Tesis Limonium Original
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UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN AGUSTIN DE AREQUIPA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS Y AGROPECUARIAS ESCUELA PROFESIONAL Y ACADEMICA DE AGRONOMIA “DOS CONCENTRACIONES DE AG 3 EN DIFERENTE NÚMERO DE APLICACIONES FOLIARES EN LIMONIUM (Limonium altaicacv. ‘Maineblue’), Ica - Perú” Tesis presentada por el Bachiller: Maria Amparo RiosJordan Para optar el Título profesional de: 1
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UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN AGUSTIN DE
AREQUIPA
FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS Y
AGROPECUARIAS
ESCUELA PROFESIONAL Y ACADEMICA DE
AGRONOMIA
“DOS CONCENTRACIONES DE AG3 EN DIFERENTE NÚMERO DE APLICACIONES FOLIARES EN LIMONIUM
(Limonium altaicacv. ‘Maineblue’), Ica - Perú”
Tesis presentada por el Bachiller:
Maria Amparo RiosJordan
Para optar el Título profesional de:
Ingeniero Agrónoma
Arequipa, 2010
1
UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN AGUSTIN DE AREQUIPA
FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS Y
AGROPECUARIAS
ESCUELA PROFESIONAL Y ACADEMICA DE
AGRONOMIA
JURADO CALIFICADOR
__________________________________
ING. LUIS CUADROS FERNANDEZ
PRESIDENTE
_________________________________ _________________________________
ING. JOSE PINTO CACERES ING. DENNIS MACEDO VALDIVIA
INTEGRANTE SECRETARIO
ASESOR : ING. JOSE LUIS BUSTAMANTE MUÑOZ
Í N D I C E
Resumen pág.
I. Introducción..................................................................................................01
II. Revisión Bibliográfica
Del cultivo: Limonium
II.1. Centro de origen..............................................................................03
II.2. Distribución......................................................................................03
II.3. Genética y herencia........................................................................03
II.4. Taxonomía.........................................................................................04
II.5. Exigencias edafoclimáticas ..........................................................05
II.5.1.........................................................................................Temperatura 05
II.5.2.........................................................................................................Luz 06
II.5.3...............................................................................................Humedad 06
II.5.4......................................................................................................Suelo 07
II.5.5...............................................................................................Salinidad 08
II.6. Descripción de la planta ................................................................08
II.6.1.............................................................................Altura de la planta 08
II.6.2........................................................................................................Raíz 08
II.6.3.......................................................................................................Tallo 09
II.6.4......................................................................................................Hojas 09
II.6.5.....................................................................................Inflorescencia 10
II.6.6.....................................................................................................Flores 10
II.6.7......................................................................................................Fruto 11
II.7. Limonium altaica.............................................................................11
II.8. Propagación.......................................................................................12
II.9. Revisión fitosanitaria .....................................................................13
II.9.1....................................................................................................Plagas 13
II.9.2......................................................................................Enfermedades 14
II.9.3...........................................................................................Nemátodos 17
Giberelinas
II.10. Estructura química..........................................................................17
II.11. Biosíntesis de giberelinas .............................................................18
II.12. Efectos fisiológicos........................................................................19
II.13. Ácido giberélico en plantas ..........................................................21
III. Materiales y Métodos
III.1. Ubicación geográfica.....................................................................27
III.2. Ubicación política...........................................................................27
III.3. Clima...................................................................................................27
III.4. Suelo....................................................................................................28
III.5. Materiales..........................................................................................29
III.5.1................................................................................Material vegetal 29
................................................................................................................
III.5.2..........................................................................Material del campo 29
III.5.3....................................................................................................Otros 30
................................................................................................................
III.5.4...............................................................................................Insumos 30
................................................................................................................
III.6. Diseño experimental .......................................................................31
III.6.1......................................................................................Tratamientos 31
III.6.2......................................................................Croquis experimental 31
................................................................................................................
III.6.3...................................Características del campo experimental 32
................................................................................................................
III.6.4......................................Antecedentes del campo experimental 33
................................................................................................................
III.7. Conducción del experimento........................................................33
III.7.1..........................................................................................Fertirriego 33
III.7.2...........................................................................................Plantación 34
III.7.3................................................................................................Deshoje 34
III.7.4....................................................Aplicación de ácido giberélico 34
III.7.5..............................................................................................Desbrote 36
III.7.6.....................................................................Encanastado de tallos 36
III.7.7.......................................................................Control fitosanitario 36
III.7.8...............................................................................................Cosecha 37
III.8. Características evaluadas..............................................................37
III.8.1..............................................................................Número de tallos 37
III.8.2..............................................................................Longitud de tallo 37
III.8.3...........................................................................Porcentaje de tallo 37
III.8.4.............................................................................Diámetro de tallo 38
III.8.5......................................................................................Peso de tallo 38
III.8.6.............................................................................Rentabilidad neta 38
III.9. Análisis estadístico.........................................................................38
IV. Resultados y Discusiones
IV.1. Número de tallos..............................................................................39
IV.2. Longitud de tallo.............................................................................42
IV.3. Porcentaje de tallos obtenidos por grado .................................44
IV.4. Diámetro de tallo.............................................................................44
IV.5. Peso de tallo......................................................................................46
IV.6. Rentabilidad neta.............................................................................48
V. Conclusiones
VI. Recomendaciones
VII. Bibliografía
Anexos
R E S U M E N
En este trabajo se estudió la respuesta del Limonium altaicac.v.Maine bluea
la aplicación de dos concentraciones y diferente número de aplicaciones de
ácido giberélico.
El objetivo general del trabajo fue evaluar el comportamiento de Limonium
en Ica, bajo efecto del AG 3 , y los objetivos específicos fueron determinar la
mejor dosis de AG 3 , el mejor número de aplicaciones, la mejor interacción
concentración x número de aplicaciones que permite obtener mayor número
de tallos florales en el cultivo de Limonium.
El ensayo fue establecido en el fundo Florisert S.A.C. ubicado en las
pampas de Villacurí, distrito Salas – Guadalupe en la provincia de Ica,
entre Marzo a Junio del 2009.
Se empleó un diseño bloques completos al azar con arreglo factorial
2Ax3B, más un tratamiento testigo, los niveles del factor A
(concentración): 300 y 600 ppm; y los niveles del factor B (número de
aplicaciones): 1, 2 y 3 aplicaciones. Con tres bloques, teniendo un total de
21 unidades experimentales
Las variables analizadas fueron: número de tallos, longitud, diámetro, peso
de tallo y porcentaje de tallos obtenidos por grado.
Los resultados más relevantes, indican que el número de tallos se vio
incrementado por la aplicación de ácido giberélico, si bien no existió
diferencias estadísticas significativas en la interacción concentración x
número de aplicaciones, la concentración de 600 ppm fue
significativamente mejor que 300 ppm, también dos o tres aplicaciones
obtienen mejor resultado que una sola aplicación de AG 3
independientemente de la concentración. Además cualquier combinación de
concentración x número de aplicaciones tiene diferencia significativa con el
tratamiento sin aplicación (testigo).
En cuanto a la longitud del tallo se observa que todos los tratamientos
tienen la misma curva de crecimiento, y que aproximadamente a partir de
los 70 días después de la primera aplicación de AG 3 el crecimiento se hace
más lento.
Se comprobó que no existe diferencia significativa entre los niveles de los
dos factores en estudio (concentración y número de aplicaciones) ni
tampoco con el testigo en el peso y diámetro de tallo. Además todos los
tallos de los diferentes tratamientos llegaron a alcanzar el grado comercial
para exportación.
En conclusión, la mejor concentración y mejor número de aplicaciones para
obtener el mayor número de tallos florales es 600 ppm y dos o tres
aplicaciones de AG 3 , respectivamente. No existe diferencia significativa en
la interacción, sin embargo, por su rentabilidad se recomienda dos
aplicaciones a 600 ppm de AG 3 .
I. I N T R O D U C C I Ó N
La industria florícola del país se ha convertido en una actividad muy
importante que con el pasar de los años se ha consolidado en el
mercado norteamericano principalmente y en menor escala en Europa,
lo cual ha contribuido a generar empleo y divisas al país.
El Perú cuenta con las condiciones necesarias para convertirse en un
gran productor y exportador de flores a escala mundial. “Tenemos el
80 por ciento de climas del mundo y la posibilidad de tener variados
cultivos”.
Según PROMPERU (2007) en elaño 2006, Perú exportó flores por
valor de 7094,4 millones de dólares, de los cuales el 59% fueron a
Estados Unidos, 25% a Italia, 11% a Holanda, 2% a Canadá y 2% a
Colombia. Estas cantidades exportadas pueden parecer ínfimas frente
al café, primer producto de agroexportación, que en el 2007 reportó
426,9 millones de dólares (Lozada, 2007), casi similar a los 433,6
millones de dólares registrados por Ecuador en el 2006 por concepto
de ventas de flor cortada (COMTRADE, 2008). En Sudamérica,
Colombia y Ecuador representan el 23,6% de la exportación mundial
de flores (COMTRADE, 2008), gracias a las condiciones climáticas
similares a las que posee Perú.
Lozada (2007) menciona que uno de los productos no tradicionales
peruanos de mayor proyección son las flores de corte, ya que entre
los años 2002 y 2006 registró un crecimiento del 5,1%.
Las principales partidas corresponden a las flores de capullos
frescos, adornos (cultivos como Limonium, Liatris, Waxflower y
Sunflower), Gypsophila, follajes, hojas, ramas y demás partes de
plantas. Todas ellas ocupan el 99% de las exportaciones del 2006 en
el grupo exportador de “plantas vivas y productos de la floricultura”.
El cultivo de Limonium, conocido también como Statice, es un
cultivo perenne con un alto potencial para el mercado externo, tiene
un periodo vegetativo corto pudiendo proyectar la cosecha a fechas
1
determinadas (San Valentín, Día de la madre, etc.) con manejos
agronómicos, como la aplicación de ácido giberélico.
Esta aplicación compromete gastos en mano de obra, insumos,
tiempo, etc. para lo cual el presente estudio pretende determinar el
número de aplicaciones y dosis recomendable para obtener el mayor
número de tallos de calidad que harán del cultivo un negocio más
rentable.
La hipótesis de este trabajo es que a mayor concentración y mayor
número de aplicaciones de AG 3 , es posible lograr mayores
rendimientos de Limonium en Ica.
El objetivo general fue evaluar el comportamiento del Limonium en
Ica, bajo el efecto del ácido giberélico.
Los objetivos específicos fueron:
- Determinar la mejor dosis y el mejor número de aplicaciones de AG 3
que permite obtener mayor número de tallos florales en el cultivo de
Limonium.
- Determinar la interacción concentración y número de aplicaciones de
AG3 que permite obtener mayor número de tallos florales en el
cultivo de Limonium.
- Determinar el tratamiento que permita alcanzar la mayor rentabilidad
neta en el cultivo de Limonium.
2
II. R E V I S I Ó N B I B L I O G R Á F I C A
DEL CULTIVO: LIMONIUM
II.1. Centro de origen
El género LimoniumMill. Presenta dos centros de diversidad, uno el
Mediterráneo occidental y otro en las estepas Asiáticas (Erben, 1993).
Dentro del género Limonium (familia Plumbaginaceae) se encuentran
especies herbáceas ornamentales, la mayoría de ellas nativas del
Mediterráneo y de las Islas Canarias (Wilfrety Green, 1975).
Se conoce a las Islas Canarias (España) como uno de los lugares con
más diversidad de Limonium , con especies endémicas y no endémicas.
II.2. Distribución
En general este género se distribuye en acantilados costeros, estepas
litorales y lugares secos, la mayoría de las especies están en peligro de
extinción, sensibles a la alteración de su hábitat o son consideradas
como vulnerables. Se puede encontrar Limonium silvestre en España,
Chile, etc.
II.3. Genética y herencia
El género Limonium presenta una gran variabilidad cariológica a lo
largo de su distribución tanto referido al número como a la morfología
de los cromosomas. Los estudios cariológicos realizados en Limonium
por diferentes autores indican que en este género concurren 19
números cromosómicos diferentes: 12, 14, 16, 17, 18, 24, 25, 26, 27,
28, 32, 33, 34, 35, 36, 42, 43, 51 y 54 (Erben, 1978). Se encuentra, por
tanto, cuatro números cromosómicos básicos x=6, 7, 8 y 9 con especies
diploides y poliploides, siendo bastante frecuente la existencia de
especies triploides y aneuploides con números cromosómicos raros, lo
que está en estrecha relación con la agamospermia que presentan
muchas especies de este género (Erben, 1978).
3
Erben (1978) encuentra que existe relación entre el número de
cromosomas y la presencia de dimorfismo o monomorfismo en las
poblaciones naturales, de tal manera que, salvo excepciones, todas las
especies diploides con números cromosómicos 12,14,16 y 18 y las
poliploides 32, 36 y 54 son dimórficas (al50%), mientras que en los
taxones triploides (27) o aneuploides (25, 26, 35, 42 y 43) sólo
aparece una de las combinaciones incompatibles (A o B) en una misma
población, lo que no excluye que se puedan encontrar ambas
combinaciones en una misma especie, aunque siempre en poblaciones
distintas.
II.4. Taxonomía
Según el Sistema Integrado de Información Taxonómica (SIIT, que es
la versión en español del ITIS
(IntegratedTaxonomicInformationSystem).
Reino : Plantae
Subreino : Tracheobionta
Superdivisión : Spermatophyta
División : Magnoliophyta
Clase : Magnoliopsida
Subclase : Caryophyllidae
Orden : Plumbaginales
Familia : Plumbaginaceae
Género : Limonium
Especie : Limonium altaica .
II.5. Exigencias edafoclimáticas
II.5.1...........................................................................................Temperatura
4
El Limonium prefiere climas secos, siendo la temperatura óptima de
crecimiento y floración durante el día de 22 a 27 ºC y de noche de
12 a 16 ºC.
Los Limonium de origen mediterráneo florecen de forma natural
desde primavera hasta el verano, claro está que nos estamos
refiriendo a las especies espontáneas que se desarrollan al aire libre
y en parajes cuyo perfil homoclimático corresponde al de las
características mediterráneas, y que por su estado silvestre,
generalmente, sólo presentan una floración.
El clima mediterráneo se caracteriza por tener una pluviosidad
bastante escasa (500 mm) con temperaturas muy calurosas en verano
y relativamente suaves en invierno.
Con este precedente se pueden entrever cuáles deben ser las
condiciones térmicas que debe reunir el medio, y que pueden
crearse artificialmente, para que produzca la floración.
En Limonium altaica , cuando llega el período invernal, sufre una
disminución del tamaño del tallo florífero y de la inflorescencia,
que se queda pegada a la roseta foliar basal.
A nivel de temperatura letal se puede argumentar que pueden
soportar temperaturas de -3 y -4 ºC, sin que la planta muera y que
posteriormente tenga un comportamiento normal.
En los limoniums híbridos, si se cultiva en una zona templada en
verano, se debe mantener una temperatura lo más baja posible
usando sombreo. No se deben pintar los techos de los invernaderos
con pintura blanca u otro tipo de pintura que bloquee la luz del sol,
pues esto resultaría en que no habría inducción a la floración, la
temperatura nocturna ideal es aproximadamente de 15 ºC durante el
periodo de floración.
II.5.2..............................................................................................................Luz
5
Es otro parámetro importante a considerar, estando íntimamente
relacionado con la temperatura y debiendo hacerlo desde dos
perspectivas, la de su intensidad y la de su duración, es decir de su
fotoperiodo.
Con respecto a la intensidad de la iluminación de apoyo, puede ser
baja, entre 80 y 100 lux, medidos siempre a nivel de la parte aérea
de la planta, ya que los horizontes lumínicos se ven muy afectados
por la distancia entre la planta y el foco lumínico. Por debajo de
estos niveles, aunque la aplicación se realice durante 24 horas, no
habrá respuesta en la floración.
Se ha comprobado (SemeniukyKrizek, 1972, 1973; Halevy, 1983)
que al ser el Limonium una planta de día largo, hay una mejora de la
floración cuando vegeta bajo estas condiciones luminosas, aunque
este factor solo no sea suficiente para provocar esta mejora si no se
aporta con los umbrales térmicos adecuados.
