GUIA FORMATIVA RESIDENTES ANALISIS CLINICOS€¦ · Conocimiento de la organización sanitaria...

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GUIA FORMATIVA DE RESIDENTES

DEL SERVICIO DE ANALISIS CLINICOS DEL HUNSC

Elaborada por: Dra. Inmaculada García Cobaleda. Tutora Análisis Clínicos

Dr. Joaquín Martínez Muñoz. Tutor de Análisis Clínicos Pendiente de Aprobación por Comisión de Docencia.

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INDICE

I. INTRODUCCIÓN II. AMBITO DE ACTUACIÓN III. OBJETIVOS DOCENTES IV. ROTACIONES

IV.1. UNIDADES DEL SERVICIO DE ANALISIS CLINICOS

IV.1.1. Unidad de Urgencias y Fármacos IV.1.2. Unidad de Orinas y Líquidos Biológicos IV.1.3. Unidad de Bioquímica Core IV.1.4. Unidad de Alergia IV.1.5. Unidad de Inmunología IV.1.6. Unidad de Fertilidad IV.1.7. Unidad de Diagnóstico Molecular

IV.2. SERVICIO DE HEMATOLOGIA Y HEMOTERAPIA IV.3. SECCIÓN DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGIA IV.4. LABORATORIO DE ÁREA IV.5. ROTACIONES EXTERNAS

V. EVALUACIÓN VI. COMPETENCIAS VII. DOCENCIA E INVESTIGACIÓN

VIII. PROTECCIÓN RADIOLOGICA IX. SUPERVISION DEL RESIDENTE

X. SESIONES DOCENTES DEL SERVICIO

XI. GUARDIAS XII. REVISIÓN

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I. INTRODUCCIÓN

Misión del Laboratorio Clínico El Laboratorio Clínico es el ámbito de la actividad sanitaria donde se realiza el estudio de la salud y la enfermedad con la finalidad de participar en el diagnóstico, pronóstico, tratamiento, seguimiento y prevención de las enfermedades, por medio de la observación, transformación y medida cualitativa y cuantitativa de los elementos biológicos —moleculares, celulares, tisulares u orgánicos—, endógenos y exógenos del cuerpo humano. El Laboratorio Clínico presta los siguientes servicios: - Provisión de información sobre el valor semiológico de sus productos y sobre los requisitos del paciente, especímenes y muestras necesarios para asegurar la validez de los resultados. - Obtención de especímenes y muestras para su posterior procesamiento. - Realización de las observaciones y medidas con las que obtiene los resultados que comunica a los solicitantes. - Emisión de dictámenes con los resultados validados, interpretados y, en su caso, comentados, complementado la información producida, y garantizando y transmitiendo la calidad del proceso completo. - Consultoría sobre valor semiológico e interpretación de las pruebas analíticas. Asimismo, el Laboratorio Clínico también ejerce las siguientes actividades: - Evaluación de su propia actividad en función de la eficacia, eficiencia y efectividad alcanzada. - Establece, documenta, implanta, actualiza y mejora de forma continua la eficacia del sistema de gestión de la calidad. - Desarrolla la investigación propia de su ámbito, y participa activamente en la investigación clínica. - Ejerce actividades docentes para la formación de Facultativos de Laboratorio, colabora en la formación de facultativos y profesionales de otros ámbitos, y desarrolla y participa en los sistemas de formación continuada.

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II. AMBITO DE ACTUACIÓN

MARCO LEGAL de la ESPECIALIDAD DE ANALISIS CLINICOS

ORDEN SCO/3369/2006, de 9 de octubre, por la que se aprueba y publica el programa formativo de la especialidad de Análisis Clínicos. El artículo 21 de la Ley 44/2003, de 21 de noviembre, de Ordenación de las Profesiones Sanitarias, establece el procedimiento para aprobar los programas formativos de las especialidades sanitarias en ciencias de la salud, previendo su publicación en el «Boletín Oficial del Estado» para general conocimiento. La Comisión Nacional de la Especialidad de Análisis Clínicos ha elaborado el programa formativo de dicha especialidad que ha sido verificado por el Consejo Nacional de Especialidades Medicas. El programa formativo ha sido estudiado, analizado e informado por la Comisión de Recursos Humanos del Sistema Nacional de Salud al que se refiere el Real Decreto 182/2004, de 30 de enero, por el que se creó dicho órgano colegiado del que forman parte, entre otros, los consejeros de sanidad de las diversas comunidades autónomas y el Director General de Universidades del Ministerio de Educación y Ciencia. Dicho programa formativo será de aplicación a los residentes de la Especialidad de Análisis Clínicos que obtengan plaza en formación en Unidades Docentes de dicha especialidad. El periodo de formación es de cuatro años y las Licenciaturas previas por las que se podrá acceder a la especialidad son las de Biología, Bioquímica, Farmacia, Medicina y Química.

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III. OBJETIVOS DOCENTES Son los recogidos en las 12 áreas especificadas en el programa de la especialidad de Análisis Clínicos, y son:

1. Formación en bioética para ejercer la profesión de acuerdo a la demanda de nuestra sociedad.

2. Formación clínica general, especialmente en aquellas áreas de conocimiento donde la interpretación de los resultados analíticos es clave.

3. Formación en fisiología y fisiopatología para poder interpretar correctamente cómo, las alteraciones consecuencia de la enfermedad, modifican las magnitudes biológicas utilizadas y seleccionar las más adecuadas en cada caso.

4. Formación en técnicas instrumentales como fundamento de la metodología analítica. 5. Formación para el diseño, desarrollo y aplicación de los sistemas de información y

telemedicina como herramientas de gestión de la información. 6. Adquisición y aplicación de la metodología científica. 7. Conocimiento de la organización sanitaria general con especial incidencia en la de los

centros donde se integran los servicios de análisis clínicos para conseguir una gestión adecuada de los mismos y su participación en un equipo con un objetivo común.

8. Fomento de la autoformación y actualización en ciencias biomédicas y en nuevas tecnologías.

9. Conocimiento de la capacidad de comunicación con el resto de equipo, con la comunidad científica y con la sociedad en general.

10. Conocimiento de la metodología de la calidad total. 11. Formación en el liderazgo de proyectos, en la gestión de laboratorios y en la dirección

de grupos humanos. 12. Conciencia de responsabilidad y compromiso con la salud de la sociedad.

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IV. ROTACIONES

La formación de los residentes está organizada en función de las Unidades que forman nuestro Servicio y las directrices que se marcan en el programa formativo de la especialidad de Análisis Clínicos, publicado en la ORDEN SCO/3369/2006, de 9 de Octubre.

El periodo de formación es de cuatro años, que se distribuyen de acuerdo a las Unidades en

las que está organizado nuestro Servicio, que se sustentan en las 6 Áreas de Conocimientos especificados en el programa de la especialidad de Análisis Clínicos, y que son:

1. Conocimientos generales. 2. Conocimientos de Bioquímica Clínica. 3. Conocimientos de Hematología y Hemoterapia. 4. Conocimientos de Microbiología y Parasitología. 5. Conocimientos de Inmunología. 6. Conocimientos de Genética

La distribución a lo largo de los 4 años de especialidad es así: El Especialista en Formación de primer año R-1:

- Unidad de Urgencias y Fármacos : 4 meses - Unidad de Recepción de muestras: 2 semanas - Unidad Core Preanalítica: 1 mes - Unidad de orinas, Heces, cálculos y líquidos biológicos: 2 semanas - Unidad Core Bioquímica automatizada: 4 meses - Unidad Core Marcadores Tumorales y Bioquímica especial: 1 mes

Especialista en Formación de segundo año R-2:

- Unidad Core Screening prenatal: 1 mes - Unidad Core Hormonas: 2 meses - Unidad Core Proteínas: 2 meses - Unidad Core Serología infecciosa: 1 mes - Unidad Core Calidad: 1 mes - Unidad de Alergia: 2 meses - Unidad de Inmunología: 3 meses

Especialista en Formación de tercer año R-3:

- Unidad de Fertilidad: 2 meses - Unidad de Diagnóstico Molecular: 1 mes - Servicio de Hematología y Hemoterapia: 6 meses - Rotación externa: 3 meses

Especialista en Formación de cuarto año R-4:

- Sección de Microbiología y Parasitología: 9 meses - Unidad de Gestión del Laboratorio: 1 mes - Laboratorio de Área: 2 meses

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VI.1. UNIDADES DEL SERVICIO DE ANALISIS CLINICOS

IV.1.1. UNIDAD DE URGENCIAS Y FARMACOS Rotación de 4 meses. OBJETIVOS TEÓRICOS GENERALES

El Residente debe alcanzar unos objetivos teóricos mínimos en su rotación por el Laboratorio de Urgencias referente a las determinaciones que se hacen en esta Unidad. Se definen como objetivos:

- el conocimiento de la Fisiología y Fisiopatología humana para la interpretación de los diferentes parámetros analíticos y sus aplicaciones.

