UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO

DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA

FACULTAD DE CIENCIAS

“SISTEMÁTICA DE LOS QUITONES (MOLLUSCA:

POLYPLACOPHORA) DE LA COLECCIÓN NACIONAL DE

MOLUSCOS DEL INSTITUTO DE BIOLOGÍA UNAM.”

T E S I S

QUE PARA OBTENER EL TITULO DE: B I O L O G A

P R E S E N T A :

ADRIANA REYES GÓMEZ

DIRECTOR DE TESIS

Dr. Mario Alejandro Salcedo Vargas

MÉXICO, D. F. 1999

AGRADECIMIENTOS

Agradezco sinceramente al Dr. Mario Alejandro Salcedo

Vargas por su visión, apoyo incondicional y valiosa

asesoría para estudiar a estos maravillosos organismos,

por su enseñanza, amistad y conocimientos compartidos.

A la Dra. Edna Naranjo, por haberme permitido estudiar la

Colección Nacional de Moluscos del Instituto de Biología

UNAM.

Especialmente al Dr. Sergio Salazar y a la Biol. Emilia

González de ECOSUR, Q. Roo, por su interés en el

desarrollo del presente estudio, por el apoyo con parte del

material bibliográfico y especímenes donados a la CNMO.

Al M. en C. Jorge L. Hernández, M. en C. Rosa E. Toral, Biol.

José A. Ruiz y el M. en C. Gerardo Rivas, por la revisión y

valiosos comentarios a la presente obra.

Al Laboratorio de Invertebrados de la Facultad de Ciencias

UNAM y a Fundación UNAM, que me apoyaron durante la

última fase de mi formación académica.

Al programa de becas de tesis de licenciatura PROBETEL,

ya que gracias a este apoyo económico fue posible

estudiar y esquematizar a los quitones.

A mis amigos de toda la vida, por su apoyo incondicional y

seguimiento durante la realización de la presente obra:

Esme, Elvia, Karlota, Lupita, Gus, José y Quique.

Y a todos los colegas, compañeros y amistades que

formaron parte de mi desarrollo durante la licenciatura y

para la conclusión de este proyecto de tesis.

i

Dedicatorias

A Rebeca Gómez Esquivel, por apoyarme durante todo

mi camino recorrido, por el ejemplo de lucha y coraje,

por esos momentos de felicidad, por esa espera,

paciencia y por ser mi madre.

A mis queridísimos hermanos Verónica, Paola Angélica

y Pedro Alfonso, compañeros en la tristeza y alegría y

quienes siempre me impulsaron para la conclusión de

este estudio, por su compañía, ayuda y amor.

ii

CONTENIDO

Pág.

I. Intro ducción

-Generalidades de la Clase Polyplacophora ..........................................................1

-Objetivos ....................................................................................................……..4

-Antecedentes ........................................................................................................5

Colección Nacional de Moluscos (CNMO) ......................................................... 6

II. Área de Estudio

Costa Rocosa ........................................................................................................7

Distribución de los quitones en una costa rocosa .................................................9

Zonas de recolecta de la CNMO ........................................................................ 11

Golfo de California .....................................................................................…... .13

Pacífico Tropical Mexicano ........................................................................…. ..15

Caribe Mexicano ...........................................................................................… .17

Islas Galápagos ........................................................................................….......18

III. Mat erial y Método

Procesamiento de las muestras ...............................................................…........20

Metodología del estudio en la colección .................................................……...21

Quitones de la CNMO .............................................................................….......23

Tratamiento Sistemático .............................................................................…....25

IV. Esquem as Morfológicos

-Esquemas Morfológicos ......................................................................…..........26

-Instrucciones del glosario ............................................................................…..34

Glosario de términos (Mollusca: Polyplacophora) ...................................……..35

iii

Pág.

V. Lista Sistemáti ca de la CNMO

Listado de los quitones en México ................................................................….50

VI. Sistemátic a de la Clase Polyplacophora

FAMILIA ISCHNOCHITONIDAE ............................................................…...56

Género Chaetopleura .........................................................................................58

Chaetopleura scabricula ..............................................................................60

Género Ischnochiton .......................................................................................…66

Ischnochiton muscarius ................................................................................67

Ischnochiton aethalotus ................................................................................72

Género Stenoplax ...............................................................................................77

Stenoplax (Stenoradsia) sonorana ....................................................….......78

Stenoplax limaciformis .................................................................................84

Stenoplax sp. A .............................................................................................89

Género Callistoplax ............................................................................................94

Callistoplax retusa .......................................................................................95

FAMILIA CHITONIDAE ...........................................................................…...98

Género Chiton ..................................................................................................100

Chiton (Chiton) virgulatus ...................................................................…..103

Chiton (Diochiton) albolineatus ................................................................108

Chiton (Diochiton) articulatus ...................................................................112

Chiton (Diochiton) goodallii ......................................................................117

Género Acanthopleura .....................................................................................120

Acanthopleura granulata ...........................................................................121

FAMILIA ACANTHOCHITONIDAE .......................................................….126

Género Acanthochitona ....................................................................................127

Acanthochitona sp. A .................................................................................128

iv

Pág.

VII. Discusión

Biogeografía ...........................................................................…......................139

Sistema de clasificación de los quitones .....................................................….140

Análisis de caracteres ...................................................................…................141

Estudios recientes aplicados a los quitones ...........................................……...147

Problemática en la sistemática de los quitones .............................……...........148

Quitones de la CNMO ..............................................................................……149

Estudio de los quitones en México .......................................................……....151

VIII. Conclusiones

IX. Literatura Citada

X. Apéndice

I. Tablas de datos merísticos ...............................................................…..…..165

II. Listado de especies reportadas para las costas mexicanas ...............….…..178

III. Recolecta y preservado de los quitones .....................................................183

v

CUADROS

Pág.

Cuadro 1. Zonas y Localidades de recolecta de los quitones de la CNMO ...................…19

Cuadro 2. Géneros y especies de la CNMO ..................................................................….23

Cuadro 3. Comparación de tres especies del género Acanthochitona ..............................132

Cuadro 4. Datos merísticos de las especies de la CNMO ..........................................…..177

FIGURAS

Fig. 1. Perfil Hipotético de una playa rocosa .............................................................……10

Fig. 2. Mapa de las zonas de estudio ........................................................................……..12

Fig. 3. Quitón Hipotético ............................................................................................…...27

Fig. 4. Valvas en vista Dorsal ......................................................................................…..28

Fig. 5. Valvas en vista Ventral .................................................................................…......29

Fig. 6. Morfología Interna .............................................................................................….30

Fig. 7. Aparato Digestivo ..........................................................................................….…31

Fig. 8. Escama Hipotética, Sistema Nervioso y Rádula ....................................................32

Fig. 9. Género Acanthochitona ..............................................................................…........33

vi

FIGURAS DE LAS ESPECIES

Pág.

Fig. 10. Chaetopleura scabricula ...............................................................................64 y 65

Fig. 11. Ischnochiton muscarius ........................................................................................71

Fig. 12. Ischnochiton aethalotus .........................................................................................76

Fig. 13. Stenoplax (Stenoradsia) sonorana ................................................................82 y 83

Fig. 14. Stenoplax limaciformis ..................................................................................87 y 88

Fig. 15. Stenoplax sp. A ..............................................................................................92 y 93

Fig. 16. Callistoplax retusa ................................................................................................97

Fig. 17. Chiton (Chiton) virgulatus .................................................................................106

Fig. 18. Chiton (Diochiton) albolineatus ..........................................................................110

Fig. 19. Chiton (Diochiton) articulatus ............................................................................115

Fig. 20. Chiton (Diochiton) goodallii ...............................................................................119

Fig. 21. Acanthopleura granulata ..........................................................................124 y 125

Fig. 22. Acanthochitona sp. A ................................................................................137 y 138

vii

I. INTRODUCCIÓN

GENERALIDADES DE LA CLASE POLYPLACOPHORA

Los poliplacóforos son un grupo antiguo de moluscos estrictamente marinos, mejor

conocidos como quitones. Se distribuyen en playas de litoral rocoso de todo el mundo, se

fijan sobre las rocas y debajo de ellas, aunque también se les puede hallar en sustratos

fangosos. Son organismos con un patrón corporal deprimido (aplanados

dorsoventralmente) y de forma ovalada, presentan simetría bilateral y están adaptados a

deslizarse sobre el sustrato para desplazarse y alimentarse. Presentan hábitos nocturnos y

la mayoría de las especies se encuentran en aguas someras, donde se mantienen la mayor

parte del día expuestos a la acción desecante del sol y a la erosión mecánica de las olas

(Eernisse, 1994).

Estos moluscos pueden presentar tallas desde 3 mm hasta 40 cm, sin embargo, la mayoría

de las especies miden en promedio de 3 a 12 cm, suelen presentar matices parduscos de

rojo, marrón, amarillo y verde, aunque se ha observado que las especies de profundidades

mayores a los 100 m son las más coloridas (Boyle, 1977).

Los quitones presentan una concha dividida en ocho valvas, las cuales se encuentran

traslapadas entre sí, por su morfología estas valvas o placas se dividen básicamente en

tres, una valva cefálica o valva I, seis valvas intermedias (II-VII) y una valva anal o valva

VIII (Smith en Moore, 1960).

Las valvas en vista dorsal están regionalizadas, excepto la valva cefálica; las valvas

intermedias (II-VII) presentan dos áreas laterales y un área central, mientras que la valva

anal presenta una región anteromucronal y una postmucronal. Estas regiones son

distinguibles, ya que presentan diferentes tipos de escultura tegumental u ornamentación,

las formas más comunes son las costillas, surcos y gránulos, aunque algunas especies

pueden ser lisas. Ventralmente las valvas presentan prolongaciones que permiten el

1

contacto entre ellas, así como la inserción al cinturón y permitir se mantengan en su

misma posición. Estas prolongaciones son llamadas placas de inserción (situadas

lateralmente) las cuales se embeben en el cinturón, y apófisis (situadas anteriormente) que

permiten el contacto entre valva y valva (Hyman, 1967).

El cinturón es una estructura periférica musculosa que presenta derivados epidérmicos

como espículas, espinas y escamas de un material calcáreo llamado aragonita. También es

posible encontrar pelos fibrosos, calcáreos y algunas especies presentan cinturón liso, es

decir, están cubiertos únicamente por una fina cutícula protectora (Smith en Moore, 1960).

La mayoría de los quitones son micrófagos y se alimentan de algas finas y de otros

organismos invertebrados, los cuales obtienen raspando la superficie de las rocas y

conchas con su rádula. En general los quitones presentan una dieta alimenticia muy

variada, algunas especies se pueden alimentar de diatomeas y detritus. Algunos estudios

han demostrado que el 75% del contenido estomacal de los quitones corresponde a

sedimentos de minerales finos y partículas, ya que estas partículas son arrastradas junto

con el alimento (Mook, 1983). Sin embargo, algunas especies se alimentan de algas de

dimensiones muy grandes, de crustáceos y de otros moluscos (Eernisse, 1994).

El sistema digestivo se compone de una porción de masa visceral en forma de un tubo o

tracto, este conducto alberga dos tipos de glándulas una digestiva que lleva a cabo parte de

la digestión extracelular y un par de glándulas de azúcar, las cuales secretan mucosas que

acompañan el alimento para ser digerido (Hyman, 1967).

El sistema nervioso de los quitones es primitivo, consiste principalmente de un anillo

nervioso que circunda el esófago del cual parten nervios hacia la región anterior para

inervar la cavidad bucal y el órgano subradular. En dirección posterior el anillo nervioso

forma un par de gruesos cordones nerviosos pedales, que inervan el manto y los órganos

viscerales. Los principales órganos de los sentidos son el órgano subradular y los estetos.

Los estetos son células del manto alojadas dentro de diminutos canales verticales,

2

embebidos en el tegumento de las valvas. Los estetos consisten de un cuerpo denominado

macroesteto, el cual está ramificado, estas ramificaciones se denominan microestetos,

llamados así porque son de menor tamaño que los macroestetos. Estos órganos sensoriales

están presentes en gran número en el tegumento de las valvas, en estudios recientes se ha

calculado que su densidad puede ser mayor a 250 macroestetos y 4, 200 microestetos por

mm2 (Eernisse, 1994).

Los quitones en general son dioicos aunque hay algunas especies hermafroditas, presentan

una sola gónada media, situada enfrente de la cavidad pericárdica. Estos moluscos no

copulan, sino que los gametos salen con las corrientes exhalantes y la fecundación sucede

en el agua o dentro de la cavidad del manto de la hembra. Sus hábitos gregarios facilitan

este tipo de fecundación. Los óvulos, encerrados por una cubierta ornamentada y el

esperma son expulsados envueltos en una matriz gelatinosa que facilita su unión. Una vez

que se han fertilizado externamente desarrollan una trocófora libre nadadora. Estos

moluscos no desarrollan una larva tipo véliger, fenómeno que ha sido interpretado por

muchos autores como la prueba de que el grupo de los quitones es muy antiguo.

Posteriormente las larvas ya desarrolladas se adhieren al sustrato para iniciar sus hábitos

de raspadores de sustratos (Brusca, C. and J. Brusca, 1990).

3

OBJETIVOS

I. Contribuir al conocimiento del estudio de la sistemática de la Clase

Polyplacophora, con una guía sistemática de las especies de quitones de la

Colección Nacional de Moluscos (CNMO).

II. Determinar la situación actual de la Colección de Quitones de la CNMO.

III. Elaborar un glosario ilustrado de la terminología usada en el estudio de los

quitones.

IV. Realizar una revisión bibliográfica actualizada de la sistemática de los quitones,

para la elaboración del primer listado actualizado de especies de quitones en aguas

mexicanas.

V. Describir y elaborar los esquemas de las estructuras taxonómicas más importantes

de las especies de quitones de la CNMO.

VI. Realizar un análisis de caracteres para la estandarización de términos de las

estructuras con importancia sistemática y como estudio básico para la elaboración

futura de un estudio filogenético del grupo.

4

ANTECEDENTES

En México los quitones han sido poco estudiados, son contados los trabajos nacionales

donde se han tomado en cuenta, pero las contribuciones han sido hasta ahora poco

relevantes ya que sólo han sido mencionadas algunas especies en trabajos sobre ecología

costera (Reguero, R. y A. C. García, 1993), así como en listados de moluscos en México

(González en Salazar González, 1993), sin embargo, no se han realizado estudios de

biología básica ni profundizado en el estudio este grupo de moluscos, a pesar de que los

quitones forman parte importante en la dinámica costera de nuestros litorales.

Los estudios más importantes sobre poliplacóforos en México, han sido realizados por

autores extranjeros. Estos trabajos son de carácter monográfico como los de Keen (1958,

1971) y Abbott (1954 y 1974), en donde se presenta la diagnosis, distribución y láminas

de las especies de quitones más abundantes. Algunos especialistas importantes de la

sistemática de los quitones fueron Ferreira (1974, 1976-1987) y Smith (en Moore, 1960,

1976 y 1977), quienes concentraron sus estudios principalmente en los quitones del Nuevo

Mundo, ellos retomaron el estudio sistemático de estos moluscos en los años sesentas y

setentas, después de haberse estancado las investigaciones desde la década de los veintes,

donde el trabajo de Thiele (1929) fue uno de los más importantes. Los trabajos de estos

autores permitieron establecer las bases para el estudio taxonómico moderno de este grupo

de moluscos. Por otro lado, ambos revisaron la mayoría de los especímenes tipo de las

especies, en donde encontraron una serie de errores de los cuales rectificaron sólo algunos

ya que se enfocaron en las familias y géneros más representativos.

En los últimos años, los especialistas en la sistemática y biología de los quitones más

importantes son: Kaas (1993), Kaas y Van Belle (1985a, 1985b, 1987, 1990, 1994 y

1998), Watters (1981, 1990, 1991), Bullock (1985 y 1988) y Eernisse (1988, 1994, 1996 y

1990), quienes han implementado la tecnología de microscopía electrónica para el estudio

a nivel microestructural de los caracteres taxonómicos de estos moluscos.

5

Colección Nacional de Moluscos, CNMO

La CNMO está integrada por dos colecciones, una en el Departamento de Zoología y la

otra en la estación de Biología de Chamela, Jalisco ambos del Instituto de Biología,

UNAM, esta última con carácter regional. Así como otros grupos de moluscos marinos de

la colección, los quitones son parte del material que se encuentran en proceso de curación

(Naranjo, 1993).

Los quitones de la CNMO fueron recolectados por importantes biólogos mexicanos en la

década de los cuarentas y cincuentas, como la Dra. Caso Muñoz, Dr. García Cubas y el

Dr. Villalobos Figueroa. Este material se obtuvo en excursiones de la Facultad de Ciencias

UNAM y bajo la dirección del Instituto de Biología UNAM. Algunas especies como

Chiton (Diochiton) goodallii de las Islas Galápagos, fueron integradas a la colección

mediante donaciones.

La colección cuenta con la categoría de Colección Nacional de Moluscos desde 1997,

designada por la SEMARNAP.

6

II. ÁREA DE ESTUDIO

Los quitones se distribuyen en el litoral de playas rocosas de todo el mundo. Las

condiciones que permiten el establecimiento de estos moluscos en estas regiones, es la

presencia de un sustrato rocoso que suministra alimento, resguardo y área de apareamiento

para las especies (Eernisse, 1994).

Costas rocosas

Estos litorales son de las zonas más diversas y ricas que otros tipos de costas, los

habitantes más comunes son los moluscos y las algas. Las comunidades de las costas

rocosas, están expuestas en promedio cuatro veces diariamente a la acción del oleaje, en

función del movimiento de la marea. Esta acción es diferente de acuerdo a la estación del

año y a los fenómenos oceanográficos de cada región (Little y Kitching, 1996).

La importancia de las mareas en el establecimiento de los organismos, radica en la

tolerancia de éstos ante los cambios de temperatura, exposición a la insolación y

concentraciones de sal y de CO2, las cuales fluctúan constantemente a medida que el nivel

de agua cambia durante el día (Carter, 1988).

El movimiento de los quitones está regulado por el efecto de las mareas. Estos moluscos

son de hábitos nocturnos y el cambio en el nivel del agua del mar les permite desplazarse

hasta las rocas cubiertas para alimentarse de algas y pequeños invertebrados (Boyle,

1977). Algunos estudios han permitido observar que el tamaño de los quitones tiene ver

con su patrón de distribución vertical, el cual está relacionado con el tamaño del pie, es

decir, hay una relación entre la superficie de adhesión al sustrato y el tamaño del pie de los

quitones, de tal manera que los organismos más pequeños se encuentran más al fondo que

los adultos que suelen ser más costeros (Otaíza y Santelices, 1985).

7

El efecto desalojante de las corrientes locales, remolinos y contracorrientes tienden a

separar a los organismos de sus ambientes naturales. A esto se debe que la gran mayoría

de la población tenga que fijarse fuertemente a las rocas, mientras que otras especies

tengan que enterrarse en la arena o en el fango (Ommanney, 1953).

Las olas representan un elemento mecánico destructivo y erosivo para las rocas de la

costa, esto ha influido en que los habitantes de la orilla presenten una forma en general

aplanada. Por otro lado, las olas permiten que se depositen sedimentos entre las rocas y

que se renueve el oxígeno y disuelva el dióxido de carbono concentrado (Ommanney,

1953). Además las olas tienen un efecto importante en el movimiento de los organismos

para alimentarse y para huir de los depredadores, así como humectar constantemente a las

rocas más altas con la acción del rompe olas (Little y Kitching, 1996).

Una de las características principales de las playas rocosas es el de presentar una banda

horizontal de distribución de la flora y la fauna, mejor conocida como zonación. Estos

patrones de distribución de los organismos son muy similares en todo el mundo ya que el

desarrollo de las comunidades no cambia (Carter, 1988).

Debido a la semejanza de la dinámica de las costas, pueden estudiarse bajo modelos, uno

de ellos es el esquema de “Stephensons” de 1949 (en Little y Kitching, 1996), que muestra

la división de la costa rocosa. En este modelo se divide a la costa en: “línea supralitoral”,

que va desde el límite más bajo (por arriba del nivel donde los balanos se encuentran) y se

extiende hasta el límite de distribución de los gasterópodos del género Littorina, la parte

media o “litoral medio” y la “infralitoral” (Nybakken, 1993).

Las causas que explican esta distribución de los organismos se deben a factores físicos y

biológicos. En cuanto a los factores físicos el elemento más importante es la acción de las

mareas, ya que refleja la tolerancia de los organismos en cuanto al incremento de la

exposición al aire y a la desecación, así como a las temperaturas extremas. Los factores

8

biológicos son: la competencia, predación, forrajeo y el establecimiento larval (Little y

Kitching, 1996).

Estos factores físicos y biológicos determinan en gran escala el patrón de distribución

vertical de los organismos en las costas de las playas rocosas, los cuales reflejan los

límites de las especies de acuerdo a su nivel de tolerancia y de las interacciones que

puedan presentar con otros organismos costeros (Nybakken, 1993).

Los quitones se encuentran fuertemente adheridos a las rocas, entre las hendiduras o

debajo de ellas. Aunque algunas especies pueden permanecer expuestas al aire y al sol, en

general se distribuyen en las rocas siempre cubiertas por el agua, en la parte infralitoral y

en las rocas más altas, cerca del litoral medio donde el sustrato rocoso está humectado

todo el tiempo por la acción del rompe olas.

Distribución de los quitones en una costa rocosa

En la Fig. 1. Se muestra la distribución de los 6 géneros de quitones de la CNMO, en un

perfil hipotético de una costa rocosa, según lo reportado por autores como: Thiele (1929),

Smith (en Moore, 1960), Mook (1983), Ferreira (1983b), Ferreira (1984), y Bullock

(1988).

El género Chiton se distribuye entre los 2 y 4 m a partir de la zona intermareal en rocas

altas y siempre humectadas por el oleaje, estos quitones están más expuestos y entre las

grietas de las rocas (Bullock, 1988). El género Chaetopleura se localiza en este mismo

rango, pero generalmente están siempre bajo las rocas y enterrados en la arena (Ferreira,

1983b).

9

DISTRIBUCIÓN DE LOS QUITONES EN UN PERFIL DE COSTA ROCOSA

Fig. 1. Distribución de los quitones en un perfil hipotético de una costa rocosa: a) Género Chiton, b) Chaetopleura, c) Acanthopleura, d) Ischnochiton, e) Callistoplax, f) Stenoplax, g) Acanthochitona.

litorinas

a

b

c

d

e

fg

0

2

4

6

mts.

2 4 6 8 10 12 14 16 mts.