En cuanto al fotoperiodo exigido por la planta, fue fijado por
algunos autores (SemeniukyKrizek, 1972) en 16 horas, los cuales al
comparar dos cultivares de L . sinuatum , uno con este fotoperiodo y
otro tratado como de día corto con 8 horas, vieron que,
independientemente del carácter del cultivar, había una influencia
positiva del primero al provocar un mayor número de plantas en
floración en el conjunto del tratamiento experimentado, con
relación al de día corto, así como de mayor precocidad.
II.5.3...................................................................................................Humedad
La gran cantidad de especies que integran el género Limonium
ocupa una gran gama de ecosistemas con características
higrométricas diversas, adaptándose desde las marismas salinas,
más o menos próximas al mar e interiores, hasta ambientes
xerofíticos.
6
Pero el material vegetal que se utiliza para su aprovechamiento
ornamental, fruto en su mayoría de cruzamientos interespecíficos,
entre especies no siempre con las mismas exigencias, presenta
características distintas. También se ha podido comprobar
comportamientos diversos entre cultivares de la misma especie, los
cuales reaccionan de forma distinta empleando la misma tecnología
de cultivo; así por ejemplo, en L.latifolium se ha encontrado mayor
sensibilidad a la infección de sus botones floríferos por
enfermedades fúngicas como botrytisque en L. altaica yL. perezii ,
cuando se elevaba la humedad relativa en el recinto del invernadero,
mientras que los cultivares de las otras especies no eran afectados.
En general, se puede decir que la respuesta de la planta a las
condiciones hídricas e higrométricas queda sujeta en su mayor parte
al material vegetal utilizado y a una buena ejecución de la
tecnología de cultivo apropiada, de acuerdo con las exigencias de
éste.
II.5.4...........................................................................................................Suelo
Tolera gran diversidad de suelos, aunque prefiere los de textura
ligera, desde arenosa hasta ligeramente arcillosa. Esta característica
de la planta permite su adaptación a diversos tipos de suelos,
siempre que éstos se modifiquen con la enmienda oportuna.
En cuanto a la naturaleza química del suelo, un pH entre 6 y 7
puede considerarse óptimo, así con unos contenidos salinos medios,
aunque sea una planta resistente a la salinidad.
Hilverda B.V., según sus directivas de cultivo, comenta que
cualquier tipo de suelo es apropiado, es preferible un suelo arenoso
y es esencial un buen drenaje; tierra con pH 6,5 y un CE de 0,5 es
idónea. El suelo debe estar libre de enfermedades.
II.5.5...................................................................................................Salinidad
7
El Limonium es un género que se desarrolla muy bien en suelo
salinos, por ello se le considera como una planta halófita
(crinohalófita).
Todas las especies de este género poseen glándulas secretoras de
sales en las hojas y los tallos, permitiendo con ello su adaptabilidad
a ecosistemas con estas características, ya que este mecanismo
fisiológico les capacita para disminuir la concentración salina en el
interior de las células hasta niveles tolerables para la planta.
Esta función la exterioriza la planta por medio de pequeños
depósitos salinos que encontramos en la superficie de la hoja, tras
ser expulsada de la planta la solución salina a través de los poros de
sus glándulas salinas.
Este mecanismo puede explicar la posibilidad de hacer plantaciones
para flor cortada al aire libre en terrenos con altos contenidos
salinos, con lo que se abre una posibilidad de cultivo para terrenos
catalogados como marginales al poseer este factor limitante de
cultivo en la mayoría de las especies vegetales.
II.6. Descripción de la planta
II.6.1...............................................................................Altura de la planta
La altura de planta es un carácter variable, siendo por lo general las
silvestres pequeñas, a comparación a los de cultivo que llegan a de
60 a 150 cm.
II.6.2.............................................................................................................Raíz
El sistema radical es axonomorfo, fasciculado, con raíces tuberosas
de diámetro de hasta 5 mm de las que parten numerosas raíces
radiales secundarias; en algunas especies está muy desarrollado
como en L.carnosum (Boiss) O. Kuntze, en el que llega a alcanzar
los 90 cm de profundidad, extendiéndose además horizontalmente.
8
II.6.3...........................................................................................................Tallo
Los tallos parten de una corona o cepa basal asentada en la
superficie del suelo; tienen una sección más o menos circular,
aunque en algunas especies puede ser poliédrica.
Crecen erguidos y aunque están bastante lignificados en especies
cultivadas en las que tienen una gran envergadura, de 100 a 150 cm,
se tumban y necesitan tutores auxiliares.
Son simples hasta el comienzo de la inflorescencia. Muchas
especies tienen tallos no floríferos de gran interés taxonómico, que
no finalizan en una inflorescencia; estos tallos no deben confundirse
con otros estériles, que aparecen en algunas especies al final del
verano, o en aquellas que se desarrollan en situaciones
desfavorables diversas.
II.6.4..........................................................................................................Hojas
Las hojas son simples, normalmente dispuestas en una roseta basal o
distribuidas a lo largo del tallo con gran densidad, según especies;
la conformación del limbo es muy diversa, desde entero a lobulado,
con formas redondeadas, espatuladas, etc., incluso modificándose
hasta tener una apariencia cilíndrica a modo de cladodios, aunque
dispuestos en forma arborescente.
Generalmente, el limbo es más largo que el peciolo, no suele
presentar diferencias con éste. La epidermis del limbo puede ser
desde ligeramente vellosa hasta cérea.
El limbo presenta consistencias variables desde muy estricta hasta
suculenta.
Una característica relevante de la familia de las Plumbaginaceaeas,
y por tanto del género Limonium, es la de poseer distribuidas en sus
tejidos verdes, hojas y tallos floríferos, unas glándulas capaces de
segregar soluciones salinas al exterior. Estos tricomas glandulares
9
formados por glándulas pluricelulares poseen una base de células
secretoras apicales y la actividad relacionada con la secreción tiene
lugar en el tejido a varias capas de células de profundidad. La
cutícula que recubre estas células posee poros por los que son
excretadas las sales.
Inicialmente se denominaron exclusivamente glándulas salinas,
porque los estudios se centraron sólo sobre exudados de cloruro
sódico que se encontraron en algunas plantas, aunque
posteriormente se hizo evidente que otros iones, aparte del sodio y
cloro, se encontraban presentes en éste (Berry y Thomson, 1967;
Berry, 1970).
II.6.5.........................................................................................Inflorescencia
La inflorescencia, generalmente una panícula corimbosa, se sitúa al
final de los tallos floríferos, más o menos gruesos, ramificados,
erectos y a veces alados, que son de color verde con algunas
tonalidades antociánicas.
II.6.6.........................................................................................................Flores
La flor presenta el cáliz infundibiliforme (en forma de embudo),
con sépalos membranosos, normalmente coloreados, a veces
dentados de forma corta entre los lóbulos; tienen la propiedad de ser
muy persistentes, más que la corola, lo que hace apta a la planta
para su aprovechamiento como flor seca.
La corola tiene normalmente forma de tubo corto, con los pétalos
unidos solamente en la base; éstos, en número de cinco, presentan
coloraciones diversas como violetas, púrpura, rosas, amarillas y
blancas, y múltiples tonalidades intermedias.
Los estambres se encuentran soldados en la base de la corola.
Presenta también cinco estilos libres o unidos en la base, siendo el
estigma de apariencia filiforme.
10
La mayoría de los Limonium presentan dimorfismo en el polen y
estigma, asociado con autoincompatibilidad.
II.6.7..........................................................................................................Fruto
El fruto se presenta en circuncisilio o en dehiscencia regular.
II.7. Limonium altaica
Botánicamente se puede describir como una planta dotada de tallos
floríferos robustos y erectos, que alcanzan alturas máximas de 60 a 70
cm en condiciones óptimas de cultivo.
Las hojas se encuentran dispuestas en una roseta basal, de forma ovalo
– espatuladas, son glabras, con su nervio principal prominente y su
limbo, de margen entero, tiene unas dimensiones aproximadas de 13 x
7 cm.
Los tallos floríferos son cilíndricos ligeramente estriados, y se
ramifican alrededor desde el tercio inferior de su altura, presentando
hojas reducidas a brácteas, más o menos membranosas, de contorno
lineal lanceolado.
Las flores están dispuestas en racimos de cimas monopares o
espiguillas, que a veces se dan como cimas compuestas con 4 a 6
espiguillas terminales. Las espiguillas, de unos 15 cm de longitud, se
presentan con 2 a 4 filas de flores, dispuestas de forma compacta. La
flor tiene la corola de unos 6 mm y es de dolor violáceo; el cáliz de
hasta 4mm, de textura papirácea y margen sinuoso, es obtuso y de
coloración ligeramente violácea. La bráctea interna llega hasta los dos
tercios de la longitud del cáliz y tiene el margen papiráceo de hasta 1
mm de anchura media; la bráctea externa es más reducida.
Entre los distintos cultivares que se comercializan de la serie Emille
podemos citar a Limonium altaica “Pioner”, “Maine blue”, presenta un
periodo amplio de floración, y una gran resistencia a condiciones
ambientales adversas, de temperaturas extremas y sequía, además de
11
ser resistente a plagas y enfermedades. Admite el cultivo forzado con
calor tras vegetar previamente a bajas temperaturas, pudiendo producir
desde 10 hasta 20 varas floríferas el segundo año, dependiendo de las
características productivas de su selección varietal.
La influencia de las bajas temperaturas se traduce en una reducción del
desarrollo vegetativo y de la floración, dejando esta última a nivel de
la roseta de hojas minimizando al máximo el crecimiento del tallo
floral y de forma importante la inflorescencia.
II.8. Propagación
Hace unos años la propagación del Limonium o estatice sólo se
concebía por vía sexual, hasta que se consolidaron las nuevas técnicas
de multiplicación vegetativa por un lado, y por otro aparecieron
nuevos cultivares, con lo cual se habilitó para dicho género la
multiplicación clonal utilizando tecnología de cultivo “in vitro”.
La siembra de la semilla puede realizarse en invernadero frío o
caliente, según el ciclo de producción que se quiera establecer; la
temperatura óptima de germinación es de 20ºC (Serra, 1979), aunque
tampoco hay problemas con gradientes entre 13 a 15ºC. Generalmente
la semilla limpia y escarificada germina en el plazo de una semana, y
cuando no lleva estos tratamientos previos, el plazo de germinación se
puede alargar entre dos o tres semanas.
La multiplicación vegetativa es posible en este tipo de plantas desde la
división de la misma, en periodos en los que ésta se encuentra parada
vegetativamente y no se evidencian movimientos de crecimiento, hasta
la propagación con órganos de mínimas dimensiones, desde secciones
de tallo hasta meristemos.
II.9. Revisión fitosanitaria
El aspecto fitosanitario hay que estudiarlo teniendo en cuenta que la
diversidad morfológica de las especies que integran el género
12
Limonium produce el que no podamos generalizar en cuanto a la
sensibilidad de todos los cultivares a todas las enfermedades.
II.9.1.........................................................................................................Plagas
a. Lepidópteros:Heliothissp., Spodopterasp . , etc. La voracidad de
las orugas, que consumen preferentemente hojas y brotes, así
como su rápida multiplicación, hace necesario su tratamiento
oportuno.
b. Ácaros: Dentrode este grupo el componente más activo con
respecto a los ataques en Limonium es Tetranichusurticae ,
vulgarmente conocido por araña roja. Este ácaro, cuya coloración
no es uniforme a lo largo de sus distintas fases vitales,
palideciendoen alguna de ellas, presenta su mayor eclosión en
épocas calurosas y secas produciéndose una gran sucesión de
generaciones; este ritmo decrece con temperaturas bajas, en
cuyas condiciones ambientales además se alarga su ciclo
biológico.
Aunque se dispersa por cualquier órgano de la planta, donde las
hembras realizan sus puestas, normalmente, es en el envés de las
hojas. Las ninfas, muy similares a los adultos aunque sólo tiene
6 patas, una vez nacidas comienzan a alimentarse rápidamente
perforando la epidermis y absorbiendo los contenidos celulares
de los tejidos. A continuación, transcurridos los momentos de
quiescencia donde se desarrollan las ninfas, aparecerán los
nuevos adultos. Las condiciones ambientales para el desarrollo
de su ciclo biológico son de 25ºC y 80% de humedad relativa, y
en cuyo caso se cierra a los 10 u 11 días.
Los signos externos en la planta de la incidencia de esta plaga,
son la aparición de zonas cloróticas y amarillentas, en el haz de
la hoja, con punteaduras necróticas, resultado de las succiones
masivas que realizan en la zona atacada; también la aparición de
13
telas de araña cubriendo distintas partes de la planta indica la
importancia del ataque.
c. Caracoles y babosas: La morfología y disposición de la roseta
basal de hojas constituye un refugio adecuado para que caracoles
(Tebasp .) y babosas (Agriolimaxsp.), se desarrollan en ese
ambiente húmedo. Los daños lo causan en las hojas, dejándolas
cribadas al alimentarse.
d. Trips:Se ha observado una gran presencia de ellos en flores y
relativamente pocos en hojas, de la especie
Frankliniellaoccidentalis ,sus adultos son de tamaño reducido,
entre 1 y 2 mm, alados y de color pardo oscuro en las
generaciones invernales y blanquecino anaranjado en las
estaciones cálidas. Su ciclo biológico se acorta en función de la
temperatura, durando unos 15 días a 30ºC y 40 días a 15ºC. La
textura celulósica de la flor del Limonium, así como su pequeño
tamaño, la hace poco proclive a exteriorizar los posibles daños
directos.
Es vector del “virus del bronceado del tomate” (TSWV).
II.9.2.........................................................................................Enfermedades
a. Rhizoctonia: Los ataques de este hongo, Rhizoctoniasp . , se
producen en plantas jóvenes de todas las especies de Limonium y
en sus primordios vegetativos, provocando podredumbre y
supresión de la parte aérea, afectando poco al sistema radical y
zona generativa del cuello de la planta, lo que posibilita una
recuperación de ésta, aunque sea limitada. Las condiciones
óptimas de desarrollo de la enfermedad se producen con una
temperatura media por encima de los 15ºC y alta humedad
relativa.
b. Botrytis: Denominada “podredumbre gris” por las formaciones
arborescentes del hongo que cubren la zona afectada,
14
Botrytiscinerea es una podredumbre blanda que ataca
normalmente al cogollo de las plantas y botones floríferos. Las
condiciones ambientales de desarrollo miceliar y la esporulación
tienen sus óptimos de 15 a 20 ºC y con una humedad relativa
elevada.
c. Oidium:Empieza a detectarse en las hojas, aunque en caso de
ataques fuertes puede invadir otras partes de la planta;
Erisiphesp . , cubre de un polvillo a los órganos afectados que son
las fructificaciones del hongo. Las áreas afectadas con el tiempo
se necrosan y se pierde esa parte de la planta.
Una ventilación adecuada que impida llegar a altos niveles de
humedad relativa es la medida de prevención más aconsejable.
d. Roya: Entre las especies conocidas como roya de los
LimoniumUromycesspp. , son U. savulescui
(VakalaunakisyMalathrakis, 1987) y U. limonii (Bedland, 1980)
los de aparente mayor incidencia y exclusivamente de L.
sinuatum .
Los primeros síntomas pueden aparecer con el aumento de las
temperaturas y humedades relativas en los cultivos; éstos, que en
principio se manifiestan con manchas alargadas un tanto
abultadas y de color verde, evolucionarán rajándose la
epidermis, de cuya abertura surgirán multitud de esporas en
forma de polvo rojizo.
Cuando la infección es pequeña, la parte aérea se amarilla y se
decolora, y cuando su grado sube, la planta se seca.
Como la producción de esporas es impresionante y éstas se
quedan en los restos vegetales al ser transportadas por el viento,
hay que tenerlo muy en cuenta si es que se desea volver a plantar
Limonium , u otras especies que puedan ser sensibles al ataque
del hongo, para realizar tratamientos preventivos en el momento
15
en que las condiciones ambientales sean las adecuadas para
iniciar la enfermedad un nuevo ciclo.
