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Mercedes Alexandra Villa Achupallas
Cádiz, 30 noviembre del 2011
TESIS DE MÁSTER
UNIVERSIDAD DE CÁDIZ
DEPARTAMENTO DE QUÍMICA ANALÍTICA
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Tesis previo a la obtención del Título de
Máster en Gestión integral del agua
AUTOR:
Mercedes Alexandra Villa Achupallas
DIRECTORA:
Dra. María Dolores Galindo Riaño
Cádiz – España
2011
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Dra. María Dolores Galindo Riaño
PROFESORA TITULAR DE UNIVERSIDAD DEL DEPARTAMENTO
DE QUÍMICA ANALÍTICA
C E R T I F I C A:
Que el presente trabajo de investigación, titulado:
“Evaluación de la calidad del agua en la
subcuenca del río Yacuambi. Propuestas de
tratamiento y control de la contaminación” ha
sido realizado por Mercedes Alexandra Villa
Achupallas, bajo mi dirección, habiendo
cumplido con los requisitos metodológicos,
teóricos, prácticos, de laboratorio e investigación.
Después de la revisión, análisis y corrección
respectiva, autorizo su presentación y defensa.
24 de octubre del 2011
Fdo. Dra. María Dolores Galindo Riaño
DIRECTORA DE TESIS DE MÁSTER
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DEDICATORIA
Con profundo cariño y agradecimiento a Dios por ser el pilar de mi vida y por todas las
bendiciones que me ha concedido, a mi mamá por ser mi más grande amor, a mis
abuelitos, primos y amigas por su apoyo incondicional y por siempre estar junto a mí.
Mercedes
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AGRADECIMIENTOS
De manera particular a la Ing. Mónica Cisneros Abad, amiga personal y docente de la
Universidad Técnica Particular de Loja por todo el apoyo que me ha brindado y por ser
la motivadora para cumplir esta meta.
A la profesora María Dolores Galindo Riaño, quien con su buena voluntad me supo
brindar la confianza y oportunidad para el desarrollo de la presente investigación.
A Silvio Aguilar, Celso Romero, Miguel Guamán, Víctor Hugo González; docentes
investigadores de la UTPL, por su disposición y participación en la obtención de
información, lo cual me permitió llevar a un buen término este estudio.
A la Secretaría Nacional de Educación Superior, Ciencia, Tecnología e Investigación,
por darme la oportunidad de prepararme como profesional, por todo el apoyo recibido y
por ser el motor de arranque en este nuevo desafío.
Expresar también mi agradecimiento sincero a mi primo Ing. Mauricio Gómez y a
Ángel Arteaga, por todo el apoyo y confianza que me brindaron.
Finalmente mi sincero agradecimiento a la Universidad Técnica Particular de Loja en la
persona del Dr. Omar Malagón, director del Instituto de Química Aplicada IQA, por
brindarme su apoyo y poner a mi disposición las instalaciones del laboratorio de
Ingeniería Ambiental.
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ÍNDICE
Certificado
Dedicatoria
Agradecimientos
CAPÍTULO 1: GENERALIDADES
1.1 Introducción
1.2 Justificación
1.3 Objetivos
1.4 Marco legal del agua en el Ecuador
1.5 Descripción del área de estudio
1.6 Ubicación de los puntos de muestreo
CAPÍTULO 2: METODOLOGÍA PARA LA CARACTERIZACIÓN
DE LAS AGUAS DEL RÍO YACUAMBI
2.1 Introducción sobre el muestreo
2.2 Equipos y materiales para el muestreo
2.3 Tipos de muestras
2.4 Identificación de muestras
2.5 Envases para la toma de muestras
2.6 Procedimiento de toma de muestras
2.7 Transporte y preservación de las muestras
2.8 Seguridad en el muestreo
2.9 Parámetros analizados en laboratorio
CAPÍTULO 3: RESULTADOS DE LOS ANÁLISIS REALIZADOS
3.1 Introducción
3.2 Indicadores Físicos
3.2.1 Color
3.2.2 Conductividad eléctrica
3.2.3 Sólidos totales
3.2.4 Temperatura
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3.2.5 Turbidez
3.3 Indicadores Químicos
3.3.1 Cloruros
3.3.2 Demanda Bioquímica de Oxígeno
3.3.3 Demanda Química de Oxígeno
3.3.4 Dureza
3.3.5 Fosfatos
3.3.6 Nitritos y Nitratos
3.3.7 Oxígeno disuelto
3.3.8 pH
3.3.9 Porcentaje de saturación
3.4 Indicadores Microbiológicos
3.4.1 Coliformes totales
3.5 Metales Pesados
3.6 Pesticidas
CAPÍTULO 4: ÍNDICE DE CALIDAD DE AGUA EN EL RÍO
YACUAMBI
4.1 Introducción
4.2 Antecedentes
4.3 Metodología de cálculo del ICA
4.3.1 Asignación de pesos de cada parámetro (Wi)
4.3.2 Estimación del parámetro de calidad (Ii)
CAPÍTULO 5: DISCUSIÓN DE RESULTADOS
5.1 Índice de calidad del punto 1
5.2 Índice de calidad del punto 2
5.3 Índice de calidad del punto 3
5.4 Índice de calidad del punto 4
5.5 Índice de calidad del punto 5
5.6 Índice de calidad del punto 6
5.7 Conclusiones
CAPÍTULO 6: REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1: Comunidades de las parroquias del cantón Yacuambi
Tabla 2: Localización geográfica de los puntos de muestreo
Tabla 3: Métodos de Análisis de laboratorio para los parámetros
evaluados
Tabla 4: Normativa de Calidad Ambiental para el recurso Agua relativa
los parámetros físico-químicos
Tabla 5: Norma de Calidad Ambiental para el recurso Agua relativa a
metales pesados y pesticidas
Tabla 6.- Pesos asignados a cada parámetro
Tabla 7: Rangos de clasificación ICA
Tabla 8.- Cálculo del ICA del primer punto de muestreo
Tabla 9.- Cálculo del ICA del segundo punto de muestreo
Tabla 10.- Cálculo del ICA del tercer punto de muestreo
Tabla 11.- Cálculo del ICA del cuarto punto de muestreo
Tabla 12.- Cálculo del ICA del quinto punto de muestreo
Tabla 13.- Cálculo del ICA del sexto punto de muestreo
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ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1.- Cuenca de drenaje del río Yacuambi en la zona de estudio y
localización de los puntos de muestreo
Figura 2.- Evolución de la concentración del color en el río Yacuambi
Figura 3.- Evolución de la concentración de la conductividad eléctrica en
el río Yacuambi
Figura 4.- Evolución de la concentración de sólidos totales en el río
Yacuambi
Figura 5.- Evolución de la variación de temperatura en el río Yacuambi
Figura 6.- Evolución de la concentración de la turbidez en el río
Yacuambi
Figura 7.- Evolución de la concentración de los cloruros en el río
Yacuambi.
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Figura 8.- Evolución de la concentración de DBO en el río Yacuambi
Figura 9.- Evolución de la concentración de DQO en el río Yacuambi
Figura 10.- Evolución de la concentración de dureza en el río Yacuambi
Figura 11.- Evolución de la concentración de fosfatos en el río Yacuambi
Figura 12.- Evolución de la concentración de nitritos y nitratos en el río
Yacuambi
Figura 13.- Evolución de la concentración de oxígeno disuelto en el río
Yacuambi
Figura 14.- Evolución de la concentración de pH en el río Yacuambi
Figura 15.- Evolución del porcentaje de saturación en el río Yacuambi
Figura 16.- Evolución de concentración de coliformes totales en el río
Yacuambi
Figura 17.- Curva de función de calidad NSF para la Demanda
bioquímica de oxígeno
Figura 18.- Curva de función de calidad NSF para el Porcentaje de
saturación
Figura 19.- Curva de función de calidad NSF para los Coliformes totales
Figura 20.- Curva de función de calidad NSF para Nitratos
Figura 21.- Curva de función de calidad NSF el pH
Figura 22.- Curva de función de calidad NSF para la variación de
temperatura
Figura 23.- Curva de función de calidad NSF de Sólidos totales
Figura 24.- Curva de función de calidad NSF de Fosfatos
Figura 25.- Curva de función de calidad NSF de Turbidez
Figura 26.- Índice de calidad para la DBO
Figura 27.- Índice de calidad para el Porcentaje de saturación de oxígeno
Figura 28.- Índice de calidad para los Coliformes totales
Figura 29.- Índice de calidad para Nitratos
Figura 30.- Índice de calidad para el pH
Figura 31.- Índice de calidad para la variación de Temperatura
Figura 32.- Índice de calidad para los Sólidos totales
Figura 33.- Índice de calidad para Fosfatos
Figura 34.- Índice de calidad para la Turbidez
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Figura 35.- Representación gráfica del ICA en el primer punto de
muestreo
Figura 36.- Representación gráfica del ICA en el segundo punto de
muestreo
Figura 37.- Representación gráfica del ICA en el tercer punto de muestreo
Figura 38.- Representación gráfica del ICA en el cuarto punto de
muestreo
Figura 39.- Representación gráfica del ICA en el quinto punto de
muestreo
Figura 40.- Representación gráfica del ICA en el sexto punto de muestreo
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ÍNDICE DE FOTOGRAFÍAS
Foto 1.- Personas duchándose y lavando ropa en la orilla del rio
Foto 2.- Acumulación de basura en el cauce
Foto 3.- Dragado de sedimentos, donde se aprecian galones de
combustible para funcionamiento del motor
Foto 4.- Extracción de material para fines de construcción
Foto 5.- Residuos de aceites dispersos en el agua del cauce
Foto 6. - Recolección de la muestra para análisis físico-químicos en el
punto de muestreo 1
Foto 7.- Medición In situ de Oxígeno Disuelto en el punto de muestreo 2.
Foto 8.- Medición In situ de Oxígeno Disuelto en el punto de muestreo 3.
Foto 9.- Toma de muestra para análisis de metales pesados en el punto de
muestreo 4.
Foto 10.- Toma de coordenadas geográficas con GPS en el punto de
muestreo 5.
Foto 11.- Toma de muestra para análisis físico-químicos en el punto de
muestreo 6.
Foto 12.- Elementos de seguridad durante el muestreo.
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ÍNDICE DE ANEXOS
Anexo 1: Hojas de Registro de la toma de muestra
Anexo 2: Resumen de resultados de análisis de muestras y límites de detección de las técnicas de análisis
Anexo 3: Ilustraciones del ICA por parámetro en el río Yacuambi
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Capítulo1111
GENERALIDADES
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1.1 INTRODUCCIÓN
Ecuador es un país que en materia de recursos hídricos puede considerarse privilegiado
dentro del contexto mundial, ya que de acuerdo con el Informe del Instituto Mundial del
Agua tiene un estrés hídrico menor al 30% (SENAGUA, 2010)
Lamentablemente esta gran riqueza, se ve amenaza por actividades antropogénicas
intensas, la mayor contaminación se debe a la descarga de aguas residuales e
industriales, actividades mineras (mercurio y cianuro), sector hidrocarburífero (altas
concentraciones salinas), y el sector agrícola, con prácticas nocivas por la aplicación de
pesticidas y otros productos químicos tóxicos de control de plagas.
Uno de los grandes retos que enfrenta la gestión integral de los recursos hídricos es la
contaminación de los cuerpos de agua, superficial y subterráneos; en el país no se
cuenta con un estudio integral de las fuentes de contaminación, así como con una red de
monitoreo nacional para controlar y vigilar la calidad del agua, todo lo cual limita la
posibilidad de adoptar medidas eficaces de prevención y control de la contaminación.
De 1984 data la única Carta de Calidad del Agua realizada en 4 sistemas hidrográficos
de los 79 existentes a nivel nacional (SENAGUA, 2010). Igualmente existe un estudio
puntual de la calidad del agua en la cuenca del río Guayas del año 1989.
Los ríos constituyen la mayor fuente de agua dulce superficial del Ecuador. Aunque el
agua dulce superficial es abundante, especialmente cerca de las áreas pobladas, la
contaminación biológica y química de los sistemas de abastecimiento de agua
superficial se ve agravada frecuentemente por el crecimiento de la población y las
demandas agrícolas debidas a la utilización de la tierra.
La verdadera tragedia de esta crisis es su efecto sobre la vida de las poblaciones pobres,
que se ven expuestas a enfermedades de origen hídrico, viviendo en entornos
degradados y a menudo peligrosos, luchando por conseguir una educación para sus
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hijos, por ganarse la vida y por solventar sus necesidades básicas de alimentación. La
crisis pesa asimismo sobre el entorno natural, con aparente desinterés por las
consecuencias.
En realidad, se trata fundamentalmente de un problema de actitud y de comportamiento,
problemas en su mayoría identificables y localizables.
Debido a esta problemática y con el objetivo de establecer una red de monitoreo que
permita determinar la calidad del agua del río Yacuambi se realizó este trabajo de
investigación. Además, este río atraviesa el Bosque Protector Yacuambi de gran
importancia ecológica para el país por la gran diversidad biológica que guarda, de tal
forma que al conocer la calidad de sus aguas se puede mejorar la gestión de sus recursos
y la calidad de vida de las comunidades asentadas en su ribera.
La disponibilidad y vulnerabilidad de los recursos hídricos está generando una
preocupación y atención crecientes, por ello, se hace necesaria la preservación y la
mejora integral del agua dulce tanto en lo que se refiere a la calidad como al manejo
integral de la cuenca.
