Problema 1

Se ha purificado una enzima a partir de hígado de rata. En la purificación se partió de 500 ml de extracto crudo que contenía 2 g de proteína. 50 µl de ese extracto crudo catalizaban, en condiciones óptimas de ensayo, la producción de 1 nmol de producto en 1 segundo. Tras varios pasos de purificación se obtuvieron 2 ml de una preparación de enzima pura que contenía 3 mg de proteína por mililitro y presentaba una actividad total de 120 U.

a) Calcular la concentración de la enzima en el extracto crudo en U/ml y katales/ml.

b) Determinar la actividad específica, en U/mg proteína en el extracto crudo.

c) Calcular la recuperación del proceso de purificación y el número de veces que se ha purificado la enzima.

a) 1 nmol = 0,001 µmoles/seg x 60 seg/min = 0,06 µmoles/min = 0,06 U en 50 µl. 0,06 U/50 µl x 1000 µl/ml = 1,2 U/ml. 1 katal = 1 mol P/seg = 106 µmoles/seg x 60 seg/min = 6x107 U => 1,2 U/6x107 U/katal = 2x10-8 katales = 0,02 µkatales/ml.

b) Actividad total E.C.= 1,2 U/ml x 500 ml = 600 U Proteína total E.C.= 2 g = 2.000 mg Actividad específica = 600 U/2.000 mg = 0,3 U/mg proteína.

c) Recuperación = AT final/AT inicial (x100) = = 120 U / 600 U (x100) = 0,2 (x100) = 20%Purificación = AE final / AE inicial == 20 U/mg / 0,3 U/mg = 66,7 vecesProteína final = 3 mg/ml x 2 ml = 6 mgAT final = 120 UAE final = 120 U/6 mg = 20 U/mg

Problema 1

Problema 2

S = ß-cetoácido 1 ml de mezcla de reacción

vo [cetoácido]

(µmoles CO2 /2min) (M)

0,588 2,500 x 10-3

0,500 1,000 x 10-3

0,417 0,714 x 10-3

0,370 0,526 x 10-3

0,252 0,250 x 10-3

A partir de estos datos calcular Vmáx y KM de esta reacción.

¡Cuidado! 1/vo 1/[S]

(min/µmoles) mM-1

3,4 0,4 4,0 1,0 4,8 1,43 5,4 1,9 7,9 4,0

1/vo

(min/µmol )

1/[S] (mM-1)

Regresión linealy = ax + br2 = 0,996a = 1,27 = pendiente = KM/Vmáx

b = 2,885 = corte en YCorte en X = -(a/b)

-2 -1 0 1 2 3 4 5

8,0

4,0

-1/KM = -2,3

1/Vmáx = 2,9

6,0

2,0

La KM y la Vmáx las obtenemos de la representación de dobles inversos de Lineweaver-Burk.

Cuestiones:a) ¿Cuántas unidades de enzima hay en la mezcla de reacción?b) Cuál es la concentración de la enzima en dicha mezcla?c) ¿Podemos calcular la actividad específica de la enzima?d) Y la Kcat (o número de recambio)?

Constantes:-1/KM = -2,3 mM-1 => KM = 0,44 mM

1/Vmáx = 2,9 min/µmol =>

Vmáx = 0,346 µmoles min-1

Problema 2

Un extracto crudo enzimático contiene 20 mg de proteína/ml. 20 µl de ese extracto crudo catalizan la producción de 3 µmoles de producto en 1 min, en condiciones óptimas de trabajo. Calcular:

a) La concentración de la enzima en el extracto crudo en U/ml.

b) La actividad específica de esta enzima en el extracto en U/mg de proteína.

c) La actividad total del extracto si tenemos 100 ml del mismo.

Los 20 µl de extracto crudo contienen 3 U.