Lo que también se constata es que una vez producida la
infección, resulta muy difícil erradicada aun tratando con
productos curativos, aunque sí podemos mantenerla a ciertos
niveles de tolerancia.
e. Mildiu:Esta enfermedad es producida por la esporu lación del
hongo Peronosporasp. , que se desarrolla activamente en
presencia de elevadas humedades relativas. Alrededor del 90%, y
por temperaturas entre 15 y 18ºC.
La sintomatología se evidencia con manchas amarillentas en el
haz de las hojas, sobre todo de las basales, en principio de color
blanco pardusco que después se torna oscuro con tonalidad
plomiza.
f. Alternaria:Aunque su presencia no es abundante, se ha
encontrado en plantas de L. altaica las típicas manchas
circulares de Alternariasp. ; los círculos concéntricos producidos
en las hojas terminan necrosándonse, matando la zona del tejido
afectada.
El ataque coincide con la existencia de un periodo con poca
iluminación, ambiente muy húmedo en el invernadero y gran
densidad de follaje en las plantas. Reducciones de los riegos,
limpieza de hojas y el forzado de una mayor aireación y
ventilación, son medidas culturales para aliviar sus ataques.
g. Fusarium: Su actividad se lleva a cabo a nivel de los haces
vasculares, a los que obstruye impidiendo el flujo de la savia en
la planta. La forma F. oxysporum se ha encontrado en plantas
muertas de Limonium , las cuales empiezan a exteriorizar la
enfermedad cuando, en distintos estados de desarrollo,
comienzan a marchitarse; en este momento el sistema radical ya
16
está podrido, y seccionando transversalmente el tallo, aún verde,
se observan los haces vasculares oxidados y obstruidos en mayor
o menor grado. Cuando la planta es adulta y se encuentra en
plena floración en cultivo al aire libre, se ha observado que
también adquiere una tonalidad rojiza, en especial cuando
empiezan a bajar las temperaturas.
La lucha debe ser preventiva, desinfectando el terreno en pre
plantación, evitando la plantación con material vegetal
contaminado, y eliminando las plantas que puedan estar
enfermas.
II.9.3................................................................................................Nemátodos
Hay referencias (Ipach, 1987) que indican el ataque de nemátodos
de la especie Aphelenchoidesritzemabosi . La sintomatología
encontrada es de decoloración de los nervios de las hojas, virando
posteriormente al pardo, secándose a continuación. En ataques
importantes, también las flores pueden ser afectadas, sobre todo en
la fase de botón; éstos se atrofian y no se abren, perdiendo gran
parte de la calidad de la floración. Se han llegado a detectar unos
1000 ejemplares de 10 g de tejido y en ataques severos de 8 a
10000.
También se puede detectar ataques de Meloidogynesp . en plantas de
Limonium , las cuales se marchitan paulatinamente y una vez
arrancadas, presentaban en su sistema radical la formación de
agallas.
GIBERELINAS
II.10. Estructura química
Las giberelinas son compuestos naturales que actúan como reguladores
endógenos del crecimiento y desarrollo en los vegetales superiores.
17
Desde el punto de vista químico, las giberelinas constituyen una
familia de diterpenostetracíclicos ácidos cuyo esqueleto básico está
constituido por un anillo de ent-giberelano. Sin embargo, y a nivel
fisiológico, en este grupo solamente se pueden distinguir unos pocos
miembros con capacidad intrínseca para influir en el crecimiento de
los vegetales (Azcón y Talón, 2000). En general, las giberelinas con
19 átomos de carbono son más activas que aquellas que poseen 20
átomos de carbono en su molécula.
Las giberelinas son productos químicos que se encuentran en forma
natural en muchas plantas y en pequeñas cantidades. Todas las
giberelinas son derivados del esqueleto ent-gibereliano. Poseen 19 ó
20 átomos de carbono agrupados en sistemas de cuatro a cinco anillos.
Todas las giberelinas tienen un grupo carboxilo adicional unido al
carbono 4, por lo que todas podrían denominarse ácidos giberélicos
(Salisbury y Ross, 1992).
C1 9H2 2O6
Figura 1. Estructura química del ácido giberélico para dos
concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones foliares en
l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
II.11. Biosíntesis de las giberelinas
Estas sustancias son sintetizadas en los plastidios y su biosíntesis se
presenta a partir del ácido mevalónico. Su transporte es por el floema
cuyo flujo parece estar activado por las giberelinas, las cuales existen
en forma libre y conjugada (Rojas y Ramírez, 1991).
18
La síntesis de giberelinas se ha demostrado principalmente en frutos y
semillas en desarrollo, y en menor medida en las regiones apicales de
los brotes en crecimiento. También existen indicaciones de que las
giberelinas pueden sintetizarse en las raíces, aunque las evidencias en
este caso son menores. Las semillas inmaduras de muchos vegetales
contienen niveles de giberelinas relativamente elevados (Azcón y
Talón, 2000).
Las giberelinas se sintetizan principalmente en las hojas jóvenes y en
las semillas en cuyo endospermo se ha encontrado un receptor no
identificado (Salisbury y Ross, 1992). Se conocen más de 50
giberelinas diferentes, de las que unas 40 aparecen en plantas
superiores (Rojas y Ramírez, 1991). Las semillas inmaduras contienen
cantidades relativamente altas de giberelinas sintetizadas por la
semilla y no producto de traslocación (Salisbury y Ross, 1992).
Por conveniencia, la síntesis de giberelinas se divide en tres partes: (a)
conversión de ácido mevalónico a ent-kaureno, (b) conversión de ent-
kaureno a GA 1 2-aldehído, y (c) a partir de GA 1 2-aldehído a las
giberelinas.
La síntesis de giberelinas también se modifica de acuerdo con las
condiciones de luz y temperatura en que se desarrollan las plantas
(Azcón y Talón, 2000).
Las giberelinas son transportadas rápidamente dentro de la planta; este
transporte parece no ser direccional, pues se mueve con la misma
facilidad tanto acropétala como basipétala. Esta traslocación es
llevada a cabo tanto en floema como xilema, puesto que se han
encontrado giberelinas trasladándose a una velocidad de 50 mm/h en la
savia floemática y xilemática (Hurtado, D. y Merino, M., 2000).
Al parecer el ácido giberélico se degrada con lentitud, pero durante el
crecimiento activo la mayoría de las giberelinas se metabolizan con
rapidez mediante hidroxilación a productos inactivos, que pueden
19
almacenarse o translocarse antes de ser liberados en el momento y
sitio adecuado (Salisbury y Ross, 1992).
Existe suficiente evidencia para afirmar que las giberelinas se
trastocan en la planta tanto a través del floema como del xilema.
Dentro de los tejidos, su movimiento no es polar ni parece tener mucha
relación con el metabolismo (Gómez, 1984).
II.12. Efectos fisiológicos
Las giberelinas promueven la división celular porque estimulan células
que se encuentran en la fase G1 a entrar en la fase S, y debido a que
también acortan la fase S. El incremento en el número de células da
lugar a un crecimiento más rápido del tallo, debido a que cada una de
las células puede crecer, e incrementan la plasticidad de la pared
celular (Salisbury y Ross, 1992).
Las giberelinas son capaces de inducir mitosis en los meristemos sub-
apicales que sin su presencia no se dividirían. Por otro lado, afectan a
algunas enzimas que influyen en el metabolismo auxínico, favorecen la
síntesis de enzimas hidrolíticas como la alfa amilasa que estimula la
germinación de las semillas y actúa en la morfogénesis de flores
monoicas, promoviendo el desarrollo del androceo e inhibiendo la
expresión del gineceo (Gómez, 1984).
Las giberelinas producen o modulan durante el desarrollo de las
plantas un amplio y variado abanico de respuestas. Estas respuestas
afectan tanto a la regulación del crecimiento vegetativo como al
desarrollo reproductivo. Las giberelinas son los factores hormonales
determinantes en el control de la elongación del tallo, y en algunas
plantas pueden causar la reversión de la fase de adulto a la fase
juvenil. Las giberelinas también modifican sustancialmente los
procesos reproductivos de los vegetales, participando en el control de
la inducción de la floración, en el crecimiento y producción de flores,
y en el cuajado y desarrollo de los frutos. Las giberelinas, asimismo,
sustituyen los requerimientos de luz o frío que precisan muchas
20
plantas para florear o semillas para germinar, y en los cereales,
regulan la hidrólisis de las sustancias de reserva de las semillas.
Las giberelinas, son un grupo de reguladores de crecimiento naturales
de la planta, están involucrados en el desarrollo reproductivo que
incluye la iniciación de la floración, diferenciación y todas las etapas
del crecimiento y desarrollo del embrión, semillas y frutos (Pharisy
King, 1985; citado por Chudasama y Thaker, 2007).
El efecto promotor de las condiciones de día largo en la elongación del
tallo se debe a un incremento endógeno de giberelinas activas. La
aplicación exógena de giberelinas en condiciones de fotoperiodo no
inductivas estimula la elongación del tallo, especialmente en plantas
de día largo (Azcón y Talón, 2000).
Se ha demostrado que las giberelinas pueden sustituir los
requerimientos de día largo en algunas especies. Ellas también
reemplazan la necesidad de algunas especies de vernalizar. Esto
demuestra que la formación de flores causadas por días largos o por
periodos fríos puede normalmente depender de la formación de
giberelinas endógenas durante estos periodos (Chomchalow, N. 2004).
La afirmación de que las giberelinas actúan como inductores de la
floración no puede generalizarse. En la mayoría de leñosas las
giberelinas se comportan como inhibidores de la floración, mientras
que solamente en las gimnospermas parecen desempeñar un papel
inductor (Azcón y Talón, 2000).
II.13. Ácido giberélico en plantas
La giberelina disponible comercialmente es el ácido giberélico (AG 3),
que se obtiene por fermentación de los extractos del hongo Gibberella .
El AG3 t iene efectos enérgicos en la reducción del tallo floral y de las
flores en muchas plantas, se dice que reemplaza tanto la vernalización
como a la inducción fotoperiódica en muchas plantas de días largos.
Varios experimentos han demostrado que las giberelinas naturales,
21
extraídas de plantas de días largos inducidas, causan la floración en
otras no inducidas. El AG 3 causa la floración en muchas plantas de
días largos pero no en todas ( Lolium , rye-grass, es una excepción).
Virtualmente todas aquellas de hábito de roseta que se han probado
responden al AG 3 . Sin embargo, éste causa floración en unas pocas
plantas de días cortos como Impatiens balsamina ; en la mayoría de
ellas no es efectiva.
Un efecto del ácido giberélico es inducir a la floración de especies de
días largos (Rojas, 1993).
Moe, R. y Berland M. evaluó el efecto del ácido giberélico en
LiatrisspicataWilld, sus resultados demostraron que la aplicación del
ácido giberélico (AG 3) a 500 ppm mejoró el desarrollo de las flores y
aumentó el número de tallos florales.
La primera ventaja del uso de AG 3 es estimular la floración de los
ornamentales, un efecto secundario es el incremento del número de
flores en plantas tratadas en comparación con las producidas de forma
natural (Henny, R., 1995).
Hsiunget al . (1981) reportaron experimentos con P. vivax , que floreció
en las provincias de Jiangsu y Zhenjiang de 1969 a 1976. Su método
para la rápida rejuvenización del bamboo era excavar rizomas (sin
cañas) en la época de floración y cortar secciones de 30-50cm. Estas
eran sumergidas en una solución de ácido giberélico a 100 ppm por 5
horas y luego enterradas en una cama. Cuando los nuevos tallos
emergieron, fueron pulverizados con la solución por dos semanas.
Después de un año, la caña tratada produjo más de lo normal, mientras
que las cañas no tratadas no florearon.
En Spathiphyllum la barrera potencial para el cultivo es causado por
falta de floración que puede ser superado con el uso de ácido
giberélico (AG 3) en pulverizaciones para estimular la floración. Los
tratamientos generalmente consisten en la pulverización foliar simple
a 250 ppm de AG 3 de procedencia comercialmente disponible.
Resultado del tratamiento, las plantas florean dentro de 3 a 5 meses
dependiendo del clima del año (Henny, R. et al . , 2009).
22
Ogawa, Y. et al . (1993) realizó ensayos en Spathiphyllumpatinii cv.
Merry , seis meses después de la plantación de las plántulas, estas
fueron tratadas con pulverizaciones a 500 y 1000 ppm de ácido
giberélico (AG 3) a las hojas. Las plantas no tratadas no florearon
durante el periodo del experimento. La floración fue más estimulada
con altas concentraciones de AG 3 .
El ácido giberélico (AG 3) ha sido usado para estimular o acelerar la
floración de muchas plantas y ha sido aceptado como una práctica
cultural general para algunos cultivos florícolas. Tubérculos de
CaladiumhortulanumBirdsey tratados con AG 3 desarrollaron más
inflorescencias que las mantenidas en agua pero no había diferencias
entre plantas tratadas con 0, 250, 500, 1000 ppm de AG 3 (Harbaugh, B.
y Green, W., 1979).
Plantas de Lisianthus (Eustomagrandiflorum ) que exhiben
arrosetamiento pueden ser inducidas al crecimiento con aplicaciones
de ácido giberélico, para esto identificar las plantas arrosetadas, estas
se presentan a las 3 o 4 semanas después del trasplante, aplicar de 10-
200 ppm, con una o 2 pulverizaciones, de acuerdo a experimentos
(Highsunexpress).
El crecimiento y la floración de la cala ( Zantedeschiarehmannii )
fueron estudiados por Yusef, S. y Elkiey, T. (1995). El ácido
giberélico (AG 3) fue aplicado a 0, 250, 500 ppm como tratamientos de
pre-plantación para los rizomas (15 min de remojo) o como una
pulverización foliar. Los rizomas remojados en AG 3 (ambas
concentraciones) incrementó significativamente el número de flores
producidas.
Dalla C. et al . (s.f) pulverizaron AG 3 (500 ppm) a plantas adultas de
Limoniumgmelinii previamente sujetas a la temperatura de 6 ºC por 5
semanas, este tratamiento aceleró el alargamiento de los tallos y la
floración de las plantas, no se obtuvo el mismo resultado con
concentraciones de 0 y 250 ppm de AG 3 .
Topoonyanont, N. et al . (1984) estudiaron el efecto del ácido
giberélico (AG 3) a 500 ppm en tres variedades de Statice
(Limoniumsinuatum ), amarillo, morado y rosado a diferentes edades de
23
58 a 100 días de edad después de la siembra. Observaron que la
aplicación de AG 3 a 500 ppm dio el mejor efecto en la aceleración de
la floración cuando fue aplicado a los 58 días de edad después de la
siembra en la variedad amarilla. Para la variedad morada y rosada el
mejor efecto se mostró cuando el AG 3 a 500 ppm fue aplicado dos
veces a los 58 y 72 días de edad después de la siembra.
Según Wilfret, G. y Green, J. (1975) Cultivares de Limoniumsinuatum
cv. ‘Iceberg’ y L. sinuatum cv. ‘Midnightblue’ fueron pulverizados
con concentraciones de 0, 100, 200, 300, 400, 500, 1000 y 2000 ppm
de ácido giberélico (AG 3) a los 110 días de enraizamiento para
determinar la óptima concentración para una floración temprana y
máximo rendimiento. Aunque concentraciones de 1000-2000 ppm
incrementaron los rendimientos comparados con plantas no tratadas,
los rendimientos fueron menores que a 400-500 ppm de AG 3 , la cual
fue el óptimo rango de concentración para una floración más temprana
y máximos rendimientos.
La aplicación de 50 ppm de ácido giberélico sobre tallos florales en
cebolla acortó el tiempo requerido para la emergencia del 80% de los
tallos florales, además de incrementar la uniformidad y peso de los
tallos florales (Naamniet al . , 1980).
En cala (Zantedeschiaspp .) no se obtuvieron efectos relevantes en la
longitud del tallo con la utilización de ácido giberélico, las diferencias
en el incremento de peso resultaron no ser significativo para los
cultivares de cala, por lo que no existen diferencias estadísticamente
significativas. En cuanto al diámetro basal no se vio afectado por los
distintos tratamientos (Bahamonde, P. 2006).
El uso de ácido giberélico ha incrementado el número de flores en
todos los cultivares de calas de colores (Armitage, 1993; citado por
Bahamonde 2006).
Las giberelinas aceleran el metabolismo de los carbohidratos,
aumentando la cantidad de sacarosa en los ápices preformados del
tallo, estimulando de esta forma la inducción floral de las yemas
axilares de éste, las que sin la aplicación del tratamiento permanecen
24
como yemas vegetativas (Funnell y Go, 1993; citado por Bahamonde,
2006).
En cala (Zantedeschiaaethiopica L .) se han hecho estudios donde la
producción de plantas tratadas con AG3 aumenta el número de tallos
mientras se aumenta la dosis, el tratamiento con giberelina ha
modificado ligeramente las características biométricas de los tallos
cortados, con una reducción en el diámetro de tallo en comparación
con el testigo no tratado (Pascale, S y Paradiso, R. 2007).
La aplicación de AG 3 durante el tercer estado de desarrollo de los
frutos, estimula la ganancia de peso en cerezas básicamente al permitir
la expansión celular, por un lado lo que respecta al aumento de fluidos
intracelulares como producto de la degradación de algunos azúcares, al
mismo tiempo de su efecto directo sobre el crecimiento de la pared
celular, al alterar la distribución de algunos compuestos, tales como el
calcio, aumentando de esta forma la plasticidad de las paredes
celulares, permitiendo el crecimiento de estas (Taiz y Zeiger, 1991).
La aplicación de giberelinas estimula la ganancia de peso de los frutos
mediante dos mecanismos, uno descrito anteriormente y que actúa
directamente en la expansión y crecimiento de la célula, y el otro,
estimulando en forma directa la división celular, al actuar como
“sumidero” fisiológico que en forma intracelular estaría atrayendo
nutrientes y otros elementos promotores del metabolismo celular, con
lo cual se estaría aumentando la tasa de división celular (Maghdal,
1994; citado por Gómez y Mora, 2006).
En estudios realizados por Martínez y Esteva (s.f.) observaron una
aparente reducción del peso con el incremento de la concentración de
AG3 aplicado, lo cierto es que, no se han detectado diferencias
significativas para el peso total o neto de los capítulos entre los
niveles de AG 3 aplicados. En cuanto a las dimensiones de los
capítulos, no existen diferencias significativas entre los diferentes
niveles de AG 3 .
25
26
I I I . M A T E R I A L E S Y M É T O D O S
III.1. Ubicación Geográfica
- Latitud : 13°57’1’’
- Longitud : 75°48’1’’
- Altitud : 419 msnm
III.2. Ubicación Política
- Departamento : Ica
- Provincia : Ica
- Distrito : Salas Guadalupe (Pampas de Villacurí)
III.3. Clima
Los datos meteorológicos presentados en elCuadro 1, fueron
obtenidos de la estación meteorológica del fundo San Gregorio de Ica
ubicado a 409 m.s.n.m., latitud sur: 13º 55’ 02’’ y Longitud oeste:
75º 51’ 46’’, correspondientes al año 2009.
Cuadro 1. Datos meteorológicos de la Estación del fundo San Gregorio de
Ica para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium. Ica – 2009.
MesTemperatura (ºC)
Precipitación(mm)
Velocidad del viento
(km/h)Máx. Mín. Prom.
Enero 30,1 18,6 23,7 0,0 7,5Febrero 30,9 19,8 24,5 0,5 7,3Marzo 30,5 19,7 24,5 0,0 7,0Abril 30,1 17,0 22,7 0,0 7,1Mayo 26,9 14,5 19,6 0,3 6,6Junio 21,9 11,0 15,5 1,5 5,3Julio 22,9 10,7 15,4 0,3 6,1Agosto 23,0 10,4 15,2 0,0 6,7Setiembre 24,4 11,1 16,2 0,0 7,8Octubre 25,2 12,9 17,7 0,0 8,0Noviembre 26,1 14,2 19,2 0,0 7,6Diciembre 26,3 16,6 20,5 1,0 7,4
27
26,5 14,7 19,5 3,6 7,0Fundo San Gregorio de Ica (2009)
III.4. Suelo
La muestra del suelo experimental fue sometida a análisis de
caracterización, realizado en el laboratorio Regional de Análisis de
Suelos, Aguas y Plantas de la Escuela Profesional y Académica de
Agronomía de la Universidad Nacional de San Agustín de Arequipa,
cuyos resultados se presentan en elCuadro 2, el método de muestreo
fue zig – zag.
Cuadro 2. Análisis de Caracterización del suelo experimental para dos
concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones foliares en
l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
Parámetro Resultado UnidadespH 7,40CE 4,98 mmhos/cmCaCO3 0,58 %Mat. Orgánica. 0,44 %P 30,53 ppmK2O 175,00 ppmCIC 3,50 meq/100Ca 2,45 meq/100Mg 0,35 meq/100K 0,48 meq/100Na 0,22 meq/100Arena 91,90Limo 1,69Arcil la 6,41Clase textural Arenoso
Laboratorio Regional de Análisis de Suelos, Aguas y Plantas
De los resultados obtenidos del análisis de suelo, este presentó pH
ligeramente alcalino, el suelo es salino de acuerdo a la conductividad
eléctrica (CE), el limonium puede soportar una conductividad
eléctrica alta ya que es considerada como una planta halófita, los
niveles de materia orgánica son muy bajos al igual que la capacidad
de intercambio catiónico (CIC), con respecto a potasio es bajo y
fósforo alto, de textura arenosa. Por lo tanto, los riegos deben ser
28
frecuentes, con incorporación de macroelementos en especial
nitrógeno y potasio, para el buen desarrollo de las plantas.
III.5. Materiales
III.5.1. Material vegetal
- Campo instalado de Limonium altaica cv. ‘Maine blue’,
procedencia holandesa de la empresa Hilverda V.B., las plantas
tienen 4 años en campo.
III.5.2. Material de campo
- Flexómetro (cinta métrica).
- pHchímetro.
- Carteles de identificación.
- Mochila manual de 20 litros.
- Baldes.
- Cilindros.
- Vasos medidores.
- Escobas (dientes flexibles).
- Mantas.
- Rafia.
- Cañas.
- Equipo de riego: cintas de riego, tanque de fertilización, etc.
- Tijeras de podar.
- Vernier.
- Balanza.
- Ligas elásticas.
- Bolsas de polietileno.
- Stickers.
29
- Cuaderno de apuntes.
III.5.3. Otros
- Material de escritorio.
- Cámara fotográfica.
- Computadora.
- Calculadora.
III.5.4. Insumos.
- Ácido giberélico: AG 3 (32 g/l ó 32 000 ppm para uso de la
investigación).
- Fertilizantes:
o Fertilizante NPK (20 – 20 – 20)
o Sulfato de potasio (50 K 2O)
o Nitrato de magnesio (11 N y 15,5 Mg)
o Nitrato de amonio (33,5 N)
o Nitrato de calcio (15,5 N y 26,3 CaO)
- Fertilizantes foliares a base de:
o Calcio (8%) y Boro (1%)
o Elementos menores (19,7 % Nitrato de magnesio, 10%
Nitrato de zinc, 10% Nitrato de fierro, 4% Nitrato de
manganeso, 5% Nitrato de cobre, 13,9% Nitrato nítrico)
o Potasio (0 – 0 – 40 + 2 MgO)
o Fosfato diamónico (18% N, 46 % P 2O5)
- Pesticidas (I.a):
30
o Rotenona (10%)
o Dimetoato (50%)
o Thiocyclam- hidrogenoxalato (50%)
III.6. Diseño experimental
El experimento se conducirá bajo un diseño de bloques completos al
azar con arreglo factorial 2A X 3B, más un tratamiento testigo y tres
bloques, teniendo un total de 21 unidades experimentales.
III.6.1. Tratamientos
T: testigo sin aplicación
A. Concentración de AG 3
- A1: 300 ppm
- A2: 600 ppm
B. Número de aplicaciones
- B1: 1 aplicación
- B2: 2 aplicaciones
- B3: 3 aplicaciones
En consecuencia los tratamientos serán 7, en total:
- Testigo: sin aplicación de AG 3
- A1B1: 1 aplicación con 300 ppm de AG 3
- A1B2: 2 aplicaciones con 300 ppm de AG 3
- A1B3: 3 aplicaciones con 300 ppm de AG 3
- A2B1: 1 aplicación con 600 ppm de AG 3
- A2B2: 2 aplicaciones con 600 ppm de AG 3
- A2B3: 3 aplicaciones con 600 ppm de AG 3
III.6.2. Croquis experimental
31
Para el experimento se hizo la siguiente distribución de las 21
unidades experimentales, como se presenta en el Croquis 1.
Croquis 1. Distribución de las unidades experimentales para dos
concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones foliares en
l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
1m1
5,5
m
46,
5 m
10,0 m
A2B3 A1B3 A2B2 A1B1 A2B1 A1B2 T
A1B1 A2B1 A2B3 A1B2 T A2B2 A1B3
T A1B1 A1B2 A2B1 A2B2 A1B3 A2B3
III.6.3. Características del campo experimental
- Unidades experimentales.
o Número de unidades experimentales : 21
o Largo : 15,5 m
o Ancho : 1,0 m
o Área : 15,5 m2
- Bloques.
o Número de bloques : 3
o Largo : 15,5 m
32
I
II
III
o Ancho : 10,0 m
o Área : 155 m2
o Distancia entre bloques : 0 m
- Campo experimental.
o Largo : 45,5 m
o Ancho : 10,0 m
o Área total del experimento : 455,0 m2
o Área neta del experimento : 325,5 m2
III.6.4. Antecedentes del campo experimental
El primer cultivo instalado en el campo experimental (suelo virgen)
ha sido Limonium altaica cv. ‘Maine blue’.
III.7. Conducción del experimento
III.7.1. Fertirriego
El área experimental se riega por sistema de goteo, el tiempo de
riego es de una hora y media diaria, por su textura arenosa,
utilizando la última parte del riego para la fertilización. Cada cama
tiene dos cintas de riego.
Se utilizó la fórmula 400-300-500-100-50 de N-P-K-Ca-Mg
respectivamente, se fraccionó dicha fórmula de acuerdo a la etapa
fenológica en que se encontraba la planta, así lo indica elCuadro 3.
La fertilización es diaria, es decir, la cantidad por etapa fenológica
se divide entre el número de días de dicha etapa.
Cuadro 3. Fert i l ización de acuerdo a las etapas fenológicas para dos
concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones foliares en
l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
EtapaSemana
FenológicaDías
N400
P2O5
300K2O500
Ca100
Mg50
Crecimiento01
35 25% 33% 20% 20% 20%05
33
Desarrollo06
49 62,5% 50% 60% 50% 50%12
Producción13
21 12,5% 17% 20% 30% 30%15
Florisert S.A.C
Se utilizó Fertilizante NPK (20 – 20 – 20), Sulfato de potasio (50
K2O), Nitrato de magnesio (11 N y 15,5 Mg) y Nitrato de amonio
(33,5 N), Nitrato de calcio (15,5 N y 26,3 CaO) como insumos para
la fertilización diaria.
III.7.2. Plantación
Las características de plantación del área experimental son las
siguientes: presenta 2 hileras de plantas por cama, con
distanciamientos de 0,5 m entre plantas y entre camas.
III.7.3. Deshoje
Esta labor consiste en la eliminación de hojas maduras, amarillas y
muertas, mayormente se encuentran en la parte basal de la roseta de
hojas, con la finalidad de estimular a la planta a un nuevo ciclo de
producción. Se realizó una semana antes de la primera aplicación
del ácido giberélico.
III.7.4. Aplicación de ácido giberélico
- Producto: AG 3 (líquido)
- Concentración de AG 3 en el producto: 32 000 ppm
- Momento de aplicación: en la mañana (7:00 am)
- Estado de la planta: deshojada, sin brotes.
- pH de la solución: ligeramente ácida alrededor de 5 (pH agua=
7,5, se utiliza ác. Cítrico para bajar el pH de la solución, esto se
evalúa con el pHchímetro).
- Forma de aplicación: con mochila manual de boquilla fina en
cono
34
Cálculos:
- Cantidad de solución por planta: 40 ml
- Cantidad de plantas por “unidad experimental”: 46
- Volumen de agua: 1,840 litros/unidad experimental
- Número de Repeticiones: 3
- Volumen de agua por tratamiento: 5,5 litros
- Concentración final de AG 3 en la solución: 300 ppm
- Concentración de AG 3 en el producto: 32 000 ppm (32000
mg/litro)
C1V1 = C2V2
(32 000 ppm) (V1) = (300ppm) (5,5 litros)
V1 = 1650 /32000
V1 = 0,05 litros de producto
Entonces necesitamos 0,05 litros de AG 3 para 5,5 litros de agua que
serán aplicados por tratamiento en la mañana con mochila manual,
Se realizan los mismos cálculos para los diferentes tratamientos. Y
de acuerdo a las semanas correspondientes. El orden de aplicaciones
para los diferentes tratamientos se encuentra en elCuadro 4.
Cuadro 4. Orden de aplicación de ácido giberélico de acuerdo a los
tratamientos para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de
aplicaciones foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
Código TratamientoSemana
01 02 03T Sin aplicación - - -
A1B1 Una aplicación a 300 ppm XA1B2 Dos aplicaciones a 300 ppm X XA1B3 Tres aplicaciones a 300 ppm X X XA2B1 Una aplicación a 600 ppm XA2B2 Dos aplicaciones a 600 ppm X XA2B3 Tres aplicaciones a 600 ppm X X X
Otros productos foliares a toda el área experimental por igual: (a)
Calcio (8%) y Boro (1%) a losdos días de aplicación de ácido
giberélico, (b) Elementos menores (19,7 % Nitrato de magnesio,
35
10% Nitrato de zinc, 10% Nitrato de fierro, 4% Nitrato de
manganeso, 5% Nitrato de cobre, 13,9% Nitrato nítrico) en la
semana 01, 02, 03; (c) Potasio (0 – 0 – 40 + 2 MgO) en la etapa de
producción y (d) Fosfato diamónico (18% N, 46 % P2O5) en la
semana 03 y 06.
III.7.5. Desbrote
Consiste en la eliminación de todos los brotes que aparecen en la
planta durante 5 semanas contando desde la semana de la primera
aplicación del ácido giberélico, Se desbrotó hasta la semana 06 a
todos los tratamientos. Esto para agrupar la producción de tallos.
III.7.6. Encanastado de tallos
En la sexta semana los tallos comienzan su crecimiento vertical,
para que los tallos se mantengan rectos, se necesita tejer tutores con
rafia, que tienen forma de triángulo, de tal manera que cada planta
tendrá un triángulo que soporte sus tallos desde todos los ángulos
como lo indica la figura 2.
Figura 2. Forma de tej ido de rafia para dos concentraciones de AG 3 en
diferente número de aplicaciones foliares en l imonium ( Limonium
altaica) . Ica – 2009.
III.7.7. Control fitosanitario
Durante el desarrollo del cultivo se presentó (trips) Frankliniellasp .
En la etapa de producción, el cual fue controlado con Thiocyclam-
36
hidrogenoxalato (50%) a la dosis de 0,2%, empezó a aplicar en la
semana 12, con una frecuencia de dos veces por semana,
acompañado de un adherente al 0,025%.
No se presentaron más plagas ni enfermedades por lo que no fue
necesaria la aplicación de otros productos químicos.
III.7.8. Cosecha
Se realizó desde la semana 13 a la 15, se cosechó manualmente con
tijeras de podar, realizando un corte fino en la base del tallo floral,
cuando presentaba un porcentaje de apertura floral de 70% a más.
Los tallos se colocaron en Tiosulfato de plata a la dosis de 0,2%
separados por unidades experimentales. Se realizaron dos cosechas
por semana.
III.8. Características evaluadas
III.8.1. Número de tallos
Se contaron la totalidad de tallos producidos por la planta
evaluada. Se tomaron las cinco plantas evaluadas para la longitud
del tallo.
