Ralstonia solanacearum Raza 3 biovar 2

Ralstonia solanacearum Raza 3 biovar 2

• Introducción

• Hospedantes

• Síntomas

• Transmisión

• Detección

• Control

Introduction

• Ralstonia solanacearum Raza 3 biovar 2 es una bacteria que causa las siguientes enfermedades: – Pudrición marrón y marchitez bacteriana

de la papa– Marchitez sureña del geranio– Marchitez bacteriana del tomate y otras

solanáceas• Este patógeno está considerado como un

miembro de la lista de agentes seleccionados de bioterrorismo agrícola.

Other Ralstonia solanacearum Races and Biovars

Raza Rango de hospedantes

Distribución geográfica

Biovar

1 Amplio Asia, Australia, Americas

3,4

1

2 Banana

Otras Musa spp.

Caribe, Brasil

Filipinas

1

3 Papa, algunas otras solanáceas, geranio;

Mundial, excepto US y Canadáa

2

4 Gengibre Asia 3,4

5 Frutillas China 5

(Daughtrey, 2003 Reprinted, with slight modification, from Denny and Hayward, 2001)

Ralstonia solanacearum.

•It is important to note that there are other races and biovars of Ralstonia solanacearum. •Only R. solanacearum Race 3 biovar 2 is on the select agent list. •Race 1 can infect hundreds of different plant species in 50 families and Race 1 biovar 1 is endemic in the Southern United States where it is commonly found on tomato, tobacco and other crops. •Races 2, 4, and 5 occur outside the U.S. in warm regions and are not considered a threat due to their poor cold-temperature tolerance. •Race 3 is commonly found through out the world except in the U.S. and Canada. •The race/biovar of most concern to the U.S. is Race 3 biovar 2, because of its ability to cause damage to potato, tomato, eggplant and geraniums in cooler climates than Race 1. •The potato industries in both the United States and Canada are concerned with potential introduction of Race 3 because potato crops in other temperate countries have experienced serious disease problems due to the cold temperature tolerance of Race 3.

Global Distribution

• Las pérdidas alrededor del mundo por la marchitez bacteriana de la papa son más de $950 millones por año (Allen 2003).

• La resurgencia de R. solanacearum Raza 3 biovar 2 se han presentado en todo Europa en los últimos años.

• Esta resurgencia se debe a la importación de material vegetal infectado de lugares donde la enfermedad está de tiempo establecida (Janse 1996).

Photo H.D. Thurston, Cornell University, http://www.tropag-fieldtrip.cornell.edu/docthurston/Thumbs%20-%20Brown%20Rot/Brown%20Rot.html

Hospedantes• Los hospedantes

de Ralstonia solanacearum Raza 3 biovar 2 incluyen varias solanáceas:– papa– tomate– Berengena

• El geranio (Pelargonium spp.) puede también servir coomo hospèdante.Photo H.D. Thurston, Cornell University, http://www.tropag-

fieldtrip.cornell.edu/docthurston/Thumbs%20-%20Brown%20Rot/Brown%20Rot.html

Signos y síntomas en plantas de papa

Follaje• Enanismo• Amarillamiento• Marchitez, inicialmente

limitada al ápice de la planta.

Tallo• Lesiones vasculares• Colapso de plantas

jóvenes• Exudados bacterianos

Photos H. David Thurston, Cornell University, http://www.tropag-fieldtrip.cornell.edu/docthurston/Thumbs%20-%20Brown%20Rot/Brown%20Rot.html

Signos y síntomas en tubérculos de papa

•Exudado bacteriano, el cual en estados posteriores puede emerger de los “ojos” y “yemas”.

•Lesiones en el anillo vascular

Photo Plant Protection Service Archives, Netherlands, www.forestryimages.org

Photo Central Science Laboratory, Harpenden Archives, British Crown, United Kingdom, www.forestryimages.org

Bacterial Ooze

Signos y síntomas en plantas de tomate

• Marchitez

• Lesiones vasculares

• Exudación bacteriana

Photos Clemson University - USDA Cooperative Extension Slide Series,

www.forestryimages.org

Vascular DiscolorationVascular

Discoloration

Síntomas en geranio

• Amarillamiento, marchitex y necrosis de hojas inferiores

• Lesiones vasculares y necrosis del tallo.

• Pudrición marrón de raíces

Photos Margery Daughtrey, Cornell University, www.pdis.org

Signos en geranio

• Exudación bacteriana• Flujo bactgeriano: El

tallo o peciolo cortado colocado en agua, produciría una nube generada por el flujo bacteriano fuera del tejido vegetal.

Exudado bacteriano

Photo Margery Daughtrey, Cornell University, www.pdis.org

Photo David B. Langston, University of Georgia, www.forestryimages.org

Flujo bacteriano

Transmisión• Suelo contaminado,

agua de irrigación, agua superficial, equipo y personal.

• El patógeno puede entrar a las plantas vía heridas ocasionadas por la manipulación o alimentación por nematodos.

Photo Anson Eaglin, USDA-APHIS , www.forestryimages.org

Transmisión

Material vegetal infectado– En papa: la diseminación

es a través de semilla de papa infectada.

– En geranios: la diseminación es a través de el uso de esquejes infectados.

Photo by Peggy Greb, USDA-ARS, http://www.ars.usda.gov/is/graphics/photos/jan03/k10149-1.htm

Detección y Diagnosis

• Aislamiento sobre medios semi-selectivos.