[Enzima] = 3U/20µl = 3U/0.02 ml = 150 U/ml

A.E. = [E] (U/ml) / [proteína] (mg/ml) = 150 U ml-1 / 20 mg ml-1 = 7,5 U/mg

A.T. = 150 U/ml x 100 ml = 15.000 U

Problema 11

Glutamina sintetasa de Anabaena cylindrica PM = 600 kDa

Extracto crudo Preparación purificada

Proteína 4.200 mg 4 mg

A.T. 186 U 37,5 U

Calcular: Recuperación del proceso de purificación

Número de veces que se ha purificado la enzima.

Número de recambio

1 mol E pesa 600.000 g => 1 µmol pesa 600 mg => 4 mg E = 6,67 x 10-3 µmoles de E

A.T. (pura) 37,5Recuperación = x 100 = x 100 = 20%

A.T. (E.C.) 186

A.E. (pura) 37,5 U / 4 mgFactor de purificación = = = 211,7

A.E. (E.C.) 186 U / 4200 mg

A.T. (pura) 37,5 µmoles S min-1

Nº de recambio = = = 5625 min-1

nº moles E 6,67 x 10-3 µmoles de E

Problema 12

Problema 7

Dos inhibidores diferentes. [I] = 1,5 mM

[S] v v’a v’b(mM) (µmol l-1 min-1) (µmol l-1 min-1) (µmol l-1 min-1)

0,2 1,67 0,625 0,83

0,4 2,86 1,176 1,43

0,8 4,44 2,11 2,22

1,6 6,15 3,48 3,08

3,2 7,62 5,16 3,81

Decir qué tipo de inhibidor es cada uno y determinar todos los parámetros cinéticos.

La KM y la Vmáx las obtenemos de la representación de dobles inversos.

-1 0 1 2 3 4 5

1,0

0,5

1/v(µmol -1 l min)

0,1

-0,33

0,2

1/[S] (mM-1)

Cálculo de Ki:Kia K’M= KM (1 + [I]/Kia); 3 mM = 1 mM (1 + 1,5 mM/Kia); Kia = 0,75 mM

Kib V’máx= Vmáx / (1 + [I]/Kib)

5 µmoles min-1 l-1 = 10 µmoles min-1 l-1 /(1 + 1,5 mM/Kib) => Kib = 1,5 mM

a: competitivo

b: no competitivo

[Ib] = 1,5 mMV’máx= 5 µmoles min-1 ml-1 K’M= 1 mM

[Ia] = 1,5 mMV’máx= 10 µmoles min-1 ml-1 K’M= 3 mM

[I] = 0Vmáx= 10 µmoles min-1 ml-1 KM= 1 mM

Problema 7

Grado de inhibición

KM = 75 µM. Cuando [S]0 = 50 mM consume el 30% en 15 min.

a) Calcular Vmáx

[S]0 50 mM >>> KM (0,075 mM) => v = Vmáx

0,3 x 50 mM 15 mMVmáx = = = 1 mM min-1

15 min 15 min

En presencia de un inhibidor ([I] = 50 µM) la representación tiene la misma pendiente pero la ordenada en el origen es el doble.

b) ¿Qué tipo de inhibición se ha producido? Calcular Ki

30%

El comportamiento corresponde a un inhibidor incompetitivo.

Vmáx Vmáx V’máx = = (1+[I]/Ki) 2

1+[I]/Ki = 2 => [I]/Ki = 1 => [I] = Ki = 50 µM

Problema 6

c) Calcular el grado de inhibición (i) cuando el ensayo se hace a [S] = 150 µM, en presencia de 100 µM del inhibidor anterior.

viGrado de inhibición: i = 1 -

v

Vmáx [S] v = = 0,667 mM min-1 KM + [S]

Vmáx [S] vi = = 0,285 mM min-1

KM + [S] (1+[I]/Ki)

0,285 mM min-1

i = 1 - = 0,57 = 57% 0,667 mM min-1

Problema 6

Muermasa

Representación dobles inversos:

X= 0 => Y = 0,8 (µM/min)-1

Y= 0 => X = -0,02 (µM)-1

Se ensayan dos inhibidores: muermirulina y ß-muermol

En ambos casos el corte en Y= 1,6 (µM/min)-1

La pendiente: mßm= 40 min mmr= 80 min

a) ¿Cuáles son la KM y Vmáx de la reacción sin inhibidor?

