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Bol. San. Veg. Plagas, 27: 411-417, 2001 Estudio sobre la biología y control de Bradysia paupera Tuomi - koski (=Bradysia difformis Frey) (Diptera: Sciaridae) J. P. MANSILLA, M. I. PASTORIZA, R. PÉREZ Bradysia paupera Tuomikoski se incluye en un grupo de dípteros conocidos como Fungus gnats que están citados como plagas en invernaderos de ornamentales y también sobre especies forrajeras. Las referencias del incremento de sus ataques en otros países, unido a su detección causando daños en un vivero de eucalipto de Pontevedra, llevaron a la realización de un estudio sobre su morfología, biología y control. Bajo las condicio- nes del estudio, su ciclo se completa en 3-4 semanas; además, en los ensayos de control realizados sobre larvas se obtuvieron resultados muy satisfactorios tanto en lucha quí- mica como biológica, con lo cual cualquiera de estas dos posibilidades resultan eficaces para el control de estos dípteros. Diputación Provincial de Pontevedra. Servicio Agrario. Estación Fitopatológica Do Areeiro. Subida a la Robleda s/n. 36153 Pontevedra. E-mail: [email protected] Palabras clave: Bradysia paupera, control, Díptera, insecticidas, Steinernema feltiae INTRODUCCIÓN El nombre de Fungus gnats se aplica a va- rias especies de dípteros de las familias My- cetophilidae y Sciaridae. Estos insectos son plagas comunes de viveros e invernaderos, principalmente de plantas ornamentales como Dianthus spp., Begonia spp., Iris spp. o Rosa spp., aunque existen evidencias que sugieren que también podrían ser plagas de cultivos forrajeros y así, SPRINGER y CARL- TON (1993) informan de daños importantes producidos por especies del género Bradysia (familia Sciaridae) en 7 especies de Trifo- lium. Los Fungus gnats se alimentan de hon- gos, algas y materia orgánica en descompo- sición, por lo que viven en zonas húmedas y oscuras donde se dan las condiciones ideales para el desarrollo de su fuente de alimento. Son las larvas de estos insectos las que re- almente causan daños a las plantas al ali- mentarse de sus raíces, principalmente de las raíces más finas y de los pelos radiculares provocando daños de diversa importancia e incluso, en caso de infestaciones muy eleva- das, la muerte del vegetal. Los síntomas que presentan las plantas atacadas se manifiestan en forma de marchitez, pérdida de vigor, es- caso crecimiento y pérdida de hojas (PUNDT, 1999); además, los daños causados por las larvas de Fungus gnats pueden contribuir a la infección por hongos patógenos del tipo Pythium, Botrytis, Verticillium, Fusarium, Thielaviopsis, Cylindrocladium y Sclerotinia (JAMES et al., 1995; PUNDT, 1999; DREES, 1994) y también los adultos pueden ayudar a la extensión de estos patógenos al llevar so- bre su cuerpo esporas del hongo (PUNDT, 1999). Según Duso y VETTORAZZO (1996) en los últimos años se han incrementado las infes- taciones de estos dípteros en varias zonas de

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Bol. San. Veg. Plagas, 27: 411-417, 2001

Estudio sobre la biología y control de Bradysia paupera Tuomi-koski (= Bradysia difformis Frey) (Diptera : Sciaridae)

J. P. MANSILLA, M. I. PASTORIZA, R. PÉREZ

Bradysia paupera Tuomikoski se incluye en un grupo de dípteros conocidos comoFungus gnats que están citados como plagas en invernaderos de ornamentales y tambiénsobre especies forrajeras. Las referencias del incremento de sus ataques en otros países,unido a su detección causando daños en un vivero de eucalipto de Pontevedra, llevaron ala realización de un estudio sobre su morfología, biología y control. Bajo las condicio-nes del estudio, su ciclo se completa en 3-4 semanas; además, en los ensayos de controlrealizados sobre larvas se obtuvieron resultados muy satisfactorios tanto en lucha quí-mica como biológica, con lo cual cualquiera de estas dos posibilidades resultan eficacespara el control de estos dípteros.

