POLLOS DE ENGORDE GALLINAS DE POSTURA - … · El presente Manual de Procedimientos contiene los...

Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016

1

MANUAL DE PROCEDIMIENTOS OPERATIVOS

PROGRAMA DE VIGILANCIA Y CONTROL DE LA

CONTAMINACIÓN POR SALMONELLAS SPP. EN GRANJAS AVÍCOLAS

Programa de Sanidad Avícola Dirección de Programación Sanitaria

Dirección Nacional de Sanidad Animal

POLLOS

DE ENGORDE

GALLINAS

DE POSTURA


2

CONTENIDO

PROLOGO .................................................................................................................... 3

OBJETIVOS ................................................................................................................. 3

RESPONSABILIDADES ............................................................................................... 3

ACTIVIDADES EN GRANJAS DE POLLO DE ENGORDE ........................................... 4

1. FRECUENCIA DE TOMA DE MUESTRA .................................................................. 4

2. INDICACIONES ........................................................................................................ 4

3. MÉTODO DE MUESTREO ........................................................................................ 4

3.1 CANTIDAD DE MUESTRA .............................................................................. 4

3.2 MATERIALES A UTILIZAR .............................................................................. 4

3.3 PROCEDIMIENTO DE MUESTREO ............................................................... 5

ACTIVIDADES EN GRANJAS DE GALLINAS DE POSTURA ...................................... 6

1. FRECUENCIA DE TOMA DE MUESTRA .................................................................. 6

2. INDICACIONES ........................................................................................................ 6

3. MÉTODO DE MUESTREO ........................................................................................ 6

3.1 CANTIDAD DE MUESTRA .............................................................................. 6

3.2 MATERIALES A UTILIZAR .............................................................................. 6

3.3 PROCEDIMIENTO DE MUESTREO ............................................................... 7

ACTIVIDADES ANALÍTICAS A REALIZAR POR LOS LABORATORIOS ..................... 8

MEDIDAS A ADOPTAR ANTE UNA GRANJA POSITIVA............................................. 9

LISTADO DE LABORATORIOS ADHERIDOS ………………………………………..….10

PROTOCOLO DE REMISIÓN DE MUESTRAS…………………………………………..12

PLANILLA DE INFORME DE RESULTADOS…………………………………………….13


3

PRÓLOGO

El presente Manual de Procedimientos contiene los principios básicos técnicos

y operativos del Programa de vigilancia y control de la contaminación por Salmonellas

spp. en granjas avícolas de pollos de engorde y gallinas de postura establecido por la

Resolución SENASA N° 86/2016, como parte integrante del Plan Nacional de Sanidad

Avícola (PNSA) establecido por Resolución N° 882/02 del Servicio Nacional de

Sanidad y Calidad Agroalimentaria.

Está dirigido principalmente a los veterinarios de las oficinas locales, a los

responsables de los laboratorios adheridos y veterinarios de las empresas avícolas

que desempeñan su actividad.

OBJETIVOS

Controlar y disminuir las Salmonellosis producidas por Salmonella enteritidis,

S. tiphymurium y S. Heidelberg en pollos de engorde y gallinas de postura

comerciales, mitigando la contaminación del producto avícola final, con gérmenes que

se encuentran en el ambiente, que ponen en riesgo la salud humana.

RESPONSABILIDADES

VETERINARIO RESPONSABLE DEL ESTABLECIMIENTO

Cada granja avícola deberá contar con un profesional veterinario como

RESPONSABLE SANITARIO ante el Programa, que será el encargado de la toma de

muestra y envío al laboratorio privado o adherido, y ante hallazgos positivos deberá

contactarse en forma inmediata con el veterinario de la oficina local correspondiente a

su zona.

VETERINARIO DE LA OFICINA LOCAL DEL SENASA

Los profesionales con asiento en las Oficinas Locales del SENASA, recibirán

del veterinario responsable del establecimiento, del propietario de la granja avícola o

del Responsable del Laboratorio, las copias de los protocolos de resultados del Plan

(Anexo Resolución SENASA N° 86/2016).

Dicha información debe ser cargada en el Sistema Integrado de Gestión de

Sanidad Animal (SIGSA), como ANTECEDENTE SANITARIO, los cuales figuran

como:

MUESTREO DE SALMONELLA SPP. EN AVES-PRODUCCION DE CARNE

MUESTREO DE SALMONELLA SPP. EN AVES-PRODUCCION DE HUEVO

Será el encargado de actuar ante la comunicación de los hallazgos positivos de

Salmonella Enteritidis, S. Typhimurium y/o S.Heildelberg.


