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Parasitología médica

Capítulo 46

PARASITOLOGÍA

SECCIÓN VI

SECCIÓN VI. PARASITOLOGÍA Capítulo 46. Parasitología médica

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Figura 46-1 Giardia lamblia. A: Trofozoíto (12-15 μm). (Reproducida con permiso de Sullivan J., A Color Atlas of Parasitology, 8th ed., 2009).


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Figura 46-1 Giardia lamblia. B: Quiste (11-14 μm). (Con autorización de D. Petrovic, Microbiology Section, Clinical Laboratories, UCSF.)


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Figura 46-2 Entamoeba histolytica. A: Quiste (12-

15 μm), con 2 (de 4 ) núcleos y un cuerpo

cromatoide.


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Figura 46-2 Entamoeba histoltica. B: Trofozoíto

(10-20 μm). (Con autorización de Sullivan

J., A Color Atlas of Parasitology, 8th ed.,

2009.)


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Figura 46-3 Crystosporidium. A: Corte histológico de intestino con los microorganismos (flechas) en la zona apical de las células epiteliales.

(Cortesía del Departamento de Patología, UCSF).


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Figura 46-3 Crystosporidium. B: Los ovoquistes (ooquistes) (4-5 μm) captan el color rosa en muestras de heces teñidas con un colorante

acidorresistente. (Con autorización de J. Sullivan, A Color Atlas of Parasitology, 8th, ed, 2009.)


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Figura 46-4 Trypanosoma brucei gambiense (o Trypanosoma brucei rhodesiense, idéntico en la práctica) (14-35 μm) en frotis de sangre (eritrocitos = 10 μm). (Con

autorización de J. Sullivan, A Color Atlas of Parasitology, 8th, ed, 2009.)


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Figura 46-5 Colonia de amastigotes de Trypanosoma cruzi (flechas) en miocardio. Los amastigotes tienen 1-3 μm de diámetro en tejido. (Con autorización de J. Sullivan, A Color

Atlas of Parasitology, 8th, ed, 2009.) Recuadro: esquema de un amastigoto con su característico “punto” (núcleo) y estructura ovoide (cinetoplasto).


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Figura 46-6 Paciente con espundia causada por Leishmania braziliensis. (Con autorización de la colección de

imágenes de OMS/TDR.)


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Figura 46-7 Amastigotes de Leishmania donovani (flechas), de un fragmento de biopsia de hígado. (Con autorización del departamento de

patología, UCSF.)


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Figura 46-8 Zonas oscuras del cerebelo que corresponden a regiones de necrosis causadas por amebas Naegleria fowleri. (Con autorización

del departamento de patología UCSF.)


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Figura 46-9 Ciclo vital del parásito del paludismo. Los ciclos continuos o el retraso de la multiplicación en el hígado pueden ocasionar recidivas periódicas en el curso de años (1 a 2 años en el caso de Plasmodium ovale; 3 a 5 en el de Plasmodium vivax). No se producen recidivas en el caso de Plasmodium falciparum, aunque puede haber un periodo largo antes de que se manifieste la enfermedad y como consecuencia

los síntomas iniciales surgen incluso seis meses o más después de la exposición.


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Figura 46-10 Características morfológicas de fases del desarrollo

de parásitos del paludismo en los eritrocitos. Se identifican los puntos

de Schüffner citoplásmicos en las células agrandadas del hospedador,

en las infecciones por Plasmodium vivax y Plasmodium ovale; el

trofozoíto en banda que se observa a menudo en infección por

Plasmodium malariae, y los anillos pequeños por infección múltiple y

los gametocitos en forma de banana en las infecciones por

Plasmodium falciparum. De manera típica, los anillos y los gametocitos

se identifican en frotis de sangre periférica obtenida de sujetos con

infecciones por Plasmodium falciparum. (Con autorización de

Goldsmith R, Heyneman D: Tropical Medicine and Parasitology.

McGraw-Hill, 1989. ©The McGraw-Hill Companies, Inc.)


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Figura 46-11 Características diferenciales entre los dos parásitos más comunes del paludismo. A: Trofozoíto de Plasmodium

vivax dentro de un eritrocito, con puntos de Schüffner. B: Anillos dobles.


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Figura 46-11 Características diferenciales entre los dos parásitos más comunes del paludismo. C: Gametocitos en forma de banana que de manera típica se observan en las infecciones por

Plasmodium falciparum. D: Los mosquiteros impregnados con insecticida constituyen una forma importante de protección contra los mosquitos que transmiten el paludismo. (A-C, con autorización

de J. Sullivan, A Color Atlas of Parasitology, 8th, ed, 2009. D, Con autorización de la colección de imágenes de OMS/TRD/Crump.)


