Guia Fisiología 2015

8/17/2019 Guia Fisiología 2015

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UNIVERSIDAD CIENTIFICA DEL SUR

FACULTAD DE MEDICINA HUMANAMORFOFISIOLOGÍA IV

GUÍA DE TRABAJO PRÁCTICO

Profesores Responsables de Práctica:

Antony Elvis Chipana Ramos - Encargado de capítulo

Iván Ciriaco Guzmán

Néstor Manuel López Avilés

Gisell Silva Arquíñego

Lugar: Laboratorio de Fisiología

Campus Universitario de Pantanos de Villa.

SEMESTRE 2015 - I


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MORFOFISIOLOGIA IV - GUIA DE PRÁCTICAS

NORMAS DE COMPORTAMIENTO PARA EL ESTUDIANTE QUE INGRESA A LOSLABORATORIOS

El estudiante ingresará al laboratorio sólo con su profesor de práctica, ingresar solo

en presencia de un docente o responsable de laboratorio (en caso de repaso y/o

realización de trabajos de investigación).

El estudiante debe ingresar con pantalón largo, zapatos cerrados y CON MANDIL

LARGO Y ABOTONADO al laboratorio.

Debe llevar únicamente sus materiales como cuaderno de trabajo, guía de

prácticas, lápices, lapiceros, etc. y el material solicitado por el profesor para cadapráctica.

Las mochilas y/o carteras debe dejarlas en los casilleros instalados para cuando

tienen clases en los laboratorios.

El estudiante debe cuidar sus objetos `personales.

No ingresar al laboratorio con alimentos, bebidas y/o maletines. Los laboratorios

son ambientes de trabajo, NO DEBE COMER, BEBER en ellos. (Manual de

Bioseguridad de la UCSUR).

Llegar puntual a las prácticas es señal de respeto hacia los profesores y

compañeros.

Ingresar con el celular apagado.

El estudiante es responsable de cualquier accidente que ocurra con el material y/o

equipo con el que trabaje, debiendo reponer dicho material a la brevedad posible.

Cualquier accidente con vidrios, reactivos, cultivos y/o similares deberá

comunicarse al responsable de laboratorio o al profesor de prácticas a fin de tomar

las medidas adecuadas.

En el caso de romper algún material de laboratorio debe llenar el formato respectivo

y devolver el mismo antes de que culmine el ciclo.

El orden y la limpieza son obligatorios en el laboratorio, asegúrese de aplicarlos

durante y después de la práctica.

No mover los equipos de su lugar, salvo indicaciones expresas del docente de

práctica.

En caso de encontrar un equipo en mal estado o con accesorios faltantes avisar

inmediatamente al docente responsable de la práctica a fin de que este tome lasmedidas adecuadas.


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- LA EVALUACIÓN PRÁCTICA ES CONSTANTE, al inicio de cada laboratorio se

evaluara al alumno. El estudiante deberá haber leído los temas a tratar antes del

inicio de clases.

- En los SEMINARIOS se evaluara la participación de cada alumno, así como a los

expositores por tema asignado. Luego de cada seminario se tomará la evaluación

escrita correspondiente.

II. PROGRAMACIÓN CALENDARIZADA

Práctica 1: Sumación espacial y temporal del impulso nervioso.

Práctica 2: Evaluación de la sensibilidad. Discusión de tema: Alteraciones de la

sensibilidad

Práctica 3: Evaluación de los sentidos. Discusión de tema: Alteraciones de los

sentidos

Práctica 4: Evaluación de los reflejos. Discusión de tema: Fármacos que actúan

sobre la Placa Motora: bloqueantes de placa, organofosforados, etc.

Práctica 5: Inhibición de la vía inhibitoria recurrente. Discusión de tema:

Mecanismos de acción de las toxinas (tetrodotoxina, batrachotoxina,toxina del escorpión, toxina tetánica, toxina botulinica) sobre el sistema

nervioso. Acción de las drogas (alcohol, tabaco, marihuana, éxtasis)

sobre el cerebro y sus consecuencias sobre la memoria y la actividad

personal.

Práctica 6: Sistema nervioso autónomo. Discusión de tema: SNA - Simpático:

Neurotransmisores y mecanismos de acción en los principales órganos.

SNA - Parasimpático: Neurotransmisores y mecanismos de acción en

los principales órganos.

EXAMEN PRÁCTICO PARCIAL

EXAMEN TEÓRICO PARCIAL

Práctica 7: Discusión de tema: Hormona Antidiurética. Diabetes Insípida y SIHAD

Práctica 8: Discusión de tema: Acromegalia y alteraciones del crecimiento.


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Práctica 9: Acción de la oxitocina en útero de rata. Discusión de tema:

Fisiopatología de la Hiperprolactinemia

Práctica 10: Curva de tolerancia oral a la glucosa. Discusión de tema: Test de

tolerancia oral a la glucosa. Repercusiones de la hiperglicemia en los

distintos órganos y sistemas.

Práctica 11: Diabetes experimental. Discusión de tema: Tejido graso como órgano

endocrino.

Práctica 12: Discusión de tema: Incretinas. Cambios fisiológicos durante elembarazo. Diabetes Gestacional.

Práctica 13: Discusión de tema: Pubertad. Climaterio - Menopausia

EXAMEN PRÁCTICO FINAL

EXAMEN TEÓRICO FINAL

IV. BIBLIOGRAFÍA RECOMENDADA

1. Fisiología Cuarta Edición. LINDA S. CONSTANZO.

2. Bases Fisiológicas de la Práctica Médica. West y Taylor.

3. Fisiología Médica. GUYTON A.C.

4. Fisiología Médica. GANONG W.F.5. Física para las Ciencias de la Vida. Alan H. CROMER.

6. Fisiología Humana. TRESGUERRES JAF.

7. Bioquímica. HARPER.

8. Principios de neurociencias. KANDEL.


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PRÁCTICA N° 1

SUMACIÓN ESPACIAL Y TEMPORAL DEL IMPULSO NERVIOSO

INTRODUCCIÓN

SUMACIÓN ESPACIAL Y SUMACIÓN TEMPORAL

Se denomina sumación espacial al fenómeno por el cual se produce una

sumación simultánea de los potenciales postsinápticos mediante la activación o

descarga de muchas terminales presinápticas situada en áreas muy separadas de la

membrana celular de la Neurona Postsináptica. Cuando el potencial de acción

postsináptico excitador total o resultante sea lo bastante grande se alcanzará el umbral

de descarga o activación y aparecerá espontáneamente un potencial de acción en el

segmento inicial del axón denominado Cono Axonal de la Neurona Postsináptica.

