Diseño inicial de una propuesta metodológica para la reproducción de plantas del género Eryngium

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Diseño inicial de una propuesta

metodológica para la

reproducción de plantas del

género Eryngium

Ing. Yavé Guadalupe Carrera Quirino

Ing. Bernabe Colohua Citlahua

Orizaba Ver. Noviembre 2014

Diseño inicial de una propuesta metodológica para la reproducción de plantas del género Eryngium

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RESUMEN

El presente documento es resultado de un estudio técnico, financiado por la Comisión

Nacional de Áreas Naturales Protegidas (CONANP) / Parque Nacional Pico de

Orizaba (PNPO), a través del Programa de Conservación para el Desarrollo

Sostenible (PROCODES), en el ejercicio 2014, aprobado en la modalidad de estudio

para el monitoreo, conservación y manejo de los recursos naturales.

El presente documento tiene la finalidad de ser un instrumento a partir de la cual surjan

estudios técnicos que engloben con mayor precisión el comportamiento de las plantas

del género Eryngium L. en el Parque Nacional Pico de Orizaba (PNPO), y su zona de

influencia.

Para el PNPO, se identificaron tres especies de plantas del género Eryngium L., sus

zonas de distribución y calendario fenológico.

Una de ellas se logró propagar, lo que otorgo una base metodológica inicial para la

propagación de la planta.


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ÍNDICE

Página

RESUMEN ....................................................................................................... 1

TITULO DEL ESTUDIO TECNICO .................................................................. 5

DESCRIPCION................................................................................................. 5

OBJETIVOS ...................................................................................................... 5

METAS ............................................................................................................ 5

COBERTURA GEOGRÁFICA ................................................................................ 6

INTRODUCCIÓN.............................................................................................. 8

ANTECEDENTES ............................................................................................ 9

MARCO TEÓRICO ......................................................................................... 10

GENERO ERYNGIUM ....................................................................................... 10

Encuadre taxonómico y características ................................................... 10

Distribución ............................................................................................... 12

PARQUE NACIONAL PICO DE ORIZABA ............................................................. 14

Localización .............................................................................................. 14

Características climáticas ......................................................................... 14

Hidrología ................................................................................................. 16

Fauna ....................................................................................................... 16

Flora ......................................................................................................... 17

PLANTAS ....................................................................................................... 19

PROPAGACIÓN DE PLANTAS ............................................................................ 22

Tipos de propagación ............................................................................... 22

Polinización .............................................................................................. 23

Semillas .................................................................................................... 24

Latencia .................................................................................................... 26

Germinación y establecimiento................................................................. 28

METODOLOGÍA ............................................................................................ 32

CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES....................................................................... 32

MÉTODOS Y ACTIVIDADES ............................................................................... 33


3

Elaboración de cartografía básica ............................................................ 33

Elaboración de formatos de campo, control de información a obtener ..... 33

Revisión bibliográfica ................................................................................ 33

Capacitación a brigadas para trabajo de campo ..................................... 34

Muestreo en campo .................................................................................. 35

Identificación de especies......................................................................... 35

Asesoramiento en el levantamiento de datos en campo .......................... 37

Ensayos de germinación .......................................................................... 37

Recopilación de información de campo ................................................... 38

Procesamiento de información ................................................................. 39

Análisis de resultados ............................................................................... 39

RESULTADOS ............................................................................................... 41

ESPECIES DE ERYNGIUM EN EL PNPO ............................................................. 41

DISTRIBUCIÓN EN PARQUE NACIONAL PICO DE ORIZABA Y ZONAS CIRCUNDANTES56

E. proteaeflorum ....................................................................................... 56

E. deppeanum .......................................................................................... 57

E. carlinae................................................................................................. 57

CALENDARIO FENOLÓGICO .............................................................................. 58

PROPUESTA METODOLÓGICA DE PROPAGACIÓN DE ERYNGIUM PROTEAEFLORUM. 60

Recolección de semillas ........................................................................... 60

Obtención y separación de semillas ......................................................... 61

Manejo post-cosecha de semillas ............................................................. 61

Germinación de la semilla ........................................................................ 62

CONCLUSIONES........................................................................................... 65

RECOMENDACIONES .................................................................................. 66

BIBLIOGRAFÍA.............................................................................................. 67

ANEXOS ........................................................................................................ 70


4

ÍNDICE DE TABLAS Y FIGURAS

Tabla 1. Cronograma de actividades ......................................................................... 32

Tabla 2. Calendario fenológico .................................................................................. 58

Figura 1. Encuadre taxonómico del género Eryngium L. .......................................... 11

Figura 2. Tendencias de agrupación y distribución del género Eryngium . ............... 13

Figura 3. Agrupación del reino vegetal ..................................................................... 19

Figura 4. Características de la clasificación del reino de las plantas . ....................... 19

Figura 5. Diferencia entre semilla monocotiledónea y dicotiledónea . ....................... 21

Figura 6. Semilla de Malus domestica . .................................................................... 26

Figura 7. Esquema de la fecundación en una flor ..................................................... 30

Figura 8. Capacitación teórica para identificación de áreas de distribución .............. 34

Figura 9. Recorridos de campo para capacitación práctica ....................................... 34

Figura 10. Recorrido y muestreo ............................................................................... 35

Figura 11. Colecta botánica ....................................................................................... 36

Figura 12. Ejemplar de colecta botánica ................................................................... 37

Figura 13. Pruebas pre-germinativas en modo “piloto”.............................................. 38

Figura 14. Ilustración de Eryngium proteaeflorum F. Delaroche .............................. 43

Figura 15. Eryngium proteaeflorum. .......................................................................... 44

Figura 16. Ilustración de Eryngium deppeanum Cham y Schlecht ........................... 47

Figura 17. Eryngium deppeanum Cham y Schlecht ................................................. 48

Figura 18. Ilustración de Eryngium carlinae, Delar. ................................................... 51

Figura 19. Eryngium carlinae Delar ........................................................................... 52

Figura 20. Detalle taxonómico, Eryngium proteaeflorum ........................................... 53

Figura 21. Detalle taxonómico, Eryngium deppeanum .............................................. 54

Figura 22. Detalle taxonómico, Eryngium carlinae .................................................... 55

Figura 23. Sitio con abundante . ............................................................................... 57

Figura 24. Proceso fenologico de Eryngium proteaeflorum. ...................................... 59

Figura 25. Proceso de propagacion........................................................................... 63

Figura 26. Semillas de E. proteaeflorum ................................................................... 64

Página


5

TITULO DEL ESTUDIO TECNICO

Diseño inicial de una propuesta metodológica para la reproducción de plantas del

género Eryngium L.

DESCRIPCION

Objetivos

General

Evaluar la situación ecológica del género Eryngium L., así como los

aspectos que se relacionen con los periodos de floración y

reproducción de las plantas.

Específicos

Identificar las especies del genero Eryngium L. presentes en la zona

norte del Parque Nacional Pico de Orizaba.

Elegir áreas de distribución donde las plantas presenten las

características relacionadas con floración y semillación.

Evaluar los protocolos de germinación descritos en la literatura para

el género Eryngium L. y generar una propuesta propia para su

reproducción en vivero.

Metas

Una propuesta metodológica para la germinación de semillas de

plantas de género Eryngium L., que sirva para la posterior

reproducción de plantas en viveros.

La elaboración de dos fichas descriptivas de las especies de

Eryngium encontradas en el Parque Nacional Pico de Orizaba.

Una memoria fotográfica del monitoreo realizado.


6

Un mapa de los sitios de muestreo de Eryngium L. spp.

Dos ilustraciones que detallen taxonómicamente a las especies de

Eryngium L. encontradas.

Cobertura geográfica

El estudio cubrió una superficie estimada de 10, 000 hectáreas dentro del Parque

Nacional Pico de Orizaba y zonas colindantes.


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8

INTRODUCCIÓN

La conservación de la biodiversidad es un tema que ha venido ganando relevancia de

forma progresiva en nuestra sociedad. La conservación de la flora silvestre constituye

una pieza clave dentro de este enmarque. No sólo se trata de la obligación ética de

preservar este legado que se nos ha dado para las generaciones venideras o del puro

interés científico que puede aportar (Iriondo, 2001).

A pesar del creciente interés suscitado por la diversidad de la flora silvestre, la

actividad humana está ocasionando un progresivo deterioro de la misma. (Iriondo,

2001), con los avances vertiginosos de la modernidad, estamos viviendo una etapa

de deterioro ambiental a escala mundial lo que está conllevando, a su vez, a

protagonizar una de las mayores extinciones planetarias de especies vegetales y

animales, y con ello la pérdida irreparable en el aprovechamiento que de ellos derivan,

tanto reales como potenciales (Arizaga,2007).

Lo anterior se ve reflejado en la extracción intencional de especies de interés

comercial y visual, como lo es el caso de la Rosa del Volcán (Eryngium spp) en el

Parque Nacional Pico de Orizaba (PNPO) (Diario6EnPunto, 17/08/2013;

ElMundoDeOrizaba, 01/07/2014).

