ESTABLECIMIENTO DE UNA COLECCIÓN DE REFERENCIA DE...
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ESTABLECIMIENTO DE UNA COLECCIÓN DE REFERENCIA DE DÍPTEROS DE INTERÉS FORENSE DENTRO DE LA COLECCIÓN DE ARTRÓPODOS Y OTROS INVERTEBRADOS DE LA UNIVERSIDAD DISTRITAL CAUD-216 GERALDINE YINETH PÁEZ PÉREZ JEISON EDUARDO GARCÍA ARIZA Proyecto de Trabajo de Grado en modalidad pasantía para optar al título de Licenciado en Biología UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA BOGOTÁ D.C. 2016
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ESTABLECIMIENTO DE UNA COLECCIÓN DE REFERENCIA DE DÍPTEROS DE
INTERÉS FORENSE DENTRO DE LA COLECCIÓN DE ARTRÓPODOS Y OTROS
INVERTEBRADOS DE LA UNIVERSIDAD DISTRITAL CAUD-216
GERALDINE YINETH PÁEZ PÉREZ
JEISON EDUARDO GARCÍA ARIZA
Proyecto de Trabajo de Grado en modalidad pasantía para optar al título de Licenciado en
Biología
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN
PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA
BOGOTÁ D.C.
2016
ESTABLECIMIENTO DE UNA COLECCIÓN DE REFERENCIA DE DÍPTEROS DE
INTERÉS FORENSE DENTRO DE LA COLECCIÓN DE ARTRÓPODOS Y OTROS
INVERTEBRADOS DE LA UNIVERSIDAD DISTRITAL CAUD-216
GERALDINE YINETH PÁEZ PÉREZ
JEISON EDUARDO GARCÍA ARIZA
DIRECTOR:
M. Sc., ALEXANDER GARCÍA GARCÍA
DOCENTE UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN
PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA
BOGOTÁ D.C.
2016
3
TABLA DE CONTENIDO
pág.
RESUMEN EJECUTIVO 9
INTRODUCCIÓN 9
1. PROBLEMA 10
1.1. PREGUNTA DE INVESTIGACIÓN 10
1.2. OBJETIVOS 10
1.2.1. General. 10
1.2.2. Específicos. 11
1.3. ESTADO DEL ARTE 11
1.3.1. Colecciones biológicas. 11
1.3.2. Entomología forense. 11
1.3.3. Descomposición cadavérica. 12
1.3.4. Insectos. 13
1.3.5. Dípteros. 13
2. METODOLOGÍA 15
2.1. MANEJO, CUIDADO Y PRESERVACIÓN DE LA COLECCIÓN 15
2.2. INGRESO Y REGISTRO 15
2.2.1. Curaduría. 16
2.2.2. Cuarentena. 16
2.3. ETIQUETAS 17
2.3.1. Datos de Colecta. 17
2.3.2. Datos de identificación. 17
2.3.3. Determinación de los especímenes. 18
4
2.3.4. Catalogación. 18
2.4. ALMACENAMIENTO 18
2.4.1. Montaje. 19
2.4.2. Sistematización. 19
2.4.3. Depósito y almacenamiento. 20
3. RESULTADOS 20
3.1. Efecto del furadán sobre la sucesión de la entomofauna necrófaga asociada a Sus scrofa L.
(1758), en la Vereda Petaluma, Cachipay, Cundinamarca, Jehison Herrera y Karol Malaver, (2012)
20
3.1.1. Ingreso y revisión de individuos. 20
3.1.2. Curaduría. 21
3.1.3. Sistematización. 21
3.1.4. Etiquetación. 21
3.1.5. Catalogación y almacenamiento. 22
3.2. Caracterización de la sucesión de entomografía cadavérica y procesos de descomposición en
un cerdo (Sus scrofa) sometido a envenenamiento por gases de automotor en la inspección de
Cumaca, Tibacuy - Cundinamarca por Luisa Morales y Carolina Moreno (2010)
22
3.2.1. Ingreso y registro de individuos. 22
3.2.2. Curaduría 23
3.2.3. Determinación taxonómica. 24
3.2.3.1. CALLIPHORIDAE (3082 individuos determinados) 24
3.2.3.1.1. Lucilia Robineau-Desvoidy (1830) 25
3.2.3.1.2. Chrysomya Robineau-Desvoidy (1830) 25
3.2.3.1.3. Cochliomyia Townsend (1915) 25
3.2.3.1.4. Hemilucilia Brauer (1895) 25
3.2.3.2. CHLOROPIDAE (9 individuos determinados) 26
3.2.3.3. CURTONOTIDAE (26 individuos determinados) 26
5
3.2.3.4. EPHIDRIDAE (1 individuo determinado) 26
3.2.3.5. EMPIDIDAE (20 individuos determinados) 26
3.2.3.6. FANNIIDAE (2866 individuos determinados) 27
3.2.3.6.1. Fannia obscurinervis Stein (1900) 27
3.2.3.7. HELEOMIZIDAE (1 individuo determinado) 27
3.2.3.8. MUSCIDAE (961 individuos determinados) 28
3.2.3.8.1. Musca Linnaeus (1758) 28
3.2.3.8.2. Atherigona Rondani (1856) 28
3.2.3.9. OTITIDAE (14 individuos determinados) 29
3.2.3.10. PHORIDAE (17 individuos determinados) 29
3.2.3.11. PIOPHILIDAE (335 individuos determinados) 29
3.2.3.12. SARCOPHAGIDAE (100 individuos determinados) 30
3.2.3.13. SPHAEROCERIDAE (1 individuo determinado) 30
3.2.3.14. SCIARIDAE (1 individuo determinado) 30
3.2.3.15. SEPSIDAE (119 individuos determinados) 31
3.2.3.16. TEPHRITIDAE (1 individuo determinado) 31
3.2.4. Sistematización. 31
3.2.5. Etiquetación. 32
3.2.6. Catalogación. 32
3.2.7. Estimación del porcentaje de familias, géneros y especies de dípteros de importancia forense
presentes en la Colección de Artrópodos y otros Invertebrados de la Universidad Distrital CAUD-
216. 33
3.2.7.1. Tesis de Jehison Herrera y Karol Malaver (2010). 33
3.2.7.2. Tesis de Luisa Morales y Carolina Moreno (2010). 36
4. DISCUSIÓN DE RESULTADOS 38
5. CONCLUSIONES 42
6
6. RECOMENDACIONES 43
BIBLIOGRAFÍA 43
ANEXO A. Base de datos 48
ANEXO B. Láminas 61
ANEXO C. Etiquetas 69
7
LISTA DE FIGURAS
pág.
Figura 1. Algunas estructuras y setas del cuerpo de una mosca de la familia Muscidae, las cuales
son de importancia taxonómica. Tomada de Patitucci (2010). 14
Figura 2. Características de la etiqueta que contiene datos de colecta. 18
Figura 3. Características de la etiqueta que contiene datos taxonómicos del individuo. 18
Figura 4. Ejemplo del código que se asignará a cada orden, donde la numeración aumenta
consecutivamente. 18
Figura 5. Individuos almacenados en 247 viales de 10 ml cada uno. 21
Figura 6. Viales de 10 mL con alcohol al 70 % que mantenía a los individuos colectados desde el
año 2010, preservados. 21
Figura 7. Ejemplo de las etiquetas provisionales que se encontraron en todos los 247 viales de 10
mL. 22
Figura 8. Viales tras reemplazar etiquetas provisionales. La imagen de la izquierda incluye
información de colecta como el lugar, latitud, colectores y fecha de colecta. La imagen de la
derecha, incluye información taxonómica de los especímenes. 22
Figura 9. Catalogación de las muestras de la primera tesis. Obsérvese que la catalogación
comienza con el código DIP-0001.
23
Figura 10. Frascos de 300 cm3 encontrados en la colección, que no habían sido revisados
taxonómicamente, pertenecientes a la tesis 2. 23
Figura 11. Ejemplo del estado en el que se encontraban los frascos de colecta y preservación de los
especímenes de la segunda tesis. Debe decirse, que algunos de estos 43 frascos presentaban
descenso en su nivel de alcohol, que afectaba el estado de los individuos. 23
Figura 12. Individuos pertenecientes al frasco 1 de la tesis de Luisa Morales y Carolina Moreno
(2010) en caja de Petri, para ser observados bajo un microscopio estereoscopio. 24
Figura 13. Caja de Petri en la cual se separaban los individuos, para ser vistas al estereoscopio. 32
Figura 14. Frascos de 33 mL en los cuales fueron separados los individuos de la tesis de Luisa
Morales y Carolina Moreno (2010), de acuerdo a la familia o género determinado. 32
Figura. 15. Individuos de la tesis de Luisa Morales y Carolina Moreno (2010), preservados en seco
y húmedo con sus respectivas etiquetas. 33
8
Figura 16. Listado de catalogación de los individuos de la tesis de Jehison Herrera y Karol Malaver
(2012) y Luisa Morales y Carolina Moreno (2010). 33
Figura 17. Familias sistematizadas pertenecientes a la tesis “Efecto del furadán sobre la sucesión
de la entomofauna necrófaga asociada a Sus scrofa L. (1758), en la Vereda Petaluma, Cachipay,
Cundinamarca” realizado por Jehison Herrera y Karol Malaver en el año 2012. 34
Figura 18. Porcentaje de las familias de dípteros sistematizadas pertenecientes a la tesis “Efecto
del furadán sobre la sucesión de la entomofauna necrófaga asociada a Sus scrofa L. (1758), en
la Vereda Petaluma, Cachipay, Cundinamarca” realizado por Jehison Herrera y Karol Malaver
en el año 2012.
35
Figura 19. Número de individuos pertenecientes a diferentes géneros de la familia Calliphoridae,
teniendo como mayor representante a Hemilucilia con 68 individuos. 35
Figura 20. Número de individuos pertenecientes a diferentes géneros de la familia Sarcophagidae,
teniendo como mayor representante a Oxisarcodexia con 13 individuos. 36
Figura 21. Número de individuos pertenecientes a diferentes géneros de la familia Muscidae,
teniendo como mayor representante a Muscidos organizados en morfoespecies con 162 individuos.
36
Figura 22. Familias sistematizadas pertenecientes a la tesis “Caracterización de la sucesión de
entomografía cadavérica y procesos de descomposición en un cerdo (Sus scrofa) sometido a
envenenamiento por gases de automotor en la inspección de Cumaca, Tibacuy – Cundinamarca”
desarrollado por Luisa Morales y Carolina Moreno en el año 2010. 37
Figura 23. Porcentaje de las familias de dípteros sistematizadas pertenecientes a la tesis
“Caracterización de la sucesión de entomografía cadavérica y procesos de descomposición en un
cerdo (Sus scrofa) sometido a envenenamiento por gases de automotor en la inspección de
Cumaca, Tibacuy – Cundinamarca”. 37
Figura 24. Número de individuos correspondientes a los diferentes géneros sistematizados para la
familia Calliphoridae. 38
9
ESTABLECIMIENTO DE UNA COLECCIÓN DE REFERENCIA DE DÍPTEROS DE
INTERÉS FORENSE DENTRO DE LA COLECCIÓN DE ARTRÓPODOS Y OTROS
INVERTEBRADOS DE LA UNIVERSIDAD DISTRITAL CAUD-216
SEMILLERO: KUMANGUI
DIRECTOR: DOCENTE ALEXANDER GARCÍA GARCÍA
PROPUESTA DE TRABAJO DE GRADO: MODALIDAD PASANTÍA
ESTUDIANTES: GERALDINE YINETH PÁEZ PÉREZ (20111140047) Y JEISON EDUARDO
GARCÍA ARIZA (20111140023)
RESUMEN EJECUTIVO
El presente trabajo tuvo lugar en la Universidad Distrital Francisco José de Caldas, en la Facultad
de Ciencias y Educación, Macarena B, en donde se trabajó con la Colección de Artrópodos y otros
Invertebrados CAUD-216. Allí, se manejaron los especímenes colectados en dos trabajos de grado
específicamente: “Efecto del furadán sobre la sucesión de la entomofauna necrófaga asociada a
Sus scrofa L. (1758), en la Vereda Petaluma, Cachipay, Cundinamarca” realizado por Jehison
Herrera y Karol Malaver en el año 2012 y “Caracterización de la sucesión de entomografía
cadavérica y procesos de descomposición en un cerdo (Sus scrofa) sometido a envenenamiento por
gases de automotor en la inspección de Cumaca, Tibacuy – Cundinamarca” desarrollado por Luisa
Morales y Carolina Moreno en el año 2010. El objetivo del presente trabajo fue establecer una
colección de referencia de dípteros de interés forense para posteriores investigaciones, a partir de
procesos adecuados de curaduría, determinación taxonómica, sistematización, etiquetación y
preservación en seco y en húmedo de los especímenes ya nombrados, esto con el fin de resaltar su
importancia en trabajos médico-legales. Específicamente, se adelantaron procesos de revisión
morfológica y curaduría a 8.505 dípteros; 3531 fueron determinados hasta familia y 4046 fueron
determinados taxonómicamente hasta género; los 928 individuos restantes, fueron verificados
taxonómicamente, sirviendo de referentes, ya que habían sido revisados anteriormente por expertos.
La base de datos cuenta con 750 registros que incluyen los 8.505 individuos; de los cuales, 8.455 se
encuentran preservados en líquido y 50 en seco en cajas Cornell en el compactador, estando cada
uno de estos debidamente etiquetados. La presencia de estos individuos en la CAUD-216 es de
importancia debido a que se ubican como referentes para el desarrollo de diferentes actividades de
investigación, contribuyendo con sus datos en análisis de casos de carácter forense.
