MANUAL DE MÉTODOS DE COLECTA, MANUAL DE MÉTODOS DE COLECTA, PRESERVACIÓN Y CONSERVACIÓN PRESERVACIÓN Y CONSERVACIÓN

DE INSECTOSDE INSECTOS

Benigno Gómez y GómezRobert W. Jones

BENIGNO GÓMEZ Y GÓMEZColección de insectos asociados a plantas

cultivadas en la frontera surEL COLEGIO DE LA FRONTERA SUR

Unidad Tapachula

ROBERT W. JONESLicenciatura en Biología

Facultad de Ciencias NaturalesUniversidad Autónoma de Querétaro

Tapachula, Chiapas. México. 2002

MANUAL DE MÉTODOS DE COLECTA, MANUAL DE MÉTODOS DE COLECTA, PRESERVACIÓN Y CONSERVACIÓN PRESERVACIÓN Y CONSERVACIÓN

DE INSECTOSDE INSECTOS

Introducción i

La Colecta Entomológica 1

Métodos Directos 1

Red entomológica 1

Red para mariposas 2

Red de golpeo 2

Manta de golpeo o paraguas entomológico 3

Red acuática 4

Aspirador 4

Métodos Indirectos 5

Cebos 6

Cebos animales 6

Cebos vegetales 7

La luz y los colores 7

Trampas 8

Trampa Malaise 8

Trampa de barrera o ventana 10

Caja de Shannon 10

Trampa Pit fall 11

Trampa de agua 11

Trampa de emergencia 12

Trampa de luz 14

Trampa tipo Charaxes 16

Necrotrampas 16

ContenidoContenido

Colecta en Ambientes Particulares 18

Embudo de Berlese 18

Colecta en hojarasca 19

Cámara de tallos vegetales huecos 19

Ramas podridas 19

Cuevas 19

Nidos y madrigueras 20

Técnicas de preservación 21

Cámara letal 21

Alcohol al 70-95% 23

Líquido de Pampel 23

Bouin alcohólico 23

Líquido de Dietrich 23

Solución KAAD 24

Solución XA 24

Líquido de Khale 24

Agua caliente 24

Técnica para preservación de lepidópteros 25

Transporte de los insectos colectados 26

Montaje y Conservación 27

Conservación en seco 27

cámara húmeda 27

Empalamiento o montaje con alfileres entomológicos 27

Bloque de montaje 29

Extendedor o restirador de mariposas 30

Doble montaje o montaje con triángulo 30

Montaje con minucias 30

Conservación en líquido 31

Conservación en preparaciones permanentes 31

Rotulación (etiquetado) 32

Almacenaje 32

Cría y Manutención 34

Referencias Bibliográficas 35

IntroducciónIntroducción

i

El presente manual, esta diseñado para llevar al lector desde la captura de un

insecto hasta como conservarlo en una colección entomológica. Para tal motivo, el

documento esta divido en cinco grandes secciones: 1) La colecta entomológica; 2)

Técnicas de preservación; 3) Transporte del material colectado; 4) Montaje y

conservación; 5) Cría y manutención.

La primer sección, relativa a los métodos de captura, esta divido en los métodos

directos e indirectos que existen. La parte relativa a los métodos directos, nos

introduce a los medios, herramientas y utensilios frecuentemente utilizados. El

apartado de métodos indirectos, da cuenta de los cebos y trampas comúnmente

empleados en la captura de insectos. Por último dentro de esta sección se comenta

sobre la colecta en ambientes especiales.

La segunda sección, ofrece una variedad de técnicas de preservación, desde

aquellas que se utilizan para el sacrificio de ejemplares hasta los fijadores más

utilizados. La tercera, es una pequeña sección en que se detalla como transportar de

la mejor manera los insectos colectados en el campo.

La cuarta sección, se refiere a los métodos de montaje y conservación de

insectos. En ella se documentan tres formas de conservación de insectos: en seco,

líquido y preparaciones permanentes. Se comenta sobre el etiquetado de las

muestras y como almacenarlas en una colección entomológica. Por ultimo, la quinta

sección es una pequeña referencia acerca de cómo criar y/o mantener insectos vivos.

Esperamos que este manual sea de utilidad para las personas interesadas en la

Entomología, haciendo que sus colectas sean de provecho científico.

Benigno Gómez

Los insectos pueden encontrarse en las más variadas situaciones, por lo que el

colector debe investigar siempre todos los ambientes posibles, tanto terrestres como

acuáticos. En la colecta entomológica, se va caminando y recogiendo los insectos que

se ven, estos se pueden tomar con las manos, pinzas, así como directamente con una

cámara letal o con un frasco con alcohol. Otra forma de capturar insectos es utilizando

alguno de los instrumentos que a continuación se describen:

Métodos DirectosMétodos Directos

1

Red EntomológicaConsiste en un aro de metal (acero inoxidable, alambre cubierto con plástico o

alambre de aluminio resistente) de forma circular que sostiene una red de tela de

nylon (tul) o marquiset (malla) o manta. El aro metálico con la red se sujetan a un

mango de madera o aluminio. La unión puede hacerse de varias maneras, pero una

forma sencilla es doblar las puntas del alambre en ángulo recto, luego voltearlas

hacia adentro, para posteriormente encajarlas en surcos hechos en la extremidad del

mango y amarrar fuertemente con alambre o sujetarla con abrazadera (Fig. 1).

Otra forma de sujetar el aro al mango, consiste en colocar un cilindro de metal o

trozo de manguera sostenido a la punta del

mango, con un espacio mínimo suficiente

para que se pueda meter o sacar el aro. Este

segundo proceso es más aconsejable, ya que

al hacer desmontable las partes, se facilita el

transporte, el lavado y el cambio de la red.Fig. 1. Red entomológica: A) Aro metálico; B) Red; C) Punta de alambres en ángulo; D) Surcos en la extremidad del mango; E) Unión aro-mango

LA COLECTA ENTOMOLÓGICA

La red de nylon debe tener el fondo redondeado y no terminar en punta, ya que

puede dañar a los insectos, especialmente a los de alas grandes y frágiles. Se

aconseja la tela de nylon, el "tul", manta o cualquier tela blanca translúcida. La red

debe estar sujeta al aro por un refuerzo de tela resistente para evitar el desgaste

causado por el roce continuo. Las costuras deben reforzarse de modo que queden

bastante fuertes.

La profundidad de la red de tela debe ser de 1.5 a 2 veces el diámetro del aro;

una medida aconsejable puede ser entre 30-50 cm. El mango debe medir

aproximadamente 1 m de largo, debe ser ligero y resistente; un buen material puede

ser un tubo de aluminio, pero también es recomendar el bambú.

Red para mariposas

Se construye de la misma forma que la anterior, pero con el aro

semirectángular y las esquinas bien redondeadas. La red de tela siempre debe ser de

nylon, de preferencia verde o azul (verde para zonas con mucha vegetación, azul para

zonas abiertas). El mango debe ser bastante largo, compuesto por varias secciones

ajustables por presión o por roscas, el de una caña de pescar es perfecto. Esta red

también sirve para la captura de libélulas, que en general no permiten que el colector

se acerque mucho.

