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Enero-Junio 2016. Vol-. 1 No. 1

Editorial

Entomología Forense

Por: Dr. Humberto

Quiroz

Contenido:

1.- Editorial: Zika Virus

2.- Monografía: Anita Hoffmann

3.- WHO reveals its shopping list for weapons

against Zika

4.- Mosquitos Silvestres (Diptera: Culicidae)

de la Ría de Celestún Yucatán

5.- Brief Description Of: Zika Virus

6.- Mecanismos No Químicos De Comunicación

En Insectos

7.- Virus De La Tristeza De Los Cítricos

8.- Tifus Murino: Generalidades

CONTENIDOEnero-Junio 2016. Vol-. 1 No. 1

1.- Editorial: Zika Virus

Por. Publicación Lancet

2.- Monografía: Anita Hoffmann.

Ángel Muñoz y Cristian Escobedo

3.- WHO reveals its shopping list for

weapons against Zika.John Maurice

4.- Mosquitos silvestres (Diptera: Culicidae)

de la Ría de Celestún Yucatán..Pablo Manrrique Saide

5.- Brief Description of: Zika Virus.

Omar Eduardo Tova-Herrera

6.-Mecanismos no Químicos de

Comunicación en Insectos

Biol. Mara Ivonne Garza-Rodríguez

7.- Virus De La Tristeza De Los Cítricos

Pedraza Muñoz Raymundo

8.- Tifus Murino: GeneralidadesCaballero Treviño Yesica

Fotografías

Portada: Fumigación aérea, por Gerardo Trujillo

Puerto Vallarta, Jal.

Contenido: Gustavo Ponce García

DIRECTORIO

Ing. Rogelio G. Garza Rivera

Rector

Dra. Carmen del Rosario de la Fuente García

Secretario General

Dr. Juan Manuel Alcocer González

Secretario Académico

Dr. Celso José Garza Acuña

Secretario de Extensión y Cultura

Dr. Celso José Garza Acuña

Director de Publicaciones

Dr. Antonio Guzmán Velasco

Director de la Facultad de

Ciencias Biológicas

Dr. José Ignacio González

Sub-Director de la Facultad de

Ciencias Biológica

Dr. Gustavo Ponce García

Editor Responsable

Dr. Pedro Cesar Cantú Martínez

Redacción

Ing. Oscar Manuel Loaiza Jiménez

Dr. Saúl Lozano Fuentes

Diseño

Artrópodos y Salud, Año 3, Nº 1. Es una publicación

semestral, editada por la Universidad Autónoma de Nuevo

León, a través de la Facultad de Ciencias Biológicas.

Domicilio de la publicación: Lab. de Entomología Medica,

Ave. Universidad s/n, Ciudad Universitaria, 2º piso, Unidad

B, San Nicolás de los Garza, Nuevo León, México, C.P.

66450. Teléfono: + 52 81 83294111. Fax: + 52 81

83294111. www.artropodosysalud.com. Editor

Responsable: Dr. Gustavo Ponce García. Reserva de

derechos al uso exclusivo No. 04-2013-120916500700-

102. ISSN en trámite, ambos otorgados por el Instituto

Nacional del Derecho de Autor, Registro de marca ante el

Instituto Mexicano de la Propiedad Industrial: En trámite.

Responsable de la última actualización de este Número,

Unidad Informática, Ing. Oscar Manuel Loaiza Jiménez,

Albino Espinoza 1308, Col. Obrera, C.P. 64010,

Monterrey, Nuevo León México. Fecha de última

modificación: 1 de enero de 2016.

Las opiniones expresadas por los autores no

necesariamente reflejan la postura del editor de la

publicación.

Prohibida su reproducción total o parcial de los contenidos

e imágenes de la publicación sin previa autorización del

Editor.

Todos los derechos reservados

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[email protected]

http://www.artropodosysalud.com/

A Los Lectores:

Estimados lectores bienvenidos a la edición número uno de la

revista de divulgación Artrópodos y Salud, agradeciendo el interés

por la lectura de este número. Esta publicación será publicada

tetramestralmente, en la cual les presentamos una serie de

información sobre tópicos relacionados con los artrópodos y su

efecto en la salud, humana, animal y vegetal.

En nuestra sección Editorial citamos a la publicación The Lancet,

donde se da una semblanza sobre Zika Virus, tema abordado de

manera general.

En la sección de monografías, se habla de la Dra. Anita

Hoffmann, sus obras y legado.

En el artículo, Brief Description Of: Zika Virus, nos da un

panorama general de los principales descubrimientos en este

tema, así también se abordan otros temas como es la Mosquitos

Silvestres (Diptera: Culicidae) de la Ría de Celestún Yucatán,

Mecanismos No Químicos De Comunicación En Insectos,

Virus De La Tristeza De Los Cítricos, Tifus Murino:

Generalidades y WHO reveals its shopping list for weapons

against Zika.

Los invitamos de la manera más atenta a que disfrute del

contenido de esta publicación, cuyo objetivo es divulgar

conocimiento dentro del apasionante tema de los Artrópodos y su

efecto en la Salud en general.

CONSEJO EDITORIAL

1

Artrópodos y Salud Ene.-Jun., 2016. Vol. 3 No. 1 Editorial: Zika Virus

2

Editorial

Zika Virus

Is an arbovirus of the Flaviviridae family,

which includes dengue, West Nile, yellow fever,

and Japanese encephalitis viruses. Like other

members of the genus, Zika virus contains a

positive, single-stranded genomic RNA encoding

a polyprotein.

Zika virus was first isolated in 1947 from a

rhesus monkey in the Zika forest of Uganda.

Transmitted by the Aedes genus of mosquito, for

decades, the disease mainly affected monkeys in

a narrow equatorial belt stretching across Africa

and into equatorial Asia. It occasionally affected

human beings causing a mild disease.

In 2007, the first documented outbreak of

Zika occurred in the Federated States of

Micronesia where 185 suspected cases were

reported, of which 49 were confirmed and 59

were considered probable. Between 2013 and

2014, four additional Pacific Island nations

documented large Zika outbreaks. In French

Polynesia, the Zika outbreak was associated with

neurological complications, but at a time when

the virus was co-circulating with dengue.

In May, 2015, WHO confirmed the presence

of Zika virus in the Americas. As of Feb 1, 2016,

active transmission has been reported in 28

countries and territories, mainly in the

Americas, but also in Africa (Cape Verde)

and Oceania (American Samoa, Samoa).

At-risk population: As of Feb 1, 2016,

active transmission of Zika virus was being

reported in 28 countries and territories (figure),

mostly in the Americas, including Brazil,

Colombia, Venezuela, Mexico, Haiti, and

Barbados. Sylvain Aldighieri, head of

International Health Regulations Epidemic Alert

and Response at the Pan American Health

Organization (PAHO), explained to reporters in

a WHO briefing on Jan 28 that the fast

dissemination of the virus in the Americas was

down to two reasons: the population being

immunologically naive to Zika virus and the

ubiquitous presence of the vector—Aedes

mosquitoes. The vector can be found in the

region from southern USA to northern Argentina

(excluding continental Chile), an area

encompassing around 500 million people. WHO

estimates that there will be 3–4 million cases of

Zika infection (including asymptomatic cases) in

the Americas in the next 12 months.

The Lancet. Febrero 2016.

Artrópodos y Salud Ene.-Jun., 2016. Vol. 3 No. 1 Monografia: Anita Hoffmann

3

Dra. Ana Esther Hoffmann Mendizábal

(Anita Hoffmann)

(Marzo 1919 - Octubre 2007)

Anita Hoffmann nació en el estado de

Puebla, México, en 1919. Su pasión por los

insectos se dio gracias a su padre, el Dr. Carlos

Cristian Hoffmann (1876-1942), reconocido

entomólogo mexicano de origen alemán, quien

llevaba a Anita para que participara en sus

excursiones por todo México. En 1939, cuando

se funda la Facultad de Ciencias de la UNAM,

ella entra a dicha institución para formar parte de

la primera generación de estudiantes,

comenzando la Maestría en Biología, finalizando

sus estudios cuatro años más tarde, en 1941.

En 1991 la doctora Anita Hoffmann donó al

Instituto de Biología de la Universidad Nacional

Autónoma de México un trabajo que ocupó más

de 50 años de su vida: la más importante

colección acarológica de México, conformada

por más de 100 mil ejemplares pertenecientes

aproximadamente a mil especies de 149 familias

de ácaros, única en el país e incluida desde 1979

en el Índice de colecciones de acarología del

mundo. Junto con ella, cedió también otras tres

colecciones de relevancia científica: una

aracnológica, con más de 400 especies; otra, que

incluye especies de siete órdenes y trece familias

de quilópodos y diplópodos (ciempiés y milpiés,

respectivamente) y una más de insectos

ectoparásitos, con ejemplares de importancia

médica y veterinaria. Investigadora, educadora,

académica y reconocida bióloga mexicana

especializada en Acarología y Parasitología,

pionera en el estudio de los arácnidos y ácaros en

México. Fundó el Laboratorio de Acarología (el

primero en América latina) en la Escuela

Nacional de Ciencias Biológicas del Instituto

Politécnico Nacional en 1965, así como del

Laboratorio de Acarología de la Facultad de

Ciencias de la Universidad Nacional Autónoma

de México en 1977. Entre sus publicaciones más

Importantes se encuentran:

2000 - Biodiversidad de los ácaros en

México. CONABIO 2002 - Biodiversidad,

Taxonomía y Biogeografía de Artrópodos de

México. Hacia una Síntesis de su Conocimiento.

CONABIO, Acari, Volumen III, 223-276.2004 -

Cap. 13: Los artrópodos de las cavernas de

México. 229-326. Biodiversidad, Taxonomía y

Biogeografía de Artrópodos de México: Hacia

una Síntesis de su Conocimiento. CONABIO,

Facultad de Ciencias, IBUNAM, Vol. IV.

Por: Ángel Alberto Muñoz Ochoa y Cristian

Daniel Escobedo Garza (2015).

Artrópodos y Salud Ene.-Jun., 2016. Vol. 3 No. 1 World Report: WHO reveals its shopping list for

weapons against Zika

4

World Report

WHO reveals its shopping list for weapons

against Zika

Expunging its weak performance against the recent Ebola epidemic, WHO takes

swift steps to make sure that the world will have new ways to battle Zika virus.

If viruses had ears, Zika virus would be

in bad shape after listening to a WHO official

describing the armamentarium the world is

getting ready to launch against it. “Based on

our experience with research and

development during the west Africa Ebola

epidemic, WHO’s [R&D] response is

proceeding very quickly for Zika”, Marie-

Paule Kieny, WHO Assistant Director-

General, Health Systems and Innovation, told

a press conference on Feb 12 at the agency’s

headquarters in Geneva, Switzerland. WHO,

she said, has identified industry and research

institutions interested in developing the tools

needed to combat the Zika epidemic now

taking hold in 26 countries (panel). There is

an urgent need for vaccines, diagnostic tests,

and prophylactic medicines against Zika as

well as innovative technologies to pit against

the mosquitoes that carry the virus.

In the vaccine arena, the chase is on

between 15 research groups, most of which

are in Europe. Nearly all are still in the early

stages of vaccine development. Leading the

pack by a small margin is a team at the US

National Institutes of Health working on

several vaccines and another team working in

an Indian firm, Bharat Biotech. Candidate

vaccines in the pipeline are either based on

attenuated viral vectors, as is the case for the

recently licensed dengue vaccine, or on

inactivated products (DNA, recombinant

proteins, or killed Zika virus), as is the case

for some of the licensed Japanese encephalitis

vaccines.

An encouraging factor in developing a

vaccine against Zika virus, Kieny noted, is

that “Zika is a fl avivirus and vaccines have

been successfully produced against other

flaviviruses, such as yellow fever, Japanese

encephalitis, and dengue”. A somewhat

discouraging factor she noted is that “all the

Zika vaccine candidates are at a very basic

level and it could be something like 18

months before large-scale trials could begin”.

The challenge to produce reliable diagnostic

tests needed to facilitate research, clinical

management, and surveillance activities has

attracted

“We need to be sure that

poorquality or fake Zika tests will not

be around, as was the case with the

Ebola epidemic.”

ten biotech companies. Three types of

tests are being developed. One is needed to

detect the presence of the virus in an infected

person and to determine in what body fl uid it

is found. Another is an antibody-based test

for detecting a past infection. And a third is a

rapid diagnostic test that is field-friendly and

can give a result on a dipstick within minutes.