La conservación y recuperación de fuentes de agua dulce implica además conservar el
balance de sus condiciones físicas, químicas y biológicas como un todo. Determinar el
estado en que se encuentra un río o quebrada es un proceso necesario para protegerlo o
restaurarlo por lo que es fundamental conocer su estado actual, particularmente cuando
no se conocen las condiciones a las que ha estado expuesto o si ha estado sujeto por
largo tiempo a perturbaciones antropogénicas.
En Ecuador no se dispone de bases de datos oficiales sobre el estado en que se
encuentran las cuencas hidrográficas. Son pocos los estudios realizados en algunos
cauces, consciente de la problemática generada por los usos del agua a fin de dar
respuesta a la necesidad de conservar el patrimonio hídrico del país. Por todo ello, se
presenta este estudio para determinar la calidad del agua en la subcuenca del río
Yacuambi.
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En este estudio de las condiciones ambientales del río Yacuambi, los indicadores y
límites de la calidad del agua se expresan en la norma de Calidad Ambiental y de
Descarga de Efluentes: Recurso Agua, misma que reglamenta, entre otros aspectos, los
criterios de calidad para la destinación del recurso. Es la primera vez que se analizan
todos estos datos para dilucidar cuáles son las causas de la falta de calidad en el agua y
cómo atajar la contaminación.
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1.2 JUSTIFICACIÓN
El Yacuambi (del quechua yaku que significa agua y del cayapa ambi que significa río)
es un río de la provincia de Zamora Chinchipe, afluente del río Zamora. Es uno de los
mayores tributarios de la cuenca hidrográfica de Zamora y baña el Valle del Yacuambi,
recorriendo los cantones de Yacuambi y Zamora. Es apto para la navegación y el
rafting, y presenta algunos sitios que pueden ser utilizados como balnearios naturales.
Este río ha sido durante mucho tiempo y continua siendo la fuente de abastecimiento de
agua de consumo humano para las tres parroquias y comunidades del cantón.
Tabla 1. Comunidades de las parroquias del cantón Yacuambi
Parroquias Comunidades
La Paz
Muchime, San Pedro, Chapintza Bajo, Chapintza Alto, Kim, Kurintza,
Napurak, Jembuentza, Nuevo Porvenir, Kunguintza, Guayacanes,
Washikiat, Puintza Bajo, Puintza Alto, Namacuntza, Palmar y La
Paz.
28 de mayo
Cambuna, Mushuc Causai, Polmoloma, Peñablanca, San Vicente, 18
de noviembre, Poma Rosa, San Pedro Chico, Mancaurcu, Guaduvica,
Paquintza, Guandus, San Antonio, Intiñan, Romerillo, El Salado,
Wakapampa, Cóndor Samana, Barbasal Alto, Barbasal Bajo, La
Florida, Chorrera, Chontapamapa, Cisne, Chozapamapa, y 28 de mayo.
Tutupali
Esperanza, Moradilla, Esperanza de Ortega, Ortega Alto, Ortega Bajo,
Sayupampa, San Vicente, Rabija, Santa Rosa, Tambola, Bellavista,
Retiro, Chontawayku y Tutupali.
Fuente: Plan de Desarrollo Cantonal Yacuambi, 2004.
Las condiciones actuales de este río están en consonancia con los niveles de
intervención que se producen en la zona, tanto por el crecimiento poblacional como por
la demanda de recursos y el desarrollo económico generado por la extracción minera. El
manejo de los recursos naturales, enfocados al desarrollo armonizado de la población
con igualdad de derechos, está ausente en esta zona. La explotación de los recursos y la
repercusión de la actividad minera sobre la naturaleza han dado como resultado
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condiciones desfavorables para un crecimiento igualitario y una conservación de los
recursos naturales. De ahí la necesidad de establecer un manejo adecuado de los
recursos hídricos, en especial de aquellos de los que se hace uso para consumo humano
y riego.
El estudio de la subcuenca del río Yacuambi requiere un proceso periódico de
recopilación de información, evaluación y propuesta para la recuperación del cauce.
Este estudio incluye un periodo de muestreo para establecer las características físico-
químicas y bacteriológicas del cauce, en base a cuyos resultados se determinará la
calidad del agua. A partir de los resultados se realizarán propuestas de tratamiento y
control de la contaminación, estableciendo adicionalmente las zonas y puntos de
monitoreo más idóneas.
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1.3 OBJETIVOS
Este trabajo de Fin de Máster, presentado como parte del Módulo de Aplicación del
Máster Universitario en Gestión Integral del Agua, pretende como objetivo principal
Evaluar la calidad del agua en la subcuenca del río Yacuambi y en función de los
resultados obtenidos realizar propuestas de control y tratamiento de la contaminación de
acuerdo a su uso para consumo humano, riego y actividades recreativas.
El desarrollo de este objetivo general implica la consecución de los siguientes objetivos
específicos:
1. Diseñar una red de monitoreo.
2. Realizar los análisis físico-químicos y microbiológicos adecuados que
permitan definir la calidad de agua en el cauce.
3. Determinar las posibles fuentes de contaminación.
4. Realizar propuestas de tratamiento y control de la contaminación del río
Yacuambi, en función los contaminantes que afecten al cauce y de los
vertidos que recibe.
Los objetivos planteados se justifican en base a la importancia que tiene este cauce en la
región de Ecuador tanto para la población de la zona como para el medio ambiente y los
recursos naturales que posee. Además, y dado que existe una gran carencia de
infraestructuras y servicios básicos, la mayoría de las viviendas no cuentan con
abastecimiento de agua potable dentro de sus viviendas o con sistema de eliminación de
las aguas residuales; la población consume agua de las quebradas y el control de la
contaminación de estas aguas redunda muy significativamente en la salud de sus
habitantes.
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1.4 MARCO LEGAL DEL AGUA EN ECUADOR
En Ecuador, el monitoreo del recurso “agua” está basado en la norma técnica ambiental
que consta en TULAS LIBRO VI ANEXO I. NORMA DE CALIDAD AMBIENTAL
Y DE DESCARGA DE EFLUENTES: RECURSO AGUA y las Ordenanzas 012 y 031
R.O: 26 de 05-07-99 y R.O: 74 de 10-05-00. Bajo el amparo de la Ley de Gestión
Ambiental y del Reglamento de la Ley de Gestión Ambiental para la Prevención y
Control de la Contaminación Ambiental, que es de aplicación obligatoria, esta norma
técnica establece:
a. Los límites permisibles, disposiciones y prohibiciones para las descargas en
cuerpos de aguas o sistemas de alcantarillado.
b. Los criterios de calidad de las aguas para sus distintos usos.
c. Métodos y procedimientos para determinar la presencia de contaminación.
Los análisis de laboratorio se realizan en base a los procedimientos establecidos y
publicados en “Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater”.
Además durante el proceso de muestreo se consideran las Normas del Instituto
Ecuatoriano de Normalización (INEN), relativas a:
− Norma Técnica Ecuatoriana NTE INEN 2169:98. Agua: Calidad del agua,
muestreo, manejo y conservación de muestras.
− Norma Técnica Ecuatoriana NTE INEN 2176:98. Agua: Calidad del agua,
muestreo, y técnicas de muestreo.
Si bien existen en el país reglamentos y normas de calidad del agua para consumo
humano y para las de vertido, no existen mecanismos de vigilancia y control para que
efectivamente se cumplan. Por ejemplo, en el Código de la Salud se determinan las
mismas sanciones para los efluentes domésticos que para los residuos industriales y las
multas que se imponen en caso de incumplimiento, no están actualizadas en su valor
real, resultando valores ínfimos que no establecen ninguna sanción real. La Ley de
Aguas, 2008 de la SENAGUA (Secretaría Nacional del Agua) tiene sanción formal pero
nunca se aplica; si se exigiera, los usuarios no la respetarían porque establece multas
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insignificantes. Ello implica que no existe ninguna preocupación para no contaminar las
aguas. La Secretaría Nacional del Agua (SENAGUA) fue creada el 27 de mayo de
2008, como la autoridad única del agua encargada de la delicada y perseverante tarea de
velar y de manejar con equidad la distribución del agua en Ecuador.
La SENAGUA fue concebida con el propósito de guiar y regir los procesos de gestión
de los recursos hídricos a nivel nacional de una manera sostenible e integral en los
ámbitos de las cuencas hidrográficas, por medio del Decreto Ejecutivo 1088 del 15 de
mayo del 2008, que entró en vigencia el 27 de mayo de ese año, con su publicación en
el Registro Oficial N° 346 (SENAGUA, 2010). Entre sus funciones están las de
planificar la mejor utilización y desarrollo de los recursos hídricos, realizar evaluaciones
e inventarios, determinar zonas de protección, declarar estado de emergencia y arbitrar
las medidas necesarias para proteger las aguas y procurar la protección y desarrollo de
las cuencas hidrológicas.
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1.5 DESCRIPCIÓN DEL ÁREA DE ESTUDIO
El área de estudio, se encuentra ubicada en el cantón Yacuambi, perteneciente a la
provincia de Zamora Chinchipe al sur de Ecuador (Figura 1). La cuenca del río
Yacuambi representa geográficamente la totalidad del cantón que lleva su mismo
nombre.
Figura 1.- Cuenca de drenaje del río Yacuambi y localización de los puntos de
muestreo
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Este río dispone de un cauce principal que nace en la cordillera Oriental con un
recorrido de norte a sur. En su trayecto recibe varios afluentes de la parte alta, media y
baja que llegan por los dos márgenes del cauce, para finalmente desembocar en el río
Zamora.
El área de la cuenca del río Yacuambi es de 126583 hectáreas, con un perímetro de
169,55 Km, el factor de forma es de 0,241 lo que indica que es una cuenca alargada. La
altura media de la cuenca es de 2200 m.s.n.m., con pendientes alrededor del 31,10% que
describen un relieve fuerte. Las coordenadas de situación corresponden a una longitud
de 78° 05’ hasta 78° 43’ W y latitud de 03° 31’ hasta 03° 50’ S.
La región posee un clima cálido húmedo, con fuertes precipitaciones en los meses de
enero a julio y con lluvias esporádicas de agosto a diciembre. La temperatura media
anual es de 22,2 ºC, la mínima de 10,2ºC y máxima de 33ºC. Existen vientos moderados
durante los meses de pocas lluvias con heladas durante el mes de septiembre.
Las actividades económicas más importantes que se desarrollan en este cantón son la
agricultura y la ganadería con un uso de aproximadamente el 40% de la superficie del
territorio del cantón Yacuambi. Hay una gran zona ocupada por bosque nativo (60%)
con un porcentaje considerable de tierras marginales con fuertes pendientes. Es por ello,
que no resulta factible incrementar la zona de producción agrícola y pecuaria; las
condiciones ecológicas frágiles y el deterioro de la fertilidad del suelo no lo permiten.
La minería también se desarrolla en esta parte del país. En la provincia de Zamora
Chinchipe, el 10,48% (17.562,656 hectáreas) de la superficie dedicada a esta actividad
se concentra en el cantón Yacuambi. La minería como actividad extractiva comprende
las fases de prospección, exploración, planificación, explotación y cierre. Por medio de
ésta se promueve la economía a nivel nacional y regional, y se generan ciertos
beneficios para la sociedad local en lo que a empleo se refiere. Sin embargo, la minería
produce impactos ambientales y sociales, como la sobreexplotación de los recursos
naturales y afectaciones a la salud humana (Fundación Ambiente y Sociedad, 2004) así
como daños ecológicos que afectan la biodiversidad terrestre, acuática y la salud de las
comunidades asentadas en la ribera del cauce. Los beneficios que genera se concentran
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a nivel nacional e internacional, mientras que los costos ambientales y humanos se
quedan en las áreas de explotación. Otras actividades económicas que influyen en el
desarrollo social del cantón son extracción de madera, caza, pesca, entre otras.
Esta zona está bastante aislada del resto de cantones y el nivel de aislamiento produce
un retraso en el desarrollo económico. Las vías de comunicación están muy limitadas y
la mejora de las mismas es una prioridad para el avance de la región.
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1.6 UBICACIÓN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO
Con la finalidad de evaluar la calidad de las aguas del río Yacuambi, se seleccionaron
seis puntos para el monitoreo del cauce. Se recolectaron las muestras, se realizaron los
análisis de los parámetros físico-químicos y microbiológicos y se establecieron los
índices de calidad del agua en cada punto muestreado.
En la Tabla 2 se detalla la ubicación de los sectores donde se realizó la toma de
muestras y se recogen diferentes fotografías de los puntos estudiados.