Los potenciales postsinápticos sucesivos causados por descargas de una

sola terminal presináptica si se producen con la rapidez suficiente, pueden sumarse y

generar un Potencial de Acción como respuesta en el Cono Axonal de la Neurona

Postsináptica. Este fenómeno de sumación se conoce como sumación temporal.

En otras palabras se dice que cuando los impulsos resultantes de los

estímulos llegan a través de distintas neuronas este efecto se denomina sumación

espacial. Si dichos impulsos llegan como una estimulación repetitiva procedente de

una misma neurona, el fenómeno se conoce como sumación temporal.

OBJETIVO

1. Demostrar algunas de las características de las acciones reflejas como: los

fenómenos de oclusión y facilitación, así como los de sumación espacial y

temporal.

MATERIALES Una preparación espinal del sapo.

Cuatro frascos conteniendo H2SO4 a diferentes concentraciones: 0.1% - 0.3% -

0.5% - 1%

Un frasco con suero fisiológico


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PROCEDIMIENTO:

SUMACIÓN TEMPORAL

1. En un sapo separe la médula del encéfalo con un estilete a través de una punción

en la articulación cráneo-vertebral.

2. Luego destruya la porción encefálica dirigiendo el estilete en dirección craneal

dejando intacta solo la médula (se dice entonces que se ha provocado un shock

espinal).

3. Cuelgue al animal espinal en un soporte.

4. Espere hasta que el animal quede quieto.

5. Introduzca la punta del dedo largo de una pata en las soluciones de concentración

creciente de H2SO4 que se encuentra en los frascos (0.1% - 0.3% - 0.5% - 1%);

lavando posteriormente con suero fisiológico la zona estimulada cada vez que se

introduzca en el ácido.

6. Observe la respuesta flexora con cada una de las concentraciones.

7. En todos los casos deben tomarse la precaución de que el área de piel que se

sumerge en las diferentes concentraciones sea siempre la misma.

ESTÍMULO INTENSIDAD DE LA REACCIÓN (+/++++)

H2SO4 0.1%

H2SO4 0.3%

H2SO4 0.5%

H2SO4 1%


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SUMACIÓN ESPACIAL

1.- Introduzca la punta del dedo de la otra pata en las soluciones de ácido empezando

por el más bajo hasta que se encuentre una respuesta débil. Esta concentración

servirá como el estímulo estándar.

2.- Introduzca cada vez mayores áreas de piel del sapo; lavando con suero fisiológico

después de cada estímulo.

3.- Observe la respuesta. Se debe tener en consideración que el tiempo de contacto

con el ácido debe ser igual y el menor posible.

RESULTADOS

ÁREA DE ESTIMULACIÓNINTENSIDAD DE LA REACCIÓN

(+/++++)

Contacto con un solo dedode una pata

Contacto con el tercio distalde la pata

Contacto hasta la mitad de lapata

Contacto con toda la pata

DISCUSIÓN

CONCLUSIONES


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PRÁCTICA N° 2

EVALUACIÓN DE LA SENSIBILIDAD

FUNDAMENTO:

El conocimiento del ambiente, la relación entre el cuerpo y el medio, e incluso

la percepción del estado y situación de varias partes del organismo, corren a cargo del

sistema nervioso sensitivo. El gusto, el olfato, la audición, la vista y el equilibrio han

sido clasificados desde hace mucho como sentidos especiales y así van a ser

estudiados en la práctica correspondiente, las informaciones recogidas por estos

sentidos corren a través de nervios craneales. Las sensaciones procedentes del resto

del cuerpo se llaman sensaciones somáticas.

Pueden provenir de receptores sensoriales dentro de la piel, o

inmediatamente debajo de ella, que informan sobre temperatura, tacto y dolor en la

superficie del cuerpo; se trata, pues, de sensaciones exteroceptivas. Otros receptores,

situados en tendones, músculos, alrededor de las articulaciones y en las cápsulas

articulares y en los tejidos por debajo de la piel, dan información acerca del estado de

contracción de los músculos, la situación y la velocidad con que se mueven los brazos,

piernas, dedos, y otras partes del cuerpo y las fuerzas o presiones que soportan. Estas

sensaciones son de naturaleza propioceptiva. También se recibe información de

estructuras más profundas, como hueso y tejido conectivo denso. Estas sensaciones

son generalmente las de vibración, dolor, presión profunda.

La percepción de los órganos internos o sensación visceral es transmitida por

el sistema nervioso autónomo. En general estas sensaciones se interpretan como

dolor o plenitud. Suelen iniciarse por distensión de una vísceras o de sus envolturas,

distensión de órganos huecos, o inflamación.

Objetivo:

Los estudiantes, trabajando en parejas y teniéndose a sí mismos como sujetos de

experimentación, mediante procedimientos sencillos, analizarán los diferentes tipos de

sensibilidad interpretando los resultados desde el punto de vista clínico.


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Procedimiento General:

Deben trabajar juntos dos estudiantes, uno como sujeto experimentador y otro como

examinado. Se invierten luego los papeles y se repiten los ejercicios.

EXPERIENCIA 1: TACTO

Material:

2 lápices de puntas largas y aguzadas por pareja de estudiantes.

Reloj cronométrico

Tiempo de Adaptación: El sujeto cierra los ojos. Con la punta de un lápiz se mueve

muy cuidadosamente un pelo del antebrazo del sujeto, y se mantienen en la nueva

posición.

Se pide al sujeto que comunique cuándo se da cuenta del desplazamiento del pelo, y

cuando desaparece esta sensación.

Se mide la duración de la percepción y se anotan los datos en la hoja de resultados.

Se repite el experimento con cinco pelos cuando menos, y se toma el tiempo medio deadaptación.

Localización del Tacto: El sujeto también cierra los ojos; y se vuelve a desplazar un

pelo aislado con la punta del lápiz. Se dice al sujeto que intente tocar, con la punta de

otro lápiz, la base del pelo que ha sido movido y el punto señalado por el sujeto. Se

repite la prueba cinco veces y se establece el error medio para la localización en la

zona estimulada.

EXPERIENCIA 2: TACTO DESCRIPTIVO

Material:

Un compás de dos puntas por parte de estudiantes. Este se puede fabricar

fijando con tela adhesiva una aguja hipodérmica, algo despuntada a un compás

común.


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Procedimiento:

El sujeto cierra los ojos. En distintos lugares de los dedos, las manos; los

brazos y la espalda, se coloca el compás ligeramente abierto y tocando, en dos puntos

separados, al sujeto. Se busca que distancia mínima discriminada debe haber entre

las dos puntas para que el sujeto experimente dos sensaciones diferentes (dos

“hincadas”).

