Estudio de la incidencia temporal de parasitosis en diferentes grupos taxonómicos de aves rapaces...

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Estudio de la incidencia temporal de parasitosis en diferentes grupos taxonómicos de aves rapaces en cautiverio.

QUE PRESENTA EL ALUMNOQUE PRESENTA EL ALUMNOQUE PRESENTA EL ALUMNOQUE PRESENTA EL ALUMNO

Apolinar Misael Hernández Gómez

MatrículaMatrículaMatrículaMatrícula 208234304208234304208234304208234304

ASESOR: ASESOR: ASESOR: ASESOR:

Dr. José Antonio Herrera Barragán.Dr. José Antonio Herrera Barragán.Dr. José Antonio Herrera Barragán.Dr. José Antonio Herrera Barragán. DepartamentoDepartamentoDepartamentoDepartamento de producción Agrícola y Animalde producción Agrícola y Animalde producción Agrícola y Animalde producción Agrícola y Animal

No Eco. 25416No Eco. 25416No Eco. 25416No Eco. 25416

México, D.F. Febrero 2013México, D.F. Febrero 2013México, D.F. Febrero 2013México, D.F. Febrero 2013

Resumen

La parasitosis en aves rapaces presenta diferencias considerables durante los

diferentes periodos estacionarios, este trabajo se enfoca en dos muestreos

realizados durante el periodo de lluvias del 2011 y el periodo de estiaje del 2012,

los resultados obtenidos presentaron diferencias notables de una a otra temporada

caracterizada por un aumento en el numero de ejemplares que presentan algún

tipo de parasito durante el periodo de estiaje. Se muestrearon 19 ejemplares de

diferentes especies de rapaces incluyendo falconiformes y estrigiformes que se

encuentran en cautiverio de ellas se encontraron diferentes tipos de parásitos de

los géneros; Ascardia, Strongyloides, Heterakis y Coccidia de estos parásitos

algunos se encontraron en las dos temporadas como Strongyloides y Heterakis,

otros parásitos como Ascardia y Coccidia solo se encontraron en el periodo de

lluvias. Se resalta la densidad en las parasitosis de cada uno de los ejemplares así

como las especies de aves rapaces que tuvieron una mayor cantidad de parásitos

en durante los dos periodos y cuales son mas propensas a desarrollar parasitosis

en alguna determinada temporada. Además en este trabajo se presenta un

compendio de las enfermedades infecciosas mas comunes en aves rapaces y

diferentes parásitos a los que pueden ser propensas.

Palabras clave: Parasitosis, rapaces, estiaje, lluvias.

INDICE

1. INTRODUCCION 1 2. REVISION DE LITERATURA 3

2.1. Orden: Falconiformes 3 2.1.1. Aquila Chysaetos (águila real) 4 2.1.2. Accipiter coperii (halcón pecho rojo, gavilán de cooper) 5 2.1.3. Parabuteo unicinctus (aguililla rojinegra) 5 2.1.4. Buteo jamaicensis (Aguililla cola roja) 6 2.1.5. Falco sparverius (Halcón cernícalo) 6 2.1.6. Buteogallus urubitinga (aguililla negra) 7

2.2. Orden: Strigiformes 8 2.2.1. Tito alba (Lechuza de campanario) 8 2.2.2. Bubo virginianus (búho virginiano) 9

2.3. Parasitologia 9 2.4. Enfermedades infecciosas comunes en aves rapac es 11

2.4.1. Herpesvirus (Hepatoesplenitis con cuerpos de inclusión) 11 2.4.2. Salmonelosis 11 2.4.3. Candidiasis 12 2.4.4. Colibacilosis septicémica 12

2.5. Parásitos comunes en aves rapaces 13 2.5.1. Protozoos 13 2.5.2. Helmintos 14 2.5.3. Artrópodos 17

3. JUSTIFICACIÓN. 19 4. OBJETIVOS GENERALES 20

4.1. Objetivos particulares 20 5. MATERIALES Y MÉTODOS 21

5.1. Toma de Muestras 21

5.1.1. Recolección parásitos en heces 21

5.1.2. Citologías de piel y plumas 23

5.1.3. Citología traqueales 24

5.1.4. Comparación de la incidencia de parasitosis 25 5.2. Identificación de parásitos 25 5.3. Comparación de la incidencia de parasitosis 25

6. RESULTADOS 26 7. DISCUSION 33 8. CONCLUSIONES 36 8.1. Recomendaciones 37 9. BIBLIOGRAFIA 40

1

1. INTRODUCCIÓN.

Entre los muchos problemas que se dan en la cría de aves en cautiverio destacan

numerosos problemas de sanidad que afectan a las aves, las enfermedades

parasitarias se destacan como uno de los más frecuentes, y los efectos que

producen varían de infecciones subclínicas hasta la muerte (Lyra et al.2002).

Además, estas infecciones interfieren en el comportamiento y en el desempeño

reproductivo de estas aves. Las aves silvestres son hospederos de una gran

variedad de parásitos, pero existen pocos trabajos sobre las especies que atacan

a estos animales en cautiverio. Especies como Capillaria sp, Strongyloides sp,

Ascaridia sp, Heterakis sp, Escherichia coli, Entamoeba histolytica o Balantidium

coli (Figueroa Lyra et al, 2002), así como las especies del genéro Serratospiculum

(Samour y Naldo, 2001) son comúnmente señaladas en estudios parasitológicos

en las aves de presa.

Este trabajo se enfoca en diferenciar la presencia de infestaciones parasitarías en

aves rapaces del aviario Dilajesh en los periodos estaciónales de verano y otoño

que modifican las características climáticas como la precipitación pluvial,

temperatura así como la intensidad lumínica y del cual no se tiene un registro que

indique en que periodo son mas susceptibles las aves rapaces en cautiverio a

estar enfermas o tener infestaciones parasitarias.

Es bien conocido que cualquier factor que disminuya las defensas produce una

alteración de la relación huésped-hospedador que se inclina a favor de parásito lo

que desemboca en enfermedades parasitarias que complican el cuadro general

(Blanco y Höfle, 2010).

2

La importancia de conocer el numero de patologías a las que las aves rapaces se

encuentran sometidas dentro de estos periodos estaciónales radica en la

obtención de información sobre la modificación numérica de casos de detección

clínica durante el periodo de verano y otoño que señalan las variaciones en la

abundancia de organismos parasitarios o el decremento durante estas fechas

permitiéndonos mejorar el manejo de estas aves ya sea para su exhibición,

reproducción y manejo como la cetrería, una de las actividades catalogadas por la

UNESCO como patrimonio cultural de la humanidad, su atractivo social y

económico como lo es en un aviario privado donde el buen estado de los

ejemplares atrae al mercado recreativo, además de la seguridad del manejo de los

ejemplares previniendo de zoonosis a los cuidadores, manejadores y publico que

tenga contacto con estos individuos. La información que se obtenga será

implementada al hábitat de estas especies procurando mejorar las condiciones de

las mismas así como implementar medidas de higiene nuevas o mejorar las

existentes.