- las indicaciones de solicitud y selección diagnóstica de las pruebas urgentes. - conocer las posibles fuentes de error. - la evaluación de los resultados analíticos y su interpretación clínica. - la resolución de las interconsultas clínicas. - familiarizarse con las técnicas instrumentales como fundamento de la

metodología analítica. - conocer los principios teóricos de los distintos métodos analíticos utilizados en

el Laboratorio de Urgencias, adquiriendo conocimientos de las técnicas de Espectrofotometría, fluorimetría de luz polarizada, electroquímica, osmometría, sistemas automáticos de Robotización y los análisis a la cabecera del paciente.

CONTENIDO TEÓRICO

BIOQUÍMICA

• Estudio fisiopatológico de las alteraciones del metabolismo de la Glucosa. Características clínicas. Pruebas para su diagnóstico.

• Estudio del equilibrio ácido-base y de los gases en sangre. Mecanismos de compensación renales y respiratorios. Pruebas analíticas para su estudio

• Equilibrio hidroelectrolítico. Principales iones. Métodos de determinación. • Estudio de la función renal. Alteraciones tubulares y glomerulares. Pruebas de

estudio de la función renal. • Estudio de la función hepática. Pruebas de laboratorio para el Estudio de las

hepatopatías. • Estudio de la función miocárdica y muscular. Diagnóstico bioquímico del daño

miocárdico. Marcadores del daño muscular. • Estudio de diferentes líquidos biológicos: Orina, LCR, sinovial, pleural, pericárdico,

peritoneal, etc …

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FARMACOS

• Aportación del laboratorio de Análisis Clínicos a la monitorización de fármacos: Métodos de determinación.

• Drogas de abuso: Pruebas de detección. OBJETIVOS PRÁCTICOS GENERALES

Se definen los siguientes objetivos:

- Adiestramiento en los diferentes Autoanalizadotes del Laboratorio de Urgencias. - Realización de las Técnicas manuales.

Descripción de los objetivos:

• Preparación de reactivos, calibradores y controles. • Estabilidad y conservación. • Calibración y control de las técnicas empleadas. • Dominio de la estadística básica para su aplicación en el manejo de controles de

calidad interno y externo. • Calidad preanalítica y pos-analítica • Unidades de medida y Valores de Referencia. • Sistemas de purificación del agua. • Interpretación clínica de los datos de laboratorio • Validación de resultados

CONTENIDO PRÁCTICO RECEPCIÓN DE MUESTRAS

• Condiciones de recogida y transporte de especímenes biológicos según localización: sangre venosa y arterial. Tejidos y líquidos biológicos: Orina, LCR, pleural, ascítico, sinovial, etc. Toma de muestras para estudios microbiológicos y parasitológicos. Preparación, separación y conservación de los distintos especímenes y muestras biológicas.

• Factores que afectan a las pruebas de laboratorio.

BIOQUIMICA Y FARMACOS

• Entrenamiento en los diferentes analizadores del laboratorio de Urgencias. Métodos

espectroscópicos: Espectrofotometría, fluorimetría, reflectancia, refractometría, polarimetría, y osmometría. Métodos electroquímicos. Potenciometría con electrodos selectivos.

• Automatización: Evaluación, mantenimiento e incidencias. • Criterios de selección de analizadores. Robotización.

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MODULO PREANALÍTICO: STREAM LAB ANALYTICAL WORKCELL, de SIEMENS: - control de calidad preanalítico de las muestras recibidas con carácter urgente desde cualquier servicio o planta de hospitalización: etiquetado correcto, identificación de especímenes hemolizados, lipémicos o ictéricos y sus consecuencias. Entrenamiento en el sistema, resolución de Alarmas e Interrupciones. BIOQUIMICA Y FARMACOS : DIMENSION RxL Max, de SIEMENS:

- Entrenamiento en los dos analizadores de alta velocidad. - Se trata de técnicas espectrofotométricas y de Inmunoensayo heterogeneo de tipo sándwich para la determinación de: - Amonio, Urea, Calcio, Creatinina, Bilirrubina directa, Bilirrubina total, Fósforo inorgánico, Glucosa, Lactato, Magnesio, Proteína C Reactiva, Proteínas totales en plasma, Proteínas totales en Orina y Líquido Cefalorraquídeo, Troponina y Mioglobina. - Iones: Sodio, Potasio, Cloro. - Enzimas: Alanina amino transferasa, Aspartato amino trnsferasa, Amilasa, Creatín cinasa, Fosfatasa alcalina, Gamma Glutamil Transferasa, Lactato Deshidrogenasa, Colinesterasa. - Fármacos: Acido Valproico, Carbamazepína, Fenitoina, Fenobarbital, Digoxina, Teofilina, Litio, Benzodiazepinas, Ciclosporina. - Drogas de Abuso: Opiáceos, Cánnabis, Cocaína. FARMACOS: TDX FLX, de ABBOTT: - Formación, entrenamiento y control para la determinación de Amikacina, Gentamicina, Tobramicina, Antidepresivos tricíclicos, Salicilatos y Metotrexato, mediante tecnología de Inmunoensayo de Polarización de Fluorescencia (FPIA).

FARMACOS: VIVA-E, de SIEMENS: - Formación, entrenamiento y control para la determinación de Vancomicina, Tacrólimus y Paracetamol, mediante una técnica de inmunoensayo enzimático homogeneo (EMIT: Enzime Multiplied Inmunoassay Technique). ANALIZADOR DE ORINAS: AUTION JET, de MENARINI DIAGNOSTICS:

- Formación, entrenamiento y control para la determinación de Glucosa, Proteínas, Bilirrubina, Urobilinogeno, pH, Densidad, hematíes, Cuerpos cetónicos, Nitritos, Leucocitos, y Color, mediante la técnica de reflectancia.

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OSMOMETRO: OSMO-STATION de MENARINI DIAGNOSTICS:

- Formación, entrenamiento y control para la determinación de la osmolalidad mediante el método de descenso del punto crioscópico.

GASOMETROS: GEM PREMIER 3000 de IZASA:

- Formación, entrenamiento y control para la determinación de pH, pCO2, pO2, Sodio, Potasio, Calcio iónico, Hemoglobina, Bicarbonato, Exceso de bases y Saturación de oxígeno.

COOXIMETRO: GEM OPL de IZASA:

- Formación, entrenamiento y control para la determinación de Hemoglobina total, Oxi-Hemoglobina, Carboxi-Hemoglobina y Meta-Hemoglobina.

TECNICAS MANUALES:

- Estudio microscópico de los diferentes líquidos biológicos que se estudian en el laboratorio de urgencias: Líquido cefalorraquídeo, Líquido pleural, Líquido peritoneal, Líquido pericardico, y otros líquidos biológicos. - Tinción de células y recuentos diferenciales. - Tinción de Gram. - Aglutinaciones en líquido cefalorraquídeo. - Estudio microscópico del sedimento de orina.

CONOCIMIENTOS Y HABILIDADES MÍNIMAS IMPRESCINDIBLES PARA INCORPORARSE AL TURNO DE GUARDIAS DEL SERVICIO: Generales:

- Conoce y maneja de forma correcta (de acuerdo a lo exigible para el periodo concreto de su formación en que se encuentra) el SIL: introducción de datos, validación, etc.

- Conoce y maneja de forma correcta (de acuerdo a lo exigible para el periodo concreto

de su formación en que se encuentra) los recursos disponibles a través de la intranet de nuestro hospital.

- Conoce e interpreta de forma correcta (de acuerdo a lo exigible para el periodo

concreto de su formación en que se encuentra) los conceptos básicos relacionados con los sistemas de Control de Calidad.

- Conoce y maneja de forma correcta la instrumentación básica de laboratorio: centrífugas, pipetas, cámaras de recuento celular manual, hornos, neveras, etc.

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- Conoce detalladamente los diferentes protocolos utilizados en el laboratorio de Urgencias.

- Conoce y realiza de forma correcta las diferentes técnicas manuales aplicadas en el

laboratorio de Urgencias: tinciones, diluciones, siembra para cultivo, conservación de muestras y reactivos, etc.

- Realiza de forma correcta diluciones manuales de acuerdo a las necesidades de cada

caso.

- Conoce y aplica correctamente los conceptos relativos a las diferentes unidades de medida y sabe realizar cambios de unidades cuando se requiere realizarlos.

- Conoce y comprende de forma correcta (de acuerdo a lo exigible para el periodo

concreto de su formación en que se encuentra) los principios básicos de medida de las diferentes técnicas realizas en el área de Urgencias del laboratorio: espectrofotometría de absorción molecular, técnicas enzimáticas, inmunoensayo, electrodo selectivo, química seca, etc.