“So far none of these tests have been

independently validated and none have

regulatory approval”, said Kieny. “We need

to be sure that poorquality or fake Zika tests

will not be around, as was the case with the

Ebola epidemic.”

“Studies”, Kieny pointed out, “are also

underway on antiviral medications,

particularly prophylactic products that could

Artrópodos y Salud Ene.-Jun., 2016. Vol. 3 No. 1 World Report: WHO reveals its shopping list for

weapons against Zika

5

prevent infection in vulnerable people,

especially pregnant women”.

Research and development efforts are

also targeting the Aedes aegypti mosquito

vector of Zika virus. “Some innovative

methods of preventing transmission of Zika

to people seem promising”, Kieny said. One

strategy reduces the local mosquito

population by releasing into the environment

bacteria that can prevent the reproduction of

the insects. Another achieves the same

purpose by using male mosquitoes engineered

to carry a lethal gene that alters the viability

of the eggs that they have fertilised.

A lesson WHO learned from the Ebola

epidemic, Kieny explained, is the need,

during a life-threatening epidemic, for a fast-

track system that allows the deployment of

new promising tools that have not run the full

gamut of safety and effi cacy testing but

could save lives. “WHO”, Kieny said, “has

set up a WHO Emergency Assessment and

Listing procedure, which guarantees a certain

level of quality and performance, balancing a

small risk against a high risk of mortality and

morbidity from an epidemic”.

WHO is also preparing a so-called R&D

Blueprint roadmap “that will facilitate a swift

research and development response to an

epidemic”. Last December, a group of experts

met in WHO’s Geneva headquarters to draw

up a list of diseases qualifying for activation

of the R&D Blueprint. Zika was high on the

list.

John Maurice

Published Online February 16, 2016

http://dx.doi.org/10.1016/ S0140-

6736(16)00390-1.

Artrópodos y Salud Ene.-Jun., 2016. Vol. 3 No. 1 Mosquitos silvestres (Diptera: Culicidae) de la Ría de

Celestún Yucatán

6

Mosquitos silvestres (Diptera: Culicidae)

de la Ría de Celestún Yucatán. P. Manrique-Saide1, 2, Gustavo Ponce-García3, E. Ceh-Pavía1, J. Góngora-Salinas1, A. Medina-Barreiro2, E. Koyoc-

Cardeña2, S. Dzib-Florez 2 1Departamento de Zoología. Campus de Ciencias Biológicas y Agropecuarias, UADY. Km. 15.5 Carr. Mérida-

X’matkuil s/n Mérida, Yucatán 97315, México. [email protected] 2Unidad Colaborativa para Bioensayos Entomológicos (UCBE), Universidad Autónoma de Yucatán, Km. 15.5 Carr.

Mérida-X’matkuil s/n Mérida, Yucatán 97315, México. 3Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Autónoma de Nuevo León, Av. Universidad s/n Cd. Universitaria San

Nicolás de los Garza, N.L. 66455.

Resumen

Se llevaron a cabo colectas de mosquitos por 14 días consecutivos mediante siete colectas en el

amanecer y siete crepusculares; en cinco puntos de muestreo a lo largo de 2.5 km en la Ría de la localidad

costera de Celestún. Se colectaron un total de 2, 202 mosquitos de cinco especies: Anopheles crucians

(Wiedemann), Coquilletidia venezuelensis (Dyar y Knab 1906), Culex quinquefasciatus (Say 1823),

Ochlerotatus sollicitans (Walker 1856), Ochlerotatus taeniorhynchus (Wiedemann 1821) y Psorophora

confinnis. Hubo mas registro de mosquitos en el amanecer (1122) en comparación con el crepúsculo

(1080). El cebo humano presentó mas altos registros con 1081 ejemplares (51.2% del total colectado). Oc.

taeniorhynchus, fue la especie mas abundante en todo el estudio con 2,099 especímenes (95.32% del total

colectado). An. crucians, Cx. quinquefasciatus, Oc. sollicitans y Oc. taeniorhynchus, han sido reportados

con interés zoonótico para localidad de Celestún y los habitantes pudieran estar en riesgo potencial de

infección por microfilarias.

Palabras Clave: Mosquitos de la Ría de Celestún, Cebo humano, trampeo

Introducción

Hasta la fecha han sido reportadas 3300

especies de mosquitos pertenecientes a 41

géneros, agrupados en la familia Culicidae (1).

En México se reconocen 228 especies

pertenecientes a 21 géneros de las cuales solo 40

se han registrado en el estado de Yucatán),

representando el 18% de la diversidad reportada

para el país (1-3). Los estudios de campo que

incluyen el monitoreo de los ambientes de

crianza y de las poblaciones de mosquitos, así

como la actividad de las especies que actúen

como vectores de enfermedades, nos permite un

control más eficiente de mosquitos y poder tener

información de cuando y donde se deben llevar a

cabo medidas de protección (2).

En la localidad costera de Celestún, se ha

reportado la más alta prevalencia (59.8%) de

dirofilariosis canina en todo México (4) y en

estudios de incriminación de mosquitos

involucrados con este padecimiento en secas y

lluvias, se demostró la presencia de nueve

especies que estuvieron infectados con

microfilarias y se reportó por primera vez en

México al mosquito Ochlerotatus

taeniorhynchus como vector principal en el ciclo

doméstico de transmisión de Dirofilaria immits

en perros microfilarémicos del centro de la

localidad (5,6). Sin embargo hasta el momento

no existe un reporte de los mosquitos presentes

en áreas aledañas cercanas al centro de la

localidad. Por tal motivo del presente estudio fue

el de colectar e identificar las especies de

mosquitos silvestres en un manchón de

vegetación de manglar y humedal en la Ría de

Celestún, Yucatán, México, en los alrededores

de la localidad y determinar si son las mismas

con interés zoonótico ya colectadas con

anterioridad y que pudieran representar un riesgo

potencial para los habitantes.

Materiales y métodos

Área de estudio

El estudio se llevó a cabo en la en la

localidad costera de Celestún (Cabecera del


Celestún Yucatán

7

municipio del mismo nombre) (Fig. 1),

localizada en la costa Oeste del estado de

Yucatán en el Golfo de México (20º51’39” N, 90

º23’33”). El clima es cálido y semi-árido, con

temperaturas máximas mensuales de 35-40ºC,

humedad relativa de 65-95% y un promedio de

precipitación anual de 767 mm. La temporada de

lluvias va de junio a septiembre que es cuando se

presenta la precipitación anual total, la

temporada de secas va de octubre a mayo; y está

inmersa en uno de los sistemas de humedales del

sureste de México, en una línea de litoral

bordeado por un lado por el Golfo y por otro por

una laguna costera (SEMARNAT, 2000).

Figura 1. Localización de los sitios de colecta en el Municipio de Celestún.

Colecta e identificación de mosquitos

silvestres.

Para la colecta de mosquitos se realizaron

colectas diarias durante 14 días durante el mes

de Agosto 2009, que consistieron en siete

colectas en el amanecer (6.00-8.00 hrs) y siete

colectas crepusculares (17.00-19.00 hrs.) en

cinco puntos de muestreo a lo largo de 2.5 km

(500 m entre cada punto), a lo largo de la Ría de

Celestún. Se utilizaron dos aspiradoras portátiles

de mochila (battery powered Modified CDC

Backpack Aspirator Model 1412 John W. Hock

Co.®).

Se establecieron dos metodologías (Fig.2): i)

Colectas en vegetación para capturar los

mosquitos que estuvieran reposando sobre las

hojas de los árboles, arbustos y plantas; y ii)

Cebo humano que consistió en colectar todos los

mosquitos que se posaban sobre los voluntarios

en un intento por alimentarse, aspirando brazos y

piernas; esto de acuerdo a la metodología

utilizada por Jones et al. (2004). Los mosquitos

capturados se transportaron al laboratorio de

DUMAC (Ducks Unlimited de México A.C.)

donde se sacrificaron por congelación y se

separaron por sexo y especie; la se realizó

cotejando sus características morfológicas con

las descripciones en Carpenter y LaCasse (1995)

y Darsie y Ward (1981).


Celestún Yucatán

8

Figura 2. Métodos de colecta de mosquitos:

vegetación (A y B); y cebo humano (C y D).

Análisis de los datos

Este fue un estudio descriptivo transversal

en el cual se calculó la abundancia relativa de las

especies capturadas: número de mosquitos

capturados de cada especie entre el número total

colectado; número de especies capturadas en el

amanecer y el crepúsculo entre el total de

especies colectado; la abundancia de las

especies colectadas en cada sitio entre el total

colectado y las abundancias de acuerdo a las

colectadas en cebo humano y en vegetación.

Resultados

Especies de mosquitos capturadas

Se capturaron en total en todo el estudio,

2,202 mosquitos adultos representados en 5

géneros y seis especies anteriormente reportados

para Celestún: Anopheles crucians

(Wiedemann), Coquilletidia venezuelensis

(Dyar y Knab 1906), Culex quinquefasciatus

(Say 1823), Ochlerotatus sollicitans (Walker

1856), Ochlerotatus taeniorhynchus

(Wiedemann 1821) y Psorophora confinnis

(Cuadro 5). La especie Oc. taeniorhynchus

(comúnmente llamado “mosquito del mangle”)

fue definitivamente la especie predominante en

todos los métodos de colecta combinados

(95.32%). El número de mosquitos capturados y

su abundancia relativa se presentan en el cuadro

1.

Cuadro 1. Especies de mosquitos (♀) capturadas (en orden descendente en cuanto su abundancia).

Especies Número total Abundancia

relativa (%)

Oc. Taeniorhynchus (Wiedemann 1821) 2,099 95.32

Oc. Sollicitans (Walker 1856) 46 2.08

An. crucians (Wiedemann), 44 1.99

Cq. Venezuelensis (Dyar y Knab 1906) 6 0.27

Cx. quinquefasciatus (Say 1823) 4 0.18

Ps. Confinnis (Lynch Arribálzaga) 3 0.13

Total 2,202 100

El mayor número de registro de mosquitos en todos los sitios, fue en las colectas realizadas durante el

amanecer, con respecto al crepúsculo (51% y 49%) respectivamente; y en ambos periodos hubo registro

de todas las especies capturadas en todo el estudio. Tanto en amanecer como en crepúsculo Oc.

taeniorhynchus continuó siendo la especie más abundante (Cuadro 2).


Celestún Yucatán

9

Cuadro 2. Especies de mosquitos (♀) capturados en colectas durante el amanecer y el crepúsculo (en

orden descendente en cuanto su abundancia).

Especies Amanecer Crepúsculo

Oc. taeniorhynchus 1,084 1,015

Oc. sollicitans 20 26

An. crucians 10 34

Cq. venezuelensis 2 4

Cx. quinquefasciatus 4 0

Ps. confinnis 2 1

Total 1,122 1,080

Cuadro 3. Especies de mosquitos (♀) capturados sobre vegetación y con cebo humano en los diferentes

puntos de colecta (en orden descendente en cuanto su abundancia).

Especies Sitios Total

Colectas en vegetación 1 2 3 4 5

Oc. taeniorhynchus 431 136 206 188 57 1,018

Oc. sollicitans 0 1 0 3 0 4

An. crucians 23 0 0 0 0 23

Cq. venezuelensis 1 2 1 0 0 4

Cx. quinquefasciatus 2 0 0 0 0 2

Ps. confinnis 2 0 0 0 0 2

Total 459 139 207 191 57 1,053

Colecta en cebo humano 1 2 3 4 5

Oc. taeniorhynchus 323 304 204 165 85 1,081

Oc. sollicitans 13 8 12 6 3 42

An. crucians 20 1 0 0 0 21

Cq. venezuelensis 0 1 1 0 0 2

Cx. quinquefasciatus 2 0 0 0 0 2

Ps. confinnis 1 0 0 0 0 1

Total 359 314 217 171 88 1,149


Celestún Yucatán

10

Figura 4. Especies de mosquitos (♀) capturados sobre vegetación y con cebo humano en los diferentes

puntos de colecta (en orden descendente en cuanto su abundancia).