KM = -(1/-0,02) (µM)-1 = 50 µM

Vmáx = 1/0,8 (µM/min)-1 = 1,25 µM/min

Problema 10

Problema 10

b) ¿Qué tipo de inhibidores son el ß-muermol y la muermirulina?

ßmuermirulina: V’máx = 0,625 µM min-1

m = 80 min = KM/Vmáx => K’M = 80 min x 0,625 µM min-1 = 50 µM = KM

Es un inhibidor no competitivo

ß-muermol: V’máx = 1/1,6 (µM/min)-1 = 0,625 µM min-1

m = 40 min = KM/Vmáx => K’M = 40 min x 0,625 µM min-1 = 25 µMEs un inhibidor incompetitivo

c) Si [I] = 5 mM, determinar Ki para ambos inhibidores.

V’máx = 1/2 Vmáx => (1+[I]/Ki) = 2 => [I] = Ki = 5 mM

Vmáx

V’máx = (1+[I]/Ki)

Problema 10

d) Calcular el grado de inhibición a [S] = 0,1 mM para el ß-muermol. [I] = 5 mM

Calculamos con la ecuación de Michaelis-Menten la vo y la v'o en estas condiciones:

vo = 0,83 µM min-1 v'o = 0,5 µM min-1

i = 1-(v'o / vo)= 1-(0,5/0,83) = 1-0,6 = 0,4 (40%)

Enzima (PM 50 kDa) 3 centros activos. A. por centro: 10.000 min-1 KM =

1 mM 1,5 ml preparación pura con 2 mg proteína/ml

Se ensayan 40 µl en 10 ml con [S]= 0,1M y 1 mM inhibidor NC y se obtiene

una vi = 2,4 mM / min.

a) Determinar Ki e i (grado de inhibición) de la reacción.

1) Calculamos la Vmáx a partir de los datos de la enzima:

U 3 x 104 U µmol-1 3 x 104 A.E. = = = = mg proteína 5x104 g/mol x 10-6 mol/µmol x 103 mg/g 50

= 600 U / mg proteína

Activ. ensayo: A.E. x [E] (mg/ml) x v = 600 U/mg x 2 mg/ml x 0,04 ml= 48 UVmáx = 48 µmoles/min = 4,8 mM/min (ya que el ensayo se hace en 10 ml)

Como [S] >>> KM => vo = Vmáx = 4,8 mM/min

En presencia del Inhibidor NC => v’o= V’máx = 2,4 mM/min

V’máx = Vmáx/2 => [I] = Ki => Ki = 1mM

i = 1- (v’/v) = 1 - (1/2) = 0,5 (50%)

Problema 18

b) Se partió de 5 L de E.C. con 0,6 U/ml y 1 mg prot/ml. Calcular la

recuperación y el número de veces que se ha purificado la enzima.

A.T. E.C. = 0,6 U/mL x 5.000 mL = 3.000 U; A.E. E.C. = 0,6 U/mg

A.T. E pura = 600 U/mg x 3 mg = 1.800 U; A.E. E pura = 600 U/mg

c) Determinar el tiempo de un ciclo catalítico.

N.R. = A.C.C. x nº centros = 10.000 min-1 x 3 centros = 30.000 min-1.

Tiempo ciclo catalítico = 1/N.R. = 1/30.000 min-1 = 3,33 x 10-5 min = 2 ms

Recuperación = A.T. final/A.T. inic. (x100) = 1.800 U /3.000 U (x100) = 60%

Purificación = A.E. final/A.E. inic. = 600 U/mg / 0,6 U/mg = 1000 veces

El tiempo de un ciclo catalítico es la inversa del N.R.(¡¡¡ no de la actividad por centro!!! ) de la enzima.

Problema 18

Indicar qué ocurre con la constante de Michaelis-Menten y la velocidad

máxima en el ensayo de una enzima en las siguientes condiciones:

a) Se duplica la concentración de enzima.