III.8.2. Longitud del tallo
Las evaluaciones se hicieron desde la semana 06 (24 abril del
2009), en que se dejan crecer los tallos se evaluó tres veces por
semana la longitud de los mismos, para los análisis estadísticos se
tomó la evaluación hecha el 24 de abril (semana 06), con
distanciamiento de cinco días hasta el 16 de junio (semana 14).
Para la evaluación se tomaron al azar cinco plantas como muestra
por cada unidad experimental.
III.8.3. Porcentaje de tallos obtenidos por grado
37
La muestra por unidad experimental es de cinco plantas elegidas al
azar. De la totalidad de tallos producidos por una planta se evaluó el
porcentaje de tallos obtenidos de acuerdo a los siguientes grados:
- Grado 70: 70 cm
- Grado 60: 60 cm
- Grado 50: 50 cm
III.8.4. Diámetro de tallo
Esta evaluación se realizó después de cosechadas las cuales fueron
llevadas al área de proceso, donde se procedió a la evaluación del
diámetro del tallo, para lo cual se tomaron en cuenta un total de 30
tallos cosechados en su punto de apertura, escogidos al azar, cinco
tallos por cosecha, donde a cada uno se le midió con un Vernier el
diámetro ecuatorial mayor expresado en mm a 10 cm de la base del
tallo.
III.8.5. Peso de tallo
Esta evaluación se realizó después de cosechadas las cuales fueron
llevadas al área de proceso, donde se procedió a pesar en una
balanza digital, los tallos. Se evaluaron los mismos tallos que
fueron utilizados para determinar la variable de diámetro, siendo un
total de 30 tallos escogidos al azar de cada unidad experimental.
Cinco tallos por cosecha.
III.8.6. Rentabilidad neta
Se elaboró el respectivo análisis de rentabilidad para cada uno de
los tratamientos del experimento.
III.9. Análisis estadístico
A los resultados obtenidos en el área de sala y campo se aplicó el
Análisis estadístico que corresponde al diseño planteado y para
determinar los cuadrados medios se aplicó la prueba de F. Finalmente
38
se aplicó la prueba de significación de Duncan al 0,05 para
determinar si existe diferencias estadísticas significativas entre los
tratamientos en estudio y con las evaluaciones realizadas se
estableció el resultado más apropiado.
I V . R E S U L T A D O S Y D I S C U S I O N E S
IV.1. Número de tallos
Según el Análisis de Variancia (ANVA), (cuadro 1 del anexo) se
observa en su fuente de variación; el contraste, concentración y
número de aplicaciones mostraron diferencias estadísticas
significativas, para la interacción concentración x número de
aplicaciones no se encontró diferencia estadística significativa; este
contraste es la comparación de los tratamientos que tuvieron
aplicación de ácido giberélico con el que no lo tuvo.
En elcuadro 5 se resumen los efectos principales de los factores
concentración y número de aplicaciones en estudio para el número de
tallos. Se puede observar que existe diferencia estadística
significativa entre los niveles del factor concentración en promedio
de los niveles del factor número de aplicaciones y entre el factor
número de aplicaciones en promedio de los niveles del factor
concentración, de acuerdo a la prueba de significación de Duncan.
Cuadro 5.Promedios de número de tal los para dos concentraciones de AG 3
en diferente número de aplicaciones foliares en l imonium ( Limonium
altaica) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 6,27 08,80 07,54 b2 8,33 12,07 10,20 a3 9,13 10,33 09,73 a
Concentraciones 7,91 b 10,40 aTestigo 1,87 c C.V.= 21
39
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente
según la prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Existe una diferencia estadísticamente significativa al comparar el
testigo con tratamientos que tuvieron aplicación de AG 3 , esto
significa que cualquier dosis a cualquier aplicación de AG 3 es mejor
que el testigo, se obtienen mayor número de tallos.
Aunque no exista diferencia significativa en la interacción podemos
decir que a mayor concentración de AG 3 se obtiene mayor número de
tallos, de igual manera dos o tres aplicaciones de AG 3 obtienen
mejores resultados que una sola aplicación.
En el Gráfico 1 podemos observar la interacción de concentración por
número de aplicaciones para el número de tallos de la planta de
limonium (Limonium altaica ), mientras que en el Gráfico 2 y en el
Gráfico 3 se muestran los efectos principales para el factor
concentración y para el factor número de aplicaciones
respectivamente.
1 2 30.0
2.0
4.0
6.0
8.0
10.0
12.0
14.0
300 ppm
N° de aplicaciones
N°
de ta
llos
Gráfico 1. Interacción de concentración x número de aplicaciones para el
número de tal los.
40
300 60002468
1012
Concentración (ppm)
N°
de ta
llos
Gráfico 2. Efecto principal del factor concentración en promedio de los
niveles del factor número de aplicaciones para el número de tal los.
1 2 30
2
4
6
8
10
12
N° de aplicaciones
N°
de ta
llos
Gráfico 3. Efecto principal del factor número de aplicaciones en promedio
de los niveles del factor concentración para el número de tal los.
El limonium considerado como una planta de día largo, puede
sustitutir sus necesidades con la aplicación de AG 3 . Un efecto del
ácido giberélico es inducir a la floración de especies de día largo
(Rojas, 1993).
Henny (1995) también señala que la primera ventaja del uso de AG 3
es estimular la floración de los ornamentales, un efecto secundario es
el incremento del número de flores en plantas tratadas en
comparación con las producidas de forma natural.
Los resultados concuerdan con lo postulado por Dalla et al . (s.f.)
Quienes pulverizaron AG 3 a plantas adultas de Limoniumgmelinii ,
41
donde aceleró el alargamiento de los tallos y la floración de las
plantas a mayor concentración de AG 3 .
También Wilfret Y Green (1975) observaron que a mayor
concentración de AG 3 incrementaron los rendimientos comparados
con plantas no tratadas.
Las giberelinas aceleran el metabolismo de los carbohidratos,
aumentando la cantidad de sacarosa en los ápices preformados del
tallo, estimulando de esta forma la inducción floral de las yemas
axilares de éste, las que sin la aplicación del tratamiento permanecen
como yemas vegetativas (Funnell y Go, 1993; citado por Bahamonde,
2006).
Los resultados también concuerdan con los estudios de Pascale y
Paradiso (2007) en cala (Zantedeschiaaethiopica L .) donde la
producción de plantas tratadas con AG 3 aumenta el número de tallos
mientras se aumenta la dosis.
El uso de ácido giberélicoincrementael número de flores en todos los
cultivares de calas de colores (Armitage, 1993; citado por
Bahamonde 2006).
Ogawa, Y. et al . (1993) también realizó ensayos en
Spathiphyllumpatinii cv. Merry , Las plantas control no florearon
durante el periodo del experimento. La floración fue más estimulada
con altas concentraciones de AG 3 .
IV.2. Longitud de tallo
En el gráfico 4se muestran las variaciones de la longitud del tallo a
lo largo del ciclo vegetativo del ensayo en función de los
tratamientos empleados. Podemos deducir que aproximadamente a
partir de los 70 días después de la primera aplicación de AG 3(ddpa)
el crecimiento se hace más lento, al desarrollarse las flores,la
emergencia de brotes se da en las semanas 05 a 10.
Según el ANVA (cuadro 3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21 y 23 del
anexo) se observa en su fuente de variación; que el factor
42
concentración, factor número de aplicaciones y la interacción
concentración x número de aplicaciones, no fueron significativos
estadísticamente para los 35, 50, 55, 60, 65, 70, 75, 80, 85 ddpa de
AG3 , sin embargo, para el contraste factorial vs Testigo si se registró
diferencias significativas a los 35, 50, 55, 70, 75, 80 y 85 ddpa,
mientras que para 60 y 65 ddpa no se registró diferencia
significativa; este contraste es la comparación de los tratamientos
que tuvieron aplicación de ácido giberélico con el que no lo tuvo.
35 40 45 50 55 60 65 70 75 80 850.0
10.0
20.0
30.0
40.0
50.0
60.0
70.0
80.0
90.0
TA1B1A1B2A1B3A2B1A2B2A2B3
Días después de la aplicación
cm
Gráfico 4. Longitud de tal lo (cm) durante el periodo vegetativo para dos
concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones foliares en
l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
Según el ANVA (cuadro 5 y 7 del anexo) se observa en la fuente de
variación; que el factor concentración, factor número de aplicaciones
no fueron significativos, sin embargo, en la interacción hubo
significación estadística.
Según los efectos simples del cuadro 6 del anexo, existe diferencias
significativas al comparar el número de aplicaciones a 300 ppm,
siendo mejor A1B3 (Tres aplicaciones a 300 ppm) con respecto a una
y dos aplicaciones a 300 ppm, más no al comparar el número de
aplicaciones a 600 ppm, en cuanto a las concentraciones de AG3 sólo
existe diferencia entre tres aplicaciones de AG3, siendo mejor A1B3
43
(Tres aplicaciones a 300 ppm) con respecto a A2B3 (Tres
aplicaciones a 600 ppm).
Sin embargo, todos los tallos de los diferentes tratamientos tuvieron
la misma curva de crecimiento, y la longitud final a los 85 días
después de la primera aplicación de AG 3 , no tuvieron diferencias
significativas, excepto por el testigo que superó significativamente a
los tratamientos a los cuales se le aplicó AG 3 , tal como lo muestra el
cuadro 6.
El resultado concuerda con lo encontrado por Bahamonde (2006)
quien determinó en cala (Zantedeschiaspp .) que no existe efectos
relevantes en la longitud del tallo, la acción más importante del AG3
es inducir y aumentar el número de tallos florales de Limonium.
Cuadro 6. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 85 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de
aplicaciones foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 76,73 74,70 75,72 b2 74,57 73,47 74,02 b3 74,20 76,07 75,14 b
Concentraciones 75,17 b 74,75 bTestigo 83,53 a C.V. 2,34
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente
según la prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
IV.3. Porcentaje de tallos obtenidos por grado
En general, todos los tallos de los diferentes tratamientos llegaron al
grado deseado para el mercado, que es el grado 70, es decir, todos los
tallos obtuvieron longitudes mayores a los setenta centímetros.
Por lo que podemos decir que la aplicación de AG 3 no influye en la
longitud final de los tallos.
44
IV.4. Diámetro de tallo
Según el ANVA (cuadro25 del anexo) se observa en su fuente de
variación; que el factor concentración, factor número de aplicaciones
y la interacción concentración x número de aplicaciones, no fueron
significativos estadísticamente, de igual manera para el contraste
factorial vs Testigo; este contraste es la comparación de los
tratamientos que tuvieron aplicación de ácido giberélico con el que
no lo tuvo.
En elcuadro 6 se resumen los efectos principales de los factores en
estudio para el diámetro de tallo. Se puede observar que no existe
diferencia significativa entre los niveles de los dos factores en
estudio acorde a la prueba de significación de Duncan al 0,05 de
probabilidad.
Cuadro6. Diámetro de tal lo (mm) para dos concentraciones de AG3 en
diferente número de aplicaciones foliares en l imonium ( Limonium altaica ) .
Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 6,41 6,24 6,33 a2 6,28 6,13 6,21 a3 5,94 5,89 5,92 a
Concentraciones 6,21 a 6,09 aTestigo 6,50 a C.V.= 4,62
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente
según la prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
El tratamiento que obtuvo el mayor diámetro de tallo fue el
Tratamiento T (Sin aplicación de AG 3) con 6,50 mm, seguido del
Tratamiento A1B1 (Una aplicación a 300 ppm de AG 3) con 6,41 mm
mientras el tratamiento que obtuvo el menor diámetro de tallo fue el
Tratamiento A2B3 (Tres aplicaciones a 600 ppm de AG 3) con 5,89
mm de diámetro.
45
Se puede observar que los niveles del factor concentración fueron
similares estadísticamente, asumiendo que 300 ppm y 600 ppm no
tienen efecto sobre el diámetro del tallo de limonium, al igual que el
factor número de aplicaciones. Sin embargo, se puede observar que el
tratamiento que no se aplicó AG 3 (testigo) muestra un diámetro
mayor (cuadro 6) con respecto a los que se aplicó AG 3 ,donde se
reduce el diámetro mientras se incrementa la concentración.
En general no es una variable medida en otros estudios de limonium y
no se encontró información que respalden estos resultados en el
mismo género, sin embargo, se está considerando otros cultivos para
poder respaldar los resultados.
Los resultados concuerdan con lo postulado porPascale y Paradiso
(2007) quienes determinaron que en tratamientos con ácido giberélico
en cala (Zantedeschiaaethiopica L. )aumenta el número de tallos
mientras se incrementa la dosis, sin embargo, modifica ligeramente
las características biométricas de los tallos cortados, con una
reducción en el diámetro de tallo en comparación con el testigo no
tratado.
Los resultados también concuerdan conBahamonde (2006), que
encontró que el diámetro basal del tallo de cala ( Zantedeschiaspp. )
no se vio afectado significativamente por los distintos tratamientos
de AG3 .
Martínez y Esteva (s.f.) realizaron estudios en alcachofa bajo
diferentes tratamientos de AG 3 en cuanto a las dimensiones de los
capítulos no obtuvieron diferencias significativas entre los diferentes
niveles de AG 3 .
Estose debe probablemente a que los tratamientos que recibieron la
hormona al aumentar el número de tallos con respecto al testigo,
disminuyeron el diámetro de todos estos por competencia de
nutrientes.
46
IV.5. Peso de tallo
Según el ANVA (cuadro27 del anexo) se observa en su fuente de
variación; que el factor concentración, factor número de aplicaciones
y la interacción concentración x número de aplicaciones, no fueron
significativos estadísticamente, de igual manera para el contraste
factorial vs Testigo; este contraste es la comparación de los
tratamientos que tuvieron aplicación de ácido giberélico con el que
no lo tuvo.
En elcuadro7 se resumen los efectos principales de los factores en
estudio para el peso de tallo. Se puede observar que no existe
diferencia significativa entre los niveles de los dos factores en
estudio acorde a la prueba de significación de Duncan al 0,05 de
probabilidad.
Cuadro 7. Peso de tal lo (g) para dos concentraciones de AG 3 en diferente
número de aplicaciones foliares en l imonium ( Limonium altaica ) . Ica –
2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 36,27 30,27 33,27 a2 35,13 31,17 33,15 a3 31,23 31,20 31,22 a
Concentraciones 34,21 a 30,88 aTestigo 31,30 a C.V.= 10,59
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente
según la prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
El tratamiento que obtuvo el mayor peso de tallo fue el Tratamiento
A1B1 (Una aplicación a 300 ppm de AG 3) con 36,27 g mientras el
tratamiento que obtuvo el menor peso de tallo fue el Tratamiento
A2B1 (Una aplicación a 600 ppm de AG 3) con 30,27 g.
Se puede observar que los niveles del factor concentración fueron
similares estadísticamente, asumiendo que 300 ppm y 600 ppm no
tienen efecto sobre el peso del tallo de limonium, al igual que el
47
factor número de aplicaciones. Sin embargo, se puede observar que
los tratamientos al que se aplicaron 600 ppm muestran un peso menor
(cuadro 7) con respecto a los que se aplicó 300 ppm de AG 3 .Estos
resultados están muy relacionados con el diámetro de los tallos
registrados en la variable anterior, por lo que puede explicarse por
las mismas razones ya expuestas.
En general no es una variable medida en otros estudios de limonium y
no se encontró información que respalden estos resultados en el
mismo género, sin embargo, se está considerando otros cultivos para
poder respaldar los resultados.
Los resultados concuerdan con lo postulado por Bahamonde (2006)
donde determina que no existen diferencias estadísticamente
significativas en el peso de los tallos florales de cala
(Zantedeschiaspp. ).
Los resultados también concuerdan con Martínez y Esteva (2006),
quienes observaron una aparente reducción de peso con el incremento
de la concentración de AG 3 aplicado, lo cierto es que no se han
detectado diferencias significativas para el peso total o neto de los
capítulos de alcachofa.
El resultado difiere de lo encontrado por Naamni et al . (1980) quienes
determinaron que con la aplicación de 50 ppm de AG 3 sobre tallos de
cebolla incrementan el peso de los tallos florales.
IV.6. Rentabilidad neta
EL análisis de rentabilidad se resume en elcuadro 18 para todos los
tratamientos en estudio. Se ha considerado el rendimiento comercial
para efectos de evaluar el ingreso total. Luego del análisis la
rentabilidad neta alcanza su mayor expresión en el tratamiento A2B2
(Dos aplicaciones a 600 ppm de AG 3) con 127,50% seguido del
tratamiento A1B2 (Dos aplicaciones a 300 ppm) con 101,18% el
tratamiento de menor rentabilidad neta fue el testigo con -72,00%
48
seguido del tratamiento A2B3 (Tres aplicaciones a 600 ppm de AG 3)
con 72,42% para el presente ensayo, es decir, es necesario aplicar
AG3 para hacer del cultivo rentable. Por lo tanto, desde este punto de
vista el tratamiento que sobresale es el tratamiento A2B2 (Dos
aplicaciones a 600 ppm de AG 3).
49
Cuadro 8. Orden de aplicación de ácido giberélico de acuerdo a los tratamientos para dos concentraciones de AG 3 en
diferente número de aplicaciones foliares en l imonium ( Limonium altaica ) . Ica – 2009.
Cód. TratamientoA
Costo de producción
Rendimiento(ramos)
B Ingreso total
C Ingreso Neto
C/A %
Rentabilidad neta
B/A Relación
beneficio costo
T Sin aplicación de AG3 94630,26 4014,23 26493,89 -68136,38 -72,00 0,28A1B1 Una aplicación a 300 ppm 59038,95 15423,82 101797,20 42758,24 72,42 1,72A1B2 Dos aplicaciones a 300 ppm 64568,05 19681,58 129898,44 65330,40 101,18 2,01A1B3 Tres aplicaciones a 300 ppm 67625,14 19183,03 126607,98 58982,84 87,22 1,87A2B1 Una aplicación a 600 ppm 65235,15 17980,38 118670,51 53435,36 81,91 1,82A2B2 Dos aplicaciones a 600 ppm 73857,50 25458,10 168023,44 94165,94 127,50 2,27A2B3 Tres aplicaciones a 600 ppm 74538,08 21691,80 143165,88 68627,80 92,07 1,92
49
V . C O N C L U S I O N E S
Los resultados obtenidos en el presente estudio permiten concluir que:
- La mejor concentración de ácido giberélico es 600 ppm, para obtener el
mayor número de tallos florales.
- Dos o tres aplicaciones de ácido giberélico permiten obtener mayor
número de tallos florales.
- Aunque no existe diferencia significativa en la interacción, se puede
concluir que dos o tres aplicaciones a 600 ppm, permite obtener mejores
rendimientos en el cultivo de Limonium.
- El tratamiento A2B2 (Dos aplicaciones a 600 ppm de AG 3) alcanzó la
mayor rentabilidad.
50
V I . R E C O M E N D A C I O N E S
1. Para incrementar la producción comercial del cultivo de Limonium
altaicac.v.‘Maine blue’ en las condiciones de Ica se estima
conveniente realizar dos aplicaciones de ácido giberélico a una
concentración de 600 ppm.
2. Repetir el presente trabajo en otros cultivares de Limonium.
3. Se recomienda realizar trabajos de investigación en donde se estudien
más concentraciones de ácido giberélico, y diferente número de
aplicaciones, en otras zonas de cultivo para poder ampliar los
conocimientos en este cultivo.
51
B I B L I O G R A F Í A
1. ADEX. 2009. Crecen las exportaciones peruanas de flores. [En línea].
Consultado 20 oct. 2010 en
http://exportacionesdelperu.blogspot.com/2009/04/crecen-las-exportaciones-
peruanas-de.html
2. Aker, S. y Healy, W. 1999. Enterprise guide for Southern Maryland:
Producing cut flowers – General field crop management. [En línea].
Consultado 20 oct. 2010 en
http://extension.umd.edu/publications/pdfs/fs468.pdf
3. Alcaráz, F. 2008. La salinidad. Universidad de Murcia, España, 9 p. [En
línea]. Consultado 13 ene. 2010, en
http://ocw.um.es/ciencias/geobotanica/Material%20de%20clase/Teoria/
tema1.pdf
4. Anónimo. s.f. Efecto de la Radiación sobre las plantas. [En línea].
Consultado 18 oct. 2010 en
http://ocw.upm.es/ingenieria-agroforestal/climatologia-aplicada-a-la-
ingenieria-y-medioambiente/contenidos/tema-3/EFECTO-DE-LA-
RADIACION-SOBRE-LAS-PLANTAS.pdf
5. Azcón, J. y Talón, M. 2000. Fundamentos de fisiología vegetal. 1 ed. España.
McGraw-Hill Interamericana. 522 p.
6. Bahamonde, P. 2006. Efecto de la aplicación de reguladores de crecimiento
sobre híbridos de calas (Zantedeschiaspp.).Tesis Ingeniero Agrónomo.
Universidad Austral de Chile. Chile. 58 p. [En línea]. Consultado 14 nov.
2010, en http://orton.catie.ac.cr/cgi-bin/wxis.exe/?
IsisScript=BIBACL.xis&method=post&formato=2&cantidad=1&expresion=
mfn=034320
7. Bayer, D. 2009. La crisis del agua en Ica y como resolverla. 7 p. [En línea].
Consultado 10 jun. 2010 en
52
http://xa.yimg.com/kq/groups/15536342/128310172/name/Ica+AGUA+Crisis
8. Berry, W. 1970. Composition of salt secreted by salt glands of
Tamarixaphylla. Amer. Journal of Botany, 57. 1226-1230.
9. Berry, W. y Thomson, W. 1967. Composition of salt secreted by salt glands
of Tamarixaphylla. Canadian Journal of Botany, 45. 1774-5.
10. Bruwer, A. y Robbertse, P. 2003. Flowering of avocado (Perseaamericana
Mill.) as influenced by gibberellic acid treatments. V World Avocado
Congress. p. 227-330 [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.avocadosource.com/WAC5/Papers/WAC5_p227.pdf
11. Burge, G. et al. 2010. Postharvest characteristics of Limonium ‘Chorus
magenta’ inflorescences. Nueva Zelanda. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010
en http://pdfserve.informaworld.com/867771__920073955.pdf
12. Comexperu. s.f. Oportunidades para un comercio floreciente. [En línea].
Consultado 10 feb. 2009. En http://www.comexperu.org.pe/archivos
%5Crevista%5CAgosto07%5Cespecial2.pdf
13. COMTRADE. 2008. [En línea]. Consultado 18 nov. 2010, en
http://comtrade.un.org/
14. Chakravarti S. y Abraham, N. 1958. Effects of gibberellic acid on the
flowering of Sesamunindicum L. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.new.dli.ernet.in/rawdataupload/upload/insa/INSA_1/20005b71_8
9.pdf
15. Chomchalow, N. 2004. Flower forcing for cut flower production with special
reference to Thailand. P. 137-144. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.journal.au.edu/au_techno/2004/jan04/vol7num3_article07.pdf
16. Chudasama, R. y Thaker, V. 2007. Relationship between gibberellic acid and
growth parameters in developing seed and pod of pigeon pea. Brazilian
Journal of Plant Physiology. Vol 19. No 1. [En línea]. Consultado 20 oct.
53
2010 en http://www.cielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1677-
04202007000100005
17. Dalla, C. et al. s.f. Effects of low temperatures and gibberellic acid on
flowering of Limoniumgmelinii. IV International Symposium on Ven
floricultural crops. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.actahort.org/members/showpdf?booknrarnr=177_26
18. Dudley, S. y Cochrane, A. The alleviation of dormancy in the
Horticulturally-important Chamalaeciumuncinatum (Myrtaceae). [En línea].
Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.kew.org/msbp/scitech/publications/SCTSIP_digital_book/pdfs/
Chapter_29.pdf
19. Erben, M. 1978. Die CattungLimonium in Sudwestmediterranenraum. Mitt.
Bot. Stoatssamml. Munchen, 14, 361-631.
20. Exportapymes. s.f. Exportación de flores peruanas por más de US$ 2
millones en primer trimestre. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.exportapymes.com/comercio-exterior-america-esp/exportacion-
de-flores-peruanas-por-mas-de-us-2-millones-en-primer-trimestre/
21. Febles, R. y Pérez, E. 2004. Análisis Cariotípico de LimoniumMill sección
PterocladosBoiss. Subsección NobilesBoiss. (Plumbaginaceae). In Bot.
Macaronesica 25. Gran Canaria, p. 79-94 [En línea]. Consultado 13 ene.
2010, en http://www.step.es/jardcan/pdf/6_BOT.MAC.LIMONIUM5(3).pdf
22. Florisert S.A.C. Farm and Location. [En línea]. Consultado 10 jun. 2010 en
http://www.florisert.com/contenido/farm/farm_location.php
23. Golden State Bulb. 2009. Guidelines for cut-flower growers. California. [En
línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.goldenstatebulb.com/pdfs/Calla%20Cut%20Culture.pdf
24. Gómez, C. 1984. Hormonas vegetales. Madrid, Universidad Politécnica de
Madrid. 49 p.
54
25. Gómez, C. y Mora, J. 2004. Evaluación del efecto de dos extractos vegetales
(Equisetumbogotense y Urtica dioica) sobre el calibre y partidura de frutos
de cerezo (Prunusavium) c.v. Bing, como alternativa al uso de productos
comerciales, en Angol IX Región. Tesis Ingeniero Agrónomo. Universidad
Católica de Temuco. Chile. 59 p. [En línea]. Consultado 14 nov. 2010, en
http://biblioteca.uct.cl/tesis/cristian-gomez/tesis.pdf
26. González, A. etal. 1996. Introducción y diversificación de especies
ornamentales para flor cortada y complementos de flor en cultivo protegido:
desarrollo de nuevas técnicas de producción. Centro de Investigación y
Desarrollo Agroalimentario (CIDA). Murcia, p. 52-58 [En línea]. Consultado
10 jun. 2010 en http://www.inia.es/gcontrec/pub/acido_1161158350328.pdf
27. Halevy, A. 1983. La coltivazione of Gypsophila and Limoniumsinuatum in
Israel with particular regard to the regulation of blooming.
FloriculturaPesciatina, 26 (3), 41-44.
28. Harbaugh. B. y Green, W. 1979. Gibberellic acid (GA3) stimulates flowering
in CaladiumhortulanumBirdsey. HortScience 14, p.72-73 [En línea].
Consultado 20 oct. 2010 en http://gcrec.ifas.ufl.edu/Microsoft%20Word%20-
%20gibberellicacid.pdf
29. Henny, R. 1995. Stimulating flowering of ornamental aroid genera with
gibberellic acid: a review. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://mrec.ifas.ufl.edu/Foliage/Resrpts/rh_96_11.htm
30. Henny, R. et al. 2009. Tropical foliage plant development: Breeding
techniques for Anthurium and Spathiphyllum. [En línea]. Consultado 20 oct.
2010 en http://edis.ifas.ufl.edu/ep366
31. Highsun Express. 200. Lisianthus Cut flowers: Información cultural. [En
línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.highsun.com.au/files/2009%20Cult%20Notes/CN%20Cut
%20Flowers/cf-lisianthus-generic-cult-notes-2009.pdf
55
32. Hilverda B.V. sf. Directivas de cultivo. Holanda, 10 p. [En línea].
Consultado 13 ene. 2010, en
http://www.horticom.com/pd/images/pdf/73179.pdf
33. Hurtado, J. 2007. Exportaciones de flores. [En línea]. Consultado 20 oct.
2010 en http://actualidaddelperu.blogspot.com/2007/02/exportacin-de-
flores.html
34. Hutado, D. y Merino, M. 2000. Cultivo de tejidos vegetales. 1ed. México.
Trillas. 232 p.
35. Ipach, U. 1987. Blattalchen and statice. DutscherCartenbau, 44, 2645.
36. Jaquith, N. Flowering Bamboo presents an opportunity. Bamboo Garden. [En
línea]. Consultado 20 oct. 2010 en http://www.bamboogarden.com/when
%20bamboo%20flowers.htm
37. Johnson, K. 2010. Photoperiod induction, Gibberellic acid, mulch and Row
cover effects on fres cut flower production of three Rudbeckiahirta cultivars.
NDLTL Unión Catalog. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://biblioteca.universia.net/html_bura/ficha/params/id/50934946.html
38. Joyce, G. 2009. Selecting and using plant growth regulators on Floricultural
crops. Universidad de Virginia. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://pubs.ext.vt.edu/430/430-102/430-102.pdf
39. Lozada, C. 2008. Evolución y Potencial de los productos agrícolas de
Exportación. Perú. [En línea]. Consultado 18 nov. 2010, en
http://www.adexperu.org.pe/agro/1-SCEX2007_Carlos_Lozada.pdf
40. Marrero, Á. y Almeida, R. 2003. Novedades taxonómicas del género
LimoniumMill. Subsecc. Nobiles en Gran Canaria (islas Canarias)
(Plumbaginaceae-Staticoideae). InVieraea vol. 31. Santa Cruz de Tenerife,
p. 391 – 406 [En línea]. Consultado 13 ene. 2010, en
www.museosdetenerife.com/file_item.ph
56
41. Martínez, J. y Esteva, J. s.f. Aplicación de ácido giberélico como estimulante
de la precocidad en el cultivar de alcachofa de polinización abierta Lorca.
42. Matsumoto, T. 2006. Gibberellic acid and benzyladenine promote early
flowering and vegetative growth of Miltoniopsis orchid hybrids. HortScience
41, p. 131-135 [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://ddr.nal.usda.gov/bitstream/10113/18107/1/IND43777821.pdf
43. Moe, R. y Berland, M. s.f. Effect of various corm treatments on flowering of
LiatrisspicataWilld. IV International Symposium on Flower Bulbs. [En
línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.actahort.org/books/177/177_26.htm
44. Naamni, F., Rabinowitch, H. y Kedar, N. 1980. The effect of GAS aplication
on flowering and seed production in onion. Journal American Society for
Horticultural Science 105(2): 164-167.
45. Niculcar, R. 1999. Efecto de la aplicación de un producto bioestimulante a
base de aminoácidos, ácido giberélico y una solución de macro y micro
elementos sobre la cuaja y retención de frutos de palto (Persea americana
Mill.) cv. Hass en la zona de Quillota. Universidad Católica de Valparaíso.
Chile. 91 p. [En línea]. Consultado 13 nov. 2010, en
http://www.avocadosource.com/papers/Chile_Papers_A-Z/M-N-O/NiculcarR
oberto1999.pdf
46. Ogawa, Y. et al. 1993. Flower Induction of Spathiphyllumpatinii by
gibberellins A3 and miniaturization of flowering plants. [En línea].
Consultado 20 oct. 2010 en
http://rms2.agsearch.agropedia.affrc.go.jp/contents/JASI/pdf/academy/52-
0637.pdf
47. Ormeño, J. 2005. Botánica sistemática. [En línea]. Consultado 18 oct. 2010
en http://botasistema.blogspot.com/
48. Oviedo, Y. y Guevara, E. 1988. Propagación in vitro de la
EstaticiaLimoniumsinuatum cv. ‘Midnigth Blue’. In Agronomía Costarricense
57
12. Costa rica, p. 113 – 122 [En línea]. Consultado 13 ene. 2010, en
http://www.mag.go.cr/rev_agr/v12n01_113.pdf
49. Paredes, L. 2010. Perú exportaría 250 tm de flores de cera en el 2010.
Agencia agraria de noticias. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.agraria.pe/boletines/abril2010/28/index.html
50. Pascale, S. y Paradiso, R. 2007. Influencia del régimen térmico y del AG3
sobre Zantedeschiaaethiopica L. Universidad de Nápoles Federico II. Italia.
