Revista Veterinaria 2013

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Revista Veterinaria Zacatecas es una publicación anual de la Unidad Académica de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autónoma de Zacatecas. ISSN: 1870- 5774. Sólo se autoriza la reproducción de artículos en los casos que se cite la fuente.

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  • IQ Armando Silva Chairez Rector de la Universidad Autnoma de Zacatecas

    Lic Cuauhtmoc Rodrguez Aguirre

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    Ph D Carlos Fernando Archiga Flores Director de la Unidad Acadmica de Medicina Veterinaria y Zootecnia

    Dr en C Marco Antonio Lpez Carlos

    Responsable del Programa de Licenciatura

    Dr en C Daniel Rodrguez Tenorio Responsable del Programa de Especialidad

    Dr en C Francisco Javier Escobar Medina Responsable del Programa de Doctorado

    Dr en C Carlos Aurelio Medina Flores

    Coordinador de Investigacin

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    Dr en C Francisco Javier Escobar Medina

    Director Tcnico y Editor de la Revista Veterinaria Zacatecas

  • Comit Editorial Archiga Flores, Carlos Fernando Ph D De la Colina Flores, Federico M en C Echavarria Chairez, Francisco Guadalupe Ph D Gallegos Snchez, Jaime Dr Gngora Ojeda, Agustn Dr en C Grajales Lombana, Henry Dr en C Gutirrez Bauelos, Hctor Ph D Meza Herrera, Csar PhD Pescador Salas, Nazario Ph D Rodrguez Frausto, Heriberto, Ph D Rodrguez Tenorio, Daniel Dr en C Silva Ramos, Jos Manuel Ph D Urrutia Morales, Jorge Dr en C

    Unidad Acadmica de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Autnoma de Zacatecas (UAMVZ-UAZ) UAMVZ-UAZ INIFAP-Zacatecas Colegio de Postgraduados Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad de los Llanos, Colombia Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional de Colombia UAMVZ-UAZ Unidad Regional Universitaria de Zonas ridas, Universidad Autnoma de Chapingo Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Autnoma del Estado de Mxico UAMVZ-UAZ UAMVZ-UAZ UAMVZ-UAZ Campo Experimental San Luis, INIFAP

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    Correspondencia dirigirla a: Revista Veterinaria Zacatecas. Revista de la Unidad Acadmica de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autnoma de Zacatecas. Carretera Panamericana tramo Zacatecas-Fresnillo Km 31.5. Apartados postales: 9 y 11. Calera de Vctor Rosales, Zac. CP 98 500. Telfono 01 (478) 9 85 12 55. Fax: 01 (478) 9 85 02 02. E mail: [email protected]

    Precio por ejemplar: $ 25.00

    Distribucin: Unidad Acadmica de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autnoma de Zacatecas.

  • CONTENIDO Artculos de revisin

    Review articles

    Ciclo estral en la vaca

    Cows estrous cycle

    Mario Hctor Soto Morales, Francisco Javier Escobar Medina, Carlos

    Fernando Archiga Flores, Mara Guadalupe Magallanes Quintanar

    Artculos cientficos

    Original research articles

    Crecimiento alomtrico fetal en equinos

    Allometric fetal growth in horses

    Angel Francisco Gallegos Guerrero, Francisco Javier Escobar Medina,

    Carlos Fernando Archiga Flores, Rosa Isabel vila Rodrguez, Federico

    de la Colina Flores..

    Peso al nacimiento de lechones Yorkshire, Landrace y Duroc cruzados

    Birth weight of crossbred piglets Yorkshire, Landrace and Duroc

    Miguel Agustn Delgado lvarez, Francisco Javier Escobar Medina,

    Federico de la Colina Flores...

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    CICLO ESTRAL EN LA VACA

    Mario Hctor Soto Morales, Francisco Javier Escobar Medina, Carlos Fernando Archiga Flores, Mara Guadalupe Magallanes Quintanar

    Unidad Acadmica de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autnoma de Zacatecas

    Correspondencia: Francisco Javier Escobar Medina; [email protected].

    RESUMEN

    Se recopil, orden, clasific y se realiz un anlisis crtico de la informacin ms relevante sobre ciclo estral de la vaca. Se encontr que se realiza por medio de la interaccin hormonal del eje hipotlamo-hipfisis-ovarios, y la participacin de hipotlamo-hipfisis-endometrio. La GnRH promueve la secrecin de gonadotropinas (FSH y LH) del lbulo anterior de la hipfisis para la promocin de crecimiento folicular, ovulacin y actividad del cuerpo lteo en ovarios. La oxitocina se almacena en el lbulo posterior de hipfisis y su liberacin estimula la secrecin de prostaglandina F2 en endometrio. Esta prostaglandina destruye el cuerpo lteo y se inicia un nuevo ciclo. La FSH estimula el crecimiento folicular y la LH la maduracin folicular y la ovulacin. Con la interaccin de las dos gonadotropinas se promueve la produccin de estradiol en el folculo. El crecimiento folicular se realiza en oleadas, en la vaca se pueden presentar de 1 a 4 en cada ciclo, pero lo ms comn es encontrar ciclos con dos y tres. La FSH incrementa su concentracin sangunea antes de cada oleada de crecimiento folicular. La ovulacin se realiza por medio del pulso preovulatorio de LH previamente estimulado por el pulso cclico de GnRH. Despus de la ovulacin se forma el cuerpo lteo el cual produce progesterona por influencia de LH. La funcin de oxitocina al final del ciclo estimula en endometrio la secrecin de prostaglandina F2, esta hormona destruye el cuerpo lteo y se inicia un nuevo ciclo. Con base en lo anterior, en el ciclo estral se presenta crecimiento folicular con produccin de estradiol, ovulacin, formacin de cuerpo lteo con produccin de progesterona y destruccin de cuerpo lteo.

    Palabras clave: ciclo estral, bovinos, crecimiento folicular

    Vet Zac; 2013: 4: 41-56

    INTRODUCCIN La reproduccin en la vaca se realiza por la interaccin entre ambiente y organismo.1 Las seales del ambiente, a travs de los sentidos, estimulan el eje hipotlamo-hipfisis-gnadas. En el hipotlamo se produce la hormona liberadora de las gonadotropinas (GnRH),2 sta acta sobre lbulo anterior de la hipfisis para promover la sntesis y secrecin de gonadotropinas:3 hormonas folculo estimulante (FSH) y luteinizante (LH). Las gonadotropinas promueven el crecimiento folicular, la ovulacin y la funcin del cuerpo lteo en los ovarios.4-6 En el folculo se desarrolla la clula germinal femenina (ovocito) y se produce estradiol. Esta hormona se encarga de la manifestacin del estro en la hembra y ejerce retroalimentacin positiva sobre hipotlamo para incrementar la secrecin de GnRH a su mayor magnitud y, como consecuencia, gran liberacin

    de gonadotropinas en lbulo anterior de la hipfisis.5 Sin embargo, la secrecin de gonadotropinas en este momento no se realiza con la misma intensidad debido a la produccin de otra hormona en el folculo ovrico durante su crecimiento: la inhibina impide la secrecin de FSH.5 El resultado, el estmulo del estradiol conduce a gran secrecin de LH, lo cual se relaciona con la ovulacin. La GnRH y gonadotropinas presentan dos tipos de secrecin: tnica y cclica. La tnica es pulstil y se relaciona con la esteroidognesis. La cclica, tambin llamada preovulatoria en el caso de LH, se relaciona con la ovulacin. La secrecin cclica de FSH no es muy notable debido a la retroalimentacin negativa de la inhibina. Despus de la ovulacin, las clulas que constituan el folculo se transforman en cuerpo lteo; estructura encargada para producir

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    progesterona. La progesterona ejerce retroalimentacin negativa sobre hipotlamo y lbulo anterior de la hipfisis para reducir la secrecin de gonadotropinas.7 En el hipotlamo tambin se produce oxitocina, esta hormona se almacena en el lbulo posterior de la hipfisis y entre otras funciones estimula la secrecin de prostaglandina F2en el endometrio.8 La prostaglandina F2 destruye el cuerpo lteo al final del ciclo estral.9

    CRECIMIENTO FOLICULAR

    El folculo se compone de clulas de teca y granulosa. Las clulas de la teca (externa e interna) se encuentran alrededor de la membrana basal y presentan irrigacin sangunea. Las clulas de la granulosa tapizan la parte interna de la membrana basal, limitan el antro folicular y son avasculares; mantienen condiciones muy especializadas para permitir el desarrollo del ovocito.10 Algunas clulas de la granulosa rodean el ovocito y tambin se conocen como clulas del cumulus oophorus; hay conexiones microtubulares entre el cumulus y el ovocito para transferirle nutrientes y hormonas.11 De acuerdo a la etapa de su desarrollo, en el folculo se pueden identificar dos etapas: preantral y antral. El preantral an no ha desarrollado antro y comprende 3 categoras: primordial, primario y secundario; y en el antral se clasifica en dominante y preovulatorio.6 Desarrollo de los folculos preantrales Al principio del desarrollo folicular, la clula germinal femenina se encuentra rodeada nicamente por una capa de clulas epiteliales aplanadas, folculo primordial.12,13 Este proceso es importante para definir la cuota de ovocitos en la hembra bovina, ya que degenerarn las clulas germinales que no logren rodearse por las clulas epiteliales citadas.14 Estas clulas epiteliales posteriormente formarn las clulas de la granulosa. El folculo primordial abandona esta etapa de reposo e inicia su desarrollo por medio de un mecanismo autocrino, independiente a la accin de las gonadotropinas.15 Las clulas

    aplanadas se transforman en cilndricas para formar el folculo primario16 y comienzan a dividirse por mitosis hasta formar de 2 a 6 capas alrededor del ovocito y constituir el folculo secundario; ms de 6 capas y la inclusin de antro lleno de lquido constituye el folculo terciario o antral,16,17 el cual se discutir en la seccin siguiente. Desarrollo de folculos antrales Entre las capas de clulas de la granulosa se infiltra lquido formando espacios entre ellas hasta constituir un antro comn (folculo antral). El folculo se vuelve sensible a la accin de la FSH18 y esta hormona influye para la formacin del antro folicular y el desarrollo del folculo antral. El crecimiento folicular se realiza por medio de ondas u oleadas.19,20 En las vacas se pueden presentar de 1 a 4 oleadas en cada ciclo estral (perodo comprendido entre dos estros o celos consecutivos de 21 das de duracin), pero lo ms frecuente es el desarrollo de dos (Figura 1) y tres como se puede observar en la Figura 2.21,22 En ambos casos el desarrollo folicular se inicia en el da de la ovulacin, generalmente conocido como da 0. La segunda oleada se observa en los das 9 o 10, en los ciclos con dos ondas, y entre los das 8 y 9 en los de tres oleadas. La tercera oleada en los ciclos con esta caracterstica se observa en los das 15 o 16. Cada oleada comprende 3 etapas (o perodos): reclutamiento, seleccin y dominancia. En la etapa de reclutamiento, de 5 a 20 folculos 5mm se estimulan para continuar su desarrollo,15 con incremento transitorio en la concentracin de FSH.5,23 A esto se debe la convocatoria para el crecimiento folicular en los dos ovarios, se realiza de manera endcrina y no bajo estmulos locales. Dos aumentos del nivel de FSH se han encontrado alrededor de la ovulacin. El primero corresponde al incremento preovulatorio, y se debe al estmulo previo del estradiol sobre hipotlamo para la secrecin de GnRH y subsiguientemente liberacin de FSH/LH del lbulo anterior de hipfisis.24 El segundo se relaciona con el crecimiento de la primera oleada de crecimiento folicular en el ciclo.25,26