Adicionalmente, la presente colección se ubica como referente para diseñar e implementar activas
de conservación de la biodiversidad.
Palabras clave: colecciones biológicas, dípteros, entomología forense, preservación.
INTRODUCCIÓN
Los dípteros de interés forense son relevantes en las investigaciones y/o casos forenses, debido a
que participan en el proceso de descomposición de un cadáver, permitiendo obtener información
sobre el tiempo, causas y posibles desplazamientos del cuerpo cuando se presenta un homicidio,
ayudando a esclarecer las condiciones de defunción de un individuo cuando la patología forense
resulta insuficiente y los datos originados han sido alterados.
El presente tuvo como objetivo establecer una colección de referencia de dípteros de interés forense
dentro de la Colección de Artrópodos y otros Invertebrados de la Universidad Distrital CAUD-216,
debido a que ello, es de gran valor para futuras investigaciones de carácter taxonómico,
biogeográfico, molecular, entre otros, sobre este grupo de organismos.
10
El presente trabajo estuvo dividido en seis fases: en primer lugar, se hizo un proceso de ingreso y
registro de los dípteros obtenidos previamente en los dos trabajos de grado titulados: “Efecto del
furadán sobre la sucesión de la entomofauna necrófaga asociada a Sus scrofa L. (1758), en la
Vereda Petaluma, Cachipay, Cundinamarca” y “Caracterización de la sucesión de entomografía
cadavérica y procesos de descomposición en un cerdo (Sus scrofa) sometido a envenenamiento por
gases de automotor en la inspección de Cumaca, Tibacuy – Cundinamarca”; en segundo lugar, se
realizó un proceso de curaduría, para reconocer el estado de los individuos, determinando que no
era necesario aplicar medidas para el control de bio-deteriorantes, en tanto, las muestras se
encontraban preservadas en líquido; en tercer lugar, se realizó la determinación taxonómica, de los
individuos correspondientes a la segunda tesis, hasta el nivel taxonómico posible, mediante el uso
de claves especializadas de familias y algunos géneros de dípteros; en cuarto lugar, se etiquetó cada
una de las muestras, incluyendo información de colector, lugar de colecta, fecha de colección, datos
taxonómicos, determinador y número de catálogo; en quinto lugar, se realizó el montaje de 50
individuos (25 machos y 25 hembras), en cajas de guarda y 8.455 se almacenaron en alcohol al 70%
en frascos de vidrio de 32cc3
y en sexto lugar, se realizó la sistematización de todos los datos
asociados a los especímenes en una base de datos elaborada previamente por el grupo de
investigación Kumangui, en el programa Excel. Los 8.505 individuos fueron ubicados en los
compactadores de la Colección de Artrópodos y otros Invertebrados de la Universidad Distrital
CAUD-216.
1. PROBLEMA
El proyecto curricular de Licenciatura en Biología de la Universidad Distrital F.J.C. se caracteriza
porque en él se han desarrollado una amplia variedad de investigaciones que están vinculadas con el
área de la entomología forense; lo cual, se puede visibilizar en algunas de sus tesis de pregrado
como: “Sucesión de la entomofauna cadavérica y ciclos de vida de las primeras especies
colonizadoras” (Camacho, 2003); “Sucesión de la entomofauna cadavérica en un cerdo blanco (Sus
scrofa) situado en una cueva del municipio de Quipile vereda El Retiro Cundinamarca” (Mendosa,
2006); “Los sarcofágidos (Diptera: Sarcophagidae) de importancia forense en Colombia”
(Buenaventura E. , Camacho, García, & Wolff, 2006); “Caracterización de la sucesión de
entomografía cadavérica y procesos de descomposición en un cerdo (Sus scrofa) sometido a
envenenamiento por gases de automotor en la inspección de Cumaca, Tibacuy – Cundinamarca”
(Morales & Moreno, 2010); “Caracterización de la sucesión de entomografía cadavérica y procesos
de descomposición en un cerdo (Sus scrofa) sometido a envenenamiento por gases de automotor en
la inspección de Cumaca, Tibacuy – Cundinamarca” (Herrera & Malaver, 2012), entre otros.
Por lo anterior, se hace necesario desarrollar estrategias de cuidado y preservación adecuadas de los
dípteros colectados en dichos trabajos que se encuentran en la CAUD-216; al igual que, reconocer
cuáles eran las familias, géneros y especies presentes en la misma.
1.1. PREGUNTA DE INVESTIGACIÓN
¿Cuáles son las familias, géneros y especies de algunos de los dípteros de interés forense presentes
dentro de la colección de Artrópodos y otros Invertebrados de la Universidad Distrital F.J.C.?
1.2. OBJETIVOS
1.2.1. General.
Establecer una colección de referencia de dípteros de interés forense, al interior de la Colección de
Artrópodos y otros Invertebrados de la Universidad Distrital F.J.C.
11
1.2.2. Específicos.
Revisar el estado en el que se encuentran los dípteros de interés forense dentro de la CAUD-216,
mediante procesos de curaduría y cuarentena de los especímenes.
Verificar la información taxonómica de los especímenes, mediante la determinación hasta el nivel
taxonómico posible con claves taxonómicas especializadas para las diferentes familias de dípteros.
Categorizar los dípteros de interés revisados en la colección, a través de la etiquetación que incluye
datos sobre su colecta e información taxonómica.
Preservar los dípteros de interés forense de la CAUD-216, mediante un almacenamiento adecuado
en líquido y seco, que incluye el montaje de algunos individuos.
Estimar el porcentaje de algunas familias, géneros y especies de dípteros de importancia forense
presentes en la Colección de Artrópodos y otros Invertebrados de la Universidad Distrital CAUD-
216, mediante la sistematización de los datos de campo y de laboratorio de los ejemplares revisados
en una base de datos elaborada en el programa Excel.
1.3. ESTADO DEL ARTE
1.3.1. Colecciones biológicas.
Las colecciones biológicas se definen como el conjunto de individuos de diversidad biológica que
se encuentran preservados bajo protocolos específicos, catalogados y almacenados bajo criterios
taxonómicos que dependen del grupo en cuestión. Las colecciones en Colombia son consideradas
un patrimonio de la nación, las cuales pueden ser administradas por museos de historia natural,
herbarios, bancos de ADN, entre otros (Decreto 1375 del Ministerio de Ambiente y Desarrollo
Sostenible, 2013).
Las colecciones biológicas pueden considerarse un tipo de museo particular, debido a que su
naturaleza, tipo de material, tamaño de los ejemplares, uso primario de éstos, valor de los objetos,
entre otros, es diferente cuando se comparan con los museos de arte y de historia. Adicionalmente,
debe señalarse, que los museos en general persiguen principalmente cuatro (4) objetivos: generar,
perpetuar, organizar y difundir informar sobre sus ejemplares (Simmons & Muñoz, 2005).
Las colecciones biológicas deben contener una información mínima para cada ejemplar, que incluye
el mayor nivel taxonómico posible, lugar y fecha de la colecta, nombre del colector, entre otros
(Decreto 1375 del Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible, 2013). Dicha información,
resulta de gran valor producto de que son un registro de la presencia de un individuo en un lugar y
tiempo determinado; lo cual permite, que la información y el espécimen asociado a un museo sean
la base de muchas investigaciones de enfoque taxonómico, sistemático, ambiental, ecológico,
molecular(Ossa, Giraldo, López, Dias, & Rivera, 2012), entre otros (Simmons & Muñoz, 2005).
1.3.2. Entomología forense.
La entomología forense es la ciencia que estudia los insectos y otros artrópodos que participan en el
proceso de descomposición de cadáveres, ofreciendo datos sobre un deceso, que permiten
establecer, por ejemplo, el intervalo post mortem (IPM), la época del año en que se presentó la
muerte y si un cadáver ha sido trasladado; lo cual es de gran valor, para cuando la patología forense
no logra aclarar dichos aspectos(Yusseff, 2006).
12
Los casos forenses en que los cuerpos se encuentran en avanzado estado de descomposición, como
en muertes por homicidio, por picadura de insectos o accidentes de tráfico, donde los cuerpos se
caracterizan por estar colonizados de insectos (Mavárez, Espina, Barrios, & Fereira, 2005), son
aquellos en los que la entomología forense puede aportar elementos importante para que éstos se
esclarezcan.
La entomología forense, podría decirse, comienza en Colombia en el año 1999 cuando se desarrolla
el primer estudio en el que se determina los insectos asociados a cuerpos en descomposición,
utilizando como modelo perros y cerdos. A partir de esta fecha, se han desarrollado varias
investigaciones en diferentes zonas bioclimáticas del país, debido a que estas influyen
considerablemente en las especies de artrópodos que pueden encontrarse en la escena del crimen
(Wolff, Entomología Forense en Latinoamérica, 2009).
La causa por la cual se pueden utilizar insectos como indicadores del tiempo de deceso, se debe a
que estos individuos son los primeros que encuentran el cadáver y, también porque son los
organismos que están presentes en todos los procesos de descomposición. Los insectos de
importancia forense, se relacionan con el cadáver alimentándose y poniendo sus huevos en él, de tal
modo que los huevos y las larvas de una especie específica resulta de gran importancia para la
determinación del tiempo y lugar de muerte (Garcés, Bermudes, & Quintero, 2004).
1.3.3. Descomposición cadavérica.
La descomposición de un cadáver se ve afectada por el conjunto de condiciones ambientales en las
que se encuentre este, debido a que las especies asociadas y los índices de temperatura y humedad
cambian dependiendo el lugar, alterando consigo el tiempo de duración del proceso (Molina, 2004).
A pesar de esto, la descomposición cadavérica presenta cuatro (4) fases: Decoloración, estado
enfisemático, estado licuefactivo y reducción esquelética.
La decoloración se caracteriza por un cambio de color, que incluye la palidez de los labios, nariz,
pies, entre otras partes; al igual que, la presentación de un color verde en las venas visibles. La fase
comienza inmediatamente después de la muerte, acercándose al cadáver principalmente moscas que
pertenecen a las familias Drosophilidae, Sarcophagidae y Calliphoridae (Molina, 2004).
El estado enfisemático se caracteriza porque el cuerpo de hincha marcamente en la región del
abdomen y otras regiones del cuerpo; adicionalmente, hay protrusión de la lengua y ojos. Todo lo
anterior, se da principalmente por la acción de bacterias anaerobias. La duración de la fase depende
del conjunto de condiciones a las que se encuentra expuesto el cadáver, siendo característica la
presencia de larvas de dípteros (Molina, 2004).
El estado de licuefacción se caracteriza por la presencia de líquidos en las vísceras y tejidos
blandos, lo cual es producto de la trasformación de los gases de la anterior fase. La fase inicia con la
ruptura de la piel, lo que permite que los organismos aerobios puedan realizar la descomposición de
los tejidos blandos. La fase se caracteriza por la presencia de insectos necrofílicos y de aquellos que
se alimentan de larvas y huevos de dípteros (Molina, 2004).
La reducción esquelética es la última fase del proceso de descomposición cadavérica, caracterizada
por la todas las partes blandas han desaparecido permaneciendo solamente los huesos (Molina,
2004).
13
1.3.4. Insectos.
La clase Insecta es considerada el taxón más grande dentro del grupo de los artrópodos, presentando
su máxima diversidad en el trópico (Audesirk, Audesirk, & Byers, 2003). Estos organismos poseen
una variedad de formas extraordinarias; lo cual, les permite vivir en casi cualquier hábitat terrestre y
acuático, sin olvidar, los individuos voladores que pueblan el aire (Campbell & Reece, 2007).
Los insectos se diferencian de otros artrópodos por poseer tres pares de patas y generalmente dos
pares de alas, a nivel torácico. El cuerpo de los insectos está dividido generalmente en tres regiones:
cabeza, tórax y abdomen, las cuales están recubiertas de un tegumento rígido formado
principalmente de quitina (Quiroz, 1999).
La cabeza está formada generalmente por un par de ojos compuestos o/u tres ocelos y un par de
antenas, las cuales consisten en una serie de segmentos que varían según el orden los insectos
(Quiroz, 1999), presentando gran variedad de formas y tamaños que tienen funciones táctiles,
olfativas, entre otras. Las piezas bucales formadas de quitina, comprenden un labro, un par de
mandíbulas, un par de maxilas, un labio y una hipofaringe, pudiéndose afirmar que tipo de
estructura bucal depende de los hábitos alimenticios del insecto (Hickman, Roberts, & Parson,
1998).
El tórax está compuesto por tres partes: protórax, mesotórax y metatórax, cada uno llevando un par
de patas. Igualmente, debe decirse, que el meso y metatórax generalmente llevan cada uno un par de
alas, las cuales pueden definirse como expansiones cuticulares de la epidermis que cuentan con una
membrana doble y con venas que proporcionan rigidez a éstas. Las alas debe enfatizarse son de
gran importancia para la determinación taxonómica de las especies. Las patas de los insectos, están
ampliamente modificadas para poder realizar diversidad de funciones; por lo que, dependiendo el
estilo de vida de los individuos habrán formas específicas de las extremidades (Hickman, Roberts,
& Parson, 1998).
El abdomen de los insectos adultos presenta aproximadamente de 9 a 11 segmentos (Hickman,
Roberts, & Parson, 1998), los cuales están unidos entre sí siendo representados por un arco tergal y
otro estergal, los cuales se unen por pleuras. Generalmente el último segmento está modificado para
formar apéndices genitales (Quiroz, 1999).