2

Red de golpeoSe confecciona de la misma forma que las anteriores pero más reforzada y con

tela mas gruesa y resistente (e.g. manta gruesa). Con esta red se golpea fuertemente

la vegetación en sentido horizontal, recogiendo de este modo cierta cantidad de hojas

junto con las cuales vendrán insectos. El contenido de la red se vacía en un frasco

grande de boca ancha o en una bolsa de plástico al que se coloca un trozo de tela o

papel toalla impregnado de acetato de etilo o éter. El colector puede también retirar a

los insectos de la red después de cada acción con ayuda de un aspirador (ver más

adelante) o introduciéndolos directamente a una cámara letal.

Manta de golpeo o paraguas entomológicoEs una herramienta semejante a la anterior, pero en este caso, se utiliza un

trozo cuadrado de tela blanca, de aproximadamente 70 cm por lado. La tela se

sostiene de dos piezas de madera perpendiculares, que se encajan en las esquinas

de la manta (Fig. 2).

3

70 – 100 cm

Si se coloca esta manta o paraguas

bajo un arbusto y se golpean las ramas

fuertemente con una vara adicional, los

insectos caerán sobre la tela de la cual

podrán ser recogidos manualmente, con

pinzas o con el aspiradorFig. 2. Manta de golpeo o paraguas entomológico

Existe un tipo de manta de golpeo que es un “híbrido” entre una red y una manta

de golpeo. Se conoce como manta de golpeo tipo “O´Brien” o “Moisés” y es un tipo de

red de poca profundidad, en material blanco o azul claro, que va sujeto a un pequeño

mango de madera (Fig. 3).

55 cm

42 cm

Como ya se explico, este tipo de

herramientas se deben colocar bajo el

arbusto o estructura de interés y con una

varilla de metal o madera se golpea

fuertemente dicha estructura. Los insectos

caerán sobre la tela y ahí podrán ser

recogidos. Esta manta no es apropiada

para la colecta de insectos con alta

capacidad de vuelo.

Fig. 3. Manta de golpeo tipo “O´Brien” o “Moisés”

De las dos mantas descritas, la manta cuadrada cubre mayor área de colecta,

sin embargo, la manta tipo “O´Brien” o “Moisés”, es una de las mejores técnicas para

insectos, principalmente coleópteros que se sujetan fuertemente al sustrato donde se

encuentran. Cualquiera de las mantas de golpeo son muy útiles en lugares con

vegetación espinosa.

Red acuáticaDe los muchos modelos de redes acuáticas que existen, la que se ejemplifica en

la fig. 4, es de las más sencillas en su confeccionamiento y de las más productivas en

la colecta. La red acuática se construye con un método similar al de la red

entomológica, pero

4

en éste caso, la profundidad de la bolsa

es menor (30-40 cm). La bolsa es de

manta gruesa, pero el fondo de la misma

es de malla mosquitera. Con este sistema

el agua pasa sin contratiempo por la

malla, pero los insectos quedan

atrapados. Fig. 4. Red acuática

Otra característica de esta red, es que el “aro” de donde se sostiene la red es de

forma triangular para con ello tener más área de arrastre en el fondo de los cuerpos

de agua.

AspiradorEs un aparato para recolectar

rápidamente un gran numero de insectos

pequeños (Fig. 5). Este consiste de dos

mangueras y de un frasco colector. Uno

de los dos tubos tiene la extremidad

inferior tapada con un trozo de tela

delgada o malla y la otra se continúa por

un tubo largo de hule por el cual el

colector aspira los insectos que están

frente al frasco. Este utensilio es de gran

apoyo cuando se colecta con el paraguas

entomológico o la red de golpeo.Fig. 5. Aspirador entomológico

Malla mosquitera

Manta gruesa

40 cm

Tubos de cobre o vidrio

Manguera de hule

Tapón de malla fina

Tubo de vidrio o plástico

Tapón de hule o caucho

Manguera de plástico

Los métodos de colecta indirectos se refieren principalmente a aquellos en que se

utiliza algún tipo de trampa para la captura de ejemplares. Las trampas retienen o

impiden la fuga de insectos que entran en contacto con ellas, concentrando en poco

tiempo gran cantidad de ejemplares. Por lo anterior, son indispensables cuando nos

proponemos muestrear algún tipo de hábitat o requerimos de algunos organismos en

particular.

Las trampas son buenas herramientas siempre y cuando se tengan los cuidados

necesarios en su colocación, tratando de evitar que algún percance pueda

deteriorarlas y con ello perderse la colecta.

!!No se debe dejar todo el peso de la colecta en las trampas!!

Aún cuando se tenga el máximo de cuidados, siempre es recomendable hacer

uso combinado de métodos tanto directos como indirectos.

Existen una gran cantidad de trampas para la colecta de insectos. La utilización

de ellas depende de la finalidad de nuestros estudios. Es recomendable conocer

acerca de la biología de los insectos a colectar ya que esto nos proporcionará

elementos útiles para decidir que tipo de trampa y cebo a utilizar. A continuación se

describen, primeramente, los cebos más utilizados en la colecta de insectos y

posteriormente se comentan algunos detalles de la construcción y funcionamiento de

las trampas entomológicas utilizadas con mayor frecuencia.

Métodos IndirectosMétodos Indirectos

5

Cebos Cebos

6

Muchos insectos son atraídos por el aroma de sustancias frescas o en

descomposición, a las que llamaremos cebos. Los cebos son el atrayente que

utilizaremos en muchos casos para que los insectos recurran a las trampas.

Los cebos podemos dividirlos dependiendo de su origen en cebos animales y

vegetales, aunque actualmente es posible adquirir algunos cebos o atrayentes

sintéticos (químicos).

Cebos animalesLos animales vivos atraen a muchos insectos chupadores de sangre o

lamedores de sudor. El ganado (vacuno y equino), así como otros animales

domésticos pueden ser amarrados en el campo o en el interior de una caja de

Shannon (ver trampas) para atraer a simúlidos, mosquitos y otros insectos

hematófagos. El sudor del propio colector atrae a pequeñas moscas, abejas y

avispas. La orina y las heces tanto de animales como humanas también funcionan

como un excelente atrayente de muchos grupos de insectos. Otros cebos de origen

animal que otorgan estupendos resultados son los cadáveres (Fig. 6) y pedazos de

vísceras o carne en proceso de descomposición. Dentro de este tipo de cebos, uno

que otorga muy buenos resultados, si lo que pretendemos es colectar insectos

necrófagos, es la carne de calamar o de pulpo, la cual al descomponerse (muy

rápido) despide un fuerte olor que atrae a una buena cantidad de insectos

necrófagos.

Fig. 6. Cebo animal

Cebos vegetalesDentro de los cebos de origen vegetal tenemos a las frutas "pasadas" o

“podridas”. Todas las frutas jugosas son recomendables, sin embargo se obtienen

excelentes resultados al utilizar plátanos, mangos, guayabas y piñas . Las mezclas de

frutas con levadura de cerveza, así como, la combinación de plátano fermentado con

cerveza obscura, proporcionan también buenos resultados en la colecta.

Diversos aceites esenciales pueden ser utilizados como cebos. Los exudados

vegetales, especialmente los que se encuentran en tallos y troncos de árboles o

palmeras, atraen interesantes insectos principalmente dípteros y coleópteros.

La luz y los coloresUn tercer grupo de cebos fuera de los dos conjuntos mencionados

anteriormente, son aquellos provenientes de la intensidad de la luz. De esta forma

podemos considerar a la luz y los colores como cebos, ya que en su conjunto logran

atraer una gran cantidad de insectos nocturnos, así como algunos diurnos (ver

trampas de luz).

Las mejores capturas nocturnas con luz se hacen generalmente en noches de

novilunio (luna nueva = noches sin luna), principalmente después de la lluvia, cuando

la atmósfera está saturada de humedad.

Relacionado con la luz están los colores, que en ocasiones también pueden

funcionar como atrayentes de varios grupos de homópteros, dípteros e himenópteros.

Los colores amarillo y blanco han sido los más utilizados.

7

Trampas Trampas

8

Generalmente las trampas se utilizan con cebos atractivos al tipo de insectos que

este dirigida nuestra colecta. Existe una gran variedad de trampas, algunas de ellas

muy especificas para ciertos grupos de insectos. A continuación se describen

algunas de las trampas que se utilizan con mayor frecuencia en la colecta de

insectos.

Trampa “Malaise”Se construye con tela mosquitera de poliéster, en forma de una casa con techo

de "dos aguas", sin paredes laterales y con una pared central interna longitudinal,

cuyas dimensiones pueden variar entre 2 y 4 m de altura máxima, 1 a 4 m de

longitud y de 2-3 m de ancho (Fig. 7). Todas las piezas del techo deben confluir

hacia una abertura, ubicada en la parte más alta de la estructura, a la cual se

asegura un recipiente colector formado por un frasco y un embudo truncado interno

invertido, provisto con un preparado de cianuro de potasio o “vapona”, en su defecto,

puede utilizarse alcohol al 80%. El funcionamiento de la trampa “Malaise”, se basa

en la geotaxia negativa de muchos insectos que llegan volando y se posan en las

paredes interiores de la trampa, los cuales normalmente caminan hacia arriba en

superficies verticales o inclinadas, hasta que por la forma del techo son conducidos

hacia el vértice, en donde pasan al bote colector o cámara letal.

El color de la tela, originalmente blanco, puede cambiarse de acuerdo con la

respuesta al color que presenten las especies que nos interese capturar, pudiendo

ser verdes, negras, amarillentas, etc. Este tipo de trampa se recomienda para hacer

un muestreo en terrenos abiertos, cercanos a cursos de agua, en huertas , así como

en claros y/o bordes de bosques o selva.

9Fig. 7. Trampa Malaise: A) Aspecto general; B) Detalle del frasco colector; C) Vista lateral; D) Vista frontalE) Funcionando en campo.

Malla mosquitera

Frasco colector

2-3 m

A B

Tubo plásticoo PVC

Embudo

Bote colector

2-4 m

1-4 m

C D

E

Trampa de barrera o ventanaConsiste en una lámina de plástico translúcido o acrílico de longitud variable (1-3

m), sostenida por postes o cables. También se puede utilizar malla de nylon para

crear la barrera, en este caso, la longitud puede ser mayor. Una vez instalada la

ventana (si es acrílico) o barrera, se coloca en la parte inferior de la misma algunos

recipientes con agua y detergente en los cuales quedarán atrapados los insectos que

se dejan caer al chocar contra la barrera en el curso de su vuelo o salto (Fig. 8). El

detergente es necesario para evitar la tensión superficial y con ello el escape de

ejemplares.

10

Se recomienda instalar esta trampa

en zonas reforestadas o con vegetación

alta, en los corredores naturales o en los

caminos del bosque. De manera general,

se puede colocar en lugares donde sean

escasas las corrientes fuertes de viento.

La revisión de la trampa no debe

sobrepasar las 24 hrs debido a que una

buena cantidad de insectos se

“descomponen” al estar mucho tiempo en

el agua.Fig. 8. Trampa de barrera o ventana: A) Vista frontal; B)

Vista lateral.

Postes

Recipientes con agua y detergente

Lámina de plástico o acrílico

A

B

Caja de ShannonEste tipo de trampa consiste en una caja grande de tela de nylon suspendida por

las cuatro esquinas, quedando la parte inferior (entrada) a medio metro del suelo. Esta

trampa debe estar suspendida por cuerdas cosidas en sus esquinas y amarradas a

árboles o cualquier otro soporte. Los insectos entran espontáneamente o atraídos por

cebos colocados en su interior. Los insectos son colectados directamente con el

aspirador o la cámara letal.

Trampa "Pit-fall"Consiste en un bote de plástico o metal, con perforaciones finas en el fondo para

evitar la acumulación de agua de lluvia, desprovisto de cualquier atrayente, el cual se

entierra hasta que su borde superior quede a nivel del piso (Fig. 9a), en forma tal que

los insectos que se desplazan por el epiedafón tengan una posibilidad al azar de caer

en la trampa durante sus recorridos. Una alternativa es colocar un cebo colgado de

una malla y adicionar al bote una cantidad de etilenglicol (anticongelante para autos) o

en su defecto alcohol al 80%. Si las condiciones ambientales lo requieren, se puede

poner un plato de plástico sostenido por tres alambres firmes al suelo, evitando con

ello la entrada de lluvia (Fig. 9b).

Trampas de aguaConsiste en una charola con agua mezclada con un poco de detergente líquido

(para favorecer el hundimiento de los ejemplares) situada en el piso y a la sombra, en

la cual son atrapados insectos voladores, saltadores o epiedafícolas, que deben ser

retirados antes de que se evapore el agua, por lo regular el colector debe recoger la

muestra de insectos capturados cada 24 horas. Se recomienda utilizar charolas o

recipientes amarillos.

11

Fig. 9. Trampa “pit fall”: A) Trampa sencilla; B) Trampa cebada con protección de lluvia

A BPlato de plástico

Bote

Alambres de sostén

Malla

CeboEtilenglicol

Perforaciones

Trampas de emergencia.

Las trampas de emergencia son aquellas que nos permiten colectar insectos

que se desarrollan en lugares como el interior de los troncos, ramas, frutos, o el suelo.

Con malla de alambre fino puede construirse un cono truncado, cuyo extremo más

amplio se entierra de 10 a 15 cm en el suelo, cubriendo una superficie determinada

por nuestra unidad de muestreo. (Fig. 10a). Los insectos que emerjan quedarán

temporalmente retenidos en el cono, aunque podemos adicionar un frasco colector en

el ápice de la trampa, similar al de la trampa "Malaise".

En los troncos de árboles infestados por insectos barrenadores o

descortezadores ha dado buen resultado el uso de un cono de malla de alambre fino o

de plástico translúcido, cuya base cubre aproximadamente 100 cm2de la corteza en

donde está sujeto, con un pequeño frasco colector en el vértice (Fig. 10b). También

se ha empleado "mangas de polietileno", de dos o más metros de longitud, ajustadas

al tronco del árbol, lo cual obliga a los insectos emergentes a descender hasta una

charola colectora o un frasco con alcohol al 80% ubicado en la parte inferior del

dispositivo.