- Conoce y aplica correctamente las normas de seguridad e higiene en un Laboratorio.

- Conoce y aplica las normas relativas a protección de datos y derecho a la

confidencialidad de los pacientes.

- Conserva y mantiene correctamente todo el equipamiento disponible en el laboratorio de urgencias y utiliza de forma racional los recursos materiales disponibles.

- Se comunica correctamente y de forma respetuosa con el resto de personal del

laboratorio así como con el de otras unidades del hospital y con los pacientes. Microscopía:

- Realiza correctamente recuentos celulares (leucocitos y hematíes) en cámara de Neubauer.

- Realiza correctamente la tinción de Hematoxilina-Eosina de muestras procedentes de líquidos biológicos.

- Realiza correctamente la tinción de Gram de muestras procedentes de líquidos biológicos.

- Realiza correctamente las técnicas de aglutinación relacionadas con el diagnóstico

microbiológico en LCR.

- Identifica correctamente los principales tipos de leucocitos (polinucleares, mononucleares y eosinófilos) en muestras procedentes de líquidos biológicos y teñidas mediante Hematoxilina-Eosina.

- Identifica correctamente los principales tipos de microorganísmos (cocos Gram POS, cocos GRAM NEG, bacilos GRAM POS, bacilos GRAM NEG) en muestras procedentes de líquidos biológicos y teñidas mediante la tinción de Gram.

- Identifica correctamente los principales tipos de elementos presentes en el sedimento urinario: leucocitos, hematíes, células epiteliales (distinguiendo fundamentalmente escamosas de otros tipos), principales tipos de cilindros, moco, bacterias, hongos, parásitos, flagelados tipo Trichomonas, principales tipos de cristales, etc.

- Interpreta desde un punto de vista clínico de forma correcta los resultados de una análisis de orina (tira reactiva junto a análisis microscópico y bioquímico) en el contexto de un paciente concreto (resto de datos de laboratorio y de la Hª Clínica).

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- Interpreta desde un punto de vista clínico de forma correcta los resultados del análisis de un líquido biológico (análisis microscópico y bioquímico) en el contexto de un paciente concreto (resto de datos de laboratorio y de la Hª Clínica).

Bioquímica:

- Interpreta desde un punto de vista clínico de forma correcta (de acuerdo a lo exigible para el periodo concreto de su formación en que se encuentra) los resultados del análisis bioquímico de una muestra de suero o plasma en el contexto de un paciente concreto (resto de datos de laboratorio y de la Hª Clínica).

- Interpreta desde un punto de vista clínico de forma correcta (de acuerdo a lo exigible

para el periodo concreto de su formación en que se encuentra) los resultados del análisis de niveles de fármacos en el contexto de un paciente concreto (resto de datos de laboratorio y de la Hª Clínica).

- Interpreta desde un punto de vista clínico de forma correcta (de acuerdo a lo exigible

para el periodo concreto de su formación en que se encuentra) los resultados del análisis de Gasometrías y Cooximetrías.

- Conoce y maneja de forma correcta (de acuerdo a lo exigible para el periodo concreto

de su formación en que se encuentra) los diferentes autoanalizadores e instrumentos ubicados en el área de Urgencias del laboratorio.

- Conoce y realiza de forma correcta (de acuerdo a lo exigible para el periodo concreto

de su formación en que se encuentra) operaciones de calibración, control de calidad, introducción de muestras, gestión de reactivos, mantenimiento básico, etc.; en los diferentes autoanalizadores ubicados en el área de Urgencias del laboratorio.

- Conoce y maneja de forma correcta (de acuerdo a lo exigible para el periodo concreto de su formación en que se encuentra) el módulo preanalítico ubicado en el área de Urgencias del laboratorio.

IV.1.2. UNIDAD DE ORINAS Y LIQUIDOS BIOLOGICOS Rotación de dos semanas.

OBJETIVOS DE FORMACIÓN

De acuerdo al programa oficial de la especialidad de Análisis Clínicos el especialista en formación deberá adquirir durante su rotación por la Unidad de Orinas y Líquidos biológicos los siguientes conocimientos:

1. Métodos Instrumentales y Analíticos

2. Obtención de muestras biológicas. Conservación. Recepción. Fuentes de error.

3. Niveles de decisión. Valores de referencia. Unidades.

4. Control de Calidad. Interno y Externo. Calibraciones.

5. Revisión de informes y validación.

6. Familiarización y manejo de instrumentos de la Unidad:

AUTION MAX de MENARINI DIAGNOSTICS: reflectancia

SEDIMAX de MENARINI DIAGNOSTICS: microscopia: Revisión del análisis

de imagen de las orinas que requieren sedimento.

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7. Estudio de Líquidos Biológicos: Líquido cefalorraquídeo, Líquidos de la cavidad

abdominal, Líquido pleural, Líquido sinovial y otros. Estudio microscópico para

recuento celular y diferencial.

8. Estudio microscópico de eosinofílias.

9. Estudio microscópico de heces: Digestión y leucocitos en heces.

10. Estudio cualitativo de sangre oculta en heces.

11. Estudio de la composición química de cálculos urinarios

IV.1.3. UNIDAD DE BIOQUIMICA – LABORATORIO CORE Rotación de 13 meses siguiendo el cronograma que se describe en el anexo I. OBJETIVOS TEÓRICOS GENERALES El Residente debe alcanzar unos objetivos teóricos mínimos en su rotación por el CORE. Deberá incluir lo referente a las determinaciones efectuadas en esta Unidad, así como a aquellos parámetros que se realicen en el laboratorio externo por no disponer de la infraestructura necesaria. Es imprescindible el conocimiento de la Fisiología y Fisiopatología humana para la interpretación de los diferentes parámetros y sus aplicaciones. Deberá conocer las indicaciones de solicitud y selección diagnóstica de las pruebas del CORE, así como las fuentes de error. La evaluación de los resultados analíticos, su interpretación clínica y resolución de las interconsultas clínicas. El residente debe familiarizarse con las técnicas instrumentales como fundamento de la metodología analítica y conocer los principios teóricos de los distintos métodos analíticos utilizados, adquiriendo conocimiento de las técnicas de Espectrofotometría, fluorimetría, luminiscencia, nefelometría, turbidimetría, electroforesis, electroquímica, osmometría, cromatografía, inmunoquímica, inmunoensayos, inmunofijación, espectrofotometría de absorción atómica, fotometría de llama, osmometría y coulombimetría. Automatización. Robotización. Análisis a la cabecera del paciente. CONTENIDO TEÓRICO BIOQUÍMICA

• Estudio de la función renal. Alteraciones tubulares y glomerulares. Pruebas de Estudio.

• Estudio de la función hepática. Pruebas de laboratorio para el Estudio de las hepatopatías.

• Metabolismo mineral. Desórdenes del metabolismo del hierro: absorción, transporte y almacenamiento. Desórdenes del metabolismo del cobre. Otros oligoelementos. Pruebas para su diagnóstico

• Estudio del equilibrio ácido-base y de los gases en sangre. Mecanismos de compensación (renales y respiratorios). Pruebas analíticas para su estudio

• Equilibrio hidroelectrolítico. Principales iones. Métodos de determinación.

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• Estudio de la función gastrointestinal. Métodos diagnósticos de malabsorción. Pruebas de función pancreática y de función intestinal. Indicadores bioquímicas del estado nutricional

• Estudio fisiopatológico de las alteraciones del metabolismo de los hidratos de carbono: Glucosa, fructosa, lactosa, galactosa. Características clínicas. Pruebas para su diagnóstico.

• Estudio fisiopatológico de las alteraciones de los lípidos y de las lipoproteínas plasmáticas. Significado clínico. Dislipemias. Pruebas para su diagnóstico

• Estudio de la función miocárdica y muscular. Diagnóstico bioquímico del daño miocárdico. Marcadores del daño muscular.

• Estudio de la patología osteoarticular. Pruebas analíticas para su estudio • Errores innatos del metabolismo de los hidratos de carbono: Galactosemia: tipos.

Intolerancia hereditaria a la fructosa. Glucogenosis. Características clínicas. Su estudio por el laboratorio

• Estudio de la neuropatología. Pruebas bioquímicas de utilidad en el diagnóstico precoz de las enfermedades neurodegenerativas

• Estudio por el laboratorio de diferentes líquidos biológicos: Orina, LCR, sinovial, pleural, pericárdico, peritoneal, seminal, etc.

• Aportación del laboratorio de Análisis Clínicos a la monitorización de fármacos. Métodos de determinación. Drogas de abuso: Pruebas de detección

• Métodos de laboratorio para el estudio del crecimiento y del proceso de envejecimiento.