10

Los quitones del género Acanthopleura, se encuentran la mayor parte del tiempo entre los

4 y 6 mts. a partir de la zona intermareal, aunque se ha observado que presentan

movimiento según las mareas, prefieren las zonas de rompiente para alimentarse (Mook,

1983; Randall y Martin, 1987). Mientras que el género Ischnochiton se localiza entre los 8

y 10 mts. donde están cubiertos todo el tiempo por el agua, es común encontrarlos en

zonas donde las rocas son pequeñas y donde haya una gran cantidad de algas costrosas

(Ferreira, 1984).

El género Callistoplax se distribuye siempre en zonas más profundas donde hay pocas

rocas y mayor cantidad de arena (Smith en Moore, 1960). Los quitones del género

Stenoplax se localizan preferentemente entre los 10 y 12 mts. a partir de la zona

intermareal, donde las rocas son de tamaño mediano y donde haya gran cantidad de algas,

durante el día es muy común encontrarlos con especímenes del género Ischnochiton. Los

quitones del género Acanthochitona se encuentran en las zonas más profundas a diferencia

de los géneros anteriormente mencionados, ya que se localizan entre los 14 y 16 mts. con

respecto a la zona intermareal (Thiele, 1929).

Zonas de recolecta de la CNMO

Los quitones de la CNMO, corresponden a localidades en las playas rocosas mexicanas

primordialmente del Pacífico, aunque también existe material proveniente del Caribe y de

las Islas Galápagos, Ecuador. A continuación se describen estas regiones de recolecta, las

cuales se dividieron en cuatro grandes zonas.

Estas zonas se han clasificado por su origen, características geológicas y oceanográficas:

1) Golfo de California (Costa este de Baja California Sur, Mazatlán, Sinaloa y el Norte de

Jalisco), 2) Pacífico Tropical Mexicano (Zihuatanejo y Acapulco, Guerrero, y Oaxaca), 3)

Caribe Mexicano (Islas y costas de Quintana Roo) y 4) Islas Galápagos, Ecuador ( Fig. 2).

11

ZONAS DE RECOLECTA

Fig. 2. Localidades del material depositado en la Colección Nacional de

Moluscos12

Descripción de las Zonas Costeras

1) Golfo de California

Hace aproximadamente 12 millones de años el Golfo de California se originó, dando como

resultado una cuenca estructuralmente compleja, donde se registran todo tipo de accidentes

topográficos, originados por la acción del movimiento del piso oceánico del Mar de Cortés

(De la Lanza, 1991).

Los tres tipos de rocas que ocurren en la península como fuente de sedimentos hacia el

golfo son: ígneas, metamórficas y sedimentarias en el Norte y en algunas partes del Sur.

Los sedimentos depositados en este mar son de origen orgánico e inorgánico, los primeros

constituidos por formas pláncticas y bénticas, siendo en su mayoría autóctonos de la

cuenca. Los de origen inorgánico han sido el producto de la erosión de las rocas que

afloraron en los dos márgenes costeros (Shepard, 1973).

En cuanto a la oceanografía física del Golfo de California, presenta una zona única que

corresponde al área de Baja California Sur, debido a su situación geográfica y compleja

topografía. Esta zona presenta corrientes que aumentan la temperatura, salinidad y

concentraciones de oxígeno disuelto que son anormales en estas áreas.

El gradiente de temperatura media mensual es muy grande, ya que va desde los 9° C cerca

del Cabo Corrientes hasta 22° C en la boca del río Colorado. La entrada al Golfo (definida

como el área triangular limitada por la costa de México, entre Mazatlán y Cabo Corrientes)

presenta principalmente frentes, remolinos e intrusiones que pueden estar ligados a la

confluencia de tres distintas corrientes, las salinidades son las más bajas y con la mayor

precipitación de todo el golfo (De la Lanza, 1991).

Según Shepard (1973) el Golfo de California queda comprendido en tres “provincias

topográficas”: Norte, Central y Sur. La primera está delimitada desde la desembocadura del

Río Colorado hasta una línea imaginaria que comprende desde la Cuenca Salsipuedes a

13

Guaymas; la región central tiene como límite la línea entre Santa Rosa y la del Sur se

encuentra de Topolobampo hasta Cabo Corrientes, Jalisco.

Provincia Norte

Está caracterizada por capas gruesas de sedimentos provenientes del río Colorado, que han

conformado una plataforma continental muy amplia. Dos rasgos topográficos sobresalen en

esta planicie marina, el promontorio sedimentario-metamórfico llamado roca Consag y dos

pequeñas cuencas alineadas de Norte a Sur. Dentro de esta provincia topográfica se ubican

las mayores islas del Golfo de California: Tiburón, Angel de La Guarda y San Lorenzo.

Provincia Central del Golfo

Comprende una plataforma continental muy estrecha (5 km.), en el caso de la costa de

Sonora, entre Guaymas y la desembocadura del Río Mayo, la pendiente del talud es

moderada hasta una profundidad de 450 m, con pequeños escarpes y rizaduras hacia los

200 m.

Al Sur de este río la plataforma se amplía (25 km), mientras que el talud se modifica,

haciéndose más abrupto y accidentado. El relieve es más escarpado y las pendientes

mayores a 45°. La Cuenca de Guaymas es una depresión alargada en posición NO-SE, con

su porción más amplia a la altura del Sur del Puerto de Guaymas. Las capas de sedimentos

que predominan son en su mayoría biogénicos, que se han acumulado durante 2.5 m.a.

aproximadamente con velocidades elevadas de sedimentación.

Provincia Sur

En contraste con los extensos abanicos sedimentarios del Norte y las cuencas centrales de

pendientes suaves del centro del golfo, la topografía de la parte Sur está caracterizada por

ser muy irregular, con montes y cañones submarinos que hacen la topografía del piso

14

oceánico más compleja. En el margen continental del golfo la plataforma está sumamente

recortada a la altura de Topolobampo, haciéndose más amplia a lo largo de la costa de

Sinaloa y Nayarit, desapareciendo nuevamente frente a Puerto Vallarta, Jalisco. En

Mazatlán, Sinaloa el talud continental posee una pendiente moderada (entre los 80-700m) y

alcanza su máxima amplitud frente a las Islas Marías. Hacia el Sur presenta una serie de

escarpes que se acentúan frente a la isla Carmen, y a partir de la isla San José los escarpes

se hacen más amplios entre las Islas Espíritu Santo y Cerral.

2) Pacífico Tropical Mexicano

El litoral mexicano en el Océano Pacífico Tropical mide 4, 054 km. de longitud, dentro de

los cuales aproximadamente el 42% corresponde al Pacífico Tropical Mexicano, que está

comprendido entre Cabo Corrientes y la frontera con Guatemala. Presenta tres rasgos

topográficos sobresalientes: la Dorsal del Pacífico, Este, la zona de Fracturas y la Trinchera

Mesoamericana. Su topografía carece de simetría y sus dorsales son las grandes trincheras

que circunscriben la mayor parte de los límites del océano (De la Lanza, 1991).

La plataforma continental alcanza hasta 70 km de anchura, la menor amplitud se encuentra

frente a las costas de Oaxaca al oriente de Punta Galera, reduciéndose a unos 4-6 km.,

amplitud que se continúa hasta el meridiano 90° donde se inicia bruscamente una

ampliación que alcanza hasta 50 km en el Golfo de Tehuantepec, frente a las costas de

Chiapas y Guatemala, donde la plataforma es muy ancha, alcanzando su máxima

profundidad. El talud continental, se encuentra más o menos uniforme en amplitud (de 25-

50 km) y profundidad (2, 500 a 3, 000 m), que presenta laderas escarpadas especialmente

frente a las costas de Michoacán y Oaxaca.

Las rocas más profundas y expuestas a todo lo largo de la costa mexicana son

principalmente de origen ígneo y metamórfico, desde Cabo Corrientes hasta el Golfo de

Tehuantepec. Los sedimentos superficiales de la plataforma continental del estado de

Guerrero se distribuyen por lo general, según la relación arena/ lodo, en franjas paralelas a

15

la línea de costa y disminuyen gradualmente en tamaño desde arenas a lodos, conforme

aumenta la profundidad y se aproxima al talud (Carranza et al., 1975).

En el área de Acapulco en el complejo metamórfico Choloapa, los ríos son los principales

elementos de aporte de sedimentos gruesos (gravas y arenas), mientras que las lagunas

aportan los sedimentos finos (lodos). En el Golfo de Tehuantepec los sedimentos van desde

arenas medias a muy finas, donde los foraminíferos bénticos son más abundantes que los

pláncticos hacia profundidades menores a los 59 m, mientras que los aportes del continente

son escasos (De la Lanza, 1991).

La estructura térmica del Pacífico Tropical Este, se caracteriza por presentar una capa de

mezcla, donde la temperatura es casi constante. La variación anual de la temperatura

superficial fluctúa entre 26 y 28° C. En las costas de Guerrero la temperatura superficial en

febrero es de 28° C y de 15° C a 100 m de profundidad. El Golfo de Tehuantepec se

caracteriza por una distribución heterogénea de la temperatura superficial, debida al efecto

del viento. En invierno las temperaturas superficiales son bajas, donde la velocidad del

viento es alta (Carranza et al., 1975).

En cuanto al régimen de mareas que se presentan en las costas del Pacífico Tropical

Mexicano son de tipo mixto, este movimiento total de la marea se propaga desde Cabo

Corrientes hacia el Sur, entre Puerto Vallarta, Jalisco e Isla Socorro, Colima, las pleamares

y bajamares acontecen casi simultáneamente. La zona comprendida entre Manzanillo,

Colima; Zihuatanejo, Guerrero, se caracteriza porque en los cuartos de luna (menguante y

creciente), la marea se convierte en diurna unos días antes y después de dichas fases. Para

Acapulco, Guerrero, el régimen de mareas también es mixto.

El régimen de mareas para el Golfo de Tehuantepec es mixto semidiurno. Sin embargo, la

fase de marea varía muy lentamente, o sea que las horas de pleamares y bajamares en toda

esta zona ocurren casi simultáneamente.

16

17

3) Caribe Mexicano

El origen y evolución de las cuencas del Golfo de México y Mar Caribe, han sido

analizadas en base a la teoría de la tectónica de placas que se fundamenta en la expansión

del piso oceánico. El Mar Caribe se extiende en un área de 2, 640, 000 km 2 y una

profundidad superior a la del Golfo de México de 4, 000 m. Esta cuenca caribeña se

conforma por depresiones abisales, trincheras, crestas montañosas y canales submarinos.

La plataforma continental del Caribe Mexicano es muy estrecha con sólo 20 km de

extensión, frente a Cancún y gradualmente se atenúa hacia el Sur y en Pto. Morelos

prácticamente desaparece. Hacia la Isla de Cozumel y el Blanco de Flecha son elevaciones

alargadas, donde el talud se interrumpe.

El Caribe Mexicano, presenta una secuencia de afloramientos submarinos irregulares, y

está formada principalmente por sedimentos que contienen grandes cantidades de

carbonatos de tipo biogénico y zonas arrecifales muy limitadas. En la costa Este de la

Península de Yucatán dominan las arenas carbonatadas de tipo biogénico y zonas

arrecifales, localizados sobre la plataforma continental del borde oriental de la península y

en el litoral de la Isla Cozumel, los cuales aportan alrededor del 70% de las arenas

carbonatadas biogénicas.

Isla Aguada, Campeche y hasta Chetumal, Quintana Roo, presentan costas formadas por

depositación marina que origina playas e islas de barrera y costas formadas por organismos

marinos que favorecen la formación de arrecifes coralinos y zonas de arrecifes bordeantes

(De la Lanza, 1991).

17

4) Islas Galápagos, Ecuador

El archipiélago de las Galápagos es un conjunto de cumbres que se formó hace 5 m. a., son

porciones de roca volcánica que emergieron poco más de 1, 100 k. de los Andes en medio

de las profundidades del Pacífico. El archipiélago está constituido por 16 islas, 14 islotes y

47 rocas con una superficie superior a los 8, 000 km2.

Las islas más importantes son: Fernandina, Isabela, Santa María de Floreana, Pinzón, San

Salvador, Marchena, Pinta, Genovesa, Santa Cruz, Santa Fe, San Cristóbal (Chatham),

Española, Baltra y Tortuga.

La zona volcánica más activa del archipiélago es la occidental, en los volcanes de las islas

Isabela y Fernandina se han presentado erupciones recientes. Con estas circunstancias, es

natural que las tierras del archipiélago sean de roca viva, rugosa y áspera, donde se

establecen una gran diversidad de aves e invertebrados (Rubio, 1988).

La Isla Galápagos están rodeadas por aguas frías ricas en nutrientes, esto es el resultado de

la combinación de los procesos oceanográficos originados principalmente por el viento

(que sopla de Este a Oeste), que permite que el agua ecuatorial se enfríe por medio del

Sistema de Corrientes del Perú (Chávez y Brusca en James, 1991).

Estas islas se caracterizan por presentar variaciones interanuales en sus procesos

oceanográficos, ya que están bajo la influencia de varios sistemas de corrientes asociadas a

las masas de agua. Estas regiones ecuatoriales presentan una temperatura superficial

anormal si consideramos que se encuentran en una región tropical llamada “sistema de alta

presión” (Rubio, 1988).

18

Ubicación geográfica de las localidades del material de la CNMO

ZONA LOCALIDAD UBICACIÓN

Piedras del Nte. y Bahía Eclipse LAT N 24° 35’ 00’’; 110° 20’ 00’’ LONG W

Baja California Sur Isla Espíritu Santo LAT N 24° 30’ 00’’; 110° 21’00’’ LONG W

Bahía Falsa, La Paz LAT N 24° 35’ 00’’; 110° 24’ 00’’ LONG W

Guaymas, Sonora Pto. Guaymas LAT N 27° 54’ 00’’; 110° 54’ 18’’ LONG W

Entre Isla Chivos e Isla Piedra LAT N 23° 10’.44’’; 106° 23’ 51’’ LONG W

Isla de los Chivos LAT N 23° 10’.46’’; 106° 24’ 53’’ LONG W

Cerro del Crestón LAT N 23° 10’ 35’’; 106° 25’ 42’’ LONG W

Mazatlán, Sinaloa Playa Sur LAT N 23° 12’ 20’’; 106° 25’ 42’’ LONG W

Playa Los Sábalos LAT N 23° 15’ 56’’; 106° 28’ 00’’ LONG W

Isla de la Piedra LAT N 23° 10’ 35’’; 106° 24’ 08’’ LONG W

Isla de los Pájaros LAT N 27° 53’ 14’’; 110° 51’ 01’’ LONG W

Jalisco Puerto Vallarta LAT N 22° 11’ 38’’; 105° 30’ 00’’ LONG W

Pulpito, Pto. Vallarta LAT N 22° 45’ 10’’; 105° 20’ 13’’ LONG W

Isla Ixtapa, Zihuatanejo LAT N 17° 40’ 41’’; 101° 39’ 20’’ LONG W

Playa Las Gatas, Zihuatanejo LAT N 17° 39’ 45’’; 101° 37’ 30’’ LONG W

Playa Camino Contramar LAT N 17° 38’ 40’’; 101° 35’ 27’’ LONG W

Guerrero Playa La Ropa LAT N 17° 37’ 50’’; 101° 32’ 50’’ LONG W

Playa Corralitos LAT N 17° 22’ 43’’; 101° 30’ 49’’ LONG W

Acapulco LAT N 16° 51’ 08’’; 99° 53’ 07’’ LONG W

Oaxaca Puerto Angel LAT N 15° 39’ 00’’; 96° 31’ 00’’ LONG W

Salina Cruz LAT N 16° 10’ 00’’; 95° 12’ 00’’ LONG W

Quintana Roo Isla Mujeres LAT N 21° 15’ 24’’; 86° 45’ 04’’ LONG W

Isla Cozumel LAT N 20° 30’ 00’’; 86° 50’ 08’’ LONG W

Islas Galápagos, Ecuador San Cristóbal, Chatham LAT N 1° 27’ 00’’; 91° 00’ 00’’ LONG W

Cu adro. 1. Relación que muestra la ubicación de las localidades de muestreo de los

quitones de la CNMO.

19

III. MATERIAL Y MÉTODO

Procesamiento de las muestras

El material estudiado de la Colección Nacional de Moluscos se encontró en formaldehído al

10%, el cual se lavó en agua corriente por una semana para eliminar cualquier resto del

fijador. Posteriormente el fijador se sustituyó por alcohol al 75%.

Los especímenes de los lotes se separaron por especie, mediante el uso de bibliografía

básica (Keen, 1958; Thorpe en Keen, 1971 y Abbott, 1974). Cada sublote se enumeró y se

le anexó una etiqueta con los mismos datos generales de la colecta original, que incluyeron:

nombre de la especie, autor y año, número de catálogo, localidad de la colecta, fecha (día,

mes y año), colectores, nombre de quién determinó a la especie y fecha de determinación

de la especie.

Simultáneamente a la identificación, se obtuvieron los datos morfométricos de cada

espécimen. Las mediciones fueron tomadas con vernier, usando la escala mínima o décimas

de mm. Los caracteres registrados fueron: longitud total del organismo (incluyendo

cinturón), ancho (incluyendo cinturón), ancho de la valva V (valva intermedia de mayor

anchura), ancho del cinturón y el peso total. El peso se registró en una balanza granataria

digital marca sartorius, en las mediciones se consideró hasta centésimas de gramo, ya que

algunos lotes presentaron organismos muy pequeños.

Los registros se vaciaron en tablas para cada especie, con las siguientes abreviaturas: Ind. #

(número para cada espécimen), No. (número de lote), Loc. (se refiere a la región de colecta,

P: Pacífico; G: Golfo de México; A: Caribe; IG: Islas Galápagos), Zona (corresponde a la

localidad de recolecta), L (longitud total del organismo, incluyendo cinturón), A (ancho del

organismo), V (longitud de la valva intermedia V), AC (ancho del cinturón), Wg (peso del

organismo en gr.) (Ver apéndice I). Finalmente se calculó la media de la longitud total y del

20

ancho de los especímenes, que nos permiten conocer las proporciones promedio del cuerpo

de la especie (Ver cuadro 4).

Metodología de Estudio en la colección

La descripción taxonómica de las especies, se llevó a cabo mediante observaciones bajo

microscopio estereoscópico de todos los especímenes. Durante las observaciones se

mantuvo a los ejemplares siempre humectados, rociándoles constantemente fijador (alcohol

al 75%) con una piseta.

El carácter cualitativo que se estudió inicialmente fue el de la morfología total del

organismo en vista ventral y dorsal (Fig. 3 y 4), forma del cuerpo y coloración en

preservado. Posteriormente se desarticularon las valvas, usando pinzas de relojero y bisturí,

de seis especímenes (cuando la muestra era lo suficientemente grande, cuando no lo era, se

desarticulaban tres especímenes y en material único se desarticuló sólo uno) de diferentes

tamaños, dos de los más pequeños, dos juveniles o de talla media y dos de la mayor

longitud o adultos.

Las valvas desarticuladas permitieron observar dorsal y ventralmente la morfología de los

caracteres taxonómicos más importantes. Dorsalmente: elevación de las valvas, tipo y

disposición de la escultura del tegumento para cada región de las valvas, cefálica (I), valvas

intermedias (II-VII) y anal (VIII), ápice, mucro, placas de inserción y apófisis (Fig. 4).

Ventralmente: color, apófisis, dientes de inserción, seno yugal, placa yugal, pliegue

periostracal y poros de los estetos (Fig. 5).

Aunque sólo se describen las valvas I, V y VIII (cefálica, intermedia y anal), las

observaciones de las valvas restantes (II-VII homólogas a la valva V, ya que también son

intermedias) permitieron detectar en algunas especies, ciertas variaciones morfológicas que

se mencionan en la descripción en el apartado de las valvas. Para estudiar los derivados

21

epidérmicos fueron desprendidos del cinturón para una mejor observación y se determinó el

tipo, superficie u ornamentación y parte basal o de fijación al cinturón.

Se ilustraron las especies estudiadas en vista dorsal (organismo completo, incluyendo

cinturón), en vista ventral las valvas cefálica (I), valva intermedia (V) y valva anal (VIII).

Para las especies no definidas o complejas, se esquematizaron las valvas en vista dorsal,

para mostrar las diferencias de tegumento que presentan con respecto a las demás, especies

denominadas como sp. A, hasta que se les asigne un nombre específico. También se

esquematizó un acercamiento de la disposición de los derivados epidérmicos del cinturón,

así como la morfología de un elemento (escama o espícula) en varios ángulos,

generalmente frontal y/o basal.

La elaboración de los esquemas en vista dorsal (organismo completo), requirió de elegir un

espécimen completo y aplanado, es decir, un organismo no enrollado para poder ser

dibujado y que presentara los caracteres taxonómicos representativos de cada especie.

Los esquemas de las valvas, corresponden a organismos diferentes al dibujado en vista

dorsal (organismos completo). Se desarticularon especímenes con valvas en buen estado o

completas en vista ventral, sobre todo de las placas de inserción. Los esquemas se

elaboraron a la escala mínima de un vernier (décimas de mm). Los trazos iniciales se

elaboraron en lápiz, sobre papel de cálculo (cuadriculado de 1 cm) y el esquema final se

elaboró sobre papel vegetal o albanene y con estilógrafos de tamaño de trazo 0.13, 0.18 y

0.25.

* Todos los esquemas de las especies de la CNMO y del Glosario de

términos son Originales del Autor del presente estudio, así mismo se

menciona la referencia bibliográfica de donde hayan sido tomados las

figuras redibujadas.

22

Quitones de la Colección Nacional de Moluscos

La CNMO cuenta con un total de 457 especímenes de quitones, los cuales están contenidos

en 7 géneros y 13 especies.

Quitones de la CNMO

Género Especie # especimenes

Chaetopleura Chaetopleura scabricula 12

Ischnochiton Ischnochiton muscarius 41

Ischnochiton aethalotus 49

Stenoplax (Stenoradsia) sonorana 4

Stenoplax Stenoplax limaciformis 2

Stenoplax sp. A 2

Callistoplax Callistoplax retusa 5

Chiton (Chiton) virgulatus 32

Chiton Chiton (Diochiton) albolineatus 122

Chiton (Diochiton) articulatus 132

Chiton (Diochiton) goodallii 3

Acanthopleura Acanthopleura granulata 22

Acanthochitona Acanthochitona sp. A 31

Total 457

Cuadro 2. Cantidad de especimenes por especie y género de la CNMO.

La mayoría de las muestras se encontraron en fijador formaldehído al 10%, el cual se

substituyó por alcohol al 75%. Algunos lotes presentaron especimenes como C. goodallii

con 3 ejemplares en seco, que representaron la totalidad de la muestra al igual que

Ischnochiton aethalotus con 49 especimenes.

23

El material del a CNMO está conformado en su mayoría por organismos adultos, los

juveniles son escasos, como los especimenes del género Stenoplax y Chiton. Por el

contrario Ischnochiton muscarius fue la especie que presentó una gran variedad de

organismos de diferentes tallas.