Tabla 2. Localización geográfica de los puntos de muestreo
PUNTO DE MUESTREO Nº 1
Parroquia: Tutupali
Sitio: Puente Tutupali
COORDENADAS GEOGRÁFICAS
Altitud: 1325,3 msnm
Latitud: S 03o31’53,4’’
Longitud: O 78o57’05,5’’
PUNTO DE MUESTREO Nº 2
Parroquia: La Paz
Sitio: El Puerto
COORDENADAS GEOGRÁFICAS
Altitud: 1027,5 msnm
Latitud: S 03o37’33,1’’
Longitud: O 78o55’57,5’’
PUNTO DE MUESTREO Nº 3
Parroquia: La Paz
Sitio: Napurak
COORDENADAS GEOGRÁFICAS
Altitud: 931,2 msnm
Latitud: S 03o45’09,5’’
Longitud: O 78o52’15,3’’
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Cont. Tabla 2. Localización geográfica de los puntos de muestreo
PUNTO DE MUESTREO Nº 4
Parroquia: Guadalupe
Sitio: Kurintza
COORDENADAS GEOGRÁFICAS
Altitud: 888 msnm
Latitud: S 03o46’15,8’’
Longitud: O 78o53’46,9’’
PUNTO DE MUESTREO Nº 5
Parroquia: Guadalupe
Sitio: San Antonio
COORDENADAS GEOGRÁFICAS
Altitud: 870,4 msns
Latitud: S 03o48’23,2’’
Longitud: O 78o53’57,1’’
PUNTO DE MUESTREO Nº 6
Parroquia: Guadalupe
Sitio:
Unión del río Zamora y
Yacuambi, sector La
Saquea
COORDENADAS GEOGRÁFICAS
Altitud: 826,2 msnm
Latitud: S 03o54’59,1’’
Longitud: O 78o50’09,8’’
La determinación de la calidad del agua en cada uno de los puntos de muestreo
indicados del río Yacuambi abre la posibilidad de establecer en un futuro, un modelo de
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método integrado que determine de manera más fiable la degradación de la calidad del
agua por las actividades antropogénicas de la zona.
En las fotografías 1 a 5 se han recogido algunos problemas o procesos de contaminación
identificados en los diferentes puntos muestreados.
Foto 1.- Personas duchándose y lavando ropa en la orilla del rio
(Punto 1: Tutupali - Puente de Tutupali)
Foto 2.- Acumulación de basura en el cauce
(Punto 3: La Paz – Napurak)
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Foto 3.- Dragado de sedimentos, donde se aprecian galones de
combustible para funcionamiento del motor
(Punto 3: La Paz – Napurak)
Foto 4.- Extracción de material para fines de construcción
(Punto 5: Guadalupe – San Antonio)
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Foto 5.- Residuos de aceites dispersos en el agua del cauce
(Punto 6: Unión del río Zamora y Yacuambi, Sector la Saquea)
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Capítulo2222
Metodología para la
caracterización de las
aguas del río Yacuambi
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2.1 INTRODUCCIÒN SOBRE EL MUESTREO
El programa de caracterización o muestreo es el primer paso para la determinación de la
calidad de una fuente de agua, por lo que se debe garantizar la validez de los resultados,
evitando que la muestra se deteriore o contamine antes de llegar al laboratorio, ya que la
calidad de los resultados, depende de la integridad de las muestras que ingresan al
mismo.
El procedimiento seguido para la toma de muestras se realizó en base a las normas
vigentes en el país:
− Norma Técnica Ecuatoriana NTE INEN 2169:98. Agua: Calidad del agua, muestreo,
manejo y conservación de muestras (INEN, 1998)
− Norma Técnica Ecuatoriana NTE INEN 2176:98. Agua: Calidad del agua, muestreo,
técnicas de muestreo (INEN, 1998).
2.2 EQUIPOS Y MATERIALES PARA EL MUESTREO
a) Material para la toma de muestras:
Envases para toma de muestra Muestreador metálico Nevera (Cooler) con bolsas refrigerantes o bolsas con hielo Frasco o balde para componer la muestra Termómetro digital Termómetro ambiental pH-metro Oxímetro Sistema de posicionamiento global GPS
b) Equipo de seguridad personal:
Guantes Mandil blanco Mascarillas Botas Capa impermeable
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2.3 TIPOS DE MUESTRAS
Los tipos de muestras más comunes en análisis y caracterización de muestras de agua
pueden ser: muestra puntual, compuesta o integrada.
a) Muestra puntual: Es aquella que representa la composición de la muestra en el
momento en que se realiza el muestreo.
b) Muestra compuesta: se recomienda tomar este tipo cuando la composición de la
muestra presenta gran variabilidad. Una muestra compuesta se conforma por pequeñas
muestras individuales que se toman ya sea proporcionales al flujo o al tiempo.
- Proporcionales al flujo: tomando muestras de igual volumen, pero a intervalos
de tiempo que son inversamente proporcionales al caudal del flujo, menor los
intervalos de tiempo de muestreo y viceversa.
- Proporcionales al tiempo: se toman las muestras a intervalos de tiempo
constantes, pero el volumen de la muestra es proporcional al caudal del flujo.
c) Muestra integrada: Es aquella que se forma por la mezcla de muestras puntuales
tomadas de diferentes puntos simultáneamente, o lo más cerca posible. Un ejemplo de
este tipo de muestra ocurre en un río o corriente que varía en composición de acuerdo
con el ancho y la profundidad.
En este trabajo se tomaron muestras puntuales, pero en diferentes momentos del tiempo,
con objeto de estudiar la variabilidad espacio-temporal de los parámetros.
2.4 IDENTIFICACIÓN DE MUESTRAS
Para identificar las muestras se colocaron etiquetas en los envases para las muestras.
Estas etiquetas deben contener como mínimo la siguiente información: número de
muestra, fecha de muestreo, hora y tipo de muestra. Adicionalmente se realizó también
una hoja de registro para identificar todos los datos geográficos que identifican los
puntos de muestreo, y que en un momento dado puedan permitir repetir el muestreo.
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En esta hoja de registro (Anexo 1) se incluyen también la temperatura ambiente, la
temperatura de la muestra de agua, el oxígeno disuelto, las coordenadas geográficas del
lugar en que se tomó la muestra, la cota de altura en msnm (metros sobre el nivel del
mar) y las observaciones relativas a la toma de muestra (tales como identificación de
vertidos y de posibles fuentes de contaminación).
2.5 ENVASES PARA LA TOMA DE MUESTRAS
Los envases para la toma de muestra de las aguas para su posterior análisis físico-
químico que se utilizaron fueron envases de gaseosa, bien lavados, con una capacidad
de 2 litros; cada uno de ellos se lavó con detergente no iónico libre de metales,
amoniaco y fosfato; se enjuagaron con agua del grifo y por último se les dio un
enjuague con agua destilada. Para los análisis microbiológicos se utilizaron frascos con
capacidad de 250 a 300 ml, de plástico, esterilizados, con tapa hermética y de boca
ancha (INEN, 1998).
En el caso del análisis de metales pesados y pesticidas se utilizaron envases de vidrio
ámbar para así evitar el paso de la luz, siguiendo las recomendaciones del laboratorio.
En el momento de tomar la muestra se enjuagó el envase tres veces con el agua muestra
con objeto de evitar que el envase se contamine accidentalmente durante el muestreo o
que estuviera mal lavado. Cada enjuague se vertió lejos del punto de muestreo para así
procurar que regresen, aguas abajo a la corriente del cauce y no contaminen el agua a
tomar.
2.6 PROCEDIMIENTO DE TOMA DE MUESTRAS
Las muestras deben ser representativas de las condiciones que existan en el punto y hora
de muestreo y tener el volumen suficiente para efectuar en él las determinaciones
correspondientes. Para la toma de muestras en el río Yacuambi, se localizaron tramos
rectos del río y áreas con poca turbulencia, considerando la profundidad, la velocidad de
la corriente, y la distancia comprendida entre las orillas. Además, al tomar la muestra se
ubicó el punto en dirección opuesta al flujo del cauce.
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Para la toma de parámetros in-situ se introdujeron directamente los equipos de medición
como el medidor de Oxígeno Disuelto y el Termómetro, en la mitad de la sección
transversal, a una profundidad entre 20 cm y 30 cm de la superficie. En las Fotos 6 a 11
se pueden observar diferentes momentos de la toma de muestra en función del punto de
estudio y del parámetro analizado.
2.7 TRANSPORTE Y PRESERVACIÓN DE LAS MUESTRAS
Una vez recolectadas las muestras, éstas fueron transportadas hasta el laboratorio de
análisis en el menor tiempo posible. Para preservarlas, se conservaron en un baño de
hielo a 4ºC, y en la oscuridad para evitar la descomposición orgánica de la muestra.
El tiempo transcurrido desde la toma de la primera muestra hasta la entrega al
laboratorio fue de 8 horas.
Foto 6. - Recolección de la muestra para análisis físico-químicos en el punto de
muestreo 1. CANTÓN: Yacuambi; PARROQUIA: Tutupali; SITIO: Puente de
Tutupali
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Foto 7.- Medición In situ de Oxígeno Disuelto en el punto de muestreo 2. CANTÓN:
Yacuambi; PARROQUIA: 28 de mayo; SITIO: El Puerto.
Foto 8.- Medición In situ de Oxígeno Disuelto en el punto de muestreo 3. CANTÓN:
Yacuambi; PARROQUIA: La Paz; SITIO: Napurak.
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Foto 9.- Toma de muestra para análisis de metales pesados en el punto de muestreo 4.
CANTÓN: Zamora; PARROQUIA: Guadalupe; SITIO: Kurintza.
Foto 10.- Toma de coordenadas geográficas con GPS en el punto de muestreo 5.
CANTÓN: Zamora; PARROQUIA: Guadalupe: SITIO: San Antonio.
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Foto 11.- Toma de muestra para análisis físico-químicos en el punto de muestreo 6.
CANTÓN: Zamora; PARROQUIA: Guadalupe: SITIO: Unión del río Zamora y
Yacuambi, Sector la Saquea.
2.8 SEGURIDAD EN EL MUESTREO
Los sitios en los que se lleva a cabo la toma de muestras, con frecuencia, no ofrecen las
condiciones mínimas para asegurar la integridad de los responsables del muestreo en
espacios que pueden estar sucios, desordenados, con objetos contaminados, entre otras
cosas.
Por lo anterior, se aplicaron ciertos procedimientos de seguridad con el fin de minimizar
riesgos, al muestrear con la protección adecuada.
Durante el muestro se utilizó un mandil blanco para proteger la ropa de cualquier tipo
de contaminación al que se pudo estar expuesto, adicionalmente se usaron guantes de
nitrilo para evitar el contacto de la piel con el agua muestra, mascarilla por la posible
presencia de gases que pudieran ser tóxicos o biológicamente infecciosos, y botas de
hule con protección sanitaria; también se llevaron impermeables de plástico para
protección contra la lluvia.
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Foto 12.- Elementos de seguridad durante el muestreo.
2.9 PARÁMETROS ANALIZADOS EN LABORATORIO
En los laboratorios del Instituto de Química Aplicada, pertenecientes a la Universidad
Técnica Particular de Loja se realizaron los análisis de cada una de las muestras
tomadas. Los parámetros analizados en el laboratorio fueron: oxígeno disuelto, pH,
DBO5, Nitratos, Fosfatos, Temperatura, Turbidez, Sólidos Totales, Coliformes Totales,
metales pesados y pesticidas órgano-clorados y órgano-fosforados. Los métodos de
análisis para cada uno de los parámetros se detallan en la Tabla 3.
En la Tabla 4 se han incluido los límites máximos establecidos en la normativa
ecuatoriana sobre calidad ambiental del recurso “agua”.
Hay que mencionar que las concentraciones máximas permisibles de pesticidas, hacen
referencia a la sumatoria de las concentraciones de los diferentes pesticidas de acuerdo a
su clasificación natural.
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Tabla 3. Métodos de análisis de los parámetros evaluados
PARÁMETROS MÉTODO EQUIPO
UTILIZADO NORMA
PARÁMETROS IN SITU
pH Potenciométrico pH-metro ---
Temperatura Medida de la Temperatura
Termómetro portátil ---
Oxígeno Disuelto Potenciométrico Oxímetro HACH LANGE HQ 40d
PARÁMETROS FÍSICO-QUÍMICOS, METALES Y PESTICIDAS
Turbidez Espectrofotométrico Turbidímetro ---
Sólidos totales Gravimétrico Balanza, bureta, etc APHA 2540 B
Nitrógeno de nitrito
Espectrofotométrico Espectrofotómetro HACH DR 2801
Nitrógeno de nitrato
Espectrofotométrico Espectrofotómetro) HACH DR 2802
Cloruro Precipitación (volumétrico)
Balanza, bureta, etc. APHA 4500 CL
Dureza Total Volumétrico Balanza, bureta, etc. APHA 2340c Sulfatos Espectrofotométrico Espectrofotómetro HACH DR 2801
DBO Respirométrico Sistema Oxitop MNMA
DQO Espectrofotométrico Espec-Nova-400 MNMA
Coliformes totales
Standard Methods - AOAC 991.15
Cadmio
Absorción Atómica Espectrofotómetro de Absorción Atómica
NMX-AA-051-SCFI-2001
Hierro
Plomo
Magnesio
Mercurio
Arsénico
Pesticidas Organoclorados y Organofosforados
Cromatografía de gases
Cromatógrafo NMX-AA-071-1981
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Tabla 4. Normativa de Calidad Ambiental para el recurso Agua relativa los parámetros
físico-químicos
Tabla 5. Norma de Calidad Ambiental para el recurso Agua relativa a metales pesados
y pesticidas
PARÁMETROS FÍSICO-
QUÍMICOS
NORMA DE CALIDAD AMBIENTAL PARA EL RECURSO AGUA (mg/l)
AGUA PARA RIEGO
DESCARGA A UN CUERPO DE AGUA DULCE
LÍMITES AGUA DE CONSUMO
HUMANO MIN MAX MIN MAX MIN MAX
pH 6 9 5 9 6 9 Turbiedad - - - - - 100 Dureza Total - - - - - 500 Nitrato - - - 10 - 10 Nitrito - - - 1 - 1 Hierro Total - 5.0 - 10 - 1 Oxígeno Disuelto - - - - - > 6 % Saturación O.D. - - - - - > 80% Sólidos totales - 3000 - 1600 - 1000 DBO - - - 100 - 2 DQO - - - 250 - - Coliformes totales - 1000 - - - 50
Temperatura - - - - - Condición
Natural ±3 °C
METALES PESADOS (mg/l) Bario - 1.0 - 2.0 - 1.0 Mercurio - 0.001 - 0.005 - 0.001 Plomo - - - 0.2 - 0.05 Cadmio - 0.01 - 0.02 - 0.01 Cromo - 0.1 - 0.5 - 0.05 Arsénico - 0.1 - 0.1 - 0.05 Magnesio - - - - - -
PESTICIDAS (mg/l) Órgano-clorados - 0.2 - 0.05 - 0.01 Órgano-fosforados - 0.1 - 0.1 - 0.1
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Capítulo3333
RESULTADOS DE LOS
ANÁLISIS REALIZADOS
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3.1 INTRODUCCIÓN
En este capítulo del Trabajo Fin de Máster se presentan los resultados obtenidos del
estudio de la calidad de las aguas del río Yacuambi. Ésta es la única base de datos con la
que se ha trabajado ya que no se cuenta con un registro anterior al estudio. En el Anexo
2, se encuentra un resumen de los resultados del análisis de laboratorio de cada una de
las muestras donde se indica también el límite de detección de los equipos utilizados
durante el análisis.