Discusión

La zona urbana de Celestún (2.5 Km2) es un

escenario donde se expresan espacialmente los

efectos de la dinámica poblacional, crecimiento

desordenado y disperso de la población,

inadecuado manejo de la basura y contaminación

del manto freático. Según el Programa de

Manejo de la Reserva de la Biosfera Ría

Celestún (7) más del 60 % de las viviendas están

construidas en terrenos inundables y las

tendencias del crecimiento son en dirección a

zonas aledañas a la ría. Se ha observado una

abundancia muy alta de perros en los alrededores

de los domicilios y dentro de éstos, así como

también factores que pueden contribuir a la

abundancia de mosquitos en ciertas épocas del

año como pueden ser criaderos temporales y

permanentes en los alrededores de los

domicilios. Se representaron en las colectas

durante 14 días de Agosto de 2009, 6 de las 23

especies de mosquitos reportados previamente

para el municipio de Celestún (2) y que

estuvieron presentes en vegetación y en cebo

humano; en colectas de crepúsculo y amanecer:

Anopheles crucians, Coquilletidia venezuelensis,

Culex quinquefasciatus, Ochlerotatus sollicitans,

Ochlerotatus taeniorhynchus y Psorophora

confinnis. La localidad de Celestún está ubicada

al poniente de la región costera del Estado de

Yucatán y debido al clima semi-árido y a que en

la época en que se llevó a cabo el estudio se dan

las más altas precipitaciones (7), fue posible

capturar una alta abundancia (2202 ejemplares).

Las especies de mosquitos registradas capturadas

con excepción de Cx. quinquefasciatus, sus

sitios de crianza su distribución y su densidad

están estrechamente relacionadas con el

ambiente natural de humedal y manglar de zonas

costeras , ya que en éste están presentes las

condiciones de microhábitat óptimo para los

mosquitos, (7,8), como pueden ser las

inundaciones temporales que son favorables para

el desarrollo de los estadios inmaduros de

mosquitos debido a que contienen nutrientes que

1,018

4 23 4 2 2

1,081

42 21 2 0 10

200

400

600

800

1,000

1,200

Vegetación

Cebo humano


Celestún Yucatán

11

pueden ser renovados constantemente. Todas son

picadores persistentes que presentan actividad de

picadura tanto en el día como en la noche; estas

especies atacan a sus hospederos cuando estos

irrumpen en sus sitios de reposo lo que los

convierte en seria amenaza ya que en la zona de

estudio específicamente en el primer sitio, se

encuentra una salinera artesanal que es una de

las actividades a las que se dedican los

habitantes de la localidad además de la pesca y el

ecoturismo, y están expuestos a las picaduras de

estos mosquitos. Otra particularidad de estas

especies es que pueden viajar grandes distancias

desde sus sitios de crianza (1,3,9), razón por la

cual también han sido colectados en la zona

habitada de la localidad de Celestún. En los dos

estudios previos (5,6), llevados a cabo en la zona

centro de la localidad, se había registrado la

presencia de Cx. quinquefasciatus infectados

naturalmente con microfilarias; no así en el

presente estudio, esta especie es uno de los

vectores de Virus del Oeste del Nilo (VON) y su

ausencia podría estar influenciada por sus

hábitos biológicos, ya que presenta una fuerte

asociación con el ambiente doméstico y se le

encuentra en sitios de crianza de inmaduros

alrededor de las viviendas y reposando dentro de

las habitaciones de las mismas (9), lo que le da

importancia zoonótica.

Tanto en amanecer como en crepúsculo los

mosquitos fueron similarmente muy activos y

Oc. taeniorhynchus continuó siendo la especie

más abundante. A pesar de que en el amanecer

hubo una aparente mayor abundancia numérica,

ésta realmente se debió a que hubo un registro

mayor de Oc. taeniorhynchus (Cuadro 2), sin

embargo fue en el crepúsculo en el que hubo

mayores registros tanto de otras especies

colectadas como de mosquito del mangle; lo

anterior podría deberse a que en las horas de

colecta establecidas algunas especies no hayan

iniciado aún su actividad de picadura a pesar de

estar presentes en la zona.

Como era de esperarse, todas las especies de

mosquitos estuvieron más atraídos por los

colectores que sirvieron de cebo humano, en

comparación con la colecta de vegetación, ya

que los mosquitos antropofílicos (atraídos por

humanos) responden preferentemente al CO2

liberados en la respiración al ácido láctico y a

una variedad de compuestos del sudor (12, 13,

14). La poca presencia de mosquitos en

vegetación podría deberse a que en el momento

de la colecta, había pocos ejemplares en las

plantas de cada sitio en el momento en que se

pasó el aspirador. El conocimiento de la

distribución de las especies de es esencial para

determinar áreas de potencial riesgo de

transmisión de patógenos (3), dado por el

contacto que estos podrían tener con las personas

ya que según el Programa de Manejo de la

Reserva de la Biosfera Ría Celestún (8) más del

70% de las viviendas están construidas en

terrenos inundables y las tendencias del

crecimiento son en dirección a zonas aledañas a

la ría en donde se crían las distintas especies

mosquitos que se distribuyen por toda la zona,

enfatizando la importancia de este conocimiento

por seguridad y salud de habitantes y visitantes

de Celestún como centro turístico.

Debido a que se colectaron cuatro especies

ya reportadas en la localidad de interés zoonótico

por Dirofilaria immitis: An. crucians, Cx.

quinquefasciatus, Oc. sollicitans y Oc.

taeniorhynchus (6, 7), existe un riesgo potencial

de que la población de Celestún este expuesta a

los mosquitos infectados con microfilarias, ya

que habitan en una zona de alta prevalencia de

Filariosis (5), de igual manera están en contacto

o comparten los mismos espacios, con perros

(hospederos) de esas áreas, con el vector

infectado y con el parásito, por lo tanto, no sería

sorprendente que estudios futuros reportaran

evidencia de la enfermedad en humanos para

esta localidad.

Conclusiones

En el amanecer se registraron los mayores

números de mosquitos. Oc. taeniorhynchus, fue

la especie más abundante en todo el estudio.

Todas las especies de mosquitos capturados

estuvieron más atraídas hacia el cebo humano.

An. crucians, Cx. quinquefasciatus, Oc.

sollicitans y Oc. taeniorhynchus pueden estar en

contacto con las personas que entren a su hábitat

y presentar un riesgo zoonótico potencial.

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13

Brief Description of: Zika Virus Omar Eduardo Tova-Herrera1, Olga Karina Villanueva-Segura2, Jorge Martínez Dávila3, Mayra A. Gomez-Govea4,

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Manroy3, Irám Pablo Rodríguez-Sanchez6

1,2,4 Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas. 3Facultad de Medicina, 5Secretaria de

Salud de Jalisco. Guadalajara, Jalisco, México, 6Facultad de Medicina, Departamento de Genética. San Nicolás de

los Garza, Nuevo León 66451, México.E-mail:[email protected]

Abstract

Zika is a mosquito-borne viral disease caused by Zika virus (ZIKV), a flavivirus from the Flaviviridae

family, initially identified in 1947 in the Zika forest in Uganda in the Rhesus macaque population.

Comprehensive genomic comparison showed different sub-clades reflecting the existence of two main

lineages, one African and one Asia lineage. The main clinical symptoms in patients are low-grade fever (<

38.5 °C), transient arthritis/arthralgia with posible joint swelling (mainly in the smaller joints of the hands

and feet) and maculo-papular rash (that often starts on the face and then spreads throughout the body),

conjunctival hyperaemia or bilateral non-purulent conjunctivitis with general non-specific symptoms such

as myalgia, asthenia and headaches. Clinical symptoms of Zika disease appear after an incubation period

ranging between 3 and 12 days. The disease symptoms are usually mild and short lasting (2–7 days), and

infection may go unrecognised or be misdiagnosed as dengue. Association with neurological

complications such as Guillain-Barré syndrome remains under investigations. A high rate of asymptomatic

infection with ZIKV is expected, similar to other flaviviral infections, such as dengue and West Nile fever.

Approximately one in four people infected with ZIKV are believed to develop symptoms. Most people

fully recover without severe complications, and hospitalisation rates are low. To date, there have been no

reported deaths associated with ZIKV infection. The purpose of this article is to inform people about the

virus and create awareness of prevention against the mosquito.

Keywords: Zika Virus, Flavivirus, Aedes aegypti.

Introduction

The genus Flavivirus of the family

Flaviviridae comprises around 70 viruses such

as: dengue (DEN), Japanese encephalitis (JE),

St. Louis encephalitis (SLE), and yellow fever

(YF), which are important human pathogens.

The difficulty encountered with Flavivirus

classification partly derives from the extensive

geographic distribution and the diversity of the

arthropod vectors or vertebrate hosts associated

with biological transmission of these viruses1. In

this genus is found the Zika Virus (ZIKV), an

emerging arthropod-borne virus (arbovirus)

isolated in 1947 from a rhesus monkey in the

Zika Forest near Entebbe, Uganda during a

project researching Yellow Fever virus2,3. This

was the first human ZIKV infection reported in

Uganda in 1964, and the whole genome was

sequenced in 20064

Since 1947, sporadic human infections were

reported in Africa and Asia, been during 2007 in

Yasp State, the Federated States of Micronesia

the first well documented ZIKV outbreak,

approximately three-quarters of Yap residents

were infected with Zika virus5. By October 2013,

an outbreak occurred in French Polynesia with

approximately 11% of population infected6.

Also, there have been reports of returning

travellers from non-endemic countries including

Japan, Germany, Italy, Canada, Australia and the

United States7,8.

ZIKV has been isolated from Ae. africanus,

Ae. apicoargenteus, Ae. luteocephalus, Ae.

aegypti, Ae. vitattus, and Ae. furcifer

mosquitoes9,10 and the most common clinical

manifestations in patients with Zika infections

included high fever, malaise, stomach ache,

diarrhea, conjunctivitis, dizziness, and anorexia;

mailto:[email protected]


14

other less frequent manifestations included

myalgia, headache, retro-orbital pain, edema,

and vomit3,11

A brief description of the Zika virus

The Aedes mosquito that deposits the virus

in the epidermis and dermis of the bitten host

during a blood meal transmits ZIKV. Indeed,

both skin fibroblasts and epidermal keratinocytes

were found to be highly permissive to infection

with ZIKV Infection of skin fibroblasts rapidly

resulted in the presence of high levels of RNA

copy numbers and a gradual increase in the

production or ZIKV particles over time,

indicating active viral replication in the infected

cells12.

Although a ZIKV entrance mechanism into

the cell is poor understood, it is known that

flaviviruses mechanism is mediated by the E

glycoprotein and cell surface receptors13. The

initial contact between flaviviruses and the host

cell is mediated by glycosaminoglycans (GAGs),

such as heparan sulfate proteoglycans or

syndecans14, 15. GAGs are long, unbranched,

sulfated polysaccharides normally found linked

to core proteins attached to cellular surfaces

(proteoglycans) 16.

Virus-GAG interactions is due to an

electrostatic interaction between the positive

amino acids of E glycoprotein and the negative

charge of sulfate groups on the polysaccharide,

making this interaction for concentrating the

viral particles around the cell before involving

the receptors for entry14.

Despite several researchers trying to

elucidate the receptors that mediate the flavivirus

entry, so for this process is not well understood.

A large number of molecules have been

described as flavivirus candidate receptors in

different cell types, but their precise role in virus

endocytosis remains obscure13. Currently, the

best-characterized protein families that bind to

and enhance flavivirus infection are C-type

(calcium-dependent) lectin receptors and the

recently identified phosphatidylserine receptors,

T-cell immunoglobulin and mucin domain (TIM)

and TYRO3, AXL and MER (TAM), andαvß3

integrin13.

In the case of ZIKV, it was reported that

entry is mediated by DC-SIGN, AXL, Tyro3

and, although to a lesser extent, by TIM-1. Once

the virus is transported into the cell, a fight

against the host immune response starts. The

infection of fibroblasts in vitro with ZIKV

strongly induced the expression of several

antiviral gene clusters, such as RIG-I, MDA-5

and TLR3 that are able to detect the presence of

PAMPs15, this for the rapid elimination of the

infection.

Epidemiology and world distribution

After the first appearance in 1947, ZIKV has

been detected in humans from Nigeria during

from 1968–1975 reporting that 40% of Nigerians

had Zika virus neutralizing antibodies. Human

isolates were obtained from febrile children 10

months, 2 years (2 cases), and 3 years of age, all

without other clinical details described, and from

a 10-year-old boy with fever, headache, and

body pains17,18.

Also, from 1951 through 1981, ZIKV

infections have been reported in countries such

as Uganda, Tanzania, Egypt, Central African

Republic, Sierra Leone, and Gabon23-25, and

some countries from Asia such as India,

Malaysia, the Philippines, Thailand, Vietnam,

and Indonesia9,11.

An outbreak of the ZIKV was reported in

2007 on the island of Yap, an island of the

Federated States of Micronesia, physicians of

this island noted an outbreak of illness with

symptoms of rash, conjunctivitis, subjective

fever, arthralgia, and arthritis, similar but with

some impression of clinically differences with

dengue. They took samples and sent to Centers

for Disease Control and Prevention (CDC);

ZIKV was confirmed in 49 cases and 59 were

probable cases. Patients with confirmed or

probable Zika virus disease had IgM antibody

against ZIKV and neutralizing antibodies. No

hospitalization or death was reported. Analysis

of water-holding containers shows that 43%

were infected with mosquito larvae or pupae,

being the Ae. hensilli the predominant species

identified as this was present in 36% of the

containers5. Primates are thought to be wild

reservoirs, although another reservoir host has

not been excluded19. Interestingly, sexual


15

transmission of Zika virus between heterosexual

couples was proposed, suggesting another

transmission route for these adaptable viruses11.

Recently, Zika virus was detected in saliva

samples20.

By October 2013 in the French Polynesia, a

53-year-old woman and two other relatives

experienced a mild dengue-like illness consisting

of low fever (<38°C), asthenia, wrist and fingers

arthralgia, headache, and rash, ZIKV was

confirmed by RT-PCR. Ten weeks later the first

report 5,895 patients with suspected ZIKV

infections were recordeded. ZIKV tested serum

from 584 patients; 294 samples were positive.

Regarding the vector, the French Polynesia hosts

several mosquito species, notably Ae. aegypti,

but also other potential vectors, such as Ae.

Polynesiensis21.

On 7 May 2015, the Pan American Health

Organization (PAHO)/World Health

Organization (WHO) issued a recommendation

to states in the Region of Americas to establish

managements for ZIKV infection, as well as to

reduce the presence of ZIKV vectors22. On 15

May 2015, the Ministry of Health of Brazil

confirmed the circulation of ZIKV in the

country. This is the first report of autochthonous

ZIKV infection in Brazilk23. On 20 May 2015,

the state of Sao Paulo notified the detection of a

confirmed case without travel24.

Genetic aspects of Zika virus

Zika virus like other members of the

Flavivirus genus, contains a positive single-

stranded genomic RNA, containing 10,794

nucleotides encoding 3,419 amino acids, giving

a polyprotein that is processed into three

structural proteins. The capsid (C), the precursor

of membrane (prM) and the envelope (E), and

nonstructural proteins NS1 to NS5 (Table 1)4

Virus replication occurs in the cellular

cytoplasm1.

ZIKV is most closely related to Spondweni

virus, there appear to be three lineages of Zika

virus based on NS5 homology, the East-African

lineage, a West-African lineage, and the more

distally related Yap lineage25. The genome

sequences of Zika virus are published in

GenBank. The prototype MR766, isolated from

rhesus monkey 766 in Zika Forest 1947

(GenBank accession number AY632535.1 and

LC002520.1) and Zika EC 2007, obtained from

the Yap outbreak (Gen Bank Accession number

EU545988.1).

Fig 1. Monopartite, linear, ssRNA(+) genome of

of 10,794 bp.The virion RNA is infectious and

serves as both the genome and the viral

messenger RNA. The whole genome is

translated in a polyprotein 3,419 aa long, which

is processed co- and post-translationally by host

and viral proteases.


16

Fig. 2. Global distribution of Zika Virus, CDC 2016.

Table 1. Genomic region of Zika virus

Gene Zika virus

5’ Non-coding region (NCR) 106 nt

Capsid 122 aa

Pre-Membrane (PrM) 178 aa

Envelope 500 aa

NS (Nonstructuralprotein) 1 342 aa

NS2A 226 aa

NS2B 130 aa

NS3 617 aa

NS4A 127 aa

2K (C-terminal region) 23 aa

NS4B 252 aa

NS5 902 aa

3’ NCR 428 nt

Total length of genome 10794 nt

nt=nucleotide; aa= amino acid

Diagnosis

Assays for detection of ZIKV have been

published previously. One, using degenerate

primers, was designed from Zika virus samples

isolated from mosquitoes and humans in West

Africa26.Second, was a real-time PCR assay

constructed for investigation of the Yap

outbreak25 Both assays target the envelope gene.

The third assay was done in Singapore, and the

primers targeting the NS5 region were chosen as

this region is usually highly conserved among

flaviviruses whereas envelope genes could be

more subject to variation driven by antigenic


17

pressure. No Zika virus was detected in patient

samples, suggesting that Zika virus not be a

widespread infection in Singapore27. In patients

in French Polynesia, Zika virus RNA has been

detected in the urine more than ten days after

onset of disease28.

ZIKV specific IgM/IgG antibodies can be

detected by ELISA and immunofluorescence

assays in serum specimens, usually from day

five or six of symptomatic illness. Interpretation

of serological results should be considered very

carefully as false positive dengue IgM cross

reactivity both by indirect immunofluorescence

assay and rapid test has been reported in both

primary Zika virus infected patients and also

those with a probable history of other prior

flaviviral infection. There are no commercially

available serological assays for the detection of

Zika virus-specific antibodies25,29,30.

Prevention

We need to remain alert on new emerging or

re-emerging viral agents that could cause a

significant damage in the human population.

ZIKV-related virus such as Chikungunya

(CHIKV), West Nile (WNV) and dengue

(DENV) are the most known of human

pathogenic arthropod-borne viruses (arboviruses)

with altogether rates of morbidity and mortality

surpassing the Ebola´s rates.

Arboviruses present a high capability of

adaptation reflected by the fact of being

transmitted by arthropods (mosquitoes, ticks,

sandflies, midges, bug) and vertebrates during

the life cycle of the virus31. (approximately 300

types of mosquito can transmit arboviruses).

This diversity of species and the wide

distribution of these transmission vectors explain

why arboviruses are so successful in dispersing

globally via the mechanisms highlighted earlier.

A high proportion of arboviruses associated with

human and animal disease circulate in tropical,

and subtropical regions, where mosquitoes and

other flying insects tend to be abundant.

However, many arboviruses also circulate

amongst wildlife species in temperate parts of

the world.

The definition of arthropod-borne disease

transmission was developed in 1881 by Carlos

Finlay32 from the studies of Josiah Clark33, by

that time Finlay suggested that mosquitoes were

the agents for transmission of yellow fever, this

theory was later the base for methods, such as

mosquito eradication, which was used very

successfully in Cuba33, along with the

development of a yellow fever vaccine in the

protection of millions of humans from infection

by this virus34,35.

Currently, advances in both antiviral

molecules and vaccine development have help to

control diseases in patients with viral infections

such as AIDS, Swine influenza, etc. But

considering the eradication of RNA viruses is

not that simple, because of their high mutation

rate and particularly the case of arboviruses, it

has been reported that mosquitoes carry large

numbers of known and unknown viruses that

infect humans, primates, mammals, birds,

insects, and plants35,36.

Preventing or reducing arboviruses

transmission depends entirely on control of the

mosquito vectors or interruption of human–

vector contact.

Environmental management

Control of mosquitoes would be a disaster

that will impact on the survival of many wildlife

species, nonetheless, implementation of

temporary localized arthropod control measures

during epidemics, for example in high density

urbanized areas, can still play an important but

transient role in reducing the impact on humans

and animals of emerging arboviruses.

Control measures consist of integrated

strategies to eliminate or reduce the presence of

mosquitoes including the basics methods as

information to authorities and residents,

composed in urged to residents to remove

breeding site with a specific door-to-door

distributed leaflet.

Three types of environmental management

are defined:

The physical transformations to reduce

vector larval habitats, such as installation of a

reliable piped water supply in communities The

temporary changes involving frequent emptying

of water containers, cleaning of gutters,

sheltering stored tyres from rainfall, recycling or

proper disposal of discarded containers and


18

tyres, vigilance from the vicinity of homes of

plants such as ornamental that collect water in

the leaf axils. The human habitation or behavior

of contact, such as installing mosquito nets on

entry points (windows, doors).

Chemical control: larvicides Another strategy widely used but that should

be considered as complementary to

environmental management (restricted to

containers that cannot otherwise) is based on

chemical agents such as methoprene,

pyriproxyfen, and temephos. Two or three

application rounds carried out annually promptly

with proper monitoring of efficacy may suffice,

especially in areas where the main transmission

season is short. Precaution with these molecules

is because of safety of the active ingredients in

the final formulation varies from product to

product, making to required further studies, thus

placing chemicals in domestic water, particularly

drinking water, is often viewed with suspicion in

some communities. Also, current environmental

laws have discontinued the use of these

molecules because the impact on non-target

species, contamination of soil and water and

subsequent mosquito resistance to insecticides37.

Biological control

This control based on the introduction of

organisms that compete with or otherwise reduce

populations of the target species. The most

studied of these is Cyclopoidea (small freshwater

crustaceans) have proved to be effective in

operational contexts in specific container

habitats. Limitations of this methods are: the

expense and task of rearing the organisms on a

large scale, difficulty in applying them and their

limited utility in aquatic sites where temperature,

pH, and organic pollution may exceed the

narrow requirements of the organism. Biological

control methods are effective only against the

immature stages of vector mosquitoes in the

larval habitat where they are introduced38.

In addition, if we want to win the war

against the arboviruses, we need to focus on:

drugs and vaccine development (with

cooperation between academic and private

institutions); vector-controlled strategies (not

affecting the human health and others species);

encourage the development of research

programmes to understand the underlying

mechanisms of arboviral pathogenicity,

evolution, emergence and dispersal; improve

public health measures to inform and educate

citizens in local arboviral disease control

measures, including monitoring and reporting.

Finally, the lessons of the past let us know

that human race can face adversity, just like

arbovirus, humankind can also adapt to

environmental hard times just like did against

Black death, 1918 flu pandemic, Plague of

Justinian, third plague pandemic and more

recently avian and swine influenza46-47.

Acknowledgements

The authors gratefully acknowledge the

critical reading of the manuscript by Sergio

Lozano-Rodríguez, MD.

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Artrópodos y Salud Ene.-Jun., 2016. Vol. 3 No. 1 Mecanismos no químicos de comunicación en insectos

21

Mecanismos no químicos de

comunicación en insectos

Biol. Mara Ivonne Garza-Rodríguez

Universidad Autonoma de Nuevo León [email protected]

Resumen

El éxito de los insectos proviene de su capacidad para percibir e interpretar su entorno. Los insectos

pueden identificar y responder de forma selectiva a las señales de un entorno heterogéneo. Como los

insectos son generalmente de corto ciclo de vida, el comportamiento y condición reproductiva deben estar

sincronizados así que este es uno de los procesos en los que tiene participación la comunicación. La

mayoría de los insectos tienen algo de visión, y muchos poseen sistemas visuales altamente desarrollados,

siendo el ojo compuesto el más especializado, también presentándose en algunos estructuras como los

ocelos y stematas. Los estímulos agrupados en la mecanorrecepción son aquellos asociados con la

distorsión causada por movimiento mecánico como resultado del propio medio ambiente, la relación del

insecto con el medio ambiente o las fuerzas internas derivadas de los músculos. En conclusión los insectos

tienen en la comunicación la forma fundamental de percibir estímulos que los ayudan a responder de una

forma apropiada de acuerdo a sus necesidades biológicas.