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    Figura 1. Concentracin sangunea de FSH en un ciclo con dos oleadas de crecimiento folicular

    FSH(ng/ml) 1Olead.Folic.Domin 2Olead.Folic.Domin

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    Figura 2. Concentracin sangunea de FSH en un ciclo con tres oleadas de crecimiento folicular

    FSH (ng/ml) 1Oelad.Folic.Domin

    2Olead.Folic.Domin 3Olead.Folic:Domin

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    La seleccin o desviacin folicular27 se caracteriza por el crecimiento del folculo de mayor tamao (alrededor de 8.5 mm de dimetro) de la cohorte, debido al incremento en la concentracin circulante de LH,27-29 con pulsos de menor amplitud y mayor frecuencia (20-30 pulsos/24 h).30 As como aumento en la sntesis de receptores para LH en las clulas de la granulosa, adems de las clulas de la teca24,31-37 y por consiguiente aumento de la sntesis de estradiol,7,31,38 caracterstica de los folculos sanos. El resto de los folculos sufren atresia en ambos ovarios.5,39 Adems del incremento de estradiol, el engrandecimiento del folculo seleccionado se acompaa del aumento en la sntesis y secrecin de inhibina. El estradiol e inhibina ejercen retroalimentacin negativa sobre hipfisis para reducir a concentracin basal el nivel de FSH.5,27,40,41 Por medio de este proceso, el folculo seleccionado se transforma en dominante42,43 y se localiza en cualquiera de los dos ovarios.39 La eleccin del ovario portador del folculo dominante es al azar, y el folculo dominante puede residir en el mismo ovario o en el contralateral al ovario portador de folculo subordinado mayor. El lado del cuerpo lteo o folculo dominante de la oleada anterior no influye sobre el ovario portador del folculo dominante.39 De la seleccin al tamao preovulatorio, no se presenta crecimiento folicular adicional debido al efecto inhibitorio del folculo dominante. Como se anot anteriormente, su produccin de inhibina y estradiol reducen la secrecin de FSH.5,27,41 Adems del estradiol e inhibina, los cuales ejercen retroalimentacin negativa para regular la secrecin de FSH, el folculo en crecimiento tambin produce otros factores como IGFs, inhibina y folistatina40 que tambin regulan la secrecin de FSH y su disponibilidad. La superfamilia de IGF consiste en dos ligandos, IGF-I e IGF-II,44-46 dos receptores IGFR-I e IGFR-II47 y, como responsables de la biodisponibilidad de IGF en el folculo ovrico, protenas ligadoras y proteasas. El IGF-I contribuye al crecimiento, proliferacin y esteroidognesis del futuro folculo dominante.48-50 La inhibina y activina pertenecen a la superfamilia de los factores de crecimiento transformantes , la activina puede incrementar la produccin de estradiol en el lquido folicular51 y la folistatina impide la accin de la activina.52

    El folculo dominante sufre atresia bajo la influencia de niveles elevados de progesterona, esta hormona ejerce retroalimentacin negativa sobre hipotlamo para reducir la secrecin de GnRH y por consiguiente de gonadotropinas. En el inicio de la fase ltea, con menor secrecin de progesterona y menor retroalimentacin negativa, los pulsos de LH se presentan menor amplitud y mayor frecuencia (20-30 pulsos/24 h), caractersticas adecuadas para el crecimiento folicular; en la parte media de la fase ltea, con el aumento en la concentracin de progesterona e incremento de la retroalimentacin negativa, la secrecin de LH se realiza en pulsos con mayor amplitud y menor frecuencia (6-8 pulsos/24 h), insuficiente amplitud y frecuencia para la maduracin folicular.30 Por lo tanto, el folculo dominante sufre atresia, con lo cual disminuye su produccin de estradiol e inhibina y se remueve la retroalimentacin negativa sobre hipotlamo e hipfisis. El resultado, se puede incrementar la secrecin de FSH con nueva oleada de crecimiento folicular. Con base en lo anterior, en la lutelisis se reduce la secrecin de progesterona y por consiguiente la retroalimentacin negativa sobre hipotlamo; se incrementa la secrecin de gonadotropinas adecuada para la maduracin folicular final y se presenta la ovulacin. Por lo tanto, la ovulacin se presenta en el ltimo folculo dominante de cada ciclo, l presente en la destruccin del cuerpo lteo (lutelisis). La cantidad de ondas se relaciona con la lutelisis y por consiguiente la duracin de ciclo estral. La regresin del cuerpo lteo se realiza el da 16 en ciclos con dos oleadas y 19 en los ciclos con tres, lo cual corresponde a duracin del ciclo de 19 a 20 y 22 a 23 das, respectivamente. Veintin das, como generalmente se conoce la duracin del ciclo estral en la vaca, corresponde al clculo realizado en ciclos con dos y tres oleadas de crecimiento folicular.53 Se ha intentado relacionar la fertilidad con la cantidad de ondas foliculares pero an no se han encontrado resultados concluyentes.53-55 La incidencia de tres ondas de crecimiento folicular se ha asociado a bajo plan nutricional y estrs calrico en Bos taurus y al nmero de partos en Bos indicus.56

    PRODUCCIN DE ESTRADIOL

    La sntesis de estradiol se realiza por medio de la coordinacin de las clulas de teca y granulosa,57 como se puede observar en la Figura 3. Las clulas de la teca presentan receptores para LH,58

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    por medio de lo cual toman colesterol de la circulacin sangunea. El colesterol se transforman en androstenediona y testosterona,59 estos andrgenos pasan a las clulas de la granulosa donde se localizan receptores para FSH.32,58,59 La cual promueve la sntesis de la enzima aromatasa que transforma los andrgenos en estradiol.60 Parte del estradiol permanece en lquido folicular y otra se dirige a la circulacin sangunea. El contenido folicular de estradiol se incrementa 20 veces durante la seleccin y es ms

    elevado en el folculo ovulatorio que en los otros dominantes que no ovularn; se reduce con la atresia.5,10,48,60,61 La fase folicular que coincide con baja concentracin de progesterona, el estradiol induce la secrecin de GnRH, lo cual conlleva a la secrecin de LH en pulsos con adecuada frecuencia y amplitud para promover la maduracin y ovulacin del folculo dominante.5 El estradiol tambin induce la expresin del estro necesaria para la cpula.62

    Figura 3. Sntesis de estradiol. Para mayores detalles y consulta de autores ver texto

    OVULACIN Con la reduccin de progesterona en la lutelisis, se remueve la retroalimentacin negativa sobre hipotlamo e hipfisis y por consiguiente se incrementa la secrecin de GnRH/LH. El incremento pulstil de LH conduce al aumento de la secrecin folicular de estradiol y maduracin final del folculo. El incremento de estradiol, acompaado de baja concentracin circulante de progesterona estimula la secrecin de GnRH, por

    lo cual se presenta el pulso cclico de esta hormona y por consiguiente el pulso preovulatorio de LH en la hipfisis; este concierto hormonal conduce a la ovulacin.5 La vaca ovula alrededor de 30 horas despus del pico preovulatorio de LH, perodo equivalente a 30 horas despus del inicio o de 10 a 12 horas despus del final del celo.63 El concierto hormonal que se presenta durante la ovulacin y el resto del ciclo se muestra en la Figura 4.

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    Figura 5. Sntesis de progesterona. Para detalles y consulta de autores ver texto

    El pulso preovulatorio de LH luteiniza las clulas foliculares con lo cual se inicia la produccin de progesterona y reduccin de estradiol. La expresin de mRNA para receptor de progesterona en el tejido folicular aumenta en el

    transcurso de 6 horas despus del pulso cclico de GnRH, y disminuye 12 h despus.64 Esto sugiere un perfil similar en el nivel de progesterona. Las concentraciones de androstenediona, testosterona y estradiol, permanecen sin cambio 3.5 h despus

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    Figura 4. Concentracinn de progesterona (P4), hormona luteinizante (LH) y estradiol (E2) durante el ciclo estral de la vaca

    P4 (ng/ml) LH (ng/ml) E2 (pg/ml)

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    del pulso cclico de GnRH y posteriormente se reducen drsticamente.65 La disminucin en la produccin de estradiol coincide con el incremento en la presencia de progesterona folicular. Por lo tanto, se detiene la ruta esteroidognica, en lugar de dirigirse hacia la produccin de estradiol se detiene la sntesis de enzimas encargadas para la transformacin de progestgenos en estrgenos y con esto se incrementa la presencia de progesterona.65 El incremento de progesterona y su receptor se ha relacionado con la produccin de prostaglandina E2 y F2, en las clulas de teca y granulosa, particularmente prostaglandina E2 en la teca.66 Las prostaglandinas incrementan su concentracin en liquido folicular entre 18 y 24 h despus del pulso cclico de GnRH67,68 y estimulan, particularmente la prostaglandina E2, la secrecin de progesterona; con lo cual se presenta otro incremento de esta hormona, el segundo, antes de la ovulacin.69 El segundo incremento de progesterona promueve nuevamente la sntesis de prostaglandinas,68,70 y con esto su incremento en lquido folicular cerca de la ovulacin. La inhibicin de prostaglandinas, por ejemplo con indometacina, impide la ruptura folicular.71,72 Por lo cual se consideran esenciales para la ovulacin.73 La progesterona y los receptores para progesterona estimulan la produccin de oxitocina en las clulas de la granulosa, y la oxitocina, a su vez, promueve la secrecin de prostaglandinas69 y progesterona.74,75 La estimulacin de las hormonas anteriormente citadas se presenta despus del pulso preovulatorio de LH/FSH, lo mismo sucede con metaloproteinasas, as como la familia desintegrina y metaloproteasa con motivos de trombospondina (ADAMTS). Estas se han encontrado en las clulas de teca y granulosa del folculo dominante despus del puso preovulatorio de gonadotropinas76 y probablemente participen en la degradacin de la membrana folicular basal y la fragmentacin de la matriz extracelular en el pice de la pared folicular, para dejar en libertad el ovocito, como sucede en el proceso ovulatorio.