3

2. REVISIÓN DE LITERATURA En Aves de Presa (1994) Salgado y colaboradores mencionan que las aves de

presa se dividen en dos grupos de rapaces (Falconiformes y Strigiformes). En

conjunto estas aves juegan un importante papel dentro de la cadena alimenticia; al

ser consumidores secundarios, fungen como controladores de la población

silvestre de consumidores primarios, evitando que se conviertan en plaga y

causen, en algunos de los ecosistemas existentes un desequilibrio ecológico. Las

aves de presa son conformadas por dos grupos estructurados y distribuidos de la

siguiente manera:

2.1. Orden: Falconiformes

Familia: Cathartidae. Incluye a buitres, carroñeros, auras y cóndores; en el mundo

se conocen un toral de 7 especies, de las cuales cuatro viven en México.

Familia: Pandionidae. El único miembro de esta familia es el águila pescadora,

especie distribuida por todo el mundo, y que también puede ser considerada

mexicana.

Familia: Accipitradae. Es la más grande de las familias de este orden, conformado

por un total de 209 especies que incluyen milanos, aguilillas, gavilanes y águilas,

de ésta sólo 39 son registradas en México.

Familia: Falconidae. Las aves pertenecientes a esta familia son conocidas como

halcones verdaderos, también se incluye a los ejemplares de quebrantahuesos.

4

De las especies que tienen un uso común ya sea para la cetrería u ornato

destacan:

2.1.1. Aquila Chysaetos (águila real)

Tamaño: 80 a 87cm

Características: Se distingue por su pico robusto y

ganchudo y por tener plumas en las patas hasta la mitad

del tarso. Los adultos son café oscuro con vientre un poco

claro en la base (fig. 1). La parte posterior del cuello tiene

un tono dorado con matices rojizos (fig. 2). Los individuos

jóvenes tienen el

dorso color café

negruzco y vientre claro. Su cola es blanca con

una banda ancha oscura Terminal.

Hábitat: Vive en climas diversos desde los

desérticos hasta los tropicales. Bosques de confieras, pino encino y matorral

espinoso.

Alimentación en cautiverio : Conejos, roedores, aves; codornices y pollo

(CONABIO, 2011).

Fig.1 Aquila Chysaetos

Fig. 2 Nuca con plumaje dorado de aguila real

5

2.1.2. Accipiter coperii (halcón pecho rojo, gavilán de cooper)

Tamaño: 35-50cm.

Características: Envergadura de 70-90cm. Alas

cortas y cola larga y redondeada. Adultos con

espalda azul grisácea, pecho con barras color

óxido (Fig 3). Los inmaduros son cafés con pecho

rayado, y adquieren el plumaje de adulto al

término del primer año. El plumaje es parecido en

ambos sexos; la hembra de mayor tamaño.

Habitad: Bosques, matorrales, algunas veces áreas abiertas.

Alimentación en cautiverio: Pequeñas aves del tamaño de una paloma coquita

(Floyd, 2008).

2.1.3. Parabuteo unicinctus (aguililla de Harris)

Tamaño: 47-55cm.

Características: Envergadura 1.0 1.2m. Alas

anchas y cola redondeada. Adulto de color

negro con rabadilla blanca y una banda

también blanca en la punta de la cola (Fig 4).

Color rojizo en alas y muslos. El ejemplar

inmaduro tiene las partes inferiores claras y rayadas con hombros rojizos;

adquiere el plumaje del adulto al cumplir el año. Sexos parecidos.

Habitad: Bosques, matorrales semidesiertos.

Alimentación en cautiverio: Roedores, lagartijas y aves pequeñas (Floyd, 2008).

Fig. 4 Parabuteo unicintus

Fig. 3 Accipiter coperii

6

2.1.4. Buteo jamaicensis (Aguililla cola roja)

Tamaño: 47-62cm

Características: Envergadura de 1.2 a 1.4m. Alas

anchas y cola redondeada. Puede tener dos fases de

coloración: la clara con pecho blanco (Fig 5 y 6),

vientre barrido, cabeza y dorso café oscuro; y la

oscura, ambas poseen la cola rojiza. El inmaduro tiene

el pecho blanco y vientre

rallado; adquiere el plumaje

del adulto entre el primero y

segundo año. Sexos parecidos.

Habitad: Áreas abiertas, bosques, montañas y desiertos.

Alimentación en cautiverio: Conejos, roedores y aves

(Floyd, 2008).

2.1.5. Falco sparverius (Halcón cernícalo)

Tamaño: 21-22cm

Características: Envergadura de 50 a 60 cm. Esta ave al igual que todos los

halcones posee cola angosta y alas puntiagudas, que mueven con sorprendente

rapidez. El cernícalo es un pequeño halcón, semejante a una golondrina; con la

espalda y cola rojizas. El macho tiene alas azul grisáceas, y la hembra rojizas.

Ambos sexos tienen un patrón blanco negro muy peculiar en el rostro (fig 7). El

Fig. 5 Buteo jamaicensis

Fig. 6 dorso de Buteo

jamaicensis

7

inmaduro es parecido a la hembra y adquiere la

coloración del adulto después del primer invierno.

Habitad: Áreas abiertas, praderas, desiertos, campos

de cultivo y zonas urbanas.

Alimentación en cautiverio : Insectos y mamíferos

pequeños (Floyd, 2008).

2.1.6. Buteogallus urubitinga (aguililla negra)

Tamaño: 55-67 cm

Caracteristicas: Es una aguililla

de color negro (Fig. 8), con cabeza

grande y en la base de la cara un

tono grisasep, puede identificarse

por las dos bandas blancas que

dividen su cola, la base de las plumas primarias no sobrepasan de la mitad del

tamaño de las de la cola. Los juveniles son de color café, con todo el vientre y

muslos barrados, Ambos sexos son similares el macho es 87% del tamaño de la

hembra.

Habitad: Bosques caducifolios áreas abiertas, desiertos campos de cultivo de

habitad extenso desde el norte de Argentina hasta el norte de México.

Alimentación en cautiverio: Mamíferos pequeños, pollo sin grasa, codorniz.