1.3.5. Dípteros.
Los dípteros se caracterizan por presentar un par de alas simples membranas y estrechas, debido a
que el segundo par está modificado en unas estructuras conocidas como halterios (Hickman,
Roberts, & Parson, 1998). Esta característica es la razón por la que se les otorgó este nombre al
orden, dado que, la palabra díptero proviene del griego Diptera que significa di=dos y ptera=ala; sin
embargo, debe señalarse que la característica que es propia de ellos, la cual ya fue mencionada, se
conoce como balancines o halterios, los cuales son unos órganos de equilibrio parecidos a una maza
sin los cuales no podrían volar (Carles, 1997).
Los dípteros pueden clasificarse según su nivel de relación, en fase adulta, con la especie humana,
debido a que si se desarrollase con otras fases del desarrollo se requeriría un conocimiento completo
del ciclo biológico, lo cual actualmente no sucede. Los grupos pueden clasificarse, según este
criterio, en tres grandes grupos: eusinantrópicas que corresponde a los dípteros que tienen una
relación más o menos regular con los asentamientos humanos; hemisinantrópicas que se refiere a
los grupos que se relacionan con nosotros de modo accidental u ocasional y el grupo de la
asinantrópicas que no presentan ninguna relación con nosotros (Carles, 1997).
14
a. Vista anterior de la cabeza b. Vista dorsal del ala
c. Vista dorsal del tórax d. Vista lateral del tórax
Figura 1. Algunas estructuras y setas del cuerpo de una mosca de la familia Muscidae, las cuales
son de importancia taxonómica. Tomada de Patitucci (2010).
El reconocimiento de la morfología de los individuos adultos, en particular de los machos, es de
gran importancia en trabajos taxonómicos, debido a que la presencia o ausencia de determinadas
setas o estructuras permite la diferenciación de una familia, género y especie respecto a otras. La
imagen 1, corresponde a 4 esquemas que visibilizan algunas de las partes y setas de la mosca, que
son de importancia en la diferenciación taxonómica.
Las abreviaturas para la cabeza (ver Figura 1, a) son: ar (arista); esc (escapo); fla (flagelo); gen
(gena); ped (pedicelo); pfc (parafacialia); pfr (placa fronto-orbital); s front (setas frontales); s inter
(setas interfrontales); s oc (setas ocelares); s poc (setas postocellares); s pocl (setas postoculares): s
orb (setas orbitales); s v e (seta vertical externa); s v i (seta vertical interna); tr oc (triángulo
ocellar); lun (lúnula) (Patitucci, 2010).
Para el ala son (ver Figura 1, b): A1 (vena anal 1), A2 (vena anal 2); B (vena basal); C (vena
costal); dm-cu (vena transversal discal media-cubital); h (vena transversal humeral); M (vena
media); R1 (vena radial 1); R2+3 (vena radial 2+3); R4+5 (vena radial 4+5); r-m (vena transversal
radial-medial); Rn (nodo del radio sector); Rs (vena radio sector); Sc (vena subcostal) (Patitucci,
2010).
Para el Tórax (ver Figura 1,c y d): a pre (área presutural); a post (área postsutural); anepm
(anepimerum); anepst (anepisternum); c hum (callo humeral); c pal (callo postalar); esp a
(espíraculo anterior); kemp (katepimerum); kepst (katepisternum); mr (meron); npl (placa
15
notopleural); p pal (pared postalar); prepm (proepimerum); prepst (proepisternum); s acr (setas
acrosticales); s cpal (setas del callo postalares); s dc (setas dorsocentrales); s hum (seta humerales);
s intra (setas intraalares); s ipal (setas intrapostalares); s kepst (setas katepisternales); s npl (setas
notopleurales); s pre (seta prealar); s prepm (setas proepimerales); s prepst (setas proepisternales); s
sctl ap (setas escutelares apicales); s sctl b (setas escutelares basales); s sctl ds (setas escutelares
discales); s sctl l (setas escutelateres laterales); s supra (setas supralares); sctl (escutelo) (Patitucci,
2010)
Las familias de dípteros de interés forense que mayor representatividad tienen generalmente
pertenecen a dípteros eusinantrópicos, pudiéndose reconocer, a partir de diferentes estudios de
sucesión de entomológica, las siguientes: Muscidae, Fanniidea, Calliphoridae, Sepsidae,
Sphaeroceridae, Anthomyiidae, Phoridae, Sarcophagidae, entre otras (Camacho, 2005). Debe
señalarse que las familias que pueden ayudar a las investigaciones de carácter forense son:
Calliphoridae, Sarcophagidae, Muscidae y Piophilidae (Beltran & Navarro, 2011; Yusseff, 2006;
Salazar, 2008).
La familia Muscidae se caracteriza porque sus larvas presentan forma cilíndrica, presentando
hábitos alimenticios saprófagos, coprófagos, depredadores, entre otros; lo cual, ocasiona que sean
comunes en medio donde hay presencia de materia orgánica vegetal y animal en descomposición,
hongos, musgo, entre otros. Estos inidivudos también presentan atracción por la sangre. Las
especies más conocidas de este grupo son: Musca domestica y Muscina stabulans (Carles, 1997).
Las moscas de la familia Calliphoridae son calipteradas, y este grupo está conformado por cinco
subfamilias que son: Mesembrinellinae, Calliphorinae, Luciliinae, Chysominae y Toxotarsinae, que
contienen 150 especies de las que 39 han sido reportadas para Colombia. Este grupo es de
importancia forense debido a que muchos estadios inmaduros se alimentan de cadáveres y algunas
especies presencia cierta preferencia a determinadas fases de descomposición (Wolff & Florez,
Descripción y Clave de los Estadios Inmaduros de las Principales Especies de Calliphoridae
(Diptera) de Importancia Forense en Colombia, 2009).
La familia Sarcophagidae se caracteriza por la presencia de tres bandas negras con un fondo gris a
nivel del tórax, la presencia de dos a cuatro setas notopleurales, la arista plumosa y la coxa posterior
con setas en su superficie posterior. Este grupo de dípteros presenta tres subfamilias:
Miltogramminae, Paramacronychiinae y Sarcophaginae, presentando un total de 100 géneros, de los
cuales 27 se han registrado para Colombia (Buenaventura, Camacho, García, & Wolff, 2009).
2. METODOLOGÍA
2.1. MANEJO, CUIDADO Y PRESERVACIÓN DE LA COLECCIÓN
El protocolo de manejo, cuidado y preservación de la colección de dípteros de interés forense, fue
establecido previamente por el grupo de investigación Kumangui, bajo la dirección del docente
Alexander García García, el cual presenta los siguientes componentes:
2.2. INGRESO Y REGISTRO
Es fundamental tener en cuenta condiciones de ingreso de los ejemplares a la colección, con el fin
de garantizar la calidad de éstos y los datos asociados a los mismos, se consideraron en forma
general las siguientes condiciones:
16
Los especímenes que ingresaron a la colección debían presentar las características que permitan su
determinación taxonómica, además de todos los datos correspondientes a colecta (abajo descritos)
para realizar el respectivo registro en la colección.
Todos los ejemplares se sometieron a una revisión previa y a un proceso de cuarentena en un área
definida para tal fin, con el propósito de controlar el desarrollo o proliferación de agentes bio-
deteriorantes en la colección.
Se asignaron códigos provisionales con los datos asociados a los ejemplares en el momento de
ingreso, que posterior al tiempo de cuarentena fueron utilizados para el registro en la base de datos
de la colección.
2.2.1. Curaduría.
La manera de tratar los diferentes ejemplares depende en primera instancia del tipo de conservación
en el que se encontraban los individuos, ya sea en líquido o seco como se describe anteriormente
(Almacenamiento).
Para que el material en la colección cuente con una adecuada preservación se realizó
periódicamente curaduría a cada uno de los individuos.
Se inició haciendo un diagnóstico rápido del estado de cada ejemplar, observando el estado de
preservación, el estado de la etiquetas, haciendo una revisión de la caja de guarda o el lugar de
conservación, buscando agentes externos que puedan perjudicar el ejemplar o el material y
determinando que la humedad del lugar sea la adecuada.
Cuando se evidenciaban agentes que estaban deteriorando al individuo, se tomaron medidas para
tratarlos y detener el proceso o daño. Procedimiento desarrollado:
Plagas y/o hongos
En este caso se trató a los individuos con una solución de alcohol y naftaleno a una proporción de
100 a 1 (1000ml X10 gr), sumergiendo por 5 min lo individuos o tratando a cada uno con pincel
suave, en ejemplares de especial cuidado, tanto como en las alas, antenas y patas.
Se desecharon la cajas de guarda contaminas, se realizó limpieza en la caja Cornell con la solución
anterior y se dejaron los ejemplares en cuarentena, hasta determinar que la infestación concluyo.
Durante este proceso las cajas aledañas a la caja infestada, fueron llevadas a cuarentena en
permanente observación previniendo un daño mayor.
2.2.2. Cuarentena.
Está es un proceso de aislamiento preventivo de los ejemplares que ingresaron a la colección
definitiva, a este proceso se sometieron todos los ejemplares tanto que ingresaron, como aquellos
que fueron dados en calidad de préstamo o consulta. Este proceso se realizó en un área adaptada
para ello, donde se monitorio y controlo con alcohol al 96% la proliferación de los agentes
biodeteriorantes.
Luego de ésta cuarentena, se procedió a realizar el etiquetado y montaje final para la inclusión en la
colección. Los datos a tener en cuenta son:
17
Geo referencia: país, departamento, ciudad o municipio, vereda o localidad, corregimiento,
barrio y otros como finca o sector, de igual manera datos referencia geográfica como
coordenadas y altitud (msnm). Lugar o tipo de cobertura en la cual fue colectado el
individuo como, dosel, hojarasca y otros.
Colector: nombre completo del colector, institución a la cual pertenece y motivo de la
colecta. Los datos del colector en la etiqueta se referencian con la inicial de su nombre y su
apellido completo.
Fecha: día, mes y año en el cual el individuo fue colectado.
Determinación: más adelante después del proceso de determinación se ingresan lo datos de
la persona que lo determino, así como el lugar taxonómico que le fue asignado y la fecha en
la cual se realizó.
2.3. ETIQUETAS
Las etiquetas contienen los datos que determinan el lugar de procedencia de los individuos,
ubicación taxonómica, datos de referencia y búsqueda y numeración.
Tienen las siguientes características:
Papel opalina
Tamaño, 15 mm X 20 mm
Letra Arial –Tamaño 4, numeración (tipo de letra Arial negrilla- tamaño 12)
Impresión en laser
2.3.1. Datos de Colecta.
Estos determinan el lugar exacto donde se colecto el individuo, describiendo con la mayor claridad
los datos necesarios para su ubicación en determinado espacio geográfico (ver Figura 2). Estos son:
País, Departamento, Ciudad o municipio, Localidad o vereda, barrio y otros como finca o
sector.
Datos de geo referencia, coordenadas y altitud con respecto al mar (msnm).
Fecha de la colecta, día, mes y año.
Nombre del colector, inicial del nombre y apellido completo.
2.3.2. Datos de identificación.
Los datos que ayudan a ubicar el lugar correspondiente de cada uno de los individuos después de un
proceso de determinación taxonómica riguroso, en el cual se utilizan claves taxonómicas y
descripciones de individuos para poder determinarlos y asignarles su taxón, se anexan los datos de
quien realizo la determinación y la fecha (ver Figura 3).
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Figura 2. Características de la etiqueta que contiene datos de colecta.
Figura 3. Características de la etiqueta que contiene datos taxonómicos del individuo.
2.3.3. Determinación de los especímenes.
Una vez revisada la información de colecta de los ejemplares, se verifico la informacion
taxonómica; para lo cual, se utilizaron claves taxonómicas especializadas dentro de las que se
destacan las siguientes: Key to the adults of the most common forensic species of Diptera in South
America (Carvalho & Mello-Patiu, 2008); Sarcophagidae (Diptera) de importancia forense en
Colombia: claves taxonómicas, notas sobre su biología y distribución (Buenaventura, Camacho,
García, & Wolff, 2009); clave ilustrada para la identificación de los géneros y las especies de
califóridos (diptera: calliphoridae) de Colombia (Amat, Wolff, & Velez, 2008), entre otras.
2.3.4. Catalogación
Este proceso consistio en asignar a cada ejemplar un número único consecutivo de acuerdo a los
registros existentes, éste va acompañado del acrónimo de la colección, y cuenta con una etiqueta
que determina la ubicación y agrupación correspondiente en la colección, se utilizó la numeración
precedida de las tres primeras letras de cada Orden (Ver Figura 4) de esta forma se agrupa los
individuos por orden facilitando la búsqueda y agrupación taxonómica.
Figura 4. Ejemplo del código que se asignará a cada orden, donde la numeración aumenta
consecutivamente.
2.4. ALMACENAMIENTO
Para el adecuado manejo y conservación de los diferentes ejemplares, la colección cuenta con un
compactador de siete secciones, con una capacidad aproximada para 600 cajas tipo Cornell,
estantes en un lugar adecuado para la cuarentena de los individuos en observación y/o
investigación, mesas para trabajo y equipo como estereoscopios, microscopios, alfileres y otros.
19
Cada individuo esta resguardado en una caja dentro del compactador, donde se le proporciono un
espacio adecuado, este depende en la forma en el cual se encuentra preservado ya sea esta liquido
o en seco.