La KM no se altera. La KM es una constante de la enzima (a una temperatura dada)

para un sustrato específico y no depende de ningún otro factor.

Al duplicar la cantidad de enzima, duplicaremos la velocidad máxima en el ensayo.

Vmáx = k2 [Et]

b) Se añade un inhibidor no competitivo a una concentración igual a dos veces la Ki.

La KM no se altera en presencia de un inhibidor no competitivo. La Vmáx disminuiría

hasta 1/3 de su valor en ausencia del inhibidor.

Vmáx Vmáx

V´máx = = = 1/3 Vmáx

1 + ([I]/Ki) 1 + (2Ki /Ki)

Cuestiones de examen

c) Se añade un inhibidor acompetitivo a una concentración equivalente a la

Ki.

Tanto KM como Vmáx disminuyen de la misma forma en presencia de un

inhibidor acompetitivo. La disminución de ambos parámetros los llevaría a

1/2 de su valor en ausencia del inhibidor.

1 + ([I]/Ki) = 1 + (Ki/Ki) = 2

K'M = KM / (1 + ([I]/Ki)) = KM/2

V´máx = Vmáx / (1 + ([I]/Ki)) = Vmáx/2

Se está caracterizando una enzima recién purificada. Para determinar su peso

molecular se ha hecho una electroforesis en SDS, siendo la movilidad relativa de la

única banda igual a 0,51. Las movilidades relativas del patrón de pesos moleculares

se resume en la siguiente tabla:

Masa molecular (kDa) 63 43 20 12

Rf 0,29 0,45 0,72 0,9

La concentración de la enzima en el extracto crudo es de 4,2 mg ml-1. Se toman 50 µl

de dicho extracto y se ensayan en 1,5 ml de mezcla de reacción, resultando la

siguiente tabla:

[Sustrato] (µM) 2 4 8 16

vo (µmoles min-1 ml-1) 6,26 10,00 13,33 16,66

Calcular la KM y la kcat (número de recambio) de la enzima.

Problema de examen

La KM la obtenemos de la representación de dobles inversos:

Problema de examen

-0,2 -0,1 0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5

0,16

0,08 1/v(µmoles-1 min ml)

1/[S] (µM-1)

0,045-0,20

Corte en Y= 1/Vmáx= 0,045 => Vmáx= 22 µmoles min-1 ml-1

Corte en X= -1/KM= -0,20 => KM= 5,0 µM

El PM de la enzima, necesario para calcular el número de recambio, lo

obtenemos de la representación de los logaritmos de pesos moleculares

frente a la movilidad.

Problema de examen

2,0

1,5

1,0

0,5

0 0,25 0,5 0,75 1,0

Log PM = 1,54 => PM = 35.000

Rf de la proteína problema

Rf

log PM

1 mol de enzima pesa 35.000 g => 1 µmol pesa 35 mg =>

=> 1 mg = 0,0286 µmoles de enzima.

157 µmoles S min-1

N.R. = = 5490 min-1

0,0286 µmoles E

Tiempo de un ciclo catalítico = 1 / N.R. = 1,82 x 10-4 min = 10,9 ms

Para calcular la kcat (N.R.), tenemos que conocer la actividad específica:

Número de unidades en el ensayo = 22 µmoles min-1 ml-1 x 1,5 ml = 33 U.

33 U / 0,05 ml = 660 U/ml ¡¡50 µl es el volumen ensayado!!

A.E. = 660 U ml-1 / 4,2 mg ml-1 = 157 U / mg de proteína.

Problema de examen

Problema 24Se ha conseguido purificar una enzima 2000 veces, obteniéndose al final del

proceso 2 ml de preparación enzimática pura, que contiene 3 mg de

proteína. Se partió de un extracto crudo de 1.000 ml de volumen, que tenía

una actividad enzimática de 5 U/ml y una concentración de proteína de 10

mg/ml. El PM de la enzima es 30.000 y presenta tres sitios activos. Se toman

20 µl de esta preparación y se ensayan a una [S] = 5 x 10-5 M. La KM de la

enzima para su sustrato específico es de 10-5 M.

a) Suponiendo que la enzima sigue una cinética hiperbólica, calcular vo en

estas condiciones.