Abstract

The success of insects comes from their ability to perceive and interpret their environment. Insects

can identify and selectively respond to signals form a heterogeneous environment. Because they are

generally short life cycle, behavior and reproductive condition must be synchronized so this is one of the

processes in which communication is involvement. Most insects have some vision, and many have highly

developed visual system, the eye being the most specialized compound, also appearing in some structures

such as ocelli and stemmatas. Stimuli grouped mechanoreception are those associated with the distortion

caused by mechanical movement as a result of the environment itself, the relationship of the insect to the

environment or the internal forces arising from muscles. In conclusion insects have in communicating the

fundamental way of perceiving stimuli that help them respond in an appropriate way according to their

biological needs.

Palabras clave: comunicación, reproducción, recepción, acústica, visual


22

1. Introducción

Los insectos son importantes miembros de

las comunidades bióticas, por dos razones:

Existen una gran cantidad de ellos y hay muchos

tipos diferentes. La abundancia promedio de

cualquier especie es simplemente una función de

lo pequeño que es, qué tan grande es su fuente de

recursos y cuántos enemigos se aprovechan de

ella. Pero los insectos son inusuales entre los

organismos en la abundancia de especies. De

acuerdo con la teoría ecológica convencional,

cada especie ocupa un nicho único, una manera

única de vivir que funciona mejor que cualquier

otra especie y que se define por el lugar donde se

vive y lo que consume. En algunas comunidades

de especies de insectos están tan apretadas que

ampliamente se solapan nichos, lo que resulta en

una competencia, pero la separación y la

inestabilidad ambiental previenen la exclusión de

un competidor por otro (1).

El éxito de los insectos proviene, al menos

en parte, de su capacidad para percibir e

interpretar su entorno. Los insectos pueden

identificar y responder de forma selectiva a las

señales de un entorno heterogéneo. Pueden

diferenciar entre los hospederos, tanto plantas

como animales, y distinguir entre los muchos

factores microclimáticos, tales como las

variaciones de humedad, temperatura y flujo de

aire. La complejidad sensorial permite tanto

comportamientos simples como complejos en los

insectos (2).

La comunicación animal no sólo es

fascinante, su estudio también ha permitido

importantes avances en nuestra comprensión

general de los sistemas motores y sensoriales, la

evolución y la especiación. Un atractivo

importante del estudio de la comunicación es que

un investigador puede cuantificar que tan

biológicamente importante puede ser la

información codificada, en particular las

propiedades físicas de una señal y luego

experimentalmente determinar si los propios

animales utilizan esta información.

Para algunos sistemas, las consecuencias

selectivas de las decisiones de comportamiento

basadas en dicha información también se pueden

cuantificar (3).

Debido a que gran actividad de los insectos

es nocturna, la orientación y la navegación no se

basan únicamente en las señales visuales

convencionales, en muchas especies activas

durante la noche, olores y sonidos juegan un

papel importante en la comunicación. La serie de

la información sensorial utilizada por insectos

difiere de la de los humanos. Dependemos

mucho de la información visual y aunque

muchos insectos tienen una visión bien

desarrollada, la mayoría hacen un mayor uso del

olfato y el oído de lo que lo hacen los humanos.

El insecto está aislado de su entorno externo

por una barrera cuticular relativamente

inflexible, insensible e impermeable. La

respuesta al enigma de cómo el insecto blindado

puede percibir su entorno más cercano se

encuentra en las modificaciones cuticulares

frecuentes y abundantes que detectan los

estímulos externos. Órganos de los sentidos

sobresalen de la cutícula o a veces se encuentran

dentro o debajo de ella. Las células

especializadas detectan los estímulos que pueden

ser categorizados como mecánicos, térmicos,

químicos, y visuales (2).

2. Comunicación en la reproducción.

La mayoría de los insectos son sexuales y

por lo tanto los machos y hembras adultos deben

estar presentes en el mismo tiempo y lugar para

que la reproducción tenga lugar. Como los

insectos son generalmente de corto ciclo de vida,

el comportamiento y condición reproductiva

deben estar sincronizados. Esto requiere

respuestas fisiológicas finamente sintonizadas y

complejas al ambiente externo. El cortejo puede

incluir representaciones visuales, sobre todo por

parte de los machos, incluyendo movimientos de

las piezas del cuerpo, tales como antenas,

pedúnculos, las alas y movimientos ritualizados.

Sistemas de cortejo auditivo y sistemas de

reconocimiento del apareamiento son comunes

en muchos insectos por ejemplo en Hemiptera,

Orthoptera y Plecoptera (2).

2.1 Canto de llamada del macho en

saltamontes

Las señales acústicas de los machos y la

información que transmiten a menudo son

determinantes críticos en la elección de la

hembra. Los saltamontes “bladder” (Bullacris


23

membracioides) es uno de los numerosos

taxones de ortópteros que utilizan el sonido

como base del cortejo y apareamiento en última

instancia. Se han examinado las respuestas

acústicas de las hembras a las llamadas de

reproducción de los machos (4).

A continuación se presentan oscilogramas

representando la amplitud de onda de los cantos

de advertencia emitidos por estos insectos,

mientras que el último muestra el sonido que la

hembra produce como respuesta al canto del

insecto del macho de su misma especie. Figura1

(4).

3. Comunicación visual

La mayoría de los insectos tienen algo de

visión, y muchos poseen sistemas visuales

altamente desarrollados. Los componentes

básicos que se necesitan para la visión son una

lente para enfocar la luz sobre los fotorreceptores

(células que contienen moléculas sensibles a la

luz) y un sistema nervioso lo suficientemente

complejo como para procesar la información

visual. La estructura fotorreceptora es el

rabdoma, que comprende varias células

adyacente retinula (o nervios) y que consta de

microvellosidades de empaquetamiento

compacto que contienen pigmento visual. La luz

que cae sobre el rabdoma cambia la

configuración del pigmento visual, lo que

provoca un cambio de potencial eléctrico a

través de la membrana celular.

3.1 Ojos compuestos

El órgano visual más sofisticado en insectos

es el ojo compuesto. Prácticamente todos los

adultos y ninfas tienen un par de ojos

compuestos prominentes, que a menudo cubren

cerca de 360 ° del espacio visual. El ojo

compuesto se basa en la repetición de muchas

unidades individuales llamadas omatidias (2).

Figura 2. Secciones longitudinales de los ojos simples: (a) sistema sencillo de una larva de lepidóptero (5);

(b) un ocelo adaptado a la luz ocelo medio de una langosta (6).


24

Figura: Detalles del ojo compuesto de: (a) una

vista que muestra la disposición de la omatidia;

(b) una sola omatidia con una ampliación

transversal (7 y 8).

Los ojos compuestos son los órganos

visuales más evidentes y conocidos de insectos,

pero hay otros tres medios por los cuales un

insecto puede percibir la luz: detección dérmica,

stematas y ocelos.

3.2 Detección dérmica

En los insectos capaces de detectar la luz a

través de su superficie corporal, hay receptores

sensoriales por debajo de la cutícula del cuerpo,

pero sin sistema óptico con estructuras de

enfoque. La evidencia de esta capacidad de

respuesta general a la luz

proviene de la persistencia de las respuestas

fóticas después de cubrir todos los órganos

visuales, por ejemplo en las cucarachas y las

larvas de lepidópteros. Algunos insectos ciegas

que viven en cuevas, sin órganos visuales

reconocibles, responden a la luz, al igual que las

cucarachas decapitadas. En la mayoría de los

casos, las células sensibles y su relación con el

sistema nervioso central aún no se han

descubierto. Sin embargo, dentro del cerebro

mismo, los áfidos tienen células sensibles a la

luz que detectan cambios en la duración del día,

una señal ambiental que controla el modo de

reproducción (es decir, ya sea sexual o

partenogenética). El ajuste del reloj biológico se

basa en la capacidad de detectar el fotoperíodo

(2).

3.3 Stematas

Los únicos órganos visuales de los insectos

holometábolos larvarios son los stematas, a

veces llamados ocelos larvales. Estos órganos se

encuentran en la cabeza y varían de un único

punto pigmentado en cada lado hasta seis o siete

stematas más grandes, cada uno con numerosos

fotorreceptores y células nerviosas asociadas. En

el stemma más simple, una lente cuticular se

superpone a un cuerpo cristalino secretado por

varias células. La luz es enfocada por la lente en

un solo rabdoma. Cada punto de la stemma va en

una dirección diferente de modo que el insecto

ve sólo unos pocos puntos en el espacio de

acuerdo con el número de stematas (2).

3.4 Ocelos

Muchos insectos adultos, así como algunas

ninfas, tienen ocelos dorsales además de ojos

compuestos. Estos ocelos no están relacionados

embriológicamente al stemata. Normalmente, los

tres pequeños ocelos se encuentran en un

triángulo en la parte superior de la cabeza. La

cutícula que cubre un ocelo es transparente y

puede ser curva como una lente. Se recubre las

células epidérmicas transparentes, de manera que

la luz pasa a través de una retina extendida

compuesta de muchos rabdomas. Así pues, los

ocelos integran la luz sobre un campo visual

grande, de forma óptica y neurológicamente. Son

muy sensibles a la intensidad de la luz baja y los

cambios sutiles en la luz, pero no están

diseñados para alta resolución de visión. Ellos

parecen funcionar como "detectores de

horizonte" para el control de los movimientos de

balanceo y cabeceo en vuelo y para registrar los

cambios cíclicos en la intensidad de la luz que se

correlacionan con los ritmos de comportamiento

diurnos (2).

3.5 Producción de luz

Las representaciones visuales más

espectaculares de insectos involucran la

producción de luz o bioluminiscencia. El papel

principal de la emisión de luz se dice que es en la

señalización de cortejo. Esto implica la variación

específica en la especie de la duración, número y

tasa de destellos en un patrón, y la frecuencia de

repetición del patrón (2). El estudio del

mecanismo de emisión de luz en la luciérnaga

Photinus pyralis puede ser típicos de un


25

coleoptera luminiscente. La enzima luciferasa

oxida un sustrato, luciferina, en presencia de una

fuente de energía de trifosfato de adenosina

(ATP) y oxígeno, para producir oxiluciferina,

dióxido de carbono, y luz. La variación en la

liberación de ATP controla la velocidad del

destello, y las diferencias en el pH puede

permitir variación en la frecuencia (color) de la

luz emitida (2).

Los patrones de destello de machos de un

número de especies de luciérnaga Photinus

(Coleoptera: Lampyridae), cada uno de los

cuales genera un patrón distintivo de señales con

el fin de obtener una respuesta de hembras de la

misma especie (22).

4. Mecanorrecepción

Los estímulos agrupados aquí son aquellos

asociados con la distorsión causada por

movimiento mecánico como resultado del propio

medio ambiente, la relación del insecto con el

medio ambiente o las fuerzas internas derivadas

de los músculos. Los estímulos mecánicos

detectados incluyen el tacto, estiramiento

corporal y el estrés, la posición, la presión, la

gravedad y las vibraciones, incluidos los

cambios de presión del aire y del sustrato

involucrado en la transmisión del sonido y la

audición. El cuerpo de los insectos está revestido

con proyecciones cuticulares. Estas se llaman

microtriquios si muchos surgen de una célula o

pelos, cerdas, setas o macrotriquia sí son de

origen multicelular. Las sensilias táctiles son

estimuladas solamente durante el desplazamiento

real del pelo. La sensibilidad es variable, siendo

algunos tan sensibles que responden a las

vibraciones de las partículas de aire causadas por

el ruido (2).

Sección longitudinal de una sensila tricoidea

que muestra la disposición de las tres células

asociadas (21).

4.1 Sonido

El sonido es una fluctuación de la presión

transmitida en una forma de onda a través del

movimiento del aire o el sustrato, incluyendo el

agua. La audición permite también la detección

de los depredadores, como los murciélagos

insectívoros, que utilizan ultrasonido en la caza.

Probablemente cada especie de insecto detecta el

sonido dentro de uno o dos rangos de frecuencias

relativamente estrechas que se relacionan con

estas funciones. El método más común de

producción de sonido de los insectos es por

estridulación, en el que una parte del cuerpo

especializado, el rascador se frota contra otro.

(2).

La descendencia de muchas especies de

animales solicita alimentos de los padres usando

señales que lo piden, mientras que los padres

manipulan el comportamiento de la descendencia


26

para optimizar la aptitud usando diversas

señales. La hembra de Parastrachia japonensis

(Heteroptera) provee a sus nidos con drupas del

árbol huésped. Hembras de aprovisionamiento se

escucharon recientemente emitiendo un sonido

de aleteo de tono bajo que se caracterizó en el

campo usando un micrófono de contacto. Un

solo llamado consistía en múltiples series de

sonidos de diferentes longitudes (9). Este fue el

primer informe de un progenitor que produce

sonido y/o señales de vibración directamente a

su descendencia en eventos progresivos de

aprovisionamiento en un insecto sub social.