La preservación en líquido se realizó en frascos de vidrio (33 ml) con tapa rosca blanca, donde
estará totalmente cubierto el individuo con alcohol al 70% en la mayoría de ejemplares que
contamos y se modifica desde la fecha (01-2014) con alcohol al 95%, buscando una mejor
preservación para futuros estudios moleculares.
La preservación en seco se realizó a cada ejemplar que permita un montaje adecuado para su
preservación, este varía dependiendo del orden de cada individuo, al terminar el proceso se guarda
en caja de guarda adecuada para su tamaño.
2.4.1. Montaje.
Este se realiza por el/los curador(es), iniciando con la separación de los materiales necesario para
este procedimiento, como;
Base de trabajo (Icopor o Jumbolon) o base de extensión alar.
Alfileres entomológicos, alcohol, papel parafinado, pinzas y otros.
Caja de vapor si los ejemplares se encuentran con un montaje inadecuado.
Cada individuo se limpia con alcohol al 90% y se prepara para su montaje, moviendo cada
articulación teniendo especial cuidado con sus alas si presenta y sus patas si estas son muy frágiles,
esto con el fin de determinar la rigidez post mortem la cual es mayor con el tiempo y dificulta un
poco el trabajo de extensión, manipular las articulaciones previamente las ablanda facilitando la
manipulación al montar cada pieza.
Con un alfiler entomológico adecuado al tamaño del individuo con el cual se trabaja, realizamos
una inserción total y permanente en el, se realiza en un lugar específico del tórax, ya que varía la
ubicación en varios ordenes pero en general esta e realiza en el metatórax. En este alfiler más
adelante colocaremos las diferentes etiquetas que identifican al individuo.
Se ubica la posición adecuada del individuo, como el caso anterior la posición de sus diferentes
apéndices difiere en algunos ordenes, para que estas mantengan una determinada posición
utilizamos alfileres incrustados a la base de trabajo, dejamos un par de días en el lugar de
cuarentena mientras se esclerotiza el cuerpo y conserva la posición que le dimos al individuo.
Al terminar el procedimiento colocamos las etiquetas de identificación, colocándolo en una caja de
guarda que a su vez ira en una caja Cornell dentro del compactador.
Antes de realizar el montaje, se determina si es necesario y que este no dañe o perjudique al
individuo. De realizarse, se inicia por la colocación del ejemplar en la caja de vaporización por un
tiempo determinado en el cual la Quitina ablande y permita manipular el ejemplar sin dañarlo, el
tiempo se modifica según la esclerotización de la quitina. Se continúa con los pasos descritos
anteriormente hasta depositarlo en la caja Cornell.
2.4.2. Sistematización.
En el programa Excel, se procederá a diseñar una base de datos que contenga toda la información
importante y valiosa sobre cada uno de los especímenes que se depositaran en la colección
20
entomológica, como es: Acrónimo, número de referencia, número de colección, información
taxonómica, número de ejemplares, datos colecta, datos de identificación, métodos de colecta,
observaciones, entre otros. Esta base de datos facilitará el trabajo futuro para el manejo de la
información, donde se obtendrán datos específicos y actuales de los ejemplares que resguarda la
colección, así podrá, estar al servicio de los investigadores asociados a la colección o eventualmente
a especialistas que requieran realizar revisiones en la misma.
2.4.3. Depósito y almacenamiento.
Una vez se cuente con todos los procesos arriba descritos para cada ejemplar que ingresa en la
colección, éstos se almacenaran en cajas cornell, según especificaciones estándar, que a su vez
serán llevadas a un compactador que esta seccionado internamente donde se ubicaran dichas cajas
por grupos taxonómicos de artrópodos y otros invertebrados.
3. RESULTADOS
El presente trabajo se centró en los dípteros de interés forense presentes en el museo de la
Universidad Distrital F.J.C., Facultad de Ciencias y Educación, Macarena B, colectados y
preservados en húmedo en dos trabajos de grado previos: “Efecto del furadán sobre la sucesión de
la entomofauna necrófaga asociada a Sus scrofa L. (1758), en la Vereda Petaluma, Cachipay,
Cundinamarca” realizada por Jehison Herrera y Karol Malaver año 2012 y “Caracterización de la
sucesión de entomografía cadavérica y procesos de descomposición en un cerdo (Sus scrofa)
sometido a envenenamiento por gases de automotor en la inspección de Cumaca, Tibacuy–
Cundinamarca” a cargo de Luisa Morales y Carolina Moreno, año 2010.
Se realizaron seis fases con los dípteros de cada uno de los trabajos de grado; En la primera tesis se
llevaron a cabo procesos de ingreso y registro de datos, curaduría, sistematización, etiquetación y
catalogación; en la segunda, se llevaron a cabo procesos de ingreso y registro de datos, curaduría,
determinación taxonómica hasta el nivel posible, sistematización, etiquetación y catalogación.
A continuación, se presentan los resultados alcanzados para cada una de estas fases, en su
correspondiente trabajo de grado:
3.1. Efecto del furadán sobre la sucesión de la entomofauna necrófaga asociada a Sus
scrofa L. (1758), en la Vereda Petaluma, Cachipay, Cundinamarca, Jehison Herrera y
Karol Malaver, (2012).
3.1.1. Ingreso y revisión de individuos.
Al iniciar, se revisa el estado en el que se encuentran los dípteros de interés forense.
La revisión inicial permitió reconocer que habían 928 individuos, almacenados en 247 (ver Figura
5) frascos. Dichos individuos, se encontraban preservados en liquido (ver Figura 6) en viales de 10
ml en solución agua + alcohol, que le daba a este último una concentración del 70%.
Adicionalmente, se reconoció que dichas colectas tenían asignadas unas etiquetas provisionales en
papel (Ver Figura 7), al igual que, códigos con sus respectivas convenciones (ver Figura 8).
21
3.1.2. Curaduría.
Al revisar los individuos, se extraen de los viales de vidrio en el cual estaban almacenados, se
limpian, se cambia el alcohol que tenían desde el momento de la colecta y se les deja con
concentración del 70 %.
3.1.3. Sistematización.
La sistematización de los datos de los 928 individuos se realizó en una base de datos (Anexo 1), la
cual había sido elaborada previamente en Excel, por parte del grupo de investigación Kumangui,
permitiendo relacionar la siguiente información: cantidad de individuos, orden, suborden,
superfamilia, familia, subfamilia, género, autor género, especie, autores, año del autor, nombre
común, determinador, fecha de determinación, lugar de colecta (país, departamento, cuidad,
municipio, finca, etc.), altitud, latitud, longitud, fecha de colecta, método(s) de colecta y datos de
los colectores. Los datos, debe resaltarse, al ser sistematizados de forma adecuada facilitaron
considerablemente la segunda y tercera fase, en tanto, la etiquetación y catalogación partían de esta
primera fase.
Figura 5. Individuos almacenados en 247 viales de 10 ml cada uno. Nótese los códigos, que
designan datos de la colecta, inscritos en la tapa.
Figura 6. Viales de 10 mL con alcohol al 70 % que mantenía a los individuos colectados desde el
año 2010, preservados. Nótese la hoja sobre la que están apoyados que designa el significado de los
códigos inscritos sobre las tapas. La hoja de convenciones, cabe decir, contaba con información
detallada de la fecha y lugar relacionada con la colecta del espécimen.
3.1.4. Etiquetación.
La etiquetación consistió en la impresión y asignación a cada uno de los frascos de tres (3) etiquetas
que incluían los siguientes datos: la primera, lleva información del lugar de colecta, incluyendo su
correspondiente altitud, latitud y longitud, datos de los colectores y fecha de colecta; la segunda,
incluye la información taxonómica del individuo, como orden, familia, género, especie, al igual
22
que, datos del determinador y fecha de determinación y la tercera, asigna un código con el cual se
identificará a la muestra dentro de la colección; en la figura 8 se muestra como las etiquetas
provisionales fueron reemplazadas por las etiquetas elaboradas, las cuales, tal como se señaló en la
metodología, fueron impresas a laser en papel Opalina.
Figura 7. Ejemplo de las etiquetas provisionales que se encontraron en todos los 247 viales de 10
mL.
Figura 8. Viales tras reemplazar etiquetas provisionales. La imagen de la izquierda incluye
información de colecta como el lugar, latitud, colectores y fecha de colecta. La imagen de la
derecha, incluye información taxonómica de los especímenes.
3.1.5. Catalogación y almacenamiento.
A cada una de las 247 muestras se les asignó un código consecutivo, con las características
mencionadas en la metodología, con el cual fueron almacenadas y podrán ser identificadas en el
compactador. A raíz de que no había registros de dípteros de interés forense en la colección se
comenzaron los códigos con la numeración DIP-0001 (Ver Figura 9). Una vez catalogadas todas
las muestras de esta primera tesis fueron almacenadas en el compactador de la CAUD-216 en cajas
tipo Cornell.
3.2. Caracterización de la sucesión de entomografía cadavérica y procesos de
descomposición en un cerdo (Sus scrofa) sometido a envenenamiento por gases de
automotor en la inspección de Cumaca, Tibacuy - Cundinamarca por Luisa Morales y
Carolina Moreno (2010)
3.2.1. Ingreso y registro de Individuos.
Al igual que los individuos de la tesis anterior se revisa el estado en el que se encuentran los
dípteros de interés forense.
23
La revisión permitió reconocer que habían 7.577 individuos, almacenados en 43 frascos de plástico
(ver Figura 10). Dichos individuos, se encontraban preservados en líquido (ver Figura 11).
Adicionalmente, se reconoció que en los frascos, estaban las fechas y hora de colecta en la mayoría.
3.2.2. Curaduría
A cada uno de los 43 frascos, se les cambia el alcohol por completo y se les deja con concentración
del 70 %, se reubican los individuos en frascos de vidrio, Al identificar que en algunas de las
muestras se encontraban individuos con hongos, se separan y aíslan del resto de la colección
entrando en periodo de cuarentena.
Figura 9. Catalogación de las muestras de la primera tesis. Obsérvese que la catalogación comienza
con el código DIP-0001.
Figura 10. Frascos de 300 cm3 encontrados en la colección, que no habían sido revisados
taxonómicamente, pertenecientes a la tesis 2.
Figura 11. Ejemplo del estado en el que se encontraban los frascos de colecta y preservación de los
especímenes de la segunda tesis. Debe decirse, que algunos de estos 43 frascos presentaban
descenso en su nivel de alcohol, que afectaba el estado de los individuos.
24
Los datos de colecta que presentaban estos frascos no eran completamente legibles, ya que se
encontraba en pequeños segmentos de papel escritos a lápiz, y por efecto del tiempo habían perdido
nitidez.
3.2.3. Determinación taxonómica.
Para la determinación taxonómica de los individuos pertenecientes a estos 43 frascos, se inicia con
la separación de los individuos de cada uno de los frascos (Ver Figura 12).
Figura 12. Individuos pertenecientes al frasco 1 de la tesis de Luisa Morales y Carolina Moreno
(2010) en caja de Petri, para ser observados bajo un microscopio estereoscopio.
La pasantía se concentró principalmente en determinar hasta el nivel taxonómico posible, todos los
individuos presentes en los 43 recipientes; encontrando las siguientes familias:
3.2.3.1. CALLIPHORIDAE (3082 individuos determinados)
La familia Calliphoridae se caracteriza por tener moscas caliptradas de tamaño medio a grande,
frecuentemente de color verde o azul metálicos (Lamina 1, Imagen A). Este grupo de individuos
presenta al igual que otras familias (Sarcophagidae y Tachinidae) setas merales (Lamina 1, Imagen
B) y una vena M encorvada; sin embargo, la característica que permite distinguirla es la presencia
de 2 setas notopleurales. No presenta subescutelo, y además su caliptero posterior es grande (Pape,
Wolff, & Amat, 2004).
La familia Calliphoridae recibe gran atención debido a que muchas especies se alimentan de materia
orgánica en descomposición y sus larvas son necrófagas. Los adultos, pueden alimentarse de
materia fecal, de desechos humanos y animales en descomposición actuando como vectores
potenciales de diferentes parásitos. Adicionalmente, hay varios reportes de su participación en el
desarrollo de miasis tanto en humanos como en el ganado (Olea, Dantur, Mulieri, Patitucci,
Centeno, & Mariluis, 2012).
La familia Calliphoridae pertenece a la superfamiliaOestroidea contando con cinco subfamilias
presentes en el neotrópico: Mesembrinellinae, Calliphorinae, Chrysomyinae, Toxotarsinae,
Rhiniinae. De estas cinco, sólo la última está ausente en Colombia (Amat, Vélez, & Wolff, 2008).
En el laboratorio se determinaron hasta el nivel de género, sólo los siguientes califóridos:
25
3.2.3.1.1. Lucilia Robineau-Desvoidy (1830)
Las Moscas del genero Lucilia sp. se caracterizan por ser de tamaño grande a mediano, robustas,
generalmente de color verde metálico (lamina 1, imagen C). El género se distingue por una seta en
el suprasquamal, setas en la base del escutelo y caliptero inferior dorsalmente desnudo (Lamina 1,
Imagen D). Adicionalmente, las márgenes superiores de los calípteros presentan penachos de setas
cerca a la base del escutelo, parafacial desnudo (Whitworth, 2006).
Las alas son hialinas o levemente ahumadas, compartiendo al igual que los individuos de su familia
la presencia de una vena M encorvada (Amat, Vélez, & Wolff, 2008).