[En línea]. Consultado 13 nov. 2010, en
http://www.inta.gov.ar/sanpedro/info/Bflori/041_bf.htm
51. Prat, L. et al. 2007. Effect of plant growth regulators on floral
differentiation and seed production in Jojoba (Simmondsiachinensis(Link)
Schneider). Chile. [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://captura.uchile.cl/jspui/bitstream/2250/10562/1/131605_C11_1.pdf
52. PROMPERU. 2008. [En línea]. Consultado 18 nov. 2010,
enhttp://export.promperu.gob.pe/PROMPEX/Portal/Profile/DefaultProfile.asp
x
53. Rojas, G. 1993. Fisiología vegetal aplicada. 4 ed. México. Nueva Editorial
Interamericana. 275 p.
54. Rojas, M. y Ramírez, H. 1991. Control hormonal del desarrollo de las
plantas. Fisiología-Tecnología y experimentación. México, Editorial Limusa
S.A. 239 p.
55. Salisbury, F. y Ross, C. 1992. Fisiología vegetal. México, Grupo Editorial
Iberoaméricana. 760 p.
56. Sánchez, J. 1999. Diagnóstico de suelos y aguas en la producción de cítricos
en la costa central: problemas actuales y soluciones. In Seminario
Internacional de cítricos (1999, Lima, Perú), [En línea]. Consultado 10 feb.
2009, en http://www.fertitec.com/pdf/diagnostico%20de%20suelos%20y
%20aguas%20en%20la%20produccion%20de%20citricos.pdf
58
57. Serra, G. 1979. AspettitecnicidellacoltivazionedelloStatice. ColtureProtette,
8 (3), 43-46.
58. Semeniuk, P. y Krizek, T. 1972. Long days and cool night temperature
increase flowering of greenhouse grown Limonium cultivars. HortScience,7
(3), 293.
59. Semeniuk, P. y Krizek, T. 1973. Influence of germination and growing
temperature on flowering of six cultivars of annual statice ( Limoniumcv.).
Journal of American Society of Horticultural Science, 98(2), 140-142.
60. Taiz, L y Zeiger,E. 1991. Plants Phihiology. Redwood City, California.
TheBenjamin/Cummings. 559 p.
61. Tjia. B. 1985. Hybrid calla Lilies: A potential new crop for Florida. [En
línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://www.fshs.org/Proceedings/Password%20Protected/1985%20Vol.
%2098/127-130%20(TJIA).pdf
62. Topoonyanont, N. et al. 1984. Use of gibberellic acid to accelerate flowering
of Statice [(Limoniumsinuata) at Maejo Inst., Chiang Mai, Thailand]. [En
línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://agris.fao.org/agris-search/search/display.do?f=1986/TH/TH86019.xml;
TH8520303
63. Vakalounakis, D. y Malathrakis, N. 1987. Ocurrence of Uromycessavulescui
on Statice (Limoniumsinuatum) in Crete, Greece. Plant Pathology. 36, 600-
601.
64. Valencia, S. y Delgado, A. 2003. Los tricomas foliares en la caracterización
de un grupo de especies del género Quercus, Sección Lobatae (Fagaceae).
Universidad Nacional Autónoma de México, Serie botánica 74, p. 5-15 [En
línea]. Consultado 18 oct. 2010 en
http://www.biblioteca.org.ar/libros/90682.pdf
65. Wilfret, G. y Green, J. 1975. Optimungibberellic acid (GA3) concentration to
accelerate flowering and increase yield of Statice. [En línea]. Consultado 20
59
oct. 2010 en
http://www.fshs.org/Proceedings/Password%20Protected/1975%20Vol.
%2088/527-530%20(WILFRET).pdf
66. Yusef, S. y Elkiey, T. 1995. Effect of Chlormequat and GA3 on growth and
flowering of Calla (Zantedeschiarehmannii). Saudi Arabia. King
SaudUniversity, vol. 7, p. 271-282 [En línea]. Consultado 20 oct. 2010 en
http://digital.library.ksu.edu.sa/V7M97R1425.pdf
60
A N E X O S
1) Número de tallos
Cuadro 1.Análisis de varianza para el número de tal los.
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 2,8229 1,4115 0,4859 3,89 N.STratamiento 6 193,6476 32,2746 11,1108 3,00 *
A 1 27,8756 27,8756 9,5964 4,75 *B 2 24,8378 12,4189 4,2753 3,89 *
A*B 2 4,8178 2,4089 0,8293 3,89 N.SFact.vs T 1 136,6146 136,6146 47,0306 4,75 *Error exp. 12 34,8571 2,9048 Total 20 231,3257 C.V. 21
Cuadro 2.Promedios de número de tallos para dos concentraciones de AG 3 en
diferente número de aplicaciones foliares en limonium(Limonium altaica). Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 6,27 08,80 07,54 b2 8,33 12,07 10,20 a3 9,13 10,33 09,73 a
Concentraciones 7,91 b 10,40 aTestigo 1,87 c
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
2) Longitud de tallo
Cuadro 3.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 35 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 23,8467 11,9234 2,9520 3,89 N.STratamiento 6 95,3295 15,8883 3,8979 3,00 *
A 1 5,4450 5,4450 1,3358 4,75 N.SB 2 3,4877 1,7439 0,4278 3,89 N.S
A*B 2 30,2633 15,1317 3,7123 3,89 N.SFact. vs T 1 56,1334 56,1334 13,7714 4,75 *Error exp. 12 48,9133 4,0761 Total 20 168,0895 C.V. 30,11
61
Cuadro 4. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 35 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 5,90 7,60 6,75 a2 5,73 9,67 7,70 a3 8,83 6,50 7,67 a
Concentraciones 6,82 a 7,93 aTestigo 2,7 b
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro 5.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 40 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 12,9838 6,4919 1,1872 3,89 N.STratamiento 6 302,2581 50,3764 9,2129 3,00 *
A 1 1,3339 1,3339 0,2439 4,75 N.SB 2 10,6411 5,3206 0,9730 3,89 N.S
A*B 2 53,5744 26,7872 4,8989 3,89 *Fact. vs T 1 236,7087 236,7087 43,2897 4,75 *Error exp. 12 65,6162 5,4680 Total 20 380,8581
C.V. 20,12
62
Cuadro 6.Efectos simples para los promedios de longitud de tal lo (cm) a los 40
días de la primera aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente
número de aplicaciones foliares en l imonium ( Limonium altaica ) . Ica – 2009.
Concentración Aplicaciones Media *A1 B1 11,30 bA1 B2 10,70 bA1 B3 16,17 aA2 B1 14,40 aA2 B2 13,57 aA2 B3 11,83 aA1 B1 11,30 aA2 B1 14,40 aA1 B2 10,70 aA2 B2 13,57 aA1 B3 16,17 aA2 B3 11,83 b
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro 7.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 45 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 19,7295 9,8648 2,4206 3,89 N.STratamiento 6 604,4790 100,7465 24,7211 3,00 *
A 1 7,7356 7,7356 1,8982 4,75 N.SB 2 21,3344 10,6672 2,6175 3,89 N.S
A*B 2 58,5278 29,2639 7,1808 3,89 *Fact. vs T 1 516,8812 516,8812 126,8322 4,75 **Error exp. 12 48,9038 4,0753 Total 20 673,1124
C.V. 10,4
63
Cuadro 8.Efectos simples para los promedios de longitud de tal lo (cm) a los 45
días de la primera aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente
número de aplicaciones foliares en l imonium ( Limonium altaica ) . Ica – 2009.
Concentración Aplicaciones Media *A1 B1 20,27 bA1 B2 17,60 bA1 B3 24,50 aA2 B1 22,97 aA2 B2 22,47 aA2 B3 20,87 aA1 B1 20,27 aA2 B1 22,97 aA1 B2 17,60 bA2 B2 22,47 aA1 B3 24,50 aA2 B3 20,87 b
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro 9.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 50 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 24,9971 12,4986 1,5178 3,89 N.STratamiento 6 452,1181 75,3530 9,1507 3,00 *
A 1 2,8800 2,8800 0,3497 4,75 N.SB 2 36,0833 18,0417 2,1909 3,89 N.S
A*B 2 15,6433 7,8217 0,9498 3,89 N.SFact. vs T 1 397,5114 397,5114 48,2728 4,75 *Error exp. 12 98,8162 8,2347 Total 20 575,9314
C.V. 9,12
64
Cuadro 10. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 50 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 34,23 34,40 34,32 a2 29,57 32,90 31,24 a3 34,70 33,60 34,15 a
Concentraciones 32,84 a 33,63 aTestigo 20,80 b
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro11.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 55 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 23,1617 11,5809 0,5323 3,89 N.STratamiento 6 406,6229 67,7705 3,1149 3,00 *
A 1 9,5339 9,5339 0,4382 4,75 N.SB 2 95,2133 47,6067 2,1881 3,89 N.S
A*B 2 10,2578 5,1289 0,2357 3,89 N.SFact.vs T 1 291,6578 291,6578 13,4054 4,75 *Error exp. 12 261,0800 21,7567 Total 20 690,9095 C.V. 11,9
Cuadro 12. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 55 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 43,57 43,47 43,52 a2 36,13 39,63 37,88 a3 40,27 41,23 40,75 a
Concentraciones 39,99 a 41,44 aTestigo 30,07 b
65
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro 13.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 60 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 44,6009 22,3005 1,1219 3,89 N.STratamiento 6 195,9429 32,6572 1,6430 3,00 N.S
A 1 3,0422 3,0422 0,1531 4,75 N.SB 2 128,4477 64,2239 3,2310 3,89 N.S
A*B 2 12,8844 6,4422 0,3241 3,89 N.SFact. vs T 1 51,5584 51,5584 2,5939 4,75 N.SError exp. 12 238,5257 19,8771 Total 20 479,0695 C.V. 8,67
Cuadro 14. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 60 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 56,27 54,93 55,60 a2 47,73 50,53 49,13 a3 51,00 52,00 51,50 a
Concentraciones 51,67 a 52,49 aTestigo 47,60 a
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro 15.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 65 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 70,8067 35,4034 1,8649 3,89 N.STratamiento 6 118,3333 19,7222 1,0389 3,00 N.S
A 1 3,8272 3,8272 0,2016 4,75 N.SB 2 91,3900 45,6950 2,4070 3,89 N.S
A*B 2 7,6811 3,8406 0,2023 3,89 N.SFact. vs T 1 15,4350 15,4350 0,8131 4,75 N.SError exp. 12 227,8067 18,9839
66
Total 20 416,9467 C.V. 7,07
Cuadro 16. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 65 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 65,20 64,53 64,87 a2 58,10 60,63 59,37 a3 61,27 62,17 61,72 a
Concentraciones 61,52 a 62,44 aTestigo 59,53 a
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro 17.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 70 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 107,9267 53,9634 4,6513 3,89 *Tratamiento 6 222,6057 37,1010 3,1979 3,00 *
A 1 9,8272 9,8272 0,8471 4,75 N.SB 2 4,9544 2,4772 0,2135 3,89 N.S
A*B 2 1,3344 0,6672 0,0575 3,89 N.SFact. vs T 1 206,4896 206,4896 17,7983 4,75 *Error exp. 12 139,2200 11,6017 Total 20 469,7524 C.V. 4,72
Cuadro 18. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 70 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 70,80 72,30 71,55 b2 69,90 70,70 70,30 b3 69,60 71,73 70,67 b
Concentraciones 70,1 b 71,58 bTestigo 79,80 a
67
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro 19.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 75 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 50,8295 25,4148 4,7794 3,89 *Tratamiento 6 253,8724 42,3121 7,9571 3,00 *
A 1 0,0356 0,0356 0,0067 4,75 N.SB 2 11,8877 5,9439 1,1178 3,89 N.S
A*B 2 9,3344 4,6672 0,8777 3,89 N.SFact.vs T 1 232,6146 232,6146 43,7448 4,75 **Error exp. 12 63,8105 5,3175 Total 20 368,5124 C.V. 3,07
Cuadro 20. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 75 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 75,63 74,00 74,82 b2 73,17 72,70 72,94 b3 72,40 74,23 73,32 b
Concentraciones 73,73 b 73,64 bTestigo 83,20 a
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro 21.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 80 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 30,4581 15,2291 4,6443 3,89 *Tratamiento 6 235,5114 39,2519 11,9705 3,00 *
A 1 2,4200 2,4200 0,7380 4,75 N.SB 2 9,0678 4,5339 1,3827 3,89 N.S
A*B 2 15,2233 7,6117 2,3213 3,89 N.SFact. vs T 1 208,8003 208,8003 63,6771 4,75 **Error exp. 12 39,3486 3,2791
68
Total 20 305,3181 C.V. 2,39
Cuadro 22. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 80 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 76,27 74,17 75,22 b2 74,47 72,50 73,49 b3 73,53 75,40 74,47 b
Concentraciones 74,76 b 74,02 bTestigo 83,40 a
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Cuadro23.Análisis de varianza para la longitud de tal lo (cm) a los 85 días de la
primera aplicación de AG 3 .
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 24,4467 12,2234 3,8431 3,89 N.STratamiento 6 211,3990 35,2332 11,0777 3,00 *
A 1 0,8022 0,8022 0,2522 4,75 N.SB 2 8,9544 4,4772 1,4077 3,89 N.S
A*B 2 12,4411 6,2206 1,9558 3,89 N.SFact. vs T 1 189,2013 189,2013 59,4868 4,75 *Error exp. 12 38,1667 3,1806 Total 20 274,0124 C.V. 2,34
Cuadro 24. Promedios de longitud de tal lo (cm) a los 85 días de la primera
aplicación para dos concentraciones de AG 3 en diferente número de aplicaciones
foliares en l imonium (Limonium altaica ) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 76,73 74,70 75,72 b2 74,57 73,47 74,02 b3 74,20 76,07 75,14 b
Concentraciones 75,17 b 74,75 bTestigo 83,53 a
69
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
3) Diámetro de tallo
Cuadro 25.Análisis de varianza para el diámetro de tal lo (mm).
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 0,0401 0,0201 0,2451 3,89 N.STratamiento 6 0,9294 0,1549 1,8936 3,00 N.S
A 1 0,0697 0,0697 0,8521 4,75 N.SB 2 0,5297 0,2649 3,2378 3,89 N.S
A*B 2 0,0110 0,0055 0,0672 3,89 N.SFact. vs T 1 0,3190 0,3190 3,8998 4,75 N.SError exp. 12 0,9821 0,0818 Total 20 1,9516 C.V. 4,62
Cuadro 26. Promedios de diámetro de tal lo (mm) para dos concentraciones de
AG 3 en diferente número de aplicaciones foliares en l imonium ( Limonium
altaica) . Ica – 2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 6,41 6,24 6,33 a2 6,28 6,13 6,21 a3 5,94 5,89 5,92 a
Concentraciones 6,21 a 6,09 aTestigo 6,50 a
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
4) Peso de tallo
Cuadro 27.Análisis de varianza para el peso de tal lo (g).
F.V G.L S.C C.M F.C F.T Sig.
Bloque 2 68,9867 34,4934 2,9346 3,89 N.STratamiento 6 97,4933 16,2489 1,3824 3,00 N.S
A 1 50,0000 50,0000 4,2539 4,75 N.SB 2 15,9078 7,9539 0,6767 3,89 N.S
A*B 2 27,6033 13,8017 1,1742 3,89 N.SFact. vs T 1 3,9822 3,9822 0,3388 4,75 N.S
70
Error exp. 12 141,0467 11,7539 Total 20 307,5267 C.V. 10,59
Cuadro 26. Promedios de peso de tal lo (g) para dos concentraciones de AG 3 en
diferente número de aplicaciones foliares en l imonium ( Limonium altaica ) . Ica –
2009.