4

LABORATORIOS / RESPONSABLES TÉCNICOS

Los Laboratorios Privados y los adheridos al PNSA serán los encargados de

procesar las muestras, para luego informar el resultado al responsable sanitario de la

granja y/o a la Oficia Local del Senasa.

Asimismo, debe informar mensualmente al Programa de Aves en forma

electrónica: [email protected].

La DILAB brindará servicios a aquellas empresas que lo requieran para las

pruebas de tipificación de las Salmonella aisladas, y también procesará las muestras

provenientes de auditorías de este Programa.

PROGRAMA DE SANIDAD AVÍCOLA

El Programa es el responsable del control de gestión, seguimiento del

desarrollo del Programa y, particularmente, de la planificación de las inspecciones

destinadas a constatar los resultados obtenidos y evaluación.

ACTIVIDADES EN GRANJAS DE POLLO DE ENGORDE

1. FRECUENCIA DE TOMA DE MUESTRA:

En las granjas de pollos parrilleros se debe realizar la toma de muestra con una

frecuencia de UNA (1) vez por año.

2. INDICACIONES:

Con el objetivo de obtener los resultados antes del ingreso del próximo lote, las

mismas deberán muestrearse TRES (3) semanas antes de la faena.

3. MÉTODO DE MUESTREO:

3.1 CANTIDAD DE MUESTRA:

Cuando la granja disponga de más de CINCO (5) galpones, deben extraerse

muestras de DOS (2) galpones y en las granjas de menos de CINCO (5) galpones, la

muestra debe tomarse de UN (1) galpón.

3.2 MATERIALES A UTILIZAR

Guantes desechables,

Calcetines estériles,

Sachet de 250 mililitros (ml) de solución fisiológica estéril al 0,9% ,

Bolsa contenedora estéril por 1500 ml (bolsa tipo “stomacher”),

Conservadora,

Material para refrigeración.

Otros: tijera, cinta adhesiva ancha (cinta de embalar), protocolos, etc.

mailto:[email protected]


5

3.3 PROCEDIMIENTO DE MUESTREO

Del galpón seleccionado al azar, se tomaran DOS (2) pares de calcetines. La

muestra estará constituida por DOS (2) pares de calcetines obtenidos en un mismo

galpón de una misma granja. Los pasos a seguir son:

1º. Colocarse guantes desechables de un solo uso previa manipulación del material.

2º. Colocarse un par de calcetines al bajar del vehículo e ingresar a la granja. Este par

se utiliza como cubre calzado.

3º. 1er. par de calcetines: una vez en la entrada del galpón, y antes de colocárselos,

humedecerlos utilizando aproximadamente 100 ml de solución de cloruro de sodio

estéril, vertiendo la solución diluyente dentro de la bolsa individual que contiene cada

par de calcetines. Una vez humedecidos, colocárselos sobre el cubre calzado. Este

último par de calcetines será el que contendrá la muestra.

4º. Dividir la superficie del galpón en 2

secciones. Caminar dentro de cada

sector para dar como mínimo 100

pasos por cada par de calzas (100

pasos ~ 50 metros lineales).

Asegurarse de que todas las partes del

sector son muestreadas. Cada par

debe abarcar aproximadamente el 50 %

del área del galpón.

…………………

………………

5º. Una vez finalizado el primer sector del galpón, quitarse los calcetines externos.

Retirar cuidadosamente para que no se desprenda el material adherido (se podrá dar

la vuelta a los calcetines para retener el material en su interior) e introducirlas dentro

de la bolsa estéril (identificando correctamente la misma).

6º.Proceder con el segundo par de calcetines repetir los puntos 3º y 4º.

7º. Los dos pares de calzas serán colocados en la misma bolsa (enviadas mezcladas

como una sola muestra), la cual deberá cerrarse con una cinta ancha (preferiblemente

cinta de embalar).

8º. Los calcetines colocados en la bolsa, cerrada y etiquetada convenientemente

deberán conservarse en todo momento a temperatura de refrigeración y enviarse

refrigeradas al laboratorio dentro de las 24 horas de tomada la muestra, utilizando el

protocolo de remisión de muestras adjunto (pág. 12).


6

ACTIVIDADES EN GRANJAS DE GALLINAS DE POSTURA

1. FRECUENCIA DE TOMA DE MUESTRA:

En las granjas de gallinas de postura se debe realizar la toma de muestra

con una frecuencia de DOS (2) veces por año.

2. INDICACIONES:

Se recomienda muestrear aves que se encuentran dentro de las siguientes

etapas:

Aves de 18-27 semanas (comienzo de la postura).