3.2.3.1.2. Chrysomya Robineau-Desvoidy (1830)
Moscas caliptradas, pertenecientes a la superfamilia Oestroidea; se encuentran ampliamente
distribuidas en el Neotrópico, frecuentemente de color metalizado de tonos verdes-azulados
(Lamina 1, Imagen E) identificado como uno de los géneros importantes en medicina y/o la
entomología forense (Jara, Albornoz, Silva, & Riveros, 2013).
En este grupo, se encuentran individuos con base de la vena radial R (vena troncal o vena remigio)
ventralmente desnuda, ampolla cubierta con pilosidad larga y calíptero inferior dorsalmente piloso
(Lamina 1, Imagen F) en toda su superficie (Amat, Vélez, & Wolff, 2008).
3.2.3.1.3. Cochliomyia Townsend (1915)
Moscas caliptradas, pertenecientes a la superfamilia Oestroidea; originaria de las regiones tropicales
y subtropicales de América y Centroamérica, Panamá, las islas del Caribe, los países del noreste de
Sudamérica hasta Uruguay y Argentina (Gómez, Alvarez, & Bonilla, 2008).
Se caracterizan por ser de color verde metalizado (Lamina 2, Imagen G), robustas con un tamaño
promedio de 8-10 mm. Además presentan parafacial con una fina pilosidad, usualmente tres bandas
longitudinales en el mesonoto, palpos cortos y filiformes (Lamina 2, Imagen H), calíptero inferior
dorsalmente desnudo o solamente con alguna pilosidad basal y con el borde externo usualmente
redondeado (Amat, Vélez, & Wolff, 2008).
Sus primeros estadios larvales, se encuentran asociados a carne y materia en descomposición,
siendo estas especies gregarias, rara vez se mueven en la herida una vez incrustados en la carne,
causan una forma típica de lesiones en forma de bolsa (Gómez, Alvarez, & Bonilla, 2008).
3.2.3.1.4. Hemilucilia Brauer (1895)
Dípteros necrófagos, endémica de sur y centro América, característica de áreas rurales; raramente
colectada en áreas urbanas (Linhares 1981; Ferreira 1983; Paraluppi & Castellón 1994; Ferreira &
Barbola 1998; Rodrigues-Guimarães et al. 2007).
Dípteros caliptrados, de color verde metalizado (Lamina 2, Imagen I), robustas. Se caracteriza por
tener el calíptero inferior desnudo, una seta anterior katepisternal y una seta posterior katepisternal
(Lamina 2, Imagen J), alas usualmente con un par de regiones ahumadas localizadas una en la parte
proximal cubriendo las celdas c, bc y sc; y la otra cubriendo la porción distal de r1 y r2+3 (Amat,
Vélez, & Wolff, 2008).
26
3.2.3.2. CHLOROPIDAE (9 individuos determinados)
La familia Chloropidae pertenece a la superfamilia Carnoidea. La familia Chloropidae oscila
alrededor del mundo, con más de 2000 especies descritas en más de 160 géneros; más de 50 géneros
que contienen alrededor de 290 especies se encuentran en América del Norte y centro América. Los
individuos de esta familia son de color amarillo o rojo (Lamina 2, Imagen K), marcado con rojo a
rayas negras, son moscas de tamaño pequeño, de 1,5 a 5,0 mm de largo; con el número y el tamaño
de las cerdas claramente reducido (Latorre & Liliana, 2010).
Por lo general, con el triángulo ocelar bien desarrollado, en forma de placa (Lamina 2, Imagen L),
claramente delimitada, con una sola fila de setas que van a lo largo de los márgenes laterales. El
tercer segmento de la antena suele ser redonda, a veces alargada; teniendo una arista que
normalmente se pubescente o, a veces setulosa en forma de riñón, pero rara vez está desnudo
(Latorre & Liliana, 2010).
3.2.3.3. CURTONOTIDAE (26 individuos determinados)
Los individuos de la familia Curtonotidae se caracterizan por ser moscas de pequeño a mediano
tamaño, teniendo una longitud de 4 a 12 mm. Son individuos robustos, gibosos que presentan una
coloración que va del grisáceo al amarillo (Lamina 3, Imagen M), frecuentemente con manchas,
rayas, puntos en el tórax y otros pigmentos en el abdomen. Su arista es plumosa, con largas
proyecciones dorsales y ventrales. La pigmentación del ala varía desde hialina hasta altamente
ahumada. La subcosta completa, presentando celda cup. La celda basal (dm) y distal (bm)
confluyen. La costa presenta dos fracturas (Lamina 3, Imagen N): una humeral u otra en la
subcosta. Todas las tibias presentan setas dorsales preapicales (Klymko & Marschall, 2011).
3.2.3.4. EPHIDRIDAE (1 individuo determinado)
Los efídridos, comúnmente conocidos como "moscas de las riberas", se encuentran entre los
dípteros acaliptrados más diverso. En el mundo hay reportadas más de 1500 especies ubicadas en
110 géneros. Los efídridos se caracterizan por su pequeño tamaño, siendo éste generalmente menor
a 4 mm, su coloración va desde grisácea hasta negra (Lamina 3, Imagen Ñ), sus alas transparentes
con dos interrupciones de la vena costal (Lamina 3,Imagen O), una cerca de la humeral y otra de la
R. Hay muchas características en la estructura del cuerpo que se consideran excepciones, al igual
que, en el recubrimiento del cuerpo y ornamentación, haciendo de esta familia un grupo difícil de
caracterizar (Mathis & Zatwarnicki, 1990).
Los efídridos adicional a las características ya mencionan presentan vibrisa oral; la facia tiene una
protuberancia, proyectada frecuentemente hacia adelante; las setas postverticales son divergentes o
ausentes; Vena subcostal incompleta y celda anal ausente (Gonzalez & Saraya, 1992).
3.2.3.5. EMPIDIDAE (20 individuos determinados)
Los individuos pertenecientes a esta familia son moscas medianas, alargadas, con un tamaño
aproximado de 1 a 12 mm de largo. Por lo general de color oscuro, pero a veces amarillento a
marrón pálido (Lamina 3, Imagen P). Cabeza con grandes ojos compuestos, machos y hembras
holópticos. Las antenas tienen 3 o menos segmentos, y por lo general tienen una arista, el tórax es
generalmente algo rectangular en su contorno dorsal (Gonzalez & Saraya, 1992).
27
Sus alas tienen nervadura muy variable (Lamina 3, Imagen Q), pero la costa se extiende a al menos
el ápice del ala. Vena Sc generalmente se une a C o terminando libremente, sin unirse bruscamente
R1 (Gonzalez & Saraya, 1992).
A menudo exhiben dimorfismo sexual. Los machos con uno o dos segmentos tarsales agrandados
con glándulas de seda. Los fémures pueden o no pueden espesarse, y las coxas medias carecen de
un diente fuertemente desarrollado. El tarso posterior también tiene los segmentos basales
aplanados (Brown, y otros, 2010).
3.2.3.6. FANNIIDAE (2866 individuos determinados)
Los individuos de este grupo son moscas pequeñas y medianas que tienen una longitud corporal que
oscila de los 3.5 a los 7.5 mm, con patas, abdomen y cabeza parcial o completamente amarillas
(Lamina 4, Imagen R). El género Fannia presenta comúnmente dimorfismo sexual, siendo éste
evidente en la cabeza, patas y abdomen (Brown, Borkent, Cumming, Wood, Woodley, & Zumbado,
2010).
Los adultos de Fanniidae pueden ser reconocidos por que su vena A1 + CuA2 es muy corta (Lamina
4, Imagen S) y la vena subcostal no presenta sinuosidad. Adicionalmente, presentan una seta dorsal
verdadera sobre la tibia posterior en posición submediana. Las patas medias se encuentran
modificadas en las superficies ventrales, presentando un grupo de pelos, espinas, emarginaciones o
tubérculos. Las láminas frontoorbitales son anchas, con los márgenes internos convexos y la vita
frontal constreñida en medio de la frente, la seta orbital proclina está ausente y las setas cruzadas en
la vita frontal están ausentes también (Carvalho, 1997).
Fanniidae es una familia pequeña que se encuentran en todas las regiones biogeográficas del
mundo; sin embargo, están más ampliamente distribuidas en región Holártica. Debe decirse que
muchas claves taxonómicas toman a la familia Fanniidae y Muscidae como la misma debido a que
hace poco era considerada una subfamilia o tribu de la familia Muscidae, pero estudios
filogenéticos recientes han sugerido que son un grupo aparte más primitivo (Carvalho, 1997).
De los fánidos determinados en el laboratorio sólo se concentrará el presente trabajo en las
características específicas de un grupo.
3.2.3.6.1. Fannia obscurinervis Stein (1900)
Fannia obscurinervis (Lamina 4, Imagen T-U) es una especie sinantrópica, lo cual, quiere decir que
ésta especie cuenta con una relación muy cercana a ambientes urbanos, resaltándose que el índice
de sinantropía cambia según la especie y el grupo humano en cuestión (Augusto, Sánchez, & Wolff,
2009).
Este grupo, por tanto, puede ser colectado tanto en áreas urbanas como en áreas naturales, estando
asociado a la carroña, descomposición de cebollas, hígado de pollo, excrementos humanos y
descomposición de otros alimentos como camarón y banano (Grisales, Wolff, & Claudio, 2012).
3.2.3.7. HELEOMIZIDAE (1 individuo determinado)
Los heliomícidos son dípteros amarillos, cafés o marrones (Lamina 4, Imagen V) que presentan un
tamaño variado que va desde pequeño a grande (1.2-12mm, usualmente 4-7mm). Este grupo de
individuos se caracteriza por contar con la parte medial de la placa facial menos esclerotizada que
las partes laterales; vibrisas orales presentes; setas postorbitales convergentes; uno a tres pares de
28
fronto-orbitales, que no presentan curvatura hacia adentro; alas (Lamina 4,Imagen W) con fractura
en la vena costal, cercana a la unión entre la Sc y C; vena costal con espinas y celda anal presente
pudiendo la vena CuA2 alcanzar el margen del ala (Gill & Peterson, 1987).
Los heleomícidos del neotrópico, son un grupo del cual se conoce muy poco sobre su biología, tanto
así, que solo se considera que se puede trabajar este grupo con facilidad si los trabajos son
originarios de las regiones neártica, paleártica y holártica (Gonzalez & Saraya, 1992).
3.2.3.8. MUSCIDAE (961 individuos determinados)
Las moscas de la familia muscidae son de tamaño mediano, que presentan un tamaño que va de los
3 a los 10 mm. Se caracterizan por presentar diferentes colores, encontrándose tonos oscuros
(Lamina 5, Imagen Z), grises o amarillos, pero también algunos metalizados (Carvalho, 1997).
La familia muscidae puede ser reconocida por la presencia de un calíptero inferior más grande que
el superior (moscas caliptradas); ausencia de setas merales a nivel posterior del merón; vena A1 +
CuA2 incompleta, pero extendiéndose más allá de la mitad del ala (Lamina 5,Imagen AB); tibia
posterior sin un seta dorsal submediana; setas orbitales proclinadas y la presencia de una vena
subcostal ligeramente curveada (Carvalho, 1997).
Muscidae es una de las familias más grandes presentando aproximadamente 5.000 especies
descritas en el mundo. Específicamente para la región Neotropical se reconocen 850 especies, las
cuales pertenecen a 84 géneros. Algunas de estas especies tienen importancia comercial, agrícola,
ecológica, veterinaria, médico-legal, presentándose también reportes de su importancia como
vectores de enfermedad (Perez & Wolff, 2011).
A continuación, se presenta información general de tres géneros determinados de los frascos de
colecta pertenecientes a la segunda tesis:
3.2.3.8.1. Musca Linnaeus (1758)
El género Musca (Lámina 5. Imagen AC) incluye individuos que son atraídos por diferentes
sustratos, ya sean alimentos, desperdicios, secreciones excretas para alimentarse, convirtiéndose en
un vector mecánico de muchos parásitos (Quiceno, Bastidas, Rojas, & Bayona, 2010), como virus,
bacterias y protozoos que afectan a los animales y al hombre (Patitucci, 2010).
Los machos se caracterizan por ser holópticos; ojos desnudos; arista plumosa; setas acrosticales
presuturales no desarrolladas; setas de 2:4; setas katepisternales 1:2; anepimerum setuloso;
prosternum setuloso; caliptra inferior subtroncada posteriormente con el margen anterior por debajo
de la base del escutelo; tibia media sin setas ventrales; vena M fuertemente curvada apicalmente en
sentido anterior (Lamina 5. Imagen AD); esternito 1 setuloso (Patitucci, 2010).
3.2.3.8.2. Atherigona Rondani (1856)
El género Atherigona incluye individuos de importancia económica debido a que muchas de sus
especies son plagas de varios cereales y gramíneas. Los individuos de este grupo pueden
reconocerse por la forma de su cabeza angular muy característica (Lamina 6. Imagen AE-AF);
parafacial alargada y un tercer flagelómero largo que se extiende más allá de la altura media del ojo,
tanto así, que en algunas especies se extiende más allá del margen inferior del rostro. Presenta solo
un par de setas orbitales reclinadas, estando las proclinadas ausentes. El katepisternom con tres
29
setas dispuestas en forma de triángulo equilátero (1:1:1) y la tibia posterior no presenta calcar
(Muller, 2015).
3.2.3.9. OTITIDAE (14 individuos determinados)
La familia Otitidae, también reconocida como Ulidiidae, son moscas de mediano tamaño (longitud
corporal de 2-14 mm) que presentan un cuerpo moderadamente elongado (Lamina 6, Imagen AI).