Las especies de la CNMO en general se distribuyen en la zona media (6-12 mts.) de la facie

rocosa de las playas (Fig. 1), por esta razón es que se registran en las muestras, una gran

cantidad de especimenes adultos. En esta zona la recolecta de los especimenes es accesible,

ya que aún con marea alta la profundidad es menor a tres metros. Estos organismos suelen

presentar ciertos problemas para ser fijados, ya que pueden adoptar una forma enrollada y

ser más difícil la observación de las estructuras taxonómicas. El 65% de los ejemplares se

encuentran enrollados, pero el resto de los especimenes se encuentran en buenas

condiciones de preservado lo que facilitó las observaciones a las estructuras estudiadas.

Aunque las muestras se mantuvieron en formaldehído por más de 50 años, la mayoría de

los especimenes mantuvieron sus colores originales, ya que se encontraron resguardadas en

gavetas obscuras, sólo algunos especimenes sufrieron alteraciones en su coloración sobre

todo en el cinturón. Tal es el caso de Acanthochitona sp. A, donde el cinturón de una

muestra presenta verdes más intensos que en otra de la misma especie. Otro claro ejemplo

es el de Stenoplax (Stenoradsia) sonorana que presentó una coloración uniforme, tanto para

las valvas como para el cinturón de amarillo verdoso, probablemente por la acción

prolongada del fijador.

Este fijador no es recomendable para preservar a los quitones, ya que ocasiona que se

ablande el material de las valvas provocando que se desprendan del cuerpo del organismo

(Ver apéndice III).

La escultura del tegumento para algunas especies fue desgastada o erosionada, tal es el caso

de los especímenes del género Chiton y Stenoplax. Otras especies como Chaetopleura y

24

Acanthopleura, se encontraron densamente cubiertas por briozoos (invertebrados

coloniales) y algas.

Tratamiento Sistemático y Descripciones

El apartado sistemático del presente estudio incluye: nombre, autor y año de la especie,

sinonimias (reportadas por autores que estudiaron la sistemática de este grupo de moluscos

y que se menciona según sea el caso) y material revisado, donde se especifica el número de

especímenes estudiados, talla mínima y máxima de los especímenes, localidad, fecha de

recolecta, número de catálogo de la Colección Nacional de Moluscos, precedido de la

abreviatura CNMO- y posteriormente el número de catálogo para cada lote, así como el

número total de los organismos observados.

La descripción de las especies contiene los siguientes caracteres: cuerpo, que especifica los

datos merísticos (mayor, la media y menor) de la longitud y ancho de la especie,

incluyendo el cinturón y el color de los especímenes en preservación; tipo de tegumento de

las valvas cefálica (I), intermedia (II-VII) y anal (VIII); cinturón, que incluye el tipo de los

derivados epidérmicos; descripción morfológica de las valvas cefálica (I), intermedias (V)

y anal (VIII). En algunas especies se describió la disposición de los ctenidios (branquias) en

el surco paleal, ya que presentaron diferencias con respecto a las demás especies.

El apartado sistemático, también incluye la distribución mundial y local de la especie;

observaciones del material revisado acerca de sus variaciones intraespecíficas y con otras

especies, así como la discusión que contiene información de su biología y de la

problemática en su sistemática actual.

25

IV. ESQUEMAS MORFOLOGICOS

QUITÓN HIPOTÉTICO EN VISTA DORSAL

Fig. 3. Representación de los tipos de escultura del tegumento y derivados epidérmicos

del cinturón en un quitón hipotético.

ANTERIOR

POSTERIOR

26

27

B

A

B

C

Fig. 4. Valvas en vista dorsal: A) valva cefálica (I); B) valva intermedia (II-VII) y C) valva anal (VIII).

28

ABC

Fig. 5. Valvas en vista ventral. A) valva cefálica (I); B) valva intermedia

(II-VII)

A

B

C

Fig. 6. Estructura interna: A) corte transversal de un quitón ( redibujado y modificado

de Barnes, 1989); B) corte transversal del cinturón y C) corte transversal del tegumento de la

valva donde se muestran los estetos (redibujado de Barnes, 1989).

pliegue exterior del manto

29

30

Fig. 7. Corte transversal de un quitón, donde se muestran las principales estructuras del aparato digestivo.

31

Fig. 8. A) dientes de la rádula (redibujado de Bullock, 1985); B) sistema nervioso (redibujado de Eernisse, 1994); C) Escama hipotética que muestra los tipos de ornamentación dorsal (modificado y redibujado de Bullock, 1985).

A B

C

32

ABCFig. 9. Estructuras taxonómicas de las valvas en vista dorsal del género Acanthochitona.A) valva cefálica (I), B) valva intermedia (V), C) valva anal (VIII).

33

INSTRUCCIONES DEL GLOSARIO

El siguiente glosario incluye la terminología más usada en el estudio sistemático del grupo de los quitones.

La primera palabra en mayúsculas marcada en negritas corresponde al término en español, las palabras entre paréntesis y minúsculas se refieren a los sinónimos más comunes de la estructura. La primera palabra entre corchetes y negritas corresponda al término y sinónimos en inglés de la misma estructura, según sea el caso. Posteriormente se explica la definición del término en cuestión.

Al final de algunas de las definiciones, se indica entre paréntesis, la figura a la que corresponde el ejemplo gráfico del término en el apartado de los esquemas morfológicos del grosario.

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GLOSARIO

ANILLO NERVIOSO CEREBROBUCAL: [cerebrobuccal nerve ring]. Anillo de tejido nervioso que rodea a la cavidad bucal. A partir de este se origina directamente un par de nervios laterales, el nervio del pie y los conectivos bucal y subradular. (Fig. 8-B).

ANO: [anus]. Apertura posterior del tracto digestivo localizado detrás del pie, usualmente cubierto por una papila. (Fig. 6-A).

AORTA: [aorta]. Vaso sanguíneo principal dorsal localizado en el ventrículo del corazón, en la porción final del cuerpo, el cual eleva los canales de la gónada y los músculos de las valvas.

ÁPICE: [apex]. Punto elevado, borde posterior de una valva intermedia, ocasionalmente también es llamado umbo o pico de la valva. (Fig. 4-B).

APÓFISIS (Placa sutural, lámina sutural): [apophysis, sutural plate, sutural lamina]. Uno de los dos adelgazamientos localizados en la porción anterior de cada valva excepto en la valva cefálica, compuesta por el hipostraco (llamado articulamento), quedando siempre por debajo de la siguiente valva en la zona de inserción. Es una proyección anterior del articulamento de tamaño variado que se extienden a ambos lados de las valvas intermedias y anal. (Figs. 4-B,C).

ÁREA CENTRAL (Triángulo central, triángulo medio): [central area, central triangle, median triangle]. En las valvas intermedias; área media triangular delimitada en las áreas laterales por dos líneas diagonales, en la zona media presenta el área yugal o yugum. Su superficie es diferente con respecto a las áreas laterales. (Fig. 4-B).

ÁREA LATERAL (Triángulo lateral): [lateral triangle, lateral area]. Localizada en las valvas intermedias, área triangular separada del área central por medio de dos líneas diagonales o costillas. (Fig. 4-B).

ÁREAS LATEROPLEURALES: [lateropleural areas]. Zonas laterales del tracto yugal de las valvas II-VII, sin líneas o surcos diagonales que diferencien la superficie en regiones. Corresponden a la región de cada lado del tracto yugal. Utilizado principalmente para el género Acanthochitona, ya que no presentan áreas laterales, únicamente el tracto yugal hacia el centro de la valva, mientras que el resto de la superficie corresponde a las áreas lateropleurales. (Fig. 9-B).

ÁREAS RADIALES: [radial areas]. Se refiere a las valvas intermedias, corresponde a la zona del área central y las áreas laterales. Ver VALVA INTERMEDIA. (Fig. 4-B).

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ÁREAS TERMINALES: [terminal areas]. Superficie radial de la valva cefálica y de la región postmucronal de la valva anal. Ver VALVA CEFÁLICA Y ANAL. (Figs. 4-A y C).

ARTICULAMENTO: [articulamentum]. Lámina de la valva que se proyecta anteriormente para formar la apófisis, capa que forma las placas de inserción y la lámina sutural. Ver HIPOSTRACO Y APÓFISIS. (Fig. 6-B).

AURÍCULA (Atrio): [atrium, auricle]. Cada una de las dos cámaras laterales musculares del corazón, que recibe la sangre de los ctenidios por medio de los poros auriculares y que es transportada a través del ventrículo hasta el ostio auriculoventricular. (Fig. 6-A).

BOCA: [mouth]. Apertura anterior del tracto digestivo correspondiente al conducto bucal, situada frente al pie en la superficie ventral de la cabeza. (Fig. 6-A).

BORDE RADULAR: [blade]. Engrosamiento distal de los dientes radulares, con un borde filoso. Ver RÁDULA. (Fig. 8-A).

BORDE: [eave]. Porción del tegumento localizado sobre la línea donde las placas de inserción y la lámina sutural se proyectan. Según sus características se le denomina: “borde esponjoso o compacto”. Es un término usado por algunos autores para describir a las especies, pero actualmente se ha observado que es un caracter muy variable dentro de una misma especie. Ver LÁMINA SUTURAL. (Fig. 5-B).

CABEZA: [head]. Región anteroventral del cuerpo que alberga la boca del organismo, bordeada por la cavidad del manto y separada del pie por un surco transversal. (Fig. 6-A).

CÁMARA EXHALANTE: [exhalent chamber]. Región interna del surco paleal, a través del cual el agua fluye una vez que ha pasado por los ctenidios, los cuales la separan de la cámara inhalante. (Fig. 6-A).

CÁMARA INHALANTE: [inhalent chamber]. Región externa del surco paleal por donde fluye el agua antes de pasar a los ctenidios, separándose de la cámara exhalante por medio de los ctenidios. (Fig. 6-A).

CANAL NEFRIDIAL (Canal excretor): [nephridial canal, excretory canal]. Canal principal de cada órgano excretor, se extiende desde la parte anterior a la parte posterior en la parte final del pie, albergando numerosos divertículos branquiales.

CANAL RENOPERICÁRDICO (Conducto pericárdico): [renopericardial canal, pericardio duct]. Canal que inicia en el poro renopericárdico y se extiende hasta el canal excretor principal. (Fig. 6-A).

CANALES RAMIFICADOS: [branching canals]. Canales que penetran el tegumento y que llevan las terminaciones nerviosas a los órganos sensorios o estetos.

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CAPUCHÓN DENTICULAR: [denticle cap]. Estructura presente en el diente mayor lateral, de color negro y constituido de magnetita, así como de lepidocrocita y apatita mineral. Se ha encontrado que ésta estructura tiene valor taxonómico ya que la distribución de estos materiales es característica para cada especie. Ver RADULA. (Fig. 8-A).

CARINA: [keel]. Se refiere a la presencia de una saliente o elevación prominente que usualmente modifica el área central de la valva, sobremarcando su superficie formando una pendiente.

CAVIDAD BUCAL (Tubo bucal): [buccal tube]. Pequeña sección angosta del tracto digestivo, entre la boca y la cavidad bucal con cutícula alineada y plegamientos longitudinales, alberga glándulas y se encuentra contigua al saco subradular. Ver BOCA. (Figs. 7 y 6-A).

CERDAS: [bristle]. Tipo de ornamentación del cinturón, espículas modificadas en las que la base se encuentra cuticularizada y con una vaina que forma gran parte de la estructura. Ver PELOS. (Fig. 3).

CINTURÓN (Perinoto): [girdle, perinotum]. Parte muscular bien desarrollada. Estructura periférica a las valvas que forma un margen corporal. La superficie dorsal se encuentra generalmente protegida, mientras la superficie central puede presentar ornamentación como espinas, gránulos, escamas y mechones. En el se insertan y embeben los músculos que ayudan a mantener a las placas en su sitio. (Figs. 3 y 6-B).

CIRROS: [cirrus]. Proyecciones localizadas a lo largo del margen interior del manto o cinturón. Ver CINTURÓN Y PELOS. (Fig. 3).

COMISURA BUCAL: [buccal commissure]. Cordones de tejido nervioso que unen dos ganglios bucales, uno de ellos puede distinguirse en la zona dorsal y el otro ventral, llamados comisura bucal dorsal y ventral respectivamente. (Fig. 8-B).

COMISURA PEDAL (Comisura ventral): [pedal commissure, ventral commissure]. Cada uno de los nervios transversales de una serie, que unen a los cordones nerviosos pedales. (Fig. 8-B).

COMISURA PEDOLATERAL (Conectivo lateropedal): [pedolateral commissure, lateropedal connective]. Cada uno de los nervios transversales de una serie, los que unen a los cordones laterales y los del pie. (Fig. 8-B).

COMISURA SUPRARECTAL: [suprarectal commissure]. Comisura transversal que une los dos cordones nerviosos laterales a la parte posterior del cuerpo y que inerva los órganos sensoriales u osfradiales. (Fig. 8-B).

CONCHA (Placa, valva): [shell, plate, valve]. Es de constitución orgánica (Ca Co3), la cual es producida por glándulas secretoras situadas en la cutícula del manto. Además de proporcionar protección al cuerpo blando de los quitones, también le permite tener contacto

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con el medio que le rodea mediante las estructuras sensorias que se albergan en ella, como lo son los estetos y ocelos. En la clase Poliplacophora la concha está dividida en ocho porciones llamadas valvas. Ver VALVA. (Figs. 4-A, B, C y 5-A, B, C).

CONDUCTO ESPERMÁTICO: [duct sperm, spermiduct]. Gonoducto masculino. Ver GONODUCTO.

CONDUCTO EXCRETOR (Ureter, conducto emuctorial): [excretory duct, ureter, emunctorial duct]. Pequeña porción del sistema excretor entre el saco y el poro excretor.

CONECTIVO BUCAL: [buccal connective]. Cada uno de los dos cordones nerviosos, que se extienden de la zona media del anillo nervioso al ganglio bucal. (Fig. 8-B).

CONECTIVO SUBRADULAR: [subradular connective]. Uno de los dos cordones de tejido nervioso, que se prolongan hacia la zona media del anillo nervioso cerebrobucal, por medio de conectivos subradulares que se extienden dorsalmente hasta inervarse en el órgano subradular. (Fig. 8-B).

CORAZÓN: [heart]. En el sistema circulatorio; órgano contráctil sin cavidad pericardial localizado por debajo de las dos últimas valvas (VII y VIII), constituido por un ventrículo medio y un par de aurículas laterales.

CORDÓN NERVIOSO LATERAL (Cordón nervioso paleovisceral): [lateral nerve cord, palliovisceral nerve cord]. Par de nervios longitudinales que se extienden entre el anillo nervioso cerebrobucal y la parte posterior del cuerpo, donde se unen por medio de una comisura suprabucal. Se extienden dorsalmente al surco paleal e inervan a cada ctenidio, pueden unirse a los cordones nerviosos del pie por conectivos lateropedales cerrándose en el seno neurolateral. (Fig. 8-B).

CORDÓN NERVIOSO PEDAL (Cordón nervioso ventral): [pedal nerve cord, ventral nerve cord]. Par de cordones nerviosos longitudinales que corresponde a las funciones nerviosas del pie, y que se extienden del anillo nervioso cerebrobucal a la región posterior del cuerpo, se extienden dorsalmente en la región media del pie, cada nervio se conecta por medio de comisuras pedales al cordón nervioso y se encuentran rodeados por el seno neuropedal. (Fig. 8-B).

CORDONES FIBROSOS: [fiber cord]. Fibras de revestimiento de la epidermis, que se extienden en la valva dando origen a los estetos. Ver CANALES RAMIFICADOS Y ESTETOS. (Fig. 8-B).

COSTILLA: [rib]. Tipo de escultura tegumental; que se continúa por un surco que corresponde a la zona más baja del relieve, elevación en la superficie de la valva que puede disponerse radial o longitudinalmente. (Fig. 3).

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CTENIDIO (Branquia): [ctenidios, gill]. En su conjunto forman el órgano respiratorio alineados a lo largo del surco paleal; se unen al sistema circulatorio por senos branquiales. Cada branquia o ctenidio presenta un eje con dos series alternadas de largas y delgadas lamelas ciliadas. Las estructuras respiratorias en grupos primitivos de quitones son muy posteriores y cortas, mientras que en grupos más avanzados son más grandes. (Fig. 6-A, B).

DERIVADOS EPIDÉRMICOS: [epidermal formations, girdle elements]. Estructuras de origen cuticular que se albergan en la parte dorsal del cinturón. Pueden ser de carbonato de calcio o de constitución cornea, los derivados del cinturón más comunes son: escamas, espículas, pelos, cerdas y espinas. Ver CINTURÓN. (Fig. 3).

DIAFRAGMA (Septo): [diafragma, septum]. División vertical de tejido conjuntivo en la zona anterior y posterior del cuerpo, que separa el seno cefálico del seno visceral.

DIENTE: [tooth]. Elemento cuticular quitinizado, en cada hilera transversal de la rádula; de acuerdo con su posición se clasifican en raquídeo o diente central, menor y mayor lateral uncinal y dientes marginales. Ver RÁDULA. (Fig. 8-A).

DIENTE MARGINAL: [marginal tooth]. Estructura de la rádula, placa más externa o marginal. (Fig. 8-A).

DIENTE CENTRAL: [central tooth]. Corresponde al diente raquídeo de la rádula. Ver DIENTE RAQUÍDEO. (Fig. 8-A).

DIENTE DE INSERCIÓN: [insertion tooth]. Cada una de una serie de estructuras parecidas a dientes, que forman hendiduras radiadas a lo largo del margen exterior de las placas de inserción. Porciones del articulamento, entre las hendiduras de la lámina de inserción, éstos pueden presentar márgenes pectinados o lisos. (Fig. 5-A, B y C).

DIENTE LATERAL: [lateral tooth]. Localizados en la estructura radular, cada uno de los dientes situados a cada lado del diente raquídeo. El diente pequeño interior es también llamado primer intermedio o diente menor lateral; el diente externo se denomina también como segundo gancho, diente mayor lateral al diente más grande de la rádula, el cual está contiguo típicamente a un diente tricúspide puntiagudo. (Fig. 8-A).

DIENTE RAQUÍDEO (Diente central): [rachidian tooth, central tooth, uncinal plates, spatulate uncinal]. Elemento central en cada hilera transversal de dientes en la rádula, típicamente pequeño de cúspides angostas. Ver RÁDULA, DIENTE CENTRAL Y DIENTE MARGINAL. (Fig. 8-A).

DIENTE UNCINAL: [uncinal tooth]. Cada uno de los tres dientes contiguos al diente mayor lateral en cada hilera de dientes de la rádula. Los primeros 2 tienen forma de placa y pueden ser llamados como placas uncinales, el tercero puede presentar un doblez hacia su interior, el cual también puede llamarse uncinal espatulado. (Fig. 8-A).

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EMUCTORIO: [emunctorium]. Pequeña porción del órgano excretor. Ver ÓRGANO EXCRETOR.

ESCAMA: [scale]. Tipo de ornamentación del cinturón; estructuras aplanadas secretadas por glándulas secretoras de la epidermis del cinturón, sus formas pueden variar pero las principales son redondeadas, cuboides, de superficie lisa, rugosa, estriada o granular. Ver cinturón. (Figs. 3 y 8-C).

ESCULTURA: [sculpture]. Es la ornamentación del tegumento. Relieve más o menos regular, patrón presente en la superficie de las valvas. La escultura puede ser de un tipo o mixta, entre las más características se encuentran los gránulos, surcos, costillas, pústulas y superficie lisa. Ver TEGUMENTO. (Fig. 3).

ESÓFAGO: [esophagus, gutter]. Sección angosta del tracto digestivo entre la faringe y el estómago, presenta un par de glándulas de azúcar que se abren al tracto digestivo conectando a la faringe y al esófago. (Fig. 7).

ESPÍCULA: [spicule]. Tipo de ornamentación del cinturón; son proyecciones relativamente pequeñas secretadas por la epidermis del manto, las cuales se encuentran típicamente rodeadas basalmente por una vaina cuticularizada, esta vaina puede ser curvada, cilíndrica, estiliforme o plegada. Ver CINTURÓN. (Fig. 3).

ESPINA: [spine]. Ornamentación del cinturón generalmente más gruesa, estructura dura formada por grupos de cerdas, pelos o espículas. (Fig. 3).

ESTETOS: [esthete, megalesthet, aesthete]. Estructura sensorial que incluye un segmento fotoreceptor en el tegumento de la valva. De acuerdo con su tamaño, podemos distinguir megaestetos en los megaporos y microestetos en microporos. Se encuentran inervados por cordones nerviosos en un orden definido. Son estructuras que presentan córnea, lente, capa de células de pigmento, iris y retina, cuando son evidentes aparecen como manchas o poros pequeños en toda la superficie dorsal de las valvas. (Fig. 6-C).

ESTÓMAGO: [stomach]. Sección expandida del tracto digestivo entre el esófago y el intestino separado del esófago por un esfínter, en éste se pueden encontrar dos grandes glándulas hacia su parte media. (Fig. 7).

ESTRÍAS: [striate]. Fina escultura que se presenta como aparentes surcos, líneas o marcas microscópicas en el tegumento de la valva. En las escamas y espículas del cinturón, corresponden a finos surcos longitudinales sobre su superficie. En el tracto yugal son finas líneas longitudinales. (Figs. 8-C y 9-C).

FARINGE: [pharynx]. Cutícula muscular, sección alineada del tracto digestivo entre la cavidad bucal y el esófago. Puede estar situada lateralmente para formar dos divertículos. (Fig. 7).

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GANGLIO BUCAL: [buccal ganglion]. Cada uno de los dos ganglios relativamente pequeños que inervan la parte anterior del tracto digestivo, cada uno de ellos se conecta al anillo nervioso por una comisura y por conjuntivos bucales. (Fig. 8-B).

GLÁNDULA DE AZÚCAR (Glándula esofágica, glándula faríngea): [sugar gland, esophageal gland, pharyngeal gland]. Par de glándulas que se abren dentro del tracto digestivo en la unión de la faringe y el esófago que producen sustancias amilásticas. El alimento se mezcla con estas secreciones proteolíticas para llevar a cabo parte de la digestión extracelular. (Fig. 7).

GLÁNDULA DIGESTIVA (Hígado): [midgut gland, liver]. Par de glándulas abiertas en una zona posterior de la parte final del estómago, la glándula derecha es típicamente más pequeña y se extiende a lo largo del estómago, la glándula izquierda es mucho más grande y se encuentra entrecruzada o enroscada en el intestino. (Fig. 7).