Para el caso específico del PNPO, se estima que anualmente recibe un promedio de

5 mil a 6 mil visitantes, que arriban por las rutas existentes en ambos estados

(Veracruz y Puebla), no existiendo un orden en las actividades lo cual genera

diversos impactos por contaminación, erosión en caminos, veredas y brechas,

además de que no se tiene un registro de la extracción de flora y fauna silvestres.

Se estima que el Pico de Orizaba anualmente recibe un promedio de 5 mil a 6 mil

visitantes, que arriban por las rutas existentes en ambos estados (PNPO, 2012).


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Debido a ello, las plantas del genero Eryngium spp. se ven amenazadas en su zona

de distribución natural y por lo tanto es de suma importancia desarrollar un protocolo

de reproducción de la misma para asegurar su continuidad en dicha área, actividad

que a su vez puede favorecer económicamente al Área Natural Protegida (ANP),

PNPO y las localidades circunvecinas, proponiendo el uso sustentable de la especie.

ANTECEDENTES

Las Eryngium L. constituyen uno de los géneros más extensos y con mayores

dificultades taxonómicas entre las Apiaceae; para México se han registrado alrededor

de 60 especies, dentro de las que se encuentra E. monocephalum, E. proteiflorum y

E. foetidum L. su distribución tiene lugar en pastizales, bosques de pino-encino y de

coníferas (García-Ruiz, 2013). De este género se han realizado estudios aislados,

algunos descriptivos en E. protaeflorum (CONANP, 2013), de composición química y

medicinal en E. monocephalum (Arizaga, 2007) y de propagación en E. foetidum L.

(Santiago-Santos, 2001).

La familia Umbelliferae Juss comprende unos 300 géneros con un total de 2500

o 3000 especies, distribuidas prácticamente por de todo el mundo, con preferencia

por zonas templadas de cierta altura y, con menos frecuencia, zonas tropicales

(Heywood, 1979, citada en Palá, 2002), en varios países han desarrollado

investigaciones de diversa índole con numerosas especies del género, aunque con

menor frecuencia que otros géneros, Palá (2002), realizó una tesis referida a los

aceites esenciales de plantas del género Eryngium L.; Lallana y Salinas (2003),

Evaluaron las viabilidad de frutos de Eryngium horridum; Elizalde, Rochi, Lallana y

Lallana (1998), realizaron un estudio titulado: esfuerzo reproductivo de Eryngium

paniculatum, en Paraná, Argentina; Necajeva y Levinsh (2013), Evaluaron la latencia

y germinación de la semilla de Eryngium maritimum.

Para el Parque Nacional Pico de Orizaba y sus zonas circunvecinas, no existían hasta

el momento estudios relacionados a Eryngium spp.


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MARCO TEÓRICO

Genero Eryngium

Encuadre taxonómico y características

El género Eryngium L., pertenece a la familia Umbeliferae Juss., conocidas

también como Apiaceae (Hervario virtual, s.f.; Xing, 2005), una de las mejor

conocidas de las angiospermas por sus características inflorescencias,

infrutescencias y su típica química distintiva, manifestada por el olor, sabor y

toxicidad de muchas de sus especies. Sus componentes se distribuyen

desigualmente entre y dentro de los hemisferios oriental y occidental. En cada

hemisferio se reconocen dos centros de diversidad: el oeste de la región del

Mediterráneo y el suroeste de Asia, y la zona centro-occidente de México y centro-

oriente de Sudamérica (Turmel, 1948, citado en García-Ruiz, 2013).

En general, la mayoría de las umbelíferas son herbáceas fistulosas anuales, bianuales

o perennes. Algunas desarrollan un cierto grado de fruticosidad, pero otras son

completamente arbustivas o incluso arbóreas, como Eryngium bupleuroides Hook.

& Arn., E. inaccesum Skottsb., y E. sarcophyllum Hook. & Arn., originarios de

las Islas de Juan Fernández, Myrrhidendron de las cumbres montañosas de

América Central y del Sur y, también arbustivas como Bupleurum fruticosum L.

Otras son espinosas como los cardos del género Eryngium L., y las especies

neozelandesas de Aciphylla. El tipo principal de inflorescencia da nombre a la familia

y puede ser simple o compuesta. En estas últimas normalmente umbelas de umbelas,

suelen presentar brácteas basales en sus radios formando un involucro. Al igual que

en las umbélulas formando un involucelo. En ocasiones este tipo de inflorescencia

está muy modificada y reducida a una única flor como en Hydrocotyle y Azorella,

o aparecen flores sentadas y agrupadas en capítulos densos rodeados de brácteas

espinosas como en el caso de Eryngium y, también pueden aparecen dicasios como

en Petagnia. La mayoría de los representantes de esta familia tienen, por lo general,

un tipo de flor consistente en un cáliz muy reducido, 5 pétalos, 5 estambres libres,


11

ovario ínfero con 2 carpelos y 2 lóculos, con un único óvulo anátropo péndulo en cada

uno y un estilopodio que sostiene 2 estilos (Palá, 2002).

Figura 1. Encuadre taxonómico del género Eryngium L.

El género Eryngium L. engloba, en su mayoría, hierbas glabras con nomófilos de

simples a tripinnatisectos, los superiores suavemente espinados o puntiagudos.

Inflorescencias compuestas, por lo general umbelas de capítulos simples o

compuestas. Los capítulos hemisféricos, cilíndricos o racimosos y protegidos

basalmete por brácteas (tres o más), reúnen de 5 a 80 flores con brácteas interflorales.

Brácteas espinosas, de obtusas a acuminadas, por lo general simples (Palá, 2002).


12

Bractéolas cuspidadas, al menos en los bordes del capítulo. Tanto las brácteas

como las bractéolas presentan margen engrosado y espinoso. Sépalos rígidos,

dentados y escamulosos. Pétalos emarginados de unos 4 mm., erectos, más

cortos que los sépalos y recubriendo a los estambres antes de la antesis. Fruto en

esquizocarpo, de ovoide a subgloboso, más o menos cubierto por escamas.

Mericarpos plano-convexos ligeramente rígidos. Costillas normalmente delgadas.

No presentan carpóforo (Palá, 2002).

Distribución

En América, Eryngium L. se desarrolla en varios hábitats entre los cuales destacan

lugares pantanosos, bosques, así como zonas abiertas con pastizal. Sus especies

crecen en el oeste, centro y sureste de Estados Unidos de América y hacia el sur a

través de México, las Antillas, América Central, y norte de Sudamérica (Perú, Ecuador,

Venezuela), a lo largo de los Andes y Bolivia hasta Brasil, Paraguay, Uruguay y el

norte y centro de Argentina (Calviño et al., 2008 citado en García-Ruiz, 2013).

Se considera que E. beecheyanum, E. carlinae, E. ghiesbreghtii, E. gracile, E.

heterophyllum y E. serratum presentan una amplia distribución, ya que se reportan de

numerosas entidades federativas de la República Mexicana. Algo similar, pero menos

frecuentes son E. alternatum, E. bonplandii, E. columnare, E. longifolium y E. mexiae,

que se conocen de algunos estados del país. Por otra parte, E. monocephalum y E.

proteaeflorum, restringen su área a las partes altas del Eje Volcánico Transversal. A

su vez E. mexicanum, E. phyteumae y E. sparganophyllum muestran una distribución

disyunta, presentándose en la porción sur de Estados Unidos de América y al norte-

centro de México. Por último las especies E. cervantesii, E. comosum, E. cymosum,

E. spiculosum y E. subacaule habitan en el sector centro-occidente de México,

considerándose endemismos de esta región (García-Ruiz, 2013).


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Para el estado de Michoacan, México, García-Ruiz (2013), registro 21 especies de

Eryngium: E. alternatum, E. beecheyanum, E. bonplandii, E. carlinae, E. columnare,

E. cervantesii, E. comosum, E. cymosum, E. ghiesbreghtii, E. gracile, E. heterophyllum,

E. longifolium, E. mexiae, E. mexicanum, E. monocephalum, E. phyteumae, E.

proteaeflorum, E. serratum, E. sparganophyllum, E. spiculosum y E. subacaule.

Cuyas tendencias de agrupacion se muestran en la figura 2.

Figura 2. Diagrama sobre las tendencias de agrupación y distribución de las especies del género Eryngium en los diferentes ecosistemas en que se desarrollan con respecto a la altitud y al clima en el estado de Michoacán (Extraída de García-Ruiz, 2013).


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Así mismo se reportan especies de Eryngium L. en las Áreas naturales Protegidas de

México como: Parque Nacional El Chico, Parque Nacional Nevado de Toluca, Parque

Nacional Izta-Popo, Parque Nacional Pico de Orizaba, entre otros (Vargas, 1997;

Neyra, 2012; CONANP. s.f.; PNPO, 2012).

Parque Nacional Pico de Orizaba

El Parque Nacional Pico de Orizaba (PNPO) fue establecido mediante Decreto

Presidencial publicado en marzo de 1937, pero no fue sino hasta el año 2003 cuando

se inició su manejo y se asignó personal de la CONANP para trabajar en la región

(CONANP, 2011, citado en Villegas, Muñoz, Muñoz, Gallo y Ponce, 2011).