Cada uno de los parámetros analizados y su concentración, se constituyen en
indicadores de la calidad del agua, a partir de los cuales se puede definir si el agua está
contaminada.
Para el estudio espacio-temporal de la calidad del agua de este cauce se realizaron
muestreos en las siguientes fechas en los seis puntos definidos anteriormente:
� 8 de septiembre de 2011
� 22 de septiembre de 2011
� 29 de septiembre de 2011
� 6 de octubre de 2011
3.2 INDICADORES FÍSICOS
Los indicadores físicos, se refieren a los parámetros que definen el aspecto del agua
como: color, olor, sabor, etc., de aquí que la presencia de sólidos puede alterar una
apreciación visual. Los parámetros analizados fueron:
3.2.1 Color
El agua para consumo humano, por definición debe ser incolora, por tanto, la presencia
de color indica la presencia de sustancias en el agua, la cual se verá reflejada en la
concentración de turbidez y sólidos, en tanto que sustancias disueltas dan lugar al
denominado color verdadero y que hace referencia a la presencia de compuestos
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orgánicos a causa de la vegetación; el color artificial se debe a los vertidos que proveen
color al agua (Potch M., 1999).
La determinación del color se realizó con un espectrofotómetro, analizando el espectro
de luz que atraviesa la muestra previamente filtrada, para determinar el color verdadero.
Figura 2.- Evolución de la concentración de color en el río Yacuambi
La concentración de color osciló entre 13 a 99 unidades de color, con una media de
45,56 unidades de color, según se observa en la Figura 2. Puede verse un aumento
súbito de color en el último punto de muestreo, posiblemente debido a que esta muestra
fue tomada donde se produce la unión de los Ríos Zamora y Yacuambi, pudiendo ser el
Río Zamora el que produzca este aumento significativo de color. Pese a esta
observación la concentración de color en todos los puntos está dentro de los límites
permisibles por la normativa vigente del medio ambiente que es de 100 unidades de
color.
3.2.2 Conductividad Eléctrica
La conductividad eléctrica hace referencia a la capacidad del agua para conducir la
electricidad debido a la presencia de sales disueltas que puede contener; su
concentración se puede alterar por la presencia de vertidos salinos que limitan su uso
para fines de riego (Bianchini F, 2006).
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Para determinar la conductividad eléctrica se utilizó un conductímetro Easy Metler,
siendo un parámetro que requiere corrección por efecto de la variación en la
temperatura.
La conductividad eléctrica varió de 1,97 a 29,64 µs/cm3, con una media de 13,82
µs/cm3. Tal y como se observa en la Figura 3, existe un aumento súbito de la
conductividad en el tercer y último punto de muestreo; en la normativa ecuatoriana, no
se establece el límite máximo permisible de este parámetro.
Figura 3.- Evolución de la conductividad eléctrica en el río Yacuambi
3.2.3 Sólidos Totales
La concentración de sólidos totales varió en las muestras analizadas de 8 a 71 mg/l, con
una media de 37,87 mg/l (Figura 4). La concentración de sólidos totales aumentó a lo
largo del cauce, aunque cumplió con el límite máximo permisible de acuerdo con la
Normativa de Medio Ambiente que regula los Criterios de Calidad de agua para riego
siendo de 3000 mg/l; para uso agrícola es de 1600 mg/l; y los límites de calidad para
agua de consumo humanos es de 1000 mg/l.
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Figura 4.- Evolución de la concentración de sólidos totales en el río Yacuambi
3.2.4 Temperatura
La temperatura evolucionó en un rango de 15 a 24,7 °C (ver Figura 5), y aumentó a
medida que se avanzaba hacia el sitio la Unión del Río Yacuambi con el Río Zamora
(punto de muestreo 6). Además se sabe que influye en el aumento del pH, afecta los
procesos físicos, los procesos químicos (pH, equilibrio de ionización o concentración de
amoníaco, velocidades de reacción) y los procesos biológicos (tasa metabólica,
descomposición de materia orgánica) y por lo tanto, repercute en el efecto de los
agentes contaminantes.
Figura 5.- Evolución de la temperatura en el río Yacuambi
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3.2.5 Turbidez
La turbidez hace referencia a la presencia de sólidos, especialmente coloidales y se mide
con un turbidímetro que determina la longitud de un rayo de luz que se refleja al pasar
por la muestra de agua. Su concentración se ve afectada por la erosión del suelo y el
transporte de materia coloidal como el constituido por arcilla, fibras vegetales, etc. La
turbidez es una medida importante en aguas potables, pues las pequeñas partículas
coloidales, pueden portar gérmenes patógenos. En cursos naturales de agua la turbidez
produce una falta de penetración de la luz natural y por tanto modifica la flora y fauna
subacuática. Existen algunas interferencias importantes de considerar en las mediciones
de turbidez, como son: la presencia de residuos flotantes o sedimentados, la coloración
y las burbujas de aire presentes en la muestra de agua para analizar.
Figura 6.- Evolución de la concentración de turbidez en el río Yacuambi
En las muestras recolectadas la turbidez del agua fue baja debido a que no existía una
alta concentración de sólidos ni arrastre de material que pudiera provocar alta turbidez
en el agua (ver Figura 6). Igualmente, este parámetro fue bajo con respecto a los límites
permisibles contemplados por la Normativa Ambiental vigente en Ecuador para agua de
consumo humano que es de 100 NTU, aunque supera en gran parte de los puntos de
muestreo el valor de 5 NTU, valor máximo para aguas de consumo humano.
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3.3 INDICADORES QUÍMICOS
La cantidad de compuestos químicos existentes en nuestro planeta es innumerable, por
lo que es difícil identificar la presencia de cada uno de ellos en el agua además del
impacto que puedan provocar. Puesto que la alteración de la calidad del agua puede
venir provocada tanto por efectos naturales como por la actuación humana derivada de
la actividad industrial, agropecuaria, doméstica o de cualquier otra índole, no es de
extrañar que el análisis de los parámetros de calidad del agua se deba realizar a todo tipo
de aguas, independientemente de su origen.
En este trabajo se evaluaron los indicadores químicos: cloruro, DBO, DQO, dureza,
fosfatos, nitritos, nitratos, oxígeno disuelto, pH y porcentaje de saturación de oxígeno.
A continuación se describe la evolución espacio-temporal de estos parámetros
analizados en los puntos de muestreo establecidos.
3.3.1 Cloruros
El ion cloruro es una sustancia altamente soluble y estable que con frecuencia se utiliza
como indicador o trazador ideal de contaminación antrópica en evaluación ambiental.
Un contenido elevado de este parámetro interfiere en el desarrollo y crecimiento
vegetal. Además, las concentraciones elevadas de cloruro corroen tuberías y estructuras
metálicas.
En el río Yacuambi, se encontró que la concentración de cloruros estaba entorno a 0,6
mg/l y 15 mg/l (Figura 7).
Figura 7.- Evolución de la concentración de cloruros en el río Yacuambi
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Los resultados obtenidos indican que la concentración de cloruros era baja con respecto
a los límites permisibles para esta zona para descarga a cuerpos de agua dulce que es de
1000 mg/l, para consumo humano y de 250 mg/l para uso doméstico. Por tanto su
contaminación se puede considerar despreciable.
3.3.2 Demanda Bioquímica de Oxígeno
El factor DBO5 es una medida aproximada de la cantidad de materia orgánica
biodegradable y es definido como la cantidad de oxígeno necesaria para oxidar,
mediante bacterias aeróbicas, la materia orgánica presente hasta una forma inorgánica
estable (Sawyer, 1978).
Figura 8.- Evolución de la concentración de DBO5 en el río Yacuambi
La concentración de DBO5 alcanzó valores entre 1,70 mg/l y 11,63 mg/l (Figura 8). Los
límites permisibles para descarga en los cuerpos de agua dulce es de 100 mg/l, por lo
que en este caso no se superó este valor. Sin embargo, el límite para consumo humano
es de 2 mg/l, por lo que en relación a este parámetro estas aguas no fueron apta para el
consumo.
3.3.3 Demanda Química de Oxígeno
La demanda química de oxígeno DQO, hace referencia a la materia orgánica que se
puede oxidar en presencia del oxígeno, por lo general, presenta valores superiores a la
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DBO, porque oxida toda la materia orgánica tanto de origen biológico como de origen
sintético.
Figura 9.- Evolución de la concentración de DQO en el río Yacuambi
De esta forma, los valores encontrados para la concentración de DQO variaron entre 10
mg/l y 64 mg/l, con una media de 38,25 mg/l. Como se aprecia en la Figura 9 la
concentración de DQO varió a lo largo del cauce con valores más elevados en el
muestreo segundo y para el punto 3, aunque sus concentraciones se encuentran dentro
de los límites permisibles para los diferentes usos de agua según la normativa legal que
corresponde a un valor de 250 mg/l.
3.3.4 Dureza
Una de las características del agua es la capacidad que tiene de formar espuma con el
jabón, estando afectada por la presencia de calcio y magnesio, es decir, por la dureza del
agua (Potch M., 1999).
Las muestras de agua analizadas presentaron una concentración de dureza blanda, con
un rango de 2,5 mg/l a 20 mg/l (Figura 10), estando dentro de los límites permisibles
para descarga a cuerpos de agua dulce que es de 500 mg/l. Se puede concluir además
que el agua era buena para riego.
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Figura 10.- Evolución de la concentración de dureza en el río Yacuambi
3.3.5 Fosfatos
Los compuestos del fósforo son nutrientes de las plantas y coadyuvan al crecimiento de
algas en las aguas superficiales. Dependiendo de la concentración de fosfato existente
en el agua, pueden llegar a producirse procesos de eutrofización en el cauce. Los
compuestos de fosfato que se encuentran en las aguas residuales o se vierten
directamente a las aguas superficiales suelen tener su origen en: fertilizantes, excretas
de humanos y animales, detergentes y productos de limpieza.
Figura 11.- Evolución de la concentración de fosfatos en el río Yacuambi
La concentración de fosfatos que se obtuvo en este estudio osciló en un rango de 0,12
mg/l a 0,62 mg/l, como se aprecia en la Figura 11. El tercer punto de muestreo presentó
valores más altos de concentración, lo que indicaba la presencia de un foco puntual de
contaminación que coincidía con el vertido de las aguas residuales de la comunidad de
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Napurak en el cantón La Paz; en la normativa ecuatoriana vigente no se establece el
límite máximo permisible de este parámetro.
3.3.6 Nitritos y Nitratos
El valor de la concentración de nitratos y nitritos en aguas es un indicador de
contaminación orgánica. Los contenidos en nitratos tienen habitualmente un origen en la
nitrificación del nitrógeno orgánico o también pueden proceder de la disolución de los
terrenos que los contiene. A su vez, los nitritos provienen de una oxidación incompleta
del amoníaco o de una reducción de los nitratos bajo la influencia de una acción
desnitrificante.
En el agua analizada en los diferentes puntos se encontraron concentraciones bajas tanto
de nitritos 0,047 mg/l, como de nitratos con 2,6 mg/l (Figura 12), dado que estos
parámetros que no exceden de 1 mg/l y 10 mg/l respectivamente, valores que
corresponden a los límites permisibles de nitritos y nitratos, y que se encuentran en la
normativa legal vigente del Ministerio del Ambiente.
Figura 12.- Evolución de la concentración de nitritos y nitratos en el río Yacuambi
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3.3.7 Oxígeno Disuelto
El oxígeno disuelto (OD) en el agua depende de factores tales como la temperatura,
presión atmosférica y salinidad y depende del origen del agua. Así por ejemplo, a
mayores temperaturas la cantidad de oxígeno en el agua puede disminuir de manera
significativa. También en las aguas profundas o con menor renovación tiende a
disminuir y pueden llegar a darse fenómenos anaerobios. La presencia de oxígeno es
esencial en riachuelos y lagos y determinan su salud ambiental. El nivel de oxígeno
disuelto puede ser un indicador de cuán contaminada está el agua y cuán bien puede dar
soporte esta agua a la vida vegetal y animal.
Las muestras de agua analizadas presentaron valores de OD en el rango de 8,63 mg/l a
9,28 mg/l. El mínimo valor permisible según la Normativa Ambiental vigente de
diciembre de 2002 establece que el valor de OD no debe ser menor a 6 mg/l, por lo que
todas las muestras cumplieron con lo establecido en la norma (Figura 13).