GLÁNDULA SALIVAL (Glándula bucal): [salivary gland, buccal gland]. Par de glándulas cercanas a la zona de unión de la cavidad bucal y la faringe, asociada dorsalmente al intestino y ventralmente al surco ciliado, esta glándula puede ser simple o arborescente. (Fig. 7).

GÓNADA: [gonad]. Del órgano reproductor. Testículo, ovario; una sola estructura en forma de saco localizada en la región anterior del pericardio por debajo de las valvas III y IV, dando origen a un solo par de gonoductos.

GONODUCTO: [gonoduct]. Estructura pareada; para los machos se denomina espermiducto y para las hembras oviducto. Dispuestos dorsalmente a la región anterior de la gónada y al gonoporo en el surco paleal.

GONOPORO: [gonopore]. Cada una de las dos aperturas exteriores del sistema reproductor, localizado en la región anterior del surco paleal hasta los poros excretores en la zona de empalme de las valvas VI y VII. (Fig. 6-A).

HENDIDURAS DE INSERCIÓN: [slit insertion]. Divisiones que presenta la placa de inserción, estas pueden ser desde poco profundas hasta fuertemente profundas. (Figs. 4-B y 5-B, C).

HIPOSTRACO: [hypostracum]. Zona que corresponde a la capa menor de las valvas, que se proyectan hacia delante para formar la apófisis y el articulamento. (Fig. 6-B).

INTESTINO ANTERIOR: [anterior intestine]. Ver INTESTINO. (Fig. 7).

INTESTINO POSTERIOR: [posterior intestine]. Ver INTESTINO. (Fig. 7).

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INTESTINO: [intestine]. Sección enrollada del tracto digestivo situada entre el estómago y el recto; según su longitud se puede distinguir una región intestinal anterior y una posterior, en la zona media izquierda de esta estructura se albergan típicamente dos glándulas. (Fig. 7).

LÁMINA SUTURAL: [sutural lamine]. Término usado para referirse a las apófisis. Ver APÓFISIS.(Ver 4-B, C).

LÁMINA YUGAL: [jugal lamina]. Ver PLACA YUGAL.

LÍNEA DIAGONAL: [diagonal line]. Elevación o cresta diagonal de las valvas intermedias, que las divide en zonas centrales y laterales y a la valva anal la diferencia en región anteromucronal y postmucronal. (Fig. 4-B).

MACROESTETO: [macresthete]. Ver ESTETO. (Fig. 6-C).

MANTO: [mantle]. Epitelio dorsal del cuerpo que secreta una cutícula y material calcáreo que forma las diferentes capas de las valvas. (Fig. 6-B).

MECHONES: [tufs]. Grupos de pelos, espículas o espinas que se encuentran unidos por una vaina que se distribuyen en la superficie dorsal del cinturón típicamente en las regiones de inserción entre valva y valva. Ver CINTURÓN. (Fig. 3).

MEGALOPORO: [megaloporo]. Cada uno de los numerosos poros situados en la superficie externa de la valva, cada megaloporo se forma en la parte final de un canal transverso a la valva, estas estructuras pueden también albergar a los estetos. Ver ESTETO. (Fig. 6-C).

MEMBRANA RADULAR: [membrane radular, ribbon]. Membrana situada en el saco radular y en donde se insertan los dientes de la rádula. Ver RÁDULA.

METANEFRIDIO (Órgano excretor): [metanephridium, excretory organ]. Órgano excretor. Ver ÓRGANO EXCRETOR.

MICROESTETO: [micresthete]. Ver ESTETO. (Fig. 6-C).

MICROPORO: [micropore]. Uno de los pequeños y numerosos poros situados en la superficie externa de la valva, cada microporo está asociado a un megaloporo mismo que puede originar estetos. Ver ESTETO. (Fig. 6-C).

MIOSTRACO: [myostracum]. Localizado en la valva, término aplicado para varias áreas especializadas en funciones estructurales del hipostraco; sitio de inserción de la musculatura dorsoventral.

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MUCRO: [mucro]. Punto más alto de la valva anal, típicamente hacia el centro y en ocasiones localizado anterior o posteriormente con respecto a la valva, contiguo a dos líneas diagonales al mucro que dividen a la valva anal en un área anteromucral y postmucral. También se le llama mucro al ápice de las valvas intermedias, aunque el término adecuado debe ser “ápice”. Ver VALVA ANAL. (Fig. 4-C).

MUCRO FALSO: [false mucro]. Cuando la saliente o mucro de la valva anal se localiza o prolonga hasta la región postmucronal de la valva anal, este término es usado principalmente en la sistemática del género Chaetopleura.

MÚSCULO DEL CINTURÓN (Músculo longitudinal lateral): [girdle muscle, lateral longitudinal muscle]. Banda muscular que se extiende a lo largo de los dos lados anterior y posterior, localizado por debajo del margen exterior de las valvas. Tiene la función de enrollar al organismo como mecanismo de defensa.

MÚSCULO DEL MANTO: [mantle muscle]. Banda muscular que se inserta en la valva a través del manto, es posible distinguirlos entre los músculos interiores y exteriores.

MÚSCULO DEL RECTO: [rectus muscle]. Par de bandas musculares que se prolongan a partir del margen anterior (seno yugal) de una valva hasta la pared del cuerpo por debajo de la valva contigua.

MÚSCULO DORSOVENTRAL: [dorsoventral muscle]. Cada uno de los 16 pares seriados de músculos (dos pares por valva), albergados entre las valvas y el pie que permite que el organismo se adhiera al sustrato.

MÚSCULO LATERAL (Músculo lateropedal): [lateral muscle, lateropedal muscle]. Parte de la musculatura dorsoventral que se alberga desde los márgenes laterales de la valva hasta el pie. En esta estructura también es posible distinguir músculos laterales así como músculos anteriores y posteriores.

MÚSCULO LONGITUDINAL LATERAL: [lateral longitudinal muscle]. Ver MÚSCULO DEL CINTURÓN.

MÚSCULO OBLICUO: [oblique muscle]. Par de bandas musculares unidas oblicuamente del margen anterior (seno yugal) de la valva a la pared del cuerpo, por debajo de la valva contigua.

MÚSCULO TRANSVERSO: [transverse muscle]. Fibras musculares que se unen dorsoventralmente al margen anterior (apófisis) de una valva hasta el margen posterior de la valva contigua.

NEFRIDIO: [nephridium]. Órgano excretor.

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NEFRIDIOPORO (Poro excretor): [excretory pore, nefridiopore]. Cada una de las dos aperturas al exterior del sistema excretor, localizado en la zona posterior anal en el surco paleal, y posteriores a los gonoporos. (Fig. 6-B).

NEFROSTOMA: [nephrostome]. Ver PORO RENOPERICÁRDICO. (Fig. 6-A).

OCELOS: [ocellus, shell eye]. Estructura pigmentada, fotosensitiva formada por estetos modificados situados en la superficie externa de la valva. Presenta una cornea, lente, zona fibrilar, copa y células de pigmento; estos pueden distribuirse en patrones específicos dependiendo de la especie. Ver VALVA Y ESTETOS.

ODONTÓFORO (Aparato radular): [odontophore, radular apparatus]. Región anterior del tracto digestivo, constituido por la rádula (dientes), musculatura de inserción y una base cartilaginosa. Estructura también llamada aparato radular. Ver RÁDULA.

OJOS: [eye]. Ver OCELOS.

ÓRGANO EXCRETOR (Riñón nefridial, metanefridio, emunctorio): [excretory organ, nephridium kidney, metaneprhidium, emunctorium]. Órgano pareado entre el poro renopericardial y el poro excretor. Consiste de un canal de sacos y conductos excretores.

ÓRGANO SUBRADULAR: [subradular organ]. Cada una de las dos estructuras adyacentes en forma de almohadilla, órganos sensoriales localizados en el techo del saco subradular y que se extiende al abrirse la boca del animal. (Fig. 7).

OSFRADIO (Órgano sensorial): [osphradial sense organ, osphradium]. Cada uno de dos quimioreceptores, tractos cortos situados lateralmente el ano.

OSTIO AURICULOVENTRICULAR: [auriculoventricular ostium]. Del corazón, uno de los tres pares de aperturas de las aurículas laterales situados en el ventrículo medio.

OVARIO: [ovary]. Gónada de las hembras. Ver GÓNADA.

OVIDUCTO: [oviduct]. Gonoducto femenino. Ver GONODUCTO.

PELOS (Cerdas, cirros): [bristle, cirrus]. Tipo de ornamentación epidérmica del cinturón; son estructuras que presentan una vaina cuticularizada en la base. Pueden ser de material fibroso o calcáreo, ocasionalmente se les llama espículas, cuando su estructura es dura. Se diferencian fácilmente por su tamaño, ya que son generalmente más largos que las espículas. (Fig. 3).

PENDIENTE POSTMUCRONAL: [postmucronal slope]. Pendiente de la región posterior del tegumento. Visible en vista lateral de la valva anal, principalmente en el género Acanthochitona.

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PERICARDIO: [pericardium]. Del sistema circulatorio; canal situado dorsoventralmente en las dos últimas valvas (VII y VIII) que contienen al corazón y conectándose al sistema excretor por medio de dos poros pericardiales.

PERINOTO: [perinotum]. Término también usado para denominar al cinturón. Ver CINTURÓN.

PERIOSTRACO: [periostracum]. Capa orgánica superficial y delgada situada sobre el tegumento de las valvas. (Fig. 6-B).

PICO: [beak]. Proyección angular del ápice de una valva intermedia; las valvas con pico se denominan mucronadas. Ver ÁPICE. (Fig. 4-A y B).

PIE: [foot]. Única estructura deslizante en la zona ventral, formando una parte central del cuerpo provista de fibras de músculos dorsoventrales; se encuentra rodeado por el surco paleal y separado de la cabeza por una fisura. (Figs. 6-B y 7).

PLACA (Valva, concha): [plate, valve, shell]. Ver VALVA.

PLACA CEFÁLICA (Valva cefálica): [cephalic plate, head valve]. Sección que corresponde a la valva I. Ver VALVA CEFÁLICA. (Figs. 4-A y 5-A).

PLACA DE INSERCIÓN: [insertion plate]. Extensión lateral de la capa menor (hipostraco) de la valva, margen típicamente dividido por dientes de inserción que se presentan como comisuras radiadas, su función es la de anclaje de la valva al manto. Esta estructura se encuentra ausente en grupos primitivos de quitones. (Figs. 5-A, B y C).

PLACA SUTURAL: [sutural plate]. Lámina del articulamento de las valvas intermedias y anal, extendiéndose entre la lámina sutural; cuando están presentes puede estar finamente denticuladas. Término usado para referirse a las apófisis. Ver APÓFISIS. (Fig. 4-B y C).

PLACA YUGAL: [jugal lamina]. Se localiza en las valvas intermedias y la valva anal; pequeña extensión del margen anterior (seno yugal) entre las apófisis, compuesta por el articulamento que puede ser de borde liso o dentado. (Fig. 5-B y C).

PLIEGUE LATERAL (Paleal): [lateral fold]. Estructura localizada en el surco paleal. Ver PLIEGUE PALEAL.

PLIEGUE PALEAL (Pliegue lateral): [pallial fold, lateral fold]. Situado en la superficie ventral del cinturón. Se proyecta hacia la parte interna del surco paleal, éste se puede alargarse y formar un grueso doblez posterior que puede ser liso o rugoso.

PLIEGUE PERIOSTRACAL (Zona apical): [apical area, periostracal fold]. Pequeña porción del periostraco y del tegumento de las valvas intermedias y cefálicas de todos los quitones, se extiende sobre el margen ventral y se encuentra adyacente al margen posterior dorsal. (Figs. 5-A y B).

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PORO AURICULAR: [auricular pore]. Situado en el corazón, pueden ser uno o varios poros por donde la sangre circula del seno branquial a las aurículas.

POROS RADIALES: [slit ray]. Cada uno de una serie de hendiduras radiales en la capa más baja o hipostraco de la valva, puede consistir de un surco de poros para formar un diente en los márgenes de la placa de inserción. (Figs. 5-A y C).

PORO RENOPERICÁRDICO: [renopericardial pore, nefrostome]. Cada una de las dos conexiones entre el pericardio y el sistema excretor, se continúa por medio de un canal renopericardial dentro de un canal excretor principal.

PUENTES DEL CINTURÓN: [girdle bridges]. Pequeñas prolongaciones del cinturón que se extienden en las valvas hacia los puntos suturales. Algunos puentes pueden presentar una cutícula sin escamas, pelos o espinas. En otros casos como en el género Calloplax y algunas especies del género Chaetopleura pueden presentar una serie de espículas características.

PÚSTULA: [pustule]. Unidades con forma de gránulos, escultura generalmente pequeña a manera de tubérculos en los que se pueden embeber estetos, con cima o superficie cóncava, convexa o plana. (Figs. 9-A, B, C).

QUITÓN: [chiton]. Molusco de la clase Polyplacophora, que habita en las playas rocosas de todo el mundo, generalmente adheridos a las rocas o debajo de ellas. Su concha se compone de 8 piezas llamadas valvas, traslapadas entre sí, las cuales se insertan en una estructura periférica denominada cinturón. Dioicos y de hábitos nocturnos. Se alimentan de algas y de pequeños invertebrados que se encuentran sobre las rocas. Cuando se ven en peligro se enrollan en sí mismos para protegerse. (Fig. 3).

RÁDULA: [radula]. Órgano alimentario raspador que consta de varias hileras longitudinales de dientes quitinosos, la rádula se encuentra sobre una estructura cartilaginosa llamada odontóforo. Los dientes por su posición se denominan dientes laterales (menor y mayor) y raquídeo o central. (Fig. 8-A).

RECTO: [rectum, hindgut]. Pequeña porción posterior del tracto digestivo, ocasionalmente expandido en la sección posterior del tracto digestivo entre el intestino y el ano. (Fig. 7).

REGIÓN POSTMUCRONAL: [postmucronal area]. De la valva anal; área posterior al mucro, también conocida como área terminal. Esta región generalmente presenta escultura radial con respecto al mucro, diferente a la escultura de la región anteromucronal. Ver VALVA ANAL. (Fig. 4-C).

RIÑÓN: [kidney]. Ver ÓRGANO EXCRETOR.SACO MUCOSO: [slime sac]. Saco exterior del gonoducto femenino (oviducto), el cual produce material viscoso para mantener a los huevos organizados en hileras.46

SACO NEFRIDIAL (Saco excretor): [nephridial sac, excretory sac]. En el sistema excretor; amplia sección del canal principal excretor que se abre al exterior por medio de conductos y poros excretores.

SACO RADULAR (Vaina radular): [radular sheath, radular sac]. Vaina elongada que encierra las hileras de dientes y membrana radular. (Fig. 7).

SACO SUBRADULAR: [subradular pouch]. Situado en el tracto digestivo; ciego que se extiende posteriormente a partir de la cavidad bucal; en esta estructura se alberga un par de órganos subradulares.

SENO BRANQUIAL: [branchial sinus]. En el sistema circulatorio; canal sanguíneo situado en el techo del surco paleal asociado con los ctenidios; se distinguen seno branquial eferente y aferente.

SENO CEFÁLICO: [head sinus]. Término aplicable para referirse al sistema circulatorio; cavidad de sangre anterior, que en su interior se abre a la aorta separada por el diafragma desde el seno visceral, dando origen a varios senos longitudinales.

SENO NEUROLATERAL (Seno lateral): [neurolateral sinus, lateral sinus]. Del sistema circulatorio; par de canales sanguíneos longitudinales que se extienden sobre el surco paleal y que rodean a los cordones nerviosos laterales.

SENO NEUROPEDAL: [neuropedal sinus]. Del sistema circulatorio; par de canales sanguíneos longitudinales que se originan en el seno cefálico, proyectándose a lo largo de cada lado del seno ventral rodeando el cordón nervioso del pie.

SENO PEDAL: [pedal sinus]. Del sistema circulatorio; par de canales sanguíneos longitudinales los cuales se originan en el seno cefálico y se extienden ventralmente a los senos neuropedales.

SENO VENTRAL (Seno medio): [sinus ventral, median sinus]. Del sistema circulatorio; canal sanguíneo longitudinal el cual se extiende desde el seno cefálico hasta la parte posterior del cuerpo, mismo que da origen a los senos branquiales.

SENO VISCERAL: [visceral sinus]. Cavidad general del cuerpo que contiene una gran parte del tracto digestivo con funciones de seno sanguíneo, separado del seno cefálico por un diafragma.

SENO YUGAL: [jugal sinus]. Depresión o valle entre la lámina sutural, margen anterior de cada valva intermedia o anal entre las apófisis. (Fig. 4-B y C).

SENO: [sinus]. Márgenes entre las apófisis de las valvas (seno yugal) o canales sanguíneos (senos ventrales). 47

SOPORTE: [bolster]. En el aparato radular; par de estructuras ovaladas (también llamados cartílagos), que ocultan la rádula anterior, asociada a un par de vesículas que funcionan como un soporte interno y sitio de sostén de los músculos de la rádula.

SURCO PALEAL (Cavidad del manto): [pallial groove, mantle cavity]. Localizado en la parte ventral del cuerpo, surco situado entre el pie y el manto marginal o cinturón. Se encuentra a ambos lados del cuerpo, sitios de envergadura de las branquias o ctenidios; hacia la parte posterior se origina un par de poros excretores, gonoporos y un conducto mucoso. (Fig. 6-B).

TEGUMENTO: [tegumentum]. Capa delgada y porosa de las valvas; lámina orgánica de conquiolina impregnada de carbonato de calcio cuya superficie está esculpida u ornamentada. Capa situada entre la lámina superior denominada periostraco y la inferior o hipostraco, que puede envolver a los estetos y dar vuelta en el margen posterior de la valva. (Figs. 6-B y 6-C).

TEJIDO DEL BORDE: [eave tissue]. Material de las valvas, denominado como compacto o esponjoso lo cual corresponde a la cantidad de poros de los estetos. Ver BORDE.

TESTÍCULO: [testis]. Gónada masculina. Ver GÓNADA.

TRACTO MUCOSO: [mucus tract]. Situado en la parte posterior del surco paleal, formado por un epitelio que embebe células alargadas productoras de mucus, las cuales se extienden a lo largo del surco paleal. En algunos casos pueden organizarse en 2 ó 3 bandas longitudinales.

TRACTO YUGAL (Área yugal): [jugal tract, jugal area]. Se encuentran en las valvas intermedias, línea angosta en la parte media dorsal diferenciada por el grabado del área central. Superficie más alta de las valvas intermedias adyacente al yugum, de escultura diferente del resto del tegumento y con superficie lisa o estriada. (Fig. 9-B y 9-C).

TRIÁNGULO LATERAL: [lateral triangle]. Representa la zona o región lateral de las placas intermedias generalmente más elevadas que la región media de la valva. Ver ÁREA LATERAL.

TRIÁNGULO MEDIO (Área central, zona central): [median triangle cental area, central triangle]. Término también utilizado para referirse al área central de las valvas intermedias. Ver ÁREA CENTRAL.

TROCÓFORA (Pseudotrocófora): [trochophore, pseudotrocophore]. Estadio larvario de los quitones la cual se caracteriza por presentar externamente mechones de cilios apicales y larva tipo prototroca.

URÉTER: [ureter]. Conducto excretor. 48

VALVA (Placa, placa del manto, concha): [valve, plate, mantle plate, shell]. Cada una de una serie de 8 placas arqueadas, que corresponden a la concha de los quitones, que cubren parcialmente la superficie dorsal (manto) del cuerpo; constituida por varias capas (periostraco, tegumento e hipostraco) que se encuentran embebidas en el manto. Las valvas se dividen en una valva cefálica (I), seis valvas intermedias (II, III, IV, V, VI y VII) y una posterior llamada valva anal (VIII). Se encuentran separadas entre sí pero en contacto por medio de las apófisis, la superficie o escultura del tegumento de estas estructuras puede ser lisa, granulada, mucronada o con surcos. (Figs. 4-A, B, C y 5-A, B, C).

VALVA ANAL (Placa anal): [anal valve, end platte, tail valve]. Valva VIII. La última de las ocho placas que cubren la superficie dorsal del organismo, típicamente semicircular en forma, caracterizada por presentar una elevación llamada mucro y región antero y postmucronal. (Figs. 4-C y 5-C).

VALVA CEFÁLICA (Placa cefálica): [head valve, cephalic plate]. Valva I, la primera de las ocho valvas o placas que cubren al organismo en la superficie dorsal, típicamente semicircular o hemiesférica y sin apófisis. (Figs. 4-A y 5-A).

VALVA INTERMEDIA: [intermediate valve]. Cualquier placa o valva que se encuentre entre la valva cefálica y anal (II, III, IV, V, VI, VII), estas se pueden regionalizar por medio de dos líneas diagonales en una área central y dos laterales. (Figs. 4-B y 5-B).

VENTRÍCULO: [ventricle]. Canal muscular del corazón, el cual recibe la sangre de las aurículas laterales por medio del ostio auriculoventricular. El bombeo de la sangre se lleva a cabo por la parte anterior por medio de la aorta.

VESÍCULA: [vesicle]. Tipo de ornamentación del cinturón, estructura epidérmica con un ensanchamiento terminal, generalmente son espículas muy pequeñas y poco comunes, presentes en algunas especies. Ver ESPÍCULA. (Fig. 3).

YUGUM: [jugum]. Porción intermedia en el área central de las valvas intermedias, que se continúa por el ápice de la valva y que generalmente es más elevada que las áreas laterales. (Fig. 4-B).

V. LISTA SISTEMÁTICA DE LOS QUITONES DE LA COLECCIÓN NACIONAL DE MOLUSCOS (CNMO).

(Mollusca: Polyplacophora)

De acuerdo a la clasificación de Van Belle en Kaas y Van Belle, 1998.

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CLASE POLYPLACOPHORA Gray, 1821

ORDEN NEOLORICATA Bergenhayn, 1955

SOBORDEN ISCHNOCHITONINA Bergenhayn, 1930

FAMILIA ISCHNOCHITONIDAE Dall, 1889

Subfamilia Chaetopleurinae Plate, 1899

Género Chaetopleura Shuttleworth, 1853

Chaetopleura scabricula Sowerby, 1832

Subfamilia Ischnochitoninae Gray, 1847

Género Ischnochiton Gray, 1847

Ischnochiton muscarius Reeve, 1847

Ischnochiton aethalotus Dall, 1919

Género Stenoplax Dall, 1879

S. (Stenoradsia) sonorana Berry, 1956

Stenoplax limaciformis Sowerby, 1832

Stenoplax sp. A

Subfamilia Callistoplacinae Pilsbry, 1893

Género Callistoplax Dall, 1882

Callistoplax retusa Sowerby, 1832

50

FAMILIA CHITONIDAE Rafinesque, 1815

Subfamilia Chitoninae Bullock, 1988

Género Chiton Linnaeus, 1758

Chiton (Chiton) virgulatus Sowerby, 1840

Chiton (Diochiton) albolineatus Broderip y Sowerby, 1829

Chiton (Diochiton) articulatus Sowerby, 1832

Chiton (Diochiton) goodallii Broderip, 1832

Subfamilia Acanthopleurinae Dall, 1889

Género Acanthopleura Guilding, 1830

Acanthopleura granulata Gmelin, 1729

SUBORDEN ACANTHOCHITONINA Bergenhayn, 1930

FAMILIA ACANTHOCHITONIDAE Pilsbry, 1893

Género Acanthochitona Gray, 1821

Acanthochitona sp. A

51

LISTADO DE QUITONES DE MEXICO

Basado en la clasificación de Van Belle en Kaas y Van Bell. 1998.

CLASE POLYPLACOPHORA Gray, 1821ORDEN NEOLORICATA Bergenhayn, 1955

SUBORDEN LEPIDOPLEURINA Thiele, 1910FAMILIA LEPTOCHITONIDAE Dall, 1889

Subfamilia Leptochitoninae Kaas y Van Belle, 1998

Género Lepidopleurus Risso, 1826 1. Lepidopleurus bullatus Carpenter, 1857. Género Leptochiton Gray, 1847

2. Leptochiton nexus Carpenter, 1864 (Sin: Lepidopleurus lycurgus Dall, 1919). 3. Leptochiton belknapi Dall, 1878 (Sin: Lepidopleurus halistreptus Dall, 1902).4. Leptochiton rugatus Carpenter MS, Dall, 1879 (Sin: Lepidopleurus rugatus Pilsbry, 1892; Leptochiton rugatus Carpenter en Pilsbry, 1892; Leptochiton cancellatus Dall, 1879; Lepidopleurus internexus Carpenter en Pilsbry, 1892; Lepidopleurus alascensis Thiele, 1909).

SUBORDEN ISCHNOCHITONINA Bergenhayn, 1930FAMILIA ISCHNOCHITONIDAE Dall, 1889

Subfamilia Lepidochitoninae Iredale, 1914

Género Lepidochitona Gray, 18215. Lepidochitona hartwegii Carpenter, 1855. 6. Lepidochitona beanii Carpenter, 1857. 7. Lepidochitona bullatus Carpenter, 1857. 8. Lepidochitona lirulata Berry, 1963 (Sin: Dendrochiton lirulatus Berry, 1963; Dendrochiton laurae Berry, 1963).9. Lepidochitona gothica Carpenter, 1864 (Sin: Ischnochiton gothicus Carpenter, 1864).

Género Nuttallina Dall, 187110. Nuttallina crossota Berry, 1956 (Sin: Nuttallina mexicana Pilsbry en Pilsbry y Lowe, 1932).

Género Tonicia Thiele, 190611. Tonicia forbessi Carpenter, 1857 (Sin: Tonicia arnheimi Dall, 1903).

Subfamilia Chaetopleurinae Plate, 1899

Género Chaetopleura Shuttleworth, 185312. Chaetopleura scabricula Sowerby, 1832 (Sin: C. lurida Sowerby, 1832).

52

13. Chaetopleura mixta Dall, 1919 (Sin: Chaetopleura lanuginosa Dall, 1879; Chaetopleura raripustulosa Pilsbry, 1932; Chaetopleura euriplax Berry, 1945; Tonicia mixta Dall, 1919).

14. Chaetopleura shyana Ferreira, 1983.

Subfamilia Ischnochitoninae

Género Ischnochiton Gray, 184715. Ischnochiton muscarius Reeve, 1847 (Sin: Radsiella muscaria Reeve, 1847).16. Ischnochiton newcombi Pilsbry, 1892. 17. Ischnochiton guatemalensis Thiele, 1910 (Ischnochiton eucosmius Dall,

1919).18. Ischnochiton lowei Pilsbry, 1918 (Sin: Cianoplax fackenthallae Berry, 1919). 19. Ischnochiton aethalotus Dall, 1919 (Sin: Ischnochiton tridentatus Pilsbry, 1893; Radsiella tridentatus Dall, 1919). 20. Ischnochiton carolianus Ferreira, 1984.21. Ischnochiton chaceorum Kaas y Van Belle, 1990.22. Ischnochiton mexicanus Kaas, 1993.

Género Stenoplax Dall, 187923. Stenoplax (Stenoradsia) magdalensis (Hinds, 1845) (Sin: Ischnochiton acrior Carpenter en Pilsbry, 1892). 24. Stenoplax (Stenoradsia) conspicua Carpenter MS, Pilsbry, 1892 (Sin: Ischnochiton conspicuus Pilsbry, 1892).25. Stenoplax (Stenoradsia) sonorana Berry, 1956 (Sin: Stenoplax sonorana Berry, 1956). 26. Stenoplax limaciformis Sowerby, 1832.27. Stenoplax purpuracens Adams, 1845 (Sin: Chiton productus Reeve, 1847; Chiton sanguineus Reeve, 1847; Onitochiton pruinosum de Rochebrune, 1884). 28. Stenoplax boogii Haddon, 1886 (Sin: Ischnochiton aethonus Dall, 1919).29. Stenoplax corrugata Carpenter en Pilsbry, 1892 (Sin: Ischnochiton biarcuatus Dall, 1903).30. Stenoplax floridana Pilsbry, 1892. (Sin: Ischnochiton floridanus Pilsbry, 1892). 31. Stenoplax mariposa Dall, 1919. Golfo de California, México.32. Stenoplax heathiana Berry, 1946.

33. Stenoplax circumsenta Berry, 1956.

Género Lepidozona Pilsbry, 189234. Lepidozona clathrata Reeve, 1847 (Sin: Lepidopleurus clathratus Carpenter, 1857). 35. Lepidozona serrata Carpenter, 1864 (Sin. Ischnochiton serratus Carpenter, 1864).36. Lepidozona scabricostata Carpenter, 1864 (Sin: Lepidozona inefficax Berry, 1963).37. Lepidozona cooperi Dall, 1879 (Sin: Ischnochiton cooperi Dall, 1919).38. Lepidozona pectinulata Pilsbry, 1893 (Sin: Lepidopleurus pectinulatus).

39. Lepidozona crockeri Willett, 1951 (Sin. Ischnochiton crockeri Willett, 1951). 40. Lepidozona subtilis Berry, 1956 (Sin: Lepidozona pella Berry, 1864).

41. Lepidozona formosa Ferreira, 1974. 42. Lepidozona allynsmithi Ferreira, 1974. 43. Lepidozona sp. Smith, 1977 (Sin: Ischnochiton veredenties Carpenter, 1864).

44. Lepidozona allyni Ferreira, 1977 (Sin: Ischnochiton allyni Ferreira 1977).45. Lepidozona guadalupensis 1978.45. Lepidozona rothi Ferreira, 1983 (Sin: Lepidozona macleaniana Ferreira,

1985).46. Lepidozona clarionensis Ferreira, 1983.47. Lepidozona laurae Ferreira, 1985. 48. Lepidozona stohleri Ferreira, 1985.45. Lepidozona skoglundi Ferreira, 1986 (Sin: Ischnochiton skoglundi Ferreira, 1986). 51. Lepidozona sirenkoi Kaas y Van Belle, 1990.52. Lepidozona tenuicostata Kaas y Van Belle, 1990.

Subfamilia Callistoplacinae Pilsbry, 1893

Género Callistochiton Dall, 187953. Callistochiton elenensis Sowerby, 1832 (Sin: Callistochiton gabbi Pilsbry, 1893). 54. Callistochiton diegoensis Thiele, 1910 (Sin:

Callistochiton decoratus Pilsbry, 1893).55. Callistochiton colimensis Smith, 1961 (Sin: Ischnochiton colimensis Smith, 1961; Ischnochiton. lowei Pilsbry, 1932).

Género Callistoplax Dall, 1882 56. Callistoplax retusa Sowerby, 1832.

Género Ceratozona Dall, 188257. Ceratozona squalida Adams, 1845.

FAMILIA MOPALIDAESubfamilia Mopaliinae

Género Moplia Gray, 184758. Mopalia ciliata Sowerby, 1840 (Sin: Chiton ciliatus Sowerby, 1840; Chiton wosnessenskii von Middendorff, 1847; Mopalia kennerleyi Carpenter, 1864; Mopalia grayii Carpenter, 1864; Chaetopleura thouarsiana de Rochebrune, 1882; Mopalia ciliata elevata Dall, 1921). 59. Mopalia allantophora Dall, 1919. 60. Mopalia ferreirai Clark, 1991.

Género Placiphorella Dall, 1879

53

61. Placiphorella velata Carpenter MS, Dall, 1879.

62. Placiphorella hanselmani Clark, 1994.

54

FAMILIA CHITONIDAE Dall, 1889

Subfamilia Chitoninae

Género Chiton Linnaeus, 175863. Chiton tuberculatus Linnaeus, 1758. 64. Chiton squamosus Linnaeus, 1764. 65. Chiton marmoratus Gmelin, 1792.66. Chiton albolineatus Broderip y Sowerby, 1829.67. Chiton articulatus Sowerby, 1832 (Sin: Chiton laevigatus Sowerby, 1832).68. Chiton virgulatus Sowerby, 1840

Subfamilia Acanthopleurinae Dall, 1889

Género Acanthopleura Guilding, 182969. Acanthopleura granulata Gmelin, 1791.70. Acanthopleura fluxa Carpenter, 1864.

FAMILIA ACANTHOCHITONIDAE Pilsbry, 1893

Subfamilia Acanthochitoninae

Género Cryptoconchus Burrow, 1815 71. Cryptoconchus floridanus Dall, 1889.

Género Acanthochitona Gray, 1821

72. Acanthochitona arragonites Carpenter, 1857. 73. Acanthochitona avicula Carpenter, 1866.

74. Acanthochitona exqusita Pilsbry, 1893. 75. Acanthochitona angelica Dall, 1919 (Sin: A. jacqueline Smith y Ferreira, 1977, A. shaskyi Ferreira, 1987). 76. Acanthochitona imperatrix Watters, 1981.

55

VI. SISTEMÁTICA DE LA CLASE POLYPLACOPHORA

Clase Polyplacophora Gray, 1821

Diagnosis: Moluscos llamados quitones con simetría bilateral, cuerpo generalmente

ovalado o elongado y deprimido, pie expandido y situado ventralmente. Protegidos por un

cinturón periférico, en el cual se insertan ocho placas o valvas calcáreas. Estas valvas

pueden estar parcial o totalmente embebidas, las valvas se sobreponen en diferentes grados.

Presentan una cabeza diferenciada, poco desarrollada, branquias numerosas, que se

albergan en dos surcos laterales al pie. Rádula presente, heterodontos y con sexos separados

(Smith en Moore, 1960).

Comentarios: Thiele (1929) en su manual sistemático de malacología, menciona que los

quitones fueron situados junto con los cirripedios en el grupo Polyplaxiphora Blainville,

1816. Posteriormente se consideraron como un subgrupo de los gastrópodos.

La Clase también fue denominada Amphineura, nombre propuesto inicialmente por

Herman von Ihering en 1876, como un Phylum separado del Phylum Mollusca. Este nuevo

grupo incluía a las Clases Placophora (quitones) y Aplacophora (Solenogastres). En los

estudios recientes de taxonomía de los quitones, han considerado a Amphineura como una

Clase que contiene dos Ordenes Polyplacophora (Loricata) que incluye a los quitones y

Aplacophora o Solenogastres (Smith en Moore, 1960). Smith (en Moore, 1960) considera a

Amphineura como una clase aparte de los gastrópodos. Esta clase contiene dos subclases

Polyplacophora y Aplacophora. Actualmente se reconoce a los quitones dentro de la Clase

Polyplacophora del Phylum Mollusca.

56

Orden Neoloricata Bergenhayn, 1955

Diagnosis: Quitones con estructura de las valvas formada por un periostraco, tegumento,

articulamento e hipostraco. En algunos especies estas capas están más desarrolladas que en

otras, ya que pueden formar una capa anexa llamada mesostraco, excepto en las familias

más primitivas. Presentan placas de inserción y lámina sutural o apófisis (Smith en Moore,

1960).

Suborden Ischnochitonina Bergenhayn, 1930

Diagnosis: Quitones de tallas pequeñas a grandes. Valvas intermedias con áreas laterales y

central; valva anal regionalizada en áreas antero y postmucronales. Pliegue periostracal

bien desarrollado en las valvas I-VII. Las áreas laterales y terminales (valva cefálica y

región postmucronal de la valva anal) presentan el mismo tipo de escultura, mientras que en

las áreas centrales el arreglo de la escultura es generalmente longitudinal. Articulamento

bien desarrollado, consiste de placas de inserción y lámina sutural. Las placas de inserción

divididas en varias hendiduras, que forman dientes de inserción, los cuales pueden ser lisos

o pectinados. Poros de los estetos radiales en la parte ventral de las valvas y bien

desarrollados. Cinturón variable en cuanto al tipo de ornamentación que presenta, angosto

que no se extiende sobre las valvas, permitiendo que la superficie del tegumento sea mayor,

con respecto al articulamento (Smith en Moore, 1960).

Familia Ischnochitonidae Dall, 1889

Diagnosis: Quitones de cuerpo ovalado a elongado. Tegumento de las valvas intermedias

divididas en áreas laterales y central por medio de una línea diagonal. Articulamento de las

valvas cefálica y anal con varias hendiduras, las valvas intermedias presentan por cada lado

generalmente uno y algunos géneros hasta dos hendiduras.

57

Subfamilia Chaetopleurinae Plate, 1899

Diagnosis: Quitones con superficie tegumental fuertemente esculpida y definida por hileras

de nódulos que se disponen radialmente en la superficie de la valva anal, cefálica y en las

áreas laterales de las valvas intermedias, mientras que en las áreas centrales se disponen

longitudinalmente. Las placas de inserción presentan bordes con incisiones o hendiduras de

inserción y un sólo diente en las valvas intermedias. Los bordes son generalmente lisos.

Cinturón cubierto por escamas muy pequeñas y simples, en ocasiones se pueden encontrar

en formas diferentes acompañadas de espículas y pelos fibrosos, de diferentes longitudes.

El diente medio de la rádula es ancho y de forma subcuadrangular, los dientes laterales

mayores pueden ser tricúspides o bicúspides (Smith en Moore,1960).

Género Chaetopleura Shuttleworth, 1853

Diagnosis: Quitones de tallas pequeñas a grandes. Tegumento granular o noduloso que se

dispone radialmente en las áreas terminales y laterales de las valvas intermedias. Los

gránulos son más pequeños y fusionados en las áreas centrales. Las placas de inserción

presentan bordes lisos, las valvas intermedias presentan una hendidura por lado. Cinturón

cubierto por escamas pequeñas y ovaladas que pueden presentar espículas y en algunas

especies entre las escamas, pelos fibrosos. Diente mediano de la rádula ancho y

subcuadrangular, diente mayor lateral tricúspide o bicúspide (Ferreira, 1983b).

Comentarios del género: Ferreira (1983b) en un estudio sistemático del género de la

región Sur de California a Perú, indicó que existen errores en la taxonomía de algunas

especies del Nuevo Mundo, debido a que la terminología usada para describir a este género

no es la apropiada, por lo que su interpretación en ambigua.

Ferreira (1983b) menciona que uno de los términos con más confusión es el mucro y de las

porciones del cinturón entre valva y valva, término denominado “puentes del cinturón”. Por

lo que la errónea interpretación de estas estructuras en particular, no ayudan a determinar a

las especies correctamente.

58

Dicho autor basándose en la morfología de la rádula, posición del mucro y del tipo de

elementos presentes en los puentes del cinturón, reporta para el Pacífico Oriental 5

especies: C. scabricula Sowerby, 1832; C. lanuginosa Dall, 1879; C. unilineata Leloup,

1954, C. roddae Ferreira, 1983 y C. shyana Ferreira, 1983. De las cuales C. roddae sólo se

considera endémica de Centroamérica, mientras que las demás también se distribuyen en el

Golfo de California.

59

Chaetopleura scabricula Sowerby, 1832

(Figura 10)

Chaetopleura lurida Sowerby, 1832 Keen, 1958: 524; Thorpe en Keen, 1971: 524, Fig. 41; Abbott,

1974: 401,Fig. 4701.

Chaetopleura bullata Carpenter, 1856 Keen, 1958: 524, Fig. 33.

Chaetopleura parallela Dall, 1921 Abbott, 1974: 401,Fig. 4701.

Material revisado: 7 especímenes de 9.8-23.4 mm de longitud, Bahía Eclipse, BC, 18/XII/ 1960, CNMO-055; 5 especímenes de 10.1-

27.3 mm de longitud, Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro, 23/IX/1965, CNMO-048. Total de organismos 12.

Descripción: Cuerpo ovalado de 9.8– 18.1- 23.7 mm de longitud y 6.4– 12.4- 13.6 mm de

ancho incluyendo el cinturón (Fig. 10. A).

Color en preservación: grisáceo, café obscuro y blanco, especialmente en las áreas

laterales. Los organismos más frescos presentan moteado café y negro en las áreas

centrales, mientras que en las áreas laterales son más obscuras.

Tegumento: granular de dos tamaños, los pequeños se localizan en las áreas centrales de

las valvas intermedias y en la región anteromucronal de la valva anal. Los grandes en la

valva cefálica y anal (región postmucronal) y áreas laterales de las valvas intermedias (Fig.

10. A).

Cinturón: cubierto por dos tipos de derivados epidérmicos: escamas microscópicas que

son las más abundantes y que se distribuyen en toda la superficie del cinturón formando

una especie de alfombra; pelos fibrosos dispersos entre las espículas, los cuales son muy

largos con respecto a las escamas (pueden medir hasta 3 mm de longitud), que se acumulan

en las zonas de inserción entre valva y valva (Fig. 10. E).

Valva cefálica (I): con forma de abanico, ventralmente con 9-11 hendiduras en la placa de

inserción, dientes amplios y ligeramente serrados (en ocasiones pueden ser lisos), los

cuales se encuentran delimitados por líneas de poros radiales con respecto al pliegue

periostracal (Fig. 10. B). Dorsalmente, presenta gránulos alargados con cima aplanada,

hacia la periferia suelen ser más grandes y conforme se acercan al ápice disminuyen su

tamaño y altura. Estos pueden formar líneas radiales al ápice, variables en número

dependiendo del grado de madurez del organismo (Fig. 10. A).

60

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de

inserción, dientes pequeños con bordes ondulados a veces ligeramente acanalados. También

pueden presentar coloraciones café obscuro; apófisis delgadas, poco prolongadas; seno

yugal medianamente ancho y placa yugal lisa la cual es horizontal excepto en la valva II,

donde es de curvatura convexa (Fig. 10. C). Dorsalmente presenta escultura granular, más

densa hacia las áreas centrales con gránulos redondeados y achatados que forman líneas

longitudinales. Su número puede variar dependiendo del grado de madurez del organismo,

en organismos adultos es mayor que en los juveniles; ocasionalmente los gránulos se

pueden anastomosar sobre todo en la región yugal. Las áreas laterales presentan una

granulación parecida a la de la valva cefálica, los gránulos forman líneas paralelas a la línea

diagonal, las cuales, en organismos adultos (23 mm) son de 10-15 líneas (Fig. 10. A).

Valva anal (VIII): ventralmente, con alrededor de 9-11 hendiduras en la placa de

inserción; apófisis pequeñas y delgadas, más anchas que alargadas, mucro liso y poco

elevado situado en la porción media de la valva; seno yugal liso (Fig. 10. D). Región

anteromucronal con densa escultura de gránulos redondeados que forman líneas

longitudinales; la región postmucronal presenta líneas radiales de gránulos con respecto al

mucro (Fig. 10. A).

Distribución: Esta especie se extiende desde la parte central del Golfo de California,

México, hasta el Norte de Colombia (Ferreira, 1983b).

El material revisado corresponde a Bahía Eclipse, Isla Partida B. C y Playa Las Gatas,

Zihuatanejo, Guerrero, México.

Observaciones: Las valvas pueden estar cubiertas por balanos, algas y sedimentos finos.

Los organismos adultos presentan sobre el tegumento colonias de briozoos, los cuales

pueden cubrir totalmente la escultura. Es muy común también encontrar huellas o

reminiscencias de gránulos del tegumento, que fueron arrancados por la erosión del oleaje.

Comentario sobre la sistemática del género: Ferreira (1983b) realizó una revisión al

género Chaetopleura Shuttleworth, 1853 en la que menciona que Sowerby (1832) describió

61

3 especies de este género para el Pacífico Oriental, consideradas en ese entonces como

parte del género Chiton: C. luridis, C. scabriculus y C. columbiensis. Además enfatiza en

que las descripciones de éstas especies eran diferentes únicamente en las características del

cinturón denominadas como: tipo “velutino” para C. luridis; tipo “piloso” para C.

scabriculus y tipo ”granuloso” para C. columbiensis.

Esta terminología tan particular hizo difícil su uso y sobre todo el reconocimiento de los

tipos de cinturón para cada especie. Por un lado por la falta de esquemas y por el otro,

porque no se explicaba claramente la diferencia entre los tipos de cinturón, por lo que

dichas especies eran prácticamente indistinguibles.

En ese mismo estudio también mencionó que Reeve (1847) ( en Ferreira, 1983b) revisó la

escultura tegumental de estas especies y observó que no presentaban diferencias

significativas para separarlas en tres especies diferentes, sino que se trataba de una misma

especie. Finalmente concluyó que esta especie presentaba variaciones en cuanto a los

derivados epidérmicos del cinturón. Estas observaciones, permitieron que C. luridis, C.

scabriculus y C. columbiensis se consideraran como sinónimos de C. lurida.

Más tarde Ferreira (1983b) realizó una revisión al holotipo y sintipo de C. lurida, las cuales

revelaron que estos especímenes no correspondían con la descripción original, por ello se

suprimió este nombre asignándole C. scabricula Sowerby, 1832.

Discusión: Este género ha sido reportado para el Nuevo Mundo por Keen (1958), Thorpe

(en Keen, 1971), Abbott (1974), Smith (1977), Ferreira (1983a) y Kaas y Van Belle (1998).

Esta especie es conocida comúnmente por C. lurida. Pero se ha establecido que el nombre

nominal es Chaetopleura scabricula. Los autores que la han reportado con el nombre de C.

lurida son: Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971), Abbott (1974) Kaas y Van Belle (1980).

Los especímenes revisados presentaron variaciones intraespecíficas, sobre todo a nivel del

número y tamaño de gránulos en el tegumento. En las observaciones realizadas a varios

62

especímenes, no se encontró diferencia en las características de las valvas (apófisis, seno

yugal y dientes de inserción), en el número de hendiduras de las placas de inserción y en los

elementos del cinturón.

Ferreira (1983a) en un estudio de la fauna poliplacófora de las Islas Revillagigedo, observó

variaciones en el color del tegumento (café obscuro con bandas longitudinales) y gránulos

más pequeños. Él concluyó que estas variaciones son coespecíficas de su rango de

distribución con respecto a las de las Islas Revillagigedo y que estas distinciones

fenotípicas no eran suficientes para separar taxonómicamente a estas poblaciones,

proponiendo que cuando se estudien las poblaciones de estas islas se les denomine como

Chaetopleura scabricula de las Islas Revillagigedo.

C. scabricula se distingue de las demás especies de éste género: C. laniginosa, C.

unilineata y C. shyana además de que es la única especie reportada para el Pacífico

mexicano y porque presenta pelos córneos no espiculosos en el cinturón. Por otro lado se

diferencia claramente de las tres especies del Pacífico Oriental (con pelos en el cinturón)

por la distribución de los derivados epidérmicos, así como en la proporción del cuerpo,

escultura del tegumento y mucro, estas especies son: C. hennahi Gray, 1828; C. peruviana

Lamarck, 1819 y de C. fernandensis Plate, 1899.

63

A

Fig. 10. Chaetopleura scabricula. A) organismo completo en vista dorsal.

64

BCD E

Fig.10. B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) ampliación de las escamas y pelos fibrosos del cinturón.

D

B

C

E

65

Género Ischnochiton Gray, 1847

Diagnosis: Quitones generalmente de tallas pequeñas. Valvas ovaladas o subovaladas;

escultura del tegumento de las áreas laterales con costillas radiales, en las áreas centrales

fina escultura granular, que pueden formar costillas. Valva anal con mucro bien

desarrollado. El articulamento de la valva anal y cefálica con más de 8 hendiduras. Valvas

intermedias usualmente con dos o más hendiduras.

Comentarios: Este género es uno de los más abundantes de la fauna Polyplacophora en las

costas del Pacífico mexicano, ya que se han reportado hasta ahora 8 especies (Kaas y Van

Belle, 1998).

Thorpe (en Keen, 1971) reporta al género bajo el nombre de Radsiella Pilsbry, 1892

argumentando que sigue la recomendación de Thiele (1929), quién en un estudio al género

observó que los representantes del Viejo y Nuevo Mundo presentaban diferencias

consistentes para separar geográficamente al género en: Ischnochiton para el Viejo Mundo

y Radsiella para el Nuevo Mundo. Thorpe (op. cit.) no menciona cuales fueron las

diferencias consistentes para proponer esta división del género, sólo se limita a mencionar

que el género Radsiella presenta en las valvas intermedias dos hendiduras en la placa de

inserción.

Por otro lado los estudios realizados de este género en el Nuevo Mundo por Smith (1977),

Ferreira (1978, 1983b, 1984, 1987) y Kaas y Van Belle (1998), coinciden en mantener el

nombre original Ischnochiton, ya que Thiele (op. cit.) no presentó evidencias acerca de las

diferencias “considerables” que observó para sustentar su propuesta. Por lo tanto, en este

trabajo se apoya el argumento de los autores anteriormente mencionados.

66

Ischnochiton muscarius Reeve, 1847

(Figura 11)

Ischnochiton muscarius Keen, 1958: 521, Fig. 16.

Radsiella muscaria Thorpe en Keen, 1971: 869, Fig. 17.

Material revisado: 5 especímenes de 6.3-9.7 mm de longitud, Isla Espíritu Santo B.C, 22/ IV/ 1966, CNMO-066; 9 especímenes de 4.7-

11.5 mm de longitud, Isla Pájaros, Mazatlán, Sinaloa, 14/ V/1979, CNMO-053; 1 especímen de 11.9 mm de longitud, Pto. Mazatlán,

Sinaloa, 5/ X / 1957, CNMO-068; 2 especímenes de 9.4-17.2 mm de longitud, Isla Piedra, Mazatlán, Sinaloa, 4/ V/ 1979, CNMO-052; 3

especímenes de 13-18.2 mm de longitud, Playa Camino Contramar, Zihuatanejo, Guerrero, (sin fecha), CNMO- 021; 7 especímenes de

12.1- 18.1 mm de longitud, Playa Camino al Almacén, Zihuatanejo, Guerrero, 5/I/ 1963, CNMO-043; 3 especímenes de 7.4-25.1 mm de

longitud, Bahía Zihuatanejo, Guerrero, 6/I / 1949, CNMO-026; 4 especímenes de 8.1-19.8 mm de longitud, Playa Las Gatas, Zihuatanejo,

Guerrero, 23 / IV / 1965, CNMO-045; 2 especímenes de 13.2- 15.5 mm de longitud, Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Guerrero, 13/ XII / 1964,

CNMO-013; 2 especímenes de 10.1-13.7 mm de longitud, Isla Sacrificios, Veracruz, I/ 1962, CNMO-072. Total de especímenes

revisados 41.

Descripción: Cuerpo elongado de 6.7– 13.4– 25.1 mm de longitud y 6.1– 10.5– 13.8 mm

de ancho, incluyendo el cinturón (Fig. 11. A).

Color en preservación: variable, pero en general fluctúa entre verdes olivos, grisáceos y

café obscuro; superficie moteada con líneas y manchas blancas y café en diferentes

tonalidades, su distribución en el tegumento es variada. La valva cefálica presenta un

patrón de coloración definido, caracterizada por pequeñas manchas verde olivo o café

verdoso que sobresalen del tegumento dando un aspecto jaspeado; mientras que en la valva

anal las manchas se localizan principalmente al centro, justo en la región postmucronal y

las líneas obscuras se encuentran contiguas a Esta región. Las valvas intermedias presentan

un patrón moteado bien definido en las áreas centrales, ocasionalmente se pueden observar

bandas longitudinales obscuras en la región del yugum; las áreas laterales presentan surcos

finos (el número de éstas, depende del tamaño del organismo), tanto las líneas como las

manchas presentan la misma coloración café verdosa.

Tegumento: de las valvas cefálica y anal granular y las áreas laterales de las valvas

intermedias presentan costillas, las cuales se constituyen del arreglo longitudinal de los

gránulos (Fig. 11. A). El resto del tegumento (áreas centrales y zona anteromucronal)

presentan una granulación de tipo microscópica, la cual puede anastomosarse para formar

67

líneas o surcos muy finos sobre todo en las zonas adyacentes a las áreas laterales; en la

zona del yugum la granulación puede ser mínima y en ocasiones puede estar ausente.

Cinturón: de mediano grosor, cubierto por pequeñas escamas traslapadas entre sí,

redondeadas hacia uno de sus extremos y en el otro, presenta un pico bien pronunciado

(Fig. 11. E). Las escamas son hacia su base, verde obscuro y de la zona media al final de la

valva, blancas. Otra porción de escamas presenta el mismo patrón, pero en este caso las

regiones verde obscuras aumentan, disminuyendo así las zonas blancas originando escamas

más obscuras. El resultado son escamas de diferente color que por su distribución forman

bandas claras y obscuras intercalandas (Fig. 11. F).

Valva cefálica (I): placa más ancha que larga, ventralmente, puede ser de color verde de 9-

11 hendiduras en la placa de inserción, dientes con bordes lisos (Fig. 11. B). Dorsalmente,

presenta de 50-57 surcos finos radiales al ápice (Fig. 11. A).

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con 2 hendiduras en la placa de inserción;

dientes lisos y pequeños; apófisis medianas; seno yugal variable en su amplitud de la II-IV

es amplio mientras que para las valvas V-VIII suele ser más angosto; en las valvas III-VII

puede ser moderadamente cóncavo y para la valva II, placa yugal lisa (Fig. 11. C).

Dorsalmente, son evidentes las áreas laterales divididas por líneas diagonales; con 6-11

finas costillas que nunca se anastomosan (Fig. 11. A).

Valva anal (VIII): ventralmente, de 10-12 hendiduras de inserción en la placa de

inserción, dientes de tamaño variable con bordes lisos; seno yugal amplio, placa yugal lisa

y moderadamente cóncava en vista dorsal. Apófisis pequeñas y poco prolongadas o

angostas, mucro prominente y situado anteriormente (Fig. 11. D). Dorsalmente, la región

postmucronal presenta de 40-45 finos surcos. Región anteromucronal granular

microscópica, generalmente los gránulos se anastomosan en los bordes adyacentes a los

surcos (Fig. 11. A).

Distribución: Esta especie se localiza desde Isla Venado, Guaymas, Sonora hasta La

Ventosa, Salina Cruz, Oaxaca, México (Ferreira, 1983b).

Los especímenes examinados pertenecen a las localidades de Isla Espíritu Santo B.C;

Mazatlán, Sin. (Isla Chivos, Isla Piedra, Isla Pájaros); Zihuatanejo, Gro. (Isla Ixtapa, Playa

Las Gatas, Playa Camino Contramar) e Isla Sacrificios, Veracruz.

68

I. muscarius sólo se distribuye en el Pacífico Oriental mexicano, por lo que puede ser

dudoso el dato de la localidad de Isla Sacrificios, Veracruz, aunque conviene confirmarlo.

Por lo pronto, no se considera para fines de distribución.

Observaciones: El material examinado presentó variaciones intraespecíficas, sobre todo de

coloración del tegumento y en el número de surcos finos en las áreas laterales de las valvas

intermedias. Ambos caracteres se modifican dependiendo del grado de madurez del

organismo.

Por ejemplo, el número de surcos de las áreas laterales es menor 4-6 en los organismos

juveniles (13 mm), mientras que en los adultos (25 mm) alcanzan un número entre 10-13.

En cuanto a la coloración del tegumento los quitones juveniles son de coloraciones muy

claras, y los adultos suelen ser más obscuros en preservación.

Ischnochiton muscarius se diferencia de las demás especies de este género por presentar

escamas con una zona más clara que la otra (verde y blanco) y por el moteado característico

obscuro de las áreas centrales. La escultura del tegumento se aprecia mejor cuando se

observa a las valvas sin exceso de fijador (secas) y a contraluz.

Discusión : Esta especie ha sido reportada por Keen (1958), Thorpe (en Keen 1971), Smith

(1977) y Ferreira (1983a).

Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.) diagnosticaron a la especie incorrectamente,

particularmente cuando se refieren a la escultura del tegumento, ya que mencionan “áreas

con surcos o listones irregulares...” y “con alrededor de 50 costillas en la valva cefálica, de

6-10 en las áreas laterales y 40 en la valva anal...”.

El uso del término “costillas” es incorrecto, ya que no es posible observar costillas en el

tegumento y mucho menos “listones irregulares”. Las costillas son unidades bien definidas

que generalmente se continúan por un surco ancho y profundo o del mismo grosor de la

69

costilla. Por otro lado las costillas suelen estar elevadas, por ello en este caso no es correcto

hablar de este tipo de escultura del tegumento, sobre todo para las áreas terminales.

La descripción correcta de la escultura tegumental de I. muscarius es surcos finos que se

forman como consecuencia del arreglo radial de los gránulos (Fig. 11. A).

La sistemática de I. muscarius no ha sido bien estudiada, aunque esta es una especie con un

amplio rango de distribución y muy común en las costas mexicanas. Por ello existen

problemas en su reconocimiento, debido a que no se han definido adecuadamente

basándose en caracteres taxonómicos distintivos.

Ferreira (1983a) reconoce a esta especie para las Islas Revillagigedo y concluye que no

varían morfológicamente con respecto a los especímenes de las otras áreas de distribución.

También presenta fotografías del tegumento de las valvas (Ferreira, 1983a: 312, Fig. 7 y 8),

en las cuales se muestra muy bien el tipo de escultura de esta especie, los gránulos y los

finos surcos radiales al ápice. A pesar de la valiosa información que aporta a la sistemática

de ésta especie, Ferreira (op. cit.) no resuelve el problema de la diagnosis de la especie, ya

que la terminología que usa es muy parecida a la de Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.).

70

Fig. 11. Ischnochiton muscarius. A) organismo completo en vista dorsal; B) valva cefálica I;C) valva intermedia V; D) valva anal VIII; E) escamas en vista basal y frontal; F) disposición de las escamas en el cinturón.

AB

C

D

E

F

71

Ischnochiton aethalotus Dall, 1919

(Figura 12)

Ischnochiton tridentatus Pilsbry, 1893 Keen, 1958: 522, Fig. 23.

Ischnochiton aethalotus Dall, 1919 Keen, 1958: 522.

Radsiella tridentata Pilsbry, 1893; Thorpe en Keen, 1971:869, Fig. 22.

Material revisado: 49 especímenes (secos) de 6.2 – 22.7 mm de longitud, Entre Bahía Eclipse e Isla Partida, BC, 18/XII/1960, CNMO-

056. Total de organismos 49.

Descripción: Cuerpo ovalado de talla mediana 6.2- 14.6- 22.7 mm de longitud y 4.3- 8.9-

13.4 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 12. A).

Color en seco: verde grisáceo y café verdoso con manchones claros, sobre todo en las áreas

centrales de las valvas intermedias. Todas las valvas presentan un patrón moteado de beige,

verde claro y obscuro. Cinturón verde claro, ocasionalmente puede presentar una valva más

obscura que el resto.

Tegumento: granular microscópico que se anastomosa y forma una red muy fina, sobre

todo en las áreas centrales de las valvas intermedias y la región anteromucronal de la valva

anal. En las áreas laterales y terminales la disposición de los gránulos es anastomosada y

forma costillas, dispuestas en zigzag, algunas líneas pueden ser más sinuosas que otras (Fig.

12. A).

Cinturón: cubierto de escamas con superficie estriada, traslapadas entre sí,

aproximadamente el 50% del tamaño de I. muscarius, más anchas que largas y redondeadas

en su extremo anterior (Fig. 12. E y F).

Valvas: en general muy arqueadas, ventralmente, verde obscuro y blanco, así como

evidentes las zonas de inserción de los músculos del manto.

Valva cefálica (I): en vista ventral con alrededor de 17 hendiduras en la placa de inserción,

dientes anchos con bordes lisos, a veces ligeramente ondulados, delimitados por líneas de

poros radiadas (poros de los estetos) con respecto al pliegue periostracal y ápice

ligeramente cóncavo (Fig. 12. B). En vista dorsal moteada de blanco y verdes grisáceos,

escultura granular anastomosada formando líneas en zigzag dispuestas concéntricamente

con respecto al ápice de la valva y que son más evidentes hacia la periferia. (Fig. 12. A).

72

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con 3 hendiduras en cada lado de la placa de

inserción, ocasionalmente se pueden presentar 2 dientes pequeños, delimitados por líneas

de poros que se unen lateralmente al pliegue periostracal. Apófisis poco prolongadas y

delgadas con bordes redondeados; seno yugal amplio y placa yugal lisa (Fig. 12. C). En

vista dorsal es poco convexo; ápice poco pronunciado. Dorsalmente, las áreas centrales

presentan escultura similar a la de la región anteromucronal, es decir, gránulos

anastomosados de tal forma que se observa una porción elevada y contigua a esta una zona

más baja, dando la apariencia de un poro y así sucesivamente. Áreas laterales elevadas con

escultura granular anastomosada, formando líneas verticales en zigzag y ocasionalmente

onduladas (Fig. 12. A).

Valva anal (VIII): ventralmente, con alrededor de 11 hendiduras en la placa de inserción,

delimitadas por líneas de poros de los estetos; seno yugal horizontal y placa yugal lisa.

Apófisis pequeñas y delgadas; superficie ventral rugosa, blanca y verde obscura (Fig. 12.

D). Dorsalmente, la regionalización es muy clara debido a la disposición y arreglo de los

gránulos, en la región anteromucronal están anastomosados dando la apariencia de una red;

la región postmucronal con gránulos más prominentes y anastomosados, formando líneas

en zigzag. Mucro elevado situado en la parte media de la valva (Fig. 12. A).

Distribución: De La Paz, Bahía Gonzaga y del Golfo de California a Guaymas, Sonora,

México (Thorpe en Keen, 1971).

Los especímenes estudiados corresponden a la zona entre Bahía Eclipse e Isla Partida, Baja

California, México.

Observaciones: Los organismos estudiados, se encontraron en seco con buenas

condiciones de preservación. Probablemente el color del tegumento pueda diferir en

especímenes preservados en fijadores y en vivo.

Discusión: Esta especie ha sido reportada por Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971) y Kaas

y Van Belle (1998). Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.) han definido la escultura del

tegumento de las valvas como “estriada longitudinalmente en forma de V”, descripción que

73

no corresponde con la Fig. 12. A, en donde se observa la escultura de las valvas. Es

correcto decir que “presenta líneas longitudinales en zigzag” en las áreas laterales y para las

áreas terminales “líneas en zigzag concéntricas al ápice”.

Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.) mencionan también que I. aethalotus es comúnmente

confundida con I. muscarius, probablemente porque en ambas descripciones se menciona

que el tipo de escultura es con costillas, lo que indica que es importante hacer énfasis en las

diferencias de la escultura del tegumento de las especies correctamente, para evitar

confusiones en su reconocimiento.

Smith (1977) en un estudio sobre la rectificación de la nomenclatura de los quitones del

Pacífico Oriental, revisó el holotipo de esta especie y observó mayor número de hendiduras

en la valva cefálica, de acuerdo a lo que se había reportado en la descripción original.

El número descrito para esta especie fue de 13 hendiduras en la valva cefálica, mientras que

Smith observó 18 hendiduras en el holotipo. Por lo tanto el número de las hendiduras

reportado para la especie fue incorrecto, por ello se mantuvo el nombre original I.

aethalotus suprimiendo el de I. tridentatus. En el presente trabajo se observó el número de

hendiduras en la valva cefálica de 10 especímenes, en los cuales se encontraron 17

hendiduras.

Smith (1977) también menciona que Thorpe (en Keen, 1971) hizo sinónimo a I. tridentatus

de I. aethalotus, sin fundamentar su propuesta. Aunque no se haya justificado el uso de la

sinonimia con I. tridentatus, así como el uso del género Radsiella para el Nuevo Mundo,

algunos autores han reportado erróneamente a la especie como Radsiella tridentatus.

En reportes de recolectas hechas en México, es muy común encontrar a las especies de este

género determinadas bajo el nombre de Radsiella. Una de las razones por las que este

nombre genérico ha sido aceptado, es por la gran influencia que el trabajo de Thorpe (en

Keen, 1971) tiene sobre la mayoría de los malacólogos en México.

74

Kaas y Van Belle (1998) reportan a esta especie como I. aetholotus (como sinónimo de I.

muscarius), probablemente sea un error de escritura al substituir la segunda “a” por una

“o”, ya que nominalmente no existe ninguna especie con este nombre.

75

AB

C

D

EF

Fig. 12. Ischnochiton aethalotus. A) vista dorsal del organismo completo; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) vista basal y frontal de las escamas; F) disposición de las escamas en el cinturón.

76

Género Stenoplax Dall, 1879

Diagnosis: Quitones de tallas pequeñas a grandes, con cuerpo elongado, más largos que

anchos. Color muy variable. Valvas moderadamente aplanadas. Valvas intermedias, poco

arqueadas, con áreas laterales de poco a muy elevadas. La valva anal es la más grande de

las valvas, semicircular; mucro poco evidente situado central o posteriormente. Placas de

inserción de la valva cefálica de 8-14, valvas posteriores con 9-15 hendiduras y en las

valvas intermedias con 1-3 o más hendiduras. Superficie generalmente granular (los

gránulos se pueden anastomosar para formar una escultura radial o concéntrica) y con

costillas en las áreas laterales y terminales. Cinturón grueso, con escamas de pequeñas a

extremadamente pequeñas, con superficie lisa o estriada (Smith en Moore, 1960).

Comentarios: Estos quitones pueden ser herbívoros, carnívoros (S. floridana Pilsbry,

1892) y omnívoros. Además, presentan un hábitat muy restringido, se localizan sobre todo

debajo de las rocas y enterrados en substratos abundantes en oxígeno. Se les encuentra sólo

en aguas someras, siempre inundadas y hasta 2-3 m de profundidad. Sólo S. purpuracens

Adams, 1845 ha sido colectada hasta 90 m de profundidad en las costas Oeste de Florida y

Las Bahamas (Bullock, 1987).

Subgénero Stenoradsia Dall, 1879

Diagnosis: Quitones de tallas grandes, tegumento fuertemente marcado. Las hendiduras de

inserción son variadas en número, especialmente las hendiduras de la valva cefálica y anal

suelen ser numerosas (Kaas y Van Belle, 1987).

77

Stenoplax (Stenoradsia) sonorana Berry, 1956

(Figura 13)

Stenoplax conspicua sonorana Keen, 1958: 528, Fig. 47; Thorpe en Keen, 1971: 871, Fig. 23;

Abbott, 1974: 397.

Stenoplax conspicua Rehder, 1987: 331, Fig. 446.

Material revisado: 4 especímenes de 20.7- 68.3 mm de longitud, Guaymas, Sonora, 22/III/ 1972, CNMO-003. Total de organismos 7.

Descripción: Cuerpo elongado de 20.7- 50.2- 68.3 mm de longitud y de 7.8- 20.8- 28.7

mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 13. A).

Color en preservación: verde grisáceo en las zonas periféricas y blanco en las zonas

centrales y áreas laterales; región posterior del yugum y ápice rosa; yugum con una banda

obscura en forma de cuña, el cinturón ocasionalmente es verde aceituna y amarillo.

Tegumento: granular en las áreas centrales y región anteromucronal. Las áreas laterales,

valva cefálica y región postmucronal de la valva anal con gruesas costillas y de 3-4 gruesos

surcos principales, concéntricos al ápice así como otros más pequeños y menos profundos.

Yugum y ápice generalmente erosionados (Fig. 13. A).

Cinturón: cubierto de numerosas escamas arqueadas, alargadas con puntas roma y

superficie ligeramente acanalada con líneas verticales, punta redondeada, base obscura y

achatada (Fig. 13. F). Por la disposición de las escamas puede presentar manchones

obscuros y otros más claros (Fig. 13. E).

Valvas: en general gruesas y poco arqueadas, ventralmente de color rosa y verde,

evidentes las zonas de inserción de los músculos del manto.

Valva cefálica (I): ventralmente, con alrededor de 13 hendiduras en la placa de inserción,

dientes gruesos y lisos (Fig. 13. B). Dorsalmente, con escultura granular microscópica, la

cual forma costillas radiales y 4 profundos surcos principales concéntricos al ápice,

contiguos a estos se encuentran otros más pequeños y menos profundos; ápice elevado y

cóncavo (Fig. 13. A).

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con 2 profundas y amplias hendiduras a cada

lado de la placa de inserción, especialmente en las valvas anteriores (II-IV) ya que las

posteriores (V-VII) pueden presentar hasta 4 hendiduras, dientes pequeños y lisos. La placa

78

del periostraco sobresale hacia los márgenes laterales de la valva; seno yugal amplio, placa

yugal lisa y ligeramente cóncava excepto por la placa II en donde es convexa. Superficie de

las áreas centrales es mucho mayor que la de las áreas laterales. Apófisis angostas y

prolongadas en el extremo contiguo al seno yugal (Fig. 13. C). Dorsalmente, las áreas

centrales presentan escultura granular microscópica con disposición a manera de red y de 3-

4 líneas onduladas horizontales. Ápice erosionado y poco elevado. Áreas laterales

delimitadas por una línea diagonal con escultura granular que forma costillas elevadas; de

3-4 amplios surcos verticales, los cuales coinciden y se continúan con las líneas de las áreas

centrales. Generalmente se encuentran surcos más pequeños contiguos a los principales

(Fig. 13. A).

Valva anal (VIII): más grande y ancha que el resto, región anteromucronal más arqueada

que la postmucronal. Ventralmente, con alrededor de 11 hendiduras en la placa de

inserción, dientes anchos, gruesos con bordes moderadamente ondulados y su superficie

puede ser acanalada verticalmente; el pliegue periostracal de la valva es delgado. Apófisis

angostas y prolongadas; seno yugal amplio, placa yugal lisa y ligeramente cóncava (Fig. 13.

D). Dorsalmente, en la región anteromucronal presenta escultura granular microscópica, así

como líneas concéntricas al mucro; la región postmucronal se encuentra bien delimitada y

elevada de la parte anterior por una línea diagonal. Presenta gruesa escultura granular que

forma costillas radiales y 4 profundos surcos concéntricos al mucro que se continúan con

las líneas de la región anteromucronal, adyacentes a estos se encuentran otros más

pequeños y menos profundos. Mucro poco elevado y erosionado situado en la parte media

de la valva (Fig. 13. A).

Branquias: localizadas a lo largo del surco paleal, las cuales se distribuyen en la porción

media del surco, hasta mucho antes de la región anal.

Distribución: En la mitad Norte del Golfo de California, entre Bahía de San Carlos (en la

parte occidental) y la parte oriental de Guaymas, Sonora.

El material examinado corresponde a Guaymas, Sonora, México.

79

Discusión: Esta especie ha sido reportada por Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971) y

Abbott (1974), Kaas y Van Belle (1987) y Rehder (1981). En general estas descripciones se

basan en el tamaño y color del organismo, excepto por la descripción en extenso de Kaas y

Van Belle (op. cit.), en la cual se detalla en la morfología de las valvas y tipo de escultura

tegumental.

Los caracteres taxonómicos de la descripción de Thorpe (en Keen, 1971) para la subespecie

S. conspicua sonorana Berry, 1956 son muy parecidos a los caracteres de S. conspicua, de

tal forma que es difícil diferenciarlas, debido a que es inadecuada su descripción

morfológica.

Rehder (1981) la describe basándose casi exclusivamente en el color y talla de la especie,

pero en organismos en preservado en difícil mantener el color original y la talla exacta, por

lo tanto esta descripción no ayuda a definir a la especie.

Kaas y Van Belle (1987) presentan la descripción extensa de la especie, en este mismo

trabajo también mencionan que inicialmente Berry (1956) la definió como una subespecie

de S. conspicua. Posteriormente él mismo observó que el diente mayor lateral de la rádula

de S. sonorana presentaba un capuchón denticular tricúspide, a diferencia de S. conspicua

en el que el capuchón era tetracúspide. Bajo este criterio se separaron a las especies en,

siendo S. sonorana exclusiva para la Bahía de Guaymas, Sonora México.

Se examinó el capuchón denticular de 1 espécimen, el cual correspondió con las

características morfológicas (capuchón tricúspide) reportadas para Stenoplax (Stenoradsia)

sonorana.

En este mismo trabajo Kaas y Van Belle (op. cit.) proponen dos subgéneros del género

Stenoplax, incluyendo a S. sonorana dentro del subgénero Stenoradsia, argumentando su

división bajo criterios de la talla y escultura tegumental. En el subgénero Stenoplax colocan

a las especies de menor talla y escultura tegumental poco marcada, mientras que en el

80

subgénero Stenoradsia colocan a las especies grandes con escultura tegumental fuertemente

marcada.

En el presente trabajo se sigue la propuesta únicamente para S. (Stenoradsia) sonorana, ya

que la especie puede ser confundida con otras de tallas y escultura tegumental similar.

81

Fig. 13. Stenoplax (Stenoradsia) sonorana. A) organismo completo en vista dorsal.

A

82

BCD EF

Fig. 13. B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) escamas en vista frontal; F). disposición de las escamas en el cinturón.

B

C

D

F

E

83

Stenoplax limaciformis Sowerby, 1832

(Figura 14)

Stenoplax limaciformis Keen, 1958: 526, Fig. 44; Thorpe en Keen, 1971: 871, Fig. 24;

Abbott, 1974: 396 y Kaas y Van Belle, 1998: 74.

Material revisado: 2 especímenes de 19.7- 24.6 mm de longitud, Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Guerrero,

23/IV/1965, CNMO-019. Total de organismos 2.

Descripción: Cuerpo muy elongado de 19.7- 24.1- 26.6 mm de longitud y 8.3- 8.5- 8.9 mm

de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 14. A).

Color en preservación: de tonalidades en verde, especialmente hacia las zonas laterales y

áreas centrales. Superficie dorsal moteada en verde y blanco; cinturón verde con algunos

manchones blancos.

Tegumento: con finas costillas longitudinales en las áreas centrales y región

anteromucronal de la valva anal que nunca se anastomosa. Áreas terminales (valva cefálica

y región postmucronal de la valva anal) y áreas laterales de las valvas intermedias con

gránulos anastomosados, que dan aspecto de costras irregulares; ápice y mucro

generalmente erosionados (Fig. 14. E, F y G).

Cinturón: cubierto por diminutas escamas traslapadas (Fig. 14. I), que le dan un aspecto

aterciopelado muy fino (Fig. 14. H). Escamas alargadas, delgadas y translúcidas. Superficie

no observada.

Valva cefálica (I): ventralmente, con un rango de 10-12 hendiduras en la placa de

inserción, dientes lisos y prolongados; de tamaños diferentes; pliegue periostracal ancho y

ápice cóncavo (Fig. 14. B). Dorsalmente, presenta gránulos anastomosados, que forman

costras irregulares; hacia el ápice, la escultura suele desaparecer (Fig. 14. E).

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, pueden ser de color rosa, con 1 profunda

hendidura a cada lado de la placa de inserción, dientes gruesos, lisos y poco prolongados;

seno yugal amplio, placa yugal lisa y ligeramente cóncava, excepto en la valva II que es

convexa. Apófisis prolongadas, muy angostas y pequeñas (Fig. 14. C). Dorsalmente,

presenta costillas delgadas que no se anastomosan, presentes en las áreas centrales y región

yugal. Áreas laterales elevadas con gránulos que se anastomosan (Fig. 14. F).

84

Valva anal (VIII): ventralmente, con placa de inserción de 10-18 profundas hendiduras,

dientes de tamaños variados, lisos y poco prolongados. Seno yugal amplio y placa yugal

lisa; apófisis pequeñas con bordes redondeados(Fig. 14. D). Dorsalmente, presenta región

anteromucronal con finas costillas que no se anastomosan; mucro situado anteriormente;

región postmucronal con escultura granular hacia la periferia muy gruesa, con aspecto

costroso; hacia el centro del tegumento, presenta líneas onduladas concéntricas al mucro,

éstas pueden anastomosarse total o parcialmente (Fig. 14. G).

Branquias: delgadas que se extienden desde poco después de la cabeza hasta mucho antes

de la región anal, las primeras 4 suelen ser de menor tamaño que el resto.

Distribución: Se localiza desde Puertecitos y la Libertad, B. C, México hasta el Sur de

Perú (Kaas y Van Belle, 1987).

El material revisado corresponde a Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Guerrero, México.

Comentario: Bullock (1985) realizó un estudio comparativo (usando microscopía de

barrido) entre especies del Pacífico Oriental y especies del Caribe Mexicano, y observó que

S. limaciformis es muy parecida a S. purpuracens Adams, 1845 (del Caribe), ya que ambas

especies comparten caracteres morfológicos de la rádula.

Tales semejanzas fueron consideradas como evidencia, para suponer que esas especies del

Caribe y las del Pacífico Oriental son especies hermanas, en donde S. purpuracens está más

relacionada con S. limaciformis, ya que además de las similitudes de la rádula, ambas

especies presentan mucro central y costillas en el área central que no forman gránulos cerca

de las áreas laterales.

Discusión: Esta especie ha sido reportada por Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971),

Bullock (1985) y Kaas y Van Belle (1998).

Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.) describen incorrectamente la escultura del tegumento de

esta especie, ya que mencionan que presenta “escultura de surcos concéntricos”.

85

Bullock (op. cit.) rectifica la descripción de la especie, como “nodulosa concéntrica”, donde

estos nódulos pueden anastomosarse y dar un aspecto de gránulos dispuestos radialmente.

Siendo esta descripción la que define de mejor manera la escultura del tegumento de la

especie.

Bullock (op. cit) esquematiza el tipo de escultura de esta especie de la valva I, una valva

intermedia y la valva VIII. Estos esquemas son muy importantes ya que muestran la

morfología de las valvas, el tipo y la disposición de la escultura en cada una de ellas.

También estudió la densidad de los estetos, el capuchón denticular de la rádula y la

escultura del tegumento, las cuales son muy similares en la especie del Caribe S.

purpuracens y S. limaciformis del Pacífico Oriental. Su trabajo permitió redefinir a la

especie y diferenciarla de las demás especies de este género.

La importancia del estudio de Bullock, es que esquematiza la compleja escultura del

tegumento de esta especie, permitiendo que sea fácilmente identificada sin ser confundida

con otra especie del mismo género. Por otro lado, en su estudio incluye especies del género

Stenoplax que presentan un amplio rango de distribución, como S. limaciformis.

86

Fig, 14. Stenoplax limaciformis. A) vista dorsal del organismo completo; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral.

AB

C

D

87

Fig. 14. E) valva cefálica I; F) valva intermedia V; G) valava anal VIII en vista dorsal;

H) disposición en las escamas en el cinturón; I) escamas en la vista frontal.

88

Stenoplax sp. A

(Figura 15)

Material revisado: 2 especímenes de 29.8- 41.0 mm de longitud, (sin localidad y fecha), CNMO-031; 1 especímen de 28.5 mm de

longitud, Rocas de la casa del marino, Mazatlán, Sinaloa, 5/X/ 1957, CNMO-068. Total de organismos 3.

Descripción: Cuerpo muy elongado de 19.7- 33.1- 41 mm de longitud y 8.3- 12.5- 16.1

mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 15. A).

Color en preservación: rosa, sobre todo en las áreas laterales. Áreas centrales moteadas en

verde obscuro, amarillo y blanco especialmente en las zonas de inserción entre valva y

valva. Área yugal ocasionalmente con una línea obscura longitudinal, cinturón rosa obscuro

con manchones claros.

Tegumento: con costillas dispuestas en diferente disposición para cada región de las

valvas. Las costillas pueden ser onduladas, anastomosadas y bifurcadas o ramificadas,

dependiendo de la región en la que se encuentren (Fig. 15. E, F y G).

Cinturón: cubierto por diminutas escamas translúcidas que le dan aspecto de alfombra

(Fig. 15. I). Escamas con la cima medianamente alargadas y achatadas, que se angostan

ligeramente en su base y con superficie finamente acanalada (Fig. 15. H).

Valvas: en general poco arqueadas, anchas y prolongadas; seno yugal muy amplio; placa

yugal plana y lisa; apófisis pequeñas y poco prolongadas, ventralmente, son de color rosa

principalmente hacia el centro.

Valva cefálica (I): redondeada, placa más pequeña que el resto, ventralmente, con

alrededor de 12 hendiduras amplias en la placa de inserción, dientes prolongados con

bordes lisos de tamaños variados y delimitados por líneas de poros radiales (poros de los

estetos) al pliegue periostracal (Fig. 15. B). Dorsalmente, presenta costillas gruesas

dispuestas en zigzag, aplanadas en su base y dispuestas concéntricamente con respecto al

ápice; hacia la periferia de la valva la escultura tiene aspecto costroso irregular. Ápice

cóncavo con granulación fina (Fig. 15. E).

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura amplia y profunda a cada

lado de la placa de inserción, dientes lisos, pliegue periostracal delgado. Apófisis altas y

pequeñas; seno yugal muy amplio, placa yugal lisa y totalmente horizontal (Fig. 15. F).

89

Dorsalmente, las áreas centrales con costillas longitudinales que no se anastomosan y en la

región yugal casi desaparecen. Algunas costillas centrales pueden continuarse con las de las

áreas laterales. Ápice poco evidente; áreas laterales pequeñas, poco elevadas y delimitadas

por una línea diagonal; costillas onduladas más gruesas que las de las áreas centrales (Fig.

15. C).

Valva anal (VIII): más larga que las demás, semicircular en vista dorsal. Ventralmente,

con alrededor de 11 hendiduras en la placa de inserción, dientes de diferentes tamaños,

prolongados, lisos y bien separados entre ellos (Fig. 15. G). Dorsalmente en la región

anteromucronal con costillas diagonales dirigidas hacia el mucro y entrecortadas por

pequeños surcos (2-3) horizontales a la escultura. Mucro poco elevado y situado en la parte

anterior de la valva, la escultura en ésta zona suele ser nula y de superficie erosionada.

Región postmucronal poco elevada, con costillas onduladas más gruesas que en la región

anteromucronal y dirigidas concéntricamente; las costillas centrales suelen ser más elevadas

y gruesas que las demás, hacia la periferia suelen estar entrecortadas hasta perder su forma

y tener aspecto de costras de forma irregular (Fig. 15. D).

Distribución: El material examinado corresponde a Rocas de la casa del marino, Mazatlán,

Sinaloa, México.

Discusión: Esta especie ha sido definida temporalmente como Stenoplax sp. A, ya que

ninguna de las 9 especies de este género (S. magdalensis Hinds, 1845; S. boogii Haddon,

1886; S. limaciformis Sowerby, 1832; S. circumsenta Berry, 1956; S. conspicua Pilsbry,

1892; S. heatiana Berry, 1919; S. corrugata Dall, 1903; S. sonorana Berry, 1956; S.

mariposa Dall, 1919) descritas por autores como Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971),

Abbott (1974) y Bullock (1985) para el Pacífico Oriental, se asemejan a la especie del

presente trabajo.

Stenoplax sp. A presenta una escultura tegumental similar a la que presenta S. floridana del

Caribe y que es esquematizada por Bullock (1985). Las costillas y su disposición son muy

parecidas, aunque Stenoplax sp. A presenta una granulación anastomosada a manera de

90

costras irregulares hacia la periferia de las valvas I y VIII, mientras que en las valvas

intermedias, los gránulos anastomosados se encuentran los extremos de las áreas laterales.

Estos nódulos se van anastomosando más hacia el centro de las valvas, hasta formarse

costillas concéntricas, donde los bordes de éstas presentan hendiduras o depresiones y

algunas de ellas pueden estar entrecortadas (Fig. 15. B).

Bullock (op. cit.) en su estudio al género Stenoplax presenta especies del Caribe y del

Pacífico Oriental, de las cuales S. limaciformis y S. purpuracens son especies muy

relacionadas entre sí, ya que presentan similitudes en la escultura tegumental y en la

morfología de la rádula. Por ello las denomina “especies hermanas”, según la definición de

Mayr (1969) “pares de especies relativas las cuales están aisladas reproductivamente, que

son parecidas o idénticas morfológicamente”.

Stenoplax sp. A además de ser una especie no definida para el Pacífico Oriental, es posible

que sea “especie hermana” de S. floridana, lo que podría determinarse realizando un

estudio comparativo con material reciente de estas dos especies.

91

Fig. 15. Stenoplax sp. A. A) organismo completo en vista dorsal; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista dorsal.

A B

C

D

92

Fig. 15. E) valva cefálica I; F) valva intermedia V; G) valva anal VIII, en vista ventral; H) disposición de las escamas en el cinturón; I) vista frontal de las escamas.

E

F

G

H

I

93

Subfamilia Callistoplacinae Pilsbry, 1893

Diagnosis: Quitones de talla pequeña, con escultura del tegumento bien marcada,

generalmente presenta costillas radiales en las áreas laterales de las valvas intermedias.

Placas de inserción, con hendiduras en todas las valvas, dientes de inserción serrados. Sin

ocelos presentes. Cinturón angosto con ornamentación variable (Smith en Moore, 1960).

Género Callistoplax, Dall, 1882

Diagnosis: Quitones de talla pequeña. Escultura del tegumento con costillas marcadas

fuertemente. Áreas centrales con líneas sinuosas, dispuestas longitudinalmente. Placas de

inserción pequeñas y lisas. Cinturón delgado y poroso. Este género difiere de

Callistochiton, principalmente por la ornamentación en el cinturón, el cual es desnudo

excepto por una serie de poros (Thiele, 1929)

94

Callistoplax retusa Sowerby, 1832

(Figura 16)

Callistoplax retusa Keen, 1984: 879, Fig. 43.

Chiton retusus Kaas y Van Belle, 1998: 158.

Material revisado: 1 espécimen de 18.1 mm de longitud, Isla Ixtapa, Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Guerrero, 23/IX/ 1965, CNMO-019;

4 especímenes de 9.2- 15.6 mm de longitud, Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zihuatanejo, Guerrero, 27/IX/ 1965, CNMO-049. Total de

organismos 5.

Descripción: Cuerpo muy elongado, organismos de talla pequeña 9.2- 13.8- 18.1 mm de

longitud y 5.6- 7.16- 7.9 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 16. A).

Color en preservación: café claro a beige y blanco sobre todo en las áreas laterales y ápice

de las valvas intermedias, ocasionalmente puede presentar manchones obscuros en las

placas. Cinturón beige con mechones fibrosos cafés obscuros; el área yugal a veces

presenta una línea vertical obscura, más evidente en la valva VII.

Tegumento: granular, generalmente anastomosado, que forma costillas delgadas dispuestas

verticalmente en las áreas centrales y región anteromucronal de la valva anal. Costillas

gruesas en las áreas laterales, valva cefálica y región postmucronal de la valva anal; yugum

con granulación fina no anastomosada (Fig. 16. A).

Cinturón: delgado, suave, liso y cubierto por mechones de gruesos grupos de cerdas

arqueadas en número de 3-8, que se disponen formando una sola línea periférica a lo largo

del cinturón (Fig. 16. E).

Valvas: en general pequeñas y arqueadas con un tegumento grueso y escultura granular

anastomosada, pliegue periostracal muy grueso con escultura presente.

Valva cefálica (I): ventralmente, con alrededor de 7 amplias hendiduras en la placa de

inserción, dientes anchos y poco prolongados; evidentes zonas de inserción de los músculos

del manto (Fig. 16. B). Elevada dorsalmente y presenta escultura granular anastomosada,

que forma gruesas costillas radiales con respecto al ápice, distribuyéndose en grupos de

dos, este arreglo permite la formación de líneas onduladas dispuestas horizontalmente; las

zonas más bajas o surcos son amplios y presentan una granulación no anastomosadas. Los

bordes de la valva son ondulados y el ápice cóncavo (Fig. 16. A).

95

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de

inserción, dientes lisos y márgenes de las apófisis onduladas; seno yugal amplio, placa

yugal cóncava y lisa excepto en la valva II donde es ligeramente convexa (Fig. 16. C).

Valva anal (VIII): más larga que ancha, ventralmente el periostraco de la valva sobresale

por encima de los dientes de inserción, con alrededor de 17 hendiduras en la placa de

inserción, dientes en general pequeños excepto por los marginales muy separados entre sí y

poco prolongados. Presenta superficie porosa, seno yugal amplio y placa yugal lisa; apófisis

pequeñas y poco prolongadas (Fig. 16. D). Dorsalmente, con área anteromucronal muy

amplia, con escultura granular anastomosada que forma gruesas y elevadas costillas

diagonales generalmente bifurcadas. Mucro elevado situado posteriormente, cerca del

margen posterior de la valva, el cual está modificado en forma de media luna seccionada

por rayos concéntricos. Región postmucronal dirigida hacia abajo con escultura granular

anastomosada que forma gruesas costillas radiales al mucro con líneas de crecimiento

evidentes (Fig. 16. A).

Distribución: De las Islas Tres Marías, México hasta Centro América (Thorpe en Keen,

1971). El material examinado corresponde a Isla Ixtapa y Playa Las Gatas, Zihuatanejo,

Guerrero, México.

Discusión: Este género del Pacífico Oriental está representado sólo por Callistoplax retusa.

Esta especie ha sido únicamente reportada sólo por Thorpe (en Keen, 1971). Aunque el

esquema que presenta no es muy claro, el acercamiento en vista dorsal del organismo

permite observar los característicos mechones periféricos de pelos en el cinturón. También

presenta esquemas de las valvas I, V y VIII en vista dorsal, que permite la rápida

determinación de la especie.

C. retusa es una de las pocas especies descritas e ilustradas correctamente en la 2ª edición

de Keen (1971) Esta especie no presenta ningún problema sistemático y es fácil su

determinación. Aunque las valvas pueden estar cubiertas totalmente por algas y sedimentos,

con las características del cinturón y la talla es suficiente para reconocerla.

96

Fig. 16. Callistoplax retusa. A) organismo completo en vista dorsal; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) mechón del cinturón.

A BCDE

97

Familia Chitonidae Rafinesque, 1815

Diagnosis: Organismos de talla pequeña a grande, con escultura tegumental variada de lisa

a granular. Apófisis anchas. Seno yugal trapezoidal; placa yugal de ligeramente canalada a

pectinada. Valvas intermedias con hendiduras de inserción en número de 1-3 por cada lado.

Dientes de inserción de pectinados a lisos. Ventralmente con una típica depresión con

numerosos poros transversales en el tracto yugal. Cinturón liso con pequeñas y numerosas

escamas, espinas o espículas. Tegumento con o sin ojos verdaderos. Diente mayor lateral de

la rádula, siempre con capuchón denticular unicúspide (Bullock, 1988).

Comentarios: Bullock (1988) menciona que la estructura taxonómica que ha caracterizado

a la Familia Chitonidae, es la presencia de dientes de inserción pectinados, que ha

permitido que se mantengan juntos los grupos con escamas, espinas o sin ningún derivado

epidérmico. Pero esta clasificación taxonómica no ha resultado satisfactoria debido a que

está basada únicamente en este caracter.

Smith (1977) propuso una rectificación en la nomenclatura de los quitones, mediante la

revisión de algunos especímenes tipo, comparándolos con material reciente. Su tratamiento

sistemático acerca de ésta familia fue muy conservador, debido a que incluye a la mayoría

de las especies de esta familia como sinónimos de otras especies. Ya que según él, las

relaciones entre las especies no están bien conocidas.

Por otro lado, dicho autor resalta el hecho de que ha representado un gran problema la

identificación y determinación de algunas especies, debido a que las descripciones

originales son “inadecuadas”, así como que muchas de ellas no han sido nunca ilustradas.

A pesar de reconocer estos problemas, en su trabajo no ilustra ninguna estructura

taxonómica, y solo se limita a mencionar que las fotografías de las especies revisadas, se

encuentran disponibles en el Departamento de Zoología de la Academia de Ciencias de

California.

98

Aunque presentó un trabajo importante realizando la revisión de los especímenes tipo de

muchas especies de quitones, la falta de esquemas de las estructuras taxonómicas, no

permiten que todas sus observaciones y modificaciones a la descripción original, se

consideren como un nuevo aporte a las especies, ya que no es posible corroborarlas.

Bullock (1988) por su parte, propuso las siguientes estructuras taxonómicas que

caracterizan a la familia Chitonidae: morfología de las valvas, microestructura de la concha,

elementos del cinturón, estetos y rádula, los cuales permiten una clasificación natural de

este grupo.

En ese trabajo ilustra y describe detalladamente las estructuras de cada especie, al contrario

de Smith (1977). Además sugirió separar al género Chiton en la subfamilia Chitoninae, de

otros grupos cercanos como: Rhyssoplax, Teguloplax y Sypharochiton.

Subfamilia Chitoninae

Diagnosis: Organismos de talla pequeña a grande. Dientes de inserción con superficie

acanalada a fuertemente pectinada. Cinturón con escamas estriadas o lisas, traslapadas entre

sí. Estetos poco desarrollados (Bullock, 1988).

99

Género Chiton Linnaeus, 1767

Diagnosis: Organismos de talla grande, hasta 123 mm de longitud. Valvas aplanadas y de

elevadas a carinadas. Estructura tegumental muy variable y subtegumento poco

desarrollado. Escamas de forma y tamaño variable, lisas o estriadas longitudinalmente.

Diente mayor lateral de la rádula, con capuchón denticular mayor a los 90º. Borde distal del

diente centro lateral perpendicular con respecto al eje longitudinal del cuerpo.

Comentarios: El género Chiton fue descrito originalmente para el Nuevo Mundo.

Actualmente representa una fauna importante de las aguas someras del Pacífico Oriental,

Caribe y a lo largo de las costas de Sur América.

A pesar de la abundancia de las especies reportadas, poco se sabe acerca de su biología. C.

tuberculatus ha sido la única especie objeto de varios estudios biológicos (Bullock, 1988).

El género Chiton del Nuevo Mundo ha sido estudiado taxonómicamente por Reeve (1847),

Pilsbry (1892-1894) y Clesin (1903-1904) (en Smith, 1977). Además, los miembros de este

género en el Nuevo Mundo, presentan una gran diversidad en su morfología externa. Por lo

que ha sido necesario establecer subgéneros en la clasificación actual.

Bullock (op. cit.) enfatiza que las especies de la familia Chitonidae han sido situadas en el

género Chiton, ya que muchos autores durante la primera mitad del siglo XIX, insistieron

en colocar a la mayoría de los quitones en el género Chiton. Por ello algunos autores usaron

subgéneros para estudiarlos y evitar confusiones en su sistemática, los primeros taxónomos

en dividir al género fueron Gray (1847) y Thiele (1893) (en Smith, 1977) y (Bullock,

1988).

Bullock (op. cit.) realizó una investigación histórica acerca de los subgéneros que propone

y en donde enfatiza que Scutegeruli fue históricamente un sinónimo del subgénero

Diochiton introducido por Meuschen (1787) en (Bullock, 1988.), el cual fue no fue válido

100

ya que el nombre no estaba propuesto en su forma singular nominativa. También menciona

que Herrmannsen (1852) presentó este nombre en su forma correcta Scutigerulus. Pero aún

cuando el nombre fue escrito en forma correcta, la introducción de este nombre no es

adecuada, ya que Meuschen (op. cit.) lo usó como sinónimo del género Chiton.

Bullock (1988.) menciona que Thiele (1893) propuso el subgénero Diochiton, basándose en

las diferencias de la morfología de la rádula, patrones de distribución y nicho ecológico de

Chiton albolineatus. Pero según Bullock (op. cit.) estas diferencias no justifican el uso del

subgénero. Por ello Bullock (op. cit.) realizó un estudio más detallado de sus caracteres

taxonómicos, que fundamentan su propuesta para aceptar el subgénero Diochiton.

El subgénero está conformado por 7 especies: C. albolineatus Broderip y Sowerby, 1829 de

la provincia Panámica, la cual representa a la especie tipo del subgénero; C. squamosus

Linnaeus, 1764; C. goodallii Broderip, 1832 de las Islas Galápagos; C. marquesanus

Pilsbry, 1893 de las Islas Marquesa; C. viridis Spengel, 1797 del Caribe. Y el grupo de

especies de C. marmoratus el cual incluye la especie Panámica C. articulatus Sowerby,

1832 y la especie de las Indias C. marmoratus Gmelin, 1791.

En este mismo estudio, Bullock (1988) propone dentro del género Chiton tres subgéneros:

Chiton, Amaurochiton y Chondroplax Thiele, 1893. Mientras que Sypharochiton y

Ehyssoplax, Thiele, 1893, los consideró como géneros diferentes a este grupo taxonómico.

Estos subgéneros se basan en: 1) morfología de las valvas y poros de los estetos; 2)

elementos del cinturón (superficie de las escamas); 3) morfología de la rádula (orientación

de los dientes mayores, capuchón y ángulo del capuchón denticular) y 4) el sistema de los

estetos (características de los poros externos de los estetos).

El hecho de tomar en cuenta estas estructuras taxonómicas, hizo posible situar a especies

que no pertenecen al Nuevo Mundo en otros géneros.

101

Bullock (op. cit.) reconoce los problemas sistemáticos del género y propone la separación

del género en varios subgéneros. La cual se basa principalmente en la escultura del

tegumento y en los dientes radulares, en general hace uso de un grupo de caracteres

taxonómicos y no de uno en particular para sustentar su propuesta, de tal forma que logró

que la clasificación de éste grupo sea más natural. En el presente trabajo se sigue la

clasificación de los subgéneros propuesta por Bullock, ya que su estudio es el que se

encuentra ampliamente fundamentado.

La aportación de Bullock, es que presenta la definición y esquemas de los caracteres

taxonómicos clave para el género. Aunque en su trabajo hace énfasis en la descripción de la

rádula como un elemento eficaz para la definición de las especies de este género, el estudio

de esta estructura es válido sólo para algunos géneros, ya que hasta ahora no se ha

demostrado que la rádula tenga importancia sistemática para todas las especies de quitones

(Eernisse, 1994). Aunque la terminología que usa para algunas estructuras es antigua,

representa hasta ahora el trabajo sistemático más importante para el género Chiton del

Nuevo Mundo.

Subgénero Chiton Linnaeus

Diagnosis: Organismos de talla grande, hasta de 95 mm. Valvas subcarinadas. Yugum con

costillas longitudinales, con menor número de ellas hacía el ápice. Áreas centrales con

costillas longitudinales; áreas laterales elevadas con costillas bifurcadas (o anastomosadas)

que pueden parecer a simple vista nódulos. Escamas del cinturón grandes en general, con

costillas y pústulas apicales en su superficie.

Comentarios: Las especies que se incluyen en éste subgénero son las siguientes: C.

stokesii Broderip, 1832 y C. virgulatus Sowerby, 1840 en el Pacífico este tropical; C.

sulcatus Wood, 1815 de las Isla Galápagos y C. tuberculatus Linnaeus, 1758 para las

Antillas y Bermuda.

102

Chiton (Chiton) virgulatus Sowerby, 1840

(Figura 17)

Chiton virgulatus Sowerby, 1840, Abbott, 1954 Keen, 1958; Thorpe en Keen; 1971: 864, Fig. 7;

Kass y Van Belle, 1998.

Material revisado: 6 especímenes de 22.8-67.5 mm de longitud, Guaymas, Sonora, 4/VI /1971, CNMO-004; 1 espécimen de 21.2 mm de

longitud, (sin localidad y fecha), CNMO-062; 20 especímenes de 19.8-34.6 mm de longitud, Isla Espíritu Santo, BC, 20/IV/ 1966,

CNMO-064; 2 especímenes de 30.3-56.9 mm de longitud, Entre las piedras del Norte y Bahía Eclipse, BC, 18/ XII/ 1960, CNMO-065; 3

especímenes de 15.7-42.1 mm de longitud, Bahía Falsa, La Paz, BC, 25/ VI/ 1965, CNMO-032. Total de organismos revisados 32.

Descripción: Cuerpo elongado de tallas grandes, 15.7- 28.9–37 mm de longitud y 12.4-

17.9– 37 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 17. A).

Color en preservación: verde obscuro a café verdoso con algunas tonalidades grisáceas,

sobre todo en organismos con mucho tiempo de preservado. Pueden presentar manchas

cafés especialmente en las áreas centrales a manera de bandas longitudinales y manchas

blancas en las áreas laterales y ocasionalmente en las áreas centrales y área yugal.

Tegumento: caracterizado por presentar costillas bien marcadas, excepto en el yugum

donde suelen adelgazarse. Las costillas forman surcos anchos y profundos que pueden ser

de diferente tamaño y disposición (Fig. 17. A).

Cinturón: cubierto por escamas pequeñas, aproximadamente el 50% de las de C.

articulatus, que son redondeadas y traslapadas entre sí, de dos verdes diferentes, las cuales

por su arreglo forman bandas claras y obscuras no delimitadas (Fig. 17. E), ocasionalmente

es posible observarlas dispersas a lo largo del cinturón sin seguir el patrón del bandeo, que

dan la apariencia de presentar manchones claros y obscuros (Fig. 17. F).

Valva cefálica (I): más ancha que larga, ventralmente con aproximadamente 20 hendiduras

en la placa de inserción, la placa es ancha y bien pronunciada, dientes prolongados y

serrados de tamaños pequeños, excepto los dientes marginales que suelen ser más anchos.

También puede presentar coloraciones verdosas y líneas radiales con respecto al pliegue

periostracal (Fig. 17. B). Dorsalmente presenta costillas radiales al ápice; en organismos

adultos en número de 50-60, y los juveniles alrededor de 30. Estas costillas se anastomosan

o se encuentran como líneas entrecortadas que no se proyectan hasta el ápice de la valva

(Fig. 17. A).

103

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de

inserción, excepto en la valva II que puede presentar una o dos hendiduras por lado; dientes

finamente serrados y delimitados por una línea porosa que se prolonga en la zona del

pliegue periostracal. Seno yugal medianamente amplio, con placa yugal serrada, dientes

delgados y de tamaño mediano (Fig. 17. C). Dorsalmente, presenta costillas, en las áreas

laterales que son más anchas y marcadas que en las áreas centrales; las áreas laterales

presentan de 8-12 costillas, las cuales generalmente se bifurcan o anastomosan. Las áreas

centrales presentan alrededor de 60 finas costillas longitudinales las cuales nunca se

anastomosan, y en la región yugal se adelgazan considerablemente. Apófisis delgadas poco

prolongadas (Fig. 17. A).

Valva anal (VIII): ventralmente, con alrededor de 22 hendiduras para los adultos en la

placa de inserción (los juveniles pueden presentar alrededor de 18 hendiduras); dientes

serrados y bien delimitados por líneas de poros radiales al pliegue periostracal; seno yugal

amplio con placa yugal serrada con dientes prolongados de forma irregular y de diferente

tamaño. Apófisis medianas y delgadas; mucro situado anteriormente (Fig. 17. D).

Dorsalmente, presenta costillas finas en la región anteromucronal y nunca se anastomosan,

en la región postmucronal presenta alrededor de 55 gruesas costillas (menor número en

organismos juveniles); costillas anastomosadas y poco onduladas (Fig. 17. A).

Distribución: Chiton virgulatus está restringido al Golfo de California (Bullock, 1988).

Abbott (1974) reportó que el rango de C. virgulatus era de Baja California a Panamá y de

C. stokesii de México a Colombia. Pero Thorpe (en Keen, 1971) al igual que Bullock

(1988) consideraron que no existía evidencia de que C. virgulatus y C. stokesii fueran

grupos simpátricos. Aunque aceptan que son especies muy cercanas entre sí.

Los especímenes revisados en este estudio corresponden a la localidad de Guaymas, Sonora

y Baja California (I. Espíritu Santo, Bahía Eclipse y Bahía Falsa).

Discusión: Esta especie ha sido reportada para el Nuevo Mundo por Abbott (1974), Keen

(1958); Thorpe (en Keen, 1971) y Kaas y Van Belle (1998).

104

Chiton virgulatus está muy relacionado con C. stokesii; se diferencian porque C. virgulatus

es más elongado, de coloraciones verdosas, con escamas más pequeñas y finas costillas

radiales en la valva cefálica y región postmucronal de la valva anal. En C. stokesii la

escultura radial de estas zonas siempre forma un patrón parecido al de un tablero de

ajedrez, dando un aspecto granuloso.

Por otro lado C. virgulatus presenta un subtegumento bien desarrollado, en el cual se

observan conductos agrupados y amplios, mientras que en C. stokesii el subtegumento no

está bien desarrollado, presenta conductos muy pequeños y no agrupados, aunque el patrón

de los poros de los estetos es muy parecido en ambas especies (Bullock, 1988). Chiton

virgulatus es fácilmente distinguible de otras especies como: C. albolineatus y C.

articulatus, ya que estos últimos presentan escultura totalmente lisa.

105

Fig. 17. Chiton (Chiton) virgulatus. A) organismo completo en vista dorsal; B) valvacefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) escamas en vista basal y frontal; F) disposición de las escamas en el cinturón.

A B

C

D

E

F

106

Subgénero Diochiton Thiele, 1893

Scutigeruli Meuschen, 1987.

Scuterigulus Meuschen, 1787.

Diochiton Thiele, 1893.

Diagnosis: Organismos de tallas grandes. Valvas redondeadas; placa yugal lisa; áreas

centrales con costillas longitudinales, las cuales son más prominentes cerca de la línea

diagonal. Áreas laterales elevadas, lisas y ocasionalmente presentan líneas de nódulos con

un patrón similar al de un tablero de ajedrez y líneas radiales al ápice. Escamas del cinturón

de tamaño variable con áreas dorsolaterales lisas o con pústulas de varios tamaños.

107

Chiton (Diochiton) albolineatus Broderip y Sowerby, 1829

(Figura 18)

Chiton albolineatus Broderip y Sowerby, 1829 en Keen, 1958: 517, Fig. 1; Thorpe en Keen, 1971:

864, Fig. 2; Abbott, 1974: 405.

Material revisado: 3 especímenes de 10.6-21.1 mm long, Pto. Mazatlán, Sin, 2/XII/1940,CNMO-009; 11 especímenes de 20-29.6 mm

long, Isla Chivos, Mazatlán, Sin., 5/IX/1979, CNMO-007; 5 especímenes de 15.2-29.2 mm long, entre Isla Chivos e I. Piedra, Mazatlán,

Sin., 3/IV/1979, CNMO-008; 33 especímenes de 6.1-22.8 long, Embarcadero Pto., Zihuatanejo, Gro, 3/II/1950, CNMO-010; 2

especímenes de 8.3-19.3mm long. Playa camino al Almacén, Zihuatanejo, Gro., 5/I/1963, CNMO-043; 12 especímenes de 10.2-33.2 mm

long, Playa las Gatas, Zihuatanejo, Gro, 9/I/1963, CNMO-018; 34 especímenes de 14.3-35.1 mm long, Playa Camino Contramar,

Zihuatanejo, Gro., 17/XII/1964, CNMO-041; 9 especímenes de 14.2-28.5 mm long, I. Ixtapa Zihuatanejo, Gro, 8/I/1963, CNMO-039; 13

especímenes de 10.6-32.3 mm long ( sin loc.), 1/II/1963, CNMIB-030. Total de especímenes revisados 122.

Descripción: Cuerpo elongado y de talla mediana 6.1- 29.8- 35.1mm de longitud y 4.6- 18-

21.7 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 18. A).

Color en preservación: verde olivo a verde grisáceo. Líneas radiales blancas típicas en las

valvas cefálica, anal y áreas laterales de las valvas intermedias. El color es más intenso en

las áreas laterales y el yugum de algunas de las valvas intermedias, a diferencia de las áreas

centrales que son más claras, las cuales pueden presentar finas líneas obscuras horizontales

sobre todo en organismos frescos.

Tegumento: liso, la valva cefálica de los adultos presenta de 7-19 líneas blancas radiales al

ápice y de 12-18 en la valva anal. Las líneas pueden estar anastomosadas y onduladas, en

las áreas laterales son alrededor de 5 que son paralelas a la línea diagonal, en algunos casos

las líneas no se proyectan completamente ya que pueden estar entrecortadas o

anastomosadas (Fig. 18. A).

Cinturón: cubierto por escamas con forma de rombo (Fig. 18. E), verdes, lisas y

traslapadas entre sí (Fig. 18. F).

Valvas: poco arqueadas, ventralmente blancas con poros pequeños en los estetos.

Valva cefálica (I): de forma semicircular, ventralmente, con 17 hendiduras en la placa de

inserción, dientes serrados; apófisis más o menos prolongadas y delgadas (Fig. 18. B).

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de

inserción, dientes serrados y su tamaño puede variar. Yugum angosto y placa yugal lisa

108

(Fig. 18. C). Dorsalmente, a veces con valvas más obscuras que otras; también pueden

presentar 2 líneas blancas verticales, paralelas entre sí (Fig. 18. A).

Valva anal (VIII): ventralmente, con 15 hendiduras en la placa de inserción; seno yugal

mediano y placa yugal dentada o serrada (Fig. 18. d). Dorsalmente, mucro situado

anteriormente. Región anteromucronal muy angosta; región postmucronal con ligera

escultura nodular hacia la periferia (Fig. 18. A)

Distribución: De Mazatlán, Sinaloa (cerca de la entrada al Golfo de California) hasta el

Sur de México. Los registros reportados para Guaymas, Sonora y Guatemala, no han vuelto

a ser observados en recolectas recientes (Bullock, 1988).

El material revisado en el presente trabajo son de: Mazatlán, Sinaloa (Isla Chivos, Isla

Piedra); Zihuatanejo, Guerrero (Isla Ixtapa, Playa Las Gatas y Camino Contramar).

Observaciones: Los organismos juveniles presentan las mismas características que los

adultos especialmente en la coloración, aunque sólo puede variar en el número de las líneas

blancas radiales en la valva anal y cefálica (que son menos numerosas), pero los patrones

de coloración y de estructuras son los mismos. Aunque los organismos pueden perder su

coloración original, las líneas blancas radiales del tegumento son suficientes para reconocer

a esta especie.

Discusión: Thiele (1929) esquematizó en vista ventral las valvas de esta especie para

ejemplificar la sección Diochiton Thiele, 1893 de la familia Chitonidae. Este esquema no es

representativo ya que no muestra los caracteres morfológicos con detalle, de tal forma que

no ayudan en la definición de la especie. Keen (1958) y Thorpe (en Keen 1971) la

diagnostican de la especie y una fotografía de un espécimen. Ambos autores no aportaron

nada nuevo a lo que ya se conocía anteriormente reportado por Thiele (op. cit.).Bullock

(1988) presentó un trabajo sistemático muy importante al género Chiton, en el cual incluye

a C. albolineatus. Dicho estudio lo realizó al nivel de microestructura de los caracteres

taxonómicos, aportando información reciente a su descripción.

109

A B

E

C DFE

Fig. 18. Chiton (Diochiton) albolineatus. A) vista dorsal del organismo completo; B) valvacefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) escamas en vista basaly frontal (en diferentes ángulos); F) disposición de las escamas en el cinturón.

F

D

B

C

A

110

Chiton (Diochiton) marmoratus Grupo de especies

Diagnosis: Valvas subcarinadas, ventralmente lisas, con áreas laterales poco elevadas.

Comentario: En este grupo de especies Bullock (1988) incluye a C. marmoratus Gmelin,

1971 de Las Antillas y C. articulatus Sowerby, 1832 del Pacífico Oriental. Estas dos

especies las considera como especies muy cercanas posiblemente hermanas, por ello la

sitúa en este mismo grupo. Y que divergieron a partir de un ancestro común, probablemente

después de la formación del puente de tierra conformado por la región Panámica, en el

Plioceno temprano.

111

Chiton (Diochiton) articulatus Sowerby, 1832

(Figura 19)

Chiton laevigatus Sowerby,1832. en Keen, 1958: 517, Fig. 2; Thorpe en Keen, 1971: 864, Fig. 3,

Abbott, 1974: 405, Fig. 4750; Ferreira, 1983; 319, Fig. 6: 24-26.

Lophyrus striatosquamosus Carpenter, 1857 en Keen, 1958: 517, Fig. 2; Thorpe en Keen, 1971:

864, Fig. 3, Abbott, 1974: 405, Fig. 4750; Ferreira, 1983; 319, Fig. 6, 24-26.

Chiton articulatus en Keen, 1958: 517, Fig. 2; Thorpe en Keen, 1971: 864, Fig. 3, Abbott, 1974:

405, Fig. 4750; Ferreira, 1983; 319, Fig. 6: 24-26.

Material revisado: 9 especímenes de 43.4- 70.4 mm de longitud, La Paz, B.C. (sin fecha), CNMO-006; 20 especímenes de 23.5- 44.2

mm de longitud, Los Sábalos, Mazatlán, Sinaloa, 17/11/1957, CNMO- 051; 29 especímenes de 35.1-56.3 mm de longitud, Playa Sur,

Mazatlán, Sinaloa, 20/V/1947, CNMO-050; 1 especímen de 54.8 mm de longitud, Cerro del crestón, Mazatlán, Sinaloa, 27/II/1980,

CNMO-011; 11 especímenes de 30.5- 66.5 de longitud, Pto., Zihuatanejo, Guerrero, 6/I/1949, CNMO- 033; 12 especímenes de 32.6-

73.7 mm de longitud, Isla Ixtapa Zihuatanejo, Guerrero, 10/I/1963, CNMO-015; 3 especímenes de 22.3- 5 8.1 mm de longitud, Playa

Camino Contramar, Zihuatanejo, Guerrero, 25/9/1965, CNMO- 032; 7 especímenes de 15.3- 70.1 mm de longitud, Playa Las Ropas,

Zihuatanejo, Guerrero, 2/I/1963, CNMