transversal de una concha de pelecípodo mostrando una perfecta simetría

bilateral de las valvas. Formación Fox Hills, Cretácico Superior. South Dakota (USA).

Coquina de Inoceramus que presentan la estructura prismática de su concha, mostrada tanto

en luz natural como con los nícoles cruzados. Miembro Fairport Chalk, Lutita Carlile,

Cretácico Superior, Kansas (USA). Fig.1.- Prismas de Inoceramus en un corte perpendicular a la superficie de la concha. Luz

natural.

Fig.2.- Nícoles cruzados en la Fig.1.

Fig.3.- Prismas de Inoceramus en un corte paralelo a la superficie de la concha. Luz

Natural.

Fig.4.- Nícoles cruzados en la Fig.3.

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Fig.1.- Microestructura vesicular de un pelecípodo pycnodóntido. Miembro Denton Clay,

Formación Denison, Cretácico Inferior. Texas (USA). Fig. 2.- Detalle para mostrar los “parches” de microestructura fibrosa o laminada en un

pelecípodo pycnodóntido. Miembro Denton Clay, Formación Denison, Cretácico Inferior.

Texas (USA).

Fig.3.- La microestructura vesicular del pycnodóntido se tiene entre capas de concha

laminada o fibrosa. Relleno de esparita. Formación Niobrara, Cretácico Superior, Kansas

(USA).

Fig.4.- Fragmento de un pycnodóntido alargado dentro de una matriz micrítica y asociado a

una serie de detritos de otros pelecípodos. Miembro Denton Clay, Formación Denison,

Cretácico Inferior. Texas (USA).

Fig.5.- Estructura prismática de un fragmento de concha de pelecípodo. Bajo nícoles

cruzados, los prismas individuales corresponden a cristales individuales de calcita.

Cretácico Superior, Libia.

Fig.6.- Sección oblicua de un fragmento de Inoceramus mostrando la estructura prismática

de su concha. Formación Niobrara, Cretácico Superior, Kansas (USA).

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Fig.1.- Fragmento de rudista recristalizado por esparita y que presenta poco relleno

micrítico (porción central izquierda). Es característico de estas conchas una microestructura

con patrones rómbicos o rectangulares. Cretácico Superior, Libia. Fig.2.- Concha de un rudista parcialmente recristalizado y rellenado por micrita. Nótese el

patrón rectangular de la microestructura. Cretácico Superior, Puerto Rico.

Fig.3.- Detalle de un fragmento de rudista totalmente recristalizado por esparita. Nótese el patrón rectangular

de su microestructura. Formación Shivta, Cretácico Superior, Israel.

Moluscas

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Fig.1.- Microestructura de un rudista de pared delgada. Nótese el bandeamiento del

fragmento y el patrón rectangular pobremente desarrollado. Caliza Melones, Cretácico

Superior, República Dominicana. Fig.2.- Fragmento de concha de pelecípodo mostrando una microestructura interna

prismática. Caliza Berriedale, Pérmico Inferior, Australia.

Fig.3.- Fragmento de molusco presentando la típica laminación interna perpendicular

(cross-lamellar). Capas Tuappan-Dudukur, Cretácico, India.

Fig.4.- Pelecípodos que presentan oradaciones circulares (a) rellenas con micrita. En la

porción izquierda se tienen rombos de dolomita reemplazando al organismo. Eoceno, India.

Fig.5.- Detritos de pelecípodos pobremente preservados en una matriz micrítica. También

se observa un fragmento de conodonto (?) en el centro de la muestra. Triásico Inferior,

Rusia.

Fig.6.- Fragmento de molusco que muestra la típica microestructura de laminación interna

perpendicular. Eoceno Medio, Francia.

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Fig.1.- Fragmentos alargados de conchas de pelecípodos en una matriz micrítica. Los

fragmentos muestran una microestructura representada por una capa gruesa fibrosa y otra

delgada prismática. Triásico Superior, Rumania. Fig.2.- Abundantes fragmentos de moluscos, principalmente recristalizados. Sobresale el

fragmento de rudista en la porción central superior. Caliza Melones, Cretácico Superior,

República Dominicana

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Fig.1.- Muestra que presenta cavidades dejadas por la disolución de detritos de moluscos (en nícoles cruzados). La

matriz es micrítica con granos de cuarzo. Pleistoceno, España. Fig.2.- Detritos fósiles completamente recristalizados que presentan una cubierta de micrita. Aunque no pueden ser

plenamente reconocidos, ya que también pueden ser restos de algas, se interpretan como fragmentos de moluscos.

Eoceno, Rusia. Fig.3.- Detalle de la envoltura de micrita en un fragmento de molusco y algunos "fantasmas" de lo que fue la

microestructura original. Cretácico, Angola Portuguesa. Fig.4.- Detalle de un corte transversal de un gasterópodo en donde se muestra su típica microestructura de laminación

interna perpendicular y el relleno por esparita de las cavidades del fragmento. Lutita Kiowa, Cretácico Inferior, Kansas

(USA). Fig.5.- Sección longitudinal de un gasterópodo de espira larga en una limolita calcárea. En la porción derecha se tiene

un delgado fragmento de pelecípodo. Cretácico Superior, Sudáfrica. Fig.6.- Sección longitudinal de un gasterópodo de espira larga en una limolita calcárea.

Cretácico Superior, Sudáfrica.

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Fig.1.- Fragmento recristalizado de cefalópodo que muestra claramente la disposición de los septos que delimitan las

diferentes cámaras. Caliza Salem, Mississípico Medio, Indiana (USA). Fig.2.- Fragmento de braquiópodo cementado por esparita. La ornamentación dentada que presenta el fragmento es

muy similar a la mostrada por un fragmento de molusco en la placa 46 Fig.1. La porción de micrita adherida al fragmento

de braquiópodo sugiere transporte a partir de otro ambiente original. Caliza Salem, Mississípico Medio, Indiana (USA). Fig.3.- Fragmento totalmente recristalizado de un corte transversal de un cefalópodo (porción central). Formación Prida,

Triásico Medio, Nevada (USA). Fig.4.- Fragmento de un cefalópodo mostrando tenuemente la disposición de los septos (a). Formación Prida, Triásico

Medio, Indiana (USA). Fig.5.- Fragmento de cefalópodo donde no se puede tener un detalle de su microestructura debido a la alteración que

presenta. Caliza Salem, Mississípico Medio, Indiana (USA). Fig.6.- Típica apariencia de un corte transversal al enrollamiento de un gasterópodo.