Figura: Espectro de potencia del segmento anterior de una llamada de aprovisionamiento (a) y del registro

de cuando la hembra estaba ausente del nido (b, sólo el ruido de fondo)

Este experimento de reproducción indicó

que un número significativamente mayor ninfas

se reunieron en una drupa con la llamada de

aprovisionamiento de la madre que sin la

llamada (9).

Un ejemplo de grabación de audio

(oscilogramas) realizado durante y después del

apareamiento en Troglophilus neglectus.

Secciones agrandadas muestran vibración

abdominal (izquierda) y las señales de vibración

de todo el cuerpo (a la derecha). Antenación

(Ant.) y después de la cópula las fases se

muestran sólo en parte (como se indica por la

línea de extremo abierto), justo después de la

separación del macho y la hembra (10).


27

4.2 Ultrasonido

Aunque la depredación que lleva a cabo el

murciélago de los insectos se produce en la

oscuridad de la noche, es evidente que una serie

de taxones de insectos pueden detectar los

ultrasonidos de los murciélagos y tomar una

acción evasiva adecuada. La respuesta

conductual al ultrasonido, es llamada la

respuesta de sobresalto acústico e involucra

contracciones musculares muy rápidas y

coordinadas. Esto conduce a reacciones como

"congelamiento", desviación impredecible en

vuelo o rápido cese de vuelo y caída hacia el

suelo. Hasta la fecha, los insectos pertenecientes

a cinco órdenes han demostrado ser capaces de

detectar y responder a los ultrasonidos: crisopas

(Neuroptera), escarabajos (Coleoptera), mantis

religiosa (Mantodea), polillas (Lepidoptera),

langostas, saltamontes y grillos (Orthoptera) (2).

4.3 Vibratoria

Muchos insectos pueden detectar

vibraciones transmitidas a través de un sustrato

en barreras sólido-aire o sólido-agua o a lo largo

de una superficie de agua-aire. La percepción de

las vibraciones del sustrato es particularmente

importante para los insectos que habitan en el

suelo, las especies especialmente nocturnas e

insectos sociales que viven en nidos oscuros (2).

Figura: En una investigación se observó que el comportamiento reproductivo de pentatómidos está

mediada por las señales de comunicación de diferentes modalidades, a continuación se observa un

oscilograma y espectro de frecuencia de un pulso de cantos vibratorios en Edessa meditabunda: (a)

canción macho 1 (MS1); (b) canción rival macho (MR); (c) canción macho 2 (MS2); (d) canción hembra 1

(FS1).

La comunicación vibratoria comienza con la

emisión de la primera canción del macho (MS1).

Esta canción fue producida cuando un macho

estaba solo en la arena, en presencia de una

hembra o como respuesta a una canción

femenina. Durante el cortejo, la MS1 puede

cambiar a MS2 o interrumpirla durante algunos

minutos. En respuesta a las hembras MS2 emite

su primera canción (FS1), y, después de la

emisión de algunos impulsos, la pareja comienza

a intercambiar FS1 y MS2 primero intercaladas y

más tarde con impulsos superpuestos (11).

5. Termorrecepción

Los insectos detectan variación en la

temperatura, como se ve por su comportamiento,

sin embargo, la función y la ubicación de los

receptores es poco conocida. Los más estudiados

detectan la temperatura con sus antenas: la

amputación conduce a una respuesta térmica

diferente de la de los insectos con antenas

intactas. En las hormigas cortadoras de hojas

(especies Atta), hay sensillas termosensibles que

se agrupan en el flagelómero antenal apical y

responden tanto a los cambios de temperatura del

aire como a radiaciones de calor (2).

La temperatura tiene efectos drásticos en las

propiedades básicas de las células nerviosas y

musculares, tales como la tasa de pico, la

velocidad de conducción, la integración

sináptica, etc. (12, 13, 14). Por lo tanto, es un

problema grave para los animales poiquilotermos

mantener sus funciones neuronales y motoras


28

que opere a pesar de los cambios rápidos en la

temperatura del ambiente (15). En la parte

efectora, los cambios de temperatura afectan

enormemente las velocidades de contracción de

los músculos y por lo tanto el rendimiento motor

(16, 17). En las vías aferentes, el procesamiento

de las señales sensoriales se ve influenciado por

los cambios de temperatura de una manera

similar (18, 19, 20).

Las diferencias en la temperatura del cuerpo

entre el emisor y el receptor pueden inducir un

desajuste entre los parámetros de las señales y

las propiedades del receptor, evitando de este

modo de reconocimiento de señal. Los

saltamontes, por ejemplo, producen patrones de

sonido específicos de cada especie, moviendo

rítmicamente sus patas traseras a través de sus

alas delanteras. Estos movimientos se hacen más

rápido a temperaturas elevadas, y por lo tanto las

subunidades de la señal se acortan y se repiten a

un ritmo mayor - cambios por un factor de dos y

más de longitud subunidad no son poco comunes

(23).

6. Conclusiones

La comunicación en los insectos se da

debido a la necesidad del organismo por

satisfacer una necesidad biológica ya sea

alimentarse, reproducirse, huir de sus

depredadores, entre otras. Al detectar estímulos

externos, el insecto tiene la capacidad de

reaccionar y preparar una respuesta, la

comunicación puede ser visual, auditiva,

vibratoria entre otras pero aunque cada uno de

los procesos se ha estudiado individualmente,

estos guardan una estrecha relación, debido a

que de acuerdo a la exigencia de cada especie,

serán los tipos de comunicación que realizará

dependiendo de su ambiente, la competencia que

se le presente, duración del ciclo de vida,

alimentación o depredadores. El éxito del insecto

dependerá de su habilidad para detectar estos

estímulos, responder y con esto realizar las

funciones vitales que necesite.

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Pedraza Muñoz Raymundo; Ponce Samaniego J. León; Quintanar Alvarado Eduardo A.; Valdés Mejorado

David; Villareal Ramírez Gerardo.

Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Autónoma de Nuevo León, Ap. Postal 109-F, San Nicolás de los

Garza, NL 66450, México e-mail de contacto: [email protected]

RESUMEN:

El virus de la tristeza de los cítricos (CTV) es causante de la enfermedad denominada “tristeza de

los cítricos” llamada así debido a los efectos de decaimiento, clorosis y defoliación causados en este tipo

de plantas, ocasionando una de las enfermedades más destructivas en el cultivo de los cítricos. Ha sido

considerada como la virosis más importante y devastadora de la citricultura a escala mundial, llegando a

causar pérdidas muy importantes e incluso millonarias a los agricultores. Dicha enfermedad es provocada

por un virus de la familia Closteroviridae, género Closterovirus y es transmitido por injertos y por áfidos

(pulgones) en forma semipersistente. El vector más eficiente es el pulgón café, Toxoptera citricida, este es

un insecto diminuto que pertenece al orden Homoptera, este grupo se caracteriza por que sus integrantes

son fitófagos y al alimentarse de las plantas transmiten patógenos (principalmente virus) de importancia

fitosanitaria. El combate contra la enfermeda involucra principalmente el uso de material de siembra libre

del virus, y evitar la entrada de T. citricida en áreas donde no está presente ya que una vez que se

establece su combate es muy difícil. Actualmente existen en México y en el mundo una alta normatividad

para establecer los cultivos libres del patógeno y del vector, además que se trabaja arduamente con

métodos de control biológico como lo son el uso de depredadores naturales y hongos entomopatógenos.

INTRODUCCIÓN:

El virus de la tristeza (CTV) causante de la

“tristeza de los cítricos” tiene distribución

mundial y ocasiona una de las enfermedades más

destructivas en el cultivo de los cítricos (1). Ha

sido considerada como la virosis más importante

y devastadora de la citricultura a escala mundial

(2), llegando a causar pérdidas muy importantes

e incluso millonarias a los agricultores.

Dicha enfermedad afecta prácticamente a

todos los tipos de cítricos, pero principalmente al

naranjo, toronjo y lima, pertenecientes al género

Citrus (3); es provocada por un virus de la

familia Closteroviridae, género Closterovirus y

es transmitido por injerto (Figura 1 y 2) y por

áfidos en forma semipersistente. El vector más

eficiente es el pulgón café, Toxoptera citricida

(Figura 3).

Figura 1.- Injerto http://www.jardin-

undani.com/empelts/Xip-mallorquin.htm

Figura 2.- Pulgones transmisores del CTV

http://www.cambiodigital.com.mx/mosno.php?nota=8

0962&seccion=Principal

http://www.cambiodigital.com.mx/mosno.php?nota=80962&seccion=Principal

http://www.cambiodigital.com.mx/mosno.php?nota=80962&seccion=Principal



31

Figura 3.- El pulgón café Toxoptera citricida

http://biblioteca.inifap.gob.mx:8080/jspui/bitstream/h

andle/123456789/698/6.pdf?sequence=1

La enfermedad de la tristeza produce el

colapso y decaimiento de los cítricos mediante

desecación y marchitamiento más o menos

repentinos de sus hojas, seguidos por la muerte

del árbol o muerte descendente de sus ramas y

recuperación parcial de estas últimas, además de

mostrar picaduras en el tallo (3).

Aunque la enfermedad afecta a algunos

árboles aun cuando se desarrollen sobre sus

propias raíces (plántulas), la tristeza produce

daños más severos en árboles que se injertan o

geman en los patrones de otras especies, como

los árboles del naranjo dulce que se desarrollan

en los patrones del naranjo agrio. (3)

Los síntomas de la tristeza varían en los

diferentes hospedantes e incluso entre los

mismos hospedantes en caso de que se

desarrollen en diferentes patrones. Los síntomas

típicos de esta enfermedad se pueden dividir en

tres:

1. Tristeza: siendo éste el más importante,

donde ocurre un decaimiento rápido o lento;

el decaimiento se caracteriza por una

clorosis y defoliación de los árboles,

asociado a una severa pudrición de raicillas y

a una pérdida de material de reserva a nivel

del tejido cortical bajo la zona de unión del

injerto (Figura 4).

2. Acanaladuras en la madera: se caracteriza

por la presencia de estrías o acanaladuras

longitudinales a nivel del xilema con

proyecciones puntiagudas de la corteza, las

que calzan perfectamente con las cavidades

presentes en la madera. Ello conduce a una

pérdida de productividad de las plantas

afectadas.

3. Amarillez de plantas francas de pie o

“seedling yellows”: donde ocurre una

clorosis intensa y normalmente se da bajo

condiciones de invernadero. (1)

Estos síntomas siempre se asocian a un

menor vigor de los árboles, a un crecimiento

deficiente y al desarrollo de frutos pequeños y

deformes.

Figura 4.- Síntomas de la planta afectada http://articulos.infojardin.com/PLAGAS_Y_ENF/Enfermedades/virus-tristeza.htm

El combate involucra principalmente el uso

de material de siembra libre del virus, y evitar la

entrada de T. citricuda en áreas donde no está

presente ya que una vez que se establece su

combate es muy difícil. (3)

Características de los Closterovirus

Los closterovirus son conocidos como un

grupo viral que infectan plantas de importancia

económica y son productores de enfermedades

devastadoras como el amarillamiento de la

remolacha y la tristeza de los cítricos. Son

partículas filamentosas no envueltas (Figura 5),

es decir, sin membrana de lípidos y

excepcionalmente largo aproximadamente 1250-

2200 nm de longitud y de 10 a 13 nm de

diámetro (3).



32

Figura 5.- Partículas filamentosas del CTV http://cicshare.dep.usal.es/avelino/Bacteriologia/Tema%2017%20C

losterovirus%20A.pdf

El cuerpo del virión es montado por la

principal proteína de la cápside (CP) y la cola de

la proteína de la cápside menor (CPM).

Pertenecen al grupo 4 de la clasificación de

Baltimore, es decir, poseen un RNA de cadena

sencilla con polaridad positiva (4).

Cuentan con genomas mono catenarios de

15.5 -19.3kb, en los que se distinguen dos grupos

de genes altamente conservados, con diferentes

estrategias de expresión.

