Manual de muestreo de suelos, fertilab

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Muestreo de Suelos

Actualmente el análisis de suelo es crítico si se desean obtener rendimientos rentables en los cultivos. El agricultor promedio de Estados Unidos y Europa no concibe la agricultura sin el apoyo de los análisis de suelo. Recordemos que la planta requiere de 12 nutrimentos minerales que debe de obtener del suelo o de los fertilizantes. Es muy improbable que un técnico, por más capaz que sea, pueda adivinar si los 12 elementos que el cultivo requiere, están disponibles en el suelo y tampoco puede darse el lujo de aplicarlos todos, por los altos costos que ello representa, especialmente en los últimos años en que se han disparado los costos de los fertilizantes en forma exagerada.

Teniendo en cuenta que el agua es uno de los recursos que más incide sobre la condición de fertilidad de un suelo es también muy trascendente realizar el diagnostico correspondiente para su uso agrícola mediante el análisis de laboratorio. Por otro lado, una vez que se establece un programa de fertilización para un cultivo determinado, el paso obligado siguiente es el monitoreo de la nutrición del cultivo para evaluar si el programa de fertilización establecido fue el correcto o si requiere de la aplicación complementaria de fertilizante. Por lo anterior, la única opción es analizar el suelo, el agua y el tejido vegetal de las plantas, para aproximarse lo más posible a las demandas de fertilización de los cultivos y lograr la máxima rentabilidad de la agricultura.

Para elaborar un programa de fertilización en un terreno bajo cultivo, basado en los resultados de un análisis de suelo, es imprescindible un adecuado procedimiento para la toma de la muestra. Generalmente el error que se comete en el muestreo es de mayor magnitud que el error que se introduce al analizar la muestra en el laboratorio. En terrenos en pastoreo el problema es de mayor complejidad, ya que la deposición de heces y orina genera una mayor variabilidad. Por estas razones, el número de submuestras a tomar para representar un terreno es de importancia fundamental.

El proceso previo al envío de muestras de suelo al laboratorio para su análisis implica los siguientes pasos: 1) definición de la época de muestreo, 2) frecuencia de muestreo, 3) separación de áreas homogéneas, 4) definición de la profundidad de muestreo, 5) definición del número de submuestras a tomar en cada área homogénea, 6) manejo y preparación de la muestra, 7) identificación de la muestra y 8) elección del laboratorio. A continuación se describe una serie de recomendaciones para cada uno de los pasos mencionados:

Época de muestreo

Es recomendable realizar el muestreo de suelos previo al establecimiento del cultivo, bien sea antes de la temporada de lluvias si el cultivo se va establecer en el ciclo primavera-verano o después, si se va a establecer en el ciclo otoño-invierno, con el propósito de disponer del resultado del análisis oportunamente y poder implementar un programa óptimo de fertilización. Por otro lado, para lograr mayor homogeneidad es recomendable realizar el muestreo después de la preparación del terreno. En cultivos perennes lo más adecuado es tomar las muestras de suelo antes de establecer la plantación. En huertos de frutales el muestreo se debe de realizar antes de la primavera para decidir el programa de fertilización antes de la brotación. Si las condiciones de tiempo lo permiten, el muestreo se puede realizar antes de la labranza.

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Frecuencia de muestreo

La frecuencia del muestreo y de los análisis va a depender de las condiciones del suelo y de la presencia de problemas, por ejemplo, suelos sódicos rehabilitados mediante adición de calcio, suelos ácidos a los que se ha aplicado cal, suelos salinos que se han sometido a un proceso de lavado. Debido a esta diversidad de tratamientos después de un tiempo se debe evaluar el efecto del tratamiento y para ello es necesario hacer otro muestreo al siguiente ciclo. Hay nutrimentos muy dinámicos, como el N-NO3, cuya condición puede cambiar en unos meses debido al proceso de lixiviación o lavado y al proceso de extracción por el cultivo. En el caso del N disponible, es menester realizar análisis cada año, pero sólo para este elemento, pues el resto de los elementos, así como las condiciones de los suelos, no se modifican en el corto plazo.

Por otro lado, algunos nutrimentos son muy estables, como el potasio y el fósforo, por lo que no ocurren cambios significativos en dos a tres años, a menos que sean suelos de textura gruesa, en los cuales los cambios en la fertilidad son más rápidos. Respecto al contenido de materia orgánica, los cambios ocurren en plazos más largos aún, a menos que se trate de materia orgánica fresca, como la aplicación de desechos orgánicos, cuya descomposición en el suelo es relativamente rápida. En general se recomienda realizar análisis del suelo cada dos o tres años; sin embargo, en situaciones específicas, como en el caso del N-NO3, se deben realizar análisis durante cada ciclo. El análisis de textura, que es una propiedad física del suelo, sólo se realiza una vez, ya que prácticamente no sufre cambios con los años.

Separación de áreas homogéneas o unidades de muestreo

Previo al muestreo, y después de una somera inspección del terreno y una conversación con el propietario del rancho o el mayordomo, se prepara un croquis del lote en el que se delimitan áreas con cierto grado de uniformidad. La separación de áreas homogéneas o unidades de muestreo es con el fin de manejar la fertilización y mejoramiento del suelo en forma independiente, hasta donde la geometría de estas unidades lo permita. En cualquier caso es recomendable que las áreas homogéneas o lotes de muestreo no sean mayores de 10 a 20 ha para reducir la variabilidad natural del terreno.

Para definir las unidades de muestreo se toman en cuenta los siguientes factores:

1. Color del suelo.

2. Áreas con problemas de salinidad y/o sodicidad.

3. Textura

4. Pendiente del terreno

5. Condición general del cultivo anterior.

6. Historial de cultivos (cultivos anteriores y rendimientos durante varios años)

7. Uso de mejoradores tales como yeso, encalado o la adición de materia orgánica.

En la Figura 1 se presenta un croquis de muestreo en un rancho agrícola en la región del Bajío. No es conveniente mezclar las muestras de dos lotes, que aunque parezcan muy similares, en uno el cultivo anterior fue alfalfa y en el otro fue maíz por lo que sus niveles de extracción y/o aporte de nutrimentos fueron distintos.

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Terreno de color más claro., Sorgo de temporal

Cultivo de alfalfa

Clorosis severasorgo

Barbecho

19 17 15 13 11

20 18 16 14 12 10

2 4 6 8

1 3 5 7 9

A

CBD

PozoTerreno de color más claro., Sorgo de temporal

Cultivo de alfalfa

Clorosis severasorgo

Barbecho

19 17 15 13 11

20 18 16 14 12 10

2 4 6 8

1 3 5 7 9

A

CBD

Pozo

Figura 1. Rancho agrícola en la región del Bajío en el estado de Guanajuato, México. (A) Extensión de 18 ha con sorgo de temporal, pendiente de 1 a 3%, con coloración del suelo más clara que el resto del terreno. (B) Extensión de 8 ha, con alfalfa. Área plana de textura fina con pendiente menor de 0.5%. (C) Extensión de 3 ha, con sorgo. Área en la que se manifiesta clorosis severa. (D) Extensión de 10 ha, terreno plano barbechado y rastreado después del cultivo de brócoli. Esta sección del rancho es el área de muestreo. Dentro de la unidad de muestreo D se distribuyen en zig-zag 20 submuestras para preparar la muestra compuesta.

Profundidad de muestreo

Por razones económicas, los usuarios por lo general deciden hacer un muestreo a una profundidad de 0-30 cm (capa arable). Sin embargo, para planear el mejoramiento del suelo en el largo plazo es de suma importancia conocer las condiciones del subsuelo. En la capa superficial el contenido de materia orgánica es mayor que en el subsuelo, y en este estrato la extracción de nutrimentos es mayor, por lo que es el que preferentemente se muestrea.

Por ejemplo, si la textura del subsuelo es adecuada, se aconseja realizar un barbecho profundo; en cambio, si en el subsuelo existen condiciones sumamente ácidas se sugiere no realizar un barbecho profundo para evitar incrementar la acidez de la capa arable. Otro caso, si en el subsuelo existe un alto contenido de nitrógeno disponible (N-NO3) el cultivo va a recibir un suministro adecuado de este nutrimento. Si éste es el caso, la dosis de fertilización nitrogenada se reduciría a menos de la mitad y el ahorro que ello genera sobrepasa por mucho el costo del análisis del subsuelo y por lo tanto se genera una utilidad adicional importante. Además del muestreo en el estrato de 0-30 cm para el análisis de N-NO3, para el análisis de fertilidad de rutina, en general se recomienda, incluir el estrato de 30-60 cm. El resultado de este análisis aporta más elementos para programar la dosis óptima de fertilización nitrogenada del cultivo, y lograr ahorros por concepto de adquisición de fertilizantes.

En la agricultura de riego la mayor parte de la actividad radicular ocurre en el estrato 0 a 30 cm, por lo que este estrato es el más importante, sobre todo en cultivos de raíz superficial, como la mayoría de las hortalizas. En terrenos establecidos con frutales se recolectan muestras cada 30 cm hasta llegar a la profundidad de 90 cm. En suelos en los que se registran problemas recurrentes se recomienda muestrear en el estrato de 30 a 60 cm, y para medir la salinidad se debe muestrear el estrato de 60 a 90 cm. En la muestra no se deben incluir residuos orgánicos no descompuestos.

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Intensidad de muestreo

En el Cuadro 1 se presenta la cantidad de submuestras que se deben tomar de acuerdo con la superficie de terreno en la que interesa realizar el diagnóstico de la fertilidad. Es importante mencionar que el análisis en una muestra representada por una sola submuestra no permite diagnosticar la fertilidad del suelo, sino por el contrario, genera una confusión mayor al momento de interpretar y emitir recomendaciones.

Cuadro 1. Cantidad de submuestras a tomar de cada unidad de muestreo para preparar la muestra compuesta .

Unidad de muestreo (ha) Cantidad de submuestras

< 2 8

2-5 12

5-10 16

10-25 20

En 10 ha una muestra de 1 kg representa una masa de suelo de 30 millones de kg sin considerar la reducción aún mayor que se hará al momento de tomar la muestra para el análisis en el laboratorio.

Recolección de las submuestras

La recolección de las submuestras se puede realizar con una barrena, de preferencia de acero inoxidable, con la cual se extraen pequeñas cantidades de suelo (misma profundidad y espesor) para facilitar la formación de la muestra compuesta.

También se puede realizar con pala recta, como se indica en la Figura 2, siguiendo las recomendaciones mencionadas. La ventaja de recolectar las sub-muestras con pala es que se pueden conservar algunos agregados (terrones) útiles para algunas determinaciones físicas, como densidad aparente y estructura. La barrena permite un muestreo más rápido, económico, sistemático y en ocasiones más homogéneo. Además, la extracción de muestras del estrato de 0 a 60 cm es más fácil. En cualquier caso deberán tomarse precauciones de no contaminar el estrato de 30 a 60 cm con suelo proveniente del estrato de 0 a 30 cm.

Figura 2. Procedimiento de toma de muestras con pala recta.

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Se recomienda no tomar muestras en sitios cercanos a las orillas del predio, donde es común que se acumulen cantidades excesivas de fertilizante debido a las vueltas del tractor. Las muestras se deben tomar en sitios alejados al menos 20 m de las orillas, de hileras de árboles, o de cercadas. Las submuestras normalmente se depositan en una cubeta de plástico en la que se marca la profundidad de muestreo cuando se toman muestras en más de un estrato. En el caso de cultivos en surco que recibieron fertilización en banda y que se muestrea antes de la labranza, se recomienda aumentar el número de submuestras para reducir variabilidad y estratificar el muestreo en tres posiciones: a) lomo del surco, b) ladera del surco, y c) fondo del surco. El número de submuestras se divide equitativamente entre estas tres posiciones. Con el total de submuestras se prepara una mezcla y de allí se toma una muestra compuesta representativa de todo el lote.

Preparación de la muestra compuesta

Una vez colectadas todas las submuestras se mezclan cuidadosamente, y de la mezcla se extrae una muestra de 1.5 a 2 kg aproximadamente. En la Figura 3 se presenta el método de cuarteos diagonales para la elaboración de la muestra compuesta. El proceso de mezclado y cuarteo es más eficiente si la muestra se seca al sol antes de reducirla. Una vez seca se vacía sobre un plástico o sobre un piso de cemento limpio, libre de residuos de fertilizantes y se mezcla con cuidado para homogeneizarla; enseguida se distribuye formando un círculo que se divide en cuatro cuadrantes. Se eliminan los cuadrantes opuestos (los blancos en la Figura 3) y los otros dos se vuelven a mezclar. El procedimiento se repite hasta reducir la muestra a 1.5 ó 2 kg. Durante el proceso de reducción de la muestra se deben eliminar los restos de materia orgánica fresca (reciente) y la grava o piedras, pues estos materiales no se incluyen en el análisis. El suelo sobrante se puede guardar durante una semana mientras se asegura que la muestra fue recibida en el laboratorio. En caso de que se requiera enviar al laboratorio la muestra nuevamente, si está húmeda, debe secarse al sol o a la sombra (no en estufa para no alterar sus propiedades químicas). Una vez seca se empaca y se envía al laboratorio debidamente etiquetada.

En muestras húmedas almacenadas por algún tiempo se promueve la mineralización de nitrógeno, por lo que el contenido de este nutrimento se sobreestima al ser analizado. Esto es particularmente importante cuando hay una cantidad considerable de materia orgánica o de residuos recientes de cultivo. Cuando la muestra se entrega al laboratorio el mismo día en que fue colectada, o al día siguiente, no hay necesidad de realizar un secado previo al envío; en el laboratorio se realiza el proceso de secado con los cuidados apropiados.

1 kg

Figura 3. Procedimiento de elaboración de la muestra compuesta por medio de cuarteos diagonales.

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Para empacar la muestra se recomienda utilizar solamente bolsas limpias. Las bolsas usadas pueden contener residuos de fertilizantes o abonos orgánicos, que contaminarían la muestra, de igual manera la muestra no se deberá secar ni almacenar en áreas cercanas a lotes de fertilizantes. La toma y preparación de la muestra representativa es tan importante como el análisis en el laboratorio, por lo que debe realizarse por personal capacitado y que de preferencia sea supervisado por un técnico experimentado. Para asegurar que los resultados del laboratorio sean una herramienta de diagnóstico de gran valor cuyos resultados se verán reflejados en los rendimientos de los cultivos y por lo tanto en los ingresos de los productores, es muy importante seguir al pie de la letra esta serie de recomendaciones.

Identificación de la muestra

Para su envío al laboratorio, las muestras deberán ser identificadas de acuerdo con el croquis del terreno en el que se definieron las unidades de muestreo (sectores homogéneos). La identificación de las muestras requiere de los siguientes datos: nombre del rancho y del propietario, sector muestreado, ubicación geográfica (de preferencia georreferenciado), cultivo anterior y su rendimiento, manejo de los residuos (quemados, retirados del terreno o incorporados), sistema de labranza, cultivo a establecer, fuente de riego si se dispone, meta de rendimiento, y en caso de existir, problemas aparentes del lote (Figura 4).

El conocimiento de la cantidad de residuos del cultivo anterior, y si fueron incorporados al suelo, permite decidir si se debe agregar una cantidad adicional de nitrógeno al inicio del ciclo para favorecer su descomposición y evitar así la inmovilización del nitrógeno mineral del suelo. El conocer la meta de rendimiento permite al técnico o consultor estimar los requerimientos nutrimentales del cultivo y elaborar la recomendación de fertilización.

Muestra de suelo Fecha: No. de control: Nombre del rancho Propietario: Lote o sector: Municipio, Edo.: Coord. Geog. GPS Lat. Long. Cultivo a establecer: Prof. de muestreo: cm Meta de Rend.: Cultivo anterior: Manejo de residuos del cultivo anterior:

Incorporados ( ) Quemado o retirado ( )

Análisis solicitado: Fertilidad ( ) Extracto de pasta ( ) Especial ( ) Análisis especiales: Observaciones: * De acuerdo a mapa regional o a un geoposicionador.

Figura 4. Tarjeta de identificación de la muestra de suelo que se enviará al laboratorio.

Un dato importante en la identificación de la muestra son las coordenadas geográficas del predio. Esta información tiene el propósito de mapear algún problema regional para el futuro, una vez que se ha acumulado un banco de datos de razonable magnitud. También se pude usar un geoposicionador (GPS) para ubicar con precisión el sitio del muestreo. Con los sistemas de información geográfica y el uso de datos georreferenciados es factible ubicar la extensión de una deficiencia específica o un problema especial, y con base en esta información ofrecer un servicio adicional al usuario del laboratorio. Si todos los laboratorios de

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una región realizaran esta práctica y utilizaran las mismas metodologías, entonces sería factible generar una base de datos sólida para crear en el futuro un mapa de la fertilidad de suelos en la región de interés.

Elección del laboratorio

Se recomienda sólo enviar muestras a laboratorios que utilicen los procedimientos analíticos autorizados por la Norma Oficial Mexicana NOM-021-RECNAT-2000 publicada en el Diario Oficial de la Federación el 31 de diciembre de 2002. Cerciórese de que el laboratorio de su preferencia utiliza un adecuado control de la calidad analítica, y asegúrese de que le entregará resultados de los análisis de su muestra a tiempo para tomar decisiones adecuadas sobre los requerimientos de fertilización de sus cultivos. Verifique que el laboratorio participe en programas de intercomparación desarrollados por distintas organizaciones nacionales o internacionales. Para el envío de la muestra al laboratorio utilice un sistema de entrega rápida.

Muestreo Foliar El análisis foliar se realiza principalmente con tres propósitos:

1.- Diagnosticar el estado nutrimental del cultivo para corregir deficiencias de algún elemento con oportunidad, antes de que se manifiesten los síntomas de la deficiencia que repercutan en el rendimiento.

2. Confirmar que el programa de fertilización basado en el análisis de suelo fue el correcto, que debe de ser corregido, o bien, que se debe aplicar algún nutrimento no considerado en el programa original.

3. Identificar o confirmar la causa de la aparición de un síntoma visual, para localizar áreas con problemas nutrimentales, o bien para comparar la condición nutrimental de dos poblaciones de plantas con sintomatología distinta. Cuando este es el caso, es necesario tomar la muestra únicamente de la zona donde se muestran los síntomas de interés.

En frutales la mejor forma de diagnosticar su estado nutrimental es a través del análisis foliar, con base en ello recomendar un programa de fertilización, incluso es una herramienta más valiosa que el análisis de suelo.

Para que los resultados de los análisis vegetales sean útiles es necesario utilizar una metodología estándar de muestreo. El procedimiento de muestreo comprende los siguientes aspectos: 1) selección del tejido a muestrear, 2) toma de muestras, y 3) preparación de las muestras para su envío al laboratorio.

Selección del tejido a muestrear

El tejido a muestrear se selecciona en base a la edad fisiológica o etapa fenológica del cultivo. El criterio general consiste en muestrear la hoja más recientemente madura (HMRM), es decir, la que acaba de concluir su crecimiento. Para evaluar el estado nutrimental de un cultivo se debe evitar muestrear hojas con daños por enfermedad, por insectos o daños físicos o por agroquímicos.

Se debe evitar muestrear plantas ubicadas en áreas poco normales, por ejemplo con drenaje diferente al resto del terreno, cercanas a cuerpos de agua o depósitos de fertilizantes o abonos orgánicos. Tampoco es recomendable que se realice el muestreo cuando las plantas estén bajo estrés hídrico o térmico.

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En los Cuadros 2, 3, 4 y 5 se presenta una guía de muestreo para varios cultivos en la cual se indica el tejido a muestrear, la edad, la época adecuada de muestreo y el tamaño de la muestra.

Cuadro 2. Guía de muestreo foliar de cultivos extensivos. Cultivo Etapa de

muestreo Órgano de muestreo

Tamaño de muestra

(No. de hojas) ALFALFA (Medicago sativa)

Antes de botoneo Parte superior de la planta (15 cm de la parte superior hacia abajo)

40-50

CACAHUATE (Arachis hypogaea)

Plántula Parte aérea de la planta 15-20 plantas

20-30 Inicio de formación de fruto Trifolio MRM, sin pecíolo FRIJOL (Phaseolus vulgaris)

Plántula

Inicios de llenado de vainas

Toda la parte aérea de la planta

HMRM, sin peciolos

20-30 plantas

20-30 hojas GRANOS PEQUEÑOS (Cebada, Avena, Centeno, Trigo)

Plántula a amacollamiento Parte aérea de la planta 15-20

20-30 Madurez de la hoja bandera HMRM u hojas bandera MAIZ (Zea mays)

Plántula < 10 cm de altura Parte aérea de la planta

20-30

Vegetativo>10 cm de altura a inicio de espigueo

HMRM

Espigueo (floración masculina) HMRM Madurez HMRM opuesta a la elote

SORGO PARA GRANO (Sorghum vulgare y S. bicolor)

Plántula < 30 cm de altura Toda la parte aérea de la planta

50-70

Vegetativa antes de la panoja Hoja completamente desarrollada debajo de la panoja

Floración o panoja Segunda hoja de la parte superior de la planta

Llenado de grano Segunda hoja de la parte superior de la planta

SOYA (Glycine max)

Plántula

Inicios de llenado de vainas

Toda la parte aérea de la planta

HMRM, sin peciolos

20-30 plantas

20-30 hojas TRIGO (Triticum aestivum) de invierno

Antes de la espiga HMRM 50-70

TRIGO (Triticum aestivum) de primavera

Emergencia de la espiga HMRM 50-70

HMRM: Hoja más recientemente madura, extendida DDS: Días Después de la Siembra DDT: Días Después del Trasplante DDE: Días Después de la Emergencia

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Cuadro 3. Guía de muestreo foliar de cultivos hortícolas. Cultivo Etapa de muestreo Días Órgano de muestreo Tamaño de muestra

AJO (Allim sativum)

Plántula <30 DDS Parte aérea de la planta 30-50 plantas V4 30-45 DDS

HMRM 15-20 hojas

V5 46-60 DDS V6 y V7 61-80 DDS V8 y V9 81-100 DDS

V10 Alargamiento de entrenudos. Inicio de diferenciación de diente 101-115 DDS

V13 Fin de diferenciación de diente 116-130 DDSV14 y V15 Llenado de bulbo.

Máximo crecimiento de la planta 131-150 DDS

Plántula <20 DDT Parte aérea de la planta 15-20

APIO (Apium graveolens var. dulce Mill.)

7 hojas 20-40 DDT

HMRM + Pecíolo 15-20 hojas + pecíolos

9 hojas 41-60 DDT 10 hojas 61-80 DDT

11-14 hojas 81-100 DDT 101-120 DDT

6 semanas después de trasplante

Peciolo de la HMRM

20-25 pecíolos Madurez

BERENJENA (Solanum melongena)

Plántula Parte aérea de la planta

HMRM del tallo principal

20-25 plantas

25-30 hojas Etapa vegetativa a la etapa de floración

BRÓCOLI (Brassica olerace var. botrytisa)

4-6 hojas 25-35 DDT

HMRM 10-15 hojas

7-12 hojas 37-52 DDT Inicio de botoneo 55-65 DDT

Desarrollo de florete 70-75 DDT Precosecha 80-85 DDT

<3 hojas <30 DDT Parte aérea de la planta 30-50 plantas

CEBOLLA (Allium cepa)

3-4 hojas 30-50 DDT

HMRM

20-25 hojas

5-6 hojas 50-70 DDT 7 hojas 70-90 DDT

10 hojas 90-110 DDT 110-130 DDT 130-150 DDT

COL (B. o. var. capitata)

Plántula Vegetativa

Parte aérea de la planta HMRM

10-15 hojas

COLIFLOR (Brassica oleracea)

Botoneo HMRM 10-15 hojas Desarrollo de florete

CHILE ANCHO (Capsicum spp.)

Prefloración 25-40 DDT

HMRM 30-40 hojas

Floración 41-50 DDT Cuajado 60-75 DDT

Precosecha 80-90 DDT Inicio de cosecha 90-100 DDT

Mediados de cosecha 120-150 DDTPIMIENTO MORRÓN (Capsicum annuum)

Prefloración

HMRM 30-40 hojas

Inicio de floración Cuajado de fruto

Precosecha Continúa…

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…Continuación.

Cultivo Etapa de muestreo Días Órgano de muestreo

Tamaño de muestra

ESPÁRRAGO (Asparagus officinalis) Julio Parte superior de

la planta 50 cm 20-25 hojas Agosto- septiembre

ESPINACA (campo) (Spinacia oleracea)

30-50 días a

HMRM

35-40 hojas

madurez ESPINACA (invernadero)

Todas

JITOMATE (campo) (Lycopersicon spp.)

Vegetativa 0-40 DDT

HMRM

20-25 hojas

Inicio de floración 41-50 DDT Floración-amarre 51-70 DDT

Crecimiento de fruto 71-90 DDT Primer corte > 90 DDT

JITOMATE (invernadero)

Vegetativa 0-30 DDT HMRM 20-25

hojas Reproductiva 30-90 DDT Producción > 90 DDT

LECHUGA (campo) (Lactuca sativa)

7 hojas 24 DDT Hoja envolvente

25-35 hojas

9 hojas 33 DDT Inicio de formación de cabeza 39 DDT

Desarrollo de cabeza 47 DDT Desarrollo de cabeza 54 DDT

Lechuga (invernadero)

General Hoja envolvente 25-30 hojas

MAÍZ DULCE (Zea mays )

30-50 cm 5a hoja a partir del punto de crecimiento

20-30 hojas

50-70 cm 5-6 semanas Inicio de espigueo 7-8 semanas

Inicio de jiloteo Fin del jiloteo

MUSKMELON (Cucumis melo, Reticulatus Group or Honeydew)

Guías de 30 cm de largo HMRM

20-30 hojas

Formación de fruto Precosecha

PAPA (Solanum tuberosum)

Crecimiento vegetativo 0-15 DDE

HMRM 20-25 hojas

Tuberización 16-30 DDE Llenado de tubérculo inicial 31-45 DDE Llenado de tubérculo final 46-54 DDE

Crecimiento final de tubérculo y maduración

55-70 DDE

PEPINO (campo) (Cucumis sativus)

Inicio de floración a pequeños frutos

5ª hoja del punto de crecimiento

20-30 hojas

Pequeños frutos a cosecha PEPINO (invernadero)

Todas HMRM 20-30 hojas

RÁBANO PICOSO (Amoracia rusticana L.)

General HMRM 40-50 hojas

RÁBANO (Raphanus sativus L.)

General HMRM 40-50 hojas

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En frutales, es importante muestrear todos los lados de los árboles. En un área uniforme de la huerta (suelo, especie, edad) se seleccionan 20 árboles en zig-zag. Dependiendo la especie se colecta el número de hojas por árbol, del lado este, norte, oeste y sur. En huertos vallados y en viñedos donde no es posible cruzar hileras fácilmente, se hacen transectos tipo U y M a lo largo del cultivo. Las muestras se toman a intervalos definidos, a lo largo de cada espacio entre hileras del lado izquierdo y derecho de forma alterna.

Cuadro 4. Guía de muestreo foliar en frutales.

Cultivo Etapa de muestreo Órgano de muestreo Tamaño de

muestra (No. de hoja)

AGUACATE (Persea americana)

Ramas vegetativas (5-7 meses después de

Floración)

Hojas de la parte media del brote terminal sin fructificar 30-50

CIRUELA (Prunus domestica) Mitad de verano Hojas completas 50-70 NARANJA (Citrus sinensis)

Rama de 5-7 meses HMRM detrás de los frutos 30-40 Floración HMRM en ramas sin fruto TORONJA (Citrus paradisi)

General HMRM en ramas sin fruto 30-40 5-7 meses HMRM detrás de los frutos MANDARINA (Citrus reticulata)

General HMRM 30-40 LIMÓN (Citrus limon)

5-7 meses HMRM en ramas sin fruto 30-40 LIMA PERSA (Citrus aurantifolia Tahiti)

General HMRM 30-40 DURAZNO (Prunus persica)

Mitad de verano Hojas de la parte media del retoño, sin frutos 50-70

HIGO (Ficus carica) Julio-Agosto HMRM 20-30 FRESA (Fragaria sp.) Todas Trifolio MRM 50-70 NOGAL (Carya illinoensis)

15-31 Junio (60-65 días después de la floración)

Par de foliolos opuestos en hojas de la parte media del crecimiento terminal 60-80

MANGO (Mangifera indica)

Último brote vegetativo de 4-7 meses de edad que

anteceda a la floración

Hojas de la parte basal del brote 30-50

MANZANO (Malus spp.)

8-10 semanas después del botoneo

HMRM 40-50

PAPAYA (Carica papaya)

Entre 3-4 meses después del trasplante (fase de

fructificación)

Pecíolos de hojas jóvenes totalmente expandidas que tengan flores abiertos

recientemente 30-40

PERA (Pyrus communis)

Mitad de verano HMRM en la mitad del retoño 50-70

PIÑA (Ananas comosus) Inicio de floración HMRM sin la base blanca 30-45

PLÁTANO (Musa sp.)

Plantas próximas a la floración (parición) o recién emergidas del

racimo

Lámina central de la hoja número 3 contadas de arriba hacia abajo 5-10

UVA (Vitis rotundifolia)

Mitad o después de verano y antes del llenado de fruto

HMRM junto al racimo de frutos 50-70

UVA (Vitis labrusca e hybrids)

Pleno botoneo Pecíolos 70-90 UVA (Vitis vinífera)

Junio-Julio Hojas completas 50-70 Pleno botoneo Pecíolos 70-90

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Cuadro 5. Guía de muestreo foliar de otros cultivos.

Cultivo Etapa de muestreo Órgano de muestreo Tamaño de muestra

CAFÉ (Coffea arabica)

General Hojas en ramas sin frutos 40-50 hojas Inicio de floración en

árboles maduros Hojas en ramas con frutos en

la parte superior del árbol 40-50 hojas

CAFÉ (Coffea caephora)

Inicio de floración en árboles maduros

Hojas en ramas con frutos en la parte superior del árbol 40-50 hojas

CACAO (Theobroma cacao) 4 a 8 semanas posteriores a la máxima floración

2da y 3ra hoja completamente verde más próxima a retoños 20-25 hojas

CAÑA DE AZÚCAR (Saccharum officinarum)

Hasta cuatro meses de edad

3a o 4a hoja completamente desarrollada desde la parte superior de la planta, 20 cmporción central de la hoja descartando la

nervadura central

15-25 hojas

Tamaño de la muestra. La cantidad final de muestra requerida para el análisis en el laboratorio debe rebasar siempre los 50 g una vez seca y molida, por lo que en planta pequeña el número de plantas a muestrear puede ser mayor al indicado. La muestra debe representar la situación existente en el campo o invernadero, es decir, se debe de hacer el muestreo al azar en todo el lote, evitando las orillas.

Toma de muestras y preparación para su envío al laboratorio

a. La muestra debe ser representativa de la población de plantas existentes en el campo o invernadero.

b. Los tejidos muestreados deben de ser de la misma edad, posición y origen, así como del mismo tipo de crecimiento.

c. Las muestras físicas deben ser llevadas inmediatamente al laboratorio para ser lavadas antes de someterlas al proceso de secado.

d. Si las muestras se van a enviar al laboratorio por paquetería y tomará varios días el envío-recepción, es recomendable lavar la muestra inmediatamente después de tomarla, sobre todo si se aplicó un fertilizante foliar o un agroquímico que contenga alguno de los elementos que se van a analizar.

Figura 4. Muestreo de la hoja más recientemente madura y completamente expandida de una planta de jitomate.

e. Se recomienda lavar las muestras con un detergente libre de fosfatos1 a una concentración de 2%, luego se enjuaga durante 5 ó 10 segundos, y enseguida se lleva a un recipiente con agua limpia donde se elimina el exceso de detergente por otros 5 segundos. Si la operación se realiza con varias muestras hay que tener un tercer recipiente para dar una segunda enjuagada que no debe durar más de 5 o 10 segundos (preferentemente con agua desionizada). Enseguida se escurre la muestra y se le elimina el exceso de agua con papel toalla para evitar pudriciones durante el traslado. Es recomendable orear la muestra para eliminar la humedad superficial que pueda tener y colocarla en una bolsa de papel (no

1Hycel de México S.A. de C.V. Tel. 5552080026 e-mail: [email protected]

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de plástico). Si las hojas son suculentas y el traslado durará varios días, es recomendable deshidratarlas un poco antes del envío.

Identificación de la muestra.

En la bolsa que contiene la muestra se anotan los siguientes datos:

a. Nombre y dirección de quien envía la muestra, teléfono, fax y correo electrónico de preferencia, así como datos para facturación.

b. Cultivo, etapa fenológica y edad del cultivo al momento del muestreo.

c. Órgano muestreado: hoja completa, pecíolo, etc.

d. Sector del predio, tabla y rancho o propiedad. Se recomienda identificar cada muestra con un número, y anotar a la vez el número total de muestras; por ejemplo, muestra número 5 de un total de 12. Es importante conservar la lista de muestras enviadas al laboratorio.

Muestreo de Agua Para el análisis de muestras de agua de pozo, manantial o de lluvia se requieren de 250 a 500 ml para facilitar el traslado al laboratorio. La muestra debe ser homogénea y representativa de la fuente de agua que se desea analizar. En el caso de agua de un pozo, es necesario tomar la muestra del pozo directamente, después de que haya estado trabajando al menos media hora, nunca utilizar agua estancada.

La muestra se deposita en una botella limpia que no haya contenido cloro u otros productos químicos, para no contaminar el agua muestreada. Se aconseja enjuagar la botella varias veces con el agua a muestrear. La botella debe llenarse completamente y cerrarse procurando dejar el menor volumen de aire en su interior. Para prevenir variación en las características físico-químicas de la muestra, ésta se debe enviar al laboratorio lo más pronto posible. Cada muestra debe llevar una hoja de identificación, que puede ir a manera de etiqueta, o dentro de una bolsa o caja donde se deposite la muestra para su traslado al laboratorio.

Identificación de la muestra.

En la muestra se deben anotar los siguientes datos:

a. Nombre y dirección de quien envía la muestra, teléfono, fax y correo electrónico de preferencia, así como datos para facturación.

b. Rancho o propiedad, tipo de agua (de manantial, de pozo, de lluvia), temperatura del agua, profundidad del pozo.

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¿A dónde enviar la muestra?

Le recomendamos que la muestra sea enviada a Fertilab, El Laboratorio de análisis de suelos, plantas, aguas, solución nutritiva y sustratos hortícolas, ubicado en el Centro de México, con capacidad para brindar un servicio CONFIABLE, rápido y eficiente, a nivel nacional e internacional.

Nuestra Misión

Ofrecer a los clientes un servicio de análisis de suelo, planta, agua y sustratos, oportuno y de la más alta calidad, enfocado a incrementar el rendimiento y la productividad de la agricultura a lo largo y ancho de México.

Nuestra Visión

Ser una empresa líder en México, en el campo de la analítica agrícola, mejorando constantemente nuestra calidad y servicio para satisfacer plenamente a nuestros clientes.

¿Qué servicios analíticos prestamos?

a. Análisis de suelo

b. Análisis de agua

c. Análisis nutrimental de planta

d. Análisis de extracto de pasta

e. Análisis de solución nutritiva y drenaje

f. Análisis de sustratos hortícolas

Tiempos de entrega de resultados

a. Planta y suelo: 5 días hábiles.

b. Agua y solución nutritiva: 72 horas

c. Sustratos: 10 días hábiles

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Metodologías de análisis a. Suelo

o pH, en Agua 1:2 y carbonatos totales

o Materia orgánica: Walkley y Black

o Cationes de cambio Ca, Mg, Na, K: Acetato de amonio

o Al, H y pH Buffer en suelos ácidos

o Fósforo disponible: Olsen o Bray, según el suelo

o Fe, Mn, Cu, Zn: Método de extracción DTPA

o Boro: agua caliente

o Salinidad en el extracto de pasta

o Textura

o Conductividad hidráulica

o Color Munsell

b. Planta

N, P, K, Ca, Mg, Fe, Cu, Zn, Mn, B, Cl, Na.

c. Agua

CE, pH, Ca, Mg, Na, K, Cl, HCO3, CO3, SO4, B.

d. Solución nutritiva y drenaje de invernadero

CE, pH, Ca, Mg, Na, K, Cl, NO3, HCO3, CO3, SO4, H2PO4, Fe, Mn, Zn, Cu, B.

e. Sustrato

Curva de liberación de agua por técnica De Boodt, granulometría, capacidad de retención de agua, capacidad de aireación, densidad aparente, densidad real.

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Sistema de reporte de resultados

Disponemos de un sistema de reporte de resultados muy comprensible, que le indica el nivel del nutrimento y su interpretación en un gráfico a colores para su mayor comodidad.

Experiencia

Somos un laboratorio con un gran sentido de profesionalismo, con personal altamente capacitado y con posgrado, tanto en el área analítica, como en el área agronómica, con años de experiencia de campo, en el tema de consultoría en ANÁLISIS QUÍMICO APLICADO A LA AGRICULTURA, fertilidad de suelos y nutrición vegetal.

Control de calidad

Nuestro sistema de control de calidad es sumamente riguroso y eso explica la razón de nuestro lema: “La excelencia en Calidad Analítica”. Participamos activamente en programas de inter-comparación a nivel nacional e internacional, para asegurar la calidad analítica de nuestro laboratorio. Esto nos da la confianza de ofrecer un análisis verificado y con mínimo riesgo de errores.

Equipo con que cuenta

Absorción atómica, espectrofotómetros, destiladores, analizadores de iones, y todo lo necesario para brindar un servicio de la más alta calidad.

Dirección: Pablo A. de la Garza # 109-A Frac. Siglo XXI CP 38024 Celaya, Guanajuato México

Entre el Eje Norponiente y el Hospital General de Celaya, a media cuadra del hospital.

Tel. y Fax (461) 614 5238, 614 7951 Email: [email protected] [email protected] Web: www.fertilab.com.mx

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