Encerrando muestras de frutos, semillas, raíces, ramas o tubérculos en cajas

translúcidas (acrílico o vidrio), ventiladas y almacenadas en condiciones apropiadas

de humedad, temperatura y fotoperíodo es posible obtener a los insectos adultos que

se encuentren en un sustrato específico (Fig. 10c). Así mismo este método es muy útil

en la obtención de los parasitoides o depredadores naturales de algunos insectos.

Otra opción, es utilizar maceteros con plantas hospedantes del insecto a ser

estudiado, así como algún material en donde encontremos evidencias de que existe

algún insecto. El macetero es cubierto por un cilindro de plástico que en su parte

superior lleva una tapa de malla mosquitera para evitar la fuga de los insectos

(Fig. 10d).

12

Colecta de InsectosColecta de Insectos

13Fig. 10. Trampas de emergencia: A)En suelo; B) En árboles; C) Caja; D) Macetero

Malla mosquitera

Frasco colector

A B

Embudo de plásticoo lámina Cono de malla

o plástico

Frascocolector

C D

Macetero

Cilindro de plástico

Caja de acrílico

Frascocolector

Trampa de luz Existen una gran diversidad de trampas de luz, sin embargo las podemos

clasificar de manera general en dos tipos: 1) la de tipo pantalla y 2) las de embudo.

La trampa de luz tipo pantalla (Fig. 11a) permite seleccionar a los insectos de

interés entre todos los que se posan en la trampa. Para este tipo usualmente se

monta verticalmente un lienzo blanco, generalmente manta, de aproximadamente 3 X

2 m colgado con cuerdas y con el margen inferior formando una bolsa o en su

defecto, colocando otro trozo de lienzo en el suelo. La lámpara queda en la parte

media superior, frente al margen superior (no encima de ella) y separada de ésta unos

20 cm. Las mejores colectas se realizan utilizando una lámpara eléctrica de vapor de

mercurio (Philips, de 150 w) o lámparas de luz negra del tipo "slim ligth".

El otro tipo de trampa de luz se conoce como de tipo embudo (Fig. 11b). Este

consiste de una estructura metálica que sujeta a la fuente de luz y algunos paneles de

acrílico que a la vez están comunicados en su parte inferior con un embudo por el

cual caen los insectos a un frasco colector que se encuentra en la base del embudo.

Existe también la posibilidad de utilizar como base de la trampa de luz,

una cubeta grande dentro de la cual se incorpora un embudo y sobre este los

paneles y la fuente de luz (Fig. 11c). Por encima de todo se coloca una cubierta

para proteger la trampa de la lluvia.

Un modelo alterno es la trampa tipo “New Jersey”, la cual lleva adaptado un

ventilador que arrastra a los insectos al embudo y a su vez al frasco colector

por medio del flujo de aire que genera (Fig. 11d). Este tipo de trampa no opera

selectivamente, ya que la gran mayoría de organismos atraídos son muertos en el

frasco colector, situado en el fondo del aparato.

14

15Fig. 11. Trampas de luz: A) Tipo pantalla; B) Tipo Embudo; C) Tipo embudo con cubeta de soporte; D) Tipo embudo modelo “New Jersey”

Frasco colector

Lámpara

A B

Lienzo de manta

Bateríao fuente de poder

Cable

C D

Motor

Cubierta

Panel de acrílico

Frascocolector

Tubos de PVCo galvanizados Conectores

Panel de acrílico

Cable

Cubierta de acrílico

Soportes

Embudo

Varillas(tripie)

Lámpara

Ventilador

Corriente de aire

Embudo

Cilindro de metal o plásticoCubeta

Cable

Trampa cilíndrica tipo "Charaxes".Es una trampa muy utilizada para la captura de lepidópteros. Consiste en un

cilindro confeccionado con malla de nylon, el cual tiene un diámetro de 50 cm y una

altura de 80 a 100 cm. En los extremos se colocan dos discos, uno de plástico

(superior) y otro de madera triplay (inferior). Los bordes de la base de este cilindro

deben quedar unidos con el disco inferior por medio de 4 a 6 cordones o alambres, en

tal forma que dejen una abertura periférica de 10 cm. El disco superior debe quedar

bien sujeto del cilindro evitando cualquier fuga.

16

En el interior de la base se sujeta un

plato sopero de plástico que almacenará

entre 700 y 1000 g de un preparado de

plátano macho fermentado con azúcar y

cerveza obscura. En la práctica, los

insectos pueden entrar por la abertura

inferior al ser atraídos por la mezcla

alcohólica azucarada, pero es difícil que

salgan y la mayor parte de ellos se

concentra en el interior del cilindro (Fig.

12).Fig. 12. Trampa para lepidopteros tipo Charaxes

Plato sopero

Bote deplástico

Cilindro de

malla

Alambres

NecrotrampasSon trampas utilizadas para la captura de insectos con hábitos necrófagos.

Existen varios modelos de necrotrampas, todas ellas deben ser cebadas con carne en

descomposición. Como ya se comento en el apartado de “cebos”, los mejores

resultados se obtienen utilizando carne de calamar, pulpo o pescado.

A continuación se detalla la construcción del modelo NTP-80 (Necrotrampa

permanente,Morón y Terrón, 1980).

Esta compuesta por un bote de plástico de 1500 ml de capacidad (15.5 cm de

altura por 13 cm de diámetro) con funciones de recipiente colector, provisto con 700

ml de una mezcla de 95 partes de etanol al 70% y 5 partes de ácido acético glacial, en

donde se preservan los ejemplares atraídos; un embudo de plástico recortado, con 13

cm de diámetro superior y 4 cm de diámetro inferior que tapa parcialmente el bote

antes mencionado disminuyendo la evaporación del alcohol, y que conduce a los

ejemplares al líquido conservador; un plato sopero de plástico con 21 cm de diámetro,

invertido y atornillado sobre tres soportes metálicos sujetos con tornillos a las paredes

del bote (Fig. 13) que funciona como tapa general, evitando la entrada del agua de

lluvia y la hojarasca, dejando un espacio de 3 cm entre su borde y el borde del bote,

este plato además sostiene, mediante dos tornillos, la tapa de un recipiente de

plástico de 6 cm de diámetro, a la cual se enrosca el frasco respectivo de 7 cm de

altura, perforado cerca de su borde superior, y que contiene el cebo de carne de

pescado marino, pulpo o calamar.

17

La trampa NTP-80 se entierra hasta

el borde del bote colector, ocultándola con

algunas piedras grandes o con trozos de

madera. El tamaño, ensamblado y

colocación de la NTP-80 impide o dificulta

que sea saqueada por mamíferos y aves,

como llega a ocurrir con frecuencia en las

necrotrampas convencionales. Otra

diferencia es que la NTP-80 puede

permanecer instalada colectando durante

largos períodos, que comprenden desde

15 días hasta tres o cuatro meses,

dependiendo de los objetivos del estudio.