El primer bloque incluye los genes

implicados en la replicación que codifican para

la replicasa viral (RdRp) y las posibles helicasas

(HEL) y metiltransferasas (MT) y para una o dos

proteasas similares a la papaína. Este bloque de

genes presenta dos estrategias de expresión, una

mediado por la síntesis de una poli proteína

(ORF 1a) y cambio en la pauta +1 de lectura

traduccional (ORF 1b). El procesamiento

proteolítico, catalizado por las proteasas virales,

genera las posibles HEL y MT, mientras que la

RdRp es generada mediante el cambio en la

lectura traduccional.

La expresión del segundo bloque de genes,

localizado en el extremo 3`del RNA genómico,

se realiza en forma de RNA´s subgenómicos, y

codifica para los genes exclusivos de esta familia

HSP70, CPd y CP y para las proteínas p&4, p6,

que probablemente están implicadas en el

movimiento célula a célula (4).

Los miembros de este género están

distribuidos mundialmente y su rango de

hospedantes es amplio, afectando a especies

cultivadas, tanto herbáceas como leñosas de

interés agrícola y ornamental (3).

Características del vector

Los áfidos son insectos diminutos de

aproximadamente 1/8 de pulgada de largo

(Figura 6).

Figura 6.- Áfidos debajo de una hoja http://academic.uprm.edu/ofarrill/HTMLobj-227/afidos.pdf

Los áfidos pertenecen al grupo de los

homópteros al igual que las escamas,

chicharritas y la mosquita blanca. Se parecen

mucho a los hemípteros, pero sus partes bucales,

que también forman un punzón, surgen desde la

parte posterior de la cabeza. Tienen gran

importancia en la agricultura, pues todas sus

especies son herbívoras y suelen transmitir

enfermedades virales (5).

Tienen el cuerpo blando y su parte posterior es

redondeada en forma de pera. Se caracterizan

porque en la parte posterior poseen dos

estructuras tubulares de color oscuro. A estas

estructuras se les llama cornículos (6). El color

varía desde tonos amarillosos hasta colores

oscuros dependiendo de las diferentes especies

de áfidos (1) (Figura 7). Normalmente, los áfidos

no tienen alas, pero las pueden desarrollar para

migrar a nuevas áreas a causa del hacinamiento

o la escasez de alimento. Estos insectos se

reproducen en grandes números en un tiempo

relativamente corto. Pueden completar su ciclo

de vida en aproximadamente 10 a 14 días, que

consta de tres etapas: huevo, ninfa y adulto (6).

Los áfidos se alimentan de las hojas, los

renuevos, las flores, los frutos, las ramas, los

tallos y las raíces de una gran diversidad de

plantas, árboles y arbustos.



33

Figura 7.- Áfidos a través de un microscopio http://academic.uprm.edu/ofarrill/HTMLobj-227/afidos.pdf

Además del daño que causan por sí solos,

los áfidos transmiten virus que causan

enfermedades serias en las plantas (3). También,

estas plagas secretan una sustancia azucarada

tipo melaza que promueve el crecimiento de un

hongo negro conocido como fumagina o moho

de hollín. Este hongo no parasita las plantas, los

árboles ni los arbustos, pero les desluce su

apariencia y disminuye la acción fotosintética

del follaje. Las hormigas también se alimentan

de esta secreción azucarada y tienen una relación

simbiótica con los áfidos. Esta relación

simbiótica consiste en que las hormigas protegen

a los áfidos y los transportan de una planta a otra

a cambio de la secreción azucarada (6).

Situación Geográfica

La enfermedad es endémica en las

principales áreas citrícolas de Asia (China y

Japón), África del Sur y Australia y en muchas

de las zonas citrícolas de América (Argentina,

Brasil, Uruguay Venezuela). Se encuentra

ampliamente extendida en casi todo el mundo

(Figura 8).

El pulgón café de los cítricos se describió

originalmente de especímenes colectados en

Hawaii en 1907 por Kirkaldy y algunos autores

indican que es originario del este asiático

(Blackman y Eastop, 2000). Desde inicios de la

mitad del siglo XX su distribución abarcaba gran

parte de Asia, Nueva Zelanda, Australia, algunas

islas del Pacífico, y el sur del Sahara y

Madagascar en África. Actualmente el insecto se

encuentra distribuido en los cinco continentes (7)

Situación en México

De acuerdo con el reporte del SENASICA

de junio de 2012 (7), Toxoptera citricida se

encuentra distribuido en los estados de la

Península de Yucatán, Tabasco, Veracruz,

Chiapas, Puebla e Hidalgo y en algunos

municipios de Guerrero, Oaxaca, Morelos,

Querétaro, San Luis Potosí, Jalisco y Nayarit.

Figura 8.- Distribución mundial de Toxoptera

citricida http://www.cesaveson.com/fckeditor/editor/filemanager/connectors

/aspx/UserFiles/file/Pulgoncafe.pdf

El SENASICA a través de la Dirección

General de Sanidad Vegetal, coordina la

campaña contra el Virus Tristeza de los Cítricos

y su vector (Toxoptera citricida) en la cual la

principal acción a realizar es el control biológico

del pulgón café de los cítricos. (7).

Impacto económico

En todas estas zonas citrícolas (figura 8) el

patrón naranjo amargo desapareció hace años, ya

que las variedades injertadas sobre él decayeron

rápidamente, causando la muerte de unos 40

millones de árboles. En los países citados, el

CTV se dispersa muy fácilmente, ya que el

pulgón pardo de los cítricos (Toxoptera

citricida), está presente. Este pulgón es el vector

más eficaz de la enfermedad y además, causa por

si solo una importante plaga en los cítricos (8).

En otras zonas citrícolas importantes, los

aislados mayoritarios de CTV son comunes o

poco agresivos, pero el virus infectará en un

futuro próximo al 100% de los árboles en

España, Israel y Estados Unidos de América

(Florida y California).



34

El insecto se caracteriza por ser un eficiente

transmisor del Virus de la tristeza de los cítricos

(VTC) el cual en el mundo ha provocado la

muerte de más de 116 millones de árboles,

establecidos sobre naranjo agrio (Citrus

aurantium L.) y que se intensifica al interactuar

con el pulgón café de los cítricos (T. citricida) ya

que el insecto tiene la facultad de transmitir

específicamente las variantes más severas del

virus. Las regiones citrícolas de Brasil,

Argentina, España, Venezuela, EUA (California,

Florida) han sido las más afectadas (7).

Medidas Fitosanitarias

La SENASICA-DGSV ha enlistado una

serie de acciones emprendidas correspondientes

a la normatividad aplicable en material de

cítricos en general o específicamente aplicable al

CTV. Entre ellas se encuentran la NORMA

Oficial Mexicana NOM-079-FITO-2002,

Requisitos fitosanitarios para la producción y

movilización de material propagativo libre de

virus tristeza y otros patógenos asociados a

cítricos (7)

Regulatorias

Al tratarse de una plaga con alto potencial

de transmisión del VTC, se recomienda la pronta

acción en el momento de su detección en zonas

donde el virus ya está presente. En México, una

vez que se detecta y confirma la presencia del

pulgón café de los cítricos se lleva a cabo un

programa de Manejo Integrado de Plagas, éste

está descrito en la NOM-031-FITO-2000 e

incluye entre otras:

a) Confinamiento de la plaga en área afectada y

regulación de la movilización, mediante la

operación de puntos de verificación interna de

los cordones fitozoosanitarios o los interestatales

que sean necesarios.

b) Aplicación de control químico con productos

autorizados por la Comisión Intersecretarial para

el Control del Proceso y Uso de Plaguicidas,

Fertilizantes y Sustancias Tóxicas

(CICOPLAFEST).

c) Liberación de Harmonia axyridis u otros

organismos benéficos con efectividad biológica

comprobada en contra del pulgón café de los

cítricos.

d) Intensificación del muestreo y diagnóstico del

virus tristeza de los cítricos y del pulgón café de

los cítricos.

e) Eliminación de plantas positivas al virus

tristeza de los cítricos.

Protección

Control químico:

No existe una lista de insecticidas autorizados

por CICOPLAFEST para el combate específico

de Toxoptera citricida en México; no obstante,

existe una lista autorizada para Toxoptera

aurantii. Se recomienda leer las etiquetas de

cada producto, seguir las recomendaciones de

seguridad, no exceder las dosis indicadas,

aplicarlos oportunamente y respetar el intervalo

de seguridad. Adicionalmente, se recomienda

consultar a los técnicos de la Campaña contra

VTC, o técnicos de Sanidad Vegetal (7).

Control biológico:

Éste es uno de los pilares en la estrategia de

manejo integrado que recomienda el gobierno

federal, y está contenido en la NOM-031-FITO-

2000. A nivel mundial se han identificado al

menos 113 especies de enemigos naturales entre

parasitoides, depredadores y entomopatógenos

que atacan al pulgón café de los cítricos (Figura

9 y 10). En México se encuentra presentes, al

menos, 18 de ellos (Michaud, 1998; López-

Arroyo et al., 2008). En México, el control

biológico se ha enfocado al uso de depredadores,

principalmente Harmonia axyridis, y hongos

entomopatógenos.

Figura 9.- Colonia de T. citricida con masas de

huevos de la catarinita Cycloneda sanguinea.



35

http://www.cesaveson.com/fckeditor/editor/filemanager/connectors


Figura 10.- Adulto Cycloneda sanguinea

depredando en colonias de T. citricida en brotes

de naranjo. http://www.cesaveson.com/fckeditor/editor/filemanager/connectors


Con respecto a los entomopatógenos se

conoce la presencia de, al menos, cinco especies

de hongos con potencial en el control de esta

plaga. De éstas Paecilomyces fumosoroseus es la

especie que se ha considerado con mayor

potencial pues se han alcanzado niveles de

mortalidad superiores al 90 % en campo

(Hernández-Torres et al., 2006) (Figura 11).

Figura 11.- Evaluación de Hongos

Entomopatógenos para el Control del Pulgón

Café de los Cítricos. http://biblioteca.inifap.gob.mx:8080/jspui/bitstream/handle/123456

789/698/6.pdf?sequence=1

Control legal:

México, al igual que la mayoría de los

países, tiene una legislación fitosanitaria

conformada por una serie de normas emergentes

u oficiales para impedir que lleguen al territorio

nacional plagas y/o enfermedades que pondrían

en riesgo su agricultura. En el caso del pulgón

café de los cítricos las medidas cuarentenarias

están definidas en la NOM-011-FITO-1995, por

la que se establece la cuarentena exterior contra

las plagas de los cítricos, y la NOM-007-FITO-

1995, por la que se establecen los requisitos

fitosanitarios para la importación de material

vegetal propagativo.

Bibliografía:

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Mora Aguilera Gustavo Ficha técnica CTV

Virus de la Tristeza de los Cítricos Colegio

de Postgraduados SAGARPA Servicio

nacional de sanidad, inocuidad y calidad

agroalimentaria.

Artrópodos y Salud Ene.-Jun., 2016. Vol. 3 No. 1 Tifus Murino: Generalidades

37

TIFUS MURINO:

GENERALIDADES Caballero Treviño Yesica, Gómez Santillán Alejandro, Meléndez Villanueva Mayra Alejandra, Vargas López

Armando. [email protected].

Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas, San Nicolás de los Garza

INTRODUCCION

La participación en la historia de la

humanidad de las antropozoonosis, que abarcan

los grupos de fiebres manchadas y tifo, han

mermado la vida de más seres humanos que las

guerras.

La enfermedad del tifus murino ha originado

gran número de epidemias y ha estado presente

desde antes de la conquista, se dice que es

asociada a pobreza, hacinamiento, malas

condiciones higiénicas y guerras.

El tifus murino o endémico es causado por

Rickettsia typhi (Rickettsia mooseri), la cual se

transmite habitualmente por la pulga de la rata

(Xenopsylla cheopis), ocasionalmente puede ser

transmitida por la pulga del gato

(Ctenocephalides felis), al igual que por la pulga

del ratón (Leptopsyllia segnis). (1)

Las rickettsias son bacterias pequeñas,

cocobacilos Gram negativos, pleomorfos,

intracelulares obligados. Por esas dos

características, existieron dudas mucho tiempo

sobre si pertenecían a los virus o a las bacterias.