    FORMACIN DEL CUERPO LTEO Y PRODUCCIN DE PROGESTERONA

    El folculo despus de la ovulacin se transforma en cuerpo lteo. La LH promueve el crecimiento del cuerpo lteo, mantiene la funcin ltea y estimula la produccin de progesterona.4 La progesterona, por su parte, regula la duracin del

    ciclo estral y en las hembras preadas mantiene la gestacin:77,78 le proporciona al embrin las condiciones uterinas adecuadas para su desarrollo, suprime la ovulacin con lo cual se reduce la actividad cclica y, en parte, es responsable del desarrollo mamario. El desarrollo del cuerpo lteo se realiza por medio de intensa angiognesis y se compone de clulas parenquimales y no parenquimales. Las parenquimales, esteroidognicas, pueden ser pequeas de

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    tambin por medio de la inhibicin de apoptosis celular. Adems, el cuerpo lteo de la vaca produce factores vasoactivos que participan en la regulacin del flujo sanguneo y produccin de progesterona, como xido ntrico,95 endotelina-1,96-98 angiotensina-II99 y prostaglandina F2.100,101 En el ganado bovino, la secrecin de progesterona se incrementa paulatinamente conforme se presenta intensa angiogenesis, proliferacin de las clulas de teca y granulosa de la pared del folculo que ha ovulado, y su diferenciacin (luteinizacin) durante los primeros 5-6 das despus de la ovulacin. El incremento es de

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    periferia del cuerpo lteo se ha considerado como primer indicador fisiolgico de la lutelisis.130 La influencia de la prostaglandina F2 sobre el xido ntrico se ha comprobado mediante su efecto sobre productos intermedios. Aplicacin de prostaglandina F2 estimula expresin endotelial de xido ntrico sintasa (enzima encargada de transformar la L-arginina en xido ntrico) en el cuerpo lteo, 30 minutos despus a su aplicacin, con el correspondiente incremento de flujo sanguneo luteal.130 Por otro lado, el efecto del xido ntrico sobre el flujo sanguneo se ha demostrado por medio de su promocin e inhibicin. El abastecedor de xido ntrico (S-nitroso-N-acetyl-D,L-pellicilamine) en el cuerpo lteo, induce incremento agudo del flujo sanguneo y acorta el ciclo estral. Adems, la inyeccin del inhibidor de xido ntrico sintasa (L-NG-nitroarginine methyl ester) dentro del cuerpo lteo suprime completamente el incremento agudo del flujo sanguneo provocado por la prostaglandina F2 y retarda el inicio de la lutelisis.130 La prostaglandina F2 despus de su efecto vasodilatador, limita el suministro de oxgeno y nutrientes al cuerpo lteo para culminar la lutelisis por medio de inhibicin de angiognesis, mediante angiolisis y tambin por vasoconstriccin. Treinta minutos despus de la inyeccin de prostaglandina F2, en la parte media del ciclo, se ha observado regulacin a la baja de la expresin del mRNA del factor de crecimiento endotelial vascular y del factor de crecimiento trofobstico bsico,86 as como la expresin proteica del factor de crecimiento endotelial A.131 Con esto la prostaglandina F2 inhibe el desarrollo de los vasos sanguneos. En angiolisis, se ha observado la desaparicin de vasos sanguneos delgados antes que los gruesos en el cuerpo lteo durante la lutelisis.85 La prostaglandina F2 estimula la biosntesis de endotelina-1 (EDN1) y la expresin de su mRNA; as como angiotensina II (Ang II) y la expresin de enzima convertidora-angiotensina, tanto in vivo como in vitro.97,98,132 Estos son potentes vasoconstrictores utilizados por prostaglandina F2 para reducir el suministro sanguneo y por consiguiente disminuir la disponibilidad de oxgeno y nutrientes al cuerpo lteo durante la lutelisis.96,98,132 EDN1 y Ang II

    tambin se han encontrado que inhiben la secrecin de progesterona en el cuerpo lteo in vitro,96,98 lo cual los ubica como al xido ntrico, citado anteriormente, como factores que participan en la lutelisis funcional.

    CONCLUSIN

    El ciclo estral en la vaca se realiza por el concierto hormonal del eje hipotlamo-hipfisis-ovarios, y la participacin de hipotlamo-hipfisis-endometrio. El hipotlamo segrega GnRH y oxitocina. La GnRH promueve la secrecin de gonadotropinas del lbulo anterior de la hipfisis para la promocin de crecimiento folicular, ovulacin y actividad del cuerpo lteo en ovarios. La oxitocina se almacena en el lbulo posterior de hipfisis y su liberacin estimula la secrecin de prostaglandina F2 en endometrio. Esta prostaglandina destruye el cuerpo lteo y se inicia un nuevo ciclo.

    LITERATURA CITADA

    1. Scaramuzzi RJ, Martin GB. The

    importance of interaction among nutrition, seasonality and socio-sexual factors in the development of hormone free methods for controlling fertility. Reprod Domest Anim 2008; 43 (Suppl 2): 129-136.

    2. Clarke IJ. Two decades of measuring GnRH secretion. Reprod Suppl 2002; 59: 1-13.

    3. Walters DL, Schams D, Schallemberger E. Pulsatile secretion of goandotropins, ovarian steroids and ovarian oxytocin during luteal phase of the oestrous cycle in the cow. J Reprod Fertil 1984; 71: 479-491.

    4. Hansel W, Concannon PW, Lukaszewska JH. Corpora lutea of the large domestic animals. Biol Reprod 1973; 8: 222-245.

    5. Sunderland SJ, Crowe MA, Boland MP, Roche JF, Ireland JJ. Selection, dominance and atresia of follicles during the oestrous cycle of heifers. J Reprod Fertil 1994; 101: 547-555.

    6. Webb R, Garnsworthy PC, Gong JC, Armstrong DG. Control of follicular growth: local interactions and nutritional influences. J Anim Sci 2004; 82 (E-Suppl): E63-74.

  • 50

    7. Ireland JJ, Roche JF. Development of antral follicles in cattle after prostaglandin-induced luteolysis: changes in serum hormones, steroids in follicular fluid, and gonadotropin receptors. Endocrinology 1982; 111: 2077-2086.

    8. Hansel W, Shemesh M, Hixon J, Lukaszewska J. Extraction, isolation and identification of a luteolytic substance from bovine endometrium. Biol Reprod 1975; 13: 30-37.

    9. Kindahl H, Lindell JO, Edqvist LE. Release of prostaglandin F2 during the oestrous cycle. Acta vet scand 1982; 77 (Suppl): 143-158.

    10. Singh J, Adams GP, Pierson RA. Promise of new imaging technologies for assessing ovarian function. Anim Reprod Sci 2003; 78: 371-399.

    11. Zhang M, Xia G. Hormonal control of mammalian oocyte meiosis at diplotene stage. Cell Mol Life Sci 2012; 69: 1279-1288.

    12. Erickson BH, Development and radio-response of the preantral ovine ovary. J Reprod Fertil 1966; 10: 97-105.

    13. Russe I. Oogenesis in cattle and sheep. Bibl Anat 1983; 24: 77-92.

    14. Smitz J, Cortvrindt R. The earliest stage of folliculogenesis in vitro. Reproduction 2002; 123: 185-202.

    15. Driancourt MA. Regulation of ovarian follicular dynamics in farm animals. Implications for manipulation of reproduction. Theriogenology 2001; 55: 1211-1239.

    16. Braw-Tal R, Yossefi S. Studies in vitro and in vivo on the initiation of follicle growth in the bovine ovary. J Reprod Fertil 1997; 109: 165-171.

    17. Lussier JG, Matton P, Dufour JJ. Growth rates of follicles in the ovary of the cow. J Reprod Fertil 1987; 81: 301-307.

    18. Ginther OJ, Bergfelt DR, Beg MA, Kot K. Role of low circulating FSH concentrations in controlling the interval to emergence of the subsequent wave in cattle. Reproduction 2002; 124: 475-482.

    19. Sirois J, Fortune JE. Ovarian follicular dynamics during the estrous cycle in heifers monitored by real-time ultrasonography. Biol Reprod 1988; 39: 308-317.

    20. Mihm M, Crowe MA, Knight PG, Austin EJ. Follicle wave in cattle. Reprod Domest Anim 2002; 37: 191-200.

    21. Savio JD, Keenan L, Boland MP,Roche JF. Pattern of growth of dominant follicles during the oestrus cycle of heifers. J Reprod Fertil 1988; 83: 663-671.

    22. Murphy MG, Enright WJ, Crowe MA, McConnell K, Spicer LJ, Boland MP, Roche JF. Effect of dietary intake on pattern of growth of dominant follicles during the oestrous cycle in beef heifers. J Reprod Fertil 1991; 92: 333-338.

    23. Adams GP, Matteri RL, Kastelic JP, Bo JC, Ginther OJ. Association between surges of FSH and the emergence of follicular waves in heifers. J Reprod Fertil 1992; 94: 177-188.

    24. Kulick LJ, Kot K, Wiltbank MC, Ginther OJ. Follicular and hormonal dynamics during the first follicular wave in heifers. Theriogenology 1999; 52: 913-921.

    25. Turzillo AM, Fortune JE. Suppression of the secondary FSH surge with bovine follicular fluid is associated with delayed ovarian follicular development in heifers. J Reprod Fertil 1990; 89: 643-653.

    26. Truzillo AM, Fortune JE. Effects of suppression plasma FSH on ovarian follicular dominance in cattle. J Reprod Fertil 1993; 98: 113-119.

    27. Ginther OJ, Bergfelt DR, Kulick LJ, Kot K. Selection of the dominant follicle in cattle: role of two-way functional coupling between follicle-stimulating hormone ad the follicles. Biol Reprod 2000; 62: 920-927.

    28. Ginther OJ, Beg MA, Donadeu FX, Bergfelt DR. Mechanism of follicle deviation in monovular farm species. Anim Reprod Sci 2003; 78: 239-257.

    29. Jaiswal RS, Singh J, Adams GP. Developmental patterns of small antral follicles in the bovine ovary. Biol Reprod 2004; 71: 1244-1251.

    30. Rahe CH, Owens RE, Fleeger JL, Newton HJ, Harms PG. Pattern of plasma luteinizing hormone in the cyclic cow: dependence upon the period of the cycle. Endocrinology 1980; 107: 498-503.

    31. Xu Z, Garverick HA, Smith GW, Smith MF, Hamilton SA, Youngquist RS. Expression of follicle-stimulating

  • 51

    hormone and luteinizing hormone receptor messenger ribonucleic acids in bovine follicles during the first follicular wave. Biol Reprod 1995; 53: 951-957.

    32. Evans ACO, Fortune JE. Selection of the dominant follicle in cattle occurs in the absence of differences in the expression of messenger ribonucleic acid for gonadotropin receptors. Endocrinology 1997; 2963-2971.

    33. Bao B, Garverick HA, Smith GW, Salfen BE, Youngquist RS. Changes in messenger ribonucleic acid encoding luteinizing hormone receptor, cytochrome P450-side chain cleavage, and aromatase are associated with recruitment and selection of bovine ovarian follicles. Biol Reprod 1997; 56: 1158-1168.

    34. Sartori R, Fricke PM, Ferreira JCP, Ginther OJ, Wiltbank MC. Follicular deviation and acquisition of ovulatory capacity in bovine follicles. Biol Reprod 2001; 65: 1403-1407.

    35. Braw-Tal R, Roth Z. Gene expression for LH receptors, 17 -hydorxylase and StAR in the theca interna and preantral and early antral follicles in the bovine ovary. Reproduction 2005; 129: 453-461.

    36. Mihm M, Baker PJ, Ireland JL, Smith GW, Coussens PM, Evans AC, Ireland JJ. Molecular evidence that growth of dominant follicles involves a reduction in follicle-stimulating hormone dependence and an increase in luteinizing hormone dependence in cattle. Biol Reprod 2006; 74: 1051-1059.

    37. Noguerira MF, Buratini J Jr, Price CA, Castillo AC, Pinto MG, Barros CM. Expression of LH receptor mRNA splice variants in bovine granulosa cells: changes with follicle size and regulation by FSH in vitro. Mol Reprod Dev 2007; 74: 680-686.

    38. Ireland JJ, Roche JF. Development of monovulatory antral follicles in heifers: changes in steroid in follicular fluid and receptors for gonadotropins. Endocrinology 1983; 112: 150-156.

    39. Ginther OJ, Kastelic JP, Knopf L. Intraovarian relationships among dominant and subordinate follicles and the corpus luteum in heifers. Theriogenology 1989; 32: 787-795.

    40. Singh J, Brogliatti GM, Christensen CR, Adams GP. Active immunization against follistatin and its effect on FSH, follicle development and superovulation in heifers, Theriogenology 1999; 52: 49-66.