• Trastornos del metabolismo intermediario: Aminoacidopatías, acidurias orgánicas y enfermedades mitocondriales. Diagnóstico por el laboratorio.

• Enfermedades lisosomales y peroxisomales. Diagnóstico bioquímico. MARCADORES TUMORALES

• Bioquímica del cáncer. Clasificación de los marcadores tumorales y su utilidad clínica.

CRIBADO PRENATAL

• Estudio del embarazo y función fetal. Marcadores de riesgo, Cribado Prenatal de 1er y de 2º trimestre.

HORMONAS

• Estudio de la función hipotalámica y adenohipofisaria. Pruebas diagnósticas estáticas y dinámicas. • Estudio de la función tiroidea y paratiroidea. Pruebas simples y funcionales. • Estudio de la funcionalidad de la corteza suprarrenal. Métodos de exploración. • Estudio de la función gonadal. Pruebas analíticas estáticas y dinámicas para su diagnóstico. • Estudio del embarazo y función fetal.

PROTEÍNAS

• Estudio fisiopatológico de las alteraciones de las proteínas. Propiedades de las

mismas. Métodos de determinación. • Mieloma múltiple. Gammapatías monoclonales y entidades relacionadas.

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SEROLOGIA

• Diagnóstico serológico. Control de Calidad en Microbiología. CALIDAD

• Conocimiento de la metodología de la calidad total OBJETIVOS PRÁCTICOS GENERALES

Adiestramiento en los diferentes Analizadores y en las Técnicas manuales para la medición de los distintos parámetros. Competencia en la realización de los mismos.


calidad interno y externo. • Calidad preanalítica y post-analítica • Unidades de medida y Valores de Referencia. • Sistemas de purificación del agua. • Interpretación clínica de los datos de laboratorio • Validación de resultados

CONTENIDO PRÁCTICO

RECEPCIÓN DE MUESTRAS

• Obtención, recogida y transporte de especímenes biológicos: Sangre venosa y arterial. Tejidos y líquidos biológicos: LCR, pleural, ascítico, sinovial, etc. Toma de muestras para estudios microbiológicos y parasitológicos. Preparación, separación y conservación de los distintos especímenes y muestras biológicas.

• Factores que afectan a las pruebas de laboratorio. • Formación, manejo y control de análisis cerca del paciente. Química seca

Coulombimetría. Glucosímetros. Análisis de sudor. BIOQUIMICA - Entrenamiento en los diferentes analizadores. - Automatización: Evaluación, mantenimiento e incidencias. - Criterios de selección de analizadores. Robotización. MODULAR PREANALÍTICO de ROCHE:

- Control de calidad preanalítico de las muestras recibidas desde la Unidad de Recepción de muestras: etiquetado correcto, identificación de especímenes hemolizados, lipémicos o ictéricos y sus consecuencias, etc...

- Entrenamiento en el Sistema.

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- Resolución de Alarmas e Interrupciones. - Rutas de alícuotas.

COBAS C711 de ROCHE: - Entrenamiento en Analizador de alta Velocidad. - Técnicas espectrofotométricas e inmunoturbidimétricas para la determinación de

glucosa, urea, colesterol, HDL-colesterol, triglicéridos, calcio, fósforo, magnesio, creatinina, proteínas, albúmina, ácido úrico, bilirrubina, CK, LDH, GOT, GPT, GGT, ALP, lipasa, hierro, ferritina, fructosamina, transferrina, Apo AI y B, Inmunoglobulinas G, A y M, ASLO, PCR y FR. Determinaciones electroquímicas: Potenciometría con electrodos selectivos de sodio, potasio, cloro.

MODULAR ANALÍTICO P de ROCHE:

- Técnicas espectrofotométricas para la determinación de UIBC, Bilirrubina directa y creatinina enzimática.

COBAS 6000 de ROCHE - Técnicas espectrofotométricas, turbidimétricas y electroquímicas para las determinaciones en orina de glucosa, urea, calcio, fósforo, magnesio, sodio, potasio, cloro, creatinina, proteínas, albúmina y ácido úrico. - Técnicas especiales: Beta 2 Microglobulina, ADA, Aldolasa, ECA, Lp(a) y BHB en suero. Citrato y NAG en orina.

AUTOANALIZADOR HITACHI 917 de ROCHE:

- Determinación espectrofotometría de oxalato en orina. OTRAS TÉCNICAS DE BIOQUÍMICA: - Técnicas manuales: osmometría, cromatografía de aminoácidos en suero y orina. - Fotometría: piruvato y Xilosa. Crioglobulinas. TÉCNICAS EN EQUIPOS DE OTRAS UNIDADES: - Analizador Dimensión, de la Unidad de Urgencias: Mioglobina, Colinesterasa, Lactato, Troponina. HORMONAS Y MARCADORES TUMORALES MODULAR ANALÍTICO EEE de ROCHE: - Métodos inmunoquímicos, electroquimioluminiscencia para la determinación de TSH, T3, T4, PSA, PSA libre, Insulina, Progesterona, Cortisol, Inmunoglobulina E y Ferritina.

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ANALIZADOR ARCHITECT de ABBOTT: - Quimioluminiscencia de Micropartículas: Determinación de FSH, LH, Estradiol, Prolactina, Tetosterona, BHCG, Folato, Vitamina B12, CEA, AFP, CA19.9., CA125, CA.15.3 ANALIZADOR IMMULITE ONE de SIEMENS: - Quimioluminiscencia. Cortisol y DPD en orina: PAPP-A y BHCG libre en suero.

OTRAS TÉCNICAS DE HORMONAS:

- Cromatografía liquida de alta resolución y electroforesis para la determinación de hemoglobina glicada y Variantes de Hemoglobinas. - Enzimoinmunoanálisis, ELISA para la determinación de Ácido vanil-mandélico. SEROLOGÍA ANALIZADOR ARCHITECT de ABBOTT: - Quimioluminiscencia de Micropartículas: Diagnóstico serológico de Hepatitis B, C, A, Rubéola, Toxoplasma y Sífilis. PROTEINAS - Inmunonefelometria, electroinmunodifusión, inmunofijacion. - Métodos de separación por Electroforesis. NEFELÓMETRO BN de SIEMENS: - Cuantificación inmunonefelométrica de las fracciones C3 y C4 del complemento, haptoglobina, prealbúmina, Alfa-1-antitripsina, Alfa-1-microglobulina, Ceruloplasmina, Cadenas ligeras Kappa y Lambda en sangre y orina. Cadenas ligeras libres. SISTEMA CAPILLARYS 2 de SEBIA HISPANIA S.A. (SIEMENS): - Electroforesis capilar de proteínas séricas y orina.

ANALIZADOR HYDRASYS de SEBIA HISPANIA S.A. (SIEMENS): - Identificación de bandas monoclonales por inmunofijación.

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CALIDAD

• Aseguramiento de la calidad en el laboratorio clínico. Modelos de Calidad total. Sistemas de certificación y acreditación

• Control de Calidad Interno: Fundamentos y Uso. • Garantía de calidad: Control de Calidad Externo de la fase analítica y preanalítica. • Interpretación de informes mensuales, semestrales y anuales de la SEQC. • Control de BioRad, envío y recepción de resultados vía electrónica. • Especificaciones de calidad. • Manual de la Calidad: Documentación.

ANEXO I

ROTACIÓN RESIDENTES UNIDAD CORE UNIDAD Tiempo Total Preanalítica Recepción de Muestras 2 semanas Modular Preanalítico 2 semanas 1 mes Bioquímica Cobas 711 1 mes Modular EP, Cobas 6000 1 mes

Control de los analizadores, Validación pruebas e Interpretación Todo el período

4 meses Marcadores Tumorales Architect 2 semanas Cribado Prenatal Técnicas manuales, H-917 Cuando se monte


Calculo de riesgo Todo el período 2 meses Hormonas Modular E 2 semanas HPLC HbA1C 1 semana Immulite, Genio Variantes de Hbna Cuando se monte


2 meses Serología Architect 2 semanas Validación e Interpretación Todo el período 1 mes Proteínas Nefelómetro, Electroforesis capilar,IF 3 semanas


2 meses Calidad 1 mes 1 mes TOTAL 13 meses

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IV.1.4. UNIDAD DE ALERGIA La Rotación es de 2 meses. OBJETIVOS TEÓRICOS GENERALES

El Residente debe alcanzar unos objetivos teóricos durante su rotación por Alergia referentes a:

1.- Las Bases Inmunológicas de la alergia:

- El sistema inmune en el niño. - Desarrollo inmunológico de las enfermedades alérgicas - Fisiopatología de la inflamación alérgica.

2.- Los Alergenos y el Diagnóstico de las enfermedades alérgicas

- Alergenos: Características biológicas, físicas e inmunológicas.

- Neumoalergenos, alergenos alimentarios, alergenos de origen animal, alergenos de origen farmacológico.

3.- Los Métodos diagnósticos en alergia:

a) Técnicas “in vivo”.Pruebas cutáneas, pruebas

funcionales respiratorias, pruebas de provocación. b) Técnicas “in vitro”:IgE total, IgE específica. c) Reactividad cruzada: alergenos nativos y recombinantes.

4.- Estudio de las Enfermedades alérgicas, anafilaxia: Asma, rinitis alérgica, conjuntivitis, urticaria, dermatosis crónica, reacciones adversas a los alimentos, alergia alimentaria, alergia a proteínas de la leche de vaca, alergia a fármacos.

5.- Diagnóstico de la Enfermedad Celiaca:

- Patogenia de la enfermedad celiaca: proteínas tóxicas de los cereales, inmunopatología de la enfermedad celiaca.

- Manifestaciones clínicas de la enfermedad celiaca en el niño y en el adulto.

- Pruebas de laboratorio: test serológicos (ac. antigliadina

IgA e IgG, Anticuerpos Antitransglutaminasa IgA e IgG y Anticuerpos Antipeptidos deaminados de la gliadina IgA e IgG.

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OBJETIVOS PRÁCTICOS GENERALES

- Adiestramiento en los diferentes Analizadores para la determinación de los diferentes alergenos y pruebas inmunológicas para el diagnóstico de la celiaquia. - Competencia en la realización de los mismos:


calidad interno y externo. • Calidad preanalítica y post-analítica • Unidades de medida y Valores de Referencia. • Sistemas de purificación del agua. • Interpretación clínica de los datos de laboratorio • Validación de resultados

CONTENIDO PRÁCTICO

- Aplicación de algoritmos en el diagnóstico y seguimiento de enfermedades alérgicas y de la enfermedad celiaca. - Screening de alimentos que incluye la clara del huevo, leche de vaca, bacalao, trigo, cacahuete y soja. - Screening a neumoalergenos que incluye ácaros, epitelios de animales, pólenes, y mohos. - Screening a los componentes de la leche de vaca que incluye la Alfa-lactoalbúmina, Beta-lactoalbúmina, caseína, y suero de leche.

- Entrenamiento en los diferentes analizadores. - Automatización: Evaluación, mantenimiento e incidencias.

INMUNOCAP 250 de PHADIA:

- Fluoroenzimoinmunoanálisis para la determinación de: - IgE específica frente a: - Pólenes de plantas

- mohos - ácaros - epitelios y proteínas animales - alimentos de origen vegetal - alimentos de origen animal: leche, huevo, pescados, mariscos y moluscos - venenos - insectos - medicamentos

- alergenos ocupacionales - Anticuerpos antigliadina de tipo IgA e IgG - Anticuerpos antitransglutaminasa de la clase IgA e IgG

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TRITURUS de GRIFOLS: - Enzimoinmunoanálisis para la determinación del ácido vanilmandélico.

OBJETIVOS PRÁCTICOS QUE SE REALIZAN EN OTROS SERVICIOS

- Los test diagnósticos “in vivo”, como el Prick-test, los tests de provocación nasal, tests de provocación bronquial, y pruebas de tolerancia a medicamentos se hacen en el Servicio de Alergia de nuestro Hospital, por lo que tenemos un acuerdo para que los residentes de Análisis Clínicos roten por allí durante una semana para adquirir los conocimientos prácticos en la realización de dichos test.

OBJETIVOS DESEABLES - Participación en proyectos de investigación realizados en la Unidad.

IV.1.5. UNIDAD DE INMUNOLOGÍA

La Rotación es de 3 meses. OBJETIVOS TEÓRICOS GENERALES El Residente debe alcanzar unos objetivos teóricos durante su rotación por Inmunología referentes a:

• Conceptos básicos de Inmunología: El sistema inmunitario en condiciones de salud. Componentes del sistema inmunitario. El tejido linfoide. Células implicadas en la respuesta inmune, proliferación celular y maduración, interacción celular, componentes moleculares de la respuesta inmune.

• Inmunidad innata. Fagocitosis, citocinas y respuesta inflamatoria. El complemento y sistemas intermediarios en la respuesta inmune.

• Reconocimiento del antígeno. Receptores de las células T y B. Presentqación del antígeno. Complejo principal de histocompatibilidad.

• Estructura molecular de los anticuerpos, interacción antígeno-anticuerpo. Superfamilia de las inmunoglobulinas, distribución y funciones de sus isotipos, diversidad.

• Sistema inmunitario adaptativo, características. Respuesta inmunitaria humoral e inmunidad mediada por células T.

• Respuesta inmunitaria innata y adquirida frente a la infección. • Inmunodeficiencias congénitas de linfocitos T y B. Inmunodeficiencias adquiridas.

Abordaje por el laboratorio del estudio de las inmunodeficiencias. • Tolerancia y autoinmunidad. Autoanticuerpos y su relevancia clínica.

Autoanticuerpos en enfermedades autoinmunes sistémicas (LES, Artritis reumatoide, SjÖgren, vasculitis, síndrome antifosfolípido, EMTC …). Autoanticuerpos específicos de órgano (enfermedades de la piel, hepáticas, renales, endocrinas, sistema nervioso, hematologicas…).

• Aportaciones del laboratorio en las enfermedades autoinmunes. Estudio diagnóstico inicial. Algoritmos diagnósticos.

• Inmunidad antitumoral. Respuesta inmunitaria frente a los tumores. Amtigenos tumor-específicos.

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• Histocompatibilidad. Inmunología de los transplantes y su monitorización por el laboratorio en los pacientes transplantados.

• Automatización. OBJETIVOS PRÁCTICOS GENERALES

• Realización e interpretación de técnicas de Inmunodifusión doble, ELISA,

Fluoroenzimoinmunoanálisis, Inmunodot e Inmunofluorescencia.

AUTOANALIZADOR INMUNOCAP de PHADIA: - Fluoroenzimoinmunoanálisis para la determinación de:

Anti-CCP Anti-SSA/Ro Anti SSB/La Anticuerpos antinucleares: cribaje Synphony Anti- PR3 Anti-MPO Anti-U1RNP Anti-GMB Anti-Sm Anti-Jo-1 Anti-dsDNA

AUTOANALIZADOR AUTOLIPA de INNOGENETICS: - Inmunodot para la determinación de:

- Perfil de los anticuerpos característicos de la polimiositis y esclerodermia.

- Perfil de los anticuerpos antineuronales

ZENIT de MENARINI ELISA para la determinación de : - IgM anticardiolipina - IgG anticardiolipina - B2-Glicoproteina 1 de la clase IgG e IgM - Actividad vía clásica del complemento CH50

PROCESADOR DE PORTAS IFI AP16 IF PLUS de MENARINI

- ANA

PROCESADOR DE PORTAS IFI GEST 22 de MENARINI

- MSK - ANCA (Etano/Formol) - LKM

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TECNICAS MANUALES:

- INMUNODIFUSION DOBLE: -- ENA´s

- IFI MANUAL: -- Antiendomisio -- Antineuronales

- INMUNODOT:

-- Polimiositis / Esclerodermia -- Enfermedades Hepáticas Autoinmunes

• Aplicación de algoritmos en el diagnóstico y seguimiento de enfermedades Autoinmunes.

OBJETIVOS PRÁCTICOS NO DISPONIBLES • Técnicas de Histocompatibilidad. • Técnicas de Citometría de Flujo

Se propone la estancia en laboratorio externo a esta Unidad con el objeto de adquirir conocimientos en las citadas técnicas.

OBJETIVOS DESEABLES

- Participación en proyectos de investigación realizados en la Unidad.

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AUTOEVALUACIÓN: RESIDENTE UNIDAD DE INMUNOLOGÍA

A = con ayuda; S = solo

Fecha

A/S

Fecha

A/S

Fecha

A/S

Fecha

A/S

Procesador de portas IFI: AP 16

Procesador de portas IFI: GEST

Autoanalizador ELISA: Zenit ACA

Autoanalizador ELISA: Zenit ββββ2GPI

Autoanalizador ELISA: Zenit Actividad Via Clásica Complemento

Autoanalizador Fluoroenzimoanálisis: UNICAP 100

Procesador AUTOLIPA

INMUNODIFUSIÓN DOBLE

Inmunodot Hepático

Inmunodot Anti antígenos nucleares

extraíbles polimiositis y esclerodermia

Inmunodot Anti neuronales

IFI manual: Anti Endomisio

IFI manual: Anti neuronales

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IV.1.6. UNIDAD DE FERTILIDAD

La rotación es de 2 meses.