Localización

El Parque Nacional Pico de Orizaba, ubicado en territorio de los estados de

Puebla y Veracruz, en el límite Este del Eje Neovolcánico Transversal (PNPO, 2012),

Cuenta con una superficie de 19,750 ha, localizadas entre los 18° 56’ 56” y 19° 09’ 40”

de latitud norte y los 97° 22’ 17” y 97° 12’ 17” de longitud oeste (Werner 1996 citado

en Villegas et. al., 2011 ). Presenta un rango altitudinal que va de los 2700 a 5760

metros sobre el nivel del mar (Vargas, 1997).

En el Estado de Puebla, se localiza en los Municipios de Tlachichuca, Chalchicomula

de Sesma, Atzitzintla; y en Veracruz (Calcahualco y La Perla). La tenencia de la tierra

se distribuye de la siguiente manera: Ejidal 3500 hectáreas (17.72%), particular

4000 hectáreas, (22.53%), no identificada 11,200 hectáreas (54.69%), municipal,

1,000 hectáreas (5.06%) (Vargas, 1997).

Características climáticas

Presenta tres tipos de climas: EF, muy frío. ETH, frío con lluvias en verano. Semifrío,

subhúmedo. Isotermas de -2 a 12°C. Isoyetas de 1,000 a 1,200 milímetros (Vargas,

1997)


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La variación de climas en el Parque Nacional es muy amplia; por un lado, en la parte

veracruzana, de acuerdo con el gradiente altitudinal, va de templado subhúmedo (Soto,

2007, citado en PNPO, 2012) a semifrío; el régimen de lluvias es de verano, este

último es largo y fresco e isotermal, es decir, con oscilación de temperatura mensual

inferior a 5º C con marcha de temperatura tipo Ganges (García, 1988, citado

en PNPO, 2012), de acuerdo con esta última autora la clasificación climática sería

C(w2)b. La precipitación total es de 1,698 mm anuales. La temperatura media es de

9.3º C y los extremos van de 27º C en mayo a -4º C en enero. Se registran en promedio

238 días nublados y 146 con neblina durante el año (PNPO, 2012).

Las zonas glácidas del Citlaltépetl ocupan sobre todo la parte norte del cono superior

y la porción existente entre éste y el llamado Sarcófago u Hombro Azul (5080 m),

derramándose después en distintas direcciones, posiblemente siguiendo la

topografía que dejaron las antiguas efusiones de lava. Toda la ladera norte está

cubierta por el hielo hasta diversas alturas, siendo la más baja la de las dos lenguas

en que se divide el glaciar de Jamapa. Toda la masa de hielo se derrama, como dijimos,

en distintas direcciones, abundando más lenguas en la parte oeste (Vargas, 1997).

Siendo el Volcán Citlaltépetl factor dominante entre los vientos de sotavento y

barlovento la humedad generada en el Golfo de México, aunado a la altura

máxima (5,747 msnm) propicia la formación de mantos freáticos, deshielos, arroyos

y ríos que son alimentados por los glaciares del mismo volcán y su condición

geográfica propia de lluvia y humedad ambiental, catalogándose los ríos por su

alimentación de tipo nivoso pluvial y a través del estudio de la erosión de los

mismos son considerados como ríos jóvenes. Al mantenerse las bajas temperaturas

en la zona se disminuye notablemente los efectos de la evaporación lo que mantiene

a sus ríos perennes durante todo el año (PNPO, 2012).


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Hidrología

Los ríos más importantes que se encuentran u originan dentro del polígono del Parque

Nacional son el Blanco, el Cotaxtla, el Jamapa, el Metlac y el Orizaba, todos

forman parte de la cuenca alta del Papaloapan, en Veracruz (PNPO, 2012). Los

siguientes Arroyos: Puente de Viga, Paso de Buey, San Antonio Blanco (Vargas,

1997). Es importante mencionar que el río Blanco recibe los afluentes de los

ríos Metlac y Orizaba, formando en su curso las cascadas de Rincón Grande,

Barrio Nuevo y Tuxpango, aprovechadas para generar energía eléctrica y para el

abastecimiento de agua a muchas poblaciones de la zona centro de éste estado, como

Orizaba y Córdoba; de acuerdo con la Comisión Nacional del Agua (CONAGUA), el

gasto de los ríos Blanco y Jamapa representa en conjunto 1,295,600 m3 (PNPO, 2012).

Considerado como una importante área de captación para la recarga de acuíferos y

el mantenimiento de la red hidrológica superficial de una de las Cuencas más

importantes en el país, la del Papaloapan. Específicamente el Parque Nacional Pico

de Orizaba se ubica en las Regiones Hidrológicas 28 y 18: la primera corresponde

a la Cuenca Hidrológica del Río Papaloapan; la segunda corresponde a la Cuenca

Hidrológica del Río Balsas, que drena a Tehuacán - Puebla (PNPO, 2012).

Fauna

Los principales mamíferos del área son los zorrillos (Conepatus leuconotus y

Mephitis macroura); el armadillo (Dasypus novemcintus), musarañas (Cryptotis

mexicana, Sorex macrodon, Sorex oreopolus, Sorex saussurei y Sorex ventralis),

el coyote (Canis latrans), zorra gris (Urocyon cineroargenteus), gato montés (Lynx

rufus), zorrillo (Conepatus leuconotus), comadreja (Mustela frenata), cacomixtle

(Bassariscus astutus), ardilla voladora (Glaucomas volans), ardilla gris (Sciurus

oculatus), tuza (Cratogeomys merriami), y murciélagos (Anoura geoffroyi, Artibeus

intermedius, Choeronycteris mexicana, Dermanura azteca, Eptesicus fuscus,

Laciurus intermedius, Micronycteris microtis, Mollosus aztecus, Myotis californicus,

Myotis velifer) (PNPO, 2012; Martínez-Vázquez, González-Monroy y Díaz-Díaz, 2010).


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Los anfibios y reptiles dentro de los ecosistemas que habitan, son importantes

actores de la cadena trófica, como presas y depredadores. A estos grupos se les

considera indicadores de la calidad de los ecosistemas que los albergan. En total

se han identificado 48 especies de Anfibios y Reptiles, de los cuales 27 son

endémicas; 21 están protegidas y 10 se encuentran amenazadas. En el Parque

Nacional Pico de Orizaba se distribuyen Tanas, Salamandras, Tlaconetes, Falso

Escorpión, Lagartijas, Chintetes, Culebras y Víboras de Cascabel endémicas a México

(PNPO, 2012).

La porción central del estado de Veracruz, ha sido considerada como un área

importante para la conservación de las aves (AICA). Se han registrado 257

especies de aves, de las cuales 79% son residentes permanentes, el 16% son

residentes de invierno y 5% son transitorias (PNPO, 2012).

Flora

En el Parque Nacional Pico de Orizaba se presentan, según la clasificación de Miranda

y Hernández X., (1963, citados en PNPO, 2012), cuatro tipos de vegetación: bosque

de pino, bosque de oyamel, pastizal y páramo de altura. Hasta ahora se han

identificado más de 639 especies de flora (PNPO, 2012). Los primeros son los más

abundantes y se localizan desde los 2 000 hasta los 4 000 msnm. En las zonas bajas

del parque nacional hasta los 3000 msnm se ubican bosques dominados por tres

especies de pinos: Pinus patula, Pinus pseudostrobus y Pinus montezumae,

mezclados con árboles de madroño (Arbutus xalapensis), ailes (Alnus acuminata) y

Tilia mexicana, entre otros. El estrato arbustivo de estos bosques es generalmente

poco desarrollado y tiene un número limitado de especies, se encuentran individuos

esparcidos de Cestrum benthami, Yucca elephantipes, Oreopanax echinops y

Phymosia rosea; mientras que las hierbas más comunes son Cymbispatha

commelinoides, Gibasis schiedeana, Bidens triplinervia, Bidens pilosa, Panicum

maximum, Salvia xalapensis y Dymaea floribunda (Rodríguez et. al., 2011).


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A partir de los 3,000 msnm los pinos dominantes son Pinus hartwegii, los cuales

llegan hasta el límite arbóreo, ubicado cerca de los 4,000 msnm; en estos bosques

es común encontrar la hierba Lupinus montanus y los pastos amacollados de Agrostis

tolucensis y Mulhenbergia spp (Rodríguez et. al., 2011).

Los bosques de oyamel se encuentran en las laderas húmedas y las barrancas,

preferentemente entre las altitudes de 2 600 a 3 200 msnm, ubicados entre los pinares

bajos dominados por Pinus patula y los altos de Pinus hartwegii. Las dos especies

dominantes de esta comunidad, que frecuentemente alcanzan más de 30 m de altura,

son Abies religiosa y Abies hickelii, que pueden asociarse con Pinus ayacahuite,

Taxus globosa, Litsea glaucescens, Sambucus canadensis, Ribes ciliatum, Alnus

acuminata y Quercus orizabae. Los arbustos más comunes son Fuchsia microphylla,

Miconia hyperprasina, Rubus trilobus y Chusquea mulleri; mientras que las hierbas

más frecuentes son Agrostis thyrsigera, Brachypodium mexicanum, Cochlidium

rostratum, Salvia gracilis, Senecio orizabensis y Alchemilla procumbens (Rodríguez et.

al., 2011).

Por arriba de la cota de los 4,240 msnm el tipo de vegetación dominante está

constituido por zacatonal alpino de Festuca sp. e Hilaria sp., es posible que se

presenten Calamagrostis tolucensis, Festuca tolucensis, Trisetum spicatum, Draba

nivicola, Arenaria bryoides, Draba jorullensis, Circium nivale, Gnaphallium

lavaendulum, Oxilobus arbutifolius, Castilleja tolucensis, Muhlenbergia macroura,

Lupinus montanus, Ottoa oenanthoides, Lewisia megarhiza, Asplenium castaneum,

Arenaria lucopodoides, Erysimum macrademium y Senecio callosus. Las críticas

condiciones climáticas sólo permiten la presencia aislada de Juniperus monticola,

que crecen sobre las rocas y alcanzan una altura de tan solo 50 cm y un diámetro de

copa de 1,5 a 2 metros. El tipo de suelo donde se desarrolla esta vegetación

corresponde la regosol eutrico (PNPO, 2012).


19

Este tipo de vegetación es de gran importancia ecológica ya que protege las cuencas

evitando la pérdida de suelo por erosión, asegurando la infiltración del agua,

contribuyendo a la preservación de los ciclos biogeoquímicos, evitando el

asolvamiento de ríos, presas, lagos. Ocupa una superficie de 4,724.80 ha dentro del

Parque Nacional (PNPO, 2012).

Plantas

El reino vegetal agrupa a unas 260.000 especies, agrupadas de la siguiente manera

(Jiménez s.f.):

Figura 3. Agrupación del reino vegetal (extraída de Jiménez, s.f.)

Las características de esta clasificación se muestran a continuación:

Figura 4. Características de la clasificación del reino de las plantas (extraída de Jiménez, s.f.).


20

Los Briofitos son conocidos como musgos, mientras que los Cormófitos presentan una

organización más compleja que los musgos, se diferencia raíz, tallo y hojas

(estructura tipo cormo), los Pteridófitos se refieren de manera general a los helechos

(Jiménez s.f.).

Jiménez (s.f.), describe a la subdivisión Espermatofitos como plantas bien adaptadas

al medio terrestre. En ellas observamos las partes típicas de una planta con

estructura tipo cormo, es decir, raíz, tallo y hojas. Sin embargo, su característica más

representativa es que poseen flores y forman semillas. Habitan en los lugares más

diversos de la tierra. Las más antiguas son las gimnospermas, y las más

evolucionadas son las angiospermas, que a su vez se clasifican en

monocotiledóneas y dicotiledóneas.

Las gimnospermas son plantas espermatófitas (con semillas) cuyos óvulos y semillas

no se forman en cavidades cerradas. Sus carpelos no se diferencian en ovario, estilo

y estigma (Garrido y Fernández, 2010).

Las angiospermas forman el mayor grupo de plantas terrestres, son plantas cormofitas,

es decir, con tejidos y órganos perfectamente diferenciados. Todas las angiospermas

tienen flores (aunque no siempre corresponden a la idea común que todos tenemos

de una flor), que producen semillas encerradas y protegidas por la pared del ovario

(carpelos) que, posteriormente, se convierte en fruto (Garrido y Fernández, 2010).

Pueden ser plantas herbáceas, arbustivas o arbóreas. Reproducción en las

angiospermas: el aparato reproductor o gametofito está constituido por la flor, que

puede contener a la vez las estructuras femeninas (carpelo o pistilo) y masculina

(estambre), o bien pueden estar en plantas o flores diferentes. El polen o gameto

masculino debe ser trasladado al pistilo (polinización) donde se desarrolla un tubo

polínico que fecunda al óvulo y éste se transforma en semilla. Por sus semillas se

clasifican en: dicotiledóneas y monocotiledóneas (Garrido y Fernández, 2010).


21

Las Angiospermas se dividen en dos subclases, atendiendo al número de

cotiledones que aparecen en la semilla (Jiménez, s.f.):

Dicotiledóneas (2 cotiledones): hojas con nervios ramificados y raíz

pivotante.

Monocotiledóneas (1 cotiledón): hojas con nervios paralelos y raíz

fasciculada.

Figura 5. Diferencia entre semilla monocotiledónea y dicotiledónea (extraída de Borgueresi y Silva, 1985).


22

Propagación de plantas

Tipos de propagación

Las plantas presentan una complejidad de sistemas y combinaciones reproductivas

que ni remotamente presentan los animales, la persistencia de las especies vegetales

en el tiempo, se logra a través del paso de los genes de una generación a otra. Esto

se alcanza tanto a través de la propagación asexual como de la reproducción sexual.

(Eguiarte, Núñez-Farfan, Domínguez y Cordero, s.f.; Rojas, García y Alarcón, 2004;

Jiménez y Matías 2010).

Propagación asexual

La propagación vegetativa o clonación se define como la reproducción de una planta

a partir de una célula un tejido, un órgano (raíces, tallos, ramas, hojas). En teoría,

cualquier parte de una planta puede dar origen a otra de iguales características según

sean las condiciones de crecimiento (luz, temperatura, nutrientes, sanidad, etc.).

Esto se debe a que muchas de las células de los tejidos vegetales ya maduros

conservan la potencialidad de multiplicarse, de diferenciarse y dar origen a diversas

estructuras como tallos y raíces; estos grupos celulares forman parte de

meristemos primarios y secundarios que pueden encontrarse en todos los órganos de

las plantas. Las células no diferenciadas que los conforman tienen la información

genética y las propiedades fisiológicas de producir una nueva planta con iguales

características de la planta madre, propiedad conocida como totipotencia (Rojas et. al.

2004).

La propagación asexual ha sido de especial importancia en vegetales que viven en

ambientes extremos y donde se presentan limitaciones ambientales para que la

reproducción sexual sea exitosa (climas extremosos). Su principal ventaja radica en

que es una forma económica de producir descendientes, ya que no se gasta energía

ni recursos en la formación de flores y frutos, y presenta la ventaja de que la

información genética del progenitor pasa completa a su descendencia, sin pagar el


23

precio de la meiosis o disminución de información genética que se produce cuando se

forman gametos (óvulos y polen), que sólo contienen la mitad de la información

genética del progenitor (Jiménez y Matías, 2010), ahora bien, no es una forma muy

frecuente en plantas anuales ni bianuales, pero si lo es en herbáceas perennes,

arbustos, enredaderas y bejucos. Muy pocos arboles la presentan, como es el caso

de los géneros Populus, Ulmus, Prunus, mientras que en las plantas acuáticas es la

forma más extendida, por ejemplo el lirio acuático Eichhornia crassipes (Eguiarte et.

al. s.f.).

Propagación sexual

La reproducción sexual, por su parte, puede considerarse como un fenómeno costoso,

ya que además de presentar costos meiosis, en los que cada hijo no recibe más que

la mitad de los genes de cada progenitor, requiere de la inversión de recursos del

presupuesto, no sólo para la formación de gametos (femeninos y masculinos), sino

también de otras estructuras que aseguran el éxito reproductivo, como lo son la

formación de flores con estructuras como sépalos, pétalos, estambres y substancias

atrayentes para los polinizadores. Además, una vez que se logra la fecundación del

gameto femenino (óvulo), se requiere de recursos y energía destinada a consolidar la

maduración de éste con el embrión y las sustancias que lo nutrirán después de la

germinación. Adicionalmente, se requiere de la asignación de energía y recursos

destinados a la formación de frutos maduros y apetecibles, destinados a ser manjar

de los animales que funcionarán como consumidores de la pulpa de los frutos y, al

mismo tiempo, como dispersores de las semillas (Jiménez y Matías, 2010).

Polinización

Para que una planta produzca semillas es necesario que los granos de polen de una

flor lleguen al pistilo de otra, para que puedan fecundar los óvulos, generalmente

ubicados en la parte inferior de la flor (Arias, Velarde y Reyes, 2000).


24

Para llevar a cabo el transporte de polen desde una la flor hacia la otra, muchas veces

es necesaria la ayuda de ciertos agentes conocidos como polinizadores. Estos

agentes muchas veces son animales como los murciélagos, algunas aves como los

colibríes y ciertos tipos de insectos como abejas, mariposas o palomillas. Así como

existe una gran variedad de plantas con flor, también existe un gran número de

animales que sirven como agentes polinizadores; incluso algunos animales actúan

como polinizadores exclusivos de una sola especie de planta. En algunas plantas el

agente polinizador es sencillamente el viento (Arias, Velarde y Reyes, 2000).

Semillas

Cuando las flores han sido polinizadas, se inicia el proceso de formación de los frutos,

durante el cual se da la maduración de las semillas (Arias, et. al., 2000), la semilla se

forma a partir del rudimento seminal, localizado en el ovario de las flores (Molist,

Pombal y Megías, 2011).

De acuerdo a Molist et. al. (2011), se pueden distinguir diferentes partes en una

semilla:

Embrión.

Tiene su origen en la fusión de un núcleo generativo del grano de polen con la

ovocélula que se encuentra en el saco embrionario. La célula diploide resultante de la

fecundación comienza con una primera mitosis que dará dos células. La célula más

interna será la responsable de formar el embrión, la más externa y por diversas

divisiones mitóticas siempre transversales forma una estructura denominada

suspensor que tiene como misión unir el embrión a los otros tejidos del rudimento

embrionario. En el caso de las semillas dicotiledóneas la célula que forma inicialmente

el embrión se divide en dos por medio de un tabique longitudinal, separando los futuros

cotiledones.


25

Endospermo secundario.

Procede de la fusión de un núcleo generativo con los dos núcleos centrales del saco

embrionario formando un tejido triploide. Esto ocurre en las angiospermas. Para el

caso de las gimnospermas el tejido nutritivo es haploide y se denomina endospermo

primario. El endospermo es un tejido de reserva que proporciona nutrientes al embrión

y durante las primeras fases del desarrollo de la planta. Pero en algunas especies hay

un tejido de reserva adicional formado por células de la nucela, parte del rudimento

seminal, y que forman el denominado perispermo. Por tanto tendríamos tejido nutricio

formado por perispermo y endospermo. En cualquier caso las células nutricias

almacenan granos de almidón o proteínas que pueden formar gránulos amorfos

llamados glútenes o complejos proteicos cristalizados llamados granos de aleurona.

Cubiertas protectoras.

Estas envueltas de la semilla se originan principalmente a partir de los tegumentos

interno y externo del rudimento seminal que se convertirán en el tégmen y la testa de

la semilla, respectivamente. Conjuntamente se denominan epispermo o cubierta

seminal. Histológicamente hay una gran variedad en la organización de la cubierta de

la semilla según las diferentes especies de plantas ya que estas envueltas protectoras

pueden proceder de las células de la nucela o incluso del saco embrionario. En

cualquier caso son cubiertas protectoras que adquieren una gran consistencia la

mayor´ıa de las veces, aunque otras veces pueden llegar a ser carnosas. En la

superficie de las semillas siempre hay una cicatriz denominada el hilio que

corresponde al punto de unión del rudimento seminal con el funículo.


26

Figura 6. Semilla de Malus domestica (obtenida de Molist et. al. 2011).

Las semillas se clasifican como ortodoxas o tolerantes a la desecación cuando son

capaces de mantener su viabilidad tras ser desecadas a menos de 5-10 % de

contenido en humedad. Por el contrario, las semillas recalcitrantes o sensibles a la

desecación pierden viabilidad cuando se desecan por debajo de un límite crítico,

habitualmente entre 12-30 % de contenido en humedad (Chin y Roberts, 1980 citado

en Iriondo, 2001)

Latencia

Se entiende por latencia o dormición al estado en el cual una semilla viable no germina

aunque se la coloque en condiciones de humedad, temperatura y concentración de

oxigeno idóneas para hacerlo. De ello se dedica, que las semillas pueden mantener

su viabilidad durante largos periodos de tiempo. Esta es una de las propiedades

adaptivas más importantes que poseen los vegetales, gracias a ello, las semillas

sobreviven en condiciones desfavorables y adversas, aunque no indefinidamente

(García, Roselló y Santamarina, 2006).


27

Una semilla nunca podrá germinar si no dispone de agua para embeber y

permanecerá latente aunque el resto de las condiciones externas sean adecuadas

para su germinación. También un exceso de agua puede inhibir la germinación de una

semilla; por ejemplo, si se encuentra totalmente inmersa en el agua, en ese caso la

semilla no podrá realizar los intercambios gaseosos con el medio necesitados para la

respiración (De La cuadra, s.f.).

Temperaturas excesivamente altas o bajas pueden hacer que una semilla sea incapaz

de germinar aunque disponga de agua en la cantidad adecuada, la semilla quedará

latente por sufrir una termoinhibición. Asimismo, una semilla que necesita germinar en

la oscuridad quedará en estado latente por la presencia de la luz, pues su germinación

sufrirá una fotoinhibición (De La cuadra, s.f.).

Tipos de latencia

Los factores responsables de la latencia (latencia innata) son muy diversos, pero

podemos agruparlos en tres grupos: exógena, endógena y latencia combinada (García,

et. al. 2006). La morfológica a su vez puede ser morfológica o fisiológica (Ruiz, s.f.).

Exógena

Es la latencia que se presenta específicamente en el pericarpio o parte externa

de la semilla, generada por varios factores y que se clasifica a su vez en: latencia

física, aquella en la que la testa de la semilla es dura e impermeable al agua; latencia

química, que se propicia por la presencia o acumulación de inhibidores o sustancias

químicas en la cubierta; y latencia mecánica, que se da cuando la testa es

extremadamente dura y no permite el crecimiento del embrión (Crocker, 1916; Bibbey,

1948 y Nikolaeva, 1969, citados en Ruiz, s.f.).


28

Endógena morfológica

Se presenta cuando hay un subdesarrollo del embrión y se genera

específicamente por la presencia de embriones rudimentarios llamados también

pro-embriones, o por la presencia de embriones poco desarrollados que sólo ocupan

la mitad de la cavidad de las semillas; en ninguno de los dos casos las semillas están

listas para la germinación (Crocker, 1916; Bibbey, 1948 y Nikolaeva, 1969, citados

en Ruiz, s.f.).

Endógena fisiológica

Se presenta en el interior de los tejidos, por dos fenómenos principalmente, el primero,

ocasionado por la semipermeabilidad en las cubiertas de las semillas, y el segundo,

por la dormancia del embrión. Específicamente, este grupo se divide en cuatro

categorías: latencia fisiológica, superficial, intermedia y profunda, dependiendo de

la debilidad o fuerza del mecanismo inhibidor (Crocker, 1916; Bibbey, 1948 y

Nikolaeva, 1969, citados en Ruiz, s.f.).

Combinada

Combinaciones de tipos de latencia, como es el caso de la morfofisiológica y la

endógena-exógena (Crocker, 1916; Bibbey, 1948 y Nikolaeva, 1969, citados en Ruiz,

s.f.).

Germinación y establecimiento

Una vez que las semillas caen al suelo, ahí deben esperar hasta que se presenten las

condiciones ambientales adecuadas para su germinación. Estas condiciones llegan

generalmente en el verano, cuando empieza la temporada de lluvias, época en que

las semillas absorben aguay pueden germinar, dando lugar a una planta joven (Arias,

et. al., 2000).


29

Cuando las semillas germinan a pleno sol, las plantas que producen suelen morir

pronto. Sin embargo, cuando las semillas germinan bajo la sombra de algún arbusto,

éstas se encuentran protegidas de la desecación que el sol produce, de tal manera

que pueden vivir por más tiempo, muchas veces hasta convertirse en plantas adultas

(Arias, et. al., 2000).

La germinación de las semillas comprende tres etapas sucesivas (Vázquez-Yanes, et

al., 1997, citado en Del amo, Vergara, Ramos y Sainz, 2002): 1) la absorción de agua

por imbibición, causando su hinchamiento y la ruptura final de la testa, 2) inicio de la

actividad enzimática y del metabolismo respiratorio, translocación y asimilación de

reservas alimentarias en zonas en desarrollo del embrión y 3) el crecimiento y la

división celular que provoca la emergencia de la radícula y posteriormente de la

plántula.

Existen básicamente dos tipos de germinación: la epigea y la hipogea. En la

germinación epigea, el hipocótilo se alarga y aleja a los cotiledones del suelo,

posteriormente surgen las hojas cotiledonarias que frecuentemente son de color verde

y realizan funciones fotosintéticas durante el crecimiento temprano de la plántula. En

tanto, en la germinación hipogea el hipocótilo no se desarrolla y los cotiledones

permanecen bajo el suelo o ligeramente sobre éste y las hojas cotiledonarias solo

almacenan nutrientes (Vázquez-Yanes, et al., 1997, citado en Del Amo, et. al. 2002).


30

Figura 7. Esquema de la fecundación en una flor (Molist et. al. 2011)

La capacidad de las semillas para germinar y producir una planta normal, es el

principal atributo a considerar para evaluar su calidad y potencial; sin embargo, por

sus demás características biológicas y físicas, que repercuten en su valor comercial,

resulta indispensable considerar otros aspectos importantes relacionados con su

calidad, manejo y comercialización. Entre estos aspectos están la pureza física y

varietal, el vigor y el contenido de humedad de las simientes (Moreno, 1984).


31


32

METODOLOGÍA

Al no haber información bibliográfica ni experiencia en este ámbito dentro de la zona

del Parque Nacional Pico de Orizaba, se persiguió una metodología destinada a la

descripción, observación y experimentación, para lograr los objetivos planteados. Las

actividades realizadas en el presente estudio técnico, son descritas a continuación

conforme al cronograma de actividades:

Cronograma de actividades

El cronograma de actividades detalla el procedimiento que fue llevado a cabo durante

5 meses del estudio técnico, es presentado conforme a las actividades descritas en la

ficha técnica inicial.

Tabla 1. Cronograma de actividades

ACCIONES 2014 Mes 1 Mes 2 Mes 3 Mes 4 Mes 5

1 Elaboración de cartografía básica

2 Elaboración de formatos de campo, control de información a obtener

3 Revisión bibliográfica

4 Capacitación a brigadas para trabajo de campo

5 Muestreo en campo

6 Identificación de especies

7 Asesoramiento en el levantamiento de datos en campo

8 Ensayos de germinación

9 Recopilación de información de campo

10 Procesamiento de información

11 Análisis de resultados


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Métodos y actividades

Elaboración de cartografía básica

Utilizando el software ArcGis 10.1, ArcView 3.2, GlobalMaper 13 y SasPlanet,

utilizando archivos geográficos (.shp) del archivo del Parque Nacional Pico de Orizaba

y los obtenidos de las páginas de Instituto Nacional de Estadística y Geografía (INEGI),

Comisión Nacional de Áreas Naturales Protegidas (CONANP), entre otras, se

elaboraron los siguientes mapas:

Mapa fisiográfico del Parque Nacional Pico de Orizaba y su Zona de

influencia (Anexo 1)

Mapa de Vegetación del Parque Nacional Pico de Orizaba y su Zona de


Mapa edafológico del Parque Nacional Pico de Orizaba y su Zona de


Mapa de posibles sitios donde realizar la colecta botánica (Anexo 4)

Mapa de colecta botánica realizada (Anexo 5)

Mapa de distribución potencial de especies identificadas (Anexo 6)

Los primeros tres mapas sirvieron de referencia, para realizar las actividades

descritas posteriormente, y los restantes mapas, fueron resultado de algunas de las

siguientes actividades.

Elaboración de formatos de campo, control de información a obtener

Para llevar a cabo la identificación de especies del genero Eryngium spp. se realizó

un formato de campo, que contenía los elementos básicos que sirvieron de referencia

para identificar las especies (Anexo 7).

Revisión bibliográfica

Se realizó revisión bibliográfica de forma extensa de diferentes fuentes con temas

relacionados directa e indirectamente con el enfoque del estudio técnico.


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Capacitación a brigadas para trabajo de campo

Para el complimiento de la identificación de áreas de distribución de la especie se

capacito de forma breve pero esencial a personas de apoyo de las localidades

de Nueva Vaquería, Calcahualco, Veracruz y Agua Escondida, El Salitrero (La

Jícara), Tlachichuca, Puebla.

Figura 8. Capacitación teórica para identificación de áreas de distribución

Figura 9. Recorridos de campo para capacitación práctica


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Muestreo en campo

Se realizó el muestreo en campo, el cual consistió en delimitar la zona de

distribución de las especies de Eryngium L. presentes en la zona de interés. También

se realizaron transectos y recorridos para identificar las zonas en la que tienen

presencia las especies de interés. Así mismo se realizaron diversas salidas a campo

con integrantes de las brigadas de apoyo, con el fin de delimitar las áreas de

distribución de las especies identificadas, parte del muestreo fue coordinado por la

Biol. Lourdes Landero Hernández.

Figura 10. Recorrido y muestreo

Identificación de especies

Se llevaron a cabo colectas botánicas en campo, en la cual se colectaron diez

ejemplares de Eryngium spp. en diferentes sitios del Parque Nacional Pico de

Orizaba. Todos los ejemplares se midieron de la base de la planta a la punta de la

inflorescencia, se tomó registro fotográfico y se anotó los datos que se solicitaban en

la ficha de campo, se extrajo el ejemplar cortándolo desde la base con el uso de una

navaja.


36

Posteriormente se introdujeron en la prensa junto con la ficha correspondiente y

acomodándolos de manera tal se pudiera observar las hojas por haz y envés, el tallo,

los pétalos, sépalos y la inflorescencia. Esta actividad fue llevada a cabo por la Biol.

Lourdes Landero Hernández.

Figura 11. Colecta botánica

Todos los ejemplares colectados se acomodaron en una prensa botánica, con su

respectiva ficha, y se trasladaron a la Facultad de Ciencias Biológicas y

Agropecuarias, Campus Peñuela de la Universidad Veracruzana. Donde se realizó el

proceso de secado.

Posteriormente se trasladaron al Instituto de Ecología, Xalapa Veracruz. En el

instituto se entregaron los ejemplares bien prensados, perfectamente secos y con sus

respectivos datos de campo e ingresaron al herbario para su determinación.


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Asesoramiento en el levantamiento de datos en campo

El asesoramiento a las brigadas para el muestreo y delimitación de las zonas de

distribución, fue esencial para llevar a cabo la actividad con certeza de obtener una

mayor confiabilidad. Por ello se asesoró a las brigadas en la mayor parte de los

recorridos y muestreo.

Ensayos de germinación

Como tercer objetivo del estudio técnico, se realizaron pruebas piloto de

germinación de Eryngium spp para formar la base del protocolo de reproducción.

Para esta actividad, se obtuvo escasa semilla de dos sitios en la zona conocida como

“El Calvario” dentro del Parque Nacional Pico de Orizaba con coordenadas UTM 14Q

682533, 2111146. Posteriormente se sometieron a pruebas pre-germinativas “piloto”

(tabla 2) para conocer el tiempo de reacción para su germinación. Al mantener un

buen comportamiento en cuestión de desarrollo, fueron trasladados el vivero ubicado

en el Parque Nacional Pico de Orizaba colindando con la localidad de Nuevo Jacal,

municipio de Calcahualco Veracruz.

Figura 12. Ejemplar de colecta botánica


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Tabla 2. Pruebas pre-germinativas "piloto"

Clave Sustrato Condiciones

P 1 Algodón húmedo con

Agua oxigenada

Humedad constante, sometido a

temperaturas de 10 °C – 15°C

P 2 Tierra arcillosa Humedad constante, sometido a


P 3 Algodón húmedo con

agua

Humedad constante, sometido a


Testigo Algodón húmedo Humedad constante, sometido a


Figura 13. Pruebas pre-germinativas en modo “piloto”.

Recopilación de información de campo

Los sitios de distribución que fueron obtenidos por las brigadas fueron recopiladas en

una base de datos para la generación del mapa general de distribución.


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Procesamiento de información

La información fue procesada utilizando el software Microsoft Excel 2013 y ArcGis

10.1. Depurando la información y corroborando su autenticidad en todo momento para

cumplir de forma adecuada con los objetivos que persigue el estudio.

Análisis de resultados

Los resultados de la información cartográfica y de campo fue analizada para su

interpretación, generando los resultados del presente estudio.


40


41

RESULTADOS

Las plantas del genero Eryngium L., son representativas del Parque Nacional Pico de

Orizaba (PNPO). En esta zona son llamativas por su belleza tanto en estado verde

como seco, específicamente por su singular forma, causa atracción por parte de turista

que visitan el Área Natural Protegida (ANP), por lo que son extraídas de su habitat

natural, muchas veces sin conocer la prohibición de dicha actividad en ANP, esta

actividad afecta al ciclo reproductivo de las especies de Eryngium presenten en el

PNPO.

Especies de Eryngium en el PNPO

Para el PNPO y sus áreas adyacentes se identificaron un total de 3 especies que

corresponden al género Eryngium de la familia de las Apiaceae (Umbelliferae):

Eryngium proteaeflorum

Eryngium deppeanum

Eryngium carlinae

Eryngium proteaeflorum F. Delaroche

FAMILIA: Apiaceae.

GÉNERO: Eryngium L.

ESPECIE: Eryngium proteaeflorum, F. Delaroche.

Nombre Común: rosa volcánica, rosa de las nieves.

Nombre Local: Espina.

Estatus de Conservación: NO localizada en la NOM-059-SEMARNAT 2010.


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Descripción de la Especie: Son plantas herbáceas, perennes, robustas con

raíces carnosas, tallo solitario a veces ramificado, hojas inferiores dispuestas en

roseta linear-lanceoladas, base cortamente envainante con margen espinoso-

lobado, con las espinas extendidas o ascendentes, ápice agudo con una espina

en la punta, nerviación paralela, hojas caulinas alternas ascendentes semejantes

a las basales, cada una de las espinas normales del borde, con frecuencia

acompañada de otra más corta. Cabezuela grande solitaria terminal, a veces

también con uno o dos axilares, cuentan con un involucro formado por 15 a 20

brácteas, las internas más pequeñas y estrechas con las puntas y bordes

espinosos aunque a veces estas últimas presentan el margen entero,

sobrepasando y encerrando a las cabezuelas, pétalos obovados, fruto cuneado-

cilíndrico.

La temporada de floración se presenta de julio a septiembre, despide un olor

desagradable como atrayente para los polinizadores.

Distribución y Hábitat: Es una especie endémica que se encuentra solo en

el centro occidente de México. En el Parque Nacional Pico de Orizaba, presenta

un patrón de distribución complejo, ya que solo se localiza de los 3 100 a los 4 210

metros sobre el nivel del mar, en pendientes y algunos claros, donde la vegetación

principal son pastizales alpinos y bosque de Pinus hartwegii.

Valor Utilitario: Estas plantas herbáceas, son comercializadas como ornamentales,

debido a su arquitectura muy llamativa durante la floración y su larga vida de

poscosecha.

Parte de la información anterior puede ser corroborada en Munguía-Lino, Vázquez-

García y López-Sandoval (2010); Rzedowski y colaboradores (2001) y SEMARNAT

(2010).


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Identificación por: Biól. Carlos Manuel Durán Espinosa, técnico del Herbario Xalapa Veracruz (Anexo 8).

Figura 14. Ilustración de Eryngium proteaeflorum F. Delaroche (Trabajo creativo: Biol. Lourdes Landero H.)


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Figura 15. Eryngium proteaeflorum.

A) Inflorescencia: PNPO, Lugar conocido como “El Calvario”

B) Planta: PNPO, cerca del predio Cuautlancingo, Chalchicomula de Sesma, Puebla.

C) Panta seca: PNPO, cerca de la Loc. La Bárbara, Tlachichuca, Puebla

D) Aspecto de la especie: PNPO, lugar conocido como “Llano grande”, Veracruz.


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Eryngium deppeanum Cham y Schlecht

FAMILIA: Apiaceae.


ESPECIE: Eryngium deppeanum, Cham y Schlecht.

Nombre Común: espina.

Nombre Local: espina.


Descripción de la Especie: Es una planta herbácea perenne, que puede llegar

a alcanzar los 1.20 metros de alto, tiene raíces carnosas, las hojas de la base están

dispuestas en roseta, lineares estrechándose ligeramente en la base, margen

espinoso-lobado, con los dientes ascendentes o extendidos, a veces cada uno de los

dientes normales es acompañado de espinas más cortas, nerviaciones paralelas,

aunque cerca de los bordes se puede observar la presencia de nervaduras

reticuladas. El tallo es blando, tierno y flexible; las hojas del tallo son parecidas a las

de la base aunque más pequeñas, espinosas, aserradas, curvas y con disposición

alterna. Presenta varias inflorescencias amplias ramificadas, con cabezuelas

ovaladas de color verde-violáceo, cubiertas por brácteas espinosas, el tallo presenta

un olor similar a la herbácea conocida como “perejil”. Los estilos son delgados, más

largos que los sépalos.

Distribución y Hábitat: Dentro del Parque Nacional Pico de Orizaba, se localiza

entre los 3 100 a los 3 400 metros sobre el nivel del mar, en bosques de Pinus patula

y Pinus rudis, sobre pendientes y algunos claros. Solo se encuentra en zonas con

humedad abundante y a veces entre rocas.


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Valor Utilitario: Hasta ahora no se reporta ningún uso, en las localidades

cercanas al parque.

Parte de la información anterior puede ser corroborada en Munguía-Lino, Vázquez-

García y López-Sandoval (2010); Rzedowski y colaboradores (2001) y SEMARNAT

(2010).

Identificación por: Biól. Lourdes Landero Hernández, prestador de servicios

profesionales (Anexo 9).


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Figura 16. Ilustración de Eryngium deppeanum Cham y Schlecht (Trabajo creativo: Biol. Lourdes Landero H.)


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Figura 17. Eryngium deppeanum Cham y Schlecht

A) Inflorescencia: PNPO, cerca de la localidad de Nuevo Jacal, Calcahualco Veracruz

B) Planta: PNPO, Río Jamapa

C) Planta: PNPO, cerca de la localidad de Nuevo Jacal, Calcahualco Veracruz

D) Aspecto de la planta: PNPO, cerca de la localidad de Nuevo Jacal, Calcahualco Veracruz


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Eryngium carlinae Delar.

FAMILIA: Apiaceae.


ESPECIE: Eryngium carlinae, Delar.

Nombre Común: hierba del sapo, espina.

Nombre Local: espina.


Descripción de la Especie: Planta herbácea perenne, glabra, casi siembre baja ( a

ras de suelo), tallos generalmente ramificados desde la base, de 1.5 a 10 cm de largo,

postrados o ascendentes, hojas basales arrosetadas de 2 a 10 cm de largo y de .5 a

2 cm de ancho, de margen espinoso-aserrado, nerviación pinnadamente reticulada.

Hojas caulinas semejantes a las basales, las superiores opuestas, sésiles, a

veces profundamente partidas; la inflorescencia (conjunto de flores agrupadas en

un mismo tallo) cimosa, en ocasiones repetidamente ramificada, cabezuelas

pedunculadas de color azul, violeta o blancas; ovoides de 6 a 10 milímetros de largo,

involucro formado por 8 a 12 brácteas extendidas, ovadas o linear-lanceoladas,

agudas, enteras o espinoso-aserradas cerca del ápice, con el envés (cara

inferior), verde y el haz (cara superior), blanquecina o amarillenta, de largo

igual o mayor que las cabezuelas.

Bractéolas subuladas de 2 a 4 milímetros de largo, curveadas más largas que

el fruto, sépalos ovados de 1 a 2 mm de largo; pétalos espatulados de alrededor de

un milímetro de largo, estilos un poco más cortos o largos que los sépalos, fruto ovoide.


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Distribución y Hábitat: Esta ampliamente distribuida en el Valle de México,

dentro del Parque Nacional Pico de Orizaba se distribuye de los 3 000 a los 3 650

metros sobre el nivel del mar, en matorrales, pastizales y bosques de pino-encino,

comportándose como maleza extendida sobre el suelo; en barrancas y planos abiertos

con exposición al sol durante todo el día.

Valor Utilitario: En algunas localidades la mezclan con otra hierba, como remedio

para el dolor estomacal.

Parte de la información anterior puede ser corroborada en García-Ruiz (2013);

Rzedowski y colaboradores (2001) y SEMARNAT (2010).

Identificación por: Biól. Lourdes Landero Hernández, prestador de servicios

profesionales (Anexo 9).


51

Figura 18. Ilustración de Eryngium carlinae, Delar. (Trabajo creativo: Biol. Lourdes Landero H.)


52

Figura 19. Eryngium carlinae Delar

A Inflorescencia: cerca de la localidad de San Miguel Zoapan, Tlachichuca, Puebla.

B) Planta sin inflorescencia: San José Pilancon, La perla, Veracruz.

C) Inflorescencia: cerca de la localidad de Nuevo Jacal, Calcahualco Veracruz.

D) Planta: cerca de la localidad de “Cueva de la estrella”, cerca de Texmalaquilla, Atzitzintla, Puebla.


53

Detalles de Eryngium proteaeflorum

Figura 20. Detalle taxonómico, Eryngium proteaeflorum


54

Detalles Eryngium deppeanum

Figura 21. Detalle taxonómico, Eryngium deppeanum


55

Detalle Eryngium carlinae

Figura 22. Detalle taxonómico, Eryngium carlinae


56

Distribución en Parque Nacional Pico de Orizaba y zonas circundantes

El género Eryngium L. se distribuye en varias zonas dentro y circundantes al PNPO,

se pueden diferenciar las siguientes:

E. proteaeflorum

Es la de mayor abundancia dentro de del PNPO, se distingue la zona norte y noreste

comenzando desde la zona del río Jamapa desde los 3,500 metros sobre el nivel del

mar (msnm) hasta alrededor de los 4,100 msnm, pasando por el lugar conocido

comúnmente como “El Calvario”, en las coordenadas UTM 682065 2111302

correspondientes a la zona 14 norte con una altitud de 3,800 metros, se encuentra

una de las zona donde existe una alta densidad de plantas, claramente distinguible.

Para la zona noroeste del PNPO correspondiente al estado de puebla, se puede

encontrar de igual manera desde los 3500 msnm, cerca de las localidades de Agua

Escondida El Salitrero (La Jícara), Puerto Nacional y Miguel Hidalgo y Costilla,

pertenecientes al municipio de Tlachichuca, en algunas áreas fuera del polígono del

PNPO, hasta los 4, 000 metros de altitud.

En el sur y suroeste del PNPO, conocida por la zona de la “Sierra negra” y el “Valle

del encuentro” se puede encontrar desde los 3,300 msnm sobre el camino San Isidro

Canoas Altas - PNPO, y sobre el camino Atzitzintla - Gran Telescopio Milimétrico,

desde los 3,600 msnm. En ambos casos hasta alrededor de los 4,100 metros de altitud.

Existe una zona con alta densidad de la planta alrededor de las coordenadas UTM

676944 2103734 correspondientes a la zona 14 norte, con aproximadamente 3, 700

metros de altitud.

Otra zona con menor densidad pero con presencia de E. proteaeflorum se localiza al

sureste del PNPO, hacia el norte de las localidades de San José Pilancon, San Miguel

Pilancon, Rancho Nuevo, entre otras, en el estado de Veracruz, presentándose sobre

las mismas altitudes.


57

E. deppeanum

Esta especie de Eryngium solo se puede encontrar en un área dentro y fuera del

Parque Nacional Pico de Orizaba, la cual corresponde al estado de Veracruz, en el

municipio de Calcahualco dentro de los límites de las localidades de Nueva Vaquería

y Nuevo Jacal con el PNPO, hasta el río Jamapa, a costados del camino principal al

albergue norte.

E. carlinae

Eryngium Carlinae se puede encontrar fuera del polígono del PNPO y en límites de

este, es más difícil de localizar que las dos especies anteriores por ser una especie

rastrera, sin llegar a crecer la misma altura que E. proteaeflorum y E. deppeanum. Se

localizaron ejemplares en: Nuevo Jacal, Calcahualco, Veracruz; cerca de San José

Pilancon y San Miguel Pilancon, de los municipios de Mariano Escobedo y La perla,

respectivamente en el estado de Veracruz; en una zona de la Sierra Negra; y cerca

de San Miguel Zoapan y Puerto Nacional, del municipio de Tlachichuca, Puebla.