    41. Ginther OJ, Bergfelt DR, Kulick LJ, Kot K. Selection of the dominant follicle in cattle: role of estradiol. Biol Reprod 2000; 63: 383-389.

    42. Ginther OJ, Wiltbank C, Fricke PM, Gibbons JR, Kot K. Selection of the dominant follicle in cattle. Biol Reprod 1996; 55: 1187-1194.

    43. Ginther OJ, Beg MA, Bergfelt DR, Donadeu FX, Kot K. Follicle selection in monovular species. Biol Repord 2001; 65: 638-647.

    44. Rinderknecht E, Humbel RE. The amino acid sequence of human insulin-like growth factor I and its structural homology with proinsulin. J Biol Chem 1978a; 253: 2769-2776.

    45. Rinderknecht E, Humbel RE. Primary structure of human of insulin-like growth factor II. FEBS Lett 1978b; 89: 283-286.

    46. Spicer LJ, Echternkamp SE. The ovarian insulin and insulin-like growth factor system with an emphasis on domestic animals. Domest Anim Endocrinol 1995; 12: 223-245.

    47. Hammond JM, Mondschein JS, Samaras SE, Smith SA, Hagen DR. The ovarian insulin-like growth factor system. J Reprod Fertil 1991; 43 (Suppl): 199-208.

    48. Mihm M, Austin EJ, Good TE, Ireland JL, Knight PG, Roche JF, Ireland JJ. Identification of potential intrafollicular factors involved in selection of dominant follicles in heifers. Biol Reprod 2000; 63: 811-819.

    49. Rivera GM, Fortune JE. Proteolysis of insulin-like growth factor binding proteins -4 and -5 in bovine follicular fluid: implications for ovarian follicular selection and dominance. Endocrinology 2003; 144: 2977-2987.

    50. Canty MJ, Boland MP, Evans AC, Crowe MA. Alterations in follicular IGFBP mRNA expression and follicular fluid IGFBP concentrations during the first follicle wave in beef heifers. Anim Reprod Sci 2006; 93: 199-217.

    51. Knight PG, Glister C. Local roles of TGF- superfamily members in the

  • 52

    control of ovarian follicle development. Anim Reprod Sci 2003; 78: 165-183.

    52. Philips DJ, Krester DM. Follistatin: a multifunctional regulatory protein. Front Neuroendocrinol 1998; 19: 287-322.

    53. Jaiswal RS, Singh J, Marshall L, Adams GP. Repeatability of 2- and 3- waves patterns during the bovine estrous cycle. Theriogenology 2009; 72: 81-90.

    54. Towson DH, Tsang PCW, Butler WR, Grajblat M, Griel Jr LC, Johnson CJ, Milvae RA, Niksic GM. Plate JL. Relationship of fertility to ovarian follicular waves before breeding in dairy cows. J Anim Sci 2002; 80: 1053-1058.

    55. Blench ECL, Glencross RG, Knight PG. Association between ovarian follicle development and pregnancy rates in dairy cows undergoing spontaneous oestrous cycle. Reproduction 2004; 127: 621-629.

    56. Bo GA, Baruselli PS, Martinez MF. Patterns and manipulation of follicular development in Bos indicus cattle. Anim Reprod Sci 2003; 78: 307-326.

    57. Fortune JE, Quirk SM. Regulation of steroidogenesis in bovine preovulatory follicles. J Anim Sci 1988; 66 (Suppl 2): 1-8.

    58. Camp TA, Rahal JO, Mayo KE. Cellular localization and hormonal regulation of follicle-stimulating hormone and luteinizing hormone receptor messenger RNAs in the rat ovary. Endocrinol 1991; 5: 1405-1417.

    59. Dorrington JA, Moon YS, Armstrong DT. Estradiol-17 biosynthesis in current granulose cells form hypophysectomized inmature rats; stimulation by follicle-stimulating hormone. Endocrinology 1975; 97: 1328-1331.

    60. Hiller SC. Current concepts of the roles of follicle stimulating hormone and luteinizing hormone in folliculogenesis. Hum Repord (Oxford, England) 1994; 9: 188-191.

    61. Fortune JE. Ovarian follicular growth and development in mammals. Biol Reprod 1994; 50: 225-232.

    62. Ireland JJ. Control of follicular growth and development. J Reprod Fertil 1987; 34 (Suppl): 39-54.

    63. Acosta TJ, Hayashi KG, Ohtani M, Miyamoto A. Local changes in blood

    flow within the preovulatory follicle wall and early corpus luteum in cows. Reproduction 2003; 125: 759-767.

    64. Jo M, Komar CM, Fortune JE. Gonadotropin surge induces two separate increases in Messenger RNA for progesterone receptor in bovine preovulatory follicles. Biol Repord 2002; 67: 1981-1988.

    65. Komar CM, Berndtson AK, Evans ACO, Fortune JE. Decline in circulating estradiol during the perovulatory period is correlated with decrease in estradiol and androgen, and in messenger RNA for P450 aromatase and P450 17-hydroxilase, in bovine preovulatory follicles. Biol Reprod 2001; 64: 1797-1805.

    66. Fortune JE, Yang CS, Willis ER. Prostaglandins stimulate progesterone production in vitro by theca and granulosa cells from ovulatory follicles of cattle. In: Proceedings of the 41st annual meeting of the Society for Study of Reproduction, Kailua-Kona, Hawaii, 2008. Madison, WI. SSR/Biol Reprod Special Issue 2008: 180-181.

    67. Sirois J. Induction of prostaglandin endoperoxide synthase-2 by human chorionic gonadotropin in bovine perovulatory follicles in vivo. Endocrinology 1994; 138: 4427-4434.

    68. Bridges PJ, Komar CM, Fortune JE. Gonadotropin-induced expression of messenger ribonucleic acid for cyclooxygenase-2 and production of prostaglandin E and F2 in bovine preovulatory follicles are regulated by the progesterone receptor. Endocrinology 2006; 147: 4713-4722.

    69. Bridges PJ, Fortune JE. Regulation, action and transport of prostaglandins during the periovulatory period in cattle. Mol Cell Embriol 2007; 263: 1-9.

    70. Li Q, Jimenez-Krassel F, Bettegowda A, Ireland JJ, Smith GW. Evidence of preovulatory rise in intrafollicular progesterone may not be required for ovulation in cattle. J Endocrinol 2007; 192; 473-483.

    71. Armstrong DT. Prostaglandins and follicular fractions. J Reprod Fertil 1981; 62: 283-291.

  • 53

    72. Murdoch WJ, Hansen TR, McPherson LA. A review: role of prostaglandins in vertebrate ovulation. Prostaglandins 1993; 46: 85-115.

    73. Peters NW, Pursley JR, Smith GW. Inhibition of intrafollicular PGE2 synthesis and ovulation following ultrasound-mediated intrafollicular injection of the selective cyclooxygenase-2 inhibitor NS-398 in cattle. J Annim Sci 2004; 82: 1656-1662.

    74. Chandraskher YA, Fortune JE. Effects of oxytocin on steroidogesis by bovine theca and graulosa cells. Endocrinology 1990; 127: 926-933.

    75. Voss AK, Fortune JE. Oxytocin stimulates progesterone production by bovine granulosa cells isolated before, but not after, the luteinizing hormone surge. Mol Cell Edocrinol 1991; 78: 17-24.

    76. Madan P, Bridges PJ, Komar CM, Beristain AG, Rajamahendran R, Fortune JE, MacCalman CD. Expression of messenger RNA for ADAMTS subtypes changes in the preovulatory follicle after the gonadotropin surge and during luteal development. Biol Repord 2003; 69: 1506-1514.

    77. Rodgers RJ, Mitchell MD, Simpson ER, Secretion of progesterone and prostaglandins by cells of bovine corpora lutea form three stages of the luteal phase. J Endocrinol 1988; 118: 121-126.

    78. Niswender GD, Juengel JL, Silwa PJ, Rollyson MK, McIntush EW. Mechanisms controlling the function and life span of the corpus luteum. Physiol Rev 2000; 80: 1-29.

    79. Lei Zm, Chgini N, Rao CV. Quantitative cell composition of human and bovine corpus luteum from various reproductive status. Biol Reprod 1991; 44: 1148-1156.

    80. OShea JD, Rodgers RJ, DOcchio MJ. Cellular composition of the cyclic corpus luteum of the cow. J Reprod Fertil 1989; 85: 483-487.

    81. Alila HW, Hansel W. Origen of different cells types in the bovine corpus luteum as characterized by specific monoclonal antibodies. Biol Reprod 1984; 31: 1015-1025.

    82. Ursley J, Leymarie P. Varying response to luteinizing hormone of two luteal cell

    types isolated from bovine corpus luteum. J Endocrinol 1979; 83: 303-310.

    83. Meidan R, Girsh E, Blum O, Aberdam E. In vitro differentiation of bovine theca and granulose cells into small and large luteal-like cells: morphological and functional characteristics. Biol Reprod 1990; 43: 913-921.

    84. Girsh E, Greber Y, Meidan R. Luteotrophic and luteolytic interactions between bovine small and large luteal-like cells and endothelial cells. Biol Reprod 1995; 52: 954-962.

    85. Hojo T, Al-Ziabi MO, Skarzynski DJ, Acosta TJ, Okuda K. Changes in the vasculature of bovine corpus luteum during the estrous cycle and prostaglandin F2-induced luteolysis. J Reprod Dev 2009; 55: 512-517.

    86. Shirasuna K, Sasahara K, Matsui M, Shimizu T, Miyamoto A. Prostaglandin F2 differentially affects mRNA expression relating to angiogenesis, vasoactivation and prostaglandins in the early and mid corpus luteum in the cow. J Reprod Dev 2010; 56: 428-436.

    87. Conolly DT. Vascular permeability factor: a unique regulator of blood vessel function. J Cell Biochem 1991; 47: 219-223.

    88. Ferrara N, Davis-Smyth T. The biology of vascular endothelial growth factor. Endocr Rev 1997; 47: 4-25.

    89. Reynolds L, Redmer D. Growth and development of the corpus luteum. J Reprod Fertil 1999; 54 (Suppl): 181-191.

    90. Berisha B, Schams D. Ovarian function in ruminants. Domest Anim Endocrinol 2005; 29: 305-317.

    91. Berisha B, Schams D, Kosmann M, Amselgruber W, Einspanier R. Expression and tissue concentration of vascular endothelial growth factor, its receptors, and localization in the bovine corpus luteum during estrous cycle and pregnancy. Biol Reprod 2000; 63: 1106-1114.

    92. Zheng J, Redmer DA, Reynolds LP. Vascular development and heparin-binding growth factors in the bovine corpus luteum at several stages of the estrous cycle. Biol Reprod 1993; 49: 1177-1189.

  • 54

    93. Skarzynski DJ, Okuda K. Sensitivity of bovine corpora lutea to PGF2is dependent of progesterone, oxytocin and prostaglandins. Biol Reprod Fertil 1999; 60: 1292-1298.

    94. Okuda K, Korzekwa A, Shibaya M, Murakami S, Nishimura R,Tsubouchi M, Woclawek-Potocka I, Skarzynski DJ. Progesterone is a suppressor of apoptosis in bovine luteal cells. Biol Reprod 2004; 71: 2065-2071.

    95. Skarzynski DJ, Kobayashi S, Okuda K. Influence of nitric oxide noradrenaline on prostaglandin F2-induced oxytocin secretion and intracellular calcium mobilization in cultured bovine luteal cells. Biol Reprod 2000; 63: 1000-1005.