Aves de 70-86 semanas (con un máximo de 9 semanas previas al envío a

faena).

Aves replumadas en postura, preferentemente a partir de la 5ta. semana de

producción.

3. MÉTODO DE MUESTREO:

3.1 CANTIDAD DE MUESTRA

Cuando la granja disponga de más de CINCO (5) galpones, deben

extraerse muestras de DOS (2) galpones y en las granjas de menos de CINCO (5)

galpones, la muestra debe tomarse de UN (1) galpón.

3.2 MATERIALES A UTILIZAR

Guantes desechables,

Frascos de plástico con tapa a rosca de un mínimo de 200 cc,

Conservadora,

Material para refrigeración.

Otros: tijera, cinta adhesiva ancha (cinta de embalar), protocolos, etc.


7

3.3 PROCEDIMIENTO DE MUESTREO

1- En galpones tradicionales será preciso recoger una mezcla de heces

de la fosa. La muestra debe estar constituida por 2 submuestras de aprox. 150

gramos de materia fecal fresca cada una (utilizar dos frascos de aprox. 200 cc). La

materia fecal se deberá recolectar en forma aleatoria de 60 lugares diferentes de

las fosas. Es decir, de cada sitio seleccionado recolectar aproximadamente 2,5 gr.

de materia fecal fresca (1/2 cucharadita) y colocarlos en los 2 contenedores. La

distribución de las submuestras debe ser representativa de todo el galpón.

Tener en cuenta que algunos granjeros podrían llegar a colocar cal viva

sobre la materia fecal, en este caso, seleccionar los galpones que no fueran

sometidos a ese tratamiento o bien solicitar no realizar el tratamiento por al menos

15 a 20 días y regresar posteriormente para la toma muestra en otro período.

2- En los galpones automáticos hay cintas que recogen la materia fecal

bajo cada nivel de jaulas. Las mismas se ponen en funcionamiento a intervalos

regulares y descargan en un sistema transportador. En este caso, solicitar al

granjero que ponga en funcionamiento las cintas de evacuación del guano o los

raspadores temprano el día del muestreo, y que no limpie el polvo de las cintas

porta huevos ni de debajo de las jaulas antes de que haya tenido lugar el

muestreo.

Con guantes de plástico nuevos, se debe tomar 2 muestras constituidas por 150 g de materia fecal fresca de 60 lugares diferentes de las cintas transportadoras, de manera que todos los bloques estén representados en la

muestra.

Se debe complementar con una muestra de 150 g de polvo seco tomadas de al menos 20 lugares de las diferentes instalaciones del galpón. Determine

con el encargado o propietario de la granja los mejores lugares del galpón para

recoger el polvo. Normalmente son las rejillas de los ventiladores de extracción,

los salientes adyacentes, vigas, divisorias o tuberías ó cintas transportadoras de

huevos. Si es posible es preferible tomar polvo de las partes bajas. Solamente

recolecte polvo seco.

b- Los frascos deben ser colocados en una bolsa, cerrada y etiquetada,

luego colocarse en una conservadora, estando en todo momento a temperatura de

refrigeración y deberá remitirse al laboratorio dentro de las 24 horas de tomada la

muestra, utilizando el protocolo de remisión de muestras adjunto (pág. 12).


8

ACTIVIDADES ANALÍTICAS A REALIZAR POR LOS LABORATORIOS

Las muestras deben ser remitidas a los laboratorios que trabajan en

adhesión con el Plan Nacional de Sanidad Avícola, a la Dirección del Laboratorio

Animal de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico del SERVICIO

NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA(DILAB) o a los

laboratorios de la Red Oficial habilitados para analizar muestras de aves.

Los laboratorios de diagnóstico, ya sean privados o pertenecientes a

instituciones públicas, deben:

a) Utilizar el método descripto en el Anexo D de la Norma ISO 6579 (2002), para

“Detección de Salmonella spp. en heces de animales y en muestras a nivel de

producción primaria”. Como medio selectivo se utiliza el medio semisólido

Rappaport-Vassiladis modificado (MSRV)

b) Serotipificación: se debe proceder al serotipado de una cepa de cada muestra

positiva como mínimo, siguiendo el esquema de Kaufmann-White. Como métodos

alternativos se pueden utilizar las pruebas moleculares para identificación de

genotipos.

