MANUA MCBP-12-13-15-01-13

MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA

UNIVERSIDAD AUTONOMA DE TLAXCALA

P.E. EN “MEDICO CIRUJANO”

1

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE TLAXCALA FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD

PROGRAMA EDUCATIVO EN MÉDICO CIRUJANO

MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO

DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA

ELABORADO POR:

ACADÉMIA DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA

CICLO ESCOLAR 2012 -2013




2

DIRECTORIO UATx

DR. VÍCTOR JOB PAREDES CUAQUENTZI

Rector

MTRO. RENÉ ELIZALDE SALAZAR

Secretario Acadêmico

MTRO. FELIPE HERNÁNDEZ HERNÁNDEZ

Secretario Administrativo

ING. SERGIO ALGARRA CEREZO

Secretario Técnico

LIC. EFRAÍN ORTIZ LINARES

Secretario de Extensión Universitaria y Difusión Cultural

MTRA. DORA JUÁREZ ORTÍZ

Secretaria de Investigación Científica y Posgrado

MTRO. RUBEN REYES CÓRDOBA

Coordinador de la División de Ciencias Biológicas

Dr. V CONSTANTINO QUÍROZ PEREZ

Director de la Facultad de Ciencias de la Salud

Dr. EZEQUIEL MUÑOS FLORES

Secretario de Facultad

Coordinador de la Licenciatura




3

ACADEMIA DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA

Dr. OTHÓN CRUZ LÓPEZ

Presidente y Docente de Teoría

Dr. ALFREDO ADÁN PIMENTEL

Docente de teoría

D.C. MA ELENA CÁRDENAS PEREA

Secretaria y Docente de Laboratorio

DCN. SENOBIA ROSALÍA CRUZ LUMBRERAS

Docente de Laboratorio

QFB VICTOR HERNÁNDEZ FLORES


QFB MA. NARCISA BERISTAIN GONZÁLEZ





4

INDICE

I- INTRODUCCIÒN

II- MISIÒN Y VISIÒN

III- OBJETIVOS GENERALES DEL PROGRAMA EDUCATIVO

IV- PERFIL DEL EGRESADO

V- OBJETIVOS Y PROPOSITOS DEL MANUAL DE PROGRAMA DE

LABORATORIO DE MICROBIOLOGIA Y PARASITOLOGIA

VI- REGLAMENTO DE LABORATORIO

VII- RELACIÒN DE PRACTICAS

VIII- PLANES DE PRACTICAS




5

I INTRODUCCIÓN

En este Manual se muestra la ubicación de la asignatura teórico- práctica de MICROBIOLOGÍA y

PARASITOLOGÍA dentro del plan de estudio de PE en Médico Cirujano. Se describen las

actividades, delimitación de funciones, deberes y responsabilidad del personal que participa en

esta academia. La asignatura es teórico-práctica e incluye tres horas de teoría. Las horas de

práctica tienen duración de cuatro horas semana/mes se imparte durante el segundo año del P.E.

en médico cirujano. La asignatura guarda coherencia con disciplinas antecedentes, vinculación

vertical y áreas consecuentes. Esta área del conocimiento contribuye con el perfil del egresado en

la adquisición de habilidades, destrezas, actitudes de trabajo en equipo y consolidación de los

conceptos teóricos que permiten formar médicos con calidad.




6

II MISIÓN Y VISIÓN

MISIÓN

La misión del PE en MC es formar médicos altamente competitivos, con valores ético,

humanísticos, de servicio, conciencia ecológica, actitud proactiva y de superación permanente

ante los cambios estructurales para la preservación y/ó restitución de la salud de la comunidad, del

estado y del país; brindando un espacio donde el proceso enseñanza-aprendizaje, sea el eje rector

de la discusión académica, de la generación y aplicación del conocimiento.

VISIÓN

Ser reconocido por sus estudiantes, egresados y por la sociedad misma, como el programa

educativo más importante en el ámbito estatal formador de médicos, por su calidad académica,

investigación científica, autorrealización e innovación educativa, como resultado de una

planeación institucional, gestión eficiente y transparencia en la aplicación de los recursos.

MISON DE LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA

Formar médicos con actitudes de trabajo en equipo, habilidades y destrezas en el área de

microbiología y parasitología que le permitan desarrollar un razonamiento crítico constructivo

para plantear un diagnóstico oportuno, dar seguimiento y atención integral a sus pacientes.

VISION DE LABORATORIO

Que los alumnos apliquen e interrelacionen los conocimientos adquiridos en el laboratorio de

microbiología y parasitología con las asignaturas precedentes y consecuentes del plan de estudio

y así dar alternativas de solución a los procesos infectocontagiosos y parasitarios.




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III OBJETIVOS GENERALES

Formar médicos con competencia para:

1. Ejercer la práctica de la medicina general con conocimientos, calidad técnica, ética

profesional y humanismo que requieren la prevención y/o restitución de la salud

individual y colectiva mediante una práctica profesional competente y científicamente

fundamentada.

2. Actualizar continuamente sus conocimientos de acuerdo con los avances de la medicina,

conjugando la capacidad con el trabajo en equipo y la formación de la conciencia

individual y colectiva. Así como continuar, en su caso la formación en el nivel de

especialidad clínica, posgrado e investigación.

3. Participar activamente en la solución de las necesidades de la población, fomentando el

desarrollo social y la creación de entornos ecológicos favorables a la salud.




8

IV PERFIL DEL EGRESADO

El egresado de la licenciatura en Médico Cirujano cumple satisfactoriamente los objetivos del PE,

a través del cual se desarrollan la adquisición de conocimientos, habilidades, destrezas y

actitudes.

El egresado estará capacitado para:

Conocer con detalle los problemas de mayor importancia en el país, en la región, en el

estado, así como su localidad y estar capacitado para ofrecer tratamiento adecuado.

Desarrollar estrategias de comunicación asertiva con los pacientes y entre los integrantes

del equipo de salud.

Otorgar servicios de medicina general de alta calidad y en su caso, para referir con

oportunidad y acierto a los pacientes que requieren cuidados médicos especializados.

Conducirse con principios éticos y humanistas, que exigen el cuidado de la integridad

física y mental de los pacientes.

Examinar y atender los aspectos afectivos, emocionales y conductuales de los pacientes

bajo su cuidado.

Aplicar las medidas necesarias para la promoción de la salud y la prevención de las

enfermedades, apoyándose en el análisis de los determinantes sociales, ambientales y el

estilo de vida.

Promover el trabajo en equipo con otros médicos y profesionales de la salud, asumiendo la

responsabilidad y el liderazgo que le corresponde según su nivel de competencia y papel

profesional.




9

Tener una actitud permanente de búsqueda de nuevos conocimientos, desarrollando el

aprendizaje independiente y autodirigido, lo que le permite actualizarse en los avances de

la medicina y en consecuencia, mejorar la calidad de la atención que otorga.

Mantenerse actualizado de los avances médicos científicos-tecnológicos y además, el

pleno dominio de tecnología de información y comunicación en beneficio de su práctica

profesional.

Disponer de conocimientos sólidos acerca de las ciencias de la salud que le permitan

utilizar la metodología científica como herramienta de su práctica clínica habitual y

capacidad para optar por estudios de posgrado.




10

V OBJETIVOS GENERALES DEL MANUAL DE PRÁCTICAS DE MICROBIOLOGÍA

Y PARASITOLOGÍA.

A) Unificar criterios, establecer los lineamientos y metodología que deben seguir los

profesores y alumnos durante la realización de prácticas de laboratorio de microbiología y

parasitología que permitan dar cumplimiento a los contenidos previamente establecidos en

el programa de asignatura.

B) Al término de las actividades prácticas el alumno:

Describirá las alternativas de diagnóstico de laboratorio de Microbiología y parasitología

para su formación metodológica, que le permitan establecer diagnóstico y tratamiento

oportuno.