Figura 13.- Evolución de la concentración de oxígeno disuelto en el río Yacuambi
3.3.8 pH
El pH del agua representa su acidez o alcalinidad, cuyo factor más importante es
habitualmente la concentración en anhídrido carbónico debida a la mineralización total.
Este poder tampón o regulador del agua controla los valores de pH así como las
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reacciones químicas debidas la formación, alteración y disolución de los minerales
presentes en las aguas. La tendencia de los valores de pH en las aguas analizadas se vio
incrementada desde un estado neutro hasta uno ligeramente alcalino, variando en un
rango de 6,0 a 7,58 (Figura 14). Estos valores cumplieron con éxito la Normativa
ambiental vigente que establece un valor de pH adecuado entre 6 y 9 para aguas de
consumo humano.
Figura 14.- Evolución de la concentración de pH en el río Yacuambi
3.3.9 Porcentaje de Saturación
El nivel de saturación de oxígeno es el máximo oxígeno disuelto que puede estar
disuelto en un agua en función de la temperatura y presión atmosférica en que se
encuentre (a menor temperatura y mayor presión atmosférica, mayor será en nivel de
saturación) (Potch M., 1999).
Para el agua analizada el porcentaje de saturación de OD que se encontró fue siempre
mayor al 80% (Figura 15), cumpliendo con el mínimo valor permisible según la
Normativa Ambiental vigente de diciembre de 2002, y para todas las muestras
estudiadas.
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Figura 15.- Evolución del porcentaje de saturación en el río Yacuambi
3.4 INDICADORES MICROBIOLÓGICOS
3.1.1 Coliformes Totales
El recuento de coliformes reagrupra un cierto número de especies bacterianas cuya
característica básica se asocia con la fermentación de la lactosa con producción de
gas. Su estudio es muy tradicional y de gran utilidad en salud e higiene.
En este estudio, la concentración de coliformes totales varió entre 290 a 8200
UFC/100 ml, con una media de 1260 UFC/100 ml (Figura 16)
Figura 16.- Evolución de concentración de coliformes totales en el río Yacuambi
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Como se aprecia en la Figura 16, la concentración de coliformes totales aumentó a lo
largo del cauce y alcanzó su máxima concentración en el último punto de muestreo. En
este caso la concentración registrada para este parámetro excedió considerablemente el
límite máximo permisible que de acuerdo con la Normativa del Medio Ambiente para
aguas de riego es de 1000 UFC/100 ml y para aguas de consumo humano es de 50
UFC/100 ml, lo que claramente determina la contaminación fecal presente en estas
muestras.
3.5 METALES PESADOS
La presencia de metales en concentraciones bajas es adecuada para el normal
funcionamiento de los sistemas acuáticos ya que intervienen en las funciones
fisiológicas de los organismos vivos, regulando determinados procesos metabólicos.
Vertidos industriales o residuos mineros pueden incrementar considerablemente la
concentración de metales alcanzando niveles tóxicos, problema que se ve agravado por
la persistencia que estos tienen en el medio, permitiendo su incorporación a procesos de
biomasa y consecuentemente pudiendo producir fenómenos de bioacumulación.
La concentración de los metales pesados que se analizaron en este estudio fueron:
magnesio, plomo, cadmio, arsénico. Los valore encontrados estuvieron dentro de los
límites permisibles para descarga a cuerpos de agua dulce, para agua de consumo
humano y para agua de reutilización para riego o uso agrícola. Por lo tanto no se ha
considerado significativo realizar sus gráficas. En el caso de los metales bario, mercurio
y cromo la concentración estuvo por debajo del límite de detección (ver Anexo 2) y se
puede concluir que no había contaminación por presencia de estos contaminantes.
3.6 PESTICIDAS
Los pesticidas son productos químicos empleados en procesos agrícolas para mejorar la
producción de cultivos, son poco biodegradables y persistentes en el medio ambiente,
tienen la capacidad de biomagnificarse y son altamente tóxicos para el ser humano.
Cabe destacar que los pesticidas organoclorados, como el DDT, son altamente tóxicos y
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repercuten gravemente en el medio ambiente por lo que su uso es censurado, a pesar de
su eficiencia para la erradicación de plagas y bajo costo.
Con respecto a los pesticidas organoclorados totales analizados (Aldrin, Heptacloro, 4-
4 DDT, Alfa HCH, Metoxicloro, 2-4 DDT, Alfa HCH, Beta HCH) y pesticidas
organofosforados (Fonofos, Fenamifos, Quinalfos, PurifChloros metil, Malation,
Dimetoato, Carbofenotion, diazinon), se encontraron a concentraciones muy bajas y
estuvieron siempre dentro del límite máximo permisible para descarga a cuerpos de
agua dulce, agua de consumo humano y para uso agrícola.
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Capítulo4444
Índice de Calidad
de Agua en el río
Yacuambi
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4.1 INTRODUCCIÓN
Cuando se aprecia un agua por simple inspección visual se puede caer en el error de al
verla transparente creer que es de buena calidad, pero transparencia no es sinónimo de
pureza, por lo que es necesario acudir a un análisis de laboratorio que permita
determinar las sustancias que tiene y la concentración de las mismas.
El incremento de los niveles de contaminación en los cauces naturales a causa de
actividades antropogénicas, ha generado la necesidad de cuantificar la calidad de los
cuerpos de agua. Por otra parte, debido a las diferencias de interpretación entre los
encargados de tomar decisiones, los expertos en el tema y del público en general, se ha
venido generando un esfuerzo creciente para desarrollar un sistema indicador que
agrupe los parámetros contaminantes más representativos dentro de un marco de
referencia unificado.
De ahí que el Índice de Calidad del Agua (ICA), como forma de agrupación
simplificada de algunos parámetros, indicadores de un deterioro en calidad del agua,
constituye una manera de evaluar y comunicar la calidad de los cuerpos de agua. Sin
embargo, para que dicho índice sea práctico debe reducir la enorme cantidad de
parámetros a una forma más simple, y durante el proceso de simplificación algo de
información puede ser sacrificada. Por otro lado si el diseño del ICA es adecuado, el
valor arrojado puede ser representativo e indicativo del nivel de contaminación y
comparable con otros para enmarcar rangos y detectar tendencias.
4.2 ANTECEDENTES
La primera metodología empleada para el cálculo del índice de calidad del agua, fue
desarrollada por Horton en 1965 y por Liebman en 1969. Posteriormente en 1975 la
Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos (NSF por sus siglas en inglés)
realizó un estudio para evaluar el ICA en base a nueve parámetros: DBO5, Porcentaje de
Saturación de Oxígeno, Coliformes Totales, Nitratos, pH, variación de Temperatura,
Sólidos Totales, Fosfatos y Turbidez. Este índice se ha convertido en el más utilizado en
los Estados Unidos (Tetzaguic, C., 2002).
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En cuanto a la ponderación, Ott en 1978 indica que el asignar pesos específicos a los
parámetros tiene el riesgo de introducir cierto grado de subjetividad en la evaluación,
pero por otro lado sugiere que es importante una asignación racional y unificada de
dichos pesos de acuerdo al uso del agua y en función de la importancia de los
parámetros en relación al riesgo que implique el aumento o disminución de su
concentración.
El intento más reciente para el diseño del ICA es el de Dinius en 1987. En dicho trabajo
y usando el método Delphi de encuestas (creado con el objeto de integrar efectivamente
las opiniones de expertos y eliminar las desventajas colaterales de un proceso de
comité), agrupó a un panel de expertos en cuestiones ambientales y diseñó, a partir de la
evaluación e interacción de ellos, un ICA de tipo multiplicativo y con asignación de
pesos específicos por parámetro.
4.3 METODOLOGÍA DE CÁLCULO DEL ICA
Al determinar el ICA, se determina un valor entre 0 y 100 que cuantifica la calidad del
agua, a partir de la siguiente ecuación:
∑
∑
=
=
=n
1ii
n
1iIi
W
WIICA
donde:
Wi: son los pesos específicos asignados a cada parámetro ponderados entre 0 y 1,
la sumatoria debe ser igual a 1.
Ii: representa la calidad del parámetro (i), en función de su concentración y cuya
calificación oscila entre 0 y 100. Se obtiene de las gráficas que se detallan a
continuación.
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4.3.1 Asignación de pesos a cada parámetro (Wi)
La ponderación de pesos para cada parámetro está en relación directamente
proporcional a la importancia del parámetro en cuanto a su incidencia como variable en
la determinación del ICA. En el caso de aguas superficiales pareciera que el mayor peso
debería ser otorgado a los parámetros OD, DBO5, Nitratos, Sólidos totales y Coliformes
totales (Torres P., et all, 2009). Los pesos asignados a cada parámetro se desglosan en la
Tabla 6.
Tabla 6: Pesos asignados a cada parámetro.
Fuente: Fernández N., et all., 2005
4.3.2 Estimación del parámetro de calidad (Ii)
La investigación desarrollada por Ott en 1978 dio como resultado una serie de curvas
funcionales que se promediaron de tal manera que se obtenía una curva promedio para
cada parámetro evaluado. Dichas curvas fueron representadas a través del uso de la
media aritmética con un límite de confianza del 80% sobre este valor medio.
A continuación se presentan las curvas de función para cada parámetro, a partir de las
indicaciones de Fernández N., et all., 2005 (Figuras 17 a 25).
Parámetro Peso
Oxígeno Disuelto 0.17
Coliformes totales 0.16
pH 0.11
Demanda Bioquímica de Oxígeno 0.11
Variación de Temperatura 0.10
Fosfatos 0.10
Nitratos 0.10
Turbidez 0.08
Sólidos Totales 0.07
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Figura 17.- Curva de función de calidad NSF
de Demanda Bioquímica de Oxígeno
Figura 18.- Curva de función de calidad NSF
de Porcentaje de saturación
Figura 19.- Curva de función de calidad
NSF de Coliformes totales
Figura 20.- Curva de función de calidad
NSF de Nitratos
Figura 21.- Curva de función de calidad
NSF de pH
Figura 22.- Curva de función de calidad
NSF de Variación de temperatura
(Tambiente – Tmuestra)
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Una vez determinado el ICA, este resultado se interpreta de acuerdo a la siguiente
escala de clasificación, en la que el fondo representa el color correspondiente a cada
rango:
Tabla 7.- Rangos de clasificación ICA
ICA CRITERIO GENERAL
85 –100 Excelente
70 - 84 Buena
50 – 69 Media
30 - 49 Mala
0 - 29 Muy mala
Fuente: Fernández N., et all., 2005
Figura 23.- Curva de función de calidad
NSF de Sólidos totales
Figura 24.- Curva de función de calidad
NSF de Fosfatos
Figura 25.- Curva de función de calidad NSF de Turbidez
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A continuación se muestra el comportamiento espacial y temporal del parámetro de
calidad de los indicadores empleados en la determinación del ICA del río Yacuambi:
pH, temperatura, Demanda bioquímica de oxígeno, nitratos, porcentaje de saturación del
oxígeno disuelto, turbidez, coliformes, de acuerdo al método de la Fundación Nacional
de Saneamiento de los Estados Unidos de América. Igualmente y en el Anexo 3 se han
representado las variaciones de este parámetro como ilustraciones de curvas de
superficie para cada parámetro relativo a la calidad del agua en la zona de estudio.
A continuación se han representado los índices ICA de los parámetros evaluados en las
aguas del río Yacuambi, apreciándose la definición de agua excelente, buena, media,
mala o muy mala en la figura de la izquierda cada muestreo y los valores medios en la
figura de la derecha.
Los rangos del ICA para la DBO5 encontrados en los diferentes puntos de muestreo
varíaron entre 33 y 98 con un ICA promedio de 48,79 (Figura 26). Como se aprecia en
la primera gráfica, el primer muestreo alcanza índices más altos; esto se debe a que la
fecha en que se tomaron las muestras corresponde al periodo de verano. Al dibujar el
ICA promedio se aprecia que el primer punto tiene una calidad media respecto al DBO5,
no así en los puntos restantes donde la calidad es mala presentando un mínimo en el
tercer punto de muestreo e indicando así la presencia de materia orgánica resultado de la
descarga de aguas residuales en la zona.
Figura 26.- Índice de calidad para DBO5
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Los rangos del ICA para oxígeno disuelto encontrados en los diferentes puntos de
muestreo fueron superiores a 90 (Figura 27), que según la escala de clasificación del
ICA propuesto por la NSF, lo ubica como un agua de calidad excelente para este
parámetro, es decir las condiciones existentes son aceptables para cualquier tipo de vida
acuática, lo que sugiere un alto potencial biológico del río Yacuambi.
Figura 27.- Índice de calidad para porcentaje de Saturación de Oxígeno
Los índices individuales de calidad para coliformes totales (Figura 28) permitieron
clasificar a estas aguas como de una calidad muy mala. Así, el último punto de muestreo
presentó el ICA más bajo en este parámetro, dado que aquí se encuentra la unión del río
Yacuambi con el río Zamora, que recibe vertidos de las aguas residuales de la ciudad de
Loja y Zamora. De acuerdo a los resultados obtenidos, existe un problema de
contaminación severa por coliformes, lo que inciden en la diversidad de agentes
patógenos propios de las aguas residuales que no reciben un tratamiento previo a su
vertido. Adicionalmente se limita el proceso de autodepuración del cauce por la elevada
cantidad de materia orgánica que se deposita en el cauce.