Fig. 13. Necrotrampa tipo NTP-80 (Morón y Terrón, 1980)

Contenedordel ceboPlato sopero

Bote deplástico

Embudo

Soportes metálico

Etanol 70%Y ác.

Acéticoglacial

Existen algunos ambientes particulares que vale la pena explorar cuando se realiza

una colecta entomológica. Estas colectas se realizan con el objeto de capturar

determinados tipos de insectos que viven en ambientes restringidos o “especiales”.

Para este tipo de colectas es muy utilizado el embudo de Berlese (Fig. 14) y las

trampas de emergencia tipo caja (Fig. 10c). El tipo de ambiente a explorar siempre

dependerá del tipo de organismos que se pretendan colectar.

Colecta en Ambientes ParticularesColecta en Ambientes Particulares

18

Embudo de Berlese

Este aparato consiste de un embudo, una

malla, un frasco colector, una fuente de calor y

una cubierta (Fig. 14). El embudo es construido

de cartón resistente, plástico, o lámina

galvanizada. En la parte superior del embudo

se coloca una malla de tela de alambre y en su

porción terminal inferior un frasco con alcohol

al 80%. Por encima de la malla, se colocan

porciones de hojarasca o del material a revisar,

las cuales son calentadas por una fuente de

calor (el sol o un foco). Por último se puede

colocar una cubierta superior para con ello

agilizar el proceso de secado.

A medida que la hojarasca se va calentando, los insectos tienden a penetrar más

y más profundo, atravesando la malla y cayendo por el embudo hasta el frasco con

alcohol.

Fig. 14. Embudo de Berlese

Hojarasca

Malla

Frascocolector

CubiertaFoco

Embudo

19

Colecta en hojarascaLa capa de hojas y detritos vegetales (Fig. 15a) en diferentes grados de

descomposición, que cubren el suelo, alojan una gran cantidad de insectos,

frecuentemente ápteros que allí buscan abrigo, alimento, humedad y protección contra

la luz. Para capturarlos es necesario colectar hojarasca y tamizarla, después colocarla

en un embudo de Berlesse (Fig. 14). Para fines comparativos se recomienda

siempre realizar la toma de unidades muestrales similares (e.g. 1 m2)

Cámaras de tallos vegetales huecosEl interior de las cámaras del bambú y otras plantas (Fig. 15b), es un buen sitio

para explorar en busca de muchas larvas de dípteros, lepidópteros, adultos de

ortópteros, entre otros. Estas cámaras deben ser revisadas directamente o colocar

una trampa de emergencia (Fig. 10b).

Ramas podridasLas ramitas podridas de 1 cm de diámetro en adelante deben quebrarse y

examinarse con mucha atención (Fig. 15c). En este sustrato se pueden alojar

pequeñas hormigas, que inicialmente se fingen muertas y después comienzan a

moverse muy lentamente. Otros insectos que podemos encontrar son termitas,

socópteros, larvas de coleópteros, etc. Las ramitas se deben colocar dentro de una

caja de emergencia (Fig. 10c).

CuevasLas cavernas, cuevas y pequeñas grutas alojan una fauna de insectos muy

especial (Fig. 15d). En ese ambiente se pueden encontrar cucarachas, grillos,

coleópteros y diversos dípteros. En el caso de que la cueva este habitada por

murciélagos, se deberá buscar la fauna que reside en la capa de heces del suelo

(guano). Dependiendo de la consistencia del sustrato, el guano podrá ser colocado en

el embudo de Berlese.

20

Nidos de aves y madrigueras de mamíferos

En estos ambientes particulares es posible encontrar hormigas, coleópteros,

chinches, pulgas, etc., que se alimentan de las heces de los ocupantes (aves o

mamíferos), los detritos o parásitos. Los nidos (Fig. 15e) deben colocarse en el

interior de una bolsas de tela de plástico; en el laboratorio se pone dentro una bola de

algodón con éter y se guarda en una caja de emergencia (Fig. 10c). Después de un

lapso de tiempo se procede a recoger los insectos. Este procedimiento se facilita si el

nido es colocado sobre una hoja de papel blanco. Así mismo, los nidos se pueden

colocar en un embudo de Berlese (Fig. 14).

Fig. 15. Colecta en ambientes particulares: A) Hojarasca; B) Tallos de bambú; C) Ramas; D) Cuevas; E) Nidos

A B

C D E

21

Una vez colectados, los insectos deben sacrificarse para ser transportados o

preparados. La muerte de un insecto en un medio inadecuado, puede ocasionar un

deterioro en sus características estructurales y de coloración, por lo que las técnicas

de preservación (sacrificio y fijación) tienen el objeto de evitar tales daños. El buen

estado de las características del insecto es muy importante en el proceso taxonómico

que posteriormente se desarrollará para identificar o determinar al insecto capturado.

A continuación se describe primeramente, un utensilio ampliamente usado para

el sacrificio de ejemplares, la cámara letal. Posteriormente se detallan algunos de los

medios de preservación más utilizados. Por último, se comenta sobre técnica

especiales para odonatos y lepidópteros:

Cámara letalEs un utensilio ampliamente usado para el sacrificio de los insectos colectados.

Este se se construye utilizando un frasco o tubo de vidrio (preferiblemente "pyrex") en

el fondo del cual se coloca una capa de aserrín, algodón o corcho en trocitos,

sobre la cual se dispone un disco pequeño de corcho donde se practican

algunas muescas laterales que permitirá la salida de gases tóxico (Fig. 16a). Por

encima del disco de corcho se coloca un círculo de papel filtro o papel higiénico

que sirve para absorber las deyecciones de los insectos o el exceso del líquido letal

utilizado.

Para la utilización de la cámara, se agrega a la capa del fondo, una pequeña

cantidad de acetato de etilo, éter o cloroformo (nunca en exceso) y se cierra

herméticamente. El líquido al evaporase continuamente, forma en el interior de la

cámara una atmósfera saturada que mata a los insectos.

Técnicas de PreservaciónTécnicas de Preservación

Una alternativa de la cámara letal antes descrita es la que utiliza cianuro de

potasio (KCN) como agente letal. En éste caso, deben tomarse toda clase de

cuidados en su manipulación debido a que el KCN es altamente venenoso. Se debe

trabajar con él en lugares aireados, pero sin corriente de aire, evitando tocarlo con las

manos o aspirar cualquier cantidad por mínima que sea. El frasco de cianuro debe

permanecer cerrado herméticamente, con una etiqueta advirtiendo que se trata de

veneno y dejándolo siempre en un lugar inaccesible a otras personas, principalmente

niños.

La cámara de cianuro debe construirse de la siguiente manera: en el fondo de

un frasco o tubo se coloca una pequeña cantidad de KCN, enseguida se agrega una

mezcla de agua y yeso dental (fraguado rápido) apunto de fraguar. Se golpea

ligeramente el frasco sobre un soporte suave para mezclar y asentar el yeso, se cierra

y se deja secar.

En caso de emergencia y de forma más cómoda, se puede improvisar una

cámara letal utilizando para ello únicamente un frasco de cierre hermético con tapa de

rosca. En dicho frasco se introduce trozos de papel higiénico, servilletas o un pedazo

de tela a la cual se le agrega una pequeña cantidad de acetato de etilo, suficiente

para matar a los insectos que se colecten.

Fig. 16. Cámara letal: A) Sencilla, B) Con cianuro de potasio

Después de secarse completamente, se

limpian las paredes del exceso de yeso y se

protegen externamente el fondo y el cuello de la

cámara con cinta adhesiva tipo “masking tape”

(Fig. 16b). Esta cinta, además de protegerlo

contra pequeños choques, evita que se

disperse el cianuro como consecuencia de las

cuarteaduras y facilita encontrar el tubo si se

perdiera en el campo. Cuando la sustancia deja

de funcionar, debe enterrarse la cámara

profundamente o incinerarlo.

Muesca

Papel absorbente

A

Mezcla de Yesocon KCN

B

Masking tape

Aserrín

Corcho

22

Técnicas de preservaciónExisten algunas sustancias, como el acetato de etilo, éter, cloroformo y cianuro

de potasio, que permiten por medio de los gases tóxico que emiten, sacrificar

adecuadamente a insecto de talla mediana a grande y de cuerpo no tan suave. Sin

embargo, cuando se trata de insectos de cuerpo blando, el medio más utilizado es el

alcohol al 70-95%, el cual se prepara con alcohol etílico o isopropílico diluido en agua

destilada. En la utilización de alcohol existe la desventaja que frecuentemente quema

las partes suaves de muchos insectos, sobre todo si estamos trabajando con estados

inmaduros, por lo cual es conveniente dejarlos de 48 a 72 hrs en líquido de Pampel

(que actuará como fijador) para posteriormente pasarlos a alcohol al 70-95%. El

líquido de Pampel se prepara al mezclar 27 partes de Alcohol al 96%, 11 partes de

formol al 5%, siete partes de ácido acético glacial y 55 partes de agua destilada.

Cuando se desea colectar insectos para estudios de anatomía interna, el mejor

fijador es el Bouin alcohólico. La fijación dura de 6 a 24 horas y posteriormente el

animal fijado se pasa a alcohol al 75%, donde puede mantenerse por un tiempo

prolongado. En el caso de insectos adultos de cubierta dura, conviene practicar

algunos pequeños orificios para que el líquido penetre bien. El Bouin alcohólico se

prepara diluyendo 1 g de ácido pícrico en 150 ml de alcohol al 80%. Al momento de

requerirse para sacrificar algún insectos, se debe mezclar con 60 ml de formol y 15 ml

de ácido acético glacial.

Otro fijador líquido utilizado en insectos colectados para fines de estudios de

anatomía interna es el líquido de Dietrich, el cual se obtiene al mezclar agua destilada

(55 ml), alcohol al 95% (35 ml), formol (10 ml) y ác. acético glacial (4 ml). La fijación

de un insecto mediante el líquido de Dietrich dura de 24 a 48 horas y después se pasa

por alcoholes de 50 y 70%, media hora en cada uno. Por último, se coloca al insecto

en alcohol al 85% para su conservación

23

24

Cuando se trabaja con estados inmaduros, es recomendable sacrificar y fijar los

ejemplares en solución KAAD. Los ejemplares pequeños deben permanecer en el

fijador durante un máximo de 30 minutos y los de mayor tamaño pueden mantenerse

hasta un máximo de 4 horas. Posterior a la fijación, se deben cambiar a alcohol al

70%. Para la preparación de la solución KAAD se mezclan queroseno (10 ml), alcohol

etílico al 96% (70 ml), ácido acético glacial (10 ml) y dioxano (10 ml).

Otra medio muy utilizado para fijar estados inmaduros es la solución XA, el cual

se forma mezclando en partes iguales xileno y alcohol etílico al 96%. Posterior a la

fijación (24 horas), las larvas o pupas se deben cambiar a alcohol al 70%.

El líquido de Khale, es utilizado para sacrificar y fijar los tejidos de larvas. Para

evitar que se endurezcan demasiado, deben retirarse pasados 2-8 días y cambiarse a

alcohol al 70%. El liquido de Khale se prepara mezclando alcohol etílico al 96% (28

ml), ácido acético glacial (4 ml), formol (11 ml) y agua destilada (57 ml).

Por último, dentro del grupo de medios líquidos, haremos referencia al agua

caliente (casi a punto de ebullición), que puede ser utilizado para matar y fijar larvas

de diversos grupos de insectos. Posteriormente se deberán colocar, como en los otros

casos, en alcohol al 70%.

Técnica para preservación de odonatos

Las libélulas tienen una coloración de origen químico a base de pigmentos

orgánicos que pueden ser dañados si no se utiliza una adecuada fijación de los

mismos. La técnica de preservación para estos insectos consiste en, una vez

capturado, se inyecta acetona en el tórax del insecto, procurando que la aguja penetre

longitudinalmente hasta la base del abdomen. Se coloca al ejemplar en una bolsa de

papel glasine con varias perforaciones y se sumerge totalmente en acetona durante

12-24 horas. Después se retira, seca y se cambia a otra bolsita para su almacenaje.

25

Técnica para preservación de lepidópteros Una vez colectadas las mariposas y palomillas se inyecta la región ventral del

insecto, en la unión entre el tórax y el abdomen, una cantidad suficiente de un líquido

fijador que a continuación se describe: Mezclar ácido acético glacial (1 ml), formol (2

ml), glicerina (10 ml), alcohol etílico al 96 % (12 ml), nipasol sódico (5 ml) y agua

destilada (75 cc). Este líquido, además de matar, mantiene la elasticidad del insecto

y preserva las estructuras internas. La técnica es también aconsejable para cualquier

hexápodo voluminoso, especialmente para aquellos de abdomen bien desarrollado

como los megalópteros (e.g. Corydalus sp).

Para inyectar esta solución se recomienda utilizar una jeringa de 5 a 10 ml con

aguja corta y fina, de las utilizadas para insulina. Se debe inyectar sólo la dosis que

mate al animal, percibiéndose esto por la pérdida de movimiento. El exceso de líquido

puede escurrir hacia las alas que se perjudican con la glicerina. Los lepidópteros

sacrificados de esta manera deben tener las alas extendidas inmediatamente después

de la muerte pues, si las alas se endurecen cerradas, será muy difícil volver a abrirlas.

A falta de este fijador o en el caso de que los lepidópteros se tengan que montar

días después de su colecta, se puede inyectar alcohol al 96 %, amoniaco o gasolina

blanca.

26

Transporte de los Insectos ColectadosTransporte de los Insectos Colectados

Una vez colectados y sacrificados los insectos, se deben de colocar en un recipiente

para su transporte al laboratorio. Para ello se utiliza un recipiente rectangular del tipo

“Tupper ware”, o bien puede usarse cajas de Petri para cuando colectamos insectos

pequeños. En estos recipientes se coloca en el fondo una capa de naftalina en polvo,

clorocresol o paraformol y después una capa de papel absorbente (servitoallas),

tratando de que la capa de papel sea un poco más grande que el fondo del recipiente,

esto con el fin de que los insectos no se caigan al fondo. Posteriormente se colocan

los insectos colectados, no olvidando adicionar una etiqueta con los datos de colecta.

Sobre lo anterior se coloca otra capa de papel absorbente y se sigue el mismo

procedimiento (Fig. 17).

Una alternativa al uso de papel absorbente en la formación de las capas, es la

utilización de tela “pellón” de grosor apropiado. Por último se aconseja el uso medido

de cristales de fenol diluidos en agua y aplicado con gotero a cada capa con insectos,

pues esto evita la aparición de hongos. Así mismo, la adición de gotas acetato de etilo

es recomendable.

Fig. 17. Medio de transporte para insectos colectados

Capa deNaftalina

Algodón

Capa de papelabsorbente

o pellón

Recipiente

Insectos colectados

27

Montaje y ConservaciónMontaje y Conservación

La conservación de los insectos en colecciones entomológicas se refiere a las

técnicas empleadas para su adecuado almacenaje. De manera general podemos

indicar que existen tres métodos fundamentales de conservar a los ejemplares en una

colección de insectos: en seco, en líquido y en preparaciones permanente. A

continuación se detallan algunas de las técnicas más utilizadas en el montaje y

conservación de insectos con fines científicos.

Conservación en secoCuando los insectos llegan al laboratorio se encuentran secos y posiblemente

quebradizos, por lo que deben manipularse con mucho cuidado. En esta condición, se

recomienda antes de comenzar un proceso de conservación en seco, transferir los

insectos desde los recipientes donde fueron transportados a cajas de Petri y éstas a

su vez colocarlas en una cámara húmeda para el relajamiento de los insectos. La

cámara húmeda consiste en un recipiente grande de vidrio o plástico de boca ancha

(un desecador de vidrio es idóneo), con una capacidad de unos 5 l. Al recipiente se le

agrega una capa de arena húmeda en el fondo mezclándola con gotas de fenol para

evitar la formación de moho. Por encima de la arena se colocan algunas capas de

papel filtro. Al cerrarse herméticamente el recipiente, se forma una atmósfera

saturada de humedad dentro del recipiente que posibilita la rehidratación de las

articulaciones de los insectos. Lo anterior permite que los ejemplares se suavicen

gradualmente, sin embargo, no deben permanecer más tiempo del necesario, pues se

reblandecen demasiado o se pudren.

Una vez que los ejemplares están flexibles, es posible iniciar un proceso de

conservación en seco. Dentro de este tipo de conservación, la técnica más utilizada

es el empalamiento o montaje con alfileres entomológicos, los cuales deben

emplearse en insectos mayores de 5 mm de longitud y 2 mm de ancho.

Una vez que los insectos se encuentran lo suficientemente flexibles, se procede

al montaje de los mismos, atravesándolos con alfileres entomológicos. Los alfileres a

utilizar, son fabricados en acero con recubrimiento de cromo, níquel o en su defecto,

barnizados en negro; tienen diferentes diámetros y una numeración progresiva desde

los más delgados (#000) hasta los más gruesos (#7) y su utilización depende

directamente del tamaño y grosor del insecto a montar.

Para sostener los ejemplares se puede utilizar pinzas finas, delicadas y

flexibles; o a falta de éstas se usan los dedos. Deben obedecerse ciertas reglas

relativas al punto por donde debe penetrar el alfiler, las cuales son conocidas

internacionalmente (Fig. 18). Los sitios preestablecidos para cada grupo de insecto

(PEA: punto de inserción del alfiler), fueron elegidos por tres razones principales: 1)

Representan las partes más duras del insecto, 2) No se deterioran estructuras

importantes, y 3) Se acercan al centro de gravedad del insecto.

28Fig. 18. Sitios de colocación de alfiler A) Orthoptera; B) Diptera; C) Neuroptera; D) Lepidoptera; E) Homoptera; F)

Hemiptera; G) Coleoptera; H) Hymenoptera. PEA: Punto de inserción del alfiler

A B C D

E F G H

PEA

PEA

PEAPEA

El alfiler debe mantenerse en posición perpendicular a los ejes longitudinal y

transversal del insecto (Fig. 19). Una vez atravesado el insecto, se coloca el ejemplar

en la parte superior del alfiler, hacia el tercio superior. Lo anterior se consigue

utilizando el bloque de montaje (Fig. 20), que es una escalerilla de madera, con tres

escalones de una altura aproximada de 7, 15 y 25 mm respectivamente.

29

En el centro de cada escalón se halla un

agujero vertical por donde pasa el alfiler; de

acuerdo al tamaño o volumen del ejemplar se

utiliza uno de esos escalones del bloque. Este

instrumento es útil también para atravesar

etiquetas con los alfileres, con el fin de que

queden todas a una misma altura. Otro sistema

de uniformizar la altura de los insectos en los

alfileres es por medio de un cuadrito de

cartulina rígida de unos 5 cm, el cual lleva una

marca visible a los 8-10 mm, que es la medida

que deberá llevar del cuerpo del ejemplar al

borde de la cabeza del alfiler.

Los ejemplares de abdomen grande o

patas/antenas muy largas, deben apoyarse en

un soporte de cartulina, hasta secar

completamente. Otra opción es ir sosteniendo

las partes por medio de puentes que se forman

al cruzar en X dos alfileres. Las alas quedan

separadas del cuerpo, pero en posición natural.

Las patas y antenas permanecen simétricas y

apartadas ligeramente del cuerpo.

Fig. 20. Bloque de montaje

Fig. 19. Montaje con alfiler entomológico: A) Correcto; B) Incorrecto

A B

A B

8-10 mm

8-10 mm

30

Fig. 21. Montaje de lepidópteros mediante extendedor

Una vez montados los insectos, secaran

lentamente y sus líquidos internos se pegan al

alfiler manteniendo fijo al ejemplar. Es por esta

razón que una vez seco, no debe intentarse

girar al insecto alrededor del alfiler, pues

quedara "flojo" y podrá incluso deslizarse hacia

abajo. De esta manera, lo que se conserva del

insecto es apenas su exoesqueleto; los órganos

estarán secos o habrán desaparecido.

Madera de balsa

Placa de corcho

PapelAlfileres

Para el caso de las mariposas, se clava un alfiler en el centro del tórax y los dos

pares de alas se colocan abiertas de modo que los bordes posteriores de las alas

anteriores queden perpendiculares al eje del cuerpo. (Fig. 21). Para el montaje de

lepidópteros se hace necesario el extendedor o restirador de mariposas. Este consta

de un soporte de madera sostiene una placa que permita la fácil inserción de los

alfileres (madera de balsa, plástico, silicón o corcho). Lateralmente el extendedor

posee dos placas longitudinales (madera) que dejan entre sí un canal donde se coloca

el insecto (Fig. 21).

