Manual de Practicas de Identificacion de Leucenias (Diana F. P)

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Práctica # 1 Recuento de glóbulos blancos Introducción: En el estudio de biometría hematica se incluye el conteo de glóbulos blancos que tiene una gran importancia cuando el paciente tiene alguna alteración fisiológica. Es la técnica que se emplea para la determinación de leucocitos, se utiliza el liquido de turck que contiene el ácido acético, el cual destruye los eritrocitos, facilitando la cuenta de leucocitos. Equipo: Microscopio Agitador de pipetas Equipo de extracción sanguínea Material: Camarilla de neubauer Pipeta de thoma para blancos Tuvo con anticoagulante Sustancias: Liquido de turck Solución salina al 0.9% Material biológico: Sangre completa

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Práctica # 1Recuento de glóbulos blancos

Introducción:En el estudio de biometría hematica se incluye el conteo de glóbulos blancos que tiene una gran importancia cuando el paciente tiene alguna alteración fisiológica.Es la técnica que se emplea para la determinación de leucocitos, se utiliza el liquido de turck que contiene el ácido acético, el cual destruye los eritrocitos, facilitando la cuenta de leucocitos.

Equipo:MicroscopioAgitador de pipetasEquipo de extracción sanguínea

Material:Camarilla de neubauerPipeta de thoma para blancosTuvo con anticoagulante

Sustancias:Liquido de turckSolución salina al 0.9%

Material biológico:Sangre completa

Objetivo:El alumno realizara la cuenta de glóbulos blancos extrayendo el mismo la muestra.

Metodología:1-mezcle cuidadosamente la sangre problema.

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2- en la boquilla coloque la pipeta de thoma, aspire muestra hasta la marca 0.5 cuidadosamente con la gasa retire el exceso de sangre que haya quedado9 en los bordes de la pipeta.3- introducir la pipeta en el tubo que contenga el líquido de turck y absorba hasta la marca 11 (dilución 1.20).4- mezcle la pipeta por dos minutos.5-deseche las primeras 4 gotas.6- colocar una pequeña gota cerca del extremo de la cámara para que por capilaridad se llene exactamente.7-deje reposar por espacio de 3 minutos para que sedimenten las células. 8- cuente los glóbulos blancos, en los cuatro cuadros grandes de los extremos.9- una vez realizado el conteo realice sus cálculos.

Cálculos:

Leucocitos/mm³_ leucocitos contados x profundidad x área x dilución

El factor 50 resulta de considerar:El factor de profundidad……..= 10 El factor de área………………= ¼ 10 x ¼ x 20 = 50El factor de dilución…………..=20

Actividades complementarias

Valores normales 5,000 – 10,000/mm³

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Hacer los cálculos

Nombre del paciente: Neftali Alberto GonzalesResultado: 7,200/mm³

A= 34B=46C=23 144 x 10 x ¼ x 20 = 7,200mm³D=41 144

Nombre del paciente: “C”Resultados: 5,100/mm³

A= 18B= 40C= 29 102 x 10 x ¼ x 20= 5,100mm³D= 15 102

Observaciones: en esta práctica no se nos dificulto a la hora de realizar la metodología y todo lo realizamos al pie de la letra.

Conclusiones: aprendimos a observar los glóbulos rojos y tambien de que el reactivo de turck ayuda a la destrucción de los glóbulos rojos.

PRÁCTICA# 2 DIFERENCIAL

Introducción:

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La práctica de frotis sanguíneo, es de gran importancia en hematología ya que el diagnostico de muchas enfermedades hematológicas puede realizarse con solo observar las características morfológicas de las células sanguíneas, de manera que esto no se debe ser excesivamente grueso ni excesivamente fino. Todas las láminas por usar, sobre todo nuevas, deben ser limpiadas con algodón y alcohol al 70% para eliminar la grasa que viene adherida.La información que nos proporciona la cuenta diferencial en un frotis de sangre periférica es de suma utilidad.Es importante recalcar que los resultados que se obtengan dependen de la buena calidad de la extensión y de lo bien teñida que quede la misma.

Equipo:MicroscopioPiano para la cuenta diferencialEquipo de extracción sanguínea

Matrerial:Charola de tinción

Sustancia:Colorante de WrightBufferAceite de immersion

Material biológico:Sangre completa

Objetivo:

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Que el alumno realize correctamente una extensión de sangre periférica, y la coloree efectuando la cuenta diferencial de células blancos

Metodología:1- revise cuidadosamente que los portaobjetos

estén completamente limpios y libres de grasa.2- Una vez estraida la sangre, se mezcla

adecuadamente y se coloca una pequeña gota de sangre sobre uno de los extremos dl portaobjetos

3- Colocar el canto de otro portaobjetos haciendo un angulo de 45°, tocando la gota de sangre por la parte de abajo del 2 portaobjetos, dejar que se extienda a lo largo de este porta, inmediatamente deslizar suavemente y a velocidad moderada hasta que la gota de sangre se extienda.

TINCION CON WRIGHT

1- colocar la preparación en la charola de tincion, se cubre con el colorante Wright, dejandolo por espacio de 5 min.

2- Posteriormente se añade solucion amortiguadora en partes iguales hasta obtener un brillo metalico, dejando 6 min adicionales.

3- Finalmente se lava con agua corriente y se deja secar.

4- Observamos al microscopio en 40x y 100x

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RESULTADOS

Nombre del paciente: Neftali Alberto Gonzales

DETREMINACION RESULTADOLinfocitos 41Monocitos 10Eosinófilos 5Basófilos 1Neutrófilos 43

Nombre del paciente: ¨C¨

DETREMINACION RESULTADOLinfocitos 20Monocitos 5Eosinófilos 1Basófilos 2Neutrófilos 72

MORFOLOGIA DE LOS GLÓBULOS BLANCOS

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PRÁCTICA # 3 “LEUCEMIAS AGUDAS”

Introducción:La leucemia aguda consiste en el incremento descontrolado de células hematopoyéticas o células madres (formadoras de snagre) incapaces de madurar adecuadamente, que llegan a invadir la mayor parte de la totalidad de la médula ósea, tras la cual alcanza la sangre periferica y, a veces, se

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produce focos extramaticos, en uno o varios organos del cuerpo, que se comportan como tumores.

Objetivo:El alumno aprendera a identificar las diferentes células al igual que su morfologia.

Material:MicroscopioAceite de inmersiónLaminillas

Metodología:1- elegir una laminilla, anotar datos del paciente,

n. de blancos.2- agregar una gota de aceite de inmersion3- observar y anotar

Resultados:

6 añosPresenta fagotitos y monocitosBlancos 11.92x103

Leucemia mieloideImagen: neutrófilos con bastones de ever.

Francisco santos Presenta monocitosBlancos 8.50x103 / ulLeucemia mieloideImagen: monocitos

Fernando Santos GarciaBlancos 14.16x108 / ul

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Leucemia mieloideImagen: neutrofilo enorme atipico

Gerardo Presenta: celulas inmaduras y fagocitosisBlancos: 24.53x103 /ulImagen: inclasificable

DesconocidoPresenta: blastos sin diferenciaciónLeucos: 89.18 x108 / ulSegmentados. 0Linfocitos:0Monocitos:0Eosinófilos: oBasófilos: 1.0412%

NOMBRE CELULASINVOLUCRADAS

DIBUJO REACCION TONTOREAL

M0 Blastos tamaño pequeño o mediano sin granulacion plasmatica

Es negativa a la Vinción MPV pacida

Es positivo MPX

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M1Mieloblástica inmadura

Blastos con poca evidencia de maduración mas alla de la etapa

cloroacetato y es negativo a ANAE

M2Mieloblástica madura

Blasticos sudanofilas positivas para mieloperoxidasa y cloro acetato esterosa

Es positivo en MPX cloroacetato y es negativo a ANAE

M3Promielocitica

Las celulas se parecen a los promielocitos, tienen grandes granulos atipicos y un nucleo en forma de riñon

Es positivo en MPX cloroacetato y es negativo a ANAE

M4 Mieloblástica

Celulas tanto mieloblasticas como monoblasticas en la sangre y en la medula

Es positivo en MPX cloroacetato y es negativo a ANAE

M5Monoblastica

Son grandes el conciente nuclear citoplasmatico es menor que el mieloblasto

Es positivo en MPX ANAE y es negativo a cloroacetato

M6Eritroblastica

Las celulas son eritroblastos anormales en abundancia

Positivo en PAS Negativo en MPX ANAE cloroacetato

M7Megacarioblastica

Blastos pequeños concito plasma granular palido y vesiculas citoplasmaticas

Es positivo en MPX ANAE y es negativo a cloroacetato

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L1Linfoblastica

Cromatina nuclear muy fina

Positivo en PAS Negativo en MPX ANAE cloroacetato

L2Linfoblastica atipica

Blastos de mayor tamaño con morfologia variada

Positivo en PAS , p. acidoNegativo en MPX ANAE cloroacetato

L3 Parecida al linfoma burkit

Variación en forma y tamaño de estas celulas

Positivo en PAS, p. acidoNegativo en MPX ANAE cloroacetato

EVALUACION

1- MENCIONA 4 TIPOS DE TINCIONES PARA LEUCEMIAS Pas, peroxidada, fosfata alcalina, negro sudan

2- dibuja una celula leucemica teñida con cada una de las tinciones que mencionaste.

3- ¿Cómo diferenciamos una leucemia de una reaccion leucemoide? Es un incremento de glóbulos blancos, similar a la que ocurre con las personas con leucemias, sin embargo la reaccion se debe realmente a una infeccion o a otra patologia y no es un signo de cancer.

4- proporciona el nombre de 4 reacciones leucemoides meningitis, tos ferina, mononucleosis, tuberculosis

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PRÁCTICA# 4 RECUENTO DE PLAQUETAS

Introduccion:Los trombocitos constituyen el elemento forma mas pequeño de la sangre.La plaqueta de la sangre producida en la medula osea y con vida de 9 dias interactua con el endotelio vascular lesionado, produciéndose activacion, adherencia y agregación plaquetaria que forma un tapon de fibrina estable. Para que ocurra adherencia plaquetaria se requiere el factor de von willebrond, molecula asociada al factor VIII que actua como puente entre las superficie plaquetaria.

Objetivo:El alumno realizara el recuento de plaquetas, proporcionandole el material y el equipo necesario.

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Equipo: MicroscopioAgitador de pipetasCamarilla neubaberEquipo de extracción sanguinea

Material:Tubos PortaobjetosCaja petriPipeta de thoma para rojosGasa

Sustancia:Oalato de amonio al 3%Solucion salinaAceite de inmersionBufferWright

NOTA:1- evitar contamibnar la solucion de oxalato con sangre2- si en la pipeta se hacen burbujas descartar y volver a

realizar

CUNTA DE PLAQUETAS EN CAMARILLA NEUBAUER

Metodología:1- aspire la muestra debidamente homogenizada hasta la

marca 0.5 8limpiar)2- aspire el reactivo hasta la marca 10.1 (limpiar)3- agite constantemente por 5 min.4- Descarte las primeras 4 gotas5- Cargue la camarilla con la muestra6- En una caja petri, con un papel húmedo poner la

camarilla a reposar por 5 min.7- Observe al microscopio.

RECUENTO DE PLAQUETAS EN FROTIS SANGUINEO

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1- revise cuidadosamente que los portaobjetos estén completamente limpios libres de grasa.

2- Se coloca una gota de sangre sobre uno de los extremos del porta.

3- Deslizar suavemente y a velocidad moderada hasta que la gota de sangre se extienda.

4- Colocar Wright, dejandolo por espacio de 5 min5- Añadir el buffer, dejandolo 2 min, adicionales.6- Se lava con agua corriente y se deja secar7- Observamos al microscopio

RESULTADOS

Camarilla neubauer

Nombre del paciente: Rosalia Salinas RoizResultado: 4,900/mm³

Frotis sanguineo

Nombre del paciente: desconocido Resultado: 3,700/mm³

Nuestro paciente anda normal en su cuenta de plaquetasEvaluacion:

1- menciona otra técnica para el recuento de plaquetas.en frotis sanguineo

2- ¿Cuáles son los valores normales de plaquetas? 150,000 – 400,000 /mm³

3- menciona 2 enfermedades que causan baja de plaquetasleucemias, varicelas, lupus, cancer

Observaciones:

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Tubimos algunos problemas a la hora de contar las plaquetas ya que los reactivos no lograban que viéramos bien las plaquetas.

Cloncusiones: Aprendi a identificar las plaquetas tanto en la camarilla neubauer como en el frotis.

PRACTICA # 5TIEMPO DE COAGULACIOIntroduccion:El tiempo se sangrado mide la fase primaria de la hemostasia la interaccion de las plaquetas con la pared del vaso sanguineo y la formación del tapon hemostatico. El tiempo de sangrado constituye la mejor prueba para detectar alteraciones de la funcion plaquetaria y es uno de los principales estudios en los trastornos de la coagulación. El tiempose sangrado es una prueba muy util para detectar anormalidades vasculares y mas o menos utiles para detectar anormalidades plaquetarias. Se utiliza principalmente para el diagnostico de la enfermedad de von willebrand. Existen dos metodos de duke ivy.

Objetivo:El alumno aprendera la realización del metodo de sangrado de Duke.

Material: Lanceta esteril

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EterFiltro de papelCronometro

Metodologia:

METODO DE DUKE

1- limpie con algodón el dedo anular, re realiza la puncion con lanceta desechable hasta introducir la totalidad de la punta ( recuerde que la puncion debe hacerse con una maniobra rapida y segura disminuyndo el dolor)

2- una vez realizada esta, se comienza a contabilizar el tiempo. La sangre debe fluir libremente sin ningun tipo de presion, dejando que gote sobre un papel filtro el cual se movera de tal manera que cada gota caiga en una area limpia.

3- Cuando la salida de la sangre se va haciendo lenta y ya no caen mas gotas sobre el papel, se tocara la herida nuevamente, con intervalos de 15 segundos.

4- Cuando la sangre no tiña el papel, re registra el tiempo transcurrido.

Resultados: Comunique el tiempo de sangrado redondeandolo al medio minuto mas cercano.Observaciones:Si el tiempo de sangrado se prolonga examine una extensión de sangre teñida según el metodo deromanowsky para observar si las plaquetas son escasas.

Interpretacion del resultado:El valor de referencia del tiempo de sangria según este metodo es de 1-4 minutos.

METODO DE IVY

Principio:

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Mediante esta prueba se estudia la adhesión de las plaquetas al endotelio vascular y su capacidad para formar el trombo plaquetario que detiene la hemorragia a nivel de un vaso de pequeño calibre.

Materiales:EsfingomanometroLancetaCronometroPapel wathman n. 1Vendita compresivaAlgodón y alcohol

TÉCNICA1- exponer el antebrazo del paciente y escoger una zona

libre de venulas, hematomas, heridas y otros. 2- Limpie con alcohol la zana escogida3- Coloque el tensiometro en el brazo del paciente y

regulelo a 40 mm Hg.4- Se extrea la lanceta de su reservorio esteril y se quita

el seguro. No deben pasar mas de 30-60 segundos entre la inflada del tensiometro y la producción de la incisión.

5- Se presiona el disparador al mismo tiempo que el cronometro y un segundo después retire el dispositivo

6- Cada 30 sugundos secar con el papel de filtro, no tocar los bordes de la incisión para no interferir con el tapon plaquetario. Se anota el tiempo de sangrado.

Interpretacion del resultado:El valor normal del tiempo de sangrado según esta metodologia es de 2-8 minutos.

RESULTADOS:Al seguir la metodologia nuestro resultado fue un valor normal ya que el tiempo que tardo nuestro compañero en dejar de sangrar es de 5 minutos 51 segundos.

Nombre del paciente: Hugo SanchezResultados: 5 min 51 seg

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Observaciones:Cuando estabamos realizando el metodo de duke no se nos presentoningun problema y todo se realizo correctamente

Conclusiones:Por mi parte aprendi a realizar el metodo de duke aprendiendo el tempo normal del sangrado, siguiendo paso a paso la metodologia.

Evaluación;1- ¿Qué mecanismos de coagularon mide la prueba de sangrado?

La fase primaria de la hemostasia, la interaccion de las plaquetas con los vasos sanguineosy la formación del tapon hemostatico.

2- ¿en que estados patologicos se puede prolongar el tiempo de sangrado?Anomalias vasculares, trombocitopenia

3- menciona el metodo de coagulación de lee & White 1- partimos de dos tubos de cristal introducidos en un baño maria

a 37° C 2- depositamos aproximadamente 1 ml de sangre sin

anticoagulante en cada tubo y ponemos el cronometro.3- Uno de los tubos se saca del baño maria cada 30 segundos y

se inclina para ver si fluye la sangre.4- Cuando la sangre no fluya, se saca el segundo tubo del baño

cada 15 segundos,cuando la sangre no fluya se para el cronometro y se anota el tiempo.

5- Valor de referencia 5-12 minutos4- menciona otra técnicametodo de ivy

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Práctica # 6 Tiempo de coagulación

Introducción:Este examen mide la cantidad de tiempo que su sangre toma para coagular. Este proceso es debido, en ultima instancia, a que una proteina soluble que normalmente se encuentra en la sangre, el fibrinogeno.El fibrinogeno, una vez transformado, recibe el nombre de fibrina.Coagulación es por lo tanto, el proceso enzimatico por el cual el fibrinogenosoluble se convierte en fibrina insoluble, capaz de polimerizar y entrecruzarse.

Objetivo:El alumno aprendera la realización del tiempo de coagulación aplicando la metodologia correctamente.

Material.LancetaCronometroPapel filtroCapilares

Metodologia:

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1- realice la puncion capilar usual2- inicie el conteo de tiempo3- inmediatamente llene 3 capilares dentro de 30

segundos4- coloquelos en el orden que fueron llenados5- exactamente a los 3 minutos después que inicie e

conteo de tiempo, tome el primer capilar y quiebren un pedazo. Observe por la formación de fibrina.

6- Continue quebrando cada tubo cada 15 segundos hasta que aparesca la fibrina

7- Cuando aparesca la fibrina pare el cronometro.

Resultados:

Nombre del paciente: Rosalia Salinas RoizResultado: la fibirna aparecio a los 7 min

Valores normales 3 – 6 minutos

Observaciones:No hubo ningun problema a la hora de realizar nuestra practica

Conclusiones:Aprendi la realización del tiempo de coagulación al igual que el rango del tiempo de los valores normales

Evaluacion:

1- ¿Cuáles son los mecanismos que intervienen en el proceso de la coagulación?

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Intrinseco y extrinseco

2- menciona alguno casos en los que se prolonga la prueba de coagulación de la sangre

corticosteroides, administración de anticoagulantes

3- ¿Cuáles son los factores que intervienen en el mecanismo intrinseco para la coagulación?

Factor XII, XI, IX, XIII, VIII

4- menciona los valores normales de las diferencias técnicas de coagulación

3-6 minuto

Práctica # 7 Tiempo de sangrado y coagulación

Introducción.Este examen mide la cantidad de tiempo que toma el sangrado para pararse cuando la piel recibe un corte. Este examen se usa para evaluar la capacidad de su sangre de formar coagulos para dejar de sangrar.El tiempo de coagulación es un examen que mide la cantidad de tiempo que su sangre toma para coagular. Este examen puede ser usado para supervisar el tiempo de coagulación cuando heparinaes usada.

Objetivo:El alumno realizara el tiempo de sangrado y coagulación combinando ambas técnicas, tratando de diferenciar una de la otra.

Material:LancetaPapel filtroCapilaresCronometro

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Metodologia:

1- realice la puncion usual en el medio dedo, iniciando el ccronometro cuando aparezca la primera gota.

2- Limpie con papel filtro e inmediatamente llene 2 o 3 capilares es no mas de 30 segundos.

3- Coloquelos a un lado, en el orden que fueron llenados.4- Continue limpiando la sangre en la puncion cada 15

segundos, hasta que el sangrado pare registre el tiempo de sangrado, pero no pare el cronometro ( puede ser que sangre mas de 3 minutos) y el tiempo de coagulación debe empezar a los tres minutos.

5- Exactamente a los 3 minutos iniciar cortando tubo por tubo cada 15 segundos hasta que aparesca la sobrina. Detener el reloj y registrar el tiempo de sangrado.

Resultados:

Nombre del paciente: Hugo SanchezResultado: Tiempo de Sangrado= ¨5,51”min Nombre del paciente: Rosalia Salinas RozResultado: Tiempo de Coagulacion= ¨7” min

Valores normale

T.Sangrado = 1-3 min. T.Coagulacion= 3-6 min.

Observaciones:

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Realizamos una buena metodologia sin que se nos presentara ningun error.

Conclusiones:Obtuvimos buenos resultados ya que realizamos todo al pie de la letra.

Practica #8 Tiempo de protrombina

Introducción:Los factores de coagulación se miden habitualmente en forma indirecta mediante la determinación del tiempo de protrombina.El tiempo de protrombina mide la funcion de la via extrinseza y comun de la coagulación, dada por los factores XIII, I, II, X, V, VII, mediante la adicion de tromboplastina (factor tisular) al plasma. Se evalua el tiempo de formación del coagulo en segundos sobre el tiempo que toma el plasma normal.

Objetivo:El alumno aprendera a realizar la practica del tiempo de protrombina siguiendo adecuadamnte la metodologia.

Material:Baño mariaPipetaTubos

Sustancia:Tromboplastina tisular

Material biologico:Sangre completa

Metodologia:

1- reconstruir el ractivo (tromboplastina tisular)

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2- pipetear exactamente 0.2 ml de tromboplastina en 4 tubos.

3- Colocar 0.5 ml de plasma en otro tubo.4- Cuando esten listos para iniciar, colocar todos los

tubos en el baño maria.5- Pipetear 0.1 ml del plasma tibio en el primer tubo de

tromboplastina e iniciar la cuent5a de tiempo6- Agitar energéticamente el tubo en el baño maria por 7

segundos.7- Agitar el tubo agitando suavemente hasta que

aparesca la sobrina. Parar el tiempo y anotar.8- Repetir el paso 5,6 y 7 en los demas tubos hasta que

el rango de diferencia sea de 1 segundo9- El tiempo normal depende del procedor.

Nota: No es neceario que el paciente este en ayunas.Realizar el examen antes de las 24 horas de la recoleccion de la muestra, para evitar la desnaturalizacion del fibrinogeno.

Resultados:

Nombre del paciente: Neftali Gonzalez Resultados: 12.49 segundos

Observaciones:Al tercer tubo le falto plasma y el cuarto tubo se cayo la puntilla dentro de el.

Conclusiones:Nuestro compañero salio fuera del rango normal pero fue por lo que sucedió en el tercer tubo ya que la fibrina tardo en apareser

Evaluacion:

1- ¿Qué anticoagulante se uiliza para obtener plasma en la determinación del tiempo de tromboplastina?

Citrato

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2- ¿en que parte del organismo se sintetiza la protrombina?

En el higado

2- ¿Qué vitamina es esencial para el proceso anterior?Vitamina k

3- ¿Cuáles son los valores normales del tiempo de protrombinaDe 11-14 segundos o de 12-15 segundos

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PRACTICA # 9TIEMPO DE TROMBOPLASTINA PARCIAL ACTIVADA (ATPP)

Introducción: Es un examen que mide la capacidad de sangre para coagular, específicamente la via intriseca ( que implica el factor IX y cofactores) y la via comun de la coagulación. Ademas de encontrar anormalidadesde la coagulación el APTT se usa tambien para controlar el efecto del tratamiento con heparina, uno de los anticoagulantes mas utilizados.

Objetivo:Que el alumno aprenda a realizar el examen de tromboplastina parcial activada.

Material:Baño mariaPipetaPuntillasTuboscronometro

sustancia:reactivo de APTT cloruro de calcio

material biologico:sangre completa

metodologia:1-colocar un tubo en el baño maria con suficiente cloruro de calcio para correr las muestras.

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2- pipetear 0.1 ml de tromboplastina activada en varios tubos.3- colocar uno de los tubos anteriores en el baño maria por 2 minutos.4- pipetear 0.1 ml de plasma en el tubo anterior y regresar al baño por 3 minutos (mezcla rmuy bien antes de incubar)5- agregar 0.1 ml de cloruro en el tubo anterior y poner en marcha el cronometro.6- rapidamente mezclar la solucion y regresarla al baño maria.7- después de 30 segundos exactos sacar el tubo y agitarlo suavemente hasta que se formen las tirillas de fibrina.8- como en la mayoria de las pruebas de coagulación, cada muestra debera correrse por duplicado, por lo tanto repetir los pasos del 3-8 con los demas tubos. Los duplicados deberan coincidir en un rango de 3 segundos.9- si el plasma del paciente se coagula cuando se extrae del tubo del baño después de 30 segundos. REPORTAR EL TIEMPIO DE ATTP COMO MENOS DE 30 SEGUNDOS.

RESULTADOS:

Nombre del paciente: Neftali GonzálezResultados: 1- ¨40” 2 -¨43”

VALORES NORMALES 35- 43

Nuestro compañero salio normal

Observaciones:En la realización de esta practica no se nos presento ningun problema ya que realizamos la metodologia paso por paso de forma correcta.

Conclusiones:Al termino de esta practica obtuvimos buenos resultados y aprendi a realizar esta prueba.

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PRACTICA# 10RETRACCION DEL COAGULO

Introduccion:Cuando la sngre se coagulalos signos de fibrina forman esta accion con adhesión por si mismo causa que las plaquetas se activen. Bajo estas cndiciones las plaquetas liberan una sustancia que estimula la activacion de los factores de cpagulacion los cuales comienzan a unirse unos con otros. La funcion de las plaquetas pegajosas es ayudar a mantener ayuda en el area de la lesion y empujar una a otras al coagulo para que el tapon mantenga el area pequeña. Este proceso de contraer el coagulo para compactarlo es denominado retraccion del coagulo. Ademas de las multiples habilidades de las plaquetas, la retraccion del coagulo tambien depende de la cantidad de trombina y fibrinogeno presente, la condicion del sistema vascular (tubo) y el volumen de las celulas rojas.

Objetivo.Que el alumno aprenda la realización de la prueba de retraccion del coagulo.

Material.Tubo sin anticoagulante AplicadoresBaño maria Equipo de extracción sanguineaGradilla

Material biologico:Sangre completa

Metodologia:1- realizamos la toma de muestra en tubos sin

anticoagulante2- colocar un aplicador de madera dentro del tubo y

dejarlo a temperatura ambiente hast que coagule.3- Tomar el tubo y girarlo hacia abajo observando que la

sangre no fluya y es cuando esta coagulado

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4- Ya coagulado colocar el tubo en baño maria, chocando bien que el nivel del agua cubra totalmente la sangre del tubo.

5- Checar el tubo para la retraccion del coagulo a la hora y posteriormente a las 2 horas, haciendo un chequeo final a las 24 horas. La retraccion del coagulo debera iniciar a la hora y estara completa a las 24 horas, si esto no secede debera ser reportado.

6- El coagulo debera ser firme y estable y debera ocupar proximandamente la mitad del tubo. Si esto no secede debera reportarse.

7- Extraer el coagulo y centrigugar el tubo. Debera presentarse un pequeño volumen de celulas libres en el fondo del tubo, y cerca de 2-3 mm de suero en el tubo.

8- Cualquier variación debera ser reportada como normal.

Resultados:Nombre: Monica Judith Kleiman Hdz.-Después de las 2 horas, cuando revisamos el tubo el coagulo no se habia formado.- al volver a checar a las 24 horas, nos dimos cuenta que las hormigas se habian comido el caogulo.- no logramos terminar la practica

Observaciones:Tubimos problemas ya que nuestra sangre no queria coagular

Conclusiones:No obtuvimos los resultados que esperabamos.

PRACTICA# 11

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FRAGILIDAD CAPILAR

Introducción:Esta prueba se realiza para determinar la fragilidad de las paredes capilares, y asi estimar la tendencia a la hemorragia, y ayudando a conocer la trombocitopenia.Los valores normales se estiman con la aparicion de petequias de 0-10 en un area de 5 cm.Los resultados anormales pueden indicar coagulación intravasculas difusa, disminución de la trombina deficiencia del factor VII, trombocitopenia, enfermedad de won willebrand, deficiencia de la vitamina K y de cual forma puede estar relacionado con otros transtornos de la coagulación debido a la fiebre escarlatina, pretensión, diabetes, gripe, sarampión y escorbuto.

Objetivo:Que el alumno aprenda la realización de la prueba de fragilidad capilar.

Material:CronometroTorniquete

Metodologia:

1- mantener elevada la presion de un miembro por un periodo de 5 minutos.

2- Realizar el recuento de petequias( pequeñas manchitas entre rojo y morad hemorragicoa) en un area de 5 cm.

Interpretación de resultados:

Positivo = petequia mayor a 10 1+= algunas petequias 2+= alguna petequias en la cara anterior del brazo 3+= multiples petequias en todo el brazo y la porcion superior de la mano. 4+= petequias confluentes en todas las areas del brazo y la porcion superior de

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De la mano.

En esta prueba se reporta en cruces de 1+ - 4+

Resultados:

Alan 4 petequias= 1+Angela 10 petequias= 4+Rosalia 7 petequias= 2+

Observaciones:No tubimos ningun problema ya que la prueba era muy facil

Conclusiones:Obtuvimos buenos resultados y aprendí a identificar las petequias

PRÁCTICA# 12LEE Y WHITE

Introduccion:

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El método de Lee y White se utiliza para calcular el tiempo de coagulación. En este método se empieza a contar en el momento de la extracción.Esta prueba suministra un indicio aproximado de la eficacia global del mecanismo intrínseco de la coagulación. Se encuentran tiempos prolongados en la hemofilia clásica y en la deficiencia del factor IX durante la hemorragia. La prueba carece de valor para las insuficiencias ligeras de distintos factores, por que basta una cantidad pequeña de trombina para producir un coágulo de fibrina. Es menos útil para las anomalías de las ultimas etapas de la coagulación (factores V, X o II), pues dichas etapas son rápidas en comparación con las primeras.

La coagulación requiere solamente un pequeño número de plaquetas normales, por lo tanto, el tiempo de coagulación es normal en la púrpura trombocitopénica.

Objetivo:El alumno realizara el tiempo de coagulacion, proporcionandole el material y el equipo necesario.

Equipo: MicroscopioBaño mariaEquipo de extracción sanguinea

Material:Tubos Cromometro Sustancia:Sangre

Metodologia:1.-Se extrae sangre venosa con una jeringa de vidrio limpia y seca, utilizando una aguja gruesa (núm. 18 ó 19). La punción debe ser perfecta, pues la contaminación con linfa modifica los resultados. Se pone en marcha un cronógrafo en cuanto la sangre penetra en la jeringa, pues en este momento inicia la coagulación sanguínea.

2.-Se retira la aguja y se pone 1ml de sangre en cuatro tubos de ensayo secos, químicamente limpios de 10X1cm, colocados en una gradilla en baño María a 37oC.

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3.-3minutos después, y reduciendo al mínimo el tiempo que los tubos se encuentren fuera del agua, se les inclina uno por uno cada 30 segundos (en el laboratorio utilizamos un aplicador de madera que introducimos en el tubo para evitar sacarlos, envés de estarlos inclinando). Se evita la agitación, que podría prolongar el tiempo de coagulación. Este corresponde al momento en que resulta posible invertir los tubos sin que se derrame su contenido (en nuestra practica es el momento en el que al sacar el aplicador aparece un hilillo de fibrina).Se anota separadamente el tiempo de coagulación de cada tubo, y la cifra definitiva es el promedio de los cuatro resultados

Valores:Cifras normales de este método de 4 a 10 minutos. Con las modificaciones de clase es de 3 a 6 minutos.

Resultados:Nombre: Luis EnriqueResultado: 11.05

1.- 11.15 21.30/2= 11.052.- 10.15 21.30