Los rangos del ICA para nitrato (Figura 29) encontrados en los diferentes puntos de
muestreo son superiores a 90 en todos los puntos de muestreo, que de acuerdo a la
escala de clasificación del ICA propuesto por la NSF, lo ubica como un agua de calidad
excelente, es decir las condiciones existentes son aceptables para cualquier tipo de vida
acuática.
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Figura 28.- Índice de calidad para Coliformes totales
Figura 29.- Índice de calidad para Nitratos
Los rangos del ICA para el pH (Figura 30) encontrados en los diferentes puntos de
muestreo varían entre 46 y 93 con un ICA promedio de 82,5. Según la escala de
clasificación del ICA propuesto por la NSF, las aguas de estudio se ubican como una
calidad buena, es decir que las condiciones presentes son aceptables para cualquier tipo
de vida acuática. El comportamiento del ICA para este parámetro presenta una variación
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a destacar en el primer punto de muestreo, donde la calidad es clasificada únicamente
como de calidad media.
Figura 30.- Índice de calidad para pH
Los rangos del ICA para la temperatura encontrados en los diferentes puntos de
muestreo variaron entre 21 y 99 con un ICA promedio de 42,5 (Figura 31). En los tres
primeros puntos de muestreo la calidad respecto a la variación de temperatura fue
clasificada como de muy mala, en tanto que en los siguientes puntos la calidad fue
media. La temperatura media de la zona de estudio era de 22ºC, donde el relieve
topográfico y las altas concentraciones de oxígeno inciden en la baja temperatura del
cauce, por lo que se presentaron marcadas diferencias de temperatura (Tambiente –
Tmuestra). Las últimas muestras se tomaron pasado el mediodía donde la temperatura del
cauce fue más cálida. Es necesario indicar que el criterio asumido para establecer el
diferencial de temperatura fue el tiempo que se tomó en acceder a la estación
subsiguiente, con un intervalo que fue aproximadamente de 45 min.
Los rangos del ICA de los sólidos totales encontrados en los diferentes puntos de
muestreo superaron un ICA de 70 (Figura 32), otorgándole una calidad buena en
referencia a este parámetro. Por tanto, podría decirse que no existía exceso de partículas
diluidas, suspendidas ni sedimentables en el cauce.
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Figura 31.- Índice de calidad para diferencia de Temperatura
Figura 32.- Índice de calidad para Solidos totales
Los rangos del ICA de los fosfatos encontrados (Figura 33) en los diferentes puntos de
muestreo indicaron que la calidad del agua evaluada en este parámetro era buena.
Destaca el tercer punto de muestreo que presentó una calidad media, con un impacto
sobre la actividad biológica que pudiera ser considerable al tratarse de un cauce que
atraviesa una reserva ecológica.
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Figura 33.- Índice de calidad para Fosfatos
Los rangos del ICA para la turbidez encontrados en los diferentes puntos de muestreo
variaron entre 63 y 88 con un ICA promedio de 79,3 (Figura 34). En los primeros
puntos de muestreo la calidad del agua puede ser considerada como buena, en tanto que
en el último punto la calidad fue media, por cuanto existe una mayor concentración de
sólidos en suspensión y el aumento de la velocidad originado por la unión de los dos
cauces.
Figura 34.- Índice de calidad para Turbidez
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Capítulo5555
Discusión de los
resultados
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5.1 ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 1
Una vez calculado para cada parámetro el índice de calidad, en este apartado se verán
los valores que se obtuvieron para el índice ICA que engloba a todos los parámetros
seleccionados y que sirvió para determinar de forma conjunta la calidad de las aguas
analizadas (Tabla 8 y Figura 35). De esta forma, el índice de calidad del agua para el
primer punto de muestreo ubicado en el puente de Tutupali, alcanzó la categoría de
calidad media, con un ICA de 70,33; parámetros como el oxígeno disuelto expresado en
porcentaje de saturación, nitratos y fosfatos otorgaron una calidad excelente aunque el
parámetro de coliformes totales aportó el índice más bajo con una calidad de muy mala.
Tabla 8.- Calculo del ICA del primer punto de muestreo
Parámetro Valor Unidades Wi Ii Subíndice
DBO5 6,12 mg/l 49,98 0,11 5,50 Oxígeno disuelto 108,33 % Sat 96,65 0,17 16,43 Coliformes fecales 687,5 UFC/100ml 25,25 0,16 4,04 Nitratos 0,89 mg/l 96,11 0,1 9,61 pH 6,31 64,22 0,11 7,06 Temperatura 7,97 ºc 55,84 0,1 5,58 Sólidos totales 16,33 mg/l 83,27 0,07 5,83 Fosfatos totales 0,14 mg/l 94,4 0,1 9,44 Turbidez 5,25 NTU 85,5 0,08 6,84
ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 1: 70,33
Figura 35,-Representación gráfica del ICA en el primer punto de muestreo
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5.2 ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 2
El ICA obtenido en el punto 2 fue de 70,1, otorgándole una calidad de media, de manera
similar los parámetros de oxígeno disuelto, nitratos y fosfatos le otorgaron una calidad
de excelente y fueron los coliformes totales los que repercutieron en la calidad del cauce
(Tabla 9 y Figura 36). Esto estuvo causado por el vertido de aguas residuales que no
reciben un tratamiento previo, incrementando la posibilidad de enfermedades de origen
hídrico por la presencia de agentes patógenos.
Tabla 9,- Calculo del ICA del segundo punto de muestreo
Parámetro Valor Unidades Wi Ii Subíndice DBO5 5,95 mg/l 50,86 0,11 5,59 Oxígeno disuelto 107,93 % Sat 96,88 0,17 16,46 Coliformes fecales
715 UFC/100ml 25 0,16 4,00
Nitratos 1,11 mg/l 95,89 0,1 9,58 pH 6,74 80,7 0,11 8,87 Temperatura 9,53 ºc 46,87 0,1 4,68 Sólidos totales 32 mg/l 84,8 0,07 5,93 Fosfatos totales 0,17 mg/l 93,2 0,1 9,32 Turbidez 12,85 NTU 70,3 0,08 5,62
ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 2: 70,10
Figura 36,- Representación gráfica del ICA en el segundo punto de muestreo
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5.3 ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 3
El ICA correspondiente al tercer punto de muestreo fue de 67,44 que lo categoriza con
una calidad media (Tabla 10 y Figura 37). En este caso existe un incremento en la
presencia de fosfatos que hace que la calidad en este punto sea sólo media en relación a
los dos primeros puntos de muestreo. Igualmente se mantienen los coliformes totales
como el parámetro de mayor incidencia en la calidad del agua del río Yacuambi,
Tabla 10,- Calculo del ICA del tercer punto de muestreo
Parámetro Valor Unidades Wi Ii Subíndice DBO5 8,59 mg/l 39,64 0,11 4,36 Oxígeno disuelto 109,53 % Sat 95,95 0,17 16,31 Coliformes fecales
720 UFC/100ml 25 0,16 4,00
Nitratos 1,29 mg/l 95,71 0,1 9,57 pH 7,09 89,8 0,11 9,87 Temperatura 7,53 ºc 58,38 0,1 5,83 Sólidos totales 51 mg/l 86,55 0,07 6,05 Fosfatos totales 0,54 mg/l 58 0,1 5,80 Turbidez 12,85 NTU 70,3 0,08 5,62
ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 3: 67,44
Figura 37,- Representación gráfica del ICA en el tercer punto de muestreo
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5.4 ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 4
En el cuarto punto de muestreo localizado en Kurintza, el ICA determinado fue de
73,87, que le otorga una calidad de buena. En esta ocación ha disminuido respecto a los
primeros puntos y la mayor parte de parámetros le otorgan una calidad de buena,
aunque la elevada concentración de coliformes incide directamente en la calidad del
cauce que respecto a este parámetro es muy mala (Tabla 11 y Figura 38).
Tabla 11,- Calculo del ICA del cuarto punto de muestreo
Parámetro Valor Unidades Wi Ii Subíndice DBO5 6,54 mg/l 47,84 0,11 5,26 Oxígeno disuelto 111,43 % Sat 94,85 0,17 16,12 Coliformes fecales
835 UFC/100ml 23,65 0,16 3,78
Nitratos 0,68 mg/l 96,32 0,1 9,63 pH 7,01 88,2 0,11 9,70 Temperatura 3,77 ºc 77,92 0,1 7,79 Sólidos totales 38,33 mg/l 85,75 0,07 6,00 Fosfatos totales 0,23 mg/l 88,8 0,1 8,88 Turbidez 6,16 NTU 83,68 0,08 6,69
ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 4: 73,87
Figura 38,- Representación gráfica del ICA en el cuarto punto de muestreo
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5.5 ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 5
En el quinto punto de muestreo, se mantiene un ICA de 73,80 indicando una calidad
buena del cauce. El parámetro de mayor incidencia fueron los coliformes totales que se
van incrementando por el recorrido natural del cauce y las descargas que recibe de
aguas residuales infiriéndole una calidad muy mala, dadas las altas concentraciones
(Tabla 12 y Figura 39).
Tabla 12,- Calculo del ICA del quinto punto de muestreo
Parámetro Valor Unidades Wi Ii Subíndice DBO5 5,94 mg/l 50,91 0,11 5,60 Oxígeno disuelto 110,43 % Sat 95,43 0,17 16,22 Coliformes fecales
1240 UFC/100ml 21,04 0,16 3,36
Nitratos 0,51 mg/l 96,49 0,1 9,65 pH 7,04 88,8 0,11 9,76 Temperatura 4,6 ºc 74,6 0,1 7,46 Sólidos totales 42,67 mg/l 86,13 0,07 6,03 Fosfatos totales 0,25 mg/l 86,67 0,1 8,6 Turbidez 4,09 NTU 87,82 0,08 7,03
ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 5: 73,80
Figura 39,- Representación gráfica del ICA en el quinto punto de muestreo
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5.6 ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 6
En el sexto punto de muestreo, el ICA determinado fue de 70,90 que corresponde a una
calidad media (Tabla 13 y Figura 40). Se aprecia un incremento en la concentración de
turbidez que le otorga una calidad de media respecto a los puntos anteriores, también se
aprecia un incremento en la cantidad de DBO5 y de coliformes totales, indicando una
contaminación de origen orgánico a causa de los vertidos de aguas residuales que
recibe.
Tabla 13,- Calculo del ICA del sexto punto de muestreo
Parámetro Valor Unidades Wi Ii Subíndice DBO5 6,67 mg/l 47,32 0,11 5,2052 Oxígeno disuelto 110,43 % Sat 95,43 0,17 16,2231 Coliformes fecales
3362,5 UFC/100ml 15,28 0,16 2,4448
Nitratos 2,02 mg/l 94,9 0,1 9,49 pH 7,34 92,7 0,11 10,197 Temperatura 3,83 ºc 77,68 0,1 7,768 Sólidos totales 68,67 mg/l 86,13 0,07 6,0291 Fosfatos totales 0,29 mg/l 82,4 0,1 8,24 Turbidez 15,64 NTU 66,23 0,08 5,2984
ÍNDICE DE CALIDAD DEL PUNTO 6: 70,90
Figura 40,- Representación gráfica del ICA en el sexto punto de muestreo
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5.7 CONCLUSIONES
� Los índices de calidad de agua obtenidos a partir de la metodología propuesta por la
NSF (Fundación Nacional de Sanidad de Estados Unidos de América) se
constituyen en indicadores de contaminación a lo largo del río Yacuambi en el
tramo comprendido entre el Sitio Tutupali y la unión del río Yacuambi y Zamora en
el sitio La Saquea. Los resultados a partir de este análisis nos dan un ICA global del
río desde el punto uno al cinco de 67,44 a 73,79, lo que significa que el río tiene una
calidad aceptable para los diferentes usos del agua y que puede tener una variada
diversidad de vida acuática. En el sexto punto de muestreo, posterior a su unión con
el río Zamora, se obtuvo un ICA de 70,90 lo que clasifica a esta zona como de
calidad también aceptable.
� De acuerdo a los parámetros evaluados, se evidencian un deterioro del ecosistema
río Yacuambi siendo el factor Coliformes fecales el de mayor significancia por las
altas concentraciones encontradas en su cauce de hasta 8200 UFC/100mL, valores
que sobrepasan los límites permisibles por la norma vigente que es de 1000
UFC/100mL.
� Espacialmente la tendencia observada, en cuanto a concentraciones y cantidades de
los diferentes parámetros de calidad de aguas y en cada una de las jornadas de
muestreo, es a incrementarse a partir del tercer punto, considerando también que la
calidad del cauce se mantiene por los procesos de autodepuración natural del cauce,
y por la topografía de la zona existiendo un alto grado de homogenización y
oxigenación que mantiene altas concentraciones de oxígeno disuelto expresado
como porcentaje de saturación.
� En el tramo de estudio, en las muestras analizadas no se encontró contaminación por
presencia de metales pesados ni pesticidas.
� Los resultados a partir de estos análisis constituyen una herramienta en la toma de
decisiones al identificar potenciales impactos ambientales en un tiempo oportuno
que permiten determinar las medidas de prevención respectivas, a través de un Plan
de Manejo Ambiental pero que cubra un periodo de muestreo que considere la toma
65
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de muestras en época de invierno y verano, con la finalidad de obtener un valor más
representativo y determinar las variaciones en el sitio.
� Para calcular el ICA se escogió la metodología propuesta por la NSF por ser la más
utilizada en proyectos de investigación, en caracterización de cuerpos hídricos y en
evaluación del impacto ambiental, el grado de confiabilidad de esta metodología es
del 98%.
� Siendo uno de los objetivos de esta investigación, identificar las posibles
alternativas de tratamiento para mejorar la calidad del agua del río Yacuambi, y
considerando que el cauce presenta una calidad aceptable, de acuerdo a los
resultados obtenidos, el principal factor de contaminación fue la materia orgánica
que se encuentra en altas concentraciones incidiendo considerablemente en la
calidad del cauce al presentar altas concentraciones de coliformes totales.
� En base a lo anterior se concluye que los procesos naturales de depuración de cauces
que incluyen homogenización y dilución apoyados en el fuerte relieve de la zona
que facilita los procesos de oxigenación, permiten que la calidad del cauce sea
buena. A esto se debe añadir un tratamiento a los vertidos de aguas residuales
existentes en la zona y control de lixiviados para recuperar la calidad del agua en el
río Yacuambi, la cual se ve disminuida por su efecto.
� En la zona no existe una contaminación antropogénica fuerte, descartando
problemas de contaminación por pesticidas o metales pesados cuyas
concentraciones se encuentran por debajo del límite permisible en la norma
ecuatoriana. No obstante, se pudieron observar zonas de extracción artesanal de oro
en la ribera del cauce, las cuales emplean unas balsas para el dragado de sedimentos,
apoyados de un motor. Por ello, sería importante continuar con estudios de esta
naturaleza y añadir el análisis de halógenos.
66
Capítulo6666
Referencias
bibliográficas
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ítu
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72
Anexo1111
Hojas de Registro de la
toma de muestra
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M1
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 8 septiembre del 2011__ HORA: 10:45__________ UBICACIÓN: Tutupali – Puente de Tutupali COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03º31‘53,4’’ S LONGITUD: 78º57‘5,5’’ O COTA: 1325
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,18 mg/l O,D: 109 % de saturación
T, Agua= 16 ºC T, Ambiente: 23 ºC
OBSERVACIONES: _____________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M2
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 8 de septiembre del 2011___ HORA: 11:30__________ UBICACIÓN: La Paz – El Puerto COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o37’33,1’’S LONGITUD: 78
o55’57,5’’O COTA: 1027,5
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,04 mg/l O,D: 108,4 % de saturación
T, Agua= 18,1 ºC T, Ambiente: 26,4 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M3
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 8 de septiembre del 2011___ HORA: 12:30__________ UBICACIÓN: La Paz - Napurak COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o45’09,5’’S LONGITUD: 78
o52’15,3’’O COTA: 931,2
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,67 mg/l O,D: 109,9 % de saturación
T, Agua= 21,3 ºC T, Ambiente: 27,4 ºC
OBSERVACIONES: Se aprecia basura flotante en la ribera del río, adicionalmente existen actividades de dragado de sedimentos, _________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M4
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 8 de septiembre del 2011___ HORA: 13h45__________ UBICACIÓN: Guadalupe - Kurintza COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o46’15,8’’S LONGITUD: 7 78
o53’46,9’’ O COTA: 888
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,85 mg/l O,D: 115,4 % de saturación
T, Agua= 23,3 ºC T, Ambiente: 24,6 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________
An
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M5
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 8 de septiembre del 2011___ HORA: 14:30__________ UBICACIÓN: Guadalupe – San Antonio COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o48’23,2’’S LONGITUD: 78
o53’57,1’’O COTA: 870,4
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,64 mg/l O,D: 112,5 % de saturación
T, Agua= 22,9 ºC T, Ambiente: 23,2 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M6
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 8 de septiembre del 2011___ HORA: 15:30__________ UBICACIÓN: Guadalupe - Unión del río Zamora y Yacuambi, sector La Saquea COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o54’59,1’’S LONGITUD: 78
o50’09,8’’O COTA: 826,2
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,63 mg/l O,D: 115,9 % de saturación
T, Agua= 24,7 ºC T, Ambiente: 24,8 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M1
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 22 de septiembre del 2011___ HORA: 09:15__________ UBICACIÓN: Tutupali – Puente de Tutupali COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03º31‘53,4’’ S LONGITUD: 78º57‘5,5’’ O COTA: 1325
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,28 mg/l O,D: 107,7 % de saturación
T, Agua= 15,3 ºC T, Ambiente: 23,4 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M2
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 22 de septiembre del 2011___ HORA: 10:20__________ UBICACIÓN: La Paz – El Puerto COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o37’33,1’’S LONGITUD: 78
o55’57,5’’O COTA: 1027,5
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,18 mg/l O,D: 107,3 % de saturación
T, Agua= 17,2 ºC T, Ambiente: 27,1 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M3
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 22 de septiembre del 2011___ HORA: 11:30__________ UBICACIÓN: La Paz - Napurak COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o45’09,5’’S LONGITUD: 78
o52’15,3’’O COTA: 931,2
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,01 mg/l O,D: 109,2 % de saturación
T, Agua= 19,4 ºC T, Ambiente: 27,8 ºC
OBSERVACIONES: Se aprecia basura flotante en la ribera del río, ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M4
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 22 de septiembre del 2011___ HORA: 12h45__________ UBICACIÓN: Guadalupe - Kurintza COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o46’15,8’’S LONGITUD: 7 78
o53’46,9’’ O COTA: 888
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,14 mg/l O,D: 108,7 % de saturación
T, Agua= 18,7 ºC T, Ambiente: 25,2 ºC
OBSERVACIONES: Lluvia ligera de aproximadamente 20 minutos_____________________________________
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M5
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 22 de septiembre del 2011___ HORA: 13:45__________ UBICACIÓN: Guadalupe – San Antonio COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o48’23,2’’S LONGITUD: 78
o53’57,1’’O COTA: 870,4
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,07 mg/l O,D: 108,2 % de saturación
T, Agua= 18,9 ºC T, Ambiente: 25,9 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M6
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 22 de septiembre del 2011___ HORA: 15:00__________ UBICACIÓN: Guadalupe - Unión del río Zamora y Yacuambi, sector La Saquea COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o54’59,1’’S LONGITUD: 78
o50’09,8’’O COTA: 826,2
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,85 mg/l O,D: 106 % de saturación
T, Agua= 19,2 ºC T, Ambiente: 26,4 ºC
OBSERVACIONES: Actividades de extracción de materiales para la construcción en el lecho del cauce__________
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M1
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 29 de septiembre del 2011___ HORA: 11:00__________ UBICACIÓN: Tutupali – Puente de Tutupali COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03º31‘53,4’’ S LONGITUD: 78º57‘5,5’’ O COTA: 1325
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,10 mg/l O,D: 108,3 % de saturación
T, Agua= 15 ºC T, Ambiente: 23,2 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M2
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 29 de septiembre del 2011___ HORA: 12:15__________ UBICACIÓN: La Paz – El Puerto COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o37’33,1’’S LONGITUD: 78
o55’57,5’’O COTA: 1027,5
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,11 mg/l O,D: 108,1 % de saturación
T, Agua= 17,4 ºC T, Ambiente: 26,9 ºC
OBSERVACIONES: ___________________________________________________________________________
An
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HOJA DE REGISTRO IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M3
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 29 de septiembre del 2011___ HORA: 13:30__________ UBICACIÓN: La Paz - Napurak COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o45’09,5’’S LONGITUD: 78
o52’15,3’’O COTA: 931,2
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,90 mg/l O,D: 109,5 % de saturación
T, Agua= 20,1 ºC T, Ambiente: 27,5 ºC
OBSERVACIONES: Se aprecia basura flotante en la ribera del río y actividades de dragado de sedimentos_______ ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M4
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 29 de septiembre del 2011___ HORA: 14:30__________ UBICACIÓN: Guadalupe - Kurintza COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o46’15,8’’S LONGITUD: 7 78
o53’46,9’’ O COTA: 888
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,04 mg/l O,D: 110,20 % de saturación
T, Agua= 22,3 ºC T, Ambiente: 26,2 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M5
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 29 de septiembre del 2011___ HORA: 15H45__________ UBICACIÓN: Guadalupe – San Antonio COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o48’23,2’’S LONGITUD: 78
o53’57,1’’O COTA: 870,4
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,72 mg/l O,D: 110,60 % de saturación
T, Agua= 22,1 ºC T, Ambiente: 26,3 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M6
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 29 de septiembre del 2011___ HORA: 16:30__________ UBICACIÓN: Guadalupe - Unión del río Zamora y Yacuambi, sector La Saquea COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o54’59,1’’S LONGITUD: 78
o50’09,8’’O COTA: 826,2
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,82 mg/l O,D: 109,4 % de sat,
T, Agua= 23,8 ºC T, Ambiente: 27,4 ºC
OBSERVACIONES: Se aprecia zonas con restos de aceites_____________________________________________
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M1
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 06 de octubre del 2011___ HORA: 10:00__________ UBICACIÓN: Tutupali – Puente de Tutupali COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03º31‘53,4’’ S LONGITUD: 78º57‘5,5’’ O COTA: 1325
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,21 mg/l O,D: 108,3 % de saturación
T, Agua= 15 ºC T, Ambiente: 15,4 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M2
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 06 de octubre del 2011___ HORA: 11:15__________ UBICACIÓN: La Paz – El Puerto COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o37’33,1’’S LONGITUD: 78
o55’57,5’’O COTA: 1027,5
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,11 mg/l O,D: 107,3 % de saturación
T, Agua= 17,0 ºC T, Ambiente: 18,2 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________
An
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M3
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 06 de octubre del 2011___ HORA: 12:30__________ UBICACIÓN: La Paz - Napurak COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o45’09,5’’S LONGITUD: 78
o52’15,3’’O COTA: 931,2
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,85 mg/l O,D: 109,52 % de sat,
T, Agua= 19,8 ºC T, Ambiente: 27,9 ºC
OBSERVACIONES: Se aprecia basura flotante en la ribera del río y actividades de dragado de sedimentos ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M4
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 06 de octubre del 2011___ HORA: 13:30__________ UBICACIÓN: Guadalupe - Kurintza COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o46’15,8’’S LONGITUD: 7 78
o53’46,9’’ O COTA: 888
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 9,01 mg/l O,D: 111,25 % de saturación
T, Agua= 21,5 ºC T, Ambiente: 23,8 ºC
OBSERVACIONES: ___________________________________________________________________________
An
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HOJA DE REGISTRO
IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M5
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 06 de octubre del 2011___ HORA: 14H45__________ UBICACIÓN: Guadalupe – San Antonio COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o48’23,2’’S LONGITUD: 78
o53’57,1’’O COTA: 870,4
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,84 mg/l O,D: 110,54 % de saturación
T, Agua= 20,9 ºC T, Ambiente: 26,7 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________ IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA: M6
Técnicos responsables:
MERCEDES VILLA ACHUPALLAS
ING, MÓNICA CISNEROS
ING, SILVIO AGUILAR
FECHA DEL MUESTREO: jueves 06 de octubre del 2011___ HORA: 15H30__________ UBICACIÓN: Guadalupe - Unión del río Zamora y Yacuambi, sector La Saquea COORDENADAS GEOGRÁFICAS DEL PUNTO DE MUESTREO:
LATITUD: 03o54’59,1’’S LONGITUD: 78
o50’09,8’’O COTA: 826,2
PARÁMETROS INSITU:
pH= O,D,: 8,77 mg/l O,D: 110,38 % de saturación
T, Agua= 22,1 ºC T, Ambiente: 26,2 ºC
OBSERVACIONES: ____________________________________________________________________________
85
Anexo2222
Resumen de resultados de análisis de muestras y límites de detección
de las técnicas de análisis
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PARÁMETROS FÍSICO-QUÍMICOS
DETERMINACIÓN UNIDAD M1 M2 M3 M4 U LDD
MUESTRA 1:
pH 6,63 6,00 6,30 6,06 0,01 5 033
Color Unid, PtCo 23,00 32,00 35,00 30,00 n/d n/d
Turbidez NTU 4,12 7,00 5,63 4,24 n/d n/d