OBJETIVOS DE FORMACIÓN De acuerdo al programa oficial de la especialidad de Análisis Clínicos el especialista en formación deberá acabar la rotación por Fertilidad dominando la “Utilidad de los procedimientos de laboratorio como soporte para el estudio de la fertilidad, esterilidad y los procedimientos de reproducción asistida”. Tales procedimientos son: - Análisis de semen: espermiograma.

- Análisis de semen posvasectomia y posvasovasostomia: para valorar la efectividad de ambas técnicas quirúrgicas.

CONTENIDO TEÓRICO

• Para alcanzar los objetivos que se definen en el Real Decreto de la Especialidad en cuanto a conocimientos y habilidades y ser capaz de saber utilizar las herramientas del laboratorio en la evaluación de las fertilidad masculina y femenina deberá estudiar y comprender hasta dominar:

- La Fisiología de la Reproducción: --Regulación de la foliculogénesis, ovulación y formación del cuerpo lúteo. -- Función testicular, Espermatogénesis y su regulación. -- Regulación del eje hipotálamo-hipófisis- testiculo y ovario: valoración andrológica en el laboratorio: FSH, LH, PRL, Tetosterona total y libre. -- Análisis de orina poseyaculado. -- Análisis de anticuerpos antiespermatozoide. -- Estudios genéticos: cariotipo, microdelecciones del cromosoma Y, estudio del gen CFTR, estudio del gen FMR1. -- Fragmentación del ADN de espermatozoides y FISH de espermatozoides. -- Valoración de la función ovárica en el laboratorio: Gonadotropinas basales (FSH, LH entre 2-4º día del ciclo) y estradiol basal (2º-4º día del ciclo), Prolactina, TSH, Progesterona en la 2ª fase del ciclo. -- Valoración de la reserva ovárica en el laboratorio: marcadores bioquímicos: FSH y Estradiol -- Papel del laboratorio en la Inducción de la ovulación. -- Fertilización del óvulo e implantación. - Causas mas frecuentes de infertilidad masculina y femenina. - Hojas técnicas de la Unidad para el estudio de los procesos y procedimientos de trabajo. - Valoración del semen mediante los procedimientos, valores de referencia e interpretación de resultados de acuerdo al Manual de la O.M.S. (Organización Mundial de la Salud), en su edición en vigor.

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- Valoración del semen de acuerdo a los procedimientos, valores de referencia e interpretación de resultados descritos en el Manual de la ESHRE. (European Society of Human Reproduction and Embryology). - Las recomendaciones de la SEQC, Sociedad Española de Bioquímica Clínica y Patología Molecular, en cuanto a: -- Recomendaciones en la fase preanalítica para el análisis de semen. -- Estudio del semen posvasectomía y vasovasostomia. -- Técnicas para la preparación de semen en Reproducción Asistida.

-- Recomendaciones para el estudio genético de la pareja con alteraciones en la reproducción.

- Ley 14/2006, de 26 de mayo, sobre técnicas de reproducción humana asistida - Técnicas de Reproducción Humana Asistida:

-- IAC/IAD: Inseminación Artificial Conyugal e Inseminación Artificial de Donante.

-- REM diagnóstico (Recuperación de Espermatozoides Móviles). -- Banco de semen y criopreservación de espermatozoides -- FIV: Fecundación “in vitro” -- ICSI: Microinyección intracitoplasmática de espermatozoides. -- DPG: Diagnóstico Genético Preimplantacional.

- Debe leer y comprender todos los artículos que se le proporcionen en la Unidad de Fertilidad, así como otros que se le recomienden que irán destinados a ampliar sus conocimientos. - Se valorará muy positivamente el que aporte nuevas ideas al desarrollo de la Unidad o a la mejora de cualquiera de sus áreas. - Al final de la rotación se evaluará al residente mediante prueba escrita, con objeto de ver el nivel de conocimientos y habilidades desarrollados durante el periodo de estancia en la Unidad, que comprende conocimientos y el trabajo desarrollado en nuestro Laboratorio de Fertilidad, y los conocimientos adquiridos en la consulta de Reproducción Humana y el Laboratorio de Reproducción Asistida externo concertado.

OBJETIVOS PRACTICOS GENERALES - Pondrá en práctica los conocimientos específicos anteriormente descritos, mediante utilización de incubador de CO2, cabina de flujo laminar, microscopio óptico con contraste de fases y objetivo de 20x para utilización de cámara de Mackler y de Neubauer para recuentos manuales y mediante el sistema automático de análisis de imagen, y extensiones e interpretación de tinciones especificas de vitalidad y morfología espermática. - Recibirá docencia y material específico de la Unidad, y el residente expondrá temas teóricos y prácticos a propuesta del adjunto y de él mismo, tanto fundamentales como de ampliación de estudios propios en el campo de la Reproducción. - Realización, gestión y supervisión del control de calidad de semen, e instrumentos de la unidad.

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- Control y gestión, Almacenamiento y Mantenimiento del tanque de nitrógeno líquido para la reserva de muestras de semen criopreservado. - Interpretación y validación de resultados atendiendo a la fase preanalítica . - Recomendaciones al clínico y al paciente a la vista de los resultados y las variables que los determinan. Estos procedimientos vienen descritos en las hojas técnicas de la Unidad de Fertilidad.

CONTENIDO PRACTICO 1. LAS HABILIDADES TÉCNICAS QUE DEBE ADQUIRIR OBLIGATORIAMENTE el especialista en formación será el dominio de las Técnicas del laboratorio de Andrología y de Reproducción Asistida en cuanto a las Técnicas de Capacitación espermática, y para ello aprenderan a realizar: - Análisis de semen: espermiograma. - Análisis de semen posvasectomia y posvasovasostomia: para valorar la efectividad de ambas técnicas quirúrgicas. - REM (Recuperación de Espermatozoides Móviles) Diagnostico: para la indicación o no de la Inseminación Intrauterina Conyugal como Técnica de Reproducción Humana Asistida. - Técnicas de Capacitación espermática: como tratamiento de esterilidad mediante la Inseminación Artificial Conyugal (IAC) o Inseminación Artificial con semen de Donante (IAD): -- Técnica de los Gradientes de densidad -- Técnica de Swim-up. - Descongelación y manipulación de semen criopreservado para Capacitación espermática. Estos procedimientos vienen descritos en las hojas técnicas de la Unidad de Fertilidad. 2. LAS HABILIDADES TÉCNICAS QUE SERÍA DESEABLE QUE ADQUIRIERA en cuanto a Técnicas de Reproducción Humana Asistida son la Fecundación in vitro (FIV) y la Inyección Intracitoplásmatica (ICSI). Ambas Técnicas, junto con otras como el Diagnóstico Genético Pre-Implantacional, la Biopsia Testicular y Epididimar, el cultivo de embriones hasta blastocisto, el hashing, y otras, el residente las conocerá durante los 15 días que irá a un Laboratorio de Reproducción Humana Asistida concertado para este motivo entre nuestro Hospital y la Clínica FIVAP.

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IV.1.7. UNIDAD DE DIAGNOSTICO MOLECULAR

Duración de la rotación: 1 mes

CONTENIDO TEÓRICO • Genoma humano. Estructura y función de los genes y cromosomas. • Métodos de análisis en Genética Molecular Humana: Métodos de Extracción de

ácidos nucleicos. Electroforesis. Reacción en Cadena de la Polimerasa. Secuenciación. Hibridación, etc.

• Genética Humana. • Patología Molecular • Recursos informáticos en biología molecular • Aspectos éticos y legales en diagnóstico molecular. Consejo genético. • Familiarización y manejo de las técnicas y equipos empleados en el laboratorio de

Diagnóstico Molecular. • Informe y validación de los resultados obtenidos en el laboratorio de Diagnóstico

Molecular. • HPLC. Métodos de detección • Aminas biogénicas. Fisiopatología y utilidad diagnóstica de su determinación. • Familiarización y manejo de las técnicas y equipos empleados en el laboratorio de

HPLC. • Informe y validación de los resultados obtenidos en el laboratorio de HPLC.

CONTENIDO PRACTICO

Este programa se desarrollará a través de las siguientes vías: 1. Aprendizaje práctico de las diferentes técnicas que se realizan en la Unidad:

� Hemocromatosis � Déficit de alfa-1-antitripsina � Apo E � Mutaciones C677T y A1298C de la Metilen Tetrahidrofolatoreductasa � Estudio genético de Fibrosis Quística � Determinación de Catecolaminas y Metanefrinas mediante HPLC

2. Varias sesiones divulgativas en las que se presentarán por parte de los Facultativos de la unidad algunos aspectos más teóricos relacionados con esta área de conocimiento.

3. La lectura por parte del Residente de la bibliografía que se le recomienda. 4. La realización de dos trabajos prácticos por parte del Residente que se

especificarán en cada ocasión al comienzo de la rotación.