Aunque está recristalizado, se puede observar una incipiente textura prismática. Lutita

Kiowa, Cretácico Inferior, Kansas (USA)

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Fig.1.- Fragmento de pelecípodo mostrando la superficie exterior ornamentada. Compárela

con la Pl45-2. Una valva de ostrácodo en la porción superior izquierda. Mioceno-Plioceno

(?), República de Sudáfrica. Fig.2.- Sección transversal de un belemnite. Nótese un importante vadeamiento, el cual

represente probablemente el crecimiento anual. Jurásico Inferior, Rumania.

Fig.3.- Sección transversal de un belemnite sin mostrar vadeamiento interno. Jurásico,

Rusia.

Fig.4.- La Fig.2 con nícoles cruzados. Nótese los grandes prismas de calcita radialmente

orientados.

Fig.5.- La Fig.3 con nícoles cruzados. Nótese los grandes prismas de calcita radialmente orientados.

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GASTERÓPODOS

Fig.1.- Fragmento de gasterópodo en un corte perpendicular al eje de enrollamiento dentro de una matriz

micrítica. Reciente, Atolón Bikini, Océano Pacífico. Fig.2.- Sección perpendicular al enrollamiento de un gasterópodo. Nótese las proyecciones externas que delimitan

la ornamentación exterior de la concha. Fragmento totalmente recristalizado por esparita. Cretácico, Italia. Fig.3.- Sección longitudinal, paralelo al enrollamiento, de un gasterópodo con espira alargada. La porción interior

del organismo está parcialmente rellenada de micrita y recristalizada por esparita. Cretácico, Italia.

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Fig.4.- Gasterópodo recristalizado en una matriz micrítica. Caliza Jaisalmer, Jurásico Superior, India.

Fig.5.- Sección transversal de un gasterópodo recristalizado que tiene un relleno más oscuro que la matriz, lo que

se interpreta como una redepositación a partir de un ambiente diferente. Jurásico Superior, India. Fig.6.- Sección longitudinal de un gasterópodo mostrando claramente la espira. Jurásico

Superior, India.

Fig.1.- Corte longitudinal de un fragmento de molusco (Nerinella sp. ?) en una matriz

micrítica. Formación Beersheva, Jurásico Superior, Israel.

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Fig.2.- Cortes longitudinales (a) y transversales (b) de gasterópodos, detritos de

pelecípodos recristalizados (c), oolitas (d) con un centro de cuarzo (e) y cementante de

eparita (f). Jurásico Superior, Inglaterra.

Fig.3.- Sección transversal al enrollamiento de un molusco con ornamentación externa. La

concha está completamente recristalizada. La matriz está constituida de granos de cuarzo y

esparita. Cretácico Superior, Sudáfrica.

Fig.1.- Fragmento de gasterópodo mostrando su microestructura de laminación interna

perpendicular. Lutita Kiowa, Cretácico Inferior, Kansas (USA). Fig.2.- Corte longitudinal de un gasterópodo de espira larga rellenado de micrita y cuarzo.

Formación Bethel, Mississípico Superior, Kentucky (USA).

Fig.3.- Fragmentos de gasterópodos de espira corta en cuya última vuelta parece presentar

una incipiente ornamentación exterior. El cristal individual de calcita que se encuentra en el

centro (dentro del gasterópodo mayor) probablemente corresponda a una placa de

equinodermo. Formación Upper Pequop, Pérmico Superior, Nevada (USA).

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Abundantes fragmentos de conchas de gasterópodos con la típica microestructura de laminación interna perpendicular. La matriz está constituida por granos de cuarzo, esparita

y micrita. Cretácico, India.

CEFALÓPODOS

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Fig.1.- Sección Transversal de un cefalópodo enrollado de manera planispiral. Dada la recristalización que

presenta el fragmento, es imposible determinar su estructura interna, principalmente la identificación de

septos. En la matriz se pueden observar fragmentos de ostrácodos y de otros cefalópodos. Formación Prida,

Triásico Medio, Nevada (USA).

TRILOBITES

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Fig.1.- Biomicrita de equinodermos y trilobites. Nótese la forma curvada de los fragmentos

de trilobites que dominan la figura. Formación Meagher, Cámbrico Medio, Montana

(USA). Fig.2.- Detritos de trilobites mal clasificados en una matriz de micrita. Observese la textura

prismática muy fina de los fragmentos. Ordovícico Inferior, Dinamarca. Fig.3.- Trilobites dentro de una muestra dominada por detritos de equinodermos.

Formación Brassfield, Silurico Inferior, Indiana (USA).

Fig.4.- Detritos de trilobites en una matriz de micrita. Los fragmentos encerrados

representan secciones paralelas al cefalón y el pigidio. Ordovícico Inferior, Dinamarca.

Fig.5.- Caliza fosilífera bien clasificada conteniendo grandes fragmentos de trilobite (a),

placas de equinodermos (b), briozoarios (c), granos con cubrimiento micrítico (d),

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fragmentos de moluscos (e), cuarzo (f), espatita (g) y pellets (h). Formación Bethel,

Mississipico Superior, Kentucky (USA).

Fig.1.- Detritos de trilobites asociados con microesparita y , probablemente, con pirita y

esparita de grano grueso recristalizada. Nótese las terminaciones curvadas de los

fragmentos de trilobites. Formación Snowy Range, Cámbrico Superior, Montana (USA). Fig.2.- Fragmentos de trilobites (a) y detritos de equinodermos en micrita. Nótese placas de equinodermos

en sección transversal (b) y longitudinal (c), cuarzo detrítico (d), y algunos cristales de dolomita secundaria

(e). Esparita recristalizada de grano grueso (f). Cámbrico Superior, Dakota del Sur .

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OSTRÁCODOS

Fig.1.- Secciones transversales de ostrácodos articulados y desarticulados en lodo calcáreo

recristalizado. Algunas placas de equinodermos. Nótese el traslape característico en las

valvas de los ostrácodos en la parte izquierda de la porción central. Silúrico Inferior,

Noruega. Fig.2.- Gasterópodos rellenados por ostrácodos. Este relleno se pudo haber dado por: a) los ostrácodos

utilizaron la concha del gasterópodo como protección; ó b) El gasterópodo muere después de ingerir

ostrácodos. Cretácico, Montana (USA).