Son muy sensibles y raramente sobreviven fuera

del huésped (reservorio o vector), a excepción

de Coxiella burnetii (productora de la fiebre Q)

que es resistente a la desecación, al calor y la luz

solar. (2)

La incidencia de esta enfermedad es mayor

en los meses de verano y otoño cuando las

pulgas de las ratas son más activas. En la

mayoría de los casos se asocia a grandes

poblaciones de ratas. (1)

Etiología

El Tifus murino es causado por una bacteria

intracelular obligada del orden de los

Rickettsiales, Rickettsia typhi (11,16). Como otra

Rickettsias, Rickettsia typhi es pequeña (0.4 X

1.3 µm), gram negativa, intracelular obligado

que depende de los artrópodos hematófagos

(ejemplo pulgas y garrapatas) y mamíferos para

mantener su ciclo de vida. (4)

Rickettsia typhi existe en la naturaleza en

ciclos enzoóticos que involucran roedores y

ectoparásitos, es transmitida a los humanos

principalmente por Xenopsylla cheopis la pulga

de la rata oriental aunque otras especies de

pulgas, piojos y ácaros ocasionalmente se

pueden ver implicados. (7)

Las complicaciones son raras y la tasa de

letalidad para todas las edades es menor al uno

por ciento, sin embargo esta aumenta con la

edad. (5)

Reservorios y vectores

Es una zoonosis mantenida en ratas (rattus

rattus y rattus norvegicus) y transmitida a los

humanos a través de la infección con heces de la

pulga oriental de la rata (Xenopsylla cheopis

(Figura 1)) de la piel lastimada (12). Igualmente,

se ha sugerido que la pulga del gato

(Ctenocephalides felis) y las zarigüeyas podrían

actuar como vectores. La infección persiste en la

naturaleza por el ciclo rata – pulga – rata. (5)

Figura 1 Xenopsylla cheopis


38

Modo de transmisión

La infección ocurre en el momento de la

picadura de la pulga en el periodo de

rickettsemia. El agente se multiplica en el

intestino sin causar daño aparente a la pulga. El

vector elimina R. typhi por sus heces durante

toda su vida pero no por la saliva. No hay

transmisión de la infección de X. cheopis a su

progenie y la infección de nuevas generaciones

de pulgas se produce siempre por medio de sus

huéspedes. La infección en otras especies de

pulgas sigue iguales condiciones (5).

El periodo de incubación tiene un promedio

de doce días con un rango de variación entre 6 y

14 días. En el hombre, la difusión de la

enfermedad está determinada por el nivel de

enzootia entre las ratas y el grado de contacto

con estos animales y sus pulgas. La

susceptibilidad es general y la enfermedad

confiere inmunidad. Las pulgas permanecen

infectadas de por vida (hasta 1 año). (5)

La infección al hombre ocurre cuando la

pulga de la rata (u otra pulga como C. felis) lo

pica y defeca sobre su piel. Al rascarse el

hombre introduce la materia fecal contaminada a

través de la picadura u otra abrasión de la piel.

Es probable que el hombre también pueda

adquirir la infección por otras vías, tales como la

conjuntival o por inhalación. Estos modos de

trasmisión son sin embargo poco importantes. (5,

4, 9)

En la siguiente esquema se muestra el ciclo

de infección de Rickettsia typhi tanto en el

hombre como susreservorios (Figura 2).

Epidemiología

La distribución de tifus endémico es

mundial. Se localiza en zonas donde las

habitaciones humanas están infestadas de ratas y

ratones. La incidencia es mayor en los meses de

verano y otoño, cuando las pulgas de las ratas

son más activas. Si bien la enfermedad ocurría

sobre todo en áreas urbanas, especialmente en

edificios infestados de roedores, actualmente se

observa su extensión a áreas rurales.

En el siguiente mapa se muestran los países

afectados por el tifus murino en el siglo XX.


39

http://www.sci.unal.edu.co/scielo.php?script=sci_artt

ext&pid=S1657-

95342012000200011&lng=es&nrm=iso

En 1947, fue reportada R. typhi en la

República Mexicana en los estados de Guerrero,

Hidalgo, Jalisco, México, Michoacán, Nayarit,

Nuevo León, Oaxaca, Querétaro, Tamaulipas y

Zacatecas.

El tifo endémico ha estado presente en

México a lo largo de la historia, sobre todo en

los estados de Sinaloa, Coahuila, Guanajuato,

Oaxaca y Chiapas, sin embargo desde 1997 no se

reportan casos de tifus epidémico en México.

Respecto al tifus murino hubo 1,016 casos de

1988 a 2004; hasta el mes de septiembre del

2005 se habían presentado nueve casos. La

Secretaría de Salud reportó en Dr. Arroyo,

Nuevo León dos casos de rickettsiosis.

Fisiopatogenia

El periodo de incubación de las rickettsiosis

suele ser de 14 días tras la inoculación ya sea por

picadura del vector, el contacto con aerosoles de

material infectante o la contaminación

conjuntiva con heces de pulgas (Xenopsylla

cheopis), parásitos de ratas, perros y gatos

domésticos, liebres, ardillas voladoras y

zarigüeyas, entre otros mamíferos. (1,3)

En la patogenia de la enfermedad por

rickettsias interviene también el sistema inmune,

aunque de una forma todavía no bien conocida.

Al parecer, las rickettsias originan una

inmunosupresión leve del tipo de la

hipersensibilidad retardada, si bien no se sabe si

es un efecto directo de la infección o una

respuesta inmunomoduladora del huésped. (12)

Manifestaciones clínicas del tifus murino

La enfermedad tiene una sintomatología

similar a la del tifus epidémico transmitido por

piojos pero es de curso más corto y benigno. Se

presenta con fiebre, cefalalgia intensa y dolores

generalizados, a los 5 o 6 días del comienzo de la

fiebre aparece la erupción macular (Figura 3),

que se observa primero en el tronco y luego en

las extremidades, pero que no afecta las palmas

de las manos ni la planta de los pies o la cara, la

sintomatología incluye también tos, nerviosismo,

náuseas y vómitos. En el campo de refugiados en

Tailandia, los síntomas principales fueron fiebre

persistente, cefalalgia retroorbital y mialgias.

También en los EUA se registraron 200 casos

que se presentaron en el sur de Texas en donde

la erupción cutánea se manifestó solo en 58.1%

de los pacientes y la náusea en 44.9%.

Las complicaciones son raras. En los

pacientes no tratados la convalecencia puede

extenderse por varios meses. La letalidad

aumenta con la edad; en los EUA actualmente es

inferior al 1% en todas las edades. (15)

Figura 3. Erupción macular en el tronco

Diagnostico

El diagnóstico del tifo epidémico, tifo murino y

fiebre maculosa, se basa en el cuadro clínico y

antecedentes de residencia o procedencia de

áreas endémicas con transmisión de la

enfermedad. La confirmación por medio de

inmunofluorescencia indirecta con un valor

mínimo de 1:64 es considerada el valor mínimo

para diagnóstico presuntivo de tifo epidémico.

Para el diagnóstico del tifo transmitido por

piojos se requiere un alto índice de sospecha en

las zonas endémicas teniendo en cuenta factores

como: datos clínicos, condiciones de clima frío,

el hacinamiento, la poca higiene personal y la

http://www.sci.unal.edu.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1657-95342012000200011&lng=es&nrm=iso




40

presencia de piojos. Por laboratorio se lo puede

diferenciar de la enfermedad de Brill-Zinsser por

la presencia de anticuerpos IgM.

Pruebas de Laboratorio

Anticuerpos inmunofluorescentes. No

diferencia entre el tifus epidémico y el murino,

salvo que se practique absorción diferencial con

el respectivo antígeno de Rickettsia antes de

hacer la prueba o se tipifique con un equipo

específico. La confirmación de casos se deberá

hacer por: Identificación de las Rickettsias en

frotis de sangre teñidos con alguna de las

siguientes técnicas: Giemsa, Macchiavello, Ruiz

Castañeda o Giménez.

Serología. Para IgG, tomando dos muestras

pareadas, una en la etapa aguda, y otra con dos

semanas de diferencia respecto a la primera. Un

incremento de cuatro veces o más en los títulos

obtenidos, confirma el diagnóstico. Las pruebas

de anticuerpos IgM, se tornan positivas al sexto

día después de iniciado el cuadro.

En la enfermedad de Brill-Zinsser, el anticuerpo

inicial es la IgG, a títulos altos >1:512.

Aislamiento de rickettsias por cultivo. Se

realiza de muestras provenientes de reservorios

humanos y vectores.

Esta técnica sólo se puede efectuar en

laboratorios especializados y de alta seguridad.

El diagnóstico de las fiebres manchadas al

inicio de la erupción es clínico y epidemiológico.

En el laboratorio puede lograrse el aislamiento

de la R. rickettsii en sangre y en biopsias

cutáneas por inmunofluorescencia directa,

técnicas histoquímica o la reacción en cadena de

la polimerasa, durante la fase aguda.

Habitualmente se detectan anticuerpos séricos

específicos de grupo en la fase de convalecencia

por hemoaglutinación indirecta (con títulos de

1:128), inmunofluorescencia indirecta (IFI),

aglutinación del latex con títulos de 1:64, y

fijación de complemento (FC) con valores de

1:16.

Algunas herramientas para el diagnostico

son la reacción de Weil- Felix, que determina de

forma cruzada los anticuerpos de rickettsias

midiendo anticuerpos para antígenos de Proteus

OX19, la serología, la inoculación en ratones

lactantes para después identificar después las

bacterias en frotis teñidos por giemsa, biopsia

con tinción de inmunoflorescencia, la reacción

en cadena de la polimerasa (PCR).

Tratamientos

Las rickettsias son resistentes a

cefalosporinas, aminoglucósidos y penicilinas;

los antibióticos con sulfas no son eficaces y

pueden exacerbar las fiebres manchadas. El

tratamiento con tetraciclina o cloramfenicol se

originó por la necesidad de las rickettsias de

sintetizar proteínas OmpB, responsables de la

virulencia de la bacteria y de la formación de su

membrana celular a partir del sitio de unión

Ku70, ligasa receptora para células huésped.

Prevención

El tifus murino puede ser prevenido

efectivamente, a través del control de las pulgas

en las mascotas especialmente en los gatos

domésticos.

Se debe realizar podado, con el fin de no

proveer guarida a roedores, zarigüeyas o gatos

salvajes extraviados. Se deben colocar mallas en

las ventanas para impedir la entrada de animales

a la casa. No se deben permitir fuentes de

alimento para los animales salvajes tales como

latas, desperdicios de alimento o alimento para

mascotas (4).

En la mayoría de los casos, la prevención

depende de una cultura de protección ante los

riesgos; la vestimenta de colores claros y

brillantes facilita la visibilidad de posibles

vectores, y los pantalones y botas, además de

repelentes contra insectos y el retiro e inspección

corporal tras una exposición, disminuyen el

riesgo de infección. (17)

Es importante desparasitar los contactos

donde ocurre la infección y considerar la dosis

única de doxiciclina (200 mg) para tratar tanto

estos como los residentes de áreas infectadas, así

como personal médico que atienda los casos. (6)

Conclusiones

La enfermedad del Tifus epidémico está

asociada fundamentalmente con condiciones de


41

precariedad y carencias de saneamiento

ambiental por eso la intervención adecuada es

prevenir las malas condiciones de higiene en los

hogares y en las personas.

En la enfermedad del tifus epidémico existe

poca información acerca de medidas

epidemiológicas especialmente de incidencia.

Esto es una dificultad dado que no se pueden

trazar líneas de base para medir las

intervenciones realizadas.

Los roedores junto con las pulgas tienen el

papel más importante en la transmisión de R.

typhi, por ello las acciones de prevención y

control deben estar encaminadas a prevenir la

infestación de los hogares mediante la

educación.

El cambio climático y el aumento de

temperatura y pluviosidad en nuestro país puede

incidir en un incremento de la transmisión de

estos padecimientos a humanos desde

reservorios animales, como perros y gatos

domésticos, portadores de garrapatas y pulgas de

roedores, que tras un tiempo de sequía estarían

libres de predadores, o luego de lluvias

abundantes, aumentarían el alimento disponible.

(10)

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