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Figura 46-12 Enterobium vermicularis. A: Hembra adulta del oxiuro (10 mm de longitud). B: Macho adulto del oxiuro (3 mm de largo).


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Figura 46-12 Enterobium vermicularis. C: La prueba de la cinta adhesiva indica la presencia de huevos de oxiuro (50-60 μl de largo) con una larva infectante en su

interior. (Con autorización de J. Sullivan, A Color Atlas of Parasitology, 8th ed, 2009.)


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Figura 46-13 Trichuris trichiura. A: Hembra adulta de tricocéfalo (30-50 mm de largo). B: Macho adulto de tricocéfalo (30-45 mm).


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Figura 46-13 Trichuris trichiura. C: Huevos de tricocéfalo (50 μm) con tapones polares definidos. (Con autorización de J. Sullivan, A Color Atlas of

Parasitology, 8th ed, 2009.)


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Figura 46-14 Ascaris lumbricoides. A: Las hembras adultas son más grandes que los machos adultos (la regla en la fotografía mide

16 cm de longitud).


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Figura 46-14 Ascaris lumbricoides. B: Huevo de Ascaris (55-65 μm) con las protuberancias características (mamelonadas). (Con autorización de J. Sullivan,

A Color Atlas of Parasitology, 8th ed, 2009.)


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Figura 46-15 Ancylostoma duodenale. A: Anquilostoma adulto con dos pares de dientes en la cápsula bucal.


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Figura 46-15 Ancylostoma duodenale. B: Un huevo de pared fina de anquilostoma (60-75 μm) con segmentación temprana, obtenida de una prueba en busca de huevos y parásitos. (Con autorización de J. Sullivan, A Color Atlas of Parasitology, 8th ed, 2009.)


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Figura 46-16 Larvas de Strongyloides stercoralis y material de lavado bronquiolar. (Cortesía de Norman Setijono, UCSF.)


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Figura 46-17 Larvas de Trichinella spiralis enquistadas en tejido muscular. (Con autorización de J. Sullivan, A Color Atlas of



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Figura 46-18 Cisticercos de Taenia solium. A: Varios cisticercos (formas larvarias) enquistados en músculo. (Con autorización de Sullivan J., A Color Atlas of



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Figura 46-18 Cisticercos de Taenia solium. B: Un cisticerco

aislado, detectado por resonancia magnética en el

cerebro. (Cortesía del Departamento de Patología

UCSF.)


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Figura 46-19 Proglótide de Dipylidium caninum (23 mm de largo × 8 mm de ancho)

con características de semilla de calabaza y poros genitales (flechas) en ambos lados.

(Con autorización de Sullivan J., A Color Atlas of Parasitology, 8th ed, 2009.)


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Figura 46-20 Mujer con filariosis linfática. (Con

autorización de la colección de imágenes de la

OMS/TDR/Crump.)


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Figura 46-21 Onchocerca volvulus. A: Palpación de un nódulo subcutáneo.

(Con autorización de la colección de imágenes de OMS/TDR/Crump.)

B: Los nódulos extirpados quirúrgicamente contuvieron gusanos

adultos enrollados. (Con autorización del Departamento de Patología de UCSF.)


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Figura 46-22 En el cuadrante izquierdo

superior de los pulmones en la radiografía de tórax

se observan gusanos adultos de Paragonimus

westermani. (Con autorización del

Departamento de Radiología de UCSF.)


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Figura 46-23 A: Formas adultas de Schistosoma mansoni en

cópula. La hembra (flecha) queda dentro del conducto ginecóforo

del macho. (Cortesía de Conor Caffrey, Sandler Center, UCSF.) B: Huevo de Schistosoma mansoni

con espícula lateral (110-175 μm de largo × 45-70 μm de ancho).


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Figura 46-23 C: Huevo de Schistosoma haematobium con espícula terminal (110-170 μm de largo × 40-70 μm de ancho). D: Huevo de Schistosoma japonicum con espícula corta (70-100 μm de largo × 55-65 μm de ancho). (Con autorización de Sullivan J., A Color Atlas of Parasitology, 8th ed, 2009.)


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Figura 46-24 Echinococcus granulosus. A: Quiste hidatídico de 14 cm de una

persona a la que se le extirpó el bazo. (Con autorización del Departamento de

Patología de la UCSF). B: Corte histológico de un quiste hidatídico en que se observan

varios protoescólices (flechas) dentro de una cápsula de incubación. (Con

autorización de Sullivan J., A Color Atlas of Parasitology, 8th ed, 2009.)

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