PELLETS

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Fig.1.- Favreina cf. F. salevensis (PARÉJAS). Conjunto de pellets bien clasificados

cementados por esparita. Las tábulas que se presentan en la porción interna de los pellets

son muy características en los productos fecales de algunos crustaceos modernos.

Neocomiano (Cretácico Inferior), Yugoslavia.

Fig.2.- Favreina kurdistanensis Elliott. La matriz micrítica oscura de la muestra no permite

identicar plenamente pellets, sin embargo, pequeñas coronas circulares pueden ayudar a

definirlos. Barremiano (Cretácico Inferior), Iraq.

Fig.3.- Abundantes pellets bien clasificados, cementados pobremente por esparita.

Formación Saharonim, Triásico, Israel.

Fig. 4.- Sección típica de una serie de pellets bien clasificados del tamaño del limo. La

presencia de los pellets puede dar a la muestra un aspecto moteado. Caliza Edwards,

Cretácico Inferior, Texas (USA).

Fig.5.- Pellets bien clasificados del tamaño del limo cementados por esparita. Carbonífero

Inferior, Bélgica.

Fig.6.- Caliza pellitica con fragmentos de braquiópodo y cementada por esparita. Caliza Buchan Caves,

Devónico Medio, Australia

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MADERA Y ALGAS

Fig.1.- Fragmentos de madera que presentan una corona periférica de lodo (oscuro) y un

perfecto patrón de celdas internas. La matriz incluye esparita, micrita, cuarzo y algunos

pellets. Caliza Ryukyu, Pleistoceno, Japón.

Fig.2.- Fragmento de alga coraliza en una matriz de micrita oscura y cristales de esparita de

origen indeterminado. El alga probablemente corresponda al género Lithophyllum. Grupo

Oigawa, Mioceno Inferior, Japón.

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Fig.1.- Fragmento de madera carbonizada que muestra una perfecta estructura en celdas

interna. Granos detríticos cementados por esparita. Formación Bethel, Mississipico,

Kentucky (USA).

Fig.2.- Fragmentos redondeados de alga coralina (Amphiroa sp.) en una arenisca de cuarzo.

Las algas exhiben dos patrones de celdas. Pleistoceno (?), Sudáfrica.

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Fig.1.- Halimeda que presenta tubos exteriores perpendiculares y otros internos. Reciente,

Océano Pacífico.

Fig.2.- Fragmento de alga coralina, mostrando un arreglo regular de celdas internas.

Oligoceno-Mioceno. Islas Marianas, Océano Pacífico.

Fig.3.- Fragmento de alga coralina posiblemente del género Lithothamnium. Eoceno, Israel.

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Fig.1.- Alga coralina. Archaeolithothamnium. Nótese las capas rectangulares del arreglo de

celdas en la microestructura. Formación Crystal River, Eoceno, Florida (USA).

Fig.2.- Fragmentos de algas, probablemente del género lithophyllum, con un perithallus

muy delgado y un hypotallus muy grueso. Oligoceno, Alemania.

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Fig.1.- Fragmento de alga Halimeda que presenta delgados tubos exteriores perpendiculares, mientras que los tubos

internos se presentan al azar, dando una apariencia de "spaghetti". Reciente, Atolón Bikini, Océano Pacífico. Fig.2.- Fragmento de alga coralina en la porción central. Muestra un perfecto arreglo de los tubos internos. Eoceno

Superior, Francia. Fig.3.- Fragmentos de alga Halimeda y de foraminífero (a) en la porción central derecha. Reciente, Atolón Bikini,

Océano Pacífico. Fig.4.- Sección transversal de un fragmento de alga recristalizado. Nótese como el tamaño de grano de la esparita se

incrementa hacia el centro. Formación Gothic, Pensilvánico Medio, Colorado (USA). Fig.5.- Fragmento de alga Halimeda acompañado de un pequeño fragmento de molusco en la porción inferior izquierda.

Reciente, Atolón Bikini, Océano Pacífico. Fig.6.- Fragmento de alga Halimeda muy micritizado cementado por esparita. Reciente,

Atolón Rongelap, Océano Pacífico.

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Fig.1.- Sección longitudinal de un fragmento de alga (dasycladacean) y varios foraminíferos (principalmente fusulínidos), cementados por esparita. Formación Nansen,

Pensilvánico, Canada.

Fig.2.- Cortes longitudinales y transversales de algas del género Mizzia. Nótese como las

paredes se encuentran perforadas (a). Formación Tansill, Pérmico, New Mexico (USA).

Fig.3.- Fragmentos de algas, posiblemente del género Epimastopora (a). Además se

observan algunos foraminíferos. Formación Nansen, Pensilvánico, Canada.

Fig.4.- Fragmento de Sphaerocodium. Nótese el aspecto de "spaguetti" de los tubos

internos. Silúrico Medio, Suecia.

Fig.5.- Fragmentos de charophyte oogonia en donde en la porción superior derecha se

muestra una estructura en espiral (a). Matriz micrítica. Formación Morrison, Jurásico

Superior, Colorado (USA).

Fig.6.- Pequeño fragmento de charophyte oogonium (porción inferior derecha). Formación

Morrison, Jurásico Superior, Colorado (USA).

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Fig.1.- Cortes longitudinales y tangenciales de restos de algas (Dasycladacean) en una

matriz pelítica. Nótese los delgados brazos calcificados porosos que han sido rellenados de

micrita, lo que hace difícil el reconocimiento. Jurásico, Italia.

Fig.2.- Oncolito (un tipo de estromatolito) mostrando una laminación interna interrumpida

y otra externa continua. Caliza Flagstaff, Paleoceno, Utah (USA).

Fig.3.- Estromatolito mostrando capas de micrita oscura, y también esparita que

probablemente representes burbujas de gas o el relleno de á reas de la materia orgánica

original. Caliza Tyrone, Ordovícico Medio, Kentucky (USA).

Fig.4.- Fragmentos alargados de algas (Dasycladacean) que no muestran una

microestructura bien definida en sus paredes de calcita clara. La matriz micrítica presenta

además algunos foraminíferos y placas de equinodermos. Cretácico Inferior, Francia.