Necesitamos saber cuál es la actividad enzimática en esos 20 µl de preparación pura que ensayamos.

Podemos calcular la actividad específica de la preparación a partir del factor de purificación y los datos del extracto crudo:

Purificación = A.E.F / A.E.I = A.E.F / 0,5 U mg-1 = 2.000 => A.E.F = 1.000 U /

mg

Problema 24

Como tenemos 3 mg de enzima pura, la A.T.F = 3.000 U.

Si las 3.000 U las tenemos en 2 ml, en 20 µl que hemos ensayado tendremos 30 U.

Luego la Vmáx en nuestro ensayo será de 30 µmoles / min.

Vmáx [S] 30 µmoles/min 5 x 10-5 M

vo = = = 25 µmoles/min

KM + [S] 10-5 M + 5 x 10-5 M

b) ¿Qué concentración de inhibidor competitivo (Ki = 2x10-5M) será necesaria

para conseguir el 40% de inhibición de la actividad enzimática?

Si G.I. = 40% => v'o = 60% vo = 0,6 x 25 µmoles/min = 15 µmoles/min

Vmáx [S] 30 µmoles/min 5 x 10-5 M

v'o = 15 µmoles/min = = => K'M = 5x10-5 M

K'M + [S] K'M + 5 x 10-5 M

K'M = 5x10-5 M = KM (1 + ([I] / Ki)) = 10-5 M (1 + ([I] / 2x10-5 M)) => [I] = 8 x10-5 M

Problema 24

c) ¿Cuántas veces habría que aumentar la concentración de inhibidor para

doblar el porcentaje de inhibición?

Si G.I. = 80% => v'o = 20% vo = 0,2 x 25 µmoles/min = 5 µmoles/min

Vmáx [S] 30 µmoles/min 5 x 10-5 M

v'o = 5 µmoles/min = = => K'M = 2,5x10-5 M

K'M + [S] K'M + 5 x 10-5 M

K'M = 2,5x10-5 M = KM (1 + ([I] / Ki)) = 10-5 M (1 + ([I] / 2x10-5 M) => [I] = 4,8x10-4 M

Número de veces = 4,8x10-4 M / 8x10-5 M = 6 veces

Problema 24

d) Si ensayamos 5 µl de la preparación a [S] = 0,1 M, y en un volumen de

reacción de 2 ml, ¿qué concentración de sustrato quedará a los cinco

minutos de reacción)?

[S] = 0,1 M >>>>> KM => vo = Vmáx

En la preparación pura tenemos una actividad de 1500 U/ml:

1500 U/ml x 0,005 ml = 7,5 U => Vmáx = 7,5 µmoles/min

7,5 µmoles/min x 5 min = 37,5 µmoles de S consumidos

[S] = 0,1 M = 0,1 mmoles / ml x 2 ml = 0,2 mmoles

Moles de sustrato a los 5 min = 200 µmoles - 37,5 µmoles = 162,5 µmoles

[S]5 min = 162,5 µmoles / 2 ml = 81,25 mM

Problema 24

1 mol de proteína pesa 30.000 g => 1 µmol pesa 30 mg

3 mg de proteína pura => 0,1 µmoles de enzima, que presentan una actividad en

condiciones óptimas de ensayo de 3.000 µmoles/min

N.R. = 3.000 µmoles S min-1 / 0,1 µmoles E = 30.000 min-1

A.c.c. = N.R. / Número de sitios = 30.000 min-1 / 3 = 10.000 min-1

e) ¿Cuál ha sido la recuperación en el proceso de purificación?

ATF = 3.000 U ATI = 5 U/ml x 1.000 ml = 5.000 U

Recuperación = ATF / ATI x 100 = 3.000 U / 5.000 U x 100 = 60%

f) Calcular la actividad por centro catalítico de la enzima.