    96. Girsh E, Milvae RA, Wang W, Meidan R. Effect of endothelin-1 on bovine luteal cell function: role in prostaglandin F2-induced antisteroidogenic action, Endocrinology 1996; 137: 1306-1312.

    97. Girsh E, Wang W, Mamluk R, Arditi F, Friedman A, Milvae RA, Meidan R. Regulation of endothelin-1 expression in the bovine corpus luteum: elevation by prostaglandin F2. Endocrinology 1996; 137: 5191-5196.

    98. Miyamoto A, Kobayashi S, Arata S, Ohtani M, Fukui Y, Schams D. Prostaglandin F2promotes the inhibitory action of endothelin-1 on the bovine luteal function in vitro. J Endocrinol 1997; 152: R7-11.

    99. Hayashi K, Miyamoto A, Berisha B, Kosmann MR, Okuda K, Schams D. Regulation of angiotensin II production and angiotensin receptors in microvascular endothelial cells form bovine corpus luteum. Biol Reprod 2000; 62: 162-167.

    100. Shemesh M, Hansel W. Stimulation of prostaglandin synthesis in bovine ovarian tissues by arachidonic acid and luteinizing hormone. Biol Reprod 1975; 13: 448-452.

    101. Miyamoto A, con Lutzow H, Schams D. Acute action of prostaglandin F2, E2 and I2 in microdialyzed bovine corpus luteum in vitro. Biol Repord 1993; 49: 423-430.

    102. Skarzynski DJ, Jaroszewski JJ, Bah MM, Deptula KM, Barszczewska B,

    Gawronska B, Hansel W. Administration of a nitric oxide synthase inhibitor counteracts prostaglandin F2-induced luteolysis in cattle. Biol Reprod 2003; 68: 1674-1681.

    103. Fields MJ, Fields PA. Morphological characteristics of bovine corpus luteum during the estrous cycle and pregnancy. Theriogenology 1996; 45: 1295-1325.

    104. Grummer RR, Carroll DJ. A review lipoprotein cholesterol metabolism: importance to ovarian function. J Anim Sci 1988; 66: 3160-3173.

    105. Carroll DJ, Grummer RR, Mao FC. Progesterone production by cultured luteal cells in the presence of bovine low- and high-density lipoproteins purified by heparin affinity chromatography. J Anim Sci 1992; 70: 2516-2526.

    106. Stocco DM, Ascoli M. The use of genetic manipulation of MA 10 Leydig tumor cells to demostrate the role of mitochondrial proteins in the acute regulation of steroidogenesis. Endocrinology 1993; 133: 2827-2832.

    107. Stocco DM. A StAR search: Implications in controlling steroidogenesis. Biol Reprod 1997; 56: 328-336.

    108. Niswender GD. Molecular control of luteal secretion of progesterone. Reproduction 2002; 123: 333-339.

    109. Niswender GD, Nett . The corpus luteum. In: Knobil E, Neill JD. The Physiology of Reproduction. New York: Raven Press, 1994.

    110. Niswender GD, Juengel JL, McGuireWJ, Belfiore CJ, Wiltbank MC. Luteal function: the estrous cycle and early pregnancy. Biol Reprod 1994; 50: 239-247.

    111. Kotwica J, Rekawiecki R, Duras M. Stimulatory influence of progesterone on its own synthesis in bovine corpus luteum. Bull Vet Inst Pulawy 2004; 48: 139-145.

    112. Rakawiecki R, Nowik M, Kotwica J. Stimulatory effect of LH, PGE2 and progesterone on StAR protein, cytochrome P450 colesterol side chain cleavage and 3b-hydorxisteroid dehydrogenase gene expression in bovine luteal cells. Prostaglandins Other Lipid Mediat 2005; 78: 169-184.

  • 55

    113. Miszkiel G, Skarzynski D, Bogacki M, Kotwica J. Concentrations of catecholamines, ascorbic acid, progesterone and oxytocin in the corpora lutea of cyclic and pregnant cattle. Reprod Nut Dev 1999; 39: 509-516.

    114. Kotwica J, Bogacki M, Rekawiecki R. Neural regulation of the bovine corpus luteum. Dom Anim Endocrinol 2002; 23: 299-308.

    115. Kotwica J, Skarzynski D, Mlynarczuk J, Rekawiecki R. Role of prostaglandin E2 in basal and noradrenaline-induced progesterone secretion form corpus luteum in cow. Prostaglandis Other Lipid Mediat 2003; 70: 351-359.

    116. Bogacki M, Kotwica J. Noradrenaline affects the post-transcriptional synthesis of oxytocin in the bovine corpus luteum. Theriogenology 1999; 52: 91-102.

    117. Niswender GD, Reimers TJ, Diekman MA, Nett TM. Blood flow: a mediator of ovarian function. Biol Reprod 1976; 14: 64-81.

    118. McCracken JA, Schramm W, Barcikowski B, Wilson L Jr. The identification of prostaglandin F2 as a uterine luteolytic hormone and the hormonal control of its synthesis. Acta Vet Scand 1981; 77 (Suppl): 71-88.

    119. Acosta TJ, Yoshizawa N, Ohtani M, Miyamoto A. Local changes in blood flow within the early and midcycle corpus luteum after prostaglandin F2 injection in the cow. Biol Reprod 2002; 66: 651-658.

    120. McCracken JA, Custer EE, Lamsa JC. Luteolysis: a neuroendocrine-mediated event. Physiol Rev 1999; 79: 263-323.

    121. Ham EA, Cirillo VJ, Zanetti ME, Keuhl FA. Estrogen-direct synthesis of specific prostaglandin in uterus. Proc Natl Acad Sci USA1975; 72: 1420-1424.

    122. Burns PD, Tsai SJ, Wiltbank MC, Hayes SH, Graf GA, Silvia WJ. Effects of oxytocin on concentrations of prostaglandin H synthase-2 mRNA in ovine endometrial tissue in vivo. Endocrinology 1997; 138: 5637-5640.

    123. Jungel JL, Garverick HA, Johnson AL, Yongquist RS, Smith MF. Apoptosis during luteal regression in cattle. Endocrinology 1993; 132: 249-254.

    124. Meidan R, Milvae RA, Weiss S, Levy N, Friedman A. Intra-ovarian regulation of luteolysis. J Reprod Fertil 1999; 54 (Suppl): 217-228.

    125. Stocco C, Telleria C, Gibori G. The molecular control of corpus luteum formation, function, and regression. Endocr Rev 2007; 28: 117-149.

    126. Neuvians TP, Schams D, Bersha B, Pfaffl NW. Involvement of pro-inflammatory cytokines, mediators of inflammation, and basic fibroblast growth factor in prostaglandin F2-induced luteolysis in bovine corpus luteum. Biol Reprod 2004; 70: 473-480.

    127. Miyamoto A, Shirasuna K, Wijayagunawardane MP, Watanabe S, Hayashi M, Yamamoto D, Matsui M, Acosta TJ. Blood flow: a key regulatory component of corpus luteum function in the cow. Domest Anim Endocrinol 2005; 29: 329-339.

    128. Ginther OJ, Silva LA, Araujo RR, Beg MA. Temporal association among pulses of 13,14-dihydro-15-keto-PGF2, luteal blood flow, and luteolysis in cattle. Biol Reprod 2007; 76: 506-513.

    129. Shirasuna K, Yamamoto D, Moota K, Shimizu T, Matui M, Miyamoto A. PGF2 stimulates endothelial nitric oxide synthase depending on the existence of bovine granulosa cells; analysis by co-culture system of endothelial cells, smooth muscle cells and granulosa cells. Reprod Dom Anim 2008; 43: 592-598.

    130. Shirasuna K, Watanabe S, Asahi T, Wijagunawardane MPB, Sasahara K, Jiang C, Matsui M, Sasaki M, Shimizu T, Davis JS, Miyamoto A. Prostaglandin F2 increases endothelial nitric oxide synthase in the periphery of the bovine corpus luteum: the possible regulation of blood flow at an early stage of luteolysis. Reproduction 2008; 135: 527-539.

    131. Berisha B, Kleim H, Miyamoto A, Meyer H, Schams D. Effect of prostaglandin F2 administration on the luteotropic and angiogenic factors during functional luteolysis in the bovine corpus luteum. Biol Reprod 2008; Suppl Abst 398.

    132. Hayashi K, Miyamoto A. Angiotensin II interacts with prostaglandin F2 and endothelin-1 as a local luteolytic factor in

  • 56

    the bovine corpus luteum in vitro. Biol Reprod 1999; 60: 1104-1109.

    ABSTRACT Soto-Morales MH, Escobar-Medina FJ, Archiga-Flores CF, Magallanes-Quintanar MG. Cows estrous cycle. Information related to the estrous cycle of cows was collected, categorized, and analyzed. It was found that there is an active interaction of the hypothalamic-hypophysal-gonadal axis and participation of the hypothalamus, hypophysis and endometrium. GnRH promotes gonadotropin secretion (FSH and LH hormones) form the anterior lobe of the hypophysis to induce follicular growth, ovulation and corpus luteun function in the ovaries. Oxytocin is stored at the posterior lobe of the hypophysis and its secretion stimulates endometrial prostaglandins release (PGF2). Prostaglandin destroys the corpus luteum in order to initiate another estrous cycle. FSH stimulates follicular growth and LH follicular maturation and ovulation. Both gonadotropins interaction promote estradiol production at the follicle. Follicular growth takes place in follicular waves. In the cow, 2 to 4 follicular waves can occur during every cycle, but 2 to 3 are most common. FSH increases blood concentration prior to each wave of follicular growth. Ovulation is accomplished through the preovulatory LH peak previously stimulated by the cyclic GnRH peak. After ovulation, the corpus luteum is formed and produces progesterone secretion by LH influence. Oxytocin function by the end of the cycle stimulates endometrial secretion of PGF2. This hormone destroys the corpus luteum and a new cycle is initiated. Based of previous studies, there is follicular growth during the estrous cycle accompanied by estradiol production, ovulation and corpus luteum formation with progesterone secretion and corpus luteum destruction (luteolisis). Vet Zac 2013; 4: 41-56. Keywords: estrous cycle, cow, follicular growth.

  • 57

    CRECIMIENTO ALOMTRICO FETAL EN EQUINOS

    Angel Francisco Gallegos Guerrero, Francisco Javier Escobar Medina, Carlos Fernando Archiga Flores, Rosa Isabel vila Rodrguez, Federico de la Colina Flores

    Unidad Acadmica de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autnoma de Zacatecas

    Correspondencia: Francisco Javier Escobar Medina, [email protected]

    RESUMEN

    Se determin el crecimiento alomtrico fetal en 150 productos equinos, de yeguas que se sacrificaron con diferente avance de la gestacin. Los productos se midieron inmediatamente despus del sacrificio con cinta mtrica. Al examen se determinaron la longitud occpito-caudal (del occipucio a la base de la cola), dimetro y permetro del crneo, permetros torcico y abdominal, as como longitudes de los miembros anterior y posterior. Los valores de la pendientes para los miembros, tanto anteriores como posteriores, fueron mayores con respecto al valor encontrado para la longitud occpito-caudal. Los resultados para el miembro anterior fueron: elevacin: -0.1512, pendiente: 1.23 y R2: 0.982 (p < 0.01). La R2 en el miembro posterior fue de 0.979 (p

  • 58

    caractersticas genticas y distinta edad, peso y avance de la gestacin que se sacrificaron en la Empacadora de Carnes de Zacatecas, localizada en el municipio de Fresnillo, Zac. En esta empacadora se sacrifican equinos de distinta procedencia. Los productos estudiados se midieron con cinta mtrica inmediatamente despus del sacrificio de los animales. En cada caso se registraron las siguientes variables: Longitud occpito-caudal (como medida de la longitud corporal), del occipucio a la base de la cola (Figura 1). Dimetro del crneo, como se presenta en la Figura 2, se tomo al nivel medio de la frente. El permetro del crneo se midi alrededor de la frente y delante de la base de las orejas (Figura 3). Permetro torcico, al nivel de la cuarta costilla, detrs de los codos (Figura 4). Permetro abdominal, en la parte posterior del abdomen, delante de los miembros posteriores (Figura 5). Longitud del miembro anterior, altura a la cruz (Figura 6).