c) En el caso de utilizar pruebas moleculares, los aislamientos obtenidos serán

confirmados mediante biotipificación para la identificación de Salmonella spp., la

confirmación de la serovariedad se realizará mediante serotipificación para ST y

SG y para SE por PCR. La diferenciación de SG y SE será realizada por pruebas

culturales y bioquímicas. Se realizará PCR para detectar Salmonella spp. Los

aislamientos obtenidos serán conservados en ceparios existentes en los

laboratorios participantes. Estos aislamientos luego de identificados serán

caracterizados a nivel molecular mediante la técnica de Pulse Field Gel

Electroforesis (PFGE) y sus perfiles moleculares serán ingresados en la base de

Datos de la Red PulseNet y comparados con los perfiles genéticos de los

aislamientos ya incluidos en la misma.

d) Cuando los laboratorios que participen del Programa no estén en condiciones

de realizar la tipificación serológica o por técnicas moleculares, deben remitir las

cepas aisladas de Salmonella spp. a la Dirección del Laboratorio Animal

(Talcahuano 1660- Martínez-Buenos Aires) para su serotipificación.

e) Una vez concluidas las pruebas diagnósticas, los resultados serán remitidos por

el Veterinario del establecimiento, propietario o Responsable del laboratorio a la

Oficina Local, utilizando el Protocolo de Remisión de resultados (pág. 13), que

forma parte como anexo de la Resolución Senasa 86/2016.


9

MEDIDAS A ADOPTAR ANTE UNA GRANJA POSITIVA

Se considera granja positiva cuando en cualquier momento se detecte en la

misma la presencia de Salmonella Enteritidis, S. Typhimurium y/o S. Heildelberg

(distintas de las cepas vacunales).

En el caso de detectarse contaminación ambiental por Salmonella

Enteritidis, S. Typhimurium y/o S. Heidelberg, ya sea el veterinario responsable del

establecimiento, el responsable del laboratorio o profesionales del programa de

Sanidad Aviar (en caso de realizar la tipificación la DILAB), comunicarán

inmediatamente al Veterinario Oficial de Oficina Local con jurisdicción en el

establecimiento en cuestión.

En las granjas de Pollo de engorde el veterinario de Senasa debe:

1- Dar de baja la autogestión del establecimiento y bloquear el ingreso del

próximo lote.

2- Inspeccionar la granja, a fin de identificar las medidas que considere

insuficientes y/o deficientes e instruirá sobre las medidas de bioseguridad,

control de plagas y buenas prácticas que deban adoptarse.

3- Corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas y dar de alta la

autogestión e ingreso de los pollitos BB.

En las granjas de granjas de gallinas de huevos para consumo el

veterinario de Senasa debe:

1- Inspeccionar la granja, a fin de identificar las medidas que considere

insuficientes y/o deficientes e instruirá sobre las medidas de bioseguridad,

control de plagas y buenas prácticas que deban adoptarse.

2- Corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas.

3- Programa de vigilancia y control y las medidas de bioseguridad pueden ser

respaldadas con el uso de vacunas vivas y/o inactivadas contra S.

Gallinarum y/o S. Enteritidis u otra serovariedad oportunamente aprobadas

por el SENASA, a fin de alcanzar una reducción efectiva en la diseminación

de Salmonellas y/o inhibición de su crecimiento en huevos.


10

1) UNIVERSIDAD NACIONAL DE LA PLATA Facultad de Ciencias Veterinarias

Cátedra de Patología de Aves y Pilíferos

Dr. Miguel Piscopo. Calle 60 y 118 - La Plata-

Tel.: 0221-4236663 int. 412 / 0221-

4834237

E-mail: [email protected]

2) Laboratorio GRANJA TRES ARROYOS Dr. Carlos Mario Plano Fernando Rojo S/Nº Capilla del Señor

Bs. As.

Tel.: 02323-491060 / 70 / 80 / 90

E-mail: [email protected] -

[email protected]

3) Laboratorio de la empresa PROTEINSA S.A Av. Jorge Newbery Esq. Fair

Monte Grande – Buenos Aires

Tel.: 011-4239 9270

E-mail:

[email protected]

4) Laboratorio de Análisis Dr. Luis Micheluzzi Thames 530. CP1607. Villa Adelina.

Buenos Aires.

Tel.: 011-4765 4568 / 4735 6175


[email protected]

5) MV Dra. Rosana Mattiello, UBA Especialista en fauna, aves silvestres y

ornamentales.

Las Heras 1546- San Fernando Bs.As-

TE 011 4744-1998


6) Laboratorio PLATALAB Dr. José Luis Garbi Calle 195 y 85. Lisandro Olmos. La Plata

Tel-Fax.: 0221-4963909


Dra. María Luisa Sandro Morales:

[email protected]

7) Laboratorio Avícola SERVET y A MV. Silvia Viora Lic. Laura Pascual Almirante Brown 249. Gral. Rodríguez,

Buenos Aires Tel.: 0237-4850219

E mail: [email protected] 8) INTA CONCEPCIÓN DEL URUGUAY (perteneció a la red oficial) Laboratorio de Patología Aviar

Dr. Dante Bueno Dr. Federico Vera Tel-Fax: 03442 – 425561 / 5578


[email protected]

9) Laboratorio de Diagnóstico Dr. RUBEN FERNADEZ LAGO Dr. Rubén Fernández Lago Artusi 855 CP (3260) Concepción del

Uruguay. Entre Ríos.

Tel.: 03442 – 424816


10) Laboratorio de Análisis LAS CAMELIAS Lic. Graciela Marsó Ruta 26, km. 5. San José. Entre Ríos.

Tel.: 03447-475100 Fax: 03447-475101


[email protected]

11) Laboratorio ESPERANZA DISTRIBUCIONES Dr. Enrique Trabattoni Brig. Lopez 25. Esperanza. Santa Fe

Tel.: 03496-422100/03496-15651192

E-mail: [email protected] [email protected]

12) Universidad Nacional de Luján Ruta nacional 5 y 7 CP 6700 Luján.

Bs. As

Dra. Hebe Barrios,

Ing.Agr. Florencia Prosdócimo


[email protected]

LISTADO DE LABORATORIOS ADHERIDOS Al PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR- SENASA



















11

13) Laboratorio Maffrand (Red Oficial Nº L0148)

Pasaje Roosevelt 1055 CP 5800

Río Cuarto - Córdoba

Dr. Francisco Cassasnovas

[email protected]

Te: 0358-4630316/4626021

Celular: +543584308081

14) Laboratorio de Facultad de Ciencias Veterinarias de Casilda Dr. Eduardo Camba

Ruta 33 y Av. Lagos

Tel: 03464-4222050


Nota: Solo para diagnóstico

bacteriológico de Salmonella spp aviar.

15) Laboratorio de análisis grupo Motta Dr. Raúl Buthay

Tel: 0343-4876044/ 0343- 154601985

Diamante - Entre Ríos

[email protected]

16) INTA Castelar Instituto de Pato biología

Dr. Pablo Chacana

Cel. 15-3064-6878

E Mail: [email protected]

17) INTA Balcarce Laboratorio de Bacteriología

Lic. Alejandra Velilla

Ruta 226 km. 73,5

Balcarce (CP 7620)

E Mail: [email protected]

Tel.: 02266-439121

18) Laboratorio Soychu Gualeguay Dra. Eliza Pozzobon Eva Perón 1273

Gualeguay, Entre Ríos

Tel. 03444 530 359

E Mail: [email protected],








12

*Protocolo de referencia con los datos mínimos requeridos por el Senasa.

ESTABLECIMIENTO DE ORIGEN

PROPIETARIO/TITULAR DE LAS AVES …………………..…………….……...…………………………………………………….………………………………………………….…….

NOMBRE DEL ESTABLECIMIENTO: …....…………………..………..………………………………………….………………………………………………….…………………………

TIPO DE PRODUCCIÓN

MUESTRAS REMITIDAS

CANTIDAD

Calzas/Calcetines …………………………………….

Materia fecal …………………………………….

Polvo seco …………………………………….

OBSERVACIONES

……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….

……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….

……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….

……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….

……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….

……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….

RENSPA ___ ___ - ___ ___ ___ -___-___ ___ ___ ___ ___/___ ___

PROTOCOLO DE REMISIÓN DE MUESTRAS DE AVES

Edad de las aves :……………………… días/semanas

POLLO PARRILLERO GALLINA DE POSTURA

"PROGRAMA DE VIGILANCIA Y CONTROL DE LA CONTAMINACIÓN POR SALMONELLA SPP.

EN GRANJAS AVÍCOLAS DE POLLOS DE ENGORDE Y GALLINAS DE POSTURA COMERCIAL"

Resolución SENASA N° 86/2016

IDENTIFICACIÓN

…………………………………….

…………………………………….

…………………………………….

TIPO

FECHA DE TOMA DE LA MUESTRA: …...……./…..….…./…….…...

Firma y aclaración

Veterinario Responsable del Establecimiento

……………………………………...……………………………………………………………

FECHA DE RECEPCIÓN DE LA MUESTRA: …...……./…..….…./…….……

PROVINCIA:……………………………………….……………………. PARTIDO/DEPARTAMENTO:…………………………………………………………………………………...

Protocolo Interno N°..………..…………..………

……………………………………...……………………………………………………………

Firma y aclaración

Responsable del Laboratorio

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