Fig. 7

Fig. 8 Buteogallus urubitinga

Fig. 7 Falco

sparverius

8

2.2. Orden: Strigiformes

De las familias Tytonidae y Strigidae. podemos encontrar a las lechuzas, búhos y

tecolotes. Están integradas por 131 especies diferentes, de las cuales 11

corresponden a lechuzas y 120 a búhos y tecolotes. En México han sido

registradas sólo 27, de las cuales una es lechuza y los 26 restantes son búhos y

tecolotes (http://www2.ine.gob.mx/publicaciones/libros/50/avespresa.html).

De las especies que tienen un uso común ya sea para la cetrería u ornato

destacan:

2.2.1. Tito alba (Lechuza de campanario)

Tamaño: 40 cm

Características: Fácilmente reconocible por su

coloración blanca en general y por su característico

disco facial, en forma de corazón. Sus ojos son

negros (Fig 9).

Hábitat: Especie que gusta de espacios abiertos

donde cazar. Descansa y cría en casas viejas,

graneros, campanarios de iglesias, ruinas, grietas y

cuevas. Fig. 9 Tito alba

9

Alimentación en cautiverio: Está basada principalmente en micromamíferos,

aunque pueden complementar su dieta con otros mamíferos, ranas, lagartos e

insectos (Alderfer, 2006)

2.2.2. Bubo virginianus (búho virginiano)

Tamaño : 45 cm

Características : Presenta un penacho de

plumas en la parte superior de la cabeza que

semeja orejas. Tiene el iris del ojo amarillo.

El plumaje de color pardo, con manchas

claras de tono café y con rayas negras; la

región de la cara tiene un reborde negro (Fig

10).

Hábitat: Se encuentra tanto en bosques mixtos, de pino encino, como en regiones

áridas; lo único que requieren es una buena zona para resguardarse y

abastecerse de alimento.

Alimentación en cautiverio: Insectos grandes aves pequeñas y roedores

principalmente (Olivera, 2003).

2.3. Parasitologia

Dentro del estudio de la parasitología veterinaria ha sido de gran importancia

conocer las diferentes especies y géneros de parásitos teniendo un papel muy

importante en la salud del hombre y de los animales, se ha definido el parasito

como un organismo de menor tamaño que vive en el interior o expensas de otro

organismo (Georgia, 2011). La mayoría de los animales alberga una o varias

Fig. 10 Bubo Virginianus

10

especies de parásitos, con cientos o miles de especimenes (protozoarios,

helmintos, artrópodos), y debido a la complejidad del hábitat de los parásitos en

uno de sus huéspedes, se usa para el efecto en término (Parasitocenosis) donde

se puede tener en cuenta un hecho significativo, no solamente el huésped mismo

proporciona un ambiente al parásito, sino que interviene el medio ambiente del

huésped, reconociendo dos tipos de ambiente: El huésped como su ambiente

inmediato constituye su microclima y el ambiente externos del huésped como

macroambiente. Es necesario que se considere como un sistema la relación del

parásito con su medio ambiente (Quiroz, 1990).

Entender el origen de los parásitos y sus efectos sobre los animales silvestres, el

hombre y los animales domésticos es en gran parte responsabilidad de la

medicina de la conservación (Saggese, 2007).

Clásicamente, los parásitos has sido considerados como organismos tendientes a

desarrollar un estado de equilibrio con sus huéspedes (Wobeser, 2006). Los

cambios repentinos en las condiciones del huésped o del agente pueden alterar

fácilmente este estado de equilibrio, según Quiroz (1990), uno de los factores que

más influyen en el parásito es la edad del huésped, modo de vida y migración

donde varios parásitos pasan a un nuevo ambiente al llegar al nuevo huésped, los

cambios estaciónales determinan si el ambiente es favorable o no para la

transmisión. Se ha postulado que para causar enfermedad es necesario que se

produzca una alteración en alguno de los elementos de la tríada huésped, agente

infeccioso y ambiente (Trizard, 2000).

11

2.4. Enfermedades comunes en aves rapaces

Enfermedades infecciosas comunes en aves rapaces tomadas de Soler Diego

Tovar (2001).

2.4.1. Herpesvirus (Hepatoesplenitis con cuerpos de inclusión)

Afecta principalmente halcones. La infección por herpesvirus se caracteriza por

hepatitis y esplenitis. El virus se presume se transmite por el consumo de otras

aves como palomas. La infección causa una mortalidad del 100 % y se caracteriza

por cuerpos de inclusión intranucleares encontrados en la histopatología. No

existe un tratamiento efectivo. La prevención se limita a evitar las palomas como

fuente de alimentación o consumir aves de origen conocido, y colonias

muestreadas.

2.4.2. Salmonelosis

La salmonelosis es un término que describe la infección con bacterias de un grupo

con más de 1,500 serotipos del género Salmonella. La infección intestinal puede

producir enteritis, diarrea y muerte. En las aves rapaces se han identificado los

siguientes serotipos: S. typhimurium, S. pullorum, S. haouaria, S. reading y S.

eastbourne.

La salmonelosis en aves silvestres o cautivas puede ser aguda o crónica. Los

signos clínicos son variables; en la enfermedad aguda se presentan apáticas,

excesivos chirridos y ocasionalmente diarrea, resultando en la muerte en uno a

dos días. En aves viejas es más común la septicemia, y pericarditis fibrinosa,

peritonitis y congestión de pulmones, riñones, hígado y bazo.

12

Las fuentes de infección son generalmente desconocidas, pero la contaminación

del hábitat por hospederos y la ingestión de presas enfermas se ha reportado. El

tratamiento incluye antibióticos como la oxitetraciclina, cloranfenicol y sulfas.

2.4.3. Candidiasis .

La enfermedad micótica de mayor significancia clínica para las rapaces es la

infección del tracto gastrointestinal producida por Candida albicans. Se manifiesta

de dos formas: la más frecuente es la presencia de seudomembranas de material

necrótico sobre la mucosa de la lengua y faringe; la otra manifestación es una

infección gastrointestinal profunda sin lesiones visibles en la cavidad oral. Los

signos clínicos incluyen inapetencia, vómito, deshidratación y depresión. La

candidiasis aparece luego de una herida o debilitamiento del epitelio. El

tratamiento más efectivo es el uso de nistatina, aunque se ha demostrado remisión

con el uso de ketoconazol. Además se recomienda administrar levamisole (1 a 2

mg/kg) para inmunoestimular.

2.4.4. Colibacilosis septicémica

E. coli es un habitante entérico normal en la mayoría de las aves. Los organismos

coliformes causan pericarditis purulenta, abscesos hepáticos, granulomas y

aerosaculitis. Los signos clínicos asociados con la septicemia colibacilar varían

considerablemente dependiendo los órganos involucrados. La infección

respiratoria produce disnea y puede progresar a pericarditis, septicemia, o

aerosaculitis crónica. En casos agudos la muerte ocurre en dos a seis días. En

13

casos crónicos la pericarditis, membranas en los sacos aéreos y granulomas

hepáticos son secuelas comunes. También puede causar mortalidad embrionaria.

2.5. Parásitos comunes en aves rapaces

Lista de macro y microparásitos comunes en aves rapaces tomada de Saggese.

(2007) y las características de los organismos parásitos están resumidas del

Manual de Parasitología Veterinaria de Mehlhorn, et al. (1993)

2.5.1. Protozoos

Genero Tricomonas

T. gallinae: Parásito de la mucosa del tracto digestivo superior de las rapaces,

alcanza el tamaño de unas 7-15µm x 5-10µm, y es casi siempre piriforme; son

característicos los cuatro flagelos delanteros libres y un quinto dirigido hacia atrás

con una membrana ondulante.

Vía de infección: Oral; picoteo mutuo entre animales viejos y jóvenes

Periodo de incubación : 1-4 días

Prepatencia: 1-4 días

Patencia: Años a veces toda la vida, debido a la elevada sucesión generacional.

La reinfección es posible en cualquier momento.

Detección: La infección por Trichomonas gallinae es frecuente en rapaces que se

alimentan de palomas, aunque también se puede ver en aquellas que no

consuman columbiformes. Este puede ser un serio problema ya que es

14

inmunosupresor y letal para las aves. Las lesiones que produce se caracterizan

por placas caseificadas amarillentas en la mucosa de la cavidad del pico y la

faringe (a veces también del buche) que impiden la toma de agua y alimentos.

Destacan la anorexia y disnea. Una dosis de 20 mg/kg oral de carnidazole por dos

días es extremadamente efectivo.

2.5.2. Helmintos

Phylum cestodes

Cestodos : son hermafroditas, tienen el cuerpo plano y segmentado, y cuando

parasitan al hombre en su estadio adulto, se ubican en intestino delgado. El

órgano de fijación es el escólex, provisto de estructuras especialmente adaptadas

para esta función, estas pueden ser ventosas y bótrides o ganchos. Del escólex

surge un cuello del que se genera el cuerpo, por brotación, constituido por

segmentos, denominados proglótides. Cada proglótide es una unidad funcional

completa; a medida que se alejan del cuello van madurando, denominándose a los

más distantes proglótides maduros. En ellos el útero ocupa casi su totalidad y se

encuentran repletos de huevos, los que se liberarán al romperse los segmentos.

Especies : Taenia saginata, Taenia solium, Echinococcus granulosus, etc.

Cestodo Cubierta densa los círculos simples

representan el tamaño de los eritrocitos.

Microscopio (40x) (Brooks et al, 2005)

Genero Ascardia (ascáridos)

Fig. 11 Cestodo

15

Ascardia columbae: solo llegan a medir 9 cm (hembra) y máximo 7cm (macho).

Los típicos vermes sacáridos de color blanco amarillento, relativamente gruesos

da hasta 4mm, boca con tres labios) parasitan el intestino delgado.

Vía de infección: Oral, por ingestión de huevos que contienen larvas con el

alimento.

Periodo de incubación : 3-5 días

Prepatencia : unas 5-6 semanas

Síntomas de la enfermedad (ascaridosis) Enferman especialmente animales

jóvenes: diarreas, plumaje erizado; a veces caída de plumas, adelgazamiento;

debilidad; cresta pálida; estreñimiento por ingestación masiva; eventual muerte

después de 8 días.

Detección: detección de huevos por flotación fecal o por el método de

enriquecimiento.

Cubierta densa, lisa, con tres capas, paredes con forma de barril. Longitud 68 µm - 90 µm Ancho 40 µm - 50 µm (Lapage, 1979)

Genero: Serratospiculum

Especies: Serratospiculum guttatum, S. chungi, S. congolensis, S. seurati, S.

turkestanicum, S. kwangsiensis. S. tendo, S. thoracis, S. amaculata

Características nematodo (gusano redondo) del que existen al menos 9 especies,

siendo la más común Serratospiculum seurati.

Fig. 12 Ascardia spp

16

Vía de infección: oral mediante la ingesta de escarabajos infectados.

Serratospiculum seurati izquierda

49.94 ± 0.39 µm

Genero Heterakis

Especies: H. gallinarum, H. isolonche, H. dispar.

Heterakis gallinarum

Características: El macho mide 7-13mm y la hembra mide 10-15mm de largo.

Tienen colas puntiagudas y un bombeo preanal los machos tienen una cola

curvada, las hembras son mas gruesas y con un extremo de cola recta.

Periodo de incubación: de 2 a 4 semanas

Prepatencia: 24-30 días.

Síntomas de la enfermedad: Las infecciones primarias son generalmente

inaparentes. Las infecciones secundarias se caracterizan por la formación de

nódulos en el ciego y la formación de mucosa en el mismo. Las aves tienen una

marcada inflamación abdominal y las ponedoras de huevos reducen la producción

de huevos.

Heterakis spp. Cubierta densa, paredes lisas.

Longitud 7 a 13 µm Ancho 31 µm– 48 µm (modificado de Lapage, 1979)

Fig. 13 Serratospiculum seurati

Fig. 14 Heterakis spp.

17

Genero Strongyloides

Especies: S. stercoralis, S. fuerlleborni, S. westeri, S. venezuelensis, S. ratti, S.

papillosus.

Strongyloides ratti

Características: el nematodo los machos miden alrededor de 50µm y las hembras

alrededor de 30µm los machos tienen una bifurcación en la cola y clásica cola

curvada.

Síntomas de enfermedad: Strongyloides ssp es relativamente común en

animales domésticos y salvajes

Strongyloide Cilindrico. Longitud: 52 a 56 micras Ancho: 36 a 40 micras.

2.5.3. Artrópodos

Ixodidae (garrapatas de cuerpo duro)

Especies : Las fases evolutivas de Ixodes ricinos parasitan especialmente a las

aves jóvenes, de un modo preferente en lugares sin plumillas (rabillo del ojo). El

macho puede alcanzar una longitud de hasta 4mm, las hembras que no han

chupado sangre hasta 5mm, mientras que repletas de sangre llegan a medir los

1.5cm de longitud. No tienen ojos, surco anal delante del ano; los palpos son

largos estrechos.

Vía de infestación: Las fases de desarrollo de la garrapata buscan activamente a

sus hospedadores.

Fig. 15 Strongiloides

18

Síntomas de la infestación: Edema palpebral (se pegan entre si los bordes de

los parpados), adelgazamiento extremo debido a la escasez de alimentos, los

pollos de diversas especies de aves mueren de extrema caquexia.

Diagnostico: Búsqueda de estadios de evolutivos repletos de sangre.

Piojos

Ácaros succionadores de sangre (Dermanyssidae)

Especies:

• Dermanyssus gallinae (acaro rojo de las aves), macho hasta 0.7 mm de

largo, hembra 1.1mm de largo; ectoparásito temporal, estos infestan

principalmente de noche para chupar sangre. La evolución completa (un

estadio de larvario y dos fases de ninfa) dura un promedio de 4-9 días,

esperanza de vida de unos 2-3 meses sin ingerir alimentos una parte de

estos vive hasta medio año.

• Ornithonyssus sylvarium (acaro nórdico) parasita aves viejas y con plumaje

alterado excepto las larvas todos los estadios de estos ácaros de 0.8 mm

de longitud chupan sangre y viven de forma permanente en su hospedador.

La evolución embrionaria completa se realiza en 5-7 días.

Vía de infestación: D. gallinae busca activamente a su hospedador

(preferentemente de noche). O. sylviarum se transmite mediante contacto

corporal.

Síntomas de infestación: En caso de fuerte infestación los animales están

intranquilos, tienen necesidad de dormir durante el día, anemia

Diagnostico: La detección de D. gallinae se realiza en el entorno próximo de las

aves. O. sylviarum se identifica por el plumaje.

19

3. JUSTIFICACIÓN.

La ecología de comunidades de parásitos, un aspecto poco estudiado es si las

comunidades presentan o no una variación temporal en su estructura y

composición de especies debida a cambios en los factores ambientales a lo largo

del año. Los resultados que se han obtenido indican que tienden a presentar

cambios temporales, los cuales se asocian con alteraciones ambientales

propiciadas por el ciclo estacional de secas y lluvias que afectan el proceso de

reclutamiento de las especies de parásitos (Salgado–Maldonado, 1993), o con

incrementos estaciónales en la actividad trófica y reproductiva del hospedero,

influenciados por las fluctuaciones temporales de la temperatura abundancia del

agua. Tal como se describe en diferentes trabajos y especies, la incidencia

estacional de parásitos que se encuentran en otros hospederos, puede ser

diferente, según la época del año, aunque en ocasiones esta incidencia no

muestre patrones homogéneos (Violante-González et al, 2008).

Entre los numerosos problemas de sanidad que afectan a las aves silvestres, las

enfermedades parasitarias se destacan como uno de los más frecuentes, y los

efectos que producen varían de infecciones subclínicas hasta la muerte. Además,

estas infecciones interfieren en el comportamiento y en el desempeño reproductivo

de estas aves. Las aves silvestres son hospederos de una gran variedad de

parásitos, pero existen pocos trabajos sobre las especies que atacan estos

animales en cautiverio, y los que hay se refieren a grupos reducidos de aves

20

4. OBJETIVO GENERAL:

� Determinar la incidencia parasitaria de aves rapaces en cautiverio

(falconiformes e strigiformes) de diferentes géneros taxonómicos en

diferente temporada en relación a la presencia de humedad ambiental.

4.1. OBJETIVOS ESPECÍFICOS:

� Evaluar la incidencia parasitaria en muestras de heces, tráquea, piel y

plumaje de falconiformes e strigiformes durante y posterior a la temporada

de lluvias.

� Determinar la incidencia de diferentes parásitos según el género

taxonómico

Comparar la incidencia parasitaria durante y posterior a la temporada de lluvias.

21

5. MATERIALES Y MÉTODOS

El muestreo se realizo durante el periodo de lluvias en los meses de Julio-Agosto

del 2011 y posterior a este durante el mes de Mayo del presente año. Las

muestras fueron extraídas de los ejemplares disponibles del “aviario Dilajesh”,

ubicado en Quinta Dilajesh, Lote 11 y 12, Camino a san Nicolas, La Concepción

Jolalpan, Tepetlaoxtoc, Estado de México. Así también de ejemplares mantenidos

en cautiverio con propósitos de cetrería, totalizando 19 ejemplares muestreados

5.1. Toma de Muestras

5.1.1. Recolección parásitos en heces

Se realizo la búsqueda de patógenos parasitarios según los métodos

estandarizados propuestos por Clayton y Walter (1997)

Se colectaron muestras de heces frescas (posterior a la limpieza del recinto) en el

interior de los recintos de las diferentes especies rapaces con la que cuenta el

aviario. De las muestras que se obtengan fueron analizadas para su identificación

en base a los métodos el Manual de parasitología veterinaria de Mehlhorn et al

(1993).

En este análisis se muestrearon el mayor número posible de géneros taxonómicos

presentes en el aviario, y se agruparon según las condiciones de alojamiento en

las que se encontraban, ya que algunos permanecieron de manera individual,

22

pareja y/o parvada. Se escogieron dos periodos de muestreos el primer periodo

(tiempo de lluvias) y el segundo periodo (tiempo seco o sin lluvias).

Las heces frescas se obtuvieron directamente de la cloaca con tubos o hisopos

estériles y en excepcionales, se utilizaron recipientes estériles puestos en el lugar

donde se observaron el mayor número de excretas, posteriormente, estas

muestras se almacenaron en bolsas previamente rotuladas con la identificación

del ave y la fecha de cuando fue obtenida la muestra, trasportadas y analizadas

posteriormente.

Para la identificación de los huevecillos, se realizó la técnica de flotación- FAUST,

en la cual se mezcló 1g de muestra en 10 partes de agua destilada. Se filtró todo a

un tubo de ensayo través de una gasa doblada en cuatro, ésta mezcla se

centrifugó a 2500 rpm por 1 min, se decantó el líquido sobrenadante y se volvió a

completar con agua hasta igualar la medida anterior y se centrifugó nuevamente,

esto se repitió 2 veces más. Por último se decantó nuevamente el líquido

sobrenadante y se reemplazó por igual cantidad de solución de sulfato de Zn al

33%, se mezcló bien la solución con el sedimento y esto se centrifugó durante 1

minuto a 1500 rpm. Posteriormente se tomaron 3 a 4 gotas de las partículas que

flotan en la superficie del líquido y se colocó en un portaobjetos con 1 a 2 gotas de

lugol y se cubrió, finalmente se examinó al microscopio directamente para

identificar mediante sus estructuras la presencia los huevecillos de diferentes

parásitos.

23

Este método se utiliza solución de Sulfato Zn, cuya densidad específica es de

1.180 (33%), que conforma un medio de densidad más alta que la de los huevos:

Necator 1.055, Tricocéfalo 1.150, Ascaris fértil 1.110 y facilita que los huevos

livianos de estos helmintos, con menor peso específico que la solución, se

concentren y floten.

Se utilizo un método cualitativo para hacer una estimación del posible grado de

infestación parasitaria mediante los siguientes criterios:

(0) Negativo No se observaron ooquistes.

(+) Escasos Se observaron de 1 a 10 ooquistes por campo.

(++) Abundantes Se observan decenas de ooquistes por campo

(+++) Abundantes Se observan campos saturados con ooquistes

Mediante la observación microscópica con un aumento 40 X

Los organismos a obtener se identificaron mediante una comparación

bibliográfica en manuales de veterinaria, parasitología y microbiología

médica.

5.1.2. Citologías de piel y plumas

Estas muestras se obtuvieron de raspado de lesiones superficiales, se consideró y

anotó el tipo, forma, color y olor de la lesión antes de realizar el raspado. Tomando

en cuenta lo anterior, se procedió a realizar un raspado de la superficie sin haberla

limpiado, con una hoja de bisturí en un ángulo de 90º, después se colocó en varios

24

portaobjetos, previamente preparados con una gota de suero salino estéril, ya en

el porta, se cubrió y con otro porta se presionó suavemente para extenderlo.

En el caso de que la muestra estuviera queratinizada, se transfirió primero a

hidróxido de potasio o lactofenol clorado para que se digiriera la queratina, esto

para poder mejorar la visibilidad. Posteriormente se repitió este mismo

procedimiento pero después de haber limpiado la lesión.

5.1.3. Citología traqueal

La mucosa a elección para este estudio fue la tráquea. Esta muestra se obtuvo

con un hisopo estéril humedecido previamente con solución salina estéril y

frotando sobre la mucosa con presión suave. Dicho hisopo se extendió sobre

varios portaobjetos, se secó al aire y se tiñó.

Para la tinción se sumergió el porta en una solución fijadora por 5 segundos,

transcurrido el tiempo, se eliminó el exceso golpeando ligeramente el canto del

portaobjetos sobre el frasco. Inmediatamente, se volvió a sumergir en el colorante

rápido número 1 y se dejó reposar 5 segundos, se eliminó el excedente y se lavó

con agua común, empleando un chorro leve. Enseguida se sumergió nuevamente

en el colorante rápido número 2 durante el mismo lapso de tiempo e igualmente se

eliminó el excedente, se lavó, se dejó secar y se observó al microscopio, se

impregnó toda la preparación con una capa de aceite de inmersión.

25

5.1.4. Comparación de la incidencia de parasitosis

Se realizaron graficas para contraponer la información obtenida y describir la

presencia de las parásitos, determinadas en diferentes tiempos y especies de

aves.

5.2. Identificación de parásitos

Los organismos que se obtengan se identificaron mediante una

comparación bibliográfica en manuales de veterinaria, parasitología y

microbiología médica.

5.3. Comparación de la incidencia de parasitosis

Por medio del programa Microsoft Excel se hizo una comparación entre el numero

de incidencias parasitarias, el grupo taxonómico con mayor incidencia parasitaria y

la especie mas propensa a presentar una parasitosis durante y posterior al periodo

de lluvias.

26

6. RESULTADOS

Cuadro 1 : Resultados del Análisis Coproparasitoscópico.

* Cantidad de Parásitos por Campo

Del total de los ejemplares muestreados durante el primer periodo, solo 8 no

tuvieron un resultado positivo en cuanto a la presencia de parásitos en las heces,

a comparación del segundo periodo, ya que solamente uno no tuvo la presencia

de ningún parásito. También se demuestra que solo una especie de ave se

mantuvo constante en cuanto a que no existió la presencia de algún tipo de

parásito durante los dos periodos, dicho ejemplar fue Falco sparverius. En el

primer periodo de muestreo los ejemplares que no presentaron parásitos fueron:

Accipiter coperii, Caracara cheriway, Bulbo virginianus, Tito alba y Falco

sparverius, con esto cabe resaltar que las aves de la familia de las Strigiformes no

PRIMER PERIODO DE MUESTREO SEGUNDO PERIODO DE MUESTEO

AVE TO

DIAGNÓSTICO CDPC* DIAGNÓSTICO CDPC*

Accipiter coperii He

Ninguno -- Heterakis

Parabuteo unicinctus He

Strongyloides + Heterakis +


Strongyloides + Heterakis +


Strongyloides/ Heterakis ++ / + Heterakis /Strongyloides + / ++

Buteo jamaicensis He

Heterakis ++ Coccidia/ Heterakis + / ++


Heterakis ++ Cestodo/ Heterakis + / ++


Heterakis ++ Heterakis ++


Heterakis + Heterakis ++


Heterakis ++ Heterakis ++

Falco sparverius He

$inguno -- $inguno --

Aquila chrysaetos He

Strongyloides + Strongyloides ++


Strongyloides + Strongyloides +


Strongyloides + Strongyloides +

Caracara cheriway He

Ninguno -- Ascarida +

Bubo virginianus He

Ninguno -- Strongyloides +++

Bubo virginianus He


Bubo virginianus He


Tito alba He


Tito alba He


27

presentaron parasitosis durante el primer periodo a diferencia del segundo

periodo, donde en los Strigiformes se identificó al parásito Strongyloides en mayor

presencia.

En cuanto a la presencia de ectoparásitos no se encontró ninguna parasitosis

positiva en el primer periodo y solamente un caso positivo en el segundo periodo

en un individuo de la especie Aquila chrysaetos.

Gráfica 1. Tipo de parásitos presentes durante el primer periodo.

Strongyloides

30%

Heterakis

30%

Ninguno

40%

28

Gráfica 2. Tipo de parásitos presentes durante el segundo periodo

rapaces del aviario dilajesh durante el periodo de estiaje

Strongyloides

40%

Heterakis

41%

coccidia

9%

Ascardia

5%

Ninguno

5%

En las Gráficas 1 y 2, se hace referencia del porcentaje que representa cada

parásito, donde los Strongyloides y Heterakis son predominan en ambos periodos.

En el segundo periodo se encontraron otros géneros de parásitos como Ascardia y

ejemplares de Coccidia. La comparación entre el primer y segundo periodo, el

primer periodo, el 60% de los ejemplares presentaron algún tipo de parasitosis

mientras que en el segundo periodo el 95% de los ejemplares presentó una

parasitosis.

Los Gráficos 3 y 4 muestran la densidad de parásitos en las muestras de heces

donde Strongyloides presenta la mayor densidad (+++) durante el segundo

periodo y el caso de Heterakis que su mayor densidad fue de densidad ++

durante el primer periodo.

29

En el Cuadro 7 se ejemplifican los huevecillos encontrados con fotografías y

medidas.

Cuadro 2 Fotografías y medidas de huevecillos encontradas.

FOTOGRAFÍA TIPO DE PARÁSITO

DESCRIPCIÓN

Ascaridia spp.

Cubierta densa, lisa, con tres capas, paredes con forma de barril. Longitud 68 µm - 90 µm Ancho 40 µm - 50 µm

Heterakis spp.

Cubierta densa, paredes lisas. Longitud 7 a 13 µm Ancho 31 µm– 48 µm

Strongyloides

Longitud: 52 a 56 micras Ancho: 36 a 40 micras.

Cestodo

Cubierta densa los círculos simples representan el tamaño de los eritrocitos.

Fotografias:

Ascardia ssp http://www.rvc.ac.uk/Review/Parasitology_Spanish/poultrEggs/ascaridia.htm

Heterakis spp http://www.rvc.ac.uk/Review/Parasitology_Spanish/poultrEggs/heterakis.htm

Strongyloides y Cestodo (Apolinar Hernandez 2012)

30

Gráfica 3 Gráfica 4

31

Citologías de piel y plumas

El análisis de cada una de las muestras no indican que exista la presencia de

alguna patología presente en esta colección, la mayor parte de donde se

obtuvieron estas, fue de heridas o abrasiones que reflejan que el animal

constantemente se lesiona por la condición del alojamiento y/o manejo anterior al

de este estudio. La única evidencia de ectoparásitos fue en la especie Aquila

chrysaetos, ya que hubo presencia de piojos en el segundo periodo de toma de

muestras, esto se muestra en el Cuadro 8.

Cuadro 3 . Ectoparásitos encontrados en las aves.

# Muestra AVE PRIMER PERIODO

SEGUNDO PERIODO

1 Accipiter coperii -- --

2 Parabuteo unicinctus -- --



5 Buteo jamaicensis -- --





10 Falco sparverius -- --

11 Aquila chrysaetos -- --



14 Caracara cheriway -- --

15 Bubo virginianus -- PIOJO 16 Bubo virginianus -- --

17 Bubo virginianus -- --

18 Tito alba -- -- 19 Tito alba -- --

32

Citologías traqueales

En el Cuadro 9 se describen los individuos y el resultado de estas citologías de

tráquea, muestran resultados negativos resaltando que estas se obtuvieron

durante el segundo periodo, lo que hace referencia para que el calendario de

desparasitación se haga antes del periodo de lluvia o primer periodo.

Cuadro 4. Resultados de las citologías de la tráquea.

INDIVIDUO Trichomonas Aquila chysaetos Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo Aquila chysaetos Negativo Parabuteo unicintus Negativo Buteo jamaicensis Negativo Parabuteo unicintus Negativo Parabuteo unicintus Negativo

33

7. DISCUSION

Las altas prevalecías obtenidas fueron las esperadas porque las infecciones

parasitarias según autores (Figueroa, 2002), son más corrientes en los animales

en cautiverio que en los de vida libre, debido a que se mantienen constantemente

en ambientes contaminados, en especial con parásitos monoxenos (Figueroa,

2002) como lo es Heterakis.

Pardo (sin año) encontró que en cuanto a las gallinas la media de parásitos en la

época de lluvias fue de 4.46 y en la época de secas 5.87, contando con una mayor

frecuencia de Heterakis gallinarum en ambas épocas así mismo Zaldivar, et al

(1984) encontraron en época de estiaje a Strongyloides. Esto corresponde con la

presencia de estas especies parasitarias en aves rapaces con una menor

frecuencia en temporada de lluvias y una mayor en época de estiaje.

Mas que un solo un ejemplar de águila real, no se encontraron ectoparásitos en

las aves muestreadas, esto es posiblemente a que al ser aves en cautiverio no

tienen el suficiente contacto con presas infestadas que pudieran transmitir algún

tipo de ectoparásito, así también por el manejo en su alimentación no tiene riesgo

de infestaciones ya que el proceso de limpieza del alimento que consiste en

pescuezo de pollo elimina plumas y suciedad. Este único caso de presencia de

piojo se puede presumir a que recientemente durante los últimos días de la toma

de muestras se comenzó a alimentar a las águilas reales con alimento vivo en

particular conejos que pueden ser foco de hospedadores de piojos (Vázquez et al,

2006).

34

Según COLVEMA en su pagina oficial (2012) La presencia de Ascardia en el un

individuo de Caracara cheriway puede deberse a que es común encontrarla en

especies de aves que se encuentran en el suelo, sus huevecillos pueden ser

controlados por el vapor de agua pero este se encuentra en menor medida en los

encierros durante la temporada de estiaje y en los encierros donde el piso esta

cubierto por graba.

En cuanto a la parasitosis por coccidias en Buteo jamaicensis esta ampliamente

registrada como un clásico caso de parasito heteroxeno ya que este tipo de

parasito es común en mamíferos intermedios que sirven como hospedador

intermedio y provocan un aumento en la probabilidad de depredación por el

hospedador definitivo Los casos de coccidias que se presentaron en ejemplares

de la especie Buteo jamaicensis coinciden probablemente en con estos casos ya

que las instalaciones del aviario no son las optimas no existe una barda a nivel del

suelo que separe totalmente al encierro se utiliza únicamente maya ciclónica que

permite la entrada de roedores que han sido avistados por el personal del aviario

durante los últimos meses de la toma de muestras.

Por otra parte los estudios arrojados del presente trabajo no mostraron la

presencia de Trichomonas, de los sitios muestreados, lo que nos hace pensar que

el tipo de manejo, dieta (no incluye palomas que es la principal portadora de

trichomonas (Acosta et al, 2009)), y alojamiento es más controlado.