Cuando el material colectado corresponde a insectos demasiado pequeños para

ser pinchados con un alfiler directamente, se debe realizar un doble montaje o

montaje con triángulo de papel (Bristol u opalina de 225 gr). Primeramente se

atraviesa el triángulo por su parte ancha con el alfiler. Posteriormente se dobla la

punta del triángulo ligeramente hacia abajo, formando un pequeño pliegue por donde

se fija al insecto por medio de una gotita de pegamento, tal como “shellac gel”

(pegamento soluble en alcohol), pegamento blanco “Resistol” (soluble en agua) o

esmalte incoloro para uñas. El insecto quedará pegado al triángulo por la parte pleural

o lateral (Fig. 22a).

Una alternativa al montaje anterior, es el montaje con minucias, las cuales son

diminutas agujas, las cuales son clavadas en barritas de materiales suaves y ésta a

su vez atravesadas con el alfiler convencional (Fig.22b).

31

Cuando los insectos tienen alas que ocupan un gran espacio dentro de las cajas

entomológicas pueden conservarse en seco dentro de sobres de papel glasine

(celofán en su defecto), con las alas plegadas. Lo anterior facilita el almacenaje de los

ejemplares dentro de recipientes a modo de tarjeteros.

Conservación en líquidoLa técnica más empleada es la que emplea alcohol etílico al 70-95%. Si bien el

alcohol se utiliza en técnicas de preservación (fijación), hay que recordar que el etanol

es un conservador.

Conservación en preparaciones permanentesEste consiste en colocar el insecto en un portaobjetos plano o excavado,

después de que éste ha sido deshidratado en alcoholes (5-10 min en alcoholes de 35-

95%). Posteriormente se coloca en Euparol, el cual es una solución que aclara al

insecto y lo conserva. Una vez realizado lo anterior se coloca el cubreobjeto y se

presiona delicada pero firmemente la preparación a fin de evitar excesos de Euparol,

también puede calentarse para evitar burbujas. Los bordes de la preparación deben

sellarse con barniz de uñas. Es conveniente guardar estas preparaciones en posición

horizontal durante algunas semanas hasta que el sellador este completamente

endurecido.

Fig. 22. Montaje de pequeños insectos A) En Triángulos; B) Con minucias

A B

Minucia

Alfiler entomológico

Barrita de corcho

Alfiler entomológico

Triángulo de papel

MEXICO: ChiapasMpio: Tuxtla Gtz.2 Km N de Zoológico22/V/01. B. Gómez

Canthon femoralisChevrolat 1834

Det. B. Gómez, 2001

32

Rotulación (Etiquetado)Después de haber realizado todos los procedimientos para el buen

mantenimiento del ejemplar capturado en una colección entomológica, debemos

etiquetar al insecto con sus datos de captura. La rotulación del espécimen, no es más

que atravesar en el alfiler donde tenemos al insecto en cuestión, una etiqueta de

papel (opalina o papel especial) con los siguientes datos (mínimos) de captura: País,

estado, municipio, localidad, fecha y colector. La etiqueta para insectos puede tener

un tamaño de 8 X 18 mm y estar impresa o manuscrita con tinta china (Fig. 23). Los

rótulos, de preferencia no deben exceder el tamaño de los insectos montados.

Además de la etiqueta de captura, el insecto podrá ir acompañado de otra con

detalles sobre la ecología, forma de colecta, etc., por ejemplo: "en trampa de luz",

"sobre Quercus rugosa", "en copula", etc. Cuando se cuenta con la identificación

precisa del insecto, se anexa una etiqueta de determinación, con el nombre científico

de la especie, autor y año. En el caso de ser posible el sexo del insecto. Además del

nombre de quien determina y el año de determinación.

AlmacenajeEl almacenaje de los insectos, en el caso de los ejemplares montados en alfiler

entomológico (conservación en seco), se realiza por medio de cajas entomológicas.

La caja o gaveta entomológica usada preferentemente es de madera con tapa de

cristal.

Fig. 23. Tipos de etiquetas: A) Captura; B) Datos anexos; C) Determinación taxonómica

MEXICO: ChiapasMpio.: Tapachula2 km W Col. Morelos22/VI/02. R. Jones.

Phyllophaga tenuipilis

Det. B. Gómez. 1994.(Bates),1888.

*En maíz (Zea mays)*Trampa de luz.

A

B

C

33

El fondo donde se clavan los alfileres puede estar constituido de varias clases

de materiales: a) cartón corrugado y grueso; b) madera de balsa, más difícil de

conseguir y que tiene la desventaja de que no pueden atravesarse fácilmente los

alfileres delgados; c) corcho; d) hule espuma o unisel; e) plástico poroso (Plastiform).

Los insectos montados están sujetos a varios enemigos y efectos del medio,

contra los cuales el curador debe prevenirse. Los principales enemigos son los mohos

y pequeños insectos de los órdenes Psocoptera, Thysanura y Coleoptera

(Dermestidae). Un método muy usual y práctico para la prevención de artrópodos

dañinos, es la utilización de naftalina en bolitas que se adquieren fácilmente en

cualquier farmacia. Estas no deben permanecer sueltas en la caja, pues al rodar

destrozan los insectos montados. Para sujetar la naftalina a un lugar específico, se

calienta al rojo vivo la cabeza de un alfiler y se sumerge en la bolita de naftalina que,

al enfriar, permanece firmemente adherida. Posteriormente, el alfiler se clava en una

esquina de las cajas de colección.

Los insectos engrasados debido principalmente a la disolución de tejidos

adiposos, pueden limpiarse por inmersión en éter por uno o dos días; los insectos

enmohecidos, siempre y cuando no estén muy dañados y sean resistentes, pueden

limpiarse con un pincel fino mojado en éter o en una mezcla de xilol-éter.

34

Cría y ManutenciónCría y Manutención

Durante la colecta el entomólogo tiene frecuentemente la oportunidad de recoger

huevos, larvas o ninfas de insectos que pueden criarse para la obtención de adultos.

La cría de insecto en el laboratorio no siempre es una tarea fácil; es preciso evitar

ataques de otros insectos y de hongos, además de enfrentar muchas otras

dificultades.

Los insectos que se van a criar, pueden mantenerse en recipientes de vidrio

(frascos, peceras, etc.), plástico o de madera, cubiertos con tul, tela de alambre o de

nylon. Así mismo, las trampas de emergencia del tipo caja o macetera, otorgan

excelentes resultados.

Los recipientes deben prepararse de tal forma que imiten, en lo posible, las

condiciones naturales. Deben aireares bien, recibir buena iluminación y tener

humedad adecuada. La alimentación debe ser abundante y las heces retiradas para

que no estorben o den margen al desarrollo de otros organismos. La experimentación

metódica del interesado será más seguro y eficiente para la obtención de resultados

satisfactorios.

35

Referencias BibliográficasReferencias Bibliográficas

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Brown Company Publishers. Iowa, U.S.A.

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Diagnosis. Universidad Autónoma de Chapingo. Parasitología Agrícola.

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Colegio de Postgraduados. México.

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animales. Universidad Nacional Autónoma de México. México.

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insectos necrófilos de la Sierra Norte de Hidalgo, México. Acta Zoológica

Mexicana (N. S.) No. 3 : 1-47.

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Schauff, M. E. (Editor). Collecting and preserving insect and mites. Techniques

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http://www.sel.barc.usda.gov/selhome/collpres/contents.htm