Fig.5.- Sección transversal del foraminífero Umbellina, el cual fácilmente puede ser erróneamente descrito

como un fragmento de alga (Charophyta oogonia). La designación se hace en base a la apertura que presenta

el especimen en la parte izquierda.

CENOZOICO

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Calcarenita porosa mostrando una pobre cementación. El cementante solo logra

rellenar pequeños espacios entre los granos. Los granos incluyen: detritos de moluscos con

una estructura de laminación interna perpendicular, cortes en varias direcciones de

foraminíferos miliólidos (a), algas (b), Halimeda (c) y varios fragmentos de roca alterados

y fragmentos fósiles no-reconocibles. Caliza Belmont, Pleistoceno, Bermudas, Océano

Atlántico.

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Grainstone bien clasificado. Abundantes fragmentos de moluscos con estructura de

laminación interna perpendicular (a), algas, placas de equinodermos, fragmentos detríticos

de carbonatos, briozoarios retrabajados y oolitos superficiales. Mioceno, Libia.

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Fig.1.- Caliza con foraminíferos cementados por esparita. También se observan pocos pellets en micrita (a) y fragmentos de alga Lithoporella sp (b). Formación Mariana,

Pleistoceno, Islas Marianas, Océano Pacífico.

Fig.2.- Caliza con foraminíferos y algas en una matriz micrítica. También se observan

placas de equinodermos (a), foraminíferos rotálidos (b), esparita, (c) algas coralinas (d), y

algunos granos de cuarzo. Eoceno Superior, Francia.

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Caliza con globigerínidos en una matriz de micrita. Numerosos cortes en diferentes

direcciones muestran las cámaras más o menos globulares. Las conchas perforadas y

finamente espinosas están internamente rellenadas de micrita y esparita. Oligoceno, Italia.

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Caliza arenosa fosilífera pobremente clasificada. Además de granos de cuarzo,

podemos observar restos de briozoarios (a), foraminíferos (b), algas (c) y equinodermos (d).

Formación Ebishima, Plioceno, Japón.

CRETÁCICO

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Caliza fosilífera mal clasificada con algas, equinodermos, briozoarios, foraminíferos

y moluscos. El fragmento de alga en la porción central presenta un corte oblicuo,

mostrando una sección longitudinal a la derecha y un corte tangencial a la izquierda. En el

centro también se tiene lo que probablemente sea una espina de equínido. En la porción

inferior izquierda se presenta un fragmneto de briozoario. Los foraminíferos enrollados (a)

presentan paredes de grano muy fino y pueden confundirse con la matriz. Los fragmentos

de moluscos se encuentran en la porción superior derecha. Cretácico Inferior, Francia.

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Caliza con briozoarios con una matriz predominantemente micrítica. Los briozoarios

presentan cortes en varias direcciones. Las zoecias (colonias) son bifoliadas (a) y ramosas

(b), y muchas de éstas aparecen rotas o fragmentadas. Cretácico Superior, Dinamarca.

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Caliza micrítica fosilífera pobremente clasificada. Se presentan cortes en diferentes

planos de foraminíferos biseriales (a). El fragmento en la esquina inferior izquierda

parece ser un foraminífero uniserial (b). El fragmento segmentado (c) probablemente

corresponda al foraminífero Frondicularia sp. Caliza Barra do Dande, Cretácico,

Angola.

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Caliza Con foraminíferos y moluscos que presenta una vetilla rellenada en la parte

derecha. Los foraminíferos son quinqueloculinos mostrando secciones transversales y

longitudinales. Algunos foraminíferos sufrieron abrasión y fueron rellenados de lodo

calcáreo antes de la litificación. Se observa diagénesis (empaquetamiento por solución).

Cretácico Superior, Puerto Rico.

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JURÁSICO

Fig.1.- Caliza con foraminíferos bien clasificada y cementada con esparita. Se tienen

Foraminíferos Kurnubia sp (a), placas porosas de equinodermos (b) y granos de cuarzo (c).

Formación Beersheva, Jurásico Superior, Israel.

Fig.2.- Caliza fosilífera arenosa. Se presentan fragmentos grandes y oscuros de algas (a),

así como una serie de fragmentos fósiles que incluyen. Fragmentos de moluscos (b), placas

de equinodermos (c) y foraminíferos (d). También se tienen granos de cuarzo (e). Jurásico

Inferior, Francia.

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Fig.1.- Caliza fosilífera. Se presentan abundantes pellets y diferentes cortes de

foraminíferos enrollados y uniseriales. Jurásico Medio, Italia.

Fig.2.- Detritos fósiles dentro de una matriz de micrita oscura. Se puede observar un foraminífero (a)

característicamente ornamentado. Algunas placas de equinodermos muestran placas anómalamente porosas

(b). Fragmento de equinodermo (c). Caliza Rotwandel, Jurásico Inferior, Austria.

TRIÁSICO

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Caliza fosilífera bien clasificada. Se pueden observar cortes longitudinales y

transversales de gasterópodos, muchos de los cuales se encuentran rellenados por lodo

ferruginoso y pequeños detritos. Las conchas de los gasterópodos están totalmente

recristalizadas. Triásico, Irán.

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Caliza fosilífera mal clasificada. Los fragmentos fósiles son principalmente placas de

equinodermos y detritos de moluscos recristalizados, y algunos presentan un relleno de

calcita, sílica y pirita. Los pellets forman parte muy importante de la matriz. Formación

Whitehorse, Triásico superior, Canada.

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PERMICO

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Caliza fosilífera. Fragmentos de braquiópdos (a), ostracodos (b) que muestran ambas

valvas, placas de equinodermos (c) y foraminíferos (d). Algunos ostrácodos muestran

bordes oscuros de origen desconocido. Formación Wolfcamp, Pérmico, Texas (USA).

Caliza con briozoarios y equinodermos en una matriz pellítica con cuarzo. Las placas

de equinodermos presentan el típico color gris debido a la estructura porosa fina. Los

briozoarios son del tipo bifoliado y polipórido (a), éstos últimos muestran una pared

granular central que está rodeada por una pared externa laminada de color oscuro. Los

fragmentos más pequeños probablemente correspondan a braquiópodos y ostrácodos.