N° aplicacionesConcentración de AG 3
Aplicaciones300 ppm 600 ppm
1 36,27 30,27 33,27 a2 35,13 31,17 33,15 a3 31,23 31,20 31,22 a
Concentraciones 34,21 a 30,88 aTestigo 31,30 a
*Medias seguidas con letras iguales no son diferentes estadíst icamente según la
prueba de Duncan al 0,05 de probabil idad
Costos Iniciales de inversión para la Producción de Limonium
Estimados/ha
RUBRO UNID.CAN
T.C.UNI
T. C.TOT. TOTAL Sin AG3*Con
AG3**1.- PREPARACIÓN DEL TERRENO 9487,50 2371,88 790,631.1.- Aradura h/maq 2 65,00 130,00 1.2.- Planchado h/maq 1,5 65,00 97,50 1.2.- Armado de camas h/maq 4 65,00 260,00 1.3.- Compost t 30 300,00 9000,00 2.- TRASPLANTE 194743,36 48685,84 16228,612.1.- Plantines unidad 21600 9 194400,00 2.2.- Trasplante Jornal 16 21,46 343,36 3.- MALLA y SOPORTES 26980,00 6745,00 2248,333.1.- Fierro de constr. varilla 160 28 4480,00
3.2.- Malla y soportes 22500,00 TOTAL DE COSTOS INICIALES 231210,86 57802,72 19267,57* En cuatro años se produce 4 campañas, una campaña por año; ** En cuatro años se producen 12 campañas, tres campañas por año.
71
Costos de Producción Estimados/haTratamiento T: Testigo
RUBRO UNIDAD CANT. C.UNIT. C.TOT. SUBTOTALA.- COSTOS DIRECTOS1.- PREPARACIÓN DEL TERRENO 2371,882.- MALLA y SOPORTES 6745,003.- PLANTACIÓN 48685,844.- FERTIRRIEGO 8219,42 4.1.- Fertilizantes t 7073 4.2.- Agua m3 3150 0,18 567 4.3.- Aplicación Jornal 27 21,46 579,42 5.- FERTILIZACION FOLIAR 3516,90 5.1.- Fertilizantes foliares l 360,00 5.2.- Fertilizantes foliares kg 426,90 5.3.- Aplicación h/maq 42 65,00 2730 6.- LABORES CULTURALES 1314,68 6.1.- Deshierbos Jornal 4 21,46 85,84 6.2.- Limpieza de campo Jornal 6 21,46 128,76
6.3.- Deshoje Jornal 30 21,46 643,80 6.4.- Desbrote Jornal 3 21,46 64,38 6.5.- Enrafiado Jornal 12 21,46 257,52 6.6.- Rafia kg 10 7,00 70,00 6.7.- Guiado de tallos Jornal 3 21,46 64,38 7.- CONTROL FITOSANITARIO 4314,70 7.1.- Insecticida kg 13 181,90 2364,70 7.2.- Aplicación h/maq 30 65,00 1950,00 8.- COSECHA 2278,98 8.1.- Cosecha Jornal 13 21,46 278,98 8.2.- Tiosulfato de plata l 4 500,00 2000 9.- HORMONA 0 9.1.- Ácido giberélico l 0 163,20 0 9.2.- Aplicación Jornal 0 21,46 0 Imprevisto 5% 3872,37 77447,40 Leyes Sociales 46% M.O. 967,42 Sub total Descripción 77447,40 Total costos Directos 82287,187 B.- COSTOS INDIRECTOS Gastos administrativos 5% 4114,35934 Gastos Financieros 10% 8228,71868 Total costos Indirectos 12343,078
TOTAL COSTOS DE PRODUCCIÓN 94630,26482
Costos de Producción Estimados/haTratamiento A1B1: Una aplicación a 300 ppm
72
RUBRO UNIDAD CANT. C.UNIT. C.TOT. SUBTOTALA.- COSTOS DIRECTOS1.- PREPARACIÓN DEL TERRENO 790,632.- MALLA y SOPORTES 2248,333.- PLANTACIÓN 16228,614.- FERTIRRIEGO 8219,42 4.1.- Fertilizantes t 7073,00
4.2.- Agua m3 3150 0,18 567,00 4.3.- Aplicación Jornal 27 21,46 579,42 5.- FERTILIZACION FOLIAR 3516,90 5.1.- Fertilizantes foliares l 360,00 5.2.- Fertilizantes foliares kg 426,90 5.3.- Aplicación h/maq 42 65,00 2730,00 6.- LABORES CULTURALES 1379,06 6.1.- Deshierbos Jornal 4 21,46 85,84 6.2.- Limpieza de campo Jornal 6 21,46 128,76
6.3.- Deshoje Jornal 30 21,46 643,80 6.4.- Desbrote Jornal 6 21,46 128,76 6.5.- Enrafiado Jornal 12 21,46 257,52 6.6.- Rafia kg 10 7,00 70,00 6.7.- Guiado de tallos Jornal 3 21,46 64,38 7.- CONTROL FITOSANITARIO 6238,00 7.1.- Insecticida kg 20 181,90 3638,00 7.2.- Aplicación h/maq 40 65,00 2600,00 8.- COSECHA 7662,05 8.1.- Cosecha Jornal 42,5 21,46 912,05 8.2.- Tiosulfato de plata l 13,5 500,00 6750,00 9.- HORMONA 1364,84 9.1.- Ácido giberélico l 8,1 163,20 1321,92 9.2.- Aplicación Jornal 2 21,46 42,92 Imprevisto 5% 2382,92 47647,84 Leyes Sociales 46% M.O. 1307,99 Sub total Descripción 47647,84 Total costos Directos 51338,219 B.- COSTOS INDIRECTOS Gastos administrativos 5% 2566,91095 Gastos Financieros 10% 5133,8219 Total costos Indirectos 7700,73285
TOTAL COSTOS DE PRODUCCIÓN 59038,95185
73
Costos de Producción Estimados/haTratamiento A1B2: Dos aplicaciones a 300 ppm
RUBRO UNIDAD CANT. C.UNIT. C.TOT. SUBTOTALA.- COSTOS DIRECTOS1.- PREPARACIÓN DEL TERRENO 790,632.- MALLA y SOPORTES 2248,333.- PLANTACIÓN 16228,614.- FERTIRRIEGO 8219,42 4.1.- Fertilizantes t 7073,00
4.2.- Agua m3 3150 0,18 567,00 4.3.- Aplicación Jornal 27 21,46 579,42 5.- FERTILIZACION FOLIAR 3516,90 5.1.- Fertilizantes foliares l 360,00 5.2.- Fertilizantes foliares kg 426,90 5.3.- Aplicación h/maq 42 65,00 2730,00 6.- LABORES CULTURALES 1529,28 6.1.- Deshierbos Jornal 4 21,46 85,84 6.2.- Limpieza de campo Jornal 6 21,46 128,76
6.3.- Deshoje Jornal 30 21,46 643,80 6.4.- Desbrote Jornal 12 21,46 257,52 6.5.- Enrafiado Jornal 12 21,46 257,52 6.6.- Rafia kg 10 7,00 70,00 6.7.- Guiado de tallos Jornal 4 21,46 85,84 7.- CONTROL FITOSANITARIO 6563,00 7.1.- Insecticida kg 20 181,90 3638,00 7.2.- Aplicación h/maq 45 65,00 2925,00 8.- COSECHA 10201,76 8.1.- Cosecha Jornal 56 21,46 1201,76 8.2.- Tiosulfato de plata l 18 500,00 9000,00 9.- HORMONA 2721,096 9.1.- Ácido giberélico l 16.2 163,20 2643,84 9.2.- Aplicación Jornal 3,6 21,46 77,256 Imprevisto 5% 2600,9513 52019,026 Leyes Sociales 46% M.O. 1526,15 Sub total Descripción 52019,026 Total costos Directos 56146,127 B.- COSTOS INDIRECTOS Gastos administrativos 5% 2807,30633 Gastos Financieros 10% 5614,61267 Total costos Indirectos 8421,919
TOTAL COSTOS DE PRODUCCIÓN 64568,04566
74
Costos de Producción Estimados/haTratamiento A1B3: Tres aplicaciones a 300 ppm
RUBRO UNIDAD CANT. C.UNIT. C.TOT. SUBTOTALA.- COSTOS DIRECTOS 1.- PREPARACIÓN DEL TERRENO 790,632.- MALLA y SOPORTES 2248,333.- PLANTACIÓN 16228,614.- FERTIRRIEGO 8219,42 4.1.- Fertilizantes t 7073,00
4.2.- Agua m3 3150 0,18 567,00 4.3.- Aplicación Jornal 27 21,46 579,42 5.- FERTILIZACION FOLIAR 3516,90 5.1.- Fertilizantes foliares l 360,00 5.2.- Fertilizantes foliares kg 426,90 5.3.- Aplicación h/maq 42 65,00 2730,00 6.- LABORES CULTURALES 1700,96 6.1.- Deshierbos Jornal 4 21,46 85,84 6.2.- Limpieza de campo Jornal 6 21,46 128,76
6.3.- Deshoje Jornal 30 21,46 643,80 6.4.- Desbrote Jornal 20 21,46 429,20 6.5.- Enrafiado Jornal 12 21,46 257,52 6.6.- Rafia kg 10 7,00 70,00 6.7.- Guiado de tallos Jornal 4 21,46 85,84 7.- CONTROL FITOSANITARIO 6563,00 7.1.- Insecticida kg 20 181,90 3638,00 7.2.- Aplicación h/maq 45 65,00 2925,00 8.- COSECHA 11059,06 8.1.- Cosecha Jornal 61 21,46 1309,06 8.2.- Tiosulfato de plata l 19,5 500,00 9750,00 9.- HORMONA 4083,79 9.1.- Ácido giberélico l 24,3 163,20 3965,76 9.2.- Aplicación Jornal 5,5 21,46 118,03 Imprevisto 5% 2720,535 54410,70 Leyes Sociales 46% M.O. 1673,24 Sub total Descripción 54410,70 Total costos Directos 58804,471 B.- COSTOS INDIRECTOS Gastos administrativos 5% 2940,22356 Gastos Financieros 10% 5880,44712 Total costos Indirectos 8820,67068
TOTAL COSTOS DE PRODUCCIÓN 67625,14188
75
Costos de Producción Estimados/haTratamiento A2B1: Una aplicación a 600 ppm
RUBRO UNIDAD CANT. C.UNIT. C.TOT. SUBTOTALA.- COSTOS DIRECTOS 1.- PREPARACIÓN DEL TERRENO 790,632.- MALLA y SOPORTES 2248,333.- PLANTACIÓN 16228,614.- FERTIRRIEGO 8219,42 4.1.- Fertilizantes t 7073,00
4.2.- Agua m3 3150 0,18 567,00 4.3.- Aplicación Jornal 27 21,46 579,42 5.- FERTILIZACION FOLIAR 3516,90 5.1.- Fertilizantes foliares l 360,00 5.2.- Fertilizantes foliares kg 426,90 5.3.- Aplicación h/maq 42 65,00 2730,00 6.- LABORES CULTURALES 1529,28 6.1.- Deshierbos Jornal 4 21,46 85,84 6.2.- Limpieza de campo Jornal 6 21,46 128,76
6.3.- Deshoje Jornal 30 21,46 643,80 6.4.- Desbrote Jornal 12 21,46 257,52 6.5.- Enrafiado Jornal 12 21,46 257,52 6.6.- Rafia kg 10 7,00 70,00 6.7.- Guiado de tallos Jornal 4 21,46 85,84 7.- CONTROL FITOSANITARIO 6563,00 7.1.- Insecticida kg 20 181,90 3638,00 7.2.- Aplicación h/maq 45 65,00 2925,00 8.- COSECHA 10776,87 8.1.- Cosecha Jornal 59,5 21,46 1276,87 8.2.- Tiosulfato de plata l 19 500,00 9500,00 9.- HORMONA 2682,468 9.1.- Ácido giberélico l 16,2 163,20 2643,84 9.2.- Aplicación Jornal 1,8 21,46 38,628 Imprevisto 5% 2627,7754 52555,508 Leyes Sociales 46% M.O. 1542,93 Sub total Descripción 52555,508 Total costos Directos 56726,215 B.- COSTOS INDIRECTOS Gastos administrativos 5% 2836,31072 Gastos Financieros 10% 5672,62145 Total costos Indirectos 8508,93217
TOTAL COSTOS DE PRODUCCIÓN 65235,14665
Costos de Producción Estimados/haTratamiento A2B2: Dos aplicaciones a 600 ppm
76
RUBRO UNIDAD CANT. C.UNIT. C.TOT. SUBTOTALA.- COSTOS DIRECTOS 1.- PREPARACIÓN DEL TERRENO 790,632.- MALLA y SOPORTES 2248,333.- PLANTACIÓN 16228,614.- FERTIRRIEGO 8219,42 4.1.- Fertilizantes t 7073,00
4.2.- Agua m3 3150 0,18 567,00 4.3.- Aplicación Jornal 27 21,46 579,42 5.- FERTILIZACION FOLIAR 3516,90 5.1.- Fertilizantes foliares l 360,00 5.2.- Fertilizantes foliares kg 426,90 5.3.- Aplicación h/maq 42 65,00 2730,00 6.- LABORES CULTURALES 1700,96 6.1.- Deshierbos Jornal 4 21,46 85,84 6.2.- Limpieza de campo Jornal 6 21,46 128,76
6.3.- Deshoje Jornal 30 21,46 643,80 6.4.- Desbrote Jornal 20 21,46 429,20 6.5.- Enrafiado Jornal 12 21,46 257,52 6.6.- Rafia kg 10 7,00 70,00 6.7.- Guiado de tallos Jornal 4 21,46 85,84 7.- CONTROL FITOSANITARIO 6563,00 7.1.- Insecticida kg 20 181,90 3638,00 7.2.- Aplicación h/maq 45 65,00 2925,00 8.- COSECHA 14759,72 8.1.- Cosecha Jornal 82 21,46 1759,72 8.2.- Tiosulfato de plata l 26 500,00 13000,00 9.- HORMONA 5364,936 9.1.- Ácido giberélico l 32,4 163,20 5287,68 9.2.- Aplicación Jornal 3,6 21,46 77,256 Imprevisto 5% 2969,6253 59392,506 Leyes Sociales 46% M.O. 1861,78 Sub total Descripción 59392,506 Total costos Directos 64223,915 B.- COSTOS INDIRECTOS Gastos administrativos 5% 3211,19575 Gastos Financieros 10% 6422,39151 Total costos Indirectos 9633,58726
TOTAL COSTOS DE PRODUCCIÓN 73857,50232
Costos de Producción Estimados/haTratamiento A2B3: Tres aplicaciones a 600 ppm
RUBRO UNIDAD CANT. C.UNIT. C.TOT. SUBTOTALA.- COSTOS DIRECTOS
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1.- PREPARACIÓN DEL TERRENO 790,632.- MALLA y SOPORTES 2248,333.- PLANTACIÓN 16228,614.- FERTIRRIEGO 8219,42 4.1.- Fertilizantes t 7073,00
4.2.- Agua m3 3150 0,18 567,00 4.3.- Aplicación Jornal 27 21,46 579,42 5.- FERTILIZACION FOLIAR 3516,90 5.1.- Fertilizantes foliares l 360,00 5.2.- Fertilizantes foliares kg 426,90 5.3.- Aplicación h/maq 42 65,00 2730,00 6.- LABORES CULTURALES 1700,96 6.1.- Deshierbos Jornal 4 21,46 85,84 6.2.- Limpieza de campo Jornal 6 21,46 128,76
6.3.- Deshoje Jornal 30 21,46 643,80 6.4.- Desbrote Jornal 20 21,46 429,20 6.5.- Enrafiado Jornal 12 21,46 257,52 6.6.- Rafia kg 10 7,00 70,00 6.7.- Guiado de tallos Jornal 4 21,46 85,84 7.- CONTROL FITOSANITARIO 6563,00 7.1.- Insecticida kg 20 181,90 3638,00 7.2.- Aplicación h/maq 45 65,00 2925,00 8.- COSECHA 12741,47 8.1.- Cosecha Jornal 69,5 21,46 1491,47 8.2.- Tiosulfato de plata l 22,5 500,00 11250,00 9.- HORMONA 8047,404 9.1.- Ácido giberélico l 48,6 163,20 7931,52 9.2.- Aplicación Jornal 5,4 21,46 115,884 Imprevisto 5% 3002,8362 60056,724 Leyes Sociales 46% M.O. 1756,16 Sub total Descripción 60056,724 Total costos Directos 64815,718 B.- COSTOS INDIRECTOS Gastos administrativos 5% 3240,78589 Gastos Financieros 10% 6481,57178 Total costos Indirectos 9722,35768
TOTAL COSTOS DE PRODUCCIÓN 74538,07552
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