Diputación Provincial de Pontevedra. Servicio Agrario. Estación Fitopatológica DoAreeiro. Subida a la Robleda s/n. 36153 Pontevedra. E-mail: [email protected]

Palabras clave: Bradysia paupera, control, Díptera, insecticidas, Steinernemafeltiae

INTRODUCCIÓN

El nombre de Fungus gnats se aplica a va-rias especies de dípteros de las familias My-cetophilidae y Sciaridae. Estos insectos sonplagas comunes de viveros e invernaderos,principalmente de plantas ornamentalescomo Dianthus spp., Begonia spp., Iris spp.o Rosa spp., aunque existen evidencias quesugieren que también podrían ser plagas decultivos forrajeros y así, SPRINGER y CARL-

TON (1993) informan de daños importantesproducidos por especies del género Bradysia(familia Sciaridae) en 7 especies de Trifo-lium. Los Fungus gnats se alimentan de hon-gos, algas y materia orgánica en descompo-sición, por lo que viven en zonas húmedas yoscuras donde se dan las condiciones idealespara el desarrollo de su fuente de alimento.

Son las larvas de estos insectos las que re-almente causan daños a las plantas al ali-

mentarse de sus raíces, principalmente de lasraíces más finas y de los pelos radicularesprovocando daños de diversa importancia eincluso, en caso de infestaciones muy eleva-das, la muerte del vegetal. Los síntomas quepresentan las plantas atacadas se manifiestanen forma de marchitez, pérdida de vigor, es-caso crecimiento y pérdida de hojas (PUNDT,

1999); además, los daños causados por laslarvas de Fungus gnats pueden contribuir ala infección por hongos patógenos del tipoPythium, Botrytis, Verticillium, Fusarium,Thielaviopsis, Cylindrocladium y Sclerotinia(JAMES et al., 1995; PUNDT, 1999; DREES,

1994) y también los adultos pueden ayudar ala extensión de estos patógenos al llevar so-bre su cuerpo esporas del hongo (PUNDT,

1999).Según Duso y VETTORAZZO (1996) en los

últimos años se han incrementado las infes-taciones de estos dípteros en varias zonas de

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Italia sobre cultivo protegido. En nuestrocaso, la aparición de daños provocados poruna de estas especies, Bradysia pauperaTuomikoski (= Bradysia difformis Frey), enun vivero de Eucalyptus constituyó el deto-nante de este estudio sobre su biología y po-sibilidades de control, en previsión de queante un potencial incremento de sus pobla-ciones y, consecuentemente de sus daños, sepueda luchar eficazmente contra ella.

MATERIAL Y MÉTODOS

Con el fin de estudiar la morfología y elciclo biológico de Bradysia paupera se par-tió de una población de adultos, procedentesdel vivero infectado, a partir de los que seobtuvieron los distintos estados de desarro-llo y los sucesivos ciclos; para ello, teniendoen cuenta que las larvas del esciárido sesienten atraídas por discos de patata, se colo-caron estos adultos en placas Petri con me-dio agar-patata (JAMES el al, 1995), mante-niendo estas unidades de cría en cámarascon condiciones de 23°C y 70% de humedadrelativa.

Por su parte, con el fin de estudiar las po-sibilidades de control de este insecto se en-sayaron dos estrategias de lucha: química ybiológica. En cuanto a la lucha química,Duso y VETORAZZO (1991) refieren resulta-dos poco satisfactorios en el control de adul-tos; esta circunstancia, unida a los repetidosintentos (aplicación de diferentes insectici-das —deltametrina, fosalone...— mediantetermonebulización) de conseguir un controleficaz del mismo estado de desarrollo en elvivero de eucalipto donde se detectó la plagaen Pontevedra, nos llevó a dirigir nuestrasexperiencias hacia el control de las larvas deestos insectos, por otra parte las verdaderascausantes de los daños. De esta forma, se en-

sayaron cuatro insecticidas (flufenoxuron —10% p/v—, diflubenzuron —25% p/v—,azadiractina —0.3% p/p— y deltametrina —2.5% p/v—) utilizando tres dosis para cadauno de ellos: la dosis recomendada y sendasdosis inferior y superior a la misma en 0.15 a1 ml/1, comparándose los resultados obteni-dos frente a un testigo (Cuadro 1).

Cada una de las dosis de los distintos in-secticidas se aplicó sobre placas Petri con 10ml del medio de cultivo (medio agar-patatacon un fungicida —benomilo— y un anti-biótico —estreptomicina—) y 0.5 mi de lasolución del producto (cantidad suficientepara asegurar una distribución uniforme —pero no excesiva— sobre la superficie delmedio), estableciéndose cuatro bloques detres repeticiones. Las placas se inocularoncon 10 larvas en estado L2 que se mantuvie-ron en oscuridad a 23°C y 70% de humedad.A las 24 y 48 horas de la aplicación de losproductos, y después cada 2 días, se realiza-ron recuentos del número de larvas vivas ymuertas para obtener datos de la eficacia delos insecticidas, finalizando los ensayos enel momento que todas las larvas hubieranmuerto o bien hubieran completado el ciclo.

Además de evaluar la eficacia de los in-secticidas, en este estudio también se quisocomprobar si el estado larvario en el que seencuentra el insecto en el momento de laaplicación de los productos afecta al resul-tado; para ello se realizaron ensayos contres estados larvarios diferentes LI, L2 yL3 (utilizando, de cada producto, las dosiscon las que se obtuvieron mejores resulta-dos) y siguiendo el protocolo descrito ante-riormente.

Respecto a la lucha biológica existen da-tos de diversos nematodos entomopatógenosutilizados para este fin: Steinernema feltiae,S. carpocapsae, S. scapterisci, S. anomali, S.riobravis, S. glasieri y Heterorhabditis me-

Cuadro 1 .-Dosis de los insecticidas utilizados en el ensayo.

FlufenoxuronDiflubenzuronDeltametrinaAzadiractina

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gidis, pero de todos ellos Steinernema feltiaeha resultado ser el más efectivo contra larvasde esciáridos (GOUGE y HAGUE, 1995), porlo que el ensayo de lucha biológica se ha re-alizado con este nematodo, utilizándose dosdosis diferentes del producto comercial, larecomendada (20 g/1) y otra inferior (10 g/1),siguiendo el mismo protocolo que el descritopara la lucha química.

A partir de los resultados de los ensayosse calculó la tasa de mortalidad para los dife-rentes productos frente al testigo, realizán-dose un análisis de varianza ANOVA segúnel test de Tukey para un 95% de confianza.

cuyo coxis y fémur son de color amarilloclaro mientras la tibia y el tarso son oscuros.Las alas membranosas son de color gris ce-niza, siendo las de las hembras más largas yestrechas que las de los machos. Las venas delas alas son fuertes, gruesas y oscuras, desta-cando una vena en forma de Y común para elgénero Bradysia. En sus costados, el abdo-men es más claro que el resto del cuerpo y ensu último segmento se encuentra el aparatoreproductor, con forma de pinza en el macho.

HUEVO: tiene forma ovalada. Es liso,brillante y de color amarillo claro semitrans-parente. Mide 0.24 mm de longitud y 0.16mm de ancho.

Fig. 2.-Puesta de Bradysia paupera.

LARVA: filiforme, de color blanco semi-transparente, presenta la cápsula cefálica ne-gra, brillante y fuertemente quitinizada.Existen 4 estados larvarios, cuyas longitudesson: 0.4-0.6 mm para el estado Ll, 0.6-1.25mm (estado L2), 1.25-2.5 mm (L3) y 2.5-4.75 mm (L4).

Fig. 1 .-Adulto. Fig. 3.-Larva de Bradysia paupera.

RESULTADOS

Morfología y ciclo biológicode Bradysia paupera

A partir de las poblaciones obtenidas delos adultos procedentes del vivero infectadose estudió la morfología de los diferentes es-tados de desarrollo de este esciárido y su ci-clo biológico:

ADULTO: con aspecto de mosquito, es decolor gris negruzco (aunque tiene el cuerpocubierto por abundantes setas negras), mi-diendo entre 2.5 mm (macho) y 3 mm (hem-bra). Las antenas miden aproximadamente1/4 de la longitud corporal y están formadaspor 16 segmentos. El tórax es negro y bri-llante; de él parten 3 pares de largas patas

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PUPA: en un principio es de color blanco,evolucionando posteriormente a amarillohasta llegar al marrón dorado definitivo,siendo una pupa libre. Tiene un tamaño si-milar al adulto.

Fig. 4.-Pupa de Bradysia paupera.

Bajo las condiciones del ensayo (tem-peratura de 23±1°C y 70±l% de humedadrelativa), los adultos de Bradysia pauperaviven entre 4 y 7 días, período durante elcual la hembra deposita los huevos sobre lasuperficie o en las zonas del suelo con ma-teria orgánica en descomposición, para queal emerger las larvas tengan cerca su fuentede alimento. Cada hembra puede llegar aponer de 100 a 200 huevos depositados engrupos de 2 a 30. Al cabo de 3 o 5 días nacela larva, que pasará por 4 estados larvarios;

Ll, L3 y L4 presentan una duración similar(2-3 días), mientras que el estado L2 seprolonga durante 3-4 días. Transcurridos de9 a 13 días desde la emergencia, las larvasse entierran a aproximadamente 2 cm de lasuperficie del suelo y pupan, abarcandoeste estado un intervalo de tiempo com-prendido entre 4 y 6 días, al término de loscuales el adulto rompe la pupa y comienzaun nuevo ciclo, pudiendo completarse va-rias generaciones al año, con solapamientoentre ellas.

Lucha química

El análisis estadístico de los resultadoscon lucha química reveló el buen comporta-miento de todos los insecticidas ensayadosen cualquiera de las dosis, no solo por existirdiferencias significativas entre ellos y el tes-tigo sino también por alcanzarse tasas demortalidad larvaria muy elevadas (97-100%),excepto en las concentraciones inferiores dediflubenzuron y azadiractina, donde no sesuperó el 75% (Cuadro 2).

Sin embargo, los valores de mortalidadobtenidos no permitieron determinar cuálde las dosis utilizadas podría ser calificadacomo óptima dentro de cada producto,puesto que en la mayoría de los casos losresultados fueron muy similares; por estemotivo se realizó la valoración de la tasa

Cuadro 2.-Media ± SEM de la tasa de mortalidad larvaria para los diferentes productos

Los valores seguidos de la misma letra no son significativamente diferentes (p = 0.05).

FLUFENOXURON

DIFLUBENZURON

DELTAMETRINA

AZADIRACTINA

CONTROL

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Cuadro 3.-Media ± SEM de la tasa de mortalidad para los diferentes estados larvarios

* Los valores seguidos de la misma letra no son significativamente diferenles (p = 0.05).

de mortalidad frente al tiempo para todaslas dosis de los insecticidas ensayados, de-terminándose, al comparar el valor má-ximo de mortalidad larvaria que alcanzócada una de las dosis con el tiempo quetardaron en alcanzar este valor, que la do-sis más alta es la óptima (100% de morta-lidad en menos tiempo). Además, tambiénse observó que el diflubenzuron es el pro-ducto que más tiempo tarda en alcanzar el100% de mortalidad (24 días), lo cualpuede explicarse en base a su condición deinhibidor del crecimiento. Las dos dosismás elevadas de deltametrina (0.60 ml/1 y0.85 ml/1) son las que consiguen mayoresvalores de mortalidad en los dos primerosdías en comparación con el resto de losproductos y las dos mayores de azadirac-tina (2 ml/1 y 2.5 ml/1), las que menostiempo emplean en alcanzar el valor má-ximo de mortalidad larvaria. Ambos insec-ticidas tienen en común el que actúan poringestión y contacto (además de su acciónrepelente) y pueden producir la muerte delas larvas antes que un inhibidor por afec-tar al sistema nervioso (la deltametrina), o

por inducir una muda prematura (la azadi-ractina).

Al aplicar las dosis óptimas de los insecti-cidas en 3 estados larvarios diferentes (Ll,L2 y L3) para comprobar si variaban los va-lores de mortalidad obtenidos en función delestado larvario del insecto, se pudo compro-bar que en todos los casos se alcanza el100% de mortalidad larvaria y que por lotanto las dosis óptimas de los productos sonigualmente efectivas independientementedel estado larvario ensayado (Cuadro 3).

Fig. 5.-Larva de B. paupera parasitadapor Steinernema felticae.

DIFLUBENZURON

DELTAMETRINA

AZADIRACTINA

CONTROL

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Fig. 6.- Valoración de la tas de mortalidad larvaria en el tiempo.

Lucha biológica

El análisis estadístico de los resultadosdel ensayo de eficacia con el nematodo en-tomopatógeno Steinernema feltiae (Cuadro4) mostró su buen comportamiento, ya quese observaron diferencias significativas en-tre el testigo y las dos dosis del nematodoutilizadas, y además ambas dosis alcanza-ron tasas de mortalidad larvarias superioresal 90%, no existiendo diferencias significa-tivas entre ellas (aún así, solo con la dosismayor —20 g/1— se alcanza el 100% demortalidad).

CONCLUSIONES

Respecto a la biología de Bradysia pau-pera se puede concluir que bajo unas condi-ciones de temperatura de 23 ± 1 °C y 70 ±1 % de humedad relativa su ciclo se completaen aproximadamente 3 o 4 semanas, sola-pándose las sucesivas generaciones si semantienen tales condiciones.

En lo que se refiere a lucha química sepuede concluir que, excepto las dosis infe-riores de diflubenzuron y azadiractina (conlas que los resultados no son tan satisfacto-rios), cualquiera de las demás dosis de los

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productos ensayados resultan muy efecti-vas para el control de las larvas de este in-secto; igualmente es importante señalarque aunque designamos como dosis óptimade cada insecticida la más alta por ser laque menos tiempo tarda en alcanzar el va-lor máximo de mortalidad, deben recomen-darse las dosis más elevadas de flufenoxu-ron y azadiractina por alcanzar este valormáximo en menos tiempo.Además, tam-

bién se demuestra que el estado larvariodel esciárido no influye en la eficacia delos productos.

Respecto a la lucha biológica se puedeconcluir que el nematodo entomopatógenoutilizado en el ensayo es un buen mecanismode control frente a las larvas de Bradysiapaupera aunque es la dosis más elevada deeste nematodo la que logra una máxima efi-cacia.

ABSTRACT

Bradysia paupera Tuomikoski was included in a group of dipterous known with thename of Fungus gnats wich are pests of greenhouses of ornamentals and fodder crops.As many authors in different countries reported continuous attacks of Bradysia pauperaand its presence causing damages in a nursery of Eucalyptus of Pontevedra lead us tothe realization of a study about its morphology, biology and possibilities of control. Inthe conditions of the study, the life-cycle was completed in 3-4 weeks; in the chemicaland biological control trials were attained very satisfactory results which means bothpossibilities are effective for the control of this insect.

Key words: Bradysia paupera, control, Diptera, insecticides, Steinernema feltiae.

REFERENCIAS

DREES, B. M. 1994. Fungus gnats management. TexasGreenhouse Bulletin - May. 1994.

Duso, C. y VETTORAZZO, E. 1991. Esperienze di lottacontro Bradysia paupera Tuom. (Diptera: Sciaridae)su carciofo e begonia in coltura protetta. Notiziariosulle tnalattie delle piante, 112: 89-99.

Duso, C. y VETTORAZZO, E. 1996. Osservazioni sulcomportamento e sulla dannositá di Bradysia pau-pera Tuomikosky (Diptera Sciaridae) in coltura pro-tetta. Bollettino di Zoologia agraria e di Bachicol-tura, Ser. II, 28: 23-40.

GUOGE, D. H. y HAGUE, N. G. 1995. The susceptibility ofdiferent species of sciarid flies to entomopathogenicnematodes. Journal ofHelminthology, 69: 313-318.

JAMES, R. L., DUMROESE, R.K. y WENNY, D.L. 1995.Botrytis cinerea carried by adult Fungus gnats (Dip-tera:Sciaridae) in container nurseries. Tree Planter'sNotes: 49-53.

PUNDT, L. 1999. Fungus gnats are a serious pests. Yan-kee Grower (Sept.- Oct.): 9-10.

SPRINGER, T. L. y CARLTON, C. E. 1993. Ovopositionpreference of Darwinged Fungus gnats (Dpitera:Scia-ridae) among Trifolium species. Journal of Econo-mic Entomology, 86: 1420-1423.

(Recepción: 20 de septiembre de 2001)(Aceptación: 18 de octubre de 2001)