El estudio se inicia poniendo las dos puntas del compás juntas, para que el

sujeto experimente una sola sensación, y luego se separan por una distancia mayor

que la necesaria para la discriminación para dos puntos. Se sigue la prueba con

cambios sucesivos, alternativamente por encima y por debajo de la distancia mínima,

hasta que una disminución muy pequeña de la separación de las puntas tiene como

resultado la sensación de tacto en esa área.

Se hacen cinco determinaciones de la distancia mínima para la discriminación

de dos puntos en cada una de las cuatro zonas establecidas para la experiencia. Se

anotan los promedios sobre la hoja de resultados.

EXPERIENCIA 3: SENSACIÓN TERMOALGESICA

Material:

2 varillas de aluminio de aproximadamente de 15 cm de longitud, por 0.5 de

diámetro, ambas con uno de sus extremos adelgazados y terminado en una

punta muy aguda y larga. Se puede fabricar limando y lijando el extremo de la

varilla de aluminio. El otro extremo se aísla con tela adhesiva.

2 vasos o recipientes de 500 ml de capacidad. Agua caliente y hielo.

Procedimiento:

Se introducen los probadores térmicos fabricados en los recipientes, uno con

agua caliente y el otro con agua y hielo picado. Cada varilla se pone en un vaso y se

deja en él hasta que se encuentre en equilibrio térmico con el contenido del recipiente.

Para realizar la prueba, tarda muy poco tiempo en equilibrarse con la

temperatura del medio ambiente; por lo tanto, hay que devolverla al vaso


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correspondiente cuando no se utiliza. Se debe secar con papel absorbente la varilla

cada vez que se extrae del vaso y se va a colocar sobre la piel del sujeto.Se traza un

círculo de unos tres centímetros sobre la cara dorsal de una de las manos.

Se dice al sujeto que cierre los ojos. Con mucho cuidado se toca la piel

dentro de la zona delimitada con uno de los probadores. Se toman los probadores

caliente y frío al azar, y se buscan receptores al frío y al calor hasta explorara toda la

zona dentro del círculo. Se señalan con puntos azules los lugares en donde el sujeto

refiere sensaciones de calor y con puntos rojos los lugares donde las sensaciones son

de frío. Varios sectores se estudian tanto con la varilla fría como con la caliente.

Después de estudiar la zona señalada, se anotan con puntos rojos y azules la

situación de los receptores al calor y al frío hallados en el examen, en el círculo de lahoja de resultados.

EXPERIENCIA 4: SENSACIONES PROPIOCEPTIVAS

Material:

2 vasos de material plástico o papel, muy pequeños (tipo copa o de cóctel). Porcada pareja de alumnos.

Unas 100 municiones de plomo similares de pequeño volumen (vías de rodaje,

bolitas de metal o vidrio).

Procedimiento:

Entre otras funciones, los receptores propioceptivos suministran al cerebro

información que puede ser empleada para establecer juicios acerca de fuerzas, pesos

y tamaños. Para demostrar la discriminación de peso, se ponen las municiones en

cada uno de los vasos. Se coloca un vaso en cada mano, sobre el dedo índice (se

puede fabricar al vaso una asa de pabilo para colgarlo), y se pide al sujeto que juzgue

sus pesos relativos (igual, menor o mayor). Se quitan ambos vasos y se saca una

munición de uno de ellos. Se vuelven a poner los vasos sobre los dedos índices y se

repite la pregunta.


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Se siguen quitando o poniendo municiones, una por una, del mismo vaso,

pero colocando al azar el vaso que tiene diez municiones sobre los índices derecho e

izquierdo, hasta estar convencido que el sujeto en verdad reconoció una diferencia de

peso. Para ver si es así pueden quitarse los vasos, hacer ruido como si se fuesen

cambiando pesas, y volver a ponerlos en donde estaban.

Después de establecer cuantas municiones deben quitarse antes de

reconocerse una diferencia, con vasos que no tenían en un principio diez municiones,

se repite la prueba utilizando veinte, luego treinta, cuarenta y por fin cincuenta.

Los resultados se colocan en la gráfica de la hoja de práctica. En las abcisas

se pone el número de municiones que estaban en el vaso inicialmente y en las

ordenadas el número de municiones que se fueron quitando. Analizar e interpretar el

trazado obtenido.

NOTA: Los alumnos deberán traer el material requerido para realizar la práctica, en

las condiciones solicitadas.

Discusión de tema: Alteraciones de la sensibilidad


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PROCEDIMIENTO

Punto Ciego

En la zona de la retina denominada disco óptico o punto ciego, las fibras nerviosas

dejan la cavidad ocular para formar el nervio óptico y se ubica la entrada y salida de la

circulación retiniana del ojo. Esta zona no posee receptores y constituye por lo tanto,

un punto ciego en el camino visual. La presencia del punto ciego no se advierte con

frecuencia, posiblemente debido a que el cerebro “rellena” esta falta de información,

además las imágenes formadas en ambos ojos son especulares, por lo que se puede

la zona ciega de un ojo con la imagen formada en el otro. Existen diversas formas de

poner de manifiesto estas regiones ciegas de la retina.

Demostración del punto ciego: mirar con el ojo derecho la cruz de la figura 1

fijamente, acercando el papel hasta unos 25 cm. Cuando desaparezca el círculo es

que su imagen se ha formado en el punto ciego del ojo derecho.

Este fenómeno tiene su base en el hecho de que la interpretación de la forma, que se

realiza en el cortex visual, no es lineal, sino participan miles de neuronas que realizan

de manera simultánea representaciones visuales múltiples de una imagen sencilla.

AUDICIÓN

FUNDAMENTO

Las ondas que llegan al oído por el aire del conducto auditivo externo hasta

llegar al tímpano. Al comprimir y descomprimir el aire, estas ondas mueven hacia fuera

o hacia dentro al tímpano, este movimiento es transmitido por la cadena mecánica de

huesecillos hasta la ventana oval, donde pone en movimiento el líquido contenido en elcaracol (perilinfa).

Por las características físicas del caracol y del líquido que contiene, este

movimiento de adelante atrás de lugar a fenómenos de resonancia. La localización del

vientre de resonancia depende de la frecuencia propia del líquido oscilante. Quedan

estimuladas las células de los receptores del órgano de corti cerca del punto resonante

y transforman las oscilaciones del líquido en impulsos nerviosos que son transmitidos

al cerebro. El tono del sonido percibido depende de la localización de los receptores

estimulados, y su intensidad, del grado de deformación de los cilios.


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Puesto que el movimiento relativo entre las células y el líquido del caracol

producen la sensación de sonido, también se pueden estimular las células ciliadas por

vibraciones de las paredes óseas del caracol.