Formación Riepe Spring. Pérmico Temprano, Nevada, (USA)

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PENSILVANICO

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Caliza de foraminíferos bien clasificada cementada por esparita. Los foraminíferos

enrollados muestran diferentes cortes. También se observan algunos fragmentos de

equinodermos y moluscos, los cuales presentan recubrimientos micríticos. Formación

Tecumseh, Pensilvánico Superior, Nebraska (USA).

MISSISSÍPICO

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Típica caliza fosilífera con briozoarios y braquiópodos del Paleozoico. La muestra

presenta conchas de braquiópodos ornamentadas (a) y no-ornamentadas (b), briozoarios

fenestrélidos (c), placas de equinodermos (d), fragmentos de moluscos (e) y fragmentos de

espinas de braquiópodo (a). Caliza Negli Creek, Mississípico, Indiana (USA).

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Caliza paleozoica de briozoarios y equinodermos muy bien clasificada. Se

puede observar: briozoarios ramosos (a), placas de equinodermos, espinas de

equínidos (c), braquiópodos (d), fragmentos de trilobites (e), aglutinamiento de

fragmentos en forma de “racimo de uvas” (f), oolitas (g), fragmentos de

gasterópodos (h) y granos de cuarzo (i). El relleno por micrita de algunos

fragmentos indica que éstos fueron retrabajados antes de su depositación final y

litificación. Formación Bethel, Mississípico, Kentucky (USA).

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Detritos de equinodermos y briozoarios obtenidos de una lutita y montados en una

resina para formar una caliza artificial. Nótese como los fragmentos están “flotando” en la

resina. Grupo Borden, Mississípico, Indiana (USA).

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Caliza paleozoica bien clasificada de equinodermos y briozoarios. Se presentan

secciones transversales y longitudinales de briozoarios fenestrélidos con paredes internas

delgadas de laminaciones claras y externas gruesas con laminaciones oscuras. Las placas de

equinodermos se tienen recristalizadas. También se tienen algunos fragmentos de

braquiópodos fibrosos. Los límites estilolíticos entre los granos son evidencias de presión-

solución. Caliza Akiyoshi, Carbonífero Inferior, Japón.

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DEVÓNICO

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Caliza de ostrácodos y briozoarios mal clasificada. Los ostrácodos presentes

tienen valvas articuladas y desarticuladas. Algunas valvas articuladas están

rellenadas con esparita y los recubrimientos negros en éstas probablemente

correspondan a pirita finamente diseminada. Los briozoarios son apenas

perceptibles debido al relleno de micrita que presentan las zoecias. Caliza

Helderberg, Devónico Inferior, Pennsylvania (USA).

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Caliza de equidermos. Abundantes fragmentos de equinodermos (crinoides) en

secciones transversales y longitudinales. En la porción inferior se observa un fragmento de

briozoario (fistulipórido), el cual se caracteriza por una serie de “paredes” entre los tubos

que definen las zoecias. También se tiene un grano fosfático (a) que probablemente

corresponda a un conodonto o un fragmento óseo. Caliza North Vernon, Devónico Medio,

Indiana (USA).

SILÚRICO

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Dos fotografías de una misma sección delgada. Bioesparita con fragmentos fósiles

totalmente recristalizados. Aunque en sección delgada es difícil reconocer los fósiles, la

muestra de mano de donde se obtuvo la lámina presenta grandes fragmentos de valvas de

braquiópodos. Esto último establece que en ocasiones, una sola lámina delgada no será

suficiente para identificar satisfactoriamente los fósiles que presente. Silúrico,Sahara

Español.

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ORDOVÍCICO

Ambas secciones delgadas presentan abundantes fragmentos de valvas de braquiópodos

en una caliza parcialmente dolomitizada (a). Nótese la apariencia fibrosa de dichos

fragmentos. El fósil en la porción central de la figura inferior corresponde a un briozoario.

Caliza Lexington, Ordovícico Medio, Kentucky (USA).

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CÁMBRICO

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Caliza recristalizada con trilobites y arqueociátidos. El fragmento de arqueociátido en

la porción superior central presenta claramente los septos. Por su parte, los fragmentos de

trilobites están pobremente preservados (a). Formación Mural, Cámbrico Inferior, Canadá.

Caliza con fragmentos de trilobites y equinodermos. Aunque los fragmentos de

trilobites están muy alterados, se observan con su característica forma recurvada. Los

fragmentos de equinodermos se observan también muy alterados. Formación Wolsey,

Cámbrico Medio, Montana (USA).

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FORAMINÍFEROS

Fig.1.-Fragmentos de miliólidos (Marginopora sp.), presentando un cmplejo y numeroso

patrón de cámaras interiores. En la porción superior se tiene un fragmento de gasterópodo.

Reciente, Atolón Bikini, Océano Pacífico.

Fig.2.- Foraminífero uniserial con las paredes parcialmente aglutinadas. También se

observa un corte transversal de un tallo de crinoide que presenta un forma pentagonal

perfecta (porción central inferior). Formación Deese, Pensilvánico Medio, Oklahoma

(USA).

Fig.3.- El foraminífero de la izquierda presenta una concha con estructura porosa; mientras

que el de la derecha la presenta de forma laminar. El fragmento en el centro probablemente

corresponda a un fragmento de molusco. Reciente, Atolón Bikini, Océano Pacífico.

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Fig.4.- Corte de un foraminífero cortado de manera paralela al enrollamiento. Presenta una

pared porosa y numerosas cámaras. Reciente, Atolón Rongelap, Océano Pacífico.

Fig.5.- Foraminífero biserial cuya microestructura de las paredes es difícil de distinguir de

la matriz de micrita. Jurásico Medio, Italia.

Fig.6.- Foraminífero que presenta un patrón complejo de cámaras y al cual es difícil

distinguir sus paredes de la matriz micrítica. Jurasico Medio, Italia.

Fig.7.- Foraminífero presentando una gran cantidad de cámaras. Jurásico Medio, Italia.

Fig.1.- Fragmentos de fusulínidos cortados casi de manera transversal. Los foraminíferos

están cementados por esparita. Caliza Ibukiyama, Pérmico Medio, Japón.

Fig.2.- Foraminíferos numulítidos en la porción central superior, así como algunos

fragmentos de algas (fragmentos oscuros). Eoceno Superior, Francia.

Fig.3.- Sección transversal de un fusulínido que está parcialmente recristalizado por

micrita. Formación Deese, Pensilvánico Inferior, Oklahoma, (USA).