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IV.2. SERVICIO DE HEMATOLOGIA Y HEMOTERAPIA

Duración de la rotación: 6 meses

OBJETIVOS TEÓRICOS GENERALES

De acuerdo con el programa oficial de la especialidad de Análisis Clínicos, el

especialista en formación en su tercer año de rotación deberá adquirir los conocimientos adecuados y desarrollar las habilidades técnicas necesarias propias del Laboratorio de Hematología.

Los conocimientos fisiológicos y fisiopatológicos se orientaran a la

interpretación de las pruebas del Laboratorio de Hematología en el diagnóstico de las enfermedades hematológicas más frecuentes así como su relación con el resto de pruebas bioquímicas, inmunológicas y citogenéticas. De tal forma que el residente aprenda a ver las pruebas en el contexto del diagnóstico, seguimiento y pronóstico de la enfermedad, y su rentabilidad diagnóstica.

CONTENIDO TEÓRICO • Estructura y función de la médula ósea y el tejido linfoide. • Hematopoyesis: Morfología, bioquímica y función de las células sanguíneas. • Hematíes: Características generales, morfología. • Estudio diferencial de las causas de anemia. • Desórdenes del metabolismo de hierro. • Desórdenes del eritrocito: Poliglobulias, hemoglobinopatías y talasemias. • Leucocitos. Características generales. Morfología-citoquímica. Patología. • Estudio de neutropenias. • Leucemias, diagnóstico. • Síndromes mieloproliferativos. • Linfomas: Hodgkin y no Hodgkin. • Mieloma múltiple y gammapatías monoclonales. • Hemostasia: Desórdenes de los megacariocitos y plaquetas, morfología y función. • Coagulación: Bioquímica y factores de coagulación. • Mecanismo de la coagulación, fibrinolisis y trombosis. • Control de laboratorio de la terapia anticoagulante y antitrombótica. • Hemoterapia: Grupos de sangre e inmunohematología.


• Identificar, según las principales características morfológicas, las tres series

hematológicas en el examen microscópico. • Definir la célula según su tamaño, relación núcleo-citoplasma, características del

núcleo, contorno nuclear y características del citoplasma. • Conocer los contadores celulares y por tanto sus fundamentos ópticos, dispersión

de la luz y refringencia, impedancia, láser, radiofrecuencia, colorimetría, citoquímica y la citometría de flujo.

• Calibración y Control de calidad de los diferentes contadores. • Interpretación de resultados a partir de los recuentos absolutos, los histogramas o

la distribución en un escartegrama, y de los valores deducidos: índices eritrocitarios y plaquetarios, ADE o hematocrito.

• Identificación y resolución de alarmas.

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• Interpretar un hemograma • Pruebas de coagulación. • Tipaje sanguíneo, detección de anticuerpos y pruebas cruzadas. • Preparación de reactivos, disoluciones, tampones, controles, calibradores y

reactivos básicos para tinción, técnicas citoquímicas e inmunofenotípicas.

IV.3. SECCION DE MICROBIOLOGIA Y PARASITOLOGIA

Duración de la rotación: 9 meses

CONTENIDO TEÓRICO

• Agentes infecciosos. Flora saprofita habitual. • Sistemas de defensa del organismo humano ante las infecciones. • Epidemiología de las enfermedades infecciosas: Prevalencia, mecanismos de

infección y prevención de las enfermedades infecciosas en la Comunidad. • Diagnóstico de laboratorio de las enfermedades infecciosas. • Bacterias:

- Microorganismos Gram (–) y Gram (+) de interés clínico. - Micobacterias. Diagnóstico de Tuberculosis. - Rickettsias.

• Virus DNA y RNA. • Hongos: Interés clínico. Características morfológicas e infecciosas. • Parásitos: Interés clínico. Ciclo biológico. Características morfológicas e

infecciosas. • Sistemas de aislamiento, cultivo e identificación en Microbiología. • Técnicas rápidas en Microbiología: aplicaciones y limitaciones. • Aplicación de la técnica PCR en enfermedades infecciosas. • Diagnóstico serológico. • Terapia antimicrobiana. Profilaxis y tratamiento de las enfermedades infecciosas.

Técnicas para el estudio de la sensibilidad a los quimioterápicos. • Infección nosocomial. • Automatización. • Control de Calidad en Microbiología y Parasitología.


• Toma de muestras para estudios microbiológicos y parasitológicos localizadas en:

piel y tejidos, vaginal, uretral, exudados y heridas, hemocultivos, respiratorio y nasofaríngeo, heces, etc.

• Procesamiento específico según el tipo de muestra. • Siembra de medios de cultivo, extensiones y tinciones: - Tinción de Gram - Tinción de Zhiel-Nilsen - Tinción de Auramina - Tinción de Kinyoun - Tinción de Giemsa - y otras • Identificación para despistaje de flora habitual y patógena mediante examen

microscópico directo, pruebas bioquímicas elementales, Test inmunológicos rápidos, sistemas semiautomáticos de identificación, estudios de sensibilidad microbiana, etc.

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• Cultivos: - Hemocultivos y catéteres - Líquidos orgánicos - Orinas - Exudados genitales - Espermiocultivo - Exudados - Heces - Muestras de respiratorio y O.R.L. - Biopsias - Anaerobios • Detección directa de antígenos bacterianos y virales (Legionella, neumococo,

meningococo, astrovirus, rotavirus, adenovirus, etc. • Estudio parasitológico de Heces y Sangre • Estudio de Micobacterias: - Identificación bioquímica y sondas DNA - Micobiograma - Detección directa de micobacterias en muestras biológicas por PCR • Estudio de Hongos: - Identificación - Fungigrama • Controles de Esterilidad • Serología Infecciosa: - Anticuerpos febriles - Sífilis - Infecciones congénitas - Herpesviridae - Hepatitis A, B, C, Delta - VIH screening y confirmatorio - Chlamydias y Rickettsias - Mycoplasma pneumoniae - Borrelia burgdorferi - Legionella pneumophila - Helycobacter pylori - Control serológico del embarazo - Virus respiratorio sincitial • Diagnóstico Molecular: - Detección de Chlamydias en diferentes muestras - Detección de Virus (Influenza H1N1) - Determinación de carga viral de VHC, VHB, VIH - Determinación del Genotipo del VHC - Detección de resistencias en el VIH - Anticuerpos febriles - Sífilis

IV.4. LABORATORIO DE ÁREA La rotación por el Laboratorio del Centro de especialidades que pertenece a nuestra Área de Salud tiene una duración de dos meses. En este periodo el residente obtendrá una visión integrada de un Laboratorio de Análisis Clínicos con las áreas de Bioquímica, Hematología y Microbiología trabajando conjuntamente.

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IV.5. ROTACIONES EXTERNAS

Todos los residentes cuando están en su tercer o cuarto año de formación, realizan una rotación externa de dos o tres meses por una Unidad de Citogenética y Genética Molecular de Hospitales de reconocido prestigio como son los Servicios de Genética del Hospital Universitario La Paz de Madrid, Hospital Clínico de Barcelona, Hospital de la Santa Cruz y San Pablo de Barcelona, Hospital Universitario Virgen del Rocío de Sevilla, Hospital Materno-Infantil de las Palmas de Gran Canaria, y Hospital Universitario de Canarias de Tenerife.

Además los residentes de Análisis Clínicos con objeto de adquirir formación específica en Técnicas de Reproducción Humana Asistida como la Fecundación in vitro, la Inyección Intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI), donación de ovocitos y Diagnóstico Genético Preimplantacional (DPG), realizarán una rotación externa de mínimo dos semanas en otro centro de la Comunidad.

V. EVALUACIÓN

En cada una de las rotaciones, el especialista en formación se presentará junto con su tutor en la Unidad correspondiente al Facultativo responsable de la misma, con el programa donde constan los objetivos a cubrir, según lo recogido en el programa de la especialidad y descritos en esta guía.

Se realizará una evaluación formativa al finalizar cada una de las rotaciones programadas y antes de iniciar la siguiente. Esta evaluación se hará de forma conjunta con el tutor correspondiente en una reunión programada específica para ello, y se reflejará en las hojas oficiales de evaluación el grado de aprovechamiento del residente en cuanto a conocimientos y actitudes. Al final de cada curso lectivo el tutor reunirá todas las hojas de evaluación correspondientes a las Unidades por donde el residente haya completado su formación y junto con las calificaciones por asistencia y participación a sesiones y cursos, investigación y demás actividades promovidas por el servicio y por la Comisión de Docencia configuraran la calificación anual y en su caso la calificación final de la especialidad.

VI. COMPETENCIAS El especialista en Análisis Clínicos debe asumir las siguientes competencias:

1. Elección, recomendación, en su caso, y realización, incluida la toma de muestras, de los procedimientos de laboratorio adecuados al estudio de la situación del paciente, asegurando la emisión de resultados de calidad garantizada y de coste óptimo.

2. Interpretación de los resultados obtenidos en relación con la situación clínica del paciente.

3. Comunicación y discusión, con otros especialistas, sobre el significado de la información obtenida.

4. Aprender de su ejercicio diario para mejorar la utilidad clínica de los procedimientos del laboratorio, evaluando y manteniendo la calidad de los métodos disponibles y diseñando e implantando nuevos métodos analíticos conforme al estado del arte.

5. Colaborar en la gestión de la unidad asistencial en la que esté integrado conforme a un plan de mejora continua. Para ello participará en los programas de aseguramiento de la calidad, en los de formación y en los de gestión de recursos.

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VII. DOCENCIA E INVESTIGACIÓN

El especialista en Análisis Clínicos debe ser un profesional en continuo proceso de formación que mantiene y mejora constantemente su competencia profesional, debiendo adquirir las habilidades necesarias para preparar y exponer sesiones clínicas, bibliográficas, de revisión, ect…

Aprenderá a hacer búsqueda bibliográfica, conocerá las bases de datos, los

recursos de información y documentación médica y la forma de obtener información basada en la evidencia.

El especialista en formación de análisis clínicos ha de saber evaluar la calidad

y la importancia de los resultados de investigación publicados en revistas científicas, adquiriendo el hábito de lectura crítica y los conocimientos básicos para desarrollar un proyecto de investigación destinado a responder a preguntas e hipótesis procedentes de su trabajo, así como los conocimientos y métodos propios de la epidemiología clínica y de la medicina basada en la evidencia.

Para todo ello tendrá actividades Formativas como Cursos, asistencia y participación en Congresos y realización de Programas de Formación Continuada.

A lo largo de los 4 años del periodo de formación se impartirán diferentes cursos. Exponemos el organigrama de la asistencia a los mismos según el año de formación: De R1: • Curso de Introducción al Medio Hospitalario • Recursos y Funcionamiento de la Biblioteca • Situación y posibilidades actuales de la Investigación en el HUNSC • Sistemas de Información Hospitalarios. Intranet • Curso Básico de Urgencias • Seminario de Reanimación Cardiopulmonar • Curso de Estadística y Metodología de la Investigación • Curso de Búsqueda Bibliográfica • Curso de Seguridad – riesgo laboratorio- protección medio ambiente • Curso de calidad y Laboratorio • Curso de calidad asistencial • Cursos de diferentes instrumentos que configuran el Laboratorio de Urgencias y el

Laboratorio de Bioquímica – Core • Congreso de Médicos Residentes de Canarias • Participación en Programas de Formación Continuada.

De R2: • Asistencia al Congreso Nacional del Laboratorio Clínico y presentación de

ponencias • Participación en Programas de Formación Continuada • Diferentes cursos de la Comisión de Docencia, del Servicio, de los Colegios

Profesionales y de otros Hospitales.

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De R3: • Curso de Innovación Tecnológica y Gestión en el Laboratorio Clínico: 250 horas

lectivas (25 créditos). • Asistencia y presentación de ponencias en el Congreso de la Sociedad Canaria del

Laboratorio Clínico. • Participación en Programas de Formación Continuada. • Diferentes cursos de la Comisión de Docencia, del Servicio, de los Colegios

Profesionales y de otros Hospitales De R4: • Curso Práctico de Citología de sangre periférica, Hospital Clinic Barcelona. • Participación en Programas de Formación Continuada • Diferentes Cursos de la Comisión de Docencia, del Servicio, de los Colegios

Profesionales y de otros Hospitales OTRAS ACTIVIDADES FORMATIVAS Los Residentes de Análisis Clínicos deben asistir a las sesiones que organiza cada curso lectivo la Unidad de Docencia del HUNSC. Estas sesiones multi-departamentales tienen lugar una vez por semana de 08:15 a 09:30 horas. Existen 3 tipos de sesiones:

• Sesiones de formación continuada. • Sesiones generales con presentación y posterior discusión de casos clínicos. • Presentación mensual de un caso clínico radiológico • Sesiones del Plan de Formación Transversal Común: se hacen cada dos semanas

los miércoles de las 14.00 a 15.00 horas. La asistencia a todas ellas es imprescindible y obligatoria. De igual manera cuando el residente se encuentre rotando por otros servicios de nuestro Hospital o en rotación por otros Hospitales participará activamente en las sesiones y cualquier otra actividad formativa que en ellos se desarrolle. ACTIVIDAD INVESTIGADORA

El residente, durante su periodo de formación, además de adquirir los conocimientos del programa relativos a la “Metodología de la investigación”, a lo largo de la especialidad realizará al menos un trabajo de investigación en algunas de las líneas de las Unidades del Laboratorio por las que va rotando. Este trabajo será evaluado por el Adjunto responsable de la Unidad y se presentará a los Congresos de la especialidad ya sean de ámbito nacional o autonómico, y si es posible, se publicará en revistas de ámbito nacional o internacional. Se tendrá en cuenta el tiempo que el residente le dedique, en el informe de evaluación y constará en el expediente del residente.

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VIII. PROTECCIÓN RADIOLÓGICA Todos los especialistas en formación de Análisis Clínicos realizarán el Curso de Protección Radiológica organizado por la Comisión de Docencia del HUNSC. IX. SUPERVISIÓN DEL RESIDENTE Desde el principio de la formación el residente debe formarse en las particularidades que conlleva la atención a los procesos urgentes por lo que tras un corto periodo de formación intensiva en el Laboratorio de Urgencias, de aproximadamente 3 meses, -por término medio-, se incorporará a la realización de guardias del Servicio, previa valoración del Facultativo responsable y siempre que supere la guía estructurada que se describe al respecto en el plan individualizado del residente. El Facultativo docente de cada Unidad del Laboratorio por las que va realizando el residente su formación, supervisará y marcará los tiempos, de forma individualizada para cada uno de ellos, de las responsabilidades que puede ir asumiendo el residente, dependientes siempre del grado de conocimientos y actitudes mostradas. Siempre se les exigirá un mínimo para superar la rotación por la Unidad. X. SESIONES DOCENTES DEL SERVICIO Se realizan varios tipos de sesiones:

• Monográficas • De descripción de casos clínicos • De artículos • Sesiones on line de la Sociedad Española de Bioquímica Clínica y Patología

Molecular. • De presentación de métodos y parámetros diagnósticos novedosos, por parte de

casas comerciales. • De organización del Servicio: - Objetivos - Calidad - Concursos de suministros

Las sesiones clínicas del Servicio son todos los miércoles desde el 15 de Septiembre hasta el 15 de Julio de cada curso, desde las 08.30 hasta las 09.30 horas. La asistencia a todas ellas es imprescindible y obligatoria. Como novedades en este curso 2010-11: • Se ha abierto un foro en g-mail para los residentes y sus tutores. En este foro el

tutor cuelga todos los meses dos o mas artículos de alguna revista científica de relevante prestigio de la especialidad y se abre un dialogo de comentarios a los mismos.

• Se han organizado sesiones de revisión bibliográfica de las revistas científicas más

relevantes de nuestra especialidad. Cada residente y por un periodo de 3 meses será el encargado de revisar lo publicado en la revista que se le ha asignado. Se harán cada 15 días, los lunes en horario de 15.00 a 16.00 horas, para exponer los artículos más interesantes.

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Las revistas seleccionadas son: - Mayo Clinic Proceedings. - Haematológica.

- The New England Journal of Medicine.

- Revista del Laboratorio Clínico. - Enfermedades infecciosas y Microbiología Clínica. - Clinical Chemistry. - Diabetes Care.

XI. GUARDIAS Los residentes hacen un promedio de 4 guardias al mes.

Para las guardias que se realizan de Lunes a Viernes, el horario es de las 15.00 horas hasta las 08.00 horas del día siguiente. Los Sábados y Domingos el horario es desde las 09.00 horas hasta las 09.00 horas del día siguiente. El no asistir a una guardia o ausentarse sin permiso del Adjunto se considera una falta muy grave. En el caso de que exista una causa justificada, como puede ser una enfermedad, hay que avisar al Jefe de Servicio para cubrirla con otro compañero. Siempre hay un Residente, que de forma voluntaria organiza el turno de guardias, que luego supervisa el Jefe de Servicio.

XII. REVISIÓN Dado que en el Laboratorio clínico se incorporan todos los años pruebas diagnósticas nuevas, que en algunos casos complementan y en otros sustituyen a otras, esta guía o itinerario formativo se revisará anualmente para proceder a su oportuna actualización.

GUIA FORMATIVA RESIDENTES ANALISIS CLINICOS€¦ · Conocimiento de la organización sanitaria...

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