Obtener los conocimientos necesarios para interpretar los resultados de laboratorio en

procesos infecciosos y dar seguimiento a sus pacientes. Aplicar el Método científico en la

investigación biomédica




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PROPÓSITO

DEL DOCENTE

Facilitar el proceso enseñanza aprendizaje del laboratorio de microbiología y parasitología desde

un punto de vista clínico, encaminado al diagnóstico de problemas infecciosos.

DEL ALUMNO

Que los estudiantes apliquen el conocimiento científico para el desarrollo de pensamiento crítico,

resolución de problemas, toma de decisiones y trabajo en equipo para el manejo y control de

pacientes con procesos de tipo infeccioso.




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VI REGLAMENTO DE LABORATORIO

A) DOCENTES

B) ALUMNOS

C) PERSONAL DE IMAGEN




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DESCRIPCIÓN

El reglamento para docentes, alumnos y personal de imagen de laboratorio tiene como finalidad

unificar criterios metodológicos para mejorar la calidad del proceso enseñanza – aprendizaje. Será

aplicado en los diferentes laboratorios de las asignaturas teórico-prácticas contempladas en el plan

curricular del programa educativo de Médico Cirujano, Enfermería y Nutrición.

Actualización y vigencia

El presente reglamento será revisado y actualizado por los docentes que impartan teoría

laboratorios de asignaturas teórico prácticas, en cada ciclo escolar según acuerdo de los mismos. Y

autorizado por la Dirección de Facultad y Coordinación de Licenciatura.

Todo lo no contemplado será objeto de modificación por los docentes titulares de asignatura y

laboratorio correspondiente.




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A) ACTIVIDADES PARA DOCENTES DE LABORATORIO

GENERALES

1. Se realizarán prácticas de laboratorio en sesiones de dos, tres y cuatro horas semana mes

por año según contenido de asignatura.

2. Cada docente determinará el tiempo de tolerancia para entrar y la sesión se dará por

terminada cinco minutos antes de la hora indicada.

3. En caso de que el docente no asista a la sesión de laboratorio por causas de salud, o por

gestión deberá avisar al área académica y a los alumnos.

4. Durante las sesiones prácticas el docente deberá portar bata blanca.

METODOLÓGICAS

5. En cada una de las asignaturas teórico- prácticas, los docentes de laboratorio elaborarán y

actualizarán en cada ciclo escolar su carta descriptiva y su manual de prácticas, que se

entregará en tiempo y forma a la jefatura académica correspondiente con oficio dirigido al

coordinador con copia al responsable del área académica.

6. Los docentes que imparten prácticas de laboratorio presentarán sus requerimientos para el

trabajo a realizar durante el semestre 30 días antes de iniciar ciclo escolar.

7. Durante la primera sesión el docente realizará sesión de encuadre donde dará a conocer el

contenido temático a realizar, planteara metodología a seguir y criterios de evaluación.

8. En cada sesión programada realizará sus prácticas correspondientes y deberá registrarse en

la bitácora.




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DISCIPLINARIAS

9. El docente verificará que el reglamento para alumnos se aplique.

10. Al inicio y término de la sesión deberá verificar que el jefe de grupo registre en la bitácora

el estado en que encontró y dejó el laboratorio, así como incidentes relevantes en la sesión.

11. Deberá verificar integridad y el uso adecuado de los microscopios: limpieza, que no dejen

laminillas de observación, los coloquen en su lugar y se registren en la bitácora

correspondiente.

12. Al término de la practica:

1. El docente indicará a sus alumnos coloquen en lugar adecuado sillas

y bancos con finalidad de facilitar el aseo del laboratorio.

2. Deberá verificar que las mesas de trabajo queden limpias y secas.

3. Que el material utilizado quede en su lugar para uso posterior.

13. En el caso de que se indique abrir las ventanas el docente deberá verificar que estas queden

cerradas al final de su sesión.

14. En el caso de dejar material para uso posterior, favor de asignar un rotulo y

responsabilizarse que finalmente sea eliminado.

15. Con fines didácticos cada docente al término de su clase deberá dejar limpio el pizarrón.

16. El docente deberá indicar a sus alumnos el procedimiento correcto para la eliminación de

basura municipal y manejo de RPBI.

17. En su caso deberá verificar que las lámparas queden apagadas.

18. Indicar a sus jefes de grupo o persona previamente asignada verificar que las llaves de paso

de la instalación de gas queden cerradas.




16

19. Para uso del cañón en los laboratorios deberá reservar fecha y hora de uso, para laboratorio

1 y 2 con el Dr. JOSÉ VÁZQUEZ TALAVERA y en el laboratorio 3 con el Dr. AGUSTIN

GALVÁN ROSAS.

B) REGLAMENTO PARA ALUMNOS DE LABORATORIO

1. Se realizarán prácticas de laboratorio en sesiones de dos, tres y cuatro horas semana mes

por año.

2. La entrada al laboratorio será con diez minutos de tolerancia y la sesión se dará por

terminada cinco minutos antes de la hora indicada.

3. El acceso al laboratorio por disciplina y medida de bioseguridad deberá ser bajo las

siguientes condiciones:

Aseados sin gorra, cabello corto en el caso de los hombres y bien peinados en ambos

sexos.

Guardar compostura y responsabilidad al trabajo de laboratorio.

No portar o exhibir accesorios (piercing), aretes en los hombres y tatuajes.

4. El acceso será con uniforme reglamentario completo, más bata blanca de manga larga,

limpia, abotonada y planchada.

5. El grupo se organizará de la siguiente manera:

Deberán formar equipos de trabajo según asigne el docente.

Cada equipo nombrará un jefe (a) de acuerdo a las indicaciones del docente, el cual

se encargará de verificar que el material que recibe y el área de trabajo al inicio y

termino de la práctica, esté en buenas condiciones y en iguales circunstancias

deberán entregarlo.

Una vez organizado el equipo deberá integrar su material básico según indique su

asesor de prácticas.

6. Al inicio y término de la sesión el jefe de grupo deberá registrar en la bitácora el estado en

que encontró y dejó el laboratorio, así como incidentes relevantes en la sesión.

7. Se les proporcionará material únicamente con el vale correspondiente, anexando credencial

de identificación.




17

8. Durante la sesión de prácticas queda estrictamente prohibido:

A. Tomar alimentos

B. Llevarse objetos a la boca, fumar o maquillarse.

C. Establecer charlas innecesarias y escandalosas con los compañeros

D. Cambiarse de lugar a menos que la práctica así lo requiera.

E. Ser objeto de indisciplina personal y colectiva.

F. Mantener el celular en vibrador, solo podrá contestarlo fuera del

laboratorio y en caso de absoluta necesidad

G. Uso de ipods dentro del laboratorio

H. El uso de laptops para consulta de internet.

Si el (los) alumno (os) infringen algún aspecto de los anteriores, se les pedirá

abandonar el laboratorio en ese momento y la calificación de la practica será

reprobatoria. En caso de reincidencia el alumno se hará acreedor de sanción por

escrito.

9. En caso de daño, destrucción o sustracción del material, éste será repuesto por el equipo en

la siguiente semana, para tener derecho a la calificación de la práctica con las siguientes

recomendaciones:

1ra. Vez – reposición del material (a la siguiente sesión)

2da. Vez – reposición doble

3ra. Vez – reposición y suspensión de prácticas.

10. En caso de daño o destrucción a las instalaciones y/o equipo de laboratorio, será

responsabilidad de todos los alumnos que cursan o tengan acceso al laboratorio con las

siguientes indicaciones:

1ra. Vez – reparación del daño antes de la siguiente sesión.

2da. Vez – suspensión definitiva de las prácticas para el equipo.

3ra. Vez – suspensión de prácticas al grupo.

11. Cumplir con el hábito de lavarse las manos y sus mesas de trabajo antes y después de sus

prácticas.




18

12. Depositar la basura de acuerdo a la clasificación:

A. Municipales: Bolsa negra.

B. Residuos peligrosos biológico infecciosos (RPBI)

Tejidos, órganos y cadáveres: Bolsas amarillas.