Los ejemplares que están en contacto cercano con ejemplares de papagayos

fueron los arrojaron muestras positivas de Isospora, Strongyloides, Heterakis,

Raillietina, y estudios parasitológicos gastrointestinales de aves silvestres en

cautiverio del estado de Penambuco, Brasil señalan que aves como papagayos

35

son portadoras de parásitos como Trichomonas gallinae, Trichostrongylus tenuis,

Ascaridia columbae, A. sprenti, A. dissimiles, Heterakis gallinarum, Capillaria sp,

Eimeria dispersa y Raillietina sp, (Lyra, 2002) pudiendo entonces convertirse en

vectores para la transmisión de estos parásitos en rapaces debido a que muchos

encierros de las rapaces se encuentran a un lado de un encierro con papagayos,

también por la construcción de las instalaciones ya para llegar a un encierro de

algunas rapaces se tiene que pasar forzosamente por algún otro encierro que

albergue a ejemplares de papagayos.

La presencia de microorganismos en aves rapaces, en diferentes recintos,

demuestra la evidente necesidad de aumentar las medidas de bioseguridad, ya

que en el aviario DILAJESH, se encontraron ciertos puntos que según Castañeda

(2010) son condiciones para la presencia de enfermedades, tales como la

presencia de perros, mala higiene y desinfección inadecuada. Los aspectos

relacionados con la ubicación, vínculos y traslado, el control sanitario y

saneamiento ambiental, la alimentación, conservación y suministro de agua deben

de ser revisados periódicamente (Castañeda, 2010).

36

8. CONCLUSIONES

Durante el periodo de estiaje se tuvo el mayor numero de casos positivos de

parasitosis en los ejemplares rapaces con un 95% de ejemplares con algún tipo

de parásitos comparado con el 60% de los ejemplares que presentaron parasitosis

positivas en el periodo de lluvias. De los 2 ordenes muestreados, el estrigiforme

solo presentó incidencia parasitaria durante el periodo de estiaje con Strongyloides

y con la mas alta densidad, el orfen falconiformes presentó al menos una

parasitosis en todas las especies menos el ejemplar de la especie Falco

sparverius que no presento parasitosis en ninguna de las 2 temporadas.

Buteo jamaicensis fue la especie que presento mayor incidencia parasitaria donde

se encontraron los géneros Strongyloides, Heterakis y Coccidia.

Individuos de las especies Buteo jamaicensis y Aquila chrysaetos mantuvieron sus

parasitosis sin cambiar ni los tipos de parásitos ni la densidad parasitaria de los

mismos, Strongyloides se encontraba presente en los ejemplares de Parabuteo

unicintus durante el periodo de lluvias mientras que en el periodo de estiaje no se

encontraba presente y era reemplazado por Heterakis.

Heterakis y Strongyloides presentaron el mismo porcentaje de incidencia

parasitaria con 30% para la temporada de lluvias y el 40% en la temporada de

estiaje y solamente se encontró a Coccidia y Ascardia durante el periodo de

estiaje.

En general los diferentes grupos de parásitos y la presencia de ellos en diferentes

grupos de aves de presa son muy distintos uno de otro, pero si se demostró una

37

mayor abundancia de parásitos gastrointestinales durante el periodo de estiaje

que indica factor de riesgo de enfermedades para las aves de presa durante esta

temporada.

8.1. Recomendaciones

Las operaciones que se realizan de mantenimiento alimentación y limpieza de los

ejemplares y encierro de los mismos deberán ser revisados cuidadosamente ya

que ya que se opera igual para todas las especies aun cuando tienden diferentes

comportamientos y características.

Se resalta la necesidad de modificar las operaciones de alimentación, como caso

particular se recomienda colocar el alimento en un solo lugar y elevado del suelo

preferentemente en tocones o en una percha, así como un cambio periódico y

constante del agua en los encierros. Descongelar el alimento sumergiéndolo en

agua y desinfectándolo con soluciones de plata coloidal estable al 0.08% como las

presentes en productos como BacDyn plus o similares.

Dejar de alimentar a los ejemplares de estrigiformes durante el día ya que estos

solo se alimentaran durante la noche y el alimento pasara menos tiempo a la

intemperie.

Limpiar los encierros con mayor regularidad ya que se observa en ellos restos de

alimentos, plumas heces y agua sucia durante mucho tiempo.

Concentrar a las especies en grupos de encierros de un mismo orden en áreas

especificas sin combinar a otros como psitácidos ya que ambos pueden ser foco

de diferentes enfermedades para uno u ambos ordenes por los distintos alimentos

38

que se manejan para cada una de las especies ya que se observan encierros

donde se encuentran estrigiformes y a un lado se encuentra un encierro que

contiene ejemplares de psitácidos.

Se pueden seguir muchos de los puntos mencionados en la Guía de bioseguridad

para propietarios de aves y aves de corral del departamento de agricultura de los

Estados Unidos que se puede descargar en la pagina:

www.aphis.usda.gov/.../animal.../USDA_BioGuide_SPA_8-2006.pdf

Tomando en cuenta los puntos anteriores, se recomienda:

• Seguir las reglas de bioseguridad mencionadas.

• Seguir un calendario de desparasitación que sea eficiente según el

parásito y su ciclo biológico.

Nematodos:

• Ascaridia.

• Strongyloides

• Heterakis

o Piperazina: 45 a 100 mg/Kg. VO ó 6 a 10 gramos por galón

durante 4 días.

o Fenotiacina: .5 a 1 Gr/Ave.

Cestodos

• Reallietina

o Pirantel: 4.5 mg/Kg. VO. Segunda dosis a los 14 días.

Antiparasitarios de amplio espectro:

• Febantel: 3 mg/ Kg.

39

• Fenbendazol:.10 a 50 mg/Kg. VO. Repetir la dosis de 3 a 10 dias después.

• Mebendazol: 50 a 100 mg/Kg durante 3 dias.

• Levimasol: 5 a 15 ml por galón durante 3 dias. Repetir a los 10 dias.

A menos que se indique lo contrario, el tratamiento se debe de repetir

aproximadamente cada 60 días (Plumb. 2006).

40

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revisado el 2/07/2012.

Figuras

• Fig: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10 y 11 Apolinar Misael Hernández Gómez

• Fig 7 http://sxm.birds.free.fr/Ois/Ph/Falco-sparverius.htm#z

• Fig: 12 y 14 La Guía RVC/FAO para el Diagnóstico Parasitológico

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http://www.rvc.ac.uk/Review/Parasitology_Spanish/poultrEggs/Common.htm

• Fig 13 Samour J H, Naldo J. Serratospiculiasis in Captive Falcons in the

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Association of Avian Veterinarians. 2001. 15(1):2-9.

• Fig 15:

http://instruction.cvhs.okstate.edu/jcfox/htdocs/disk1/images/img0046.jpg

Estudio de la incidencia temporal de parasitosis en diferentes grupos taxonómicos de aves rapaces...

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