Fig.4.- Bradyna, un foraminífero enrollado (porción izquierda). Un fusulínido en la porción

derecha. Formación Deese, Pensilvánico Medio, Oklahoma (USA).

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Fig.5.- Abundantes cortes transversales (a) y longitudinales (b) de miliólidos. Formación

Asmari, Mioceno, Irán.

Fig. 6.- Caliza similar a la Fig.5, mostrando un corte longitudinal de un miliólido muy

grande (porción central superior). Formación Asmari, Mioceno, Irán.

Fig.1.- Detalle microestructural de la pared de un foraminífero del tipo Schwangerinido.

Las cámaras están rellenas por esparita. Formación Gerster, Pérmico, Nevada (USA).

Fig.2.- Sección transversal de un fusulínido mostrando los septos que separan las cámaras,

las cuales están rellenadas por esparita. Pensilvánico, Irán.

Fig.3.- Fusulínido con las paredes completamente alteradas. Pérmico Medio, Japón.

Fig.4.- Asociación de pequeños fusulínidos y algunos fragmentos de crinoides. Pérmico

Inferior, Japón.

Fig.5.- Cortes transversales (derecha) y ligeramente oblicuos (izquierda) de fusulínidos.

Formación Gerster, Pérmico, Nevada (USA).

Fig.6.- Misma asociación que la Fig.4. Pérmico Inferior, Japón.

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Fig.1.- Abundantes foraminíferos (sin identificar) cuyas paredes presentan el relleno de

perforaciones por micrita (a) o reemplazamiento de una calcita radial en las mismas (b).

Reciente, Atolón Rongelap, Océano Pacífico.

Fig.2.- Abundantes globigerinas que presentan un relleno de esparita, muchas de las cuales

están constituidas por cristales individuales de calcita. Caliza Greenhorn, Cretácico

Superior, Kansas (USA).

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Fig.1.- Foraminíferos bentónicos. Discociclínidos (a), foraminíferos rotálidos enrollados

(b), cuarzo (c), fragmentos de equinodermos (d) y fragmentos fósiles cubiertos por micrita

(e). Eoceno Superior, Francia.

Fig.2.- Caliza con globigerínidos en una matriz micrítica. En ocasiones puede presentarse

la estructura perforada de las cámaras (a). Caliza Greenhorn, Cretácico Superior, Kansas

(USA).

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Fig.1.- El foraminífero en la porción central es del tipo dictiocónido, también están

presentes algunos rotálidos y fragmentos de algas. Eoceno Superior, Francia.

Fig.2.- Las paredes de las conchas de estos foraminíferos muestran un patrón radial-fibroso

(rotálidos). Algunos fragmentos de moluscos (a) y granos de cuarzo (b) están también

presentes. Algunos de los fragmentos oscuros corresponden a fragmentos de algas. Eoceno

Superior, Francia.

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Fig.1.- Cortes transversales de discociclínidos. Formación Jahrum, Eoceno, Irán.

Fig.2.- Fragmentos de disclociclínidos (a) cortados transversalmente, así como otros

foraminíferos y un fragmento de crinoide completamente reemplazado (b). Formación

Jahrum, Eoceno, Irán.

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Fig.1.- Orbitolínidos cortados en diferentes direcciones en una matriz micrítica.

Cretácico, Italia. Fig.2.- Foraminíferos cementados por esparita. Los foraminíferos son principalmente:

quinqueloculinos enrollados (a) o formas biseriales (b), cortados en varios planos. Los

fragmentos grandes probablemente correspondan a restos de moluscos. Formación

Chichén Itzá, Eoceno Medio, Yucatán (MEX).

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Fig.1.- Grandes foraminíferos numulítidos. Nótese el característico patrón radial-fibroso de sus paredes. Formación

Matred, Eoceno, Israel. Fig.2.- Globoratálidos rellenados por calcita y lodo calcáreo. Cretácico Inferior, Italia. Fig.3.- Secciones transversales de numulítidos (Heterostegina sp.) en una matriz micrítica

que contiene globigerínidos. Oligoceno, Rusia.

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Fig.1.- Sección transversal de un numulítido. Formación Wadi Tamet, Eoceno Medio,

Libia.

Fig.2.- Fusulínidos dentro de una matriz micrítica. Algunos de los foraminíferos presentan

estilotitos. Formación Pequop, Pérmico, Nevada (USA).

ESPONJAS

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Fig.1 y 2.- Una gran cantidad de espículas de esponjas dentro de una matriz

micrítica. Mioceno, Italia.

Fig.3.- Espícuals de esponjas mostrando formas de agujas con varias "puntas". Formación

Du Noir, Cámbrico Superior, Wyoming (USA).

Fig.4.- Diferentes cortes de espículas de esponjas (Nevadocoelia wistae BASSLER).

Ordovícico Medio, Nevada (USA).

Fig.5.- Espículas de esponjas del género Astylospongia praemorsa (GOLDFUSS) en un

nódulo de pedernal. Formación Brownsport, Silúrico Medio, Tennessee (USA).

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Fig.6.- Espículas de esponja del género Aulocopium Cylindreacoum ROEMER en un

nódulo de pedernal (de color claro). Formación Brownsport, Silúrico Medio, Tennessee

(USA).

Fig.1.- Secciones longitudinales y transversales de espículas de esponjas calcáreas.

Algunos cortes transversales presentan un canal interno. Formación Beersheva, Jurásico

Superior, Israel.

Fig.2.- Espículas calcáreas en cortes longitudinales y trasnversales. Nótese algunas

espículas con formas aciculares de varias “puntas”. Jurásico Inferior, Francia.

Fig.3.- Micrita espiculítica (muddy spiculite). Algunas espículas se encuentran rellenadas de micrita, tanto

en sección longitudinal como transversal. Pensilvánico, Oklahoma (USA).

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RADIOLARIOS Y "LOMBARDÍA"

Fig.1.- Radiolarios globulares y pequeños calpionélidos en una matriz micrítica. Los

radiolarios están parcialmente reemplazados por calcita. Jurásico Superior, Francia.

Fig.2.- Secciones transversales (porción superior izquierda) y transversales (centro) con

pequeñas placas de carbonatos mostrando lo que algunos paleontólogos europeos

denominan Lombardía (fragmento de crinoide Saccoma) las cuales pueden confundirse

con radiolarios. Formación Scaglia, Cretácico, Italia.