La distribución de las especies se puede apreciar en el anexo 10.

Figura 23. Sitio con abundante Eryngium proteaeflorum, cerca del "Valle del encuentro" PNPO.


58

Calendario fenológico

Para las tres especies presentes de Eryngium L., el comportamiento es el mismo,

debido quizá a que se localizan en las mismas condiciones climáticas.

El brote de la planta inicia con los primeros periodos de lluvia, comprendidos algunas

veces antes del mes de agosto, a partir de esa fecha se encuentran brotes de

Eryngium spp en diversas zonas de su distribución.

El desarrollo de la plántula y floración de las existentes comienza igualmente con el

periodo de humedad a partir de otoño y el primer mes de invierno. A finales de esas

fechas comienza igualmente el periodo de maduración de la semilla, dentro de la

inflorescencia de la planta.

El periodo de latencia y diseminación de la semilla se da desde finales de febrero

hasta mediados de verano.

Se observó que la diseminación se vale de las condiciones de esos meses debido a

los vientos existentes en esa época, la forma de la rosa que poseen las especies les

ayuda a reunir mayor cantidad de humedad durante las los periodos de humedad que

ayudan a la los primeros brotes de la semilla.

INVIERNO PRIMAVERA VERANO OTOÑO ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC

Brote de la planta

Planta seca Desarrollo de la planta, planta verde

Floración

Maduración de semilla

Periodo de latencia y diseminación Tabla 3. Calendario fenológico (Elaborado con base en observaciones en campo)


59

Figura 24. A) Plántula, B) Planta antes de floración, C) Planta antes de floración, D) Floración E) Inflorescencia sin semillas, planta seca, F) Periodo final de la planta, planta en estado de pudrición.

A) B)

C) D)

E) F)


60

Propuesta metodológica de propagación de Eryngium proteaeflorum

La especies de interés general es E. proteaeflorum, debido a su forma

(económicamente viable), mayor presencia y cantidad de semillas disponibles, lo que

facilitaría reproducción controlada y uso sustentable.

Recolección de semillas

La recolección de germoplasma debe realizarse en los primeros meses de latencia,

que corresponde entre marzo y mayo, periodo donde la planta generalmente se

encuentra seca, lo que facilita la extracción de la cabezuela donde se encuentra la

inflorescencia, que para ese periodo ya contiene la semilla madura.

Se recomienda obtener solo la cabezuela de la planta con ayuda de unos guantes

protectores y almacenarlas en bolsas de papel, evitando así la presencia de humedad

que generan las bolsas plásticas.

Las características de la planta para obtener semillas:

Buena altura y desarrollo

No presentar pudriciones

No presentar plagas ni enfermedades

Presentarse en un sitio con elevada densidad en plantas por sitio, claramente

observable.

En el proceso de recolección de germoplasma se recomienda:

Colectar más de una población por especie.

Colectar de manera dispersa dentro de un área grande, que albergue una

población grande.

Hacer la colecta en días secos.

Rotular la bolsa en la que se colecte.


61

Realizar un formato de colecta que contemple la siguiente información:

Fecha

Lugar o coordenadas

Altitud

Observaciones

Controlar cada lote de semillas obtenidas mediante dicha información recabada.

Cada cabezuela contiene alrededor de 400 semillas, por lo que se debe tener en

cuenta la cantidad de semillas a obtener para no dañar el hábitat de la especie y

permitir la regeneración natural.

Obtención y separación de semillas

Luego de realizar la colecta se debe realizar la separación de la semilla, para separar

la semilla de la cabezuela de la planta. Para ello se pude valer uno de un objeto

cortante (cúter, navaja o tijeras):

Colocar papel y desbaratar cada cabezuela separando los componentes de la

inflorescencia desde la parte baja.

Separar con cuidado la semilla claramente distinguible del material no deseado.

Colocar la semilla en bolsas de papel, rotulados con los datos de colecta.

Manejo post-cosecha de semillas

Las semillas deben almacenarse en lugares secos, libres de humedad a temperatura

ambiente. Aun no se conocen los periodos por lo que es posible almacenar la semilla

de la especie.


62

Germinación de la semilla

La semilla de Eryngium proteaeflorum es una semilla que germina con facilidad en

condiciones de humedad elevados. La simple presencia de agua interrumpe el periodo

de latencia o dormición.

Se trata de una planta dicotiledónea.

Para germinar una cantidad elevada de semillas se puede valer de la siguiente

metodología:

Propagación en vivero

Realizar un semillero con el largo y ancho que se requiera, y con una altitud de

no más de 5 cm.

Sembrar las semillas (cantidad de interés), en el semillero al voleo, sobre tierra

húmeda.

Mantener humedad constante (mañana y tarde), al semillero.

Después de los quince días se podrán observar los primeros brotes de la planta,

seguir manteniendo la humedad.

Después de otros veinte días, las plántulas alcanzaran alrededor del

centímetro, por lo que será momento de realizar el trasplante.

Al momento de trasplantar se recomienda el uso de bolsa de vivero de medidas:

13 cm x 19 cm, 17 cm x 17 cm.

Se recomienda el trasplante con ayuda de pinzas o palillos de madera, ya se

tratan de plántulas pequeñas.

El tipo de sustrato resulta indiferente (no se han realizado pruebas de

germinación en diseños experimentales), pero se recomienda el uso de tierra

negra arcillosa cernida.

Seguir manteniendo humedad contante para un buen desarrollo de la planta.


63

El periodo de desarrollo de la planta puede durar hasta un año después de su

trasplante.

Figura 25. A) Obtención de semillas, B) Primeros brotes, C) Plántulas, D) Trasplante, E) Plantas en vivero


64

Figura 26. Semillas de E. proteaeflorum A) Semillas B) semillas germinadas


65

CONCLUSIONES

El género Eryngium está presente dentro del PNPO y sus zonas circundantes en tres

especies: E. proteaeflorum, E. deppeanum y E. carlinae.

E. proteaeflorum, tiene una alta distribución dentro del PNPO, a comparación de las

dos especies restantes. Al ser una especie que solo se encuentra en el PNPO y sus

zonas circundantes, ser atractiva para los turistas, además de poseer la característica

de ser de larga duración en estado seco, esta especie tiene el potencial de

aprovechamiento, que puede traer beneficio económico a las localidades circundantes

al ANP.

E. proteaeflorum puede reproducirse por métodos tradicionales con relativa facilidad.

Para ello se debe conocer su calendario fenológico y forma de extraer la semilla.

Por otro lado, las especies de Eryngium L. presentes en el Parque Nacional Pico de

Orizaba, presenta varios periodos: brotes, floración, maduración de la semilla,

diseminación y brote. Todos muy importantes, por lo que extraer ejemplares de dicha

especie tiene como consecuencia el rompimiento del ciclo propagativo de la especie,

causando disminución en la población.


66

RECOMENDACIONES

A pesar de que se comprobó que E. proteaeflorum puede reproducirse en

vivero, resultaría importante realizar pruebas germinativas a través de ensayos

y diseños experimentales, con el fin de obtener información específica

relacionada a: mejor sustrato, tratamientos pre-germinativos, semillas por kilo,

porcentaje de viabilidad, entre otras cosas.

Realizar distintos ensayos y repeticiones en los viveros existentes en las

localidades de: Nuevo Jacal, Calcahualco, Veracruz; Puerto Nacional,

Tlachichuca, Puebla y/o San Miguel Pilancon.

Considerar estudios técnicos que contemplen evaluación de la propagación in

situ y ex situ, para fines de aumento de población y/o repoblación y

comercialización, respectivamente.

Solicitar un proyecto de implementación de vivero para la reproducción

específica de plantas del género Eryngium L. ya que tienen valor comercial y

ecológico, lo que recaería en un aprovechamiento sustentable y restauración

de zonas que ya no presentan la especie dentro del Parque Nacional Pico de

Orizaba.

Gestionar la implementación de carteles con información acerca de la

importancia de no extraer la especie en el PNPO, ya que todos los periodos y

etapas que presentan las especies son con fines de propagación.


67

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70

ANEXOS

1º.Anexo. Mapa fisiográfico del Parque Nacional Pico de Orizaba y su Zona

de influencia.


71

2º.Anexo. Mapa de Vegetación del Parque Nacional Pico de Orizaba y su

Zona de influencia.


72

3º.Anexo. Mapa edafológico del Parque Nacional Pico de Orizaba y su Zona

de influencia.


73

4º.Anexo. Mapa de posibles sitios donde realizar la colecta botánica.


74

5º.Anexo. Mapa de colecta botánica realizada


75

6º.Anexo. Mapa de distribución potencial de especies identificadas.


76

7º.Anexo. Formato de campo.


77

8º.Anexo. Carta identificación de Eryngium proteaeflorum F. Delaroche.


78

9º.Anexo. Carta identificación de Eryngium deppeanum Cham y Schlecht,

Eryngium carlinae Delar.


79

10º.Anexo. Mapa de distribución de las especies de Eryngium.

Diseño inicial de una propuesta metodológica para la reproducción de plantas del género Eryngium

Environment

Transcript of Diseño inicial de una propuesta metodológica para la reproducción de plantas del género Eryngium