– El uso de medios selectivos para R. solanacearum, no para raza o biovar

• ELISA– Especifico para Ralstonia

solanacearum, no para raza y biovar

– Usada para selección inicial de grandes cantidades de material.

El diagnóstico a nivel de raza y biovar puede ser difícil, y frecuentemente requiere varias pruebas de diagnóstico para hacer un diagnóstico final.

Photo Tom Creswell, NCSU , www.forestryimages.org

Cultivo de R. solanacearum sobre el medio semi-selective TZC

Detección y Diagnosis

• Prueba para determinar Raza y Biovar– Prueba de utilización

de carbono (usado para diferenciar biovar)

– PCR a tiempo real (usada para diferenciar razas) Real-time PCR used for

determination of race of R. solanacearum. (Photo Dawn Dailey-O’brien, Cornell University)

Control: Papa• Variedades resistentes• El control químico no

es efectivo.• Eliminación de malezas

solanáceas hospedantes que puedan servir como reservorios de inóculo.

• Selección de tubérculos libres de la enfermedad antes de plantarlos en campo.

• Rotación con cultivos no susceptibles. Photo Joel Floyd, USDA APHIS PPQ,

www.forestryimages.org

Malezas solanáceas pueden servir como hospedantes de R. solanacearum Raza 3 Biovar 2 y fuente de inóculo para el cultivo de papa.

Control: Tomate• Químicos derivados de

plantas: El Thymol ha sido usado como un fumigante de suelo pre plantación con bastante éxito (Momol 2006).

• Los esfuerzos de los fitomejoradores han resultado en algunas progenies de tomate con alta resistencia pero también con cualidades indeseables como frutos pequeños (Momol 2006).

Photo Keith Weller, USDA-ARS, http://www.ars.usda.gov/is/graphics/photos/dec99/k7353-7.htm

References• Allen, C. 2003. Bacterial Wilt Disease & Ralstonia solanacearum. Talk from 2003 Ralstonia Solanacearum race 3 biovar 2

Outbreak in Geraniums: A Program Review meeting held June 17 and 18, 2003 in Riverdale, MD.• Daughtrey, M. 2003. New and Re-emerging Diseases in 2003. Department of Plant Pathology, Cornell University, Long

Island Horticultural Research & Extension Center.• Denny, T. P. and Hayward, A.C. 2001. Ralstonia, pages 151-174 in: Schaad, N. W. et al. Laboratory guide for the

identification of plant pathogenic bacteria, 3rd ed. APS Press, St. Paul, 373 pp.• Elphinstone, J. and Harris, R. 2002. Monitoring and control of the potato brown rot bacterium in irrigation water. British

Potato Council report 190. http://www.potato.org.uk/upload/pdf/researchReports/report190.pdf. Accessed 2004 January 8.• Elphinstone, J. January 2004. Personal communication. EC project number: SMT project CT97-2179.• Harris, D. C. 1972. Intra-specific variation in Pseudomonas solanacearum. Pages 289-292 in: Proc. Int. Conf. Plant Pathog.

Bact., 3rd. • Janse, J. 1996. Potato Brown rot in western Europe – history, present occurrence and some remarks on possible origin,

epidemiology and control strategies. Bulletin OEPP/EPPO 26: 679-695.• Kim, S. H., Olson, R. N. and Schaad, N. 2002. Ralstonia solanacearum Biovar 2, Race 3 in geraniums imported from

Guatemala to Pennsylvania in 1999. Plant Disease 92:S42.• Kim, S. H., T. N. Olson, N. W. Schaad, and G. W. Moorman. 2003. Ralstonia solanacearum Race 3, Biovar 2, the Causal

Agent of Brown Rot of Potato, Identified in Geraniums in Pennsylvania, Delaware, and Connecticut. Plant Disease Page 87:4.

• Lemay, A., Redlin, S., Fowler, G., Dirani, M. 2003, February 12. Pest Data Sheet Ralstonia solanacearum race 3 biovar 2. USDA/APHIS/PPQ Center for Plant Health Science and Technology Plant Epidemiology and Risk Analysis Laboratory Raleigh, NC.

• Momol, T. 2006, October 12. Recovery Plan for Ralstonia solanacearum Race 3 biovar 2, Causing Brown Rot of Potato, Bacterial Wilt of Tomato and Southern Wilt of Geranium. National Plant Disease Recovery System. http://www.ars.usda.gov/SP2UserFiles/Place/00000000/opmp/Rs3-2RecoveryPlan-v-Oct112006.pdf. Accessed 2006 October 17.

• O’Hern, C. 2004 January 5. Detection of Ralstonia solanacearum race 3 biovar 2 in New York Greenhouse (document by Richard Dunkle) [Distribution list]. Accessed 2004 January 5. USDA-ARS Plant Health Division. 2002. Potato Brown Rot (RALSTONIA SOLANACEARUM) Report on monitoring and eradication in England 2002. Defra, Plant Health Division. http://www.defra.gov.uk/planth/phnews/monrad02.pdf. Accessed 2004 January 8.

• Williamson, L., Nakoho, K., Hudelson, B. and Allen, C. 2002. Ralstonia solanacearum race 3, biovar 2 strains isolated from geranium are pathogenic on potato. Plant Dis. 86:987-991