Fig.3.- Fragmentos de esqueletos cónicos y globulares de radiolarios. Mientras que algunos

parecen estar deformados (a), otros están parcialmente reemplazados por calcita. Jurásico

Inferior, Italia.

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ARQUEOCÍATIDOS Y OTROS

OBJETOS

Fig.1.- Sección transversal de un arqueociátido recristalizado. Caliza Mural, Cámbrico Inferior Canada.

Fig.2.- Sección longitudinal de un arqueociátido en una matriz de grano fino. Nótese las paredes claramente

identificables. Cámbrico, Rusia. Fig.3.- Conjunto denso de prismas de calcita de las conchas de los pelecípodos. Aunque pudieran parecer espículas,

estos prismas no presentan el canal interior. Grupo Gemuk, Pérmico, Alaska (USA). Fig.4.- Sección transversal de un arqueociátido. Nótese las paredes oscuras de grano fino delimitando claramente los

septos. Caliza Mural, Cámbrico Inferior, Canada. Fig.5.- Fósil conteniendo: 1) una compleja trama interna rellenada de calcita, 2) Una pader microestructural de grano

fino, y 3) Una estructura arqueada asimétrica sugiriendo aplanamiento. Jurásico, Italia.

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CORALES Y ALGAS

Fig.1.- Seccción transversal de la copa de un coral con los septos concéntricos y porosos y las paredes alteradas por

calcita. Cretácico Inferior, Rumania. Fig.2.- Secciones transversales de coral que muestran un arreglo radial de sus septos y las paredes recristalizadas.

Pleistoceno, España. Fig.3.- Sección longitudinal deun coral con los septos porosos. Cretácico Inferior, Rumania.

Fig.4.- Sección longitudinal deun coral con los septos porosos. Cretácico Inferior, Rumania.

Fig.5.- Sección transversal de un coral mostrando las paredes fibrosas. Formación Buchan Caves, Devónico Medio,

Australia.

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Fig.6.- Fragmento de coral con un complejo patrón radial de septos. Pleistoceno, Atolón

Eniwetok, Océano Pacífico.

Fig.1.- Sección transversal de un coral mostrando detalles de los septos (a) y las tábulas (b). LA matriz contiene detritos finos

de equinodermos y foraminíferos. Carbonífero Inferior, Inglaterra. Fig.2.- Coral colonial (Syringopora) mostrando un denso empaquetamiento de los coralitos (a) y tubos que los conectan (b).

Carbonífero Inferior, Rusia. Fig.3.- Corte transversal de un pequeño coral (centro) junto a otros restos fósiles, primcipalmente moluscos. Formación

Mastrojanni, Mioceno Medio, Italia. Fig.4.- Sección trasnversal de un coral (a), asocuiado a restos de braquiópodos, equinodermos y pellets. Carbonífero Inferior,

Inglaterra. Fig.5.- Porción de un coral que muestra los septos y las tábulas (a). Carbonífero Inferior, Inglaterra. Fig.6.- Septos (a) t tábulas (b) de un coral. El coral está parcialmente recristalizado por

sílice. Carbonífero Inferior, Inglaterra.

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Fig.1.- Fragmento de coral cuya estructura interna no puede ser reconocida por el relleno de

calcita. Matriz micrítica. Jurásico Medio, Italia.

Fig.2.- Coral colonial en el cual se ha preservado muy pobremente su estructura interna.

Caliza Buchan Caves, Devónico Medio, Australia.

Fig.3.- Probables fragmentos de algas (a) que presentan gruesas paredes de grano fino y pequeñas formas

alargadas (b). También probablemente sean hidrozoarios (celenterados relacionados a los corales). Jurásico

Medio, Italia.

ESTROMATOPÓRIDOS E

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HIDROZOARIOS

Fig.1.- Sección tangencial de Anostylostroma columnare (PARKS) una estructura circular y de pilares (a) que en

ocaciones parecen pequeños puntos. Caliza Jeffersonville, Devónico Medio, Indiana (USA). Fig.2.- Sección longitudinal de un Anostylostroma columnare (PARKS), mostrando una estructura de red rectangular.

Caliza Jeffersonville, Devónico Medio, Indiana (USA). Fig.3.- Sección tangencial de Gerronostroma excellens GALLOWAY y St. JEAN, mostrando un claro patrón de puntos

oscuros (pilares). Caliza Jeffersonville, Devónico Medio, Indiana (USA). Fig.4.- Sección longitudinal de Stromatoporella solitaria (NICHOLSON). Caliza Logansport, Devónico Medio, Indiana

(USA). Fig.5.- Sección longitudinal de Gerronostroma excellens GALLOWAY y St. JEAN, el cual se presenta parcialmente

recristalizado. Caliza Jeffersonville, Devónico Medio, Indiana (USA). Fig.6.- Sección oblicua de Stromatoporella solitaria (NICHOLSON). Caliza Logansport,

Devónico Medio, Indiana (USA).

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Fig.1.- Sección longitudinal de un estromatopórido Aulacera plummeri GALLOWAY y St. JEAN cementado por esparita. Formación

Liberty, Ordovícico Superior, Kentucky (USA). Fig.2.- Sección tangencial de Trupetostroma iowense PARKS presentando un perfecto patrón circular de la colonia. Caliza Cedar

Valley, Devónico Superior, Iowa (USA). Fig.3.- Laminaciones y tejido (a) presentes en un corte longirudinal del estromatopórido

Gerronostroma Excellens GALLOWAY and St. JEAN. Caliza Jeffersonville, Devónico

Medio, Indiana (USA).

Fig.4.- Tejido vesicular del estromatopórido Labechia huronensis (BILLINGS). Formación Withewaters, Ordovícico Superior,

Indiana (USA). Fig.5.- Sección transversal de un hidrozoario moderno Millepora alcicornis Linnaeus.

Florida (USA).

Fig.6.- Arreglo lineal de los pilares en un estromatopórido Stromatoporella solitaria

NICHOLSON. Caliza Logansport, Devónico Medio, Indiana (USA).

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BRIOZOARIOS

Fig.1.- Corte longitudinal de un briozoario mostrando una apariencia fibrosa de la estructura de la pared. La

discontinuidad de la estructura (a) determina un plano de rejuvenecimiento. Caliza Brassfield, Silúrico Inferior, Indiana

(USA). Fig.2.- Briozoarios de pared delgada rellenados de micrita y esparita. Nótense las zooecias (a) y los mesóporos (b).