La coloración va de amarillo a café o negro con patrones de bandas, siendo frecuente un color
metálico azul o verde. La cabeza presenta setas variadas, siendo las interiores y exteriores verticales
y las postorbitales y orbitales divergentes; la seta frontal ausente; probóscide con desarrollo
moderado del prementón; el toráx usualmente más largo que ancho; alas con un patrón de bandas
oscuras, raramente completamente hialinas; el ala presenta (Lamina 6, Imagen AJ) vena subcostal
completa; vena costal con fractura cerca de la transversal humeral; patas moderadamente
desarrolladas y tibia sin seta dorsal (Brown, y otros, 2010).
3.2.3.10. PHORIDAE (17 individuos determinados)
Los fóridos son conocidos comúnmente como moscas jorobadas, por presentar un gran pronoto. Se
caracterizan por presentar un tamaño de 0.4 a 6 mm y colores que van desde el negro hasta el
blanco (Lamina 6,Imagen AK) presentando fémures bien desarrollados los cuales están
comprimidos lateralmente (Uribe, 2013). Tanto machos como hembras se pueden reconocer con
facilidad por la venación que presentan sus alas, debido a que en éstas las anteriores son engrosadas
mientras las posteriores delgadas estando ausente las venas transversales (Lamina 6, Imagen AL).
La vena R2+3 puede o no estar presente; los flagelómeros son generalmente globosos, pudiendo
encontrase estructuras alargadas y punteagudas; las tibias posteriores pueden llegar a presentar uno
o dos peines (Brown, Borkent, Cumming, Wood, Woodley, & Zumbado, 2010).
Aproximadamente, 4000 especies de fóridos se han descrito en el mundo, perteneciendo más de la
mitad al género Megaselia; sin embargo algunas investigaciones sostienen que el número de fóridos
podría llegar a aumentar incluso a 50.000 especies. Estos indidividuos presentan importancia
agrícola, pecuaria, ecológica, entre otras (Uribe, 2013).
3.2.3.11. PIOPHILIDAE (335 individuos determinados)
La familia Piophilidae es moderadamente pequeña (longitud corporal de 3-8 mm) de color negro
(Lamina 7, Imagen AM) brillante a café opaco, con alas generalmente cristalinas. Setas frontales
presentes, algunas veces no desarrolladas; setas postverticales divergentes; antena usualmente corta;
flagelómero I oval; arista desnuda o pubescente. El tórax cuenta con dos setas post-pronotales, de
una a dos en la notopleura, cero a una en el pre-escutelo. El anepisternom frecuentemente con finas
setas (Brown, y otros, 2010).
Adicionalmente, a las características ya mencionadas se observa en este grupo setas orbitales
superiores, mientras que las inferiores están ausentes; la vena (Lamina 7, Imagen AN) costal
fracturada antes de la R; vena Sc unida a la R antes del ápice y celda anal corta (González &
Carrejo, 1992).
Esta familia cuenta con 82 especies a nivel mundial. Muchas de éstas pueden encontrase asociadas a
estiércol, huesos, basura, vegetación en descomposición, hongos, nidos de aves y astas (Rochefort,
Giroux, Savage, & Wheeler, 2015).
30
3.2.3.12. SARCOPHAGIDAE (100 individuos determinados)
La familia Sarcophagidae se caracteriza por presentar frecuentemente individuos con tres bandas
negras (Lamina 7, Imagen AÑ ) en el mesonoto.Este grupo de individuos se distingue de otras
familias por la presencia de 3 o 4 setas notopleurales (Lamina 7, Imagen AO). Adicionalmente, la
coxa posterior presenta setas sobre su superficie posterior y su arista comúnmente es plumosa. Las
hembras son vivíparas u ovovivíparas, depositando sus larvas vivas de primer instar (Buenaventura,
Camacho, García, & Wolff, 2009). Los adultos de Sarcophagidae son muy similares a Calliphoridae
y Tachinidae, compartiendo con estos dos grupos, la presencia de setas merales.
Esta familia hace parte de la superfamilia Oestroidea y puede dividirse en tres subfamilias:
Miltogramminae, Paramacronychiinae y Sarcophaginae; las cuales, contienen más de 2500
especies, ampliamente distribuidas en el trópico y las regiones cálidas. El grupo cuenta con
aproximadamente 100 géneros, de los que 27 han sido registrados en Colombia (Buenaventura,
Camacho, García, & Wolff, 2009).
3.2.3.13. SPHAEROCERIDAE (1 individuo determinado)
La familia Sphaeroceridae se caracteriza por contar con individuos pequeños (0.7-5.5 mm),
robustos, que usualmente presentan coloraciones opacas (Lamina 7, Imagen AP). Estos individuos
se considera que son relativamente sencillos de reconocer de otros individuos acaliptrados debido a
que presentan un tamaño reducido y el primer tarsómero de la pata trasera grueso (Rohacek, y otros,
2001).
La cara en vista lateral de estos individuos, está profundamente excavada entre la antena y el borde
de la boca; la antena 3 está segmentada, presentando una arista, la cual puede ser largo, desnuda
hasta pubescente; no presente ranura en el segundo segmento de la antena; puede o no presentar
setas postverticales los cuales generalmente son convergentes; las piezas bucales son funcionales;
vibrisas presentes; ala (Lamina 7, Imagen AQ) con venación completa, exhibiendo celdas basal,
distal, y anal; vena costal con dos frácturas, una cerca de la unión de la Sc y otra cerca a la
nervadura transversal humeral; vena Sc débil o ausente; calíptero inferior reducido y sin espolón en
las tibias posteriores (Watson & Dallwitz, 2012).
3.2.3.14. SCIARIDAE (1 individuo determinado)
La familia Sciaridae es comúnmente conocida como mosquitos de los hongos de alas oscuras, o
mosquitos de la raíz (Lamina 8, Imagen AR), los cuales son muy similares a Mycetophilidae, pero
se diferencian por la presencia de ojos holópticos. La mayoría de las larvas de las espcies viven en
hongos y algunos llegan a ser parasitos de las paredes de los sótanos, y son muy pocas las que
invaden raíces de plantas (Gonzalez&Carrajo, 1992).
La familia Sciaridae se considera un grupo grande de moscas, que varía de tamaño entre 1 a 11 mm.
La mayoría de los individuos presentan puenten ocular y antenas largas con flagelómeros
cilíndricos y cubiertos de setas; hay presencia de los tres ocelos; algunos de los escleritos de la
pleura presentan setas. Las alas (Lamina 8, Imagen AS) son muy características, presentando en
posición longitudinal las venas R-M y M-Cu; la vena R5 nunca es bifurcada, siendo paralela a la
Costal en la mayor parte de su longitud. Hay ausencia de la vena M3 y de la celda distal y basal
(Amorim, 1997).
31
3.2.3.15. SEPSIDAE (119 individuos determinados)
La familia Sepsidae está conformada por moscas delgadas pequeñas de 2 a 6 mm. Generalmente
presentan una coloración que va de parda a negruzca (Lamina 6, Imagen AT), aunque se pueden
encontrar individuos brillantes o con un púrpura metálico (Silva, 1997).
Las características morfológicas principales de este grupo son las siguientes: alas translúcidas,
pudiendo presentar una mancha oscura (Lamina 8, Imagen AU ) cerca de su extremo. La cabeza es
más o menos globular y los ojos son grandes tal como se puede observar en la columna de la
izquierda. Carecen de vibrisas orales. Las antenas son cortas, de tres segmentos, con una arista
desnuda. Los palpos son generalmente muy pequeños. La mayoría del tórax generalmente es
brillante. Se puede encontrar en los machos en la zona de los fémures y tibias anteriores
modificaciones en forma de setas, espinas, tubérculos o escotaduras que sirven para enganchar la
base de las alas de las hembras durante la cópula. El abdomen es angosto, presentando una
constricción cerca de la base, ocasionado que estos individuos presenten apariencia de hormigas
(Silva, 1997).
La familia puede ser distinguida por la presencia de una vena Costa no interrumpida, la presencia de
uno o más setas evidentes en el margen posteroventral del espiráculo posterior y la forma similar a
hormiga (Silva, 1997).
3.2.3.16. TEPHRITIDAE (1 individuo determinado)
La familia Tephritidae está compuesta por moscas acaliptradas, que se caracterizan por presentar
generalmente colores vivos (Lamina 8, Imagen AV) y diseños alares de múltiples formas (Lamina
8, Imagen AW). Presentan habitos alimenticios fitófago, entre los cuales tenemos variedad de
selección entre flore, frutos, semillas entre otros órganos vegetales para los estadios inmaduros, en
cuanto a los adultos se alimentan de azucares y proteínas provenientes de levaduras (Gonzalez,
2005).
La familia Tephritidae se caracteriza y se reconoce principalmente por sus alas, debido a que la
vena subcostal se dirige bruscamente hacia adelante. Adicionalmente, sus alas están frecuentemente
manchadas en varios patrones según la especie y su ovipositor está bien esclerotizado en las
hembras, lo cual es que gran importancia debido a que garantiza la inoculación de los huevos y/o
larvas en su hospedero vegetal (Norrbom, S.f.).
Lo anterior, es la causa por la que a estas moscas se les conoce como moscas de la fruta, en tanto
cuenta con una gran habilidad para parasitar diferentes tipos de cultivos, concentrándose en la pulpa
de la fruta y otras estructuras de interés comercial (Martínez & Serna, 2005).
A medida que se lleva a cabo la determinación taxonómica (ver Figura 13), se separaron los
individuos por familia en frascos de vidrio de 33 mL (ver Figura 14); los cuales, posteriormente se
ingresaron en cajas Cornell que se almacenaron en el compactador de la CAUD-216.
3.2.4. Sistematización
En la determinación taxonómica se encuentran 7.577 individuos, los cuales son sistematizados en la
base de datos previamente descrita teniendo en cuenta la siguiente información: cantidad de
individuos, orden, suborden, superfamilia, familia, subfamilia, fecha de determinación, lugar de
colecta (país, departamento, ciudad, municipio, finca, etc.), altitud. Latitud, Longitud, fecha de
colecta, métodos de colecta y datos de colectores (anexo 1).
32
3.2.5. Etiquetación
En esta segunda tesis, se tienen en cuenta tres (3) etiquetas para montaje en húmedo y montaje en
seco (ver Figura 15). Las etiquetas fueron impresas con sus respectivos códigos, de acuerdo al
método de preservación; teniendo en cuenta los mismos criterios de organización, incluyendo los
siguientes datos: la primera, lleva información del lugar de colecta, incluyendo su correspondiente
altitud, latitud y longitud, datos de los colectores y fecha de colecta; la segunda, incluye la
información taxonómica del individuo, como orden, familia, género, especie, al igual que, datos del
determinador y fecha de determinación y la tercera, asigna un código con el cual se identificará a la
muestra dentro de la colección (Anexo 2).
Figura 13. Caja de Petri en la cual se separaban los individuos, para ser vistas al estereoscopio.
Figura 14. Frascos de 33 mL en los cuales fueron separados los individuos de la tesis de Luisa
Morales y Carolina Moreno (2010), de acuerdo a la familia o género determinado.
3.2.6. Catalogación
Al revisar los 43 frascos, se diferencian y determinan 7.577 individuos, almacenados en 464
frascos, a los cuales se les asigno un código consecutivo, con las características mencionadas en la
33
metodología. Estas muestras son preservadas en el compactador; los datos de la catalogación de la
tesis 2 se anexan a la que se realizó previamente con la tesis 1, finalizando asi su Catalogación (ver
Figura 16) en el código DIP-0701.
Figura. 15. Individuos de la tesis de Luisa Morales y Carolina Moreno (2010), preservados en seco
y húmedo con sus respectivas etiquetas.
Figura 16. Listado de catalogación de los individuos de la tesis de Jehison Herrera y Karol Malaver
(2012) y Luisa Morales y Carolina Moreno (2010).
3.2.7. Estimacion del porcentaje de familias, géneros y especies de dípteros de importancia
forense presentes en la Colección de Artrópodos y otros Invertebrados de la
Universidad Distrital CAUD-216.
Luego de la sistematización en una base de datos en Excel de los datos asociados a todos los
ejemplares, elaborada por el grupo de investigación Kumangui previamente, ya fuera que estos
estuvieran almacenados en seco o en húmedo, se obtuvieron los siguientes porcentajes:
3.2.7.1. Tesis de Jehison Herrera y Karol Malaver (2010).
La sistematización de los datos asociados a esta primera tesis, permitió reconocer que la familia que
mayor número de individuos presentó fue Muscidae, seguida de Calliphoridae, Sepsidae y
34
Fanniidae, con un número de individuos de 316, 134, 109 y 94 respectivamente (Ver Figura 17),
respecto a un total de 928 individuos que se agrupan en 36 familias.
Figura 17. Familias sistematizadas pertenecientes a la tesis “Efecto del furadán sobre la sucesión
de la entomofauna necrófaga asociada a Sus scrofa L. (1758), en la Vereda Petaluma, Cachipay,
Cundinamarca” realizado por Jehison Herrera y Karol Malaver en el año 2012. Nótese que el
mayor número de individuos se encuentran en la familia Muscidae, Calliphoridae, Sepsidae,
Fanniidae, en orden descendiente.
La familia Muscidae, Calliphoridae, Sepsidae y Fanniidae corresponden a un porcentaje de 34%,
14%, 12% y 10%, respecto al total de 928 individuos (ver Figura 18).
Adicionalmente, se presenta el número de individuos que pertenecen a géneros de las familias
Calliphoridae (ver Figura 19), Sarcophagidae (ver Figura 20) y Muscidae (ver Figura 21). Los
géneros Hemilucilia, Oxisarcodexia y Otros Muscidos (Individuos organizados por morfos), son los
mayores representantes de las familias Calliphoridae, Sarcophagidae y Muscidae con un número de
individuos de 68, 13 y 162 respectivamente.
0
50
100
150
200
250
300
350C
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NU
MER
O D
E IN
DIV
IDU
OS
FAMILIAS
35
Figura 18. Porcentaje de las familias de dípteros sistematizadas pertenecientes a la tesis “Efecto del
furadán sobre la sucesión de la entomofauna necrófaga asociada a Sus scrofa L. (1758), en la
Vereda Petaluma, Cachipay, Cundinamarca” realizado por Jehison Herrera y Karol Malaver en el
año 2012.
Figura 19. Número de individuos pertenecientes a diferentes géneros de la familia Calliphoridae,
teniendo como mayor representante a Hemilucilia con 68 individuos.
Calliphoridae 14% Sarcophagidae
3%
Fannidae 10%
Muscidae 34%
Drosophilidae 4%
Piophilidae 4%
Sepsidae 12%
Sphacroceridae 5%
otros 14%
36
Figura 20. Número de individuos pertenecientes a diferentes géneros de la familia Sarcophagidae,
teniendo como mayor representante a Oxisarcodexia con 13 individuos.
Figura 21. Número de individuos pertenecientes a diferentes géneros de la familia Muscidae,
teniendo como mayor representante a Muscidos organizados en morfoespecies con 162 individuos.
3.2.7.2. Tesis de Luisa Morales y Carolina Moreno (2010).
La sistematización de los datos asociados a esta segunda tesis, permitió reconocer que la familia que
mayor número de individuos presentó fue Calliphoridae, seguida de Fanniidae, Muscidae y
Piophilidae con un número de individuos de 3082, 2866, 961 y 335 respectivamente (Ver Figura
22), respecto a un total de 7577 individuos determinados que se agrupan en 18 familias.
0
2
4
6
8
10
12
14
NU
MER
O D
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DIV
IDU
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GÉNEROS
0
20
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DIV
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OS
GENEROS
37
Figura 22. Familias sistematizadas pertenecientes a la tesis “Caracterización de la sucesión de
entomografía cadavérica y procesos de descomposición en un cerdo (Sus scrofa) sometido a
envenenamiento por gases de automotor en la inspección de Cumaca, Tibacuy – Cundinamarca”
desarrollado por Luisa Morales y Carolina Moreno en el año 2010. Nótese que el mayor número de
individuos se encuentran en la familia Calliphoridae, Fanniidae, Muscidae y Piophilidae en orden
descendiente.
Figura 23. Porcentaje de las familias de dípteros sistematizadas pertenecientes a la tesis
“Caracterización de la sucesión de entomografía cadavérica y procesos de descomposición en un
cerdo (Sus scrofa) sometido a envenenamiento por gases de automotor en la inspección de
Cumaca, Tibacuy – Cundinamarca”.
0
500
1000
1500
2000
2500
3000
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OS
FAMILIAS
Calliphoridae 41%
Fanniidae 38%
Muscidae 13%
Piophilidae 4%
Sarcophagidae 1%
Sepsidae 2%
otros 1%
38
La familia Calliphoridae, Fanniidae, Muscidae y Piophilidae corresponden a un porcentaje de 41%,
38%, 13% y 4%, respecto al total de 7577 individuos determinados (ver Figura 23).
El número de individuos de las familia Calliphoridae que pertenecen al género Chrysomya,
Cochliomyia, Hemilucilia y Lucilia, corresponde a 2507, 268, 254, 51 respectivamente (ver Figura
24).
Figura 24. Número de individuos correspondientes a los diferentes géneros sistematizados para la
familia Calliphoridae.
4. DISCUSIÓN DE RESULTADOS
La primera fase que se desarrolló fue el ingreso y registro de individuos que resultó de gran valor
debido a que permitió reconocer el estado inicial de los ejemplares que ingresaron a la colección
entomológica CAUD-216, siendo este el punto de referencia para analizar la transformación de los
individuos a medida que trascurre su permanencia dentro de la colección, con el fin de desarrollar
estrategias adecuadas de preservación y curaduría para evitar su deterioro (Simmons & Muñoz,
2005).
La segunda fase desarrollada, fue la Curaduría y la Cuarentena, que como se indicó, no se concentró
en la eliminación de agentes que afectan el estado de los ejemplares, ya que los individuos una vez
colectados, previamente 4 y 6 años atrás, se preservaron en alcohol al 70%; lo cual, influyó
considerablemente en que éstos presentaran un porcentaje mínimo de hongos u otros agentes bio-
deteriorantes (5%). Sin embargo, se realizó cambio de alcohol y adiciono a los viales en los que se
había evaporado. En dicha revisión se identificó que los individuos presentaban rigidez y muchos
de ellos habían perdido sus apéndices. Lo cual se puede solucionar adicionando unas gotas de
glicerina a los frascos de alcohol, debido a que, esto permite que los individuos no se endurezcan
demasiado y así facilitar su manejo.
La tercera fase, es la determinación taxonómica que permitió registrar en cada una de las tesis de
grado las siguientes familias:
La tesis “Efecto del furadán sobre la sucesión de la entomofauna necrófaga asociada a Sus scrofa
L. (1758), en la Vereda Petaluma, Cachipay, Cundinamarca” realizada por Jehison Herrera y Karol
39
Malaver en el año 2012, presentaba 36 Familias, las cuales son: Calliphoridae, Sarcophagidae,
Fanniidae, Muscidae, Agromizidae, Anthomyidae, Asteiidae, Canacidae, Chamaemyidae,
Chloropidae, Clusidae, Coelopidae, Conopidae, Diasteiidae, Dolichopodidae, Drosophilidae,
Dryomizidae, Empididae, Epphydridae, Lauxanidae, Micropezidae, Neridae, Otitidae,
Pallopteridae, Phoridae, Piopilidae, Pipunculidae, Rhagionidae, Richardidae, Ropalomeridae,
Scatopsidae, Sciaridae,Sepsidae, Sphaeroceridae, Syrphidae y Tephitidae.
Debe resaltarse, que de acuerdo al número de individuos presentes en la colecta se pudo establecer
que Muscidae, es la familia que presenta mayor prevalencia con el 34 % sobre el total de
individuos, seguida por Calliphoridae y Sepsidae con porcentajes de 14% y 12 % respectivamente,
lo cual, corresponde con los resultados de algunas investigaciones que afirman que estas familias
son de importancia forense (Yusseff, 2006). Las otras familias se encuentran representadas entre el
2 y el 6% debido al bajo nivel de individuos registrados.
La tesis “Caracterización de la sucesión de entomografía cadavérica y procesos de descomposición
en un cerdo (Sus scrofa) sometido a envenenamiento por gases de automotor en la inspección de
Cumaca, Tibacuy – Cundinamarca” desarrollado por Luisa Morales y Carolina Moreno en el año
2010, presentó 18 familias: Calliphoridae, Chloropidae, Curtonotidae, Empididae, Ephydridae,
Fanniidae, Heleomizidae, Muscidae, Otitide, Phoridae, Piophilidae,Ropalomeridae, Sarcophagidae,
Sciaridae, Sepsidae, Sphaeroceridae y Tephritidae.
Al igual que la tesis de Herrera y Malaver (2010) se evidencia la prevalencia con un 41% de la
familia Calliphoridae, sobre el total de individuos; seguida por la familia Fanniidae y Muscidae con
un porcentaje de 38% y 14% respectivamente. Las otras familias presentes, se encuentran
representadas entre el 1 y 4 %.
Los dos trabajos analizados evidencian la presencia de Calliphoridae, Muscidae, Fanniidae, como
familias que predominan, respecto al total de individuos; sin embargo, como se observa la familia y
en consecuencia los individuos que dominan en cada uno de los trabajos es diferente; lo cual, se
debe a que las especies pioneros y aquellas que participan activamente en los procesos de
descomposición de un cadáver, cambian debido a las condiciones geográficas, ambientales,
temporales del muestreo y posibles diferencias en el método de captura.
Sin embargo, debe reconocerse la presencia de familias de dípteros que se consideran de
importancia forense: Calliphoridae, Muscidae, Piophilidae, Sarcophagidae (Liria, 2006), Phoridae
(Magaña & Andara, 2006); las cuales, dependiendo el lugar, son características de un estado de
descomposición.
Por ejemplo, las moscas de la familia Calliphoridae se considera de importancia forense ya que son
atraídas por los cuerpos en descomposición; las cuales, al llegar a éstos ponen sus huevos en las
heridas o áreas con secreciones olorosas de los animales, y de ellos se desarrollan las larvas que
comienzan a alimentarse de los tejidos. El reconocimiento del cuerpo se debe a que perciben
químicamente las sustancias que desprenden los cadáveres, cuando comienzan su proceso de
descomposición. Las moscas adultas secretan una serie de enzimas que ayudan a pre-digerir el
cuerpo, absorber los líquidos (Rinaldi & Conen, 2006).
La cuarta fase desarrollada fue la sistematización de datos, en la cual se reconocieron familias
(Calliphoridae, Sarcophagidae, Fannidae, Sepsidae, Muscidae, Curtonotidae, entre otras) con
algunos de sus géneros, de dípteros que se consideran de importancia forense. La característica más
preponderante de estos individuos, que le otorgan dicho valor, es su hábito alimenticio: muchas de
estas especies son necrófagas y se alimentan directamente de cadáveres en su estado larvario. Otra
40
característica, se relaciona con su capacidad para detectar el olor emanado por un cuerpo a
kilómetros de distancia y su tamaño les permite el ingreso a casi cualquier lugar, siendo las
primeras en encontrar un cadáver (Yusseff, 2006).
Lo anterior, permite reconocer que una de las características que comparten algunas familias y
géneros de dípteros de importancia forense son sus hábitos alimenticios, hecho de importancia dado
que estas especies también cuentan con importancia médica, en tanto pueden provocar miasis
accidental, o ser utilizadas para problemas de cicatrización en terapia larval (Figueroa, Uherek,
Yusef, López, & Flores, 2006).
La quinta fase desarrollada fue la etiquetación de cada ejemplar; sin embargo, debe resaltarse que la
etiqueta de los individuos que se conservan en seco fue diferente de los que se conservan en
húmedo. La impresión de las etiquetas se hizo en papel opalina con impresora láser debido a que
como lo plantea Marquez (2005), se debe garantizar que se haga con plumones indelebles, o que
sean impresas a laser para garantizar la no pérdida de los datos al estar en contacto con el alcohol.
Las estrategias de preservación de los individuos, desarrolladas fueron dos: líquida y seca. La
primera corresponde al almacenamiento en alcohol al 70% de los individuos en viales de vidrio u
otro material y la segunda al montaje en seco de los mismos. Debe resaltarse que estos dos tipos de
preservado se da por el tamaño del individuo; sin embargo, si se desea preservar un individuo muy
pequeño, tanto que se requiere del uso de microscopio, puede usarse la técnica de preparaciones,
que consiste en preservar en individuo en un portaobjetos (Márquez, 2005).
El presente trabajo utilizó alcohol al 70 u 80%; sin embargo, algunos investigadores usa una
mezcla llamada solución de Dietrich, que consistía en unir 50 cc de alcohol al 90%, con 50cc de
formalina al 40%, 10cc de ácido acético y 300 cc de agua destilada (Medina, 1977). El presente
trabajo para garantizar un estado adecuado de los ejemplares que componen la colección, deben
revisar constantemente revisar el estado del alcohol, tal como lo propone Márquez (2005) debido a
que éste puede evaporarse o ensuciarse.
La preservación en seco, se desarrolló siguiendo los pasos señalados por Darrigran, Vilches,
Legarralde, & Damborenea en el 2007: en primer lugar, se revisó el estado de dureza que
presentaba el individuo al momento del montaje, para así, determinar si se hacía necesario un
proceso de reblandecimiento que permita mover las diferentes estructuras de éste sin causarle
fracturas, reconociendo que muchos ejemplares dado el tiempo que presentan de colecta tenían un
alto nivel de rigidez; sin embargo, al no contar con los equipos especializados que permiten su
adecuado manejo, se optó por no ablandarlos.
El montaje de los insectos, se realizó diseñando y elaborando una estructura para montar insectos, y
sus correspondientes etiquetas, a base de corcho, la cual coincide con las características planteadas
por Imes (1992), esto con el fin de garantizar que todos los individuos almacenados en seco se
encontraran, con sus datos, a la misma altura. A pesar de que los individuos montados presentaban
un tamaño de mediano a grande, debe resaltarse que los individuos pequeños que están preservados
en húmedo también pueden montarse; para lo cual, deben pegarse éstos en la punta de un triángulo
de cartulina, específicamente sobre el lado derecho de su cuerpo entre la segunda y la tercera pata.
La cartulina es atravesada por el alfiler respectivo, evitando así dañar estructuras de interés
taxonómico con éstos (Marquez, 2005). Una vez está seco el pegamento se ubica el triángulo y sus
etiquetas a la misma altura de los especímenes grandes.
El montaje, igualmente, requirió de la utilización de alfileres entomológicos, debido a que los
alfileres convencionales se oxidan llegando a afectar la estructura del ejemplar. Los alfileres
41
utilizados cuentan con un tamaño de 38mm de largo variando en grosor. El número del alfiler (1, 2,
3, 4…) varía dependiendo el diámetro de éste (Darrigran, Vilches, Legarralde, & Damborenea,
2007). El presente trabajo utilizó alfileres de tamaño 1 y 3 con el fin de causar la menor cantidad de
daños al cuerpo del individuo (Medina, 1977).
La inserción de los alfileres se realizó en el lugar en el que los dípteros son más resistentes, y en
consecuencia se producen menos daños morfológicos; al igual que, se tuvo en cuenta la altura a la
que se ubica el ejemplar, dado que, el alfiler debe poder ser tomado sin tocar éste. La altura del
insecto, al igual que, las etiquetas se ha estandarizado a nivel internacional, determinándose que el
insecto debe estar a 13 mm de la cabeza del alfiler; la primera etiqueta (contiene datos geográficos),
a 6 mm del insecto, y la segunda (datos taxonómicos) a 5 mm de la primera etiqueta (Márquez,
2005). La tercera etiqueta, se ubica a la misma altura que la segunda, con la diferencia de que su
cara mira hacia abajo.
Las tres etiquetas utilizadas son de gran importancia: la primera ofrece información geográfica que
puede ser utilizada para estudios biogeográficos; la segunda, aporta datos sobre la taxonomía del
individuo, la cual puede ser usada en investigaciones de sistemática y la tercera cumple una gran
función en el museo, debido a que es el código de reconocimiento de los ejemplares dentro de la
colección, y por tanto, es un referente para mantener la misma organizada; lo cual, es de gran valor
porque una colección se caracteriza por sus estrategias de conservación, crecimiento y orden
(Simmons & Muñoz, 2005).
Los individuos preservados tanto en húmedo como en seco, fueron almacenados en cajas Cornell y
luego en el compactador de la CAUD-216, que es un lugar fresco, seco y obscuro, para así,
disminuir la evaporación del alcohol y evitar la decoloración que la luz puede provocar sobre los
ejemplares (Márquez, 2005); sin embargo, debe señalarse, que el lugar en el que se encuentra
actualmente el compactador no cumple con todas las condiciones para garantizar un estado
adecuado de sus colecciones, debido a que un lugar óptimo debe contar con un cuarto lo más
hermético posible, caracterizado por una temperatura constante de 20°C y un deshumidificador que
mantenga la humedad relativa en un 55%; dado que, una humedad superior puede causar daños en
los especímenes (Murillo & Lezama, 2008).
La presencia de individuos de importancia forense dentro de la Colección de Artrópodos y Otros
Invertebrados, es de gran valor debido a que aportan datos taxonómicos que facilitan el desarrollo
de otros trabajos de investigación, que toman como referencia la colección, y además, aportan
elementos para esclarecer eventos o situaciones en las que se presente un asesinato, cuando las
condiciones geográficas, espaciales y temporales, se asemejen a las presentadas en ambos trabajos
de grado.
Los individuos preservados se ubican en el área de la Entomología Forense, o Entomología Medico-
legal, la cual es un campo del saber que estudia los artrópodos que acuden ante un deceso, lo cual,
permite que la colección pueda llegar a utilizarse como herramienta en las investigaciones de la
escena del crimen y otros casos forenses (Mavárez, Espina, Barrios, & Fereira, 2005). Los datos de
los ejemplares pueden ayudar a determinar el intervalo post-mortem (IPM), la época del año de la
muerte, determinar si hubo traslado del cuerpo, apoyar otras herramientas forenses y analizar si el
individuo murió por toxicología (Rinaldi & Conen, 2006), como es el caso de la tesis de Jehison
Herrera y Karol Malaver (2012).
La colección de dípteros de importancia forense establecida luego de la colecta, identificación y
preservación de algunos especímenes, se constituye en un gran inventario que pone en evidencia la
42
biodiversidad desde sus tres niveles (genes, especies y comunidades) y además es un punto de
partida ineludible para la investigación biológica (Plascencia, Castañón, & Raz, 2011).
Esta colección cada día tomará más valor, puesto que a partir de ella se podrán realizar múltiples
análisis, destacándose entre estos el monitoreo de los cambios en la distribución de las especies de
importancia forense, ya sea por la pérdida y modificación del hábitat, o por cambios ambientales
globales. Igualmente, puede convertirse en un excelente punto de partida y ambiente particular para
desarrollar procesos de enseñanza-aprendizaje (Palomera, Rivera, García, Guzmán, & Ruan,
2015)(Delgadillo & Góngora, 2009), para los estudiantes de Licenciatura en Biología de la
Universidad Distrital.
El establecimiento de esta colección de referencia de dípteros de interés forense en la Universidad
Distrital F.J.C. se constituye como una de las colecciones en esta temática para el país y una de las
pocas en Bogotá D.C., debido a que la Universidad Nacional de Colombia tiene su colección
entomológica en Medellín al igual que la Universidad de Antioquia; las cuales, son referentes para
investigaciones y análisis de la riqueza de dípteros reportados.
Adicionalmente, otro papel que desempeña la presente colección es que puede participar en el
desarrollo de estrategias de conservación de los dípteros de interés forense, incluso de aquellos que
no lo son, aunque actualmente este grupo de organismos no se encuentren en estado crítico de
conservación, debido a que cada espécimen que hace parte de ésta puede ser revisado cuántas veces
se considere necesario, reduciendo la necesidad de estar constantemente invadiendo su hábitat
originario. También, porque permite reconocer qué especies hacían parte de un lugar y tiempo
determinado, analizando así las variaciones de biodiversidad que un ecosistema está sufriendo.
Finalmente, se señala que es el inicio de un arduo trabajo para mantener y enriquecer esta colección
que puede ser consultada y utilizada por cualquier investigador que le interese el tema e incluso
para esclarecer casos medico legales; adicionalmente, es el punto de partida para argumentar por
qué cuidar la biodiversidad, en tanto, las colecciones se ubican como evidencia de aquello valioso
que se podría perder si no se desarrollan oportunamente diferentes estrategias (Plascencia,
Castañón, & Raz, 2011)(Ossa, Giraldo, López, Díaz, & Rivera).
5. CONCLUSIONES
El presente trabajó se basó en la curaduría y revisión taxonómica de 8505 individuos, previamente
colectados, en las tesis de grado de Jehison Herrera y Karol Malaver (2012) y, Luisa Morales y
Carolina Moreno (2010), en donde se destaca la importancia de la conservación de los datos y notas
iniciales, porque gracias a éstas se obtuvo información precisa de la colecta, facilitando el registro,
sistematización y etiquetado de los ejemplares. Además, es información de gran valor para análisis
que se desarrollen en futuras investigaciones con la colección.
Los 8505 individuos permiten reconocer la importancia del almacenamiento de varios ejemplares de
la misma familia y/o género para comparación y determinación taxonómica; ya que si bien, de la
familia Calliphoridae en la tesis de Jehison Herrera y Karol Malaver (2012), correspondía al 14 %
de los individuos y en la tesis de Luisa Morales y Carolina Moreno (2010) al 41%, también se
encuentran familias reportadas con un único individuo, representando el 0,013% del total de
registros.
Aproximadamente el 5% del total de los individuos revisados se encontraron con hongos y el 10%
había perdido algunos de sus apéndices y alas, dificultando su determinación taxonómica; lo cual,
permite reconocer la importancia de un buen manejo de los individuos, en el momento de la colecta
43
y su posterior preservación, ya sea en medio húmedo o en seco, ya que esto, influye en el tiempo de
permanencia y deterioro de los ejemplares en la colección.
La mayor cantidad de individuos (99.4 %) se preservó en medio líquido, debido a que el lugar en el
cual se encuentra la colección, presenta dificultades en torno a su ubicación y espacio, además de
las condiciones ambientales, como luz, temperatura y humedad inadecuadas, a las que se encuentra
expuesto; lo cual, hace que los ejemplares preservados estén más vulnerable al deterioro.
El establecimiento de esta colección de referencia de dípteros de interés forense en la Universidad
Distrital F.J.C. se constituye como una de las colecciones en esta temática para el país y una de las
pocas en Bogotá D.C., debido a que la Universidad Nacional de Colombia tiene su colección
entomológica en Medellín al igual que la Universidad de Antioquia; las cuales, son referentes para
investigaciones y análisis de la riqueza de díptero registrados.
6. RECOMENDACIONES
Fomentar el buen uso de los métodos de colecta en campo, para así tener individuos idóneos para
ser preservados y posteriormente empleados en estudios genéticos, moleculares y áreas afines.
Incentivar a los estudiantes, desde los primeros semestres de la Licenciatura en Biología, al
acercamiento del material biológico disponible en el museo, para que en el momento de futuras
colectas, se realice con mayor compromiso y sensibilidad.
Respetar los parámetros establecidos para la preservación de individuos en húmedo, y seco, ya que
esto ayuda a preservarlos por periodos más amplios de tiempo.
Crear un nuevo esquema de Organización en el museo, donde ninguno de los especímenes sufra
daños, debido a la inminente exposición a agentes ambientales contaminantes.
Revisar periódicamente no sólo los dípteros que hacen parte de la colección, sino todos los
ejemplares, con el fin de evitar la pérdida o daño de los individuos que componen ésta.
Continuar el registro e ingreso de dípteros de interés forense, para que la colección cada día esté en
mejores condiciones y así su importancia como colección de referencia aumente día tras día.
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ANEXO 1 BASE DE DATOS
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LAMINA 1
Calliphororidae
Marquart (1851)
(A) Hábito de Calliphoridae (B) Notopleura con dos setas en Calliphoridae
Lucilia
Robineau-Desvoidy (1830)
(C) Hábito de Lucilia (D) Calíptero inferior sin setas a nivel dorsal en Lucilia
Chrysomya
Robineau-Desvoidy (1830)
(E) Hábito de Chrysomya (F) Calíptero setoso a nivel dorsal de Chrysomya
ANEXO B: LÁMINAS
62
LAMINA 2
Cochliomyia
Fabricius (1775)
(G) Habito de Cochliomyia (H) Palpo filiforme de Cochliomyia
Hemilucilia
Dear (1985)
(I) Hábito de Hemilucilia (J) Punto de inserción de seta Katepisternal anterior
(izquierda) y posterior (derecha) de Hemilucilia
Chloropidae
(K) Hábito de Chloropidae (L) Triángulo ocelar prominente de Chloropidae
63
LAMINA 3
Curtonotidae
(M) Hábito de Curtonotidae (N) Alas con dos frácturas. Una a nivel de la vena R1
(arriba) y otra a nivel de la vena transversal humeral
(Abajo) de Curtonotidae.
Ephidridae
(Ñ) Hábito de Ephidridae (O) Ala trasparente con dos interrupciones de la vena
costal, una cerca de la humeral y otra de la R de
Ephidridae.
Empididae
(P) Hábito de Empididae (Q) Alas que presentan nervadura variable. Vena Sc se
une a la C, sin unirse a la R1 en Empididae.
Sc
R1
C
64
LAMINA 4
Fanniidae
(R) Habito de Fanniidae (S) Ala de que presenta una vena Sc que se une a la C,
sin sinuosidad en Fanniidae
Fannia obscurinervis
Robineau-Desvoidy
(T) Hábito de Fannia obscurinervis (U) Ala que presenta un conjunto de coloraciones sobre
las venas, destacándose la vena r-m y dm-cu
Heleomizidae
(V) Habito de Heleomizidae
(W) Ala con fractura cerca de la unión entre la Sc y la
R1; vena C espinosa y celda anal presente .
65
LAMINA 5
(X) Habito de (Y) Ala con Sc completa terminando en la costa; celda
anal presente terminando de forma acuminada. Celda
R5 cerrada.
Muscidae
(Z) Hábito de Muscidae (AB) Vena Sc con sinuosidad antes de unirse a la vena
C.
Musca
Linnaeus (1758)
(AC) Habito de Musca (AD) Abdomen característica de Musca,
66
LAMINA 6
Atherigona
Rondani (1856)
(AE) Hábito de Atherigona (AF) Ala de Atherigona, evidenciando la curvatura de
la vena Sc.
Otitidae
(AI) Hábito de Otitidae (AJ) Ala Otitidae que evidencia una celda anal
prominente que termina apicalmente superando la
nervadura que relaciona la vena basal con la distal.
Phoridae
(AK) Hábito de Phoridae (AL) Ala de Phoridae caracterizada por la ausencia de
venas trasversales.
67
LAMINA 7
Piophilidae
(AM) Habito de Piophilidae (AN) Vena Sc completa; vena costal fracturada cerca
de la unión de la Sc y celda anal corta en ala de
Piophilidae
Sarcophagidae
(AÑ) Hábito de Sarcophagidae (AO) Notopleura con 3 o más setas en Sarcophagidae
Sphaeroceridae
(AP) Habito de Sphaeroceridae (AQ) Vena con dos fracturas; la vena Sc débil o
ausente; presencia de celdas basales, distales o anales
en Sphaeroceridae
68
LAMINA 8
Sciaridae
(AR) Habito de Sciaridae (AS) Alas con posición longitudinal de las venas R-M y
M-Cu; la vena R5 no es bifurcada; ausencia de celda
basal y distal en Sciaridae
Sepsidae
(AT) Hábito de Sepsidae (AU) Vena C completa, sin fracturas en ala de
Sepsidae.
Tephritidae
(AV) Habito de Tephritidae (AW) Ala con maculaciones. La vena Sc se dirige
bruscamente hacia adelante en Tephritidae
69
ANEXO C: ETIQUETAS
70
71
72
73
74
75
76
77
78
79
80
81
82
83