    Longitud del miembro posterior, altura a la espina ilaca (Figura 7). Adems se determin el sexo del producto Procesamiento de datos Se generaron modelos alomticos con el propsito de establecer la relacin de crecimiento entre la longitud occpito-caudal y las dems variables zoomtricas, y entre el dimetro y permetro craneales. Adems, se revis si el sexo modificaba esta relacin. Se utiliz el programa ambiente estadstico R para realizar el anlisis estadstico de datos.3 El modelo alomtrico se bas en la siguiente funcin y=axb, donde y es una de las variables zoomticas realizadas a los fetos, a es el coeficiente de elevacin, x la longitud occpito-caudal y b la pendiente de la relacin de crecimiento entre las dos variables zoomtricas. Se utiliz el paquete smatr4 del ambiente de programacin estadstica antes mencionado.

    Figura 1. Longitud occpito-caudal

  • 59

    Figura 2. Dimetro del crneo

    Figura 3. Permetro del crneo

  • 60

    Figura 4. Dimetro torcico

    Figura 5. Permetro abdominal

  • 61

    Figura 6. Longitud del miembro anterior

    Figura 7. Longitud del miembro posterior

  • 62

    Cuadro 1. Modelo alomtico en el desarrollo de fetos equinos con respecto a su longitud occpito-caudal

    Medida

    Elevacin

    Pendiente

    R2 ajustada

    Permetro craneal

    Dimetro craneal

    Permetro torcico

    Permetro abdominal

    Miembro anterior

    Miembro posterior

    -0.285

    -0.802

    -0.0518

    -0.202

    -0.512

    -0.487

    0.980

    1.02

    0.944

    0.897

    1.23

    1.22

    0.918**

    0.945**

    0.983**

    0.976**

    0.982**

    0.979**

    ** P

  • 63

    occpito-caudal, ligeramente mayor en los miembros anteriores. Esto significa que los miembros crecen a mayor velocidad que la longitud corporal. Los potrillos nacen con los miembros largos. Lo cual es esencial para alcanzar la glndula mamaria y realizar la primera actividad de su vida, el amamantamiento. El consumo de calostro, primera produccin de la glndula mamaria despus del parto, es importante en el recin nacido porque la madre le transfiere inmunoglobulinas, inmunidad pasiva5,6 y nutrientes.7 Ausencia de este proceso conlleva al riesgo de infecciones y muerte.8-10 La transferencia de inmunoglobulinas a travs del calostro se debe a la imposibilidad de hacerse durante la gestacin, la placenta de la yegua es epitelio corial, no permite la transferencia de anticuerpos.5,11-13 El consumo de calostro es importante para establecer la concentracin adecuada de inmunoglobulinas en el potrillo, particularmente la inmunoglobulina G (IgG), y asegurar su supervivencia. Esta concentracin debe ser mayor a 800 mg/dl.11,14 Recin nacidos con menores niveles (400 a 800 mg/dl) se consideran en riesgo y an menores (< 400 mg/dl) como falla en la transferencia.9,11 La habilidad del potrillo para absorber IgG del calostro es mayor durante las primeras 6 a 8 horas, ptima a las 12 h15 y cesa de 24 a 36 horas despus del nacimiento.5,11,16,17 Posteriormente el calostro pierde su importancia inmunolgica y se convierte en fuente nutritiva.18 La concentracin de IgG en calostro se relaciona con la concentracin de IgG en el potrillo.19-22 Con base en lo anterior es importante que el nacimiento del potrillo se acompae de condiciones apropiadas para el consumo y absorcin de inmunoglobulinas. El consumo implica la capacidad para alcanzar la glndula mamaria de la yegua, para lo cual nacen con miembros largos, de crecimiento mayor a la longitud corporal durante su perodo fetal. La mayor velocidad de crecimiento de los miembros tanto anteriores como posteriores, con relacin a la longitud occpito-caudal coincide con los resultados de otras especies. Petrocelli-Rodrguez et al.1 en bovinos, as como Sotelo y Montalvo2 en caprinos encontraron resultados similares a los del presente trabajo. En el estudio de Petrocelli-Rodrguez et al.1 se determin el tamao de los miembros por medio de las longitudes de la base de la cola, barbilla y corvejn hacia la planta del pie; as como de la cruz, hombro y codo a la planta de la extremidad

    anterior; en todas estas variables el valor de la pendiente fueron superiores a 1. Los valores de la pendiente en permetro (0.98) y dimetro (1.02) craneales del presente estudio se encontraron alrededor de 1. Lo cual significa que presentaron crecimiento isomtico con relacin a la longitud occpito-caudal. Esta parte es importante para el momento del parto. El crecimiento uniforme de los fetos permite su trnsito sin dificultad por el canal del parto al final de la gestacin. La incidencia de partos distcicos se ha estimado en 10.1% en equinos, y no se han reportado casos debido a incremento del tamao en el crneo.23,24 Las causas maternas ms frecuentes son: inercia uterina, la cual se ha relacionado con debilitacin o enfermedades sistmicas; y factores asociados a estenosis en el canal del parto como fracturas de pelvis, luxacin sacroiliaca y tumores. En yeguas jvenes se presenta debido al desarrollo inadecuado de la pelvis.25 Las causas fetales generalmente se relacionan con posturas inadecuadas del producto en el momento del parto,26-28 pero no se ha encontrado influencia del tamao del crneo. El valor de la pendiente del permetro torcico fue de 0.944. Otra variable muy cercana a crecimiento isomtrico con relacin a la longitud corporal. Esto permite inferir la distancia entre occipucio y base de la cola a partir del permetro torcico. Despus del nacimiento se ha encontrado correlacin altamente significativa entre permetro torcico y peso del animal, con lo cual a partir del permetro torcico se puede inferir el peso. Sin embargo, en el presente trabajo no se pesaron los fetos, y probablemente a este nivel no sea posible la inferencia del peso a partir de permetro torcico, porque segn los estudios realizados por Platt,29 la longitud y el peso corporales no se relacionan en fetos equinos. En el trabajo de este autor, la longitud coincide con los resultados del presente trabajo, se incrementa paulatinamente conforme transcurre la gestacin. El peso, por su parte, se mantiene bajo hasta 150 das de la preez, aproximadamente, y presenta incremento exagerado del da 200 hasta el final de la gestacin. Esta situacin se registra, de acuerdo a la opinin de Platt,29 porque as se manifiesta el crecimiento muscular, pero en su trabajo no lo determin, sera interesante despejar esta incgnita. El permetro abdominal present incremento menor a la longitud occpito-caudal, 0.897 fue el valor de su pendiente; su incremento durante el perodo fetal fue menor a la longitud

  • 64

    corporal. Esto se esperaba, en la vida fetal no se utilizan los rganos localizados en cavidad abdominal. La placenta los sustituye. La principal funcin de la placenta es establecer la conexin entre la madre - feto y permitir el intercambio metablico de nutrientes, oxgeno y material de desecho. La circulacin maternal permanece en aposicin cercana a la circulacin fetal, pero con separacin de esos sistemas circulatorios.30 La placenta de los equinos es epiteliocorial, lo cual significa que 6 membranas separan las circulaciones fetal y materna.31 La placenta equina, adems, produce gonadotropina corinica equina,32 progestgenos y estrgenos;33 hormonas de la gestacin.

    CONCLUSIN

    Los fetos equinos con respecto a la longitud occpito-caudal presentan mayor crecimiento en sus miembros, tanto anteriores como posteriores; similar en el permetro y dimetro craneal, as como en el permetro torcico; y crecimiento inferior en el dimetro abdominal.

    REFERENCIAS

    1. Petrocelli-Rodrguez LE, de la Colina-Flores F, Escobar-Medina FJ. Crecimiento alomtico fetal en el ganado bovino. Veterinaria Zacatecas 2006; 2: 239-244.

    2. Sotelo M, Montalvo CE. Desarrollo fetal en caprinos. Tesis de Licenciatura. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autnoma de Zacatecas, 1991.

    3. R: A language and environmental for statistical Computing. Vienna, Austria: R Foundation for Statistical Computing, 2013.

    4. Warton DI, Duursma RA, Falster DS, Tostinens. SMATR 3 package for estimation and inference about allometric lines. Methods in Ecology and Evolution 2012; 3: 257-259.

    5. Jeffcott LB. Some practical aspects of the transfer of passive immunity to newborn foals. Equne Vet J 1974; 6: 109-115.

    6. Jeffcott LB. The transfer of passive immunity to the foal and its relation to immune status after birth. J Reprod Fertil 1975 (Suppl): 727-733.

    7. Becvarova I, Buechner-Maxwell V. Feeding the foal for immediate and long-term health. Equine Vet J 2012; 41 (Suppl): 149-156.

    8. Cohen ND. Causes of and farm management factors associated with diseases and death in the foals. J Am Vet Med Assoc 1974; 204: 1644-1651.

    9. McGuire TC, Poppie MJ, Banks KL. Hypogamaglobulinemia predisposing to infection in foals. J Am Vet Med Assoc 1975; 166: 71-75.

    10. McGuire TC, Crawford TB, Hallowell AL, Macomber LE. Failure of colostrum immunoglobulin transfer as an explanation for most infections and deaths of neonatal foals. J Am Vet Med Assoc 1977; 170: 1302-1304.

    11. Hines MT. Immunodeficiencies of foals. In: Robinson NE. Current Therapy of Equine Medicine, 5th ed. Philadelphia: WB Saunders; 2003: 692-697.

    12. Steven DH, Samuel CA. Anatomy of the placental barrier in the mare. J Reprod Fertil 1975 (Suppl): 579-582.

    13. McGuire TC, Crawford TB. Passive immunology in the foal: measurement of immunoglobulin classes and specific antibody. Am J Vet Res 1973; 43: 1299-1303.

    14. Koterba AM, Brewer BD, Tarplee FA. Clinical and clinicopathological characteristics of the septicaemic neonatal foal: review of 38 cases. Equine Vet J 1984; 16: 376-382.

    15. Baird AN, Pugh DG, Rupp GP, Shull JW, Field RW. Detection of immunoglobulin G in the neonate. Equine Vet Sci 1987; 7: 124-129.

    16. Pearson RC, Hallowell AL, Bayly WM, Torbeck RL, Perryman LE. Times of appearance and disappearance of colostral IgG in the mare. Am J Vet Res 1984; 45: 186-190.

    17. Jeffcott LB. Duration of permeability of the intestine to macromolecules in the newly-born foal. Vet Rec 1971; 88: 340-341.

    18. Pradis MR. Neonatal immunology. In: Equine neonatal medicine. Philadelphia: Elsevier WB Co, 2006: 31-50.

    19. Erhard MH, Luft C, Remler HP, Stangassinger M. Assessment of colostral transfer and systemic availability of

  • 65

    immunoglobulin G in new-born foals using a newly developed enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) system. J Anim Physiol Anim Nutr (Berl) 2001; 85: 164-173.

    20. LeBlank MM, Hurtgen JP, Lyle S. A modified zinc sulfate turbidity test for the detection of immune status in newlyborn foals. Equine Vet Sci 1990; 10: 36-39.

    21. Lavoie JP, Spensley MS, Smith BP, Mihalyi J. Colostral volume and immunoglobulin G and M determinations in mares. Am J Vet Res 1989; 50: 466-470.

    22. Morris DD, Meirs DA, Merryman GS. Passive transfer failure in horses: incidence and causative factors on a breeding farm. Am J Vet Res 1985; 46: 2294-2299.

    23. McCue PM, Ferris RA. Parturition, dystocia and foal survival: a retrospective study of 1047 births. Equine Vet J 2012 (Suppl): 22-25.

    24. Giles RC, Danahue JM, Hong CB, Tuttle PA, Petrites-Murphy MB, Poonacha KB, Roberts AW, Tramontin RR, Smith B, Swerczek TW. Causes of abortion, stillbirths, and perinatal death in horses: 3,527 cases (1986-1991). J Am Vet Med Assoc 1993; 203: 1170-1175.

    25. Hong CB, Donahue JM, Giles RC Jr, Petrites-Murphy MB, Poonacha KB, Roberts AW, Smith BJ, Tramontin RR, Tuttle PA, Swerczek TW. Equine abortion and stillbirths in central Kentucky during 1988 and 1989 in foaling seasons. J Vet Diagn Invest 1993; 5: 560-566.

    26. Carluccio A, Contri A, Tosi U, De Amicis I, De Fanti C. Survival rate and short-term fertility rate associated with the use of fetotomy for resolution of dystocia in mares: 72 cases (1991-2005). J Am Vet Med Assoc 2007; 230: 1502-1505.

    27. Haas SD, Bristol F, Card CE. Risk factors associated with the incidence of foal mortality in a extensive managed mare herd. Can Vet J 1996; 37: 91-95.

    28. Vanderplassche MM. The pathogenesis of dystocia and fetal malformation in the horse. J Reprod Fertil 1987; 35 (Suppl): 547-552.

    29. Platt H. Growth and maturity in the equine fetus. J Royal Soc Med 1978; 71: 658-661.

    30. Enders AC, Blankership T. Comparative placental structure. Adv Drug Deliv Rev 1999; 38: 3-15.

    31. Mossman HW. Vertebrate fetal membranes: comparative ontogeny and morphology; evolution; phylogentic significance; basic functions; research opportunities. Rutgers University Press, 1987.

    32. Urwin VE, Allen WR. Pituitary and chorionic gonadotrophic control of ovarian function during early pregnancy in equids. J Reprod Fertil 1982; 32 (Suppl): 371-381.

    33. Ousley J. Endocrinology of pregnancy. In: McKinnon AO, Squires EL, Vaala WE, Varner DD. Equine Reproduction. Second edition. Wiley-Blackwell, Ames, Iowa, 2011: 2222-2233.

    ABSTRACT Gallegos-Guerrero AF, Escobar-Medina FJ, Archiga-Flores CF, vila-Rodriguez RI, de la Colina-Flores F. Allometric fetal growth in horses. Allometric growth was evaluated of 150 equine fetuses removed form mares slaughtered at different gestational ages. Body length (from the nuchal crest to the first caudal vertebra); cranial width, circumference and length; thoracic and abdominal circumferences, and the length of the anterior and posterior limbs were obtained immediately after slaughter by means of measuring tape. Allometric slopes were steeper for the lengths of both limbs with respect to body length. The results for the anterior limb were: elevation, -0.151; slope, 1.23, and r2 = 0.982. For the posterior limb: elevation, -0.487; slope, 1.22, and r2 = 0.979. The allometric model for the cranial width as a function of the body length yields an elevation equal to -0.493, a slope equal to 0.959 and r2 equal to 0.983. The r2 resulting form the association of the cranial circumference with the body length was equal to 0.918, with elevation equal to -0.285 and slope equal to 0.980. For the relationship between body length to cranial width, the elevation was equal to -0.802,

  • 66

    the slope was equal to 1.020, and r2 was equal to 0.945. Thoracic circumference, as a function of body length, showed an elevation equal to -0.052, a slope equal to 0.944 and r2 equal to 0.983. Abdominal circumference as a function of body length yielded an elevation equal to -0.202, a slope equal to 0.897 and r2 equal to 0.976. We conclude that both the fore and the hind limbs grew longer at a faster rate than body length did, whereas all other body measurements yields slopes than 1.0 function of body length. Vet Zac 2013; 4: 57-66. Keywords: Allometric growth, fetal, horses

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    PESO AL NACIMIENTO DE LECHONES YORKSHIRE, LANDRACE Y DUROC CRUZADOS

    Miguel Agustn Delgado lvarez, Francisco Javier Escobar Medina, Federico de la Colina Flores

    Correspondencia: Francisco Javier Escobar Medina, [email protected]

    RESUMEN Se evalu el efecto del peso de lechones al nacimiento sobre el tamao de la camada, orden de nacimiento y sexo; as como el nmero de partos de la cerda. El trabajo se realiz en 3992 lechones cruzados Yorkshire, Landrace y Duroc. Las madres se alimentaron con una racin que cubriera sus requerimientos nutricionales, para que mantuvieran buena condicin corporal en todas las etapas reproductivas. Las cerdas se pasaron a la sala de maternidad una semana antes de la fecha probable del parto, en donde se alojaron en jaulas individuales. Los partos se programaron con aplicacin de cloprostenol y al inicio de las manifestaciones del parto se les aplic una dosis de oxitocina. En el momento del parto, los lechones se pesaron inmediatamente despus del nacimiento, se les determin su sexo e identificaron con un nmero en el dorso para establecer su orden de nacimiento. Adems, se les retir el moco de fosas nasales y hocico, recibieron limpieza y desinfeccin corporal; despus se identificaron mediante muescas y tatuajes. Las cerdas presentaron en promedio 2.62 partos, con 9.38 lechones al nacimiento. El peso promedio de la camada fue de 12.7 Kg, y 1.35 Kg el peso medio individual de los lechones. El peso de los lechones tendi a reducirse conforme se increment el tamao de la camada, en el trascurso del parto, en los productos hembras y en las cerdas primerizas

    Palabras clave: Peso al nacimiento, lechones, Yorkshire, Landrace, Duroc

    Vet Zac 2013; 4: 67-74

    INTRODUCCIN El peso de los lechones al nacimiento es importante porque se relaciona con su eficiencia en el crecimiento durante la lactancia y despus del destete. El peso al nacimiento depende del lugar de su implantacin y desarrollo durante la gestacin, y esto a su vez se relaciona con la secuencia en que iniciaron su etapa embrionaria.1 Los embriones producto de la fertilizacin de las ovulaciones iniciales llegan primero a tero que los formados al final del perodo ovulatorio. En tero, los embriones seleccionan el lugar ms apropiado para su implantacin y desarrollo. Los primeros en llegar generalmente se implantan en el tercio del cuerno uterino cercano a la unin tero-tubaria, y as consecutivamente a lo largo del cuerno uterino.2 El desarrollo fetal por lo regular es mayor en los productos implantados en el tercio del cuerno uterino cercano a la unin tero-tubaria, y el menor en el cercano al cuerpo del tero. Los productos del tercio intermedio presentan valores medios.1

    Al principio del parto generalmente nacen los lechones ms pesados, los cuales tienen la oportunidad de seleccionar las glndulas mamarias de mayor produccin (pectorales y medias) para su alimentacin. Al final del parto, por lo regular, nacen los menos pesados, quienes se alimentan de las glndulas inguinales, las de menor produccin. El resultado, la ganancia diaria de peso es mayor en los lechones con mayor peso al nacimiento.3 Despus del destete, los lechones ms pesados presentan mayor consumo de alimento, ganancia diaria de peso y conversin de alimento. Como consecuencia incrementan la masa muscular.4 Los conocimientos anteriores se han obtenido de investigaciones realizadas con pocos animales. Adems, en granjas generalmente pertenecientes a centros de investigacin, donde se dispone de las condiciones apropiadas para realizar estas observaciones y en diferentes razas. Sera interesante estudiar el peso de nacimiento de lechones Yorkshire, Landrace y Duroc cruzados pertenecientes empresas comerciales, donde se

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    dispone de gran cantidad de animales y bajo las condiciones de manejo rutinario en la cra de esta especie. El presente trabajo se realiz con el propsito de evaluar el efecto del peso al nacimiento de lechones Yorkshire, Landrace y Duroc sobre el tamao de la camada, orden de nacimiento y sexo; as como nmero de partos de la cerda.

    MATERIAL Y MTODOS

    El trabajo se llev a cabo en una granja porcina de ciclo completo, localizada a 20.7O de latitud norte y 101.2O de longitud oeste, y a 1740 msnm. Esta granja cuenta con 1200 vientres de las cruzas de razas Yorkshire, Landrace y Duroc, y el estudio se realiz en 3992 lechones, pertenecientes a 424 camadas. Las hembras durante la gestacin se les ofrecieron de 1.5 a 1.8 Kg de alimento durante el primer mes. Posteriormente, la cantidad de alimento se increment: 2 a 2.5 Kg durante dos meses consecutivos y finalmente de 3 a 3.5 Kg en el resto de la gestacin. Esta dieta cubri sus requerimientos nutricionales de acuerdo a las indicaciones de Meisinger.5 En todo momento mantuvieran buena condicin corporal. Los animales se pasaron a la sala de maternidad una semana antes de la fecha probable del parto, donde se alojaron en jaulas individuales y se les ofrecieron 1.5 Kg de alimento (cuatro veces al da). Los partos se programaron de acuerdo a las necesidades de la granja con aplicacin de cloprostenol. Adems, se inyect una dosis de oxitocina en las primeras manifestaciones de culminacin de la gestacin. En el momento del parto, los lechones se pesaron inmediatamente despus del nacimiento, se les determin su sexo e identificaron mediante nmeros colocados en el dorso para establecer su orden de nacimiento. Adems, se les retir el moco de fosas nasales y hocico, recibieron limpieza y desinfeccin corporal y se colocaron en lechoneras para esperar el llamado materno para la toma de calostro, despus se identificaron mediante muescas y tatuajes. Posteriormente, se les realizaron algunas prcticas de manejo no contempladas en el presente trabajo como gonadectoma a los machos. En el tercer da de vida se les aplicaron 200 mg de hierro dextrn, as como un antibitico y un coccidicida. A partir de 8 das de edad, a los lechones se les ofreci alimento pre-iniciador a libre acceso.