Ordovíco Medio, Noruega. Fig.3.- Sección tangencial de un briozoario en una matriz de micrita. Nótese el espesor grueso de las paredes del

organismo. Formación Upper Pequop, Pérmico, Nevada (USA).

Fig.4.- Cortes longitudinales y transversales de briozoarios parcialmente rellenados de micrita. Carbinífero

Inferior, Desierto del Sahara, Argelia.

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Fig.5.- Laminaciones pobremente desarrolladas en las paredes de un corte tangencial de un briozoario. Cretácico

Inferior, Francia. Fig.6.- Aspecto “ramoso” en un corte longitudinal de un briozoario. La matriz es micrítica

y contiene pequeños foraminíferos. Cretácico Inferior, Francia.

Fig.1.- Sección transversal de bryozoario fenestrélido. Nótese las capas claras delimitando

las zooecias, así como capa oscura gruesa de las paredes.. También se tienen braquiópodos

(a y b), gasterópodos ( C), fragmentos de equinodermos (d), y otros briozoarios (e).

Formación Bethel, Messissipíco Superior, Kentucky, (USA).

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Fig.2.- Fragmento de Fistulipora mostrando las zooecias rellenas de calcita. Abundantes

fragmentos de cuarzo en la muestra. Formación Bethel, Mississipíco Superior, Kentucky

(USA).

Fig.1.- Secciones transversales (a) y longitudinales de briozoarios de aspecto

“ramoso”. Cretácico Superior, Dinamarca. Fig.2.- Forma biofoliada de un briozoario. La estructura de las paredes y la zooecia están

parcialmente rellenas de calcita. Formación Puerto Carrillo, Plioceno, Yucatán (MEX).

Fig.3.- Briozoarios encrustados en fragmentos de braquiópodos. Dentro de la matriz

también se pueden observar algunos otros fragmentos de braquiópodos (fibrosos) y

equinodermos (porción superior derecha). Ordovícico Superior, Indiana (USA).

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Fig.1.- Caliza fosilífera mostrando cortes longitudinales y transversales de briozoarios. Además se

tienen espinas de equinodermos (a) y fragmentos de moluscos (b) en una matriz micrítica. En la

porción inferior derecha se presenta una vetilla rellena de calcita. Mioceno, Italia. Fig.2.- Una gran cantidad de secciones longitudinales de briozoarios asociados a varios

foraminíferos. Mioceno, Italia

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Fig.1.- Fragmento de una colonia de briozoarios mostrando las paredes externas laminadas y la característica forma

cónica de ésta. Caliza Berriedale, Pérmico Inferior, Australia. Fig.2.- Corte longitudinal (porción inferior izquierda) y transversal (porción superior

derecha) de un espécimen de briozoario “ramoso”. Además se pueden observar placas de

equinodermos, foraminíferos, braquiópodos y detritos de otros briozoarios. Carbonífero

Inferior, Inglaterra.

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Fig.1.- Sección transversal de un briozoarios de forma biofoliada, cuyas paredes oscuras

han sido alteradas de su forma laminada original. Caliza Jeffersonville, Devónico Medio,

Indiana (USA).

Fig.2.- Fragmentos de briozoarios con las zooecias rellenas de calcita. Nótese las paredes gruesas en la parte

exterior (exozone) y las delgadas en la interior (endozone). Las líneas gruesas en la porción interna marcan el

límite entre zooecias. Silúrico Medio, Noruega.

BRAQUIOPODOS

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Fig.1.- Fragmentos de braquiópodos. El fragmento (a) muestra una fibrosidad interna muy bien desarrollada (b);

mientras que el fragmento (c) representa una concha con estructura prismática. La matriz micrítica presenta numerosos

rombos pequeños de dolomita. Silúrico Inferior, Noruega. Fig.2.- Sección vertical longitudinal de ambas valvas de un braquiópodo parcialmente rellenado por esparita. Nótese la

presencia de una valva más grande que la otra. También se observan algunos fragmentos de equinodermos y pellets.

Carbonífero Inferior, Inglaterra. Fig.3.- Fragmentos de valvas de braquiópodos, algunas presentan un arreglo prismático (a). La matriz micrítica también

contiene pequeñas placas de equinodermos. Caliza Pentamerus, Silúrico Medio, Noruega. Fig.4.- Fragmentos fibrosos de braquiópodos en una matriz que presenta abundantes pellets y detritos de equinodermos.

Formación Gerster, Pérmico Superior, Nevada (USA). Fig.5.- Fragmentos de braquiópodos mostrando una serie de pilares (puntos claros) dentro de una estructura fibrosa

oscura. Caliza Jeffersonville, Devónico Medio, Indiana (USA). Fig.6.- Lingula borealis BITTNER. Sección transversal de un fragmento fosfático de este

braquiópodo inarticulado. Formación Dinwoodie, Triásico Inferior, Montana (USA)

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Fig. 1.- Corte longitudinal de una valva de braquiópodo (a) mostrando claramente la característica estructura fibrosa.

También se observan pelets y un fragmento recristalizado de equinodermos (porción inferior izquierda). El fragmento

perfectamente circular probablemente corresponda a un molusco (gasterópodo?) Formación Bethel, Mississipíco Inferior Kentucky (USA). Fig.2.- Fragmento fibroso de braquíopodo mostrando una ornamentación (a). También se tienen cortes trasvsersales de

espinas de braquiópodos (b), placas de equinodermos y algunos briozoarios (c). Carbonífero Inferior, Inglaterra. Fig.3.- Fragmento fibroso de braquiópodo en la porción central. También se tienen placas

de equinodermos y abundantes detritos de cuarzo en la matriz. Formación Bethel,

Mississipíco Inferior Kentucky (USA).

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Fig.1.- Secciones transversales de espinas de braquiópodos. También se observan pellets,

algunos briozoarios y fragmentos de equinodermos (porción superior derecha). Se puede

observar esparita como cementante. Carbonífero Inferior, Inglaterra.

Fig.2.- Sección longitudinal de una espina de braquiópodo rota (porción central superior). También se tienen

briozoarios(porción superior izquierda), fragmentos de conchas de braquiópodos y placas de equinodermos

(a). Carbonífero Inferior, Inglaterra.

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