Dureza mg/l 10,00 2,50 3,00 2,50 n/d n/d
Conductividad Elèctrica µS/cm 1,97 3,00 2,51 10,96 n/d n/d
Cloruro mg/l 15,00 10,50 12,64 12,50 n/d n/d
Solidos Totales mg/l 25,00 8,00 16,00 18,00 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrato mg/l 0,20 1,60 0,87 0,15 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrito mg/l 0,009 0,005 0,007 0,012 n/d n/d
Fosfatos mg/l 0,13 0,17 0,12 0,16 n/d n/d
DBO mg/l 1,70 9,52 8,84 4,42 n/d n/d
DQO mg/l 10,00 56,00 52,00 26,00 n/d n/d
Coliformes Totales ufc/100 ml 2,90E+02 1,80E+03 3,20E+02 3,40E+02 6% <1
MUESTRA 2:
pH 7,04 6,44 6,73 7,08 0,01 5 033
Color Unid, PtCo 28,00 36,00 42,00 26,00 n/d n/d
Turbidez NTU 12,70 13,50 13,12 12,06 n/d n/d
Dureza mg/l 15,00 5,00 4,00 7,50 n/d n/d
Conductividad Elèctrica µS/cm 6,23 8,16 7,24 20,68 n/d n/d
Cloruro mg/l 0,60 4,50 2,65 9,50 n/d n/d
Solidos Totales mg/l 35,00 30,00 31,00 36,00 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrato mg/l 1,00 1,30 1,04 1,50 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrito mg/l 0,003 0,004 0,004 0,018 n/d n/d
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DETERMINACIÓN UNIDAD M1 M2 M3 M4 U LDD
Fosfatos mg/l 0,15 0,19 0,18 0,22 n/d n/d
DBO mg/l 2,70 8,78 5,23 7,09 n/d n/d
DQO mg/l 16,00 52,00 31,00 42,00 n/d n/d
Coliformes Totales ufc/100 ml 3,80E+02 1,60E+03 4,30E+02 4,50E+02 6% <1
MUESTRA 3:
pH 7,15 6,93 7,20 7,52 0,01 5 033
Color Unid, PtCo 21,00 23,00 27,00 27,00 n/d n/d
Turbidez NTU 4,24 4,89 4,68 4,56 n/d n/d
Dureza mg/l 20,00 10,00 8,50 7,50 n/d n/d
Conductividad Elèctrica µS/cm 12,45 15,60 14,38 27,92 n/d n/d
Cloruro mg/l 0,80 4,50 2,76 3,50 n/d n/d
Solidos Totales mg/l 39,00 65,00 49,00 33,00 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrato mg/l 1,5 1,1 1,27 0,9 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrito mg/l 0,010 0,010 0,010 0,004 n/d n/d
Fosfatos mg/l 0,48 0,62 0,52 0,19 n/d n/d
DBO mg/l 4,00 11,64 9,27 9,45 n/d n/d
DQO mg/l 22,00 64,00 51,00 52,00 n/d n/d
Coliformes totales ufc/100 ml 4,40E+02 1,20E+03 5,80E+02 6,60E+02 6% <1
MUESTRA 4:
pH 7,40 6,76 6,88 7,31 0,01 5 033
Color Unid, PtCo 17,00 25,00 24,00 27,00 n/d n/d
Turbidez NTU 5,85 6,35 5,94 6,49 n/d n/d
Dureza mg/l 20,00 7,50 7,00 7,50 n/d n/d
Conductividad Elèctrica µS/cm 9,15 11,29 9,96 28,76 n/d n/d
Cloruro mg/l 4,75 5,00 4,74 5,00 n/d n/d
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DETERMINACIÓN UNIDAD M1 M2 M3 M4 U LDD
DBO mg/l 2,18 9,81 7,63 6,54 n/d n/d
Solidos Totales mg/l 41,00 37,00 37,00 24,00 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrato mg/l 0,50 0,80 0,75 1,00 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrito mg/l 0,007 0,013 0,009 0,007 n/d n/d
Fosfatos mg/l 0,19 0,27 0,24 0,18 n/d n/d
DQO mg/l 12,00 54,00 42,00 36,00 n/d n/d
Coliformes Totales ufc/100 ml 6,40E+02 1,70E+03 4,90E+02 5,10E+02 6% <1
MUESTRA 5:
pH 7,35 6,97 6,80 6,75 0,01 5 033
Color Unid, PtCo 13,00 20,00 19,00 24,00 n/d n/d
Turbidez NTU 3,78 4,43 3,90 4,24 n/d n/d
Dureza mg/l 7,50 6,50 7,50 11,33 n/d n/d
Conductividad Elèctrica µS/cm 9,12 11,56 9,82 29,10 n/d n/d
Cloruro mg/l 5,50 4,50 4,75 6,00 n/d n/d
Solidos Totales mg/l 41,00 45,00 42,00 23,00 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrato mg/l 0,40 0,60 0,52 0,51 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrito mg/l 0,011 0,005 0,007 0,008 n/d n/d
Fosfatos mg/l 0,21 0,29 0,24 0,18 n/d n/d
DBO mg/l 3,20 7,41 6,06 7,07 n/d n/d
DQO mg/l 19,00 44,00 36,00 42,00 n/d n/d
Coliformes Totales ufc/100 ml 9,00E+02 2,10E+03 8,00E+02 1,16E+03 6% <1
MUESTRA 6:
pH 7,58 7,17 7,26 6,79 0,01 5 033
Color Unid, PtCo 38,00 43,00 36,00 32,00 n/d n/d
Turbidez NTU 16,20 15,10 15,41 15,85 n/d n/d
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DETERMINACIÓN UNIDAD M1 M2 M3 M4 U LDD
Dureza mg/l 20,00 12,50 11,00 7,50 n/d n/d
Conductividad Elèctrica µS/cm 15,67 19,34 17,26 29,64 n/d n/d
Cloruro mg/l 6,00 7,50 6,66 10,00 n/d n/d
Solidos Totales mg/l 71,00 67,00 68,00 28,00 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrato mg/l 1,30 2,60 2,15 1,80 n/d n/d
Nitrogeno del Nitrito mg/l 0,010 0,047 0,025 0,028 n/d n/d
Fosfatos mg/l 0,27 0,32 0,29 0,19 n/d n/d
DBO mg/l 4,70 7,39 6,55 8,06 n/d n/d
DQO mg/l 28,00 44,00 39,00 48,00 n/d n/d
Coliformes Totales ufc/100 ml 8,20E+03 2,80E+03 1,15E+03 1,30E+03 6% <1
METALES PESADOS
DETERMINACIÓN RESULTADO
REQUISITOS ESTABLECIDOS PARA EL PRODUCTO
MÉTODO DE ENSAYO
M1 M2 UNIDAD Mín Máx Norma IDENTIFICACIÓN LDD U
MUESTRA 1
Arsénico 0,017 0,093 mg/L - 0,1 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
Bario 0,000 0,000 mg/L - 2,0 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Magnesio 0,172 0,189 mg/L n/e n/e * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Cadmio 0,000 0,000 mg/L - 0,02 * Absorción atómica, Llama 0,01 n/d
Cromo 0,000 0,000 mg/L - 0,5 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Plomo 0,113 0,012 mg/L - 0,2 * Absorción atómica, HG 0,005 n/d
Mercurio 0,000 0,000 mg/L - 0,005 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
An
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90
DETERMINACIÓN RESULTADO
REQUISITOS ESTABLECIDOS PARA EL PRODUCTO MÉTODO DE ENSAYO
M1 M2 UNIDAD Mín Máx Norma IDENTIFICACIÓN LDD U
MUESTRA 2
Arsénico 0,016 0,094 mg/L - 0,1 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
Bario 0,000 0,000 mg/L - 2,0 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Magnesio 0,402 0,488 mg/L n/e n/e * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Cadmio 0,000 0,000 mg/L - 0,02 * Absorción atómica, Llama 0,01 n/d
Cromo 0,000 0,000 mg/L - 0,5 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Plomo 0,011 0,007 mg/L - 0,2 * Absorción atómica, HG 0,005 n/d
Mercurio 0,000 0,000 mg/L - 0,005 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
MUESTRA 3
Arsénico 0,040 0,132 mg/L - 0,1 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
Bario 0,000 0,000 mg/L - 2,0 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Magnesio 0,900 0,870 mg/L n/e n/e * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Cadmio 0,000 0,000 mg/L - 0,02 * Absorción atómica, Llama 0,01 n/d
Cromo 0,000 0,000 mg/L - 0,5 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Plomo 0,010 0,007 mg/L - 0,2 * Absorción atómica, HG 0,005 n/d
Mercurio 0,000 0,000 mg/L - 0,005 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
MUESTRA 4
Arsénico 0,035 0,135 mg/L - 0,1 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
Bario 0,000 0,000 mg/L - 2,0 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Magnesio 0,415 0,980 mg/L n/e n/e * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Cadmio 0,000 0,000 mg/L - 0,02 * Absorción atómica, Llama 0,01 n/d
Cromo 0,000 0,000 mg/L - 0,5 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
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DETERMINACIÓN RESULTADO
REQUISITOS ESTABLECIDOS PARA EL PRODUCTO MÉTODO DE ENSAYO
M1 M2 UNIDAD Mín Máx Norma IDENTIFICACIÓN LDD U
Plomo 0,010 0,009 mg/L - 0,2 * Absorción atómica, HG 0,005 n/d
Mercurio 0,000 0,000 mg/L - 0,005 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
MUESTRA 5
Arsénico 0,047 0,111 mg/L - 0,1 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
Bario 0,000 0,000 mg/L - 2,0 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Magnesio 0,485 1,360 mg/L n/e n/e * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Cadmio 0,000 0,000 mg/L - 0,02 * Absorción atómica, Llama 0,01 n/d
Cromo 0,000 0,000 mg/L - 0,5 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Plomo 0,002 0,007 mg/L - 0,2 * Absorción atómica, HG 0,005 n/d
Mercurio 0,000 0,000 mg/L - 0,005 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
MUESTRA 6
Arsénico 0,040 0,100 mg/L - 0,1 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
Bario 0,000 0,000 mg/L - 2,0 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Magnesio 0,635 1,380 mg/L n/e n/e * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Cadmio 0,000 0,000 mg/L - 0,02 * Absorción atómica, Llama 0,01 n/d
Cromo 0,000 0,000 mg/L - 0,5 * Absorción atómica, Llama 0,5 n/d
Plomo 0,008 0,008 mg/L - 0,2 * Absorción atómica, HG 0,005 n/d
Mercurio 0,000 0,000 mg/L - 0,005 * Absorción atómica, GH 0,005 n/d
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92
PESTICIDAS
DETERMINACIÓN
RESULTADO
REQUISITOS ESTABLECIDOS PARA EL PRODUCTO
MÉTODO DE ENSAYO
M1 UNIDAD Mín Máx Norma IDENTIFICACIÓN LDD U
Muestra 1
Organoclorados
Alfa HCH 2,0E-04 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Aldrin 3,4E-02 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
2-4 DDT 5,3E-05 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Heptacloro 6,2E-03 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Organofosforados
Quinalfos 3,4E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Fonofos 6,4E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Malation 1,9E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Muestra 2
Organoclorados
Alfa HCH 2,0E-04 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Aldrin 2,2E-02 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
2-4 DDT 7,0E-05 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Heptacloro 5,7E-03 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Organofosforados
Quinalfos 4,4E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Fonofos 8,0E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Malation 2,4E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Muestra 3
Organoclorados
Alfa HCH 1,6E-04 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Aldrin 2,7E-02 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
2-4 DDT 6,4E-05 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
An
exo
2: R
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93
DETERMINACIÓN
RESULTADO
REQUISITOS ESTABLECIDOS PARA EL PRODUCTO
MÉTODO DE ENSAYO
M1 UNIDAD Mín Máx Norma IDENTIFICACIÓN LDD U
Heptacloro 6,1E-03 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Organofosforados
Quinalfos 3,9E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Fonofos 8,3E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Malation 2,7E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Muestra 4
Organoclorados
Alfa HCH 2,0E-04 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Aldrin 3,2E-02 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
2-4 DDT 5,9E-05 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Heptacloro 5,9E-03 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Organofosforados
Quinalfos 3,4E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Fonofos 7,7E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Malation 1,9E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Muestra 5
Organoclorados
Alfa HCH 3,7E-04 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Aldrin 1,2E-02 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
2-4 DDT 8,7E-05 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Heptacloro 4,7E-03 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Organofosforados
Quinalfos 5,8E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Fonofos 8,5E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Malation 1,5E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
An
exo
2: R
esu
men
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resu
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mu
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las
técn
icas
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isis
.
94
DETERMINACIÓN
RESULTADO
REQUISITOS ESTABLECIDOS PARA EL PRODUCTO
MÉTODO DE ENSAYO
M1 UNIDAD Mín Máx Norma IDENTIFICACIÓN LDD U
Muestra 6
Organoclorados
Alfa HCH 2,8E-04 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Aldrin 2,1E-02 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
2-4 DDT 6,4E-05 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Heptacloro 5,3E-03 mg/L - 0,05 * Cromatografía de gases/ECD n/d n/d
Organofosforados
Quinalfos 3,9E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Fonofos 7,0E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
Malation 2,3E-05 mg/L - 0,1 * Cromatografía de gases/NPD n/d n/d
DONDE:
U: Incertidumbre expandida con un 95% de confianza
n/a: No aplica
GH: Generador de hidruros
HG: Horno de grafito
ECD: Detector de captura de electrones,
NPD: Detector de nitrógeno-fosforados,
n/d: No disponible
LDD: Límite de detección del método
n/e: No especifica
<LDD: Resultado menor que el límite de detección del método
95
Anexo3333
Ilustraciones del ICA por parámetro en el río
Yacuambi
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ICA
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An
exo
3: I
lust
raci
ones
del
ICA
por
par
ámet
ro e
n e
l río
Yac
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98
Libre, y para mi sagrado, es el derecho de pensar... La educación es
fundamental para la felicidad social; es el principio en el que descansan
la libertad y el engrandecimiento de los pueblos.
- Benito Juárez
Gracias a la SENESCYT, he logrado alcanzar una
gran meta profesional, al adquirir nuevos
conocimientos que fortalecen mi formación, la grata
experiencia de una cultura nueva, valores e ideas
que me impulsan a soñar en un cambio y evolución
del cual soy partícipe.
Sin embargo, sé que esta oportunidad no es
gratuita. Si bien la SENESCYT no me ha pedido
nada a cambio, soy consciente de la deuda que he
contraído con la Sociedad, con mi país. Hoy se que
no solamente tendré que devolver a la Sociedad lo
que he recibido, sino más bien que pondré todo de
mi para devolver el doble y mucho más, hoy asumo
la responsabilidad de hacer algo que contribuya a
mejorar el mundo, algo en beneficio de todos y de
cualquiera; considero que éste es el verdadero
significado de la beca, si no, mis estudios no habrán
tenido sentido.