    El destete se realiz a los 21 das de edad. Posteriormente, los animales se alojaron en grupos en las reas de crecimiento y desarrollo, para despus separarlos de acuerdo a su fin zootcnico, las mejores hembras se seleccionan para utilizarlas como reemplazos y los machos y hembras no seleccionadas se dirigen al rea de engorda. Las hembras se vigilaron diariamente, dos veces al da, para identificar las que manifiesten celo, con ayuda de un macho y examen de lordosis. Durante el estro, las hembras se inseminan en 3 ocasiones, una cada 12 horas. Las cerdas jvenes se inseminan a partir de 200 das de edad y 120 Kg de peso. Los cerdos se comercializan de 95 a 110 Kg de peso. Adems, se desecharon las hembras con dao fsico que influya en su vida reproductiva, despus de haber parido en 5 ocasiones y las con tamao de camada inferiores a 8 lechones durante los 2 primeros partos. Procesamiento de datos Los resultados se interpretaron mediante estadstica descriptiva utilizando el software estadstico R.6 Se estudi la relacin entre tamao de la camada y las dems variables por medio de modelos lineales generalizados. Para identificar el efecto del parto de los diferentes nmero de partos sobre tamao de la camada se utilizaron contrastes ortogonales con el paquete miltcomp.7

    RESULTADOS

    Las cerdas en el presente trabajo presentaron en promedio 2.62 partos, con 9.38 lechones al nacimiento. El peso promedio de la camada fue de 12.7 Kg y 1.35 Kg el peso medio de los lechones. El nmero de partos present mayor variabilidad y peso promedio de los lechones la menor. Los detalles de esta informacin se pueden consultar en el Cuadro 1. En la Figura 1 se presenta el tamao de la camada y su relacin con el peso promedio de los lechones al nacimiento, de las cerdas estudiadas. Las diferencias no fueron estadsticamente significativas (P > 0.05), pero el peso tendi a reducirse conforme se increment el tamao de la camada. El promedio de peso vari de 1.31 a 1.38 Kg entre 5 y 13 miembros de la camada. El peso de los lechones al nacimiento tampoco vari significativamente de acuerdo al nmero de partos de las cerdas (P > 0.05). Sin embargo, las primerizas tendieron a producir lechones menos pesados. Esta informacin se puede consultar en la Figura 2.

  • 69

    El peso de los lechones tendi a reducirse conforme transcurri el parto. Las diferencias no fueron estadsticamente significativas (P > 0.05). Los primeros en nacer tendieron a presentar

    mayor peso que los ltimos, y los nacidos en la parte media del proceso registraron valores intermedios. El detalle de este resultado se muestra en la Figura 3.

    Cuadro 1. Promedio ( DE) y CV de las variables estudiadas en las cerdas del presente trabajo

    Variable

    Promedio DE

    CV %

    Partos

    Tamao de la camada

    Peso de la camada (Kg)

    Peso promedio de los lechones (Kg)

    2.62 1.51

    9.38 2.50

    12.7 3.7

    1.35 0.18

    57.5

    27.2

    29.2

    13.2

    0

    100

    200

    300

    400

    500

    600

    700

    800

    900

    0

    0.5

    1

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    2

    2.5

    1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16

    Nm

    ero

    de le

    chon

    es

    Peso

    pro

    med

    io d

    e le

    chon

    es (K

    g)

    Tamao de la camada

    Figura 1. Tamao de la camada y su relacin con el peso promedio (DE) de los lechones al nacimiento

    Cerdas Lechones

  • 70

    0

    200

    400

    600

    800

    1000

    1200

    0

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    1

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    1 2 3 4 5 6

    Nm

    ero

    de le

    chon

    es

    Peso

    pro

    med

    io d

    e le

    chon

    es (K

    g)

    Nmero de partos

    Figura 2. Cerdas con relacin al nmero de partos y peso promedio (DE) de sus lechones al nacimiento

    Cerdas Lechones

    0

    50

    100

    150

    200

    250

    300

    350

    400

    450

    0

    0.2

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    0.8

    1

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    1.6

    1.8

    1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16

    Nm

    ero

    de le

    chon

    es

    Peso

    de

    los l

    echo

    nes

    Orden de nacimiento

    Figura 3. Nmero y peso (DE) de los lechones con relacin al orden de su nacimiento

    Nmero Peso

  • 71

    El 53.3% de los productos fueron machos y el 46.7% hembras. Los machos ligeramente presentaron mayor peso (1.37 Kg) al nacimiento que las hembras (1.32 Kg). La diferencia no fue estadsticamente significativa (Figura 4).

    DISCUSIN

    Las cerdas del presente trabajo presentaron 9.38 lechones al nacimiento, con peso promedio de 1.35 Kg cada uno. El peso de los lechones tendi a reducirse conforme se increment el tamao de la camada, con el transcurso del parto, en los productos hembras y en las cerdas primerizas. El peso de nacimiento de los lechones coincide con los resultados de otros estudios. Kim et al.8 encontraron 1.37 Kg y Correa-Aguayo et al.3 1.49 Kg de peso promedio individual de lechones al nacimiento. El peso de los lechones tiende a reducirse conforme se incrementa el tamao de la camada debido a la capacidad uterina para el desarrollo fetal. La capacidad de la cerda es limitada. En las gestaciones con mayor poblacin fetal, los

    productos compiten por el espacio y nutrientes. A mayor poblacin menor disponibilidad individual de nutrientes y por consiguiente menor desarrollo fetal. El resultado, los lechones al nacimiento presentan menor peso en camadas numerosas. La situacin es diferente en camadas con menor nmero de miembros, se reduce la competencia por los nutrientes y con esto se incrementa su disponibilidad y, por consiguiente, el desarrollo fetal; los lechones presentan mayor peso al nacimiento. Esto sucedi en las cerdas del presente trabajo, tendieron a reducir el peso de los lechones conforme se increment el tamao de la camada; las diferencias no fueron estadsticamente significativas (P>0.05). El peso de los lechones tambin tendi a reducirse conforme transcurrieron los partos. Los primeros en nacer fueron ms pesados que los ltimos. Esto se debi al lugar de su implantacin durante su estado embrionario. Los productos que se implantan en el tercio del cuerno uterino cercano al cuerpo del tero generalmente presentan menor desarrollo y por consiguiente menor peso.1 Pero estos productos, pese a

    42

    44

    46

    48

    50

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    0

    0.2

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    0.6

    0.8

    1

    1.2

    1.4

    1.6

    1.8

    Macho Hembra

    Porc

    enta

    je d

    e m

    acho

    s y h

    embr

    as

    Peso

    de

    lech

    ones

    (Kg)

    Sexo de los lechones

    Figura 4. Porcentaje de machos y hembras, as como el promedio (DE) de su peso al nacimiento

    Porcentaje Peso

  • 72

    desarrollarse en lugar ms cercano al cuerpo del tero y por consiguiente al canal del parto, no son los primeros en nacer,3 lo cual se debe probablemente a las condiciones naturales para la preservacin de la especie. La cerda ha desarrollado un proceso para favorecer los productos con mayor capacidad de sobrevivencia. En este caso los que se implantan en el tercio uterino cercano a la unin tero-tubaria y en el tercio intermedio.1 Productos que fueron los primeros en formarse, es decir la fertilizacin de vulos emitidos al principio del perodo ovulatorio. La ovulacin en la cerda no es instantnea, se realiza entre 1 y 6 horas.9,10 Por consiguiente, los embriones formados inicialmente llegan a tero y eligen el lugar ms apropiado para su desarrollo, los tercios cercanos a la unin tero-tubaria, y dejan el tercio ms lejano (el cercano al cuerpo del tero) para los embriones formados al final del perodo ovulatorio. El nacimiento de los lechones ms pesados al principio del parto es importante porque tambin tendrn la oportunidad de seleccionar las glndulas mamarias con mayor produccin de leche para su desarrollo durante la lactancia. Estas se localizan en las regiones pectoral e intermedia. Las glndulas mamarias con menor produccin se localizan en la regin inguinal.3 Con base en lo anterior, en la cerda se establecen las condiciones apropiadas para el desarrollo de lechones ms aptos para sobrevivir. Este proceso comienza en el crecimiento folicular; inicialmente se fertilizan los vulos procedentes de los primeros folculos en madurar y ovular. De donde se forman embriones que primero llegan a tero para realizar el reconocimiento materno de la gestacin (por medio de la produccin de estradiol) e implantarse en los tercios cercano a la unin tero-tubaria y medio de los cuernos uterinos; lugares ms apropiados para el desarrollo fetal y que en el parto constituirn los lechones ms pesados de la camada. Los embriones procedentes de la fertilizacin de ovocitos de la ltima parte del perodo ovulatorio, llegan ms tardamente a tero y se implantan en el tercio del cuerno uterino cercano al cuerpo del tero, lugar con menos condiciones adecuadas para el desarrollo fetal; estos productos constituir los lechones menos pesados de la camada. El peso de los lechones tiende a reducirse conforme transcurre el parto,8 como sucedi en los productos estudiados en el presente trabajo. Los

    lechones ms pesados y por consiguiente nacidos al principio del parto tienen la oportunidad de seleccionar las glndulas mamarias ms apropiadas para su desarrollo, pectorales y medias, y dejar las inguinales, glndulas con menor produccin, para lechones menos pesados y menor posibilidad de sobrevivir.3,8 El proceso no termina aqu. Los lechones con mayor capacidad de crecimiento durante la lactancia presentan mayor ganancia de peso despus del destete.4,11 Los productos machos en el presente trabajo, aunque sin diferencia estadsticamente significativa, presentaron mayor peso que las hembras en el nacimiento. Este resultado coincide con estudios realizados por nuestro grupo de investigacin12,13 y se debe a la produccin de testosterona durante la diferenciacin sexual. El cromosoma Y porta el gen SRY,14,15 el cual transforma la gnada indiferenciada en testculos.16,17 Estos producen testosterona para participar en el proceso de diferenciacin sexual.18 Por lo tanto, los testculos en los productos durante la gestacin producen testosterona; esta hormona probablemente influye para incrementar el crecimiento fetal y en el nacimiento los machos presentar mayor peso que las hembras. En estudios realizados con cerdas androgenizadas durante la gestacin, los productos hembras en el nacimiento presentan peso similar a los machos, lo cual no sucede con los grupos sin tratamiento.12,13 En el presente trabajo, las cerdas primerizas tendieron a producir lechones menos pesados que las hembras de varios partos. Esto se debe a su capacidad uterina. Los cuernos uterinos de las cerdas primerizas presentan menor longitud y por consiguiente menor capacidad para el desarrollo fetal. El resultado, el peso de los lechones al nacimiento tiende a ser menor que las hembras con varios partos.

    CONCLUSIN

    Las cerdas presentaron 9.38 lechones al nacimiento, con peso promedio de 1.35 Kg cada uno. El peso de los lechones tendi a reducirse conforme se increment el tamao de la camada, con el transcurso del parto, en los productos hembras y en las cerdas primerizas.

    LITERATURA CITADA

    1. Montoya-Gmez G, Zorrila de la Torre

    E, Escobar-Medina FJ, de la Colina Flores F. Poblacin y supervivencia fetal

  • 73

    de cerdas pertenecientes a pequeas explotaciones, por medio de material de rastro. Rev Biomed 2002; 13: 185-188.

    2. Dziuk P. Effect of migration, distribution and spacing of pigs embryos on pregnancy and fetal survival. J Reprod Fertil 1985; 33 (Suppl): 57-63.

    3. Correa-Aguayo MG, Escobar-Medina FJ, Hernndez-Berumen JJ. Ganancia diaria de peso de los lechones con relacin a la posicin anatmica de las glndulas mamarias de las cuales se amamantan y el tamao de la camada. Veterinaria Zacatecas 2003; 2: 115-120.

    4. Niessen PM, Oksbjerg N. Birth weight and postnatal dietary protein level affect performance, muscle metabolism and meat quality in pigs. Animal 2011; 5: 1382-1387.

    5. Meisinger DJ. National swine nutrition guide. Version 1.2. US Pork Center for Excellence. Ames IA: Iowa State University, 2010.

    6. R: a language and environmental for statistical computing. Vienna, Austria: R Foundation for Statistical Computing, 2013.

    7. Hothorn T, Bretz F, Westfall P. Simultaneous interference