Por ejemplo, las vibraciones de un diapasón pueden transmitirse por los

huesos del cráneo y estimular las células ciliadas, produciendo la sensación de sonido

sin que intervengan el tímpano ni los huesecillos. Por lo tanto, se puede distinguir una

pérdida de audición por anomalías del caracol, del órgano de Corti o de las vías

(sordera de conducción). Si existe sordera nerviosa, las vibraciones del diapasón no

se perciben como sonido, bien sea que el diapasón se ponga cerca del oído o que

toque al cráneo. Pero si la sordera se debe a trastornos de conducción, las vibraciones

a través del cráneo serán reconocidas como sonido.

Además, cuando existen dificultades de conducción aérea, y el diapasón se

coloca en la parte media de la frente el sonido se percibe más intensamente en el oído

interno.

OBJETIVO

En esta práctica el alumno actuara como sujeto observador y experimental

simultáneamente, y debe concentrar la atención en la observación de sus propias

experiencias.

MATERIALES

Diapasón c-256

PROCEDIMIENTO

Prueba de Weber:

Se hace vibrar el diapasón y se coloca sobre el vertex, el individuo con una audición

normal localizará el sonido enfrente de él, pero si padece sordera de transmisión en un

oído, oirá mejor por el oído defectuoso, ya que el ruido ambiental es percibido en


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menor medida por este oído, no interfiriendo en la percepción del sonido del diapasón

que le llega por la vía ósea.

Prueba de Rinne:

Se hace vibrar el diapasón y se mantiene enfrente del oído hasta que deja de oírse, e

inmediatamente, se coloca sobre la apófisis mastoidea, si el individuo padece de

sordera de transmisión en ese oído, percibirá el sonido del diapasón cuando se coloca

sobre el hueso (Rinne negativo); si el oído es normal o tine sordera de percepción no

lo percibirá (Rinne positivo)

SENTIDOS DEL GUSTO Y OLFATO

FUNDAMENTO

Tanto desde el punto de vista funcional como estructural, el gusto y el olfato

tienen numerosos puntos en común. Ambos son sensibles a estímulos químicos

(quimiorreceptores) y presentan por tanto la capacidad de detectar la presencia de

sustancias (iones o moléculas) disueltas en el medio ambiente.

Mediante el olfato se detectan compuestos químicos en fase gaseosa,

mientras que mediante la degustación (gusto) se detectan sustancias químicas

disueltas en un medio líquido. La quimiorrecepción constituye la base de numerosas

actividades del comportamiento animal, incluida la comunicación interindividual;

también esta relacionada con la búsqueda y captura de alimento, la evitación de

sustancias o ambientes nocivos y los mecanismos de atracción.

OBJETIVO

En esta práctica el alumno actuara como sujeto observador y experimental

simultáneamente y debe concentrar la atención en la observación de sus propias

experiencias.

MATERIALES

Pipetas Pasteur

Pinzas

Sacarosa


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Acido acético

Cloruro de sodio

Quinina

Papas, manzanas y cebollas

Agua destilada

PROCEDIMIENTO

Localización de los receptores gustativos

Se realiza un primer lavado de la boca con agua destilada y se deposita una gota de

una solución de sacarosa al 5% sobre diferentes zonas de la lengua donde se

acumulan los receptores gustativos.

Anotar la intensidad con que es percibido el sabor en las distintas areas.

Enjuagar bien la boca con agua y repetir la experiencia depositando por medio de una

pipeta Pasteur pequeñas cantidades de una disolución de acido acético al 1% a

continuación de una solución de cloruro de sodio al 5% y finalmente de una disolución

de quinina al 0.05%

Confusión olor – sabor

Para su comprobación se realiza la experiencia con trozos de cebolla, patata y

manzana, entre dos compañeros, uno cierra los ojos se tapa las fosas nasales y el otro

introduce con unas pinzas, en ensayos sucesivos y de forma alternada un trozo de

cada alimento, pidiendo que lo identifique, a continuación se destapa las fosa nasales

y se pide que de nuevo lo identifique

Area Sacarosa Ac. Acetico ClNa Sacarosa QuininaPunta de la

lengua

Parte lateral

Parte

posterior

Discusión de tema: Alteraciones de los sentidos


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PRACTICA N°4

EVALUACIÓN DE LOS REFLEJOS

LOS FENÓMENOS REFLEJOS - EL ARCO REFLEJO

FUNDAMENTO:

Las acciones reflejas son respuestas adaptativas mediadas por el sistema nervioso,

cuya función básica es la de salvaguardar al individuo y preservar la especie. En estas

respuestas no interviene la conciencia.

Las acciones reflejas son respuestas automáticas, inconscientes a la acción de

un estímulo.El substrato anatómico, la base física, sobre el cual se realizan los actos

reflejos se llama arco reflejo

Componentes de un arco reflejo:

Receptor: Es la estructura encargada de captar el estímulo (recoger la información).

Vía aferente: Lleva la información hacia el sistema nervioso integrador. Generalmente

son dendritas.

Centro nervioso integrador: Recibe y procesa la información y elabora la respuesta.

Puede ser la médula espinal. El tronco encefálico y aún la corteza cerebral.

Vía eferente: Transmite las órdenes desde el centro nervioso integrador hacia los

efectores, generalmente son axones.

Efector: Realizan las órdenes: Músculos o glándulas.

Clases de arcos reflejos:

a) Arco reflejo monosináptico: La neurona aferente hace sinapsis directamente

con la neurona eferente, no hay neurona intercalar. Ejemplo: Reflejos

osteotendinosos.

b) Arco reflejo polisináptico. Entre la neurona aferente y la neurona eferente se

intercalan una o más neuronas intercalares. Ejemplo: Reflejo de flexión o dedefensa


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Objetivo:

Estudiar los mecanismos que ocurren cuando frente a un estímulo determinado se

produce una respuesta refleja.

Material:

a. Un martillo de reflejos.

b. Una linterna oftalmológica.

Procedimiento:

a. Reflejos de estiramiento miotáticos.

Con el martillo de reflejos, percuta el tendón de inserción del cuadriceps crural

en la tibia de uno de sus compañeros, observe la respuesta extensora de la

pierna. Trate de obtener otros reflejos de estiramiento percutiendo el tendón del

biceps, triceps, el tendón de Aquiles, etc.

Obtenga los siguientes reflejos:

Coracobraquial, bicipital, tricipital, cubitopronador , y estilorradial.

Así mismo el patelar, Aquíleo y flexor de los dedos del pie. Intente obtener r.

de Babinski.

b. Reflejos fotomotor y consensual.

Utilice una linterna oftalmológica para obtener el reflejo pupilar .

FOTO ESTIMULACIÓN: El sujeto experimental permanece con los ojos

abiertos en un ambiente de luz normal.

El estudiante observa las pupilas y calcula su diámetro en milímetros. Luego

alumbra directamente cada pupila con la linterna clínica y observa su reacción

volviendo a medir nuevamente el diámetro pupilar. Finalmente hace que el

sujeto experimental permanezca con los ojos abiertos en un lugar de muy poca

luz, repetir el procedimiento de las mediciones.

Aprovechar este paso para iluminar uno solo de los ojos y ver lo que sucede en

el ojo opuesto. Las experiencias hay que hacerlas por lo menos unas cinco

veces, para luego sacar conclusiones.


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Resultados

Explicar los resultados obtenidos en cada experimento realizado.

Comentar la importancia de los reflejos cuyo centro integrador está a nivel cortical(

R. Cremasteriano, r. Cutáneo-abdominales, r. de Babinsky)

Elaborar conclusiones y recomendaciones.

REFLEJO NIVELMEDULAR

INTENSIDAD DE LA RESPUESTA(+/++++)

Bíceps C5

Braquiorradial C6

Tríceps C7

Rotuliano L3

Aquíleo S1

Discusión de tema: Fármacos que actúan sobre la Placa Motora: bloqueantes de

placa, organofosforados, etc.


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PRACTICA N°5

INHIBICIÓN DE LA VÍA INHIBITORIA RECURRENTE

INTRODUCCIÓN

La vía inhibitoria recurrente es un mecanismo de feedback negativo que

mejora la resolución espacial de la acción neuronal. Esta vía provee un mecanismo

que asegura que el músculo no se contraiga por mucho tiempo.

A nivel del primer nodo de Ranvier del axón de la Motoneurona Alfa se

desprende una rama colateral que pasa medial y dorsalmente. Es la llamada rama

recurrente porque regresa en la materia gris.

Esta colateral recurrente forma sinapsis con interneuronas que se

encuentran en la región ventromedial del Asta anterior (conocidas como interneuronas

de Renshaw); cuyos axones se proyectan hacia las Motoneuronas como sinapsis

inhibitorias. Esta vía actúa entonces como una inhibición de feedback. El

neurotransmisor involucrado en esta sinapsis inhibitoria es la Glicina.

La ESTRICININA es un antagonista competitivo selectivo de los receptores

de Glicina bloqueando la sinapsis inhibitoria de las células de Renshaw sobre las

Motoneuronas. Este efecto trae como consecuencia el aumento de los impulsos

nerviosos sucesivos generados por la Motoneurona sin control que generan

contracciones que se asemejan a las convulsiones por tétanos, epilepsia, síndrome

febril y eclampsia severa.

Existe una contracción sostenida entre los músculos extensores y flexores,

originando espasmo muscular que puede causar la muerte por el ahogo inducido por

el espasmo laríngeo.

OBJETIVO:

1. Detallar los componentes en la inhibición recurrente

MATERIALES:

Un sapo


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01 jeringa descartable de 1cc

Sulfato de Estricnina 1/1000

PROCEDIMIENTO:

1.- Inyecte en el saco linfático dorsal de un sapo normal sin manipular (por encima dela articulación de la cadera) 1mL de sulfato de Estricnina al 1/1000 con una jeringadescartable.

2.- Observe la reacción del animal.

RESULTADOS

INHIBICIÓN DE LA VÍA INHIBITORIA RECURRENTE

Reacciones frente a la administración de estricnina

1.- ………………………………………………....................................................................

2.-………………………………………………………………………………………………..

3.-……………………………………………………………………………………………….

Discusión de tema: Mecanismos de acción de las toxinas (tetrodotoxina,

batrachotoxina, toxina del escorpión, toxina tetánica, toxina botulinica) sobre el sistema

nervioso. Acción de las drogas (alcohol, tabaco, marihuana, éxtasis) sobre el cerebro y

sus consecuencias sobre la memoria y la actividad personal.


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PRÁCTICA N°6

SISTEMA NERVIOSO VEGETATIVO

OBJETIVOS

Reconocer el equilibrio fisiológico basal que establecen las divisiones del SNA.

Evaluar la intensidad de las modificaciones que se producen con la

manipulación de la división parasimpática.

Monitorizar al animal bajo anestesia general.

MATERIALES

Un conejo

Pentobarbital, Pilocarpina, Atropina

Jeringas de 1cc y 5 cc

PROCEDIMIENTO

1. Pesar al CONEJO para administrar pentobarbital sódico intravenoso.

2. Rasurar una de las orejas del conejo, para evidenciar la vena marginal. Aplicarxilol.

3. Una vez anestesiado tomar frecuencia cardiaca y respiratoria y auscultar ruidos

hidroaereos abdominales basales.

4. Controlar durante 5 minutos el volumen de flujo salival que espontáneamente

cae del hocico del animal.

5. Tomar la frecuencia cardiaca, respiratoria y auscultar ruidos hidroaereos

abdominales.

6. Aplicar atropina solución 0.5 mg/ml.

7. Controlar durante 5 minutos el volumen de flujo salival que espontáneamente

cae del hocico del animal.

8. Tomar la frecuencia cardiaca, respiratoria y auscultar ruidos hidroaereos

abdominales.

9. Anotar los resultados.


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ANIMAL CONEJO

FRECUENCIA CARDIACA BASAL

FRECUENCIA RESPIRATORIA

RUIDOS RESPIRATORIOS

SALIVACIÓN BASAL

DIAMETRO PUPILAR BASAL

RHA BASALES

EVACUACIÓN DE HECES

ADMINISTRACIÓN DE PILOCARPÌNA



RUIDOS RESPIRATORIOSSALIVACIÓN BASAL


RHA BASALES


ADMINISTRACIÓN DE ATROPINA



RUIDOS RESPIRATORIOSSALIVACIÓN BASAL


RHA BASALES


Discusión de tema: SNA - Simpático: Neurotransmisores y mecanismos de acción en

los principales órganos. SNA - Parasimpático: Neurotransmisores y mecanismos deacción en los principales órganos.


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PRACTICA N°7

DISCUSIÓN DE TEMA

1. Hormona Antidiurética. Diabetes Insípida y SIHAD

Observaciones:

Cada presentación durará entre 30 min y 40 min como máximo. Es obligatorio

que al final de la presentación este anexado la bibliografía y dentro de esta la

revisión de mínimo 10 artículos científicos de máximo 10 años de antigüedad.

Se presentará en un CD la presentación en power point, una monografía y los 10

artículos científicos en formato pdf.

El CD se presentará el mismo día de la exposición, de no hacerlo se le adjudicará

la nota cero en los respectivos ítems.

Criterios de Evaluación:

Disertación: Presentación de tipo oral que demuestra la capacidad y dominio del

tema del alumno (FACTOR DE EVALUACIÓN 0.3)

Presentación en Power Point: Ayuda audiovisual que apoya el desarrollo de los

temas (FACTOR DE EVALUACIÓN 0.2)

Interés del Tema: Es el énfasis que el expositor pone al tema haciéndolo más

interesante y motivador (FACTOR DE EVALUACIÓN 0.2)

Monografía: Desarrollo en físico del tema tratado (FACTOR DE EVALUACIÓN

0.3)


26/43

PRACTICA N°8

DISCUSIÓN DE TEMA

1. Acromegalia y alteraciones del crecimiento

Observaciones:

Cada presentación durará entre 30 min y 40 min como máximo. Es obligatorio que al

final de la presentación este anexado la bibliografía y dentro de esta la revisión de

mínimo 10 artículos científicos de máximo 10 años de antigüedad.



El CD se presentará el mismo día de la exposición, de no hacerlo se le adjudicará la

nota cero en los respectivos ítems.


Disertación: Presentación de tipo oral que demuestra la capacidad y dominio del tema

del alumno (FACTOR DE EVALUACIÓN 0.3)

Presentación en Power Point: Ayuda audiovisual que apoya el desarrollo de los temas

(FACTOR DE EVALUACIÓN 0.2)



Monografía: Desarrollo en físico del tema tratado (FACTOR DE EVALUACIÓN 0.3)


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PRACTICA N°9

ACCIÓN DE LA OXITOCINA EN ÚTERO DE RATA

OBJETIVOS:

Aprendizaje y manejo de la disección de los animales, preparación de

soluciones fisiológicas, utilización de balanzas y utilización del sistema de órganos

aislados.

Tomar datos y fijarlos dando así modelo experimental el cual será discutido y

tal vez modificado para poder realizar otros experimentos basados en las inquietudes

científicas de los alumnos.

INTRODUCCIÓN:

Para el presente experimento será bueno recordar algunas características del

músculo liso uterino, el cual se caracteriza por tener un grado de actividad eléctrica y

contráctil espontánea; el útero tiene inervación parasimpático y simpática, la primera

es mediante los nervios pelvianos y la última a través de las fibras postganglionares de

los ganglios mesentéricos inferiores e hipogástricos.

El músculo liso uterino es susceptible a la influencia endocrina en especial al

de los estrógenos y la oxitocina, por consiguiente la actividad espontánea y la

respuesta a los estímulos neurológicos hormonales y farmacológicos aumentan en

forma pronunciada en la pubertad y más tarde varía con el ciclo ovulatorio.

OXITOCINA: Es una hormona secretada por la hipófisis posterior, tiene

efectos sobre la contracción del músculo liso uterino, de aquí sus importancia durante

el parto, esta hormona induce la contracción del músculo liso cuando la membrana de

la célula muscular uterina contiene suficientes receptores de excitación, también

cumple un papel en la lactancia donde actúa contrayendo las células mioepiteliales

que rodean las paredes externas de los alvéolos y en este momento la succión del

niño es eficaz obteniendo leche.

RECEPTOR DE OXITOCINA: Justo antes del principio de la labor de parto, el

miometrio uterino es extremadamente sensible a la oxitocina por el incremento en el

número de sus receptores.


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MATERIALES:

Dos ratas hembra adulta por cada grupo.

Solución de Smith y Mc Closky.

Oxitocina en ampollas. Adrenalina en ampollas.

Acetilcolina en ampollas.

Estrógenos en tabletas.

Equipo de órgano aislado.

Sevorane.

PROCEDIMIENTO

Sacrifique a una rata hembra adulta no preñada.

Extraiga cuidadosamente el útero, manteniéndolo en una placa Petri con una

solución de Smith y Mc Closky (solución isotónica para útero) a una temperatura

de alrededor de 38°C.

Coloque un cuerno uterino o un segmento del mismo aproximadamente 2 cm.

Dentro de la copa de baño que contiene la solución de Smith y Mc Closky a la

temperatura constante de 38°C y con oxigenación mediante burbujeo permanentede aire, de tal manera que uno de sus extremos quede fijo a la base de la copa y

el otro al transductor que transmitirá la actividad motriz (contracciones y

relajaciones) del órgano al sistema de captura de datos que en este caso es un

registrador digital o la pantalla de un monitor de computadora para obtener los

registros gráficos).

Después de unos 10 a 15 minutos de estabilización del órgano, tome el registro

basal de las contracciones uterinas: Altura o intensidad (mm) y frecuencia

(contracciones/minuto). Luego proceda a registrar la actividad uterina bajo la acción sucesiva de cada una

de las siguientes sustancias que serán añadidas al baño de la copa por instilación:

Acetilcolina, solución 0.1 mg/mL; dosis: 1µg/mL de baño.

Adrenalina, solución 0.1 mg/mL; dosis: 1µg/mL de baño.

Oxitocina, solución 5 U.I./mL; dosis: 0.04µg/mL de baño.

Después de registrar durante unos 5 minutos el efecto de cada droga, realice el

lavado del órgano por tres veces, para lo cual drenará la solución de la copa y la

volverá a llenar con un nuevo volumen de la solución de Smith y Mc Closky. Antes


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de añadir la siguiente droga, espere que el órgano se estabilice y recupere su nivl

basal.

NOTA: La solución de Smith y Mc Closky tiene la siguiente composición: NaCl

(9.20 g), KCl (0.42 g), CaCl2 (0.12 g), NaHCO3 (0.50 g), NaH2PO4 (0.08 g),

glucosa (0.50 g), agua destilada (c.s.p.1000mL).

Discusión de tema: Fisiopatología de la Hiperprolactinemia


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PRACTICA N°10

CURVA DE TOLERANCIA ORAL A LA GLUCOSA Y CUERPOSCETÓNICOS

INTRODUCCIÓN

Los mecanismos fisiológicos de regulación de la glucosa tienen por un lado a

varias hormonas entre ellas las hiperglicemiantes como las catecolaminas, glucagón,

hormona de crecimiento, y cortisol; y por otro lado a la insulina como hipoglicemiante

por excelencia. Esta regulación tiene muchos factores asociados tanto a su incremento

como a su disminución, siendo uno de ellos el peso del paciente. A mayor peso del

paciente la resistencia a la insulina será más alta por lo tanto los pacientes tendrán

mayores dificultades para enfrentar una carga de glucosa. El test de tolerancia a la

glucosa nos ayuda a conocer cómo reacciona el organismo frente a esa carga.

Por otro lado el proceso de ayuno activa los mecanismos de gluconeogénesis

los cuales hacen posible la degradación de los triacilgliceroles, para ser transformados

en ácidos grasos y glicerol, siendo este ultimo componente materia prima para la

formación de glucosa no sin antes formar en sus pasos metabólicos los cuerpos

cetónicos (acetoacetato, beta-hidroxibutirato, acetona), los cuales no solo se

incrementarán en sangre sino que serán excretados en mayor cantidad a nivel renal.

Materiales

30 tiras reactivas para hemoglucotest.

6 glucómetros.

30 tiras reactivas de orina.

6 envases de las tiras reactivas de orina.

30 lancetas.

1 paquete de algodón.

1 frasco de 500 ml de alcohol al 70%.

1 caja de guantes talla M.


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20 Beaker para toma de muestra de orina.

15 paquetes de 75 gr. de glucosa anhidra.

Maniobras experimentales

1. Para el inicio de la práctica cada alumno deberá traer en un papel cuadriculado el

valor de su peso, talla y su índice de masa corporal (IMC = Peso/Talla2).

2. Los alumnos deberán de ingresar a la práctica con un tiempo de ayuno de 6 horas.

3. Al ingreso a la práctica deberán medir por medio de un hemoglucotest su glicemia

basal, anotándola en la Tabla 1.

4. Cada alumno además se tomará una muestra de orina en un Beaker, y se realizará

la prueba de tira reactiva. Teniendo en cuenta la presencia cualitativa de glucosa y

cuerpos cetónicos, anotando el valor del resultado en la Tabla 2.

5. Se tomarán los tres valores más altos de cada grupo y se les procederá a

administrar una solución de carga oral de glucosa (75 g de glucosa anhidra) en agua

en un lapso de 5 minutos. La concentración no debe superar los 250 g/L.

6. Los alumnos escogidos serán sometidos a pruebas de hemoglucotest a 1 y 2 horas.

7. Del total de casos que resulten positivos a cuerpos cetónicos, se escogerán a tres y

se les administrará Glucosa Anhidra, procediendo a medir una segunda muestra de

orina a las 2 horas de la primera. Anotar los resultados en el cuadro.

8. Realizar la curva.

CURVA DE TOLERANCIA ORAL A LA GLUCOSA Y CUERPOS CETÓNICOS


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RESULTADOS

Valores de glicemia. Tabla 1

Presencia de glucosuria y cuerpos cetónicos en orina. Tabla 2

Interpreta los resultados

Discusión de tema: Test de tolerancia oral a la glucosa. Repercusiones de la

hiperglicemia en los distintos órganos y sistemas.


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PRACTICA N°11

DIABETES EXPERIMENTAL

INTRODUCCIÓN

La diabetes mellitus es una enfermedad cuyo trastorno básico es reside en la

incapacidad de la insulina para ejercer en forma adecuada sus efectos metabólicos, lo

que se traduce en alteraciones del metabolismo de los hidratos de carbono, proteínas

y grasas.

El organismo requiere de un suministro constante de energía; sin embargo, el

ser humano sólo consume alimentos a determinadas horas del día. Después de la

ingesta de nutrientes, estos se almacenan por acción de la insulina y luego en el

ayuno son liberados de los depósitos, por aumento del glucagón, para mantener el

gasto energético.

En el organismo, la regulación de la homeostasis de los nutrientes es función

de las hormonas secretadas por los islotes de Langerhans. Estos detectan las

disponibilidades y necesidades de energía, y responden liberando insulina para

promover el anabolismo, y el almacenamiento de sustancias nutritivas cuando

abundan. Por el contrario, si se requiere energía, los islotes secretan glucagón,

hormona catabólica, que moviliza y distribuye las sustancias nutritivas de los

depósitos.

Los islotes de Langerhans se encuentran disperso en todo el páncreas, pero

especialmente en la cola. El número de islotes varía ampliamente entre 100 000 y 2

500 000, los que en total corresponden al 1-2% del páncreas total. Están formados

fundamentalmente por 4 células: alfa, beta, delta, y F, cuya disposición insular esconstante y no dispuesta al azar. Las ubicadas hacia la periferia del islote son las alfa

(16%), que contienen glucagón; inmediatamente hacia el interior se encuentran las

células delta (8,5%), que producen somatostatina; en la parte central se encuentran

las células beta (62%), que liberan insulina. Las F, también llamadas PP,

localizadas en la periferia de los islotes y en la parte posterior e inferior de la

cabeza del páncreas secretan el polipéptido pancreático.


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Figura 1. Islotes de Langerhans

Insulina

La insulina humana se sintetiza a partir de precursores secuenciales: primero

se forma preproinsulina, constituida por 110 aminoácidos (PM 11 500), con una vida

media de un minuto, luego la preproinsulina da lugar a la proinsulina (PM 9 000). En el

aparato de Golgi, por acción de una enzima convertasa, la proinsulina se transforma a

insulina al perder el péptido C (PM 3 000); la insulina queda constituida por las

cadenas A y B, de 21 y 30 aminoácidos, respectivamente y un peso molecular de 6

000. A medida que se sintetiza la hormona se une al zinc, formando hexámeros

almacenados como microcristales en gránulos.

Secreción

El principal mecanismo de liberación de la hormona de la célula beta es la

exocitosis, que involucra el desplazamiento de los gránulos a través del citoplasma

hasta la membrana celular y su posterior entrega al espacio extracelular. El tráfico de

estas vesículas se explica por la acción de unas proteínas de la familia de los Rab y su

especificidad por la teoría del los SNARE.


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En el mecanismo de secreción de la hormona participan diversos

compuestos: nutrientes (glucosa, aminoácidos), hormonas (GIP: polipéptido

gastrointestinal, GLP-1: péptido glucagón símil) y neurotransmisores (acetilcolina,

colecistoquinina). A cada grupo de estímulos le corresponde un mecanismo receptor

específico; en el caso de los nutrientes lo más probable es que sea una enzima del

metabolismo de la glucosa, que al aumentar los cofactores reducidos NADH y NADPH,

forman ATP. Para las hormonas sería el sistema adenil ciclasa que eleva los niveles

de AMPc y para los neurotransmisores la fosfolipasa C, que da origen a diacilglicerol

(DAG) y a inositoltrifosfato (IP3).

Los estímulos liberan insulina, inducen una despolarización de la membrana

de la célula beta, la que se efectúa en etapas:

Reducción del eflujo celular de K+ con inicio de una lenta despolarización

Apertura de los canales de Na+ con acumulación de Na+ intracelular,

reducción de la salida de Ca2+ y una marcada disminución de la relación

K+/Na+

Apertura de los canales de voltaje sensible a Ca2+, cuando la diferencia de

potencial de membrana llega a 0 mV, lo que produce un aumento intracelular

de Ca2+ y secreción de insulina.

Repolarización de la membrana (etapa final del proceso) la que se lleva a cabo

por dos mecanismos: se abren los canales de K+ (ATP y Ca2+ sensibles) con

participación de la bomba Na+/K+. El AMPc y el IP3 favorecen la salida del

Ca2+ mitocondrial hacia el citosol.

Posteriormente, el gránulo de insulina se pone en contacto con la membrana

celular y se produce la fusión.

El principal secretagogo de la insulina (síntesis y secreción) es la

concentración de glucosa extracelular, la magnitud de la respuesta de la célula beta

depende de la intensidad y duración del estímulo de la glucosa. Además, este

hexámero tiene una acción permisiva para otros secretagogos.

En condiciones de normalidad existe una insulinemia basal de 5-12,5 uU/mL

como respuesta a bajas concentraciones de glucosa circulante (60-100 mg/dL); con

glicemias entre 100 y 150 mg/dL, el páncreas libera insulina en forma monofásica,


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rápida y breve, alcanzando hasta 100uUmL. Con niveles de glucosa de 150 a 200

mg/dL, la secreción es bifásica, curva que se pone en evidencia con el estímulo de

glucosa endovenosa; la primera fase rápida y breve, se debe a la interacción entre

glucosa y su trasportador, entregándose la insulina almacenada en los gránulos. La

segunda fase, caracterizada por una elevación lenta y mantenida de la insulinemia, se

debería a la estimulación intracelular provocada por los productos del metabolismo de

la glucosa y estaría relacionada con la biosíntesis de la hormona.

Figura 2. Secreción de insulina

Mecanismo de acción

La insulina es una de las principales hormonas reguladoras del metabolismo

celular; a corto plazo, induce modificaciones en la actividad de enzimas y

transportadores de membrana y, a largo plazo, provoca cambios en la síntesis de

múltiples factores de naturaleza proteica.

Una vez entregada la insulina a la circulación, ésta actúa en los tejidos

periféricos, de naturaleza glicoproteica y estructura heterotetramérica. Estos se

sintetizan como un precursor o pro-receptor, el que es glicosilado, formando dos


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unidades alfa (125-135 kD) que se encuentran ubicadas en la cara externa de la

membrana celular y hacia el interior del citoplasma.

El receptor de insulina es una tirosina quinasa, regulada por la propia

hormona. Cuando se une a la insulina la subunidad alfa, se estimula la fosforilación de

los aminoácidos tirosina, glicina y lisina de la subunidad beta; el ATP actúa como

donador de fosfato. Posteriormente ocurre la autofosforilación del receptor, la que se

produce a lo menos en cinco tirosinas de la porción intracelular de la subunidad beta.

La actividad tirosina-quinasa es esencial para las acciones insulínicas.

Los principales sustratos intracelulares de naturaleza proteica que participan

en la transmisión de la señal insulínica son los llamados IRS (insulin receptor sustrate),

moléculas que son rápidamente fosforiladas después de la activación del receptor,

participando y amplificando la señal. Luego se activan enzimas citoplasmáticas, entre

otras la fosfatidilinositol-3-quinasa (PIP3K), la que al fosforilarse activa finalmente a los

transportadores de glucosa (cascada de fosforilaciones), los que por traslocación

permiten la entrada de glucosa desde el extracelular al intracelular.

El transporte de glucosa al interior de la célula se realiza mediante el proceso

denominado difusión facilitada, que consiste en la traslocación selectiva de una

molécula a través de la membrana celular en contra de su gradiente, y con la

intervención de una estructura glicoproteica conocida como trasportador GLUT.

Como última etapa, para terminar la transmisión de la señal, se inactiva el

receptor por un mecanismo de desfosforilación, proceso en el que participa la

proteíntirosinafosfatasa 1B.

Figura 3. Efectos de la insulina


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Agentes Químicos

Alo xano (2,4,5,6-tetraoxip irim idin a; 5,6-dioxiu racil)

SGLT (sodium -dependent gluco se cotransporters)

Figura 5. SGLT 1 y 2


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Materiales

18 ratas de 200 a 300 gramos de peso.

18 jaulas metabólicas.

1 kg de aloxano.

1 caja de guantes talla M.

60 lancetas.

18 Beakers para toma de muestra de orina.

60 tiras reactivas para hemoglucotest.

6 glucómetros.

1 frasco ámpula con 10 ml con 1 000 unidades de insulina humana isófana.

18 jeringas de tuberculina.

36 tiras reactivas de orina.

6 envases de las tiras reactivas de orina.

1 paquete de algodón.

1 frasco de 500 ml de alcohol al 70%.

Preparación de los animales de experimentación

Las ratas previo a la administración de los fármacos, deben permanecer por48 horas en ayunas; controlando su peso, glicemia y cuerpos cetónicos basales.

Posterior al ayuno se realizan nuevamente estos controles. Antes de la práctica (2

horas) se debe hidratar a los animales (vía cánula oral) con agua corriente.

Rata A sirve de control. Rata B se le administrará 48 horas antes de la

práctica, una dosis de aloxano 200 mg/kg intraperitoneal. Rata C se le administrara

100 mg/kg de floricina dos horas previa a la práctica.


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Procedimiento

1. Colocar los animales en las jaulas metabólicas y colocar los frascos para recolectar

la orina.

2. Observar las características físicas y comportamiento de los animales.

3. Determinar en los tres animales la glucosa en sangre. La muestra se obtiene por

medio de un corte en la cola tratando de exprimir hacia abajo y recolectar una gota de

sangre haciendo caer ésta directamente sobre la cinta

HaemoGlucotest, esperar por un minuto, limpiar y dar lectura a la cinta comparándola

con el tubo y luego mediante el glucómetro.

4. Recolectar por separado las muestras de orina de las jaulas metabólicas para el

dosaje de glucosa. Introducir en cada frasco una glucocinta de aproximadamente 5 cm

empaparla y transcurrido 1 minuto proceder a la lectura.

5. Para determinar los cuerpos cetónicos, sumergir la cinta de Uri-test en la orina

recolectada, transcurrido 1 minuto proceder a la lectura.

6. Administrar Insulina 1 U.L por cada 100 g de peso vía IP. Luego de 1 hora repetir

los controles anteriores.


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DIABETES EXPERIMENTAL

RESULTADOS

Discusión de tema: Tejido graso como órgano endocrino.


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PRACTICA N°12

DISCUSIÓN DE TEMA

1. Incretinas.

2. Cambios fisiológicos durante el embarazo

3. Diabetes gestacional

Observaciones:

Cada presentación durará 30 min como máximo. Es obligatorio que al final de la

presentación este anexado la bibliografía y dentro de esta la revisión de mínimo

10 artículos científicos de máximo 10 años de antigüedad.













0.3)


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PRACTICA N°13

DISCUSIÓN DE TEMA

1. Pubertad2. Climaterio y menopausia

Observaciones:

Cada presentación durará 40 min como máximo. Es obligatorio que al final de la

presentación este anexado la bibliografía y dentro de esta la revisión de mínimo

10 artículos científicos de máximo 10 años de antigüedad.













0.3)

Guia Fisiología 2015

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