Punzo- cortantes: En recipientes rígidos herméticos como se

marca en la NOM-O87.

Sólidos infecto-contagiosos: Bolsas rojas

Las cajas de petri con cepas microbiológicas se depositaran

selladas en bolsa roja como se marca en la norma oficial y

depositaran en el recolector que dice CEPAS.

13. La acreditación del laboratorio se asignará de la siguiente manera:

El alumno deberá cumplir el 80% de asistencias a las prácticas

Si el alumno acumula tres retardos se hace acreedor a una falta.

En caso de inasistencia deberá presentar justificante oficial el día siguiente y

posterior a la falta ( con un máximo de dos por alumno y por año)

14. Durante el desarrollo de la práctica deberá seguir las indicaciones del asesor de prácticas

para evitar la contaminación de reactivos, no deberá cambiar las pipetas de uso de cada

frasco, no mezclar reactivos a propia decisión para evitar reacciones tóxicas o corrosivas,

desechar los líquidos con llave abierta.

15. A término de cada practica el alumno entregará un reporte que se realizará de acuerdo a

las siguientes indicaciones:

Portada

Índice ( si así se requiere)

Plan de práctica

Introducción

Materiales y reactivos

Desarrollo

Observaciones y resultados

Discusión y conclusiones

Referencias bibliográficas: libros, revistas y manuales.

Referencias electrónicas (solo páginas científicas)

Deberá entregarse engrapado en hojas blancas y en fólder según su sección y se

entregará cuando lo indique el asesor.

NOTA: SI EL ALIMNO NO ASISTE A LA PRACTICA NO TIENE DERECHO A

ENTREGAR EL REPORTE CORRESPONDIENTE.




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16. La calificación de la asignatura estará constituida por el 70% de teoría y 30% de

laboratorio (Reglamento de evaluación para los alumnos de la UAT).

Calificación aprobatoria de laboratorio dará derecho a la exención de la materia y

examen ordinario

Sólo la calificación aprobatoria de la teoría y laboratorio dará derecho a la

ponderación del 70% de teoría y 30% de práctica.

En caso de reprobar el laboratorio el alumno no tiene derecho a exención ni a

presentar examen ordinario, por lo que deberá presentarse a extraordinario y a título

de suficiencia os cuales constituyen del 70% de preguntas de teoría y 30% de

laboratorio.

17. Propuesta de evaluación de laboratorio:

60% exámenes departamentales.

20% reportes

20% exposición de tema y participación.




20

C) REGLAMENTO PARA PERSONAL DE IMAGEN DE LABORATORIO

18. El personal de imagen será responsable de la limpieza de laboratorio que se realizará de

acuerdo a horarios previamente establecidos.

19. La limpieza diaria incluye mesas, equipo y pisos.

20. El personal de imagen realizará limpieza exhaustiva una vez al mes e incluirá: techos,

mesas, vidrios, puertas y equipos.

21. Será responsable de mantener las puertas cerradas cuando no haya clases o cuando no

exista la presencia del algún docente en el área de laboratorios, de lo contrario el personal de

imagen será responsable de algún daño en el laboratorio en relación a infraestructura, pérdida

de equipo, materiales e insumos.

21. Verificará integridad de las instalaciones y equipo de laboratorio.

________________________________

Dr.

DIRECTOR

________________________________

COORDINADOR (A)




21

RELACIÓN DE PRÁCTICAS

Práctica No. Descripción Pág.

SEMESTRE

A I - Introducción al laboratorio de Microbiología y Parasitología

Encuadre del curso

Organización, reglamento y metodología de trabajo

1. Generalidades

a) Bioseguridad en el laboratorio de microbiología y parasitología

b) Revisión de NOM-087-SSA-1 ECOL

c) Evaluación de Microscopia

2. Citología y observación de los microorganismos

a) Célula bacteriana: estructura, formas básicas y agrupación

b) Preparación, elaboración y tinción de frotis bacteriano

3. Tinción diferencial

a) Tinción de Gram

4. Tinción de estructuras especiales:

a) Cápsula

b) Esporas

c) Flagelos

5. Requerimientos nutricionales de los microorganismos:

a) Requerimientos básicos

b) Definición y clasificación de Medios de Cultivo útiles para el

diagnóstico de microorganismos de importancia médica.

c) Preparación de medios de cultivo

6. Métodos de aislamiento bacteriano, morfología colonial e interpretación de

cultivos

7. Destrucción e inhibición de microorganismos

a) Asepsia y antisepsia

b) Desinfección

c) Esterilización

8. Prueba de sensibilidad a los antimicrobianos: Antibiograma (AB)

a) Fundamento

b) Siembra

c) Interpretación

9. Pruebas bioquímicas para identificación bacteriana

10. Obtención recolección de muestras en bacteriología




22

II - Microbiología médica:

Diagnóstico de Infecciones Respiratorias Agudas (IRAS)

11. IRAS 1

Exudado faríngeo, nasal, secreciones óticas y oftálmicas

a) Identificación de agente etiológico (PBQ)

b) Interpretación de resultados.

12. IRAS 2

Diagnóstico de laboratorio de Micobacterium tuberculosis

a) Indicaciones especiales para obtención de muestras

b) Tinción de Ziehl Neelsen

c) NOM para el Diagnóstico, manejo y control de TB

III Diagnóstico de enfermedades gastrointestinales y enfermedades

diarreicas Agudas ( EDAS)

13. EDAS-1

Diarreas de origen bacteriano, parasitario y viral

a) Citología de moco fecal (CMF)

b) Azucares reductores en heces

c) Búsqueda de amiba en fresco (BAF)

14. EDAS-2

Coprocultivo (CC)



15. EDAS-3

Determinación de Rotavirus

a) Aplicación de la prueba

b) Diagnóstico diferencial

c) Revisión de casos clínicos

IV Diagnóstico de Infecciones de Vías Urinarias (IVUS 16. Urocultivo (UC)






23

V Infecciones de transmisión sexual (ITS) 17. Exudado y cultivo de secreción vaginal y uretral

a) Obtención de muestra

b) Interpretación de resultados

18. Virus del papiloma humano (HVP) y cáncer cervicouterino

a) NOM-014-SSA2-1994

19. Determinación serológica de VDRL

a) Pruebas no treponémica

b) Pruebas treponémicas

c) NOM- Diagnóstico y control de sífilis

20. Virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) y SIDA

Métodos y estrategias de Dx. y control

VI Diagnóstico de infecciones sistémicas

21. Clasificación de Hepatitis Viral:

a) Diagnóstico y marcadores sexológicos

b) NOM-017-SSA2-1994

22.

Determinación de Reacciones febriles (RF)

23.

Hemocultivo. (HC)


b) Identificación de los principales agentes etiológicos

c) Interpretación de resultados

24. Cultivo de LCR


b) Identificación de los principales agentes etiológicos

Interpretación de resultados

25. Encefalitis rábica y esquemas de vacunación




24

SEMESTRE

B

PARASITOLOGÍA

26. Introducción al laboratorio de parasitología

a) Generalidades de parasitología

b) Obtención, manejo y conservación de productos biológicos.

c) Clasificación de métodos para el Dx parasitológico y

coproparasitoscópico.

A) Protozoarios: importancia médica y alternativas de diagnóstico

27. Morfología elemental y DX de protozoarios intestinales.(Ptz-1)

a) Entamoebosis

b) Giardiosis

c) Balantidiosis

d) Parásitos emergentes

28.

Alternativas de diagnóstico de amibas de vida libre (Ptz-2)

29. Morfología, muestras y exámenes para el diagnóstico de parásitos

extraintestinales:

a) Mastigophora: tisulares, luminales y de cavidades

b) Apicomplexa no intestestinales (coccidios)

B) Helmintos: Importancia médica y alternativas de diagnóstico

30. Diagnóstico de platelmintos: Cestodos y trematodos

31. Diagnóstico de nematelmintos: ovíparos y vivíparos

C) Métodos Coproparasitoscópicos (CPS) por concentración

32. Flotación:

a) Método de Faust

b) Método de Willis

33. Sedimentación:

a) Método de Ritchie

b) Sedimento en copas

34. Coproparasitoscópicos (CPS) cuantitativos

a) Método de Kato-Kats

b) Método de Stoll

35. Coproparasitoscópicos (CPS) especiales

a) Metódo de Baerman

b) Método de tamizado

c) Método de Graham




25

MICOLOGÍA MÉDICA

36. Generalidades y obtención de muestras para el DX en micología

a) Morfología de hongos (hifa, micelio, levadura, esporas y conidias).

b) Métodos de recolección de muestras

37. Diagnóstico de micosis superficiales

a) Pitiriasis versicolor

b) tiña negra y piedras

38. Diagnóstico de micosis subcutáneas

a) Esporotricosis, micetoma y cromomicosis.

39. Diagnóstico de micosis sistémicas

40. Diagnóstico de micosis oportunistas

Candidosis,criptococosis, aspergilosis y ficomicosis

ARTRÓPODOS DE IMPORTANCIA MÉDICA

41.

Observación macroscópica de algunos artrópodos y su patogénesis

a) Características generales de artrópodos

b) Aspectos clínicos y diagnóstico.

GENERALIDADES Y PATOGÉNESIS PRODUCIDAS POR

SERPIENTES

42.

Presentación de audiovisual




26

PLANES DE PRÁCTICA




27

LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA

MATERIAL BÁSICO DE LABORATORIO

INDIVIDUAL POR EQUIPO

Bata blanca de manga larga Marcador de aceite punto grueso

Libreta tamaño profesional blanca/cuadro grande Escobillón grande y chico

Torniquete Encendedor de punta larga

Plumón permanente de punto fino 5 jeringas de 5ml c/aguja (verdes)

Pinzas de disección s/dientes Servitoalla magitel

Guantes desechables no estriles

POR GRUPO Guantes para lavar material

Cloro (1 litro) Maskin tape (2cm de ancho)

Toallas para manos desechables Cinta diurex (2cm de ancho)

Papel de estraza ½ Kg Papel higiénico

Alcohol (1 litro) Jabón de tocador (líquido)

Bolsa roja chica RPBI ½ kilo Porta material de plástico

Cubre bocas Jabón liquido para trastes

Torundas (1 bolsa) Tijeras grandes

Ligas gruesas Engrapadora

Papel aluminio 2do A ROJA

2do B VERDE

2do C AZUL

2do D NARANJA

2do E AMARILLA




28

Práctica____1___ Fecha__________

GENERALIDADES

a) Bioseguridad en el laboratorio de microbiología y parasitología

b) Revisión de NOM-087-SSA-1 ECOL

c) Evaluación de Microscopia

Objetivo:

a) Al término de la práctica los alumnos describirán las normas básicas de

bioseguridad para el trabajo en el laboratorio de microbiología y parasitología.

b) Clasificará los desechos generados durante las prácticas como basura

municipal y RPBI.

c) Describirá el procedimiento y cuidados en el manejo del microscopio de

campo claro.

Actividades:

1. Revisión bibliográfica individual y por equipo

2. Discusión dirigida en equipo y por grupo.

3. Desarrollo de la práctica.

4. Discusión de resultados

5. Comentarios y conclusiones.

6. Elaboración de reporte.

Guía de estudio:

1. Enliste usted las principales normas de bioseguridad en el laboratorio de

microbiología.

2. Mediante un cuadro sinóptico resuma usted la clasificación del manejo de RPBI.

3. Describa los diferentes tipos de microscopios que se manejan en microbiología.

4. Enuncie usted el procedimiento para el uso adecuado del microscopio.

5. Que cuidados se deben aplicar para el uso correcto de microscopio.

Bibliografía

1. Koneman WE y cols., Diagnóstico Microbiológico, México, Ed. Médica

Panamericana 2001.

2. Prats Guillem, Microbiología Clínica, Madrid España, Médica Panamericana 2005.

3. Davidson I, Bernard HJ, Diagnóstico Clínico por el Laboratorio, Barcelona España,

Salvat Editores 2000.

4. Página electrónica: Pub Med.




29

Práctica____2____ Fecha__________

CITOLOGIA Y OBSERVACION DE LOS MICROORGANISMOS

a) Anatomía y fisiología bacteriana.

b) Forma , tamaño y agrupación bacteriana

c) Preparación, elaboración y tinción de frotis bacteriológico.

Objetivo:

a) Al término de la práctica los alumnos describirán las características morfológicas,

estructurales, tintoriales y de agrupación de las células microbianas de importancia

médica.

b) Realizar un frotis bacteriológico y describir su aplicación en el diagnóstico rápido en

procesos infecciosos.

Actividades:







Guía de estudio:

1. Mediante un esquema identifique usted las principales estructuras anatómicas y

fisiológicas de las bacterias.

2. Enuncie usted mediante que métodos o procedimientos de laboratorio podemos

observar características morfológicas y de agrupación de los microorganismos.

3. Describa usted la metodología a seguir para la elaboración de frotis

bacteriológico y las técnicas de tinción que se aplican para su observación.

Bibliografía

1. Manual de técnicas básicas para un laboratorio de salud

Serie Paltex, OPS. 1983.

2. Koneman WE y cols., Diagnóstico Microbiológico, México, Ed. Médica

Panamericana 2001.




5. Romero CR, Microbiología y Parasitología Humana, México DF, Ed Médica

Panamericana,





30

Práctica____3___ Fecha____________

TINCIÓN DIFERENCIAL

Objetivos:

a) Al término de la práctica los alumnos describirán el fundamento de la tinción de

Gram.

b) Identificarán las diferencias de las bacterias Gram positivas y Gram negativas.

c) Realizar un frotis bacteriológico y describir su aplicación en el diagnóstico

rápido en procesos infecciosos.

Actividades:







Guía de estudio:

1. Des criba usted el fundamento de la tinción de Gram.

2. Mediante un esquema ilustre usted las características tintoriales de las bacterias Gram

positivas y Gram negativas.

3. Describa usted la metodología a seguir y los criterios de interpretación en la tinción de

Gram.

4. Identifique la utilidad de la Tinción de Gram en área médica.

5. Enliste usted la clasificación de los antibióticos (amplio medio y reducido espectro) y de

ejemplos en cada caso.

Bibliografía

1. Manual de técnicas básicas para un laboratorio de salud

Serie Paltex, OPS. 1983.

2. Koneman WE y cols, Diagnóstico Microbiológico, México, Ed. Médica

Panamericana 2001.





Panamericana,

6. Página electrónica: Pub Med




31

Práctica____4___ Fecha____________

TINCIONES DE ESTRUCTURAS ESPECIALES

a) Cápsula

b) Esporas

c) Flagelos

Objetivos:

Al término de la práctica los alumnos describirán las diferentes técnicas de

tinción de estructuras especiales y su aplicación en el diagnóstico clínico.

Actividades:







Guía de estudio:

1. Describa usted las usted las diferentes técnicas y su fundamento para la observación de

estructuras bacterianas como capsulas y flagelos.

2. Identifique la utilidad de las tinciones especiales en el área médica.

Bibliografía


Panamericana 2001.








32

Práctica____5__ Fecha____________

REQUERIMIENTOS NUTRICIONALES DE LOS MICROORGANISMOS

a) Requerimientos básicos

b) Definición y clasificación de medios de cultivo

c) Preparación de medios de cultivo

Objetivo:

Al término de la práctica los alumnos describirán:

a) Los requerimientos básicos para el estudio in vitro de las bacterias.

b) Clasificación, preparación e importancia de los medios de cultivo.

Actividades:

1. Revisión bibliográfica individual y por equipo.

2. Revisión de conceptos.

3. Desarrollo de práctica.

4. Comentario y conclusiones.

5. Elaboración de resultados.

Guía de estudio:

1. Enliste usted los requerimientos físicos, químicos y nutricionales de las bacterias.

2. Defina que es un medio de cultivo y su importancia en microbiología.

3. Enuncie usted los principales criterios de clasificación de los medios de cultivo.

4. De manera general describa usted el procedimiento a seguir para la preparación, control de

calidad y conservación de los medios de cultivo.

Bibliografía


Panamericana 2001.







33

Práctica____6__ Fecha____________

METODOS DE AISLAMIENTO BACTERIANO, MORFOLOGIA COLONIAL E

INTERPRETACION DE CULTIVOS

a) Métodos de aislamiento.

b) Morfología colonial e interpretación de desarrollo microbiano.

Objetivo:

Al término de la práctica los alumnos describirán: Las diferentes técnicas de aislamiento y la

interpretación de la morfología colonial para la identificación de los microorganismos.

Actividades:





5. Discusión.


Guía de estudio:

1. Mediante esquemas describa usted los diferentes métodos de siembra o aislamiento de

bacterias.

2. Enuncie usted los parámetros a evaluar en la morfología y desarrollo bacteriano:

a) En medios líquidos

b) En medios sólidos

3. Describa los diferentes cambios que presentan los medios de cultivo como resultado del

desarrollo y metabolismo bacteriano.

Bibliografía


Panamericana 2001.







34

Práctica____7__ Fecha____________

DESTRUCCIÓN E INHIBICIÓN DE MICROORGANISMOS

a) Asepsia y antisepsia

b) Desinfección

c) Esterilización

Objetivo:

Al término de la práctica los alumnos describirán los diferentes métodos de de inhibición y

destrucción de microorganismos.

Actividades:





5. Discusión.


Guía de estudio:

1. Defina usted los siguientes conceptos: asepsia, antisepsia, desinfección y esterilización.

2. Describa las características y condiciones de los diferentes métodos de esterilización.

Bibliografía


Panamericana 2001.







35

Práctica____8__ Fecha____________

PRUEBA DE SENSIBILIDAD A LOS ANTIMICROBIANOS: ANTIBIOGRAMA (AB)

Objetivo:

Al término de la práctica los alumnos describirán las diferentes técnicas para la prueba de

sensibilidad a los antimicrobianos in vitro.

Actividades:





5. Discusión.


Guía de estudio:

1. Describa la metodología a seguir para la prueba de sensibilidad de los microrganismos a

los antimicrobianos.

2. Plantee los criterios de interpretación de antibiograma

Bibliografía


Panamericana 2001.







36

Práctica____9__ Fecha____________

PRUEBAS BIOQUÍMICAS PARA IDENTIFICACION BACTERIANA

Objetivo:

Describir el fundamento, Interpretación y aplicación de las principales pruebas bioquímicas que se

utilizan para la identificación de los microorganismos patógenos, en cada uno de los sitios de

infección.

Actividades:





5. Discusión.


Guía de estudio:

1-Defina usted en que consisten las pruebas bioquímicas.

2-Describa usted las siguientes pruebas bioquímicas:

Pruebas rápidas Pruebas en tubo

Bacitracina LIA

Solubilidad en bilis MIO

Optoquina TSI

Catalasa UREA

Oxidasa CITRATO

Coagulasa CALDO DE ROJO FENOL

3-Describa usted el fundamento, procedimiento e interpretación en cada caso.

4-Que importancia y aplicación representan estas determinaciones.




37

Práctica ____10__ Fecha_____________

OBTENCIÓN RECOLECCION DEMUESTRAS EN BACTERIOLOGIA

Objetivo:

A) Establecer la importancia y utilidad del laboratorio de diagnostico microbiológico

en la identificación de agentes infecciosos.

B) Señalar las condiciones para la adecuada toma y conservación de los diferentes

productos biológicos.

Actividades:





5. Discusión.


Guía de Estudio:

1-Mencione usted la importancia de la microbiología medica y su aplicación al

diagnóstico clínico.

2-Describa usted los conceptos básicos que se deben considerar, para la correcta

recolección de muestras de diagnostico bacteriológicos.

3-Mediante un cuadro especifique, sitios de infección, tipo de muestra a obtener y

especies patógenas posibles a encontrar.

4-Mediante esquemas, describa los principales sitios anatómicos y la metodología a seguir para

la recolección de muestras.




38

Práctica ____11__ Fecha_____________

Diagnóstico de Infecciones Respiratorias Agudas (IRAS-1)

EXUDADO FARINGEO, NASAL, SECRECIONES OTICAS Y OFTALMICAS

a) Recolección de muestra

b) Identificación del agente etiológico: Pruebas bioquímicas

c) Interpretación de resultadodos

d) Antibiograma

Objetivo:

Identificar a través de un cultivo la presencia de microorganismos de importancia médica

causantes de procesos infecciosos en vías respiratorias altas y determinar su sensibilidad a

antibióticos de amplio espectro.

Actividades:

1 Revisión bibliográfica individual y en equipo

2 Discusión grupal dirigida

3 Desarrollo de la práctica

4 Comentarios y conclusiones

5 Elaboración de reporte

Guía de Estudio:

1. Describa usted las indicaciones necesarias al paciente para la identificación

microbiológica de procesos infecciosos en vías respiratorias.

2. Enliste usted los microorganismos que se consideran como flora normal de vías

respiratorias.

3. Enliste usted los principales patógenos de vías respiratorias que representan un problema

de salud.

4. Mediante un esquema describa usted la metodología a seguir en el laboratorio para la

identificación del agente etiológico en procesos infecciosos de vías respiratorias.

5. Enuncie que es un antibiograma, como se realiza y su importancia en microbiología

diagnóstica.




39

Práctica:_____12______ Fecha:__________

Diagnóstico de Infecciones Respiratorias Agudas (IRAS-2)

DIAGNOSTICO DE LABORATORIO DE MICROBACTERIUM TUBERCULOSIS

Tinción de Ziehl y Neelsen

Objetivos:

Analizar, discutir la importancia y aplicación de la técnica de coloración de Ziehl-Neelsen en el

diagnostico de infecciones de vías respiratorias.

Actividades:


2. Exposición de tema.

3. Dinámica grupal.



6. Integración de resultados.

Guía de estudio:

1. Defina usted el concepto de tuberculosis, características principales del agente etiológico,

de tipos de tuberculosis que se conocen y sus alternativas de diagnostico.

2. Bajo que circunstancias indicaría un estudio bacteriológico para el di8agnostico de

tuberculosis.

3. Describa usted el fundamento de la tinción de Ziehl-Neelsen

4. Que indicaciones se deben dar al paciente para la toma de muestra en la determinación de

BAAR.

5. Resuma usted el esquema de tratamiento.

6. Enuncie usted el esquema de tratamiento.

7. Analice y comente la norma para el diagnostico, manejo y control de TB, NOM-006-

SSA2-1993 para la prevención y control de la tuberculosis.

Bibliografía:

Koneman Allen Dowell Sommers. Diagnostico Microbiológico, texto y atlas color.

México Panamericana; 1989.

G. Prats. Microbiología Clínica. Buenos Aires; Madrid Panamericana; 2005.

Manual de técnicas básicas para un laboratorio de salud, numero 2. Organización

panamericana de la salud. Publicación científica No. 439; 1983




40

Práctica____13___ Fecha_____________

DIANÓSTICO DE ENFERMEDADES GASTROINTESTINALES Y ENFERMEDADES

DIARREICAS AGUDAS

(EDAS-I)

A) Citología de moco fecal (CMF).

B) Búsqueda de amiba en fresco (BAF).

C) Determinación de azucares reductores en materia fecal.

Objetivo:

Describir los principales microorganismos causantes de infección en vías gastrointestinales y

alternativas de diagnóstico.

Actividades:

1 Revisión bibliográfica individual y por equipo.

2 Exposición de conceptos.

3 Discusión grupal dirigida.

4 Desarrollo de práctica.

5 Comentarios y conclusiones.

6 Elaboración de reporte.

Guía de Estudio:

1. Enliste usted los principales agentes etiológicos de EDAS (bacterias, parásitos y virus),

sus características principales y alternativas de diagnóstico en el laboratorio.

2. Describa en que consiste la citología de moco fecal, su interpretación e importancia

diagnóstica.

3. Enuncie el procedimiento para la búsqueda de amiba en fresco y describa su valor

diagnóstico.

4. Determinación de azucares reductores: fundamento, procedimiento e importancia

diagnóstica.




41

Práctica____14___ Fecha__________

DIANÓSTICO DE ENFERMEDADES DIARREICAS AGUDAS

(EDAS-2) COPROCULTIVO

Objetivo:

Describir los principales microorganismos causantes de infección en vías gastrointestinales y la

metodología a seguir para su diagnóstico.

Actividades:


2 Exposición de tema


4 Desarrollo de práctica



Guía de Estudio:

1. Enliste usted las bacterias de importancia médica en procesos de enfermedades diarreicas

(EDAS).

2. En que consiste un Coprocultivo y las condiciones para recolección y transporte de la

muestra.

3. Mediante un esquema describa la metodología que se sigue en el laboratorio para la

identificación de entero bacterias en muestras de materia fecal.




42

Práctica____15___ Fecha_____________

DIANÓSTICO DE ENFERMEDADES DIARREICAS AGUDAS

(EDAS-3)

DETERMINACIÓN DE ROTAVIRUS

Objetivo:

Describir las principales características morfológicas, clínicas y de diagnóstico de rotavirus

causantes de infecciones gastrointestinales.

Actividades:


2 Exposición de tema




Guía de Estudio:

1. Enuncie usted las principales características Estructurales y epidemiológicas de

Rotavirus.

2. Describa el mecanismo fisiopatogénico de Rotavirus.

3. Describa alternativas de diagnóstico diferencial y de laboratorio para la identificación de

rotavirus en materia fecal.

4. Analice la metodología a seguir para la determinación de antígenos de rotavirus en heces.




43

Práctica__16____ Fecha__________

DIAGNOSTICO DE INFECCIONES DE VIAS URIARIAS (IVUS):

UROCULTIVO (UC)

a) Identificación del agente etiológico (PBQ)

b) Interpretación de resultados y antibiograma

Objetivos:

Al término de la práctica los alumnos señalarán los criterios para establecer los valores

diagnósticos y los principales agentes etiológicos en procesos infecciosos de vías urinarias.

Actividades:






Guía de Estudio:

1 Defina usted que es un urocultivo, cuales son los criterios de diagnóstico de procesos

infecciosos en vías urinarias.

2 Describa usted los factores predisponentes para infecciones de vías urinarias (IVUS).

3 Enliste usted los principales agentes causales de IVU.

4 Describa las indicaciones al paciente para la recolección de muestras para un urocultivo.

5 Mediante un esquema describa la metodología a seguir en el laboratorio para el

urocultivo e identificación de microorganismos de importancia médica en estos procesos.

Bibliografía

1. Koneman WE y cols, Diagnóstico Microbiológico, México, Ed. Médica Panamericana

2001.





Panamericana,





44

Práctica___17 Fecha__________

INFECCIONES DE TRANSMISIÓN SEXUAL (ITS)

EXUDADO, CULTIVO DE SECRECIÓN VAGINAL Y URETRAL

Objetivos:

Al término de la práctica los alumnos describirán la importancia del cultivo de secreción vaginal

y uretral e identificarán los principales microorganismos causantes de infección así como las

pruebas diagnósticas de los agentes relacionados con las ITS.

Actividades:






Guía de Estudio:

1 Defina usted en que consiste en exudado vaginal, uretral y cuales son los criterios de

diagnóstico de procesos infecciosos en cada caso.

2 Describa usted los factores predisponentes para infecciones de vías urinarias (ITS).

3 Enliste usted los principales agentes causales de ITS.

4 Describa las condiciones para la recolección de muestras para un exudado vaginal y

uretral.

5 Mediante un esquema describa la metodología a seguir en el laboratorio para la

recolección de la muestra y cultivo en la identificación de microorganismos de

importancia médica en estos procesos.

6 Cual es el valor diagnóstico de la tinción de Gram y la observación en fresco en una

secreción vaginal.

7 Realice un cuadro que describa el Dx y TX de las ITS.

Bibliografía


2001.





Panamericana,





45

Práctica____18___ Fecha_____________

DETERMINACIÓN SEROLÓGICA DE VDRL

Objetivo:

Al término de la práctica los alumnos señalarán la importancia del diagnóstico de sífilis

primaria, secundaria y terciaria a través de reacciones de floculación, su interpretación y

confirmación.

Actividades:

1. Revisión bibliográfica individual y en equipo

2. Discusión grupal dirigida

3. Desarrollo de la práctica

4. Comentarios y conclusiones

5. Elaboración de reporte

Guía de Estudio:

1. Defina usted que es la sífilis, su agente etiológico y su mecanismo de transmisión.

2. Que significan las siglas VDRL y en que casos se determina.

3. Enliste usted y describa las alternativas de diagnóstico de sífilis. (No treponémicas y

treponémicas)

4. Describa las condiciones del paciente para la recolección de la muestra.

5. enliste las posibles interferencias en la determinación.

Bibliografía


2001.





Panamerica.





46

Práctica____19___ Fecha_____________

VIRUS DEL PAPILOMA HUMANO (HVP) Y CNCER CERVICO-UTERINO

Objetivo:

Al término de la práctica los alumnos describirán las características morfológicas,

fisiopatogénicas y oncogénicas del virus del papiloma humano.

Actividades:





Guía de Estudio:

5. Describa las características morfológicas y fisiopatogénicas del virus del papiloma

humano.

6. Defina usted la epidemiología y los antecedentes oncogénicos de HVP.

7. Cuál es la relación de HVP y cáncer cervico-uterino.

8. Enliste usted y describa las alternativas de diagnóstico de HVP.

9. Describa las condiciones del paciente para la recolección de la muestra.

Bibliografía




12. Jawest, Melnick y Adelberg 2011. Microbiologia Medica. Mc Grau Hill.





47

Práctica ___20 Fecha_____________

VIRUS DE LA INMUNODEFICIENCIA HUMANA (VIH) Y SIDA

MÉTODOS Y ESTRATEGIAS DE DX Y CONTROL.

Objetivo:

Al término de la práctica los alumnos señalarán alternativas de diagnóstico y control serológico

de pacientes seropositivos.

Actividades:






Guía de Estudio:

1. Describa usted las características morfológicas y patológicas de HIV.

2. Explique las características clínicas y el comportamiento de la respuesta inmune durante

las fases de la infección.

3. Enliste y describa las alternativas de diagnóstico, control, ventajas y desventajas.

4. Antecedentes epidemiológicos a nivel internacional, nacional y estatal de SIDA.

5. Actualmente cual es el manejo y control ideal para el paciente seropositivo y con SIDA.

Bibliografía


Panamericana 2001.





Panamericana,





48

Práctica __21___ Fecha_____________

DIAGNÓSTICO DE INFECCIONES SISTEMICAS

CLASIFICACION DE HEPATITIS VIRAL

Objetivo:

Describir la clasificación actual de Hepatitis viral y la importancia de los principales marcadores

serológicos y su diagnóstico.

Actividades:






Guía de Estudio:

1. Defina usted el concepto de Hepatitis y su clasificación actual: mecanismo de

transmisión y alternativas de Dx.

2. Mediante un esquema ilustre las características morfológicas de los principales agentes

etiológicos de hepatitis viral.

3. Mediante un cuadro enliste usted y describa los principales marcadores serológicos y su

comportamiento.

4. Describa las alternativas de Dx.

5. Antecedentes epidemiológicos a nivel internacional, nacional y estatal de SIDA.

Bibliografía


Panamericana 2001.

2. Prats Guillem, Microbiología Clínica, Madrid España, Médica Panamericana

2005.

3. Davidson I, Bernard HJ, Diagnóstico Clínico por el Laboratorio, Barcelona

España, Salvat Editores 2000.


Panamericana,





49

Práctia ____22_________ Fecha__________

DETERMINACIÒN DE REACCIONES FEBRILES (RF)

Objetivo:

Determinar y cuantificar la presencia de anticuerpos en procesos infecciosos mediante pruebas

de aglutinación.

Actividades:






Guía de Estudio:

1. Defina usted etiología y características clínicas de fiebre tifoidea y brucelosis.

2. Defina usted que son las reacciones febriles.

3. Enliste usted que antígenos se determinan en las reacciones febriles.

4. Describa que enfermedades se pueden diagnosticar mediante la determinación de

reacciones febriles.

5. Mencione usted antecedentes epidemiológicos de procesos infecciosos como fiebre

tifoidea y brucelosis.

6. Resuma usted las normas oficiales para el manejo y control de Brucelosis.

Bibliografía


Panamericana 2001.





Panamericana,





50

Práctica _23_ __ Fecha_____________

HEMOCULTIVO (HC) Y CULTIVO DE (LCR)

Objetivo:

Determinar la importancia clínica y el valor diagnóstico de Hemocultivo y cultivo de LCR en

septicemias y meningitis.

Actividades:



3 Desarrollo de la práctica



Guía de Estudio:

1 Defina usted los términos de bacteriemia, septicemia y meningitis.

2 Describa usted el mecanismo fisiológico de la fiebre causado por pirógenos (agentes que

elevan la temperatura corporal).

3 Enliste usted los microorganismos de importancia médica en los procesos antes

mencionados.

4 Mediante un esquema describa la metodología a seguir en laboratorio para la

Toma de muestra para hemocultivo y cultivo de LCR.

5 De acuerdo a los microorganismos de importancia médica en procesos de septicemia que

medios de cultivo se recomiendan para su identificación en el laboratorio.




51

Práctica ___24__ Fecha_____________

ENCEFALITIS RÁBICA Y ESQUEMA DE VACUNACIÓN

Objetivo:

Describir panorama epidemiológico nacional y estatal de rabia canina, esquema de vacunación

y NOM para el manejo y control de pacientes con exposición.

Actividades:

1. Revisión bibliográfica individual

2. Asistencia a conferencia


Guía de Estudio:

1. Defina las características morfológicas del virus de rabia.

2. Describa el panorama epidemiológico de rabia.

3. Mencione los principales métodos de inmunización que se aplican en la actualidad

en pacientes con exposición a rabia canina.

4. Presentar artículo y reporte de lectura de una investigación reciente referente al tema.

5. Recuperar e imprimir la NOM para el manejo y control de pacientes con exposición a

rabia canina.

Bibliografía


Panamericana,





52

Práctica: 25 Fecha_____________

PARASITOLOGÍA

INTRODUCCIÒN AL LABORATORIO DE PARASITOLOGIA

a) Generalidades de parasitología

b) Obtención, manejo y conservación de muestras

c) Clasificación de métodos de DX.

Objetivos:

a) Analizar y describir los procedimientos frecuentemente usados en el Dx de parasitosis.

b) Preparar soluciones para la conservación de materia fecal.

c) Realizar examen coproparasitoscópico directo en fresco y por concentración

Actividades:


2. Discusión dirigida

3. Realización de práctica



Guía de Estudio:

1. De manera breve describa los criterios de clasificación de parásitos de importancia

médica.

2. Enliste usted que tipo de productos biológicos se utilizan para el Dx de parasitosis.

3. En cada una de las muestras indique condiciones de recolección, manejo y conservación.

4. Mencione que tipo de conservadores se utilizan en la conservación de materia fecal.

5. Describa usted en que consisten los exámenes parasitoscópicos y coproparasitoscópicos.

Bibliografía mínima


Panamericana,

2. Flisser A, Peres TR, Aprendizaje de la Parasitología Basado en problemas

Microbiología, Editores de Textos Mexicanos, México 2006.





53


PROTOZOARIOS: IMPORTANCIA MÉDICA Y ALTERNATIVAS DE

DIAGNOSTICO

A) MORFOLOGIA ELEMENTAL Y DX DE PROTOZOARIOS INTESTINAES

a) Entamoebosis

b) Giardiosis

c) Balantidiosis

d) Parásitos emergentes: Blastocistis hominis

Criptosporidium y Ciclospora.

Objetivo:

Analizar, enlistar y realizar exámenes de laboratorio útiles para el Dx de los principales

protozoarios intestinales e identificar microscópicamente determinados estadios.

Actividades:



3. Realización de practica



Guía de Estudio:

1. Describa las principales características morfológicas y ciclo vital de cada una de las

parasitosis indicadas.

2. Enuncie los diferentes métodos cualitativos de flotación y sedimentación para el Dx

de parásitos intestinales, aplicación ventajas y desventajas.

3. Enliste el tipo de examen de elección en cada una de las parasitosis y elabore un

cuadro describiendo género, especie, hábitat, tipo de muestra y método de

diagnóstico, características morfológicas de cada parásito.



Panamericana,







54


IMPORTANCIA Y DIAGNÓSTICO DE AMIBAS DE VIDA LIBRE

Objetivo:

Describir las características morfológicas y fisiopatogénicas de las amibas de vida libre y

discutir la importancia del diagnóstico en los seres humanos.

Actividades:






Guía de Estudio:

1. Describa las principales características morfológicas y ciclo vital de las amibas de

vida libre.

2. Enuncie los diferentes métodos para el Dx de estas amibas.

3. Describa las características epidemiológicas de las amibas de vida libre.



Panamericana,







55


ALTERNATIVAS DE DIAGNOSTICO DE PROTOZOARIOS EXTRA-

INTESTINALES (Ptz2)

a) Trichomona vaginalis

b) Leishmania

c) Tripanosoma

d) Plasmodium

e) Toxoplasma

Objetivo:

Analizar y describir las diferentes muestras que se utilizan para el Dx de protozoarios

extraintestinales

Actividades:






Guía de Estudio:

1. Enliste y describa en que tipo de productos biológicos se realiza Dx de parasitosis

extraintestinales.

2. En cada una de las muestras indique condiciones de recolección, manejo y

conservación.

3. Elabore un cuadro sinóptico describiendo genero, especie de parásitos

extraintestinales, hábitat tipo de muestra, método de diagnóstico y morfología de

cada parasito.



Panamericana,



3. Schaechter, Guerra. Microbiología Mecanismo de las enfermedades infecciosas

Editorial Panamericana, España 1994.





56


ALTERNATIVAS PARA EL DIAGNÓSTICO DE HELMINTOS

a) Platelmintos: Cestodos y Trematodos

Objetivo:

Describir los diferentes métodos de mayor importancia para el diagnóstico de platelmintos,

ventajas y desventajas.

Actividades:






Guía de Estudio:

1. De manera breve describa los criterios de clasificación de helmintos de importancia

médica.

2. Mediante un esquema, describa la morfología y ciclo vital de los principales

platelmintos de importancia médica.

3. Describa el mecanismo fisiopatógenico de cisticercosis y teniasis.

4. Enliste usted las alternativas de DX de laboratorio y de gabinete en cada caso.



Panamericana,









57


ALTERNATIVAS PARA EL DIAGNÓSTICO DE HELMINTOS

b) Nematelmintos: Ovíparos y vivíparos

Objetivo:

Describir los diferentes métodos de mayor importancia para el diagnóstico de nematelmintos,

ventajas y desventajas.

Actividades:






Guía de Estudio:

6. Mediante un esquema, describa la morfología y ciclo vital de los principales

nematelmintos de importancia médica.

7. Describa el mecanismo fisiopatógenico de los gusanos redondos.

8. Enliste usted las alternativas de DX de laboratorio y de gabinete en cada caso.



Panamericana,









58


C) COPROPARASITOSCÓPICOS (CPS) POR CONCENTRACIÓN

Métodos de flotación

a) Método de Faust

b) Método de Willis

Objetivo:

Describir la utilidad, limitaciones, el procedimiento a seguir en los métodos coproparasitoscópicos

de flotación y su aplicación para el diagnostico de parasitosis.

Actividades:



3. Realización de la práctica


5. Elaboración del reporte

Guía de estudio:

6. De manera breve describa los principales antecedentes, utilidad y limitaciones de cada uno

de los métodos.

7. Enliste usted los reactivos y materiales a utilizar por cada método

8. Mediante esquemas y/o diagrama describa usted el procesamiento a seguir en cada método


1. Organización Panamericana de la Salud

Manual de técnicas básicas para un laboratorio de salud.

2. Diagnostico para el laboratorio

3. Tay J., y cols Parasitología Medica 9ª Ed Méndez Editores. México DF





59

Práctica: 32 Fecha: ____________

COPROPARASITOSCÓPICOS POR CONCENTRACIÓN

Métodos de sedimentación

a) Método de Ritchie

b) Sedimento en copas

Objetivo:


de sedimentación y su aplicación para el diagnostico de parasitosis.

Actividades:






Guía de estudio:


de los métodos.












60

Práctica: 33 Fecha: ____________

COPROPARASITOSCÓPICOS CUANTITATIVOS

a) Método de Kato-kats

b) Método de Stoll

Objetivo:


cuantitativos y su aplicación para el diagnostico de parasitosis.

Actividades:






Guía de estudio:


de los métodos.












61


Coproparasitoscópicos especiales

a) Método de Baerman

b) Método de tamizado

c) Metodo de Graham

Objetivo:


especiales y su aplicación para el diagnostico de parasitosis.

Actividades:





Guía de estudio:


de los métodos.




4. Organización Panamericana de la Salud, Manual de técnicas básicas para un laboratorio de

salud.







62


MUESTRAS PARA EL DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO EN MICOLOGIA

MÉDICA

Objetivos:

a) Identificar la morfología macroscópica y microscópica de algunos hongos.

b) Describir la clasificación clínica de las micosis.

c) Analizar y describir los procedimientos frecuentemente usados en el Dx de

parasitosis.

Actividades:


2. Exposición de tema y discusión dirigida




Guía de Estudio:

1) Mediante un cuadro sinóptico describa la clasificación clínica de las micosis y los

mecanismos de infección.

2) Describa usted mediante un esquema las principales estructuras que presentan los hongos,

identificando las siguientes elementos:

Tipo de micelo.

Conidos.

Microconidos y macroconidios.

Levaduras.

Hifas.

Esporas.

3) Enuncie los principios básicos para la toma de muestras en micología médica.

4) Describa los procedimientos y materiales que se utilizan para diagnóstico de las micosis.

5) Describa las recomendaciones para el envío de muestras para el diagnóstico de micosis.


1. Bonifaz A. 2002. Micología Médica Básica. 2da. Edición Méndez Editores.

2. López LM. y cols. 1995. Micología Médica Procedimientos para el

Diagnóstico de Laboratorio. Ed. Trillas. México DF.





63

Práctica: ____36____ Fecha: _____________

DIAGNÓSTICO DE MICOSIS TEGUMENTARIAS O SUPERFICIALES

A) DERMATOFITOSIS

B) PITIRIASIS VERSICOLOR

C) TIÑAS, PIEDRAS

D) OTOMICOSIS

Objetivo:

Al término de la práctica el alumno identificará la morfología microscópica, macroscópica y

clínica de los dermatofitos.

Actividades:

1) Revisión bibliográfica individual y por equipo.

2) Exposición de tema y discusión dirigida.

3) Desarrollo de la práctica.

4) Revisión de casos clínicos.

5) Comentarios y conclusiones.

6) Elaboración de reporte.

Guía de estudio:

1) Enliste usted los dermatofitos mas frecuentes en México.

2) Mediante esquemas ilustre usted la morfología microscópica y microscópica de los

dermatofitos.

3) Describa las principales alternativas de diagnostico y tratamiento de las micosis

superficiales.


1. BONIFAZ A. 2002. Micología Médica Básica. 2da. Edición Méndez Editores.

2. LÓPEZ LM. y cols. 1995. Micología Médica Procedimientos para el






64

Práctica: ___37_____ Fecha: _________

DIAGNÓSTICO DE MICOSIS INICIALMENTE TEGUMENTARIAS, SUBCUTÁNEAS

A) ESPOROCITOSIS

B) CROMOBLASTOMICOSIS

C) MICETOMA

Objetivo:

Al término de la práctica los alumnos:

Describirán las características microscópicas y macroscópicas de los agentes

etiológicos de estas micosis

Describirán las características clínicas y alternativas de diagnostico en cada caso.

Actividades:

1. Revisión bibliográfica.

2. Exposición de tema y discusión dirigida.


4. Revisión de casos clínicos.



Guía de estudio:

1) enliste usted las principales micosis subcutáneas en México.

2) Con la información anterior elabore un cuadro incluyendo las siguiente información:

agente causal, enfermedad que produce, muestras biológicas útiles para el diagnostico,

características clínicas y de tratamiento.

3) Mediante un esquema ilustre usted la morfología macroscopica y microscópica en cada

caso.









65

Práctica: __38_ Fecha: _______

DIAGNÓSTICODE MICOSIS SISTEMICAS

A) HISTOPLASMASIS

B) COCCIDIOIDOMICOSIS

C) BLASTOMICOSIS

Objetivo:

Describir las características macro, microscópicas y clínicas del paciente con micosis sistémica y

del agente etiológico y su DX y TX.

Actividades:







Guía de estudio:

1. Ilustre la morfología macroscopica y microscópica de los gentes etiológicos

2. Mediante un esquema describa usted las características clínicas de las lesiones en este tipo

de micosis.

3. Enliste usted las alternativas de diagnostico de DX y TX.




3. Diagnóstico de Laboratorio. Ed. Trillas. México DF.





66

Práctica: _39_______ Fecha: _______

DIAGNÓSTICO DE MICOSIS OPORTUNISTAS

A) Candidosis

B) Criptococosis

C) Aspergilosis

D) Ficomicosis

Objetivo:

Identificar la morfología macroscópica y microscópica de hongos oportunistas y su importancia

medica.

Actividades:



3. Desarrollo de prácticas.




Guía de estudio:

1. Describa usted las principales características de estos hongos.

2. Describa las características de las lesiones de las micosis.

3. Enliste las alternativas de diagnostico y tratamiento.









67


OBSERVACIÓN DE ALGUNOS ARTRÓPODOS Y SU PATOGENESIS

a) Características generales de artrópodos

b) Aspectos clínicos y diagnóstico

Objetivo:

Identificar las características fundamentales de los artrópodos de mayor importancia médica

Actividades:






Guía de Estudio:

6. Describa las principales características morfológicas de los artrópodos.

7. De manera breve describa los criterios de clasificación de artrópodos de importancia

médica (clase, orden, nombre común y algunos ejemplos).

8. Describa usted la distribución geográfica, diagnosis y ciclo vital (Bionomía) de los

principales artrópodos

9. Describa usted la importancia de los artrópodos como problema de salud pública en

el futuro.







4. Basualdo JA, Microbiología Biomédica. Editorial Atlante 1996.





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GENERALIDADES Y PATOGENESIS PRODUCIDAS POR SERPIENTES

Objetivo:

Al término de la práctica los alumnos describirán las características morfológicas de las

serpientes y la patogénesis de mayor importancia médica

Actividades:





Guía de Estudio:

5. Describa las principales características morfológicas de los artrópodos.

6. De manera breve describa los criterios de clasificación de artrópodos de importancia

médica (clase, orden, nombre común y algunos ejemplos).

7. Describa usted la distribución geográfica, diagnosis y ciclo vital (Bionomía) de los

principales artrópodos

8. Describa usted la importancia de los artrópodos como problema de salud pública en

el futuro.







4. Basualdo JA, Microbiología Biomédica. Editorial Atlante 1996.


MANUA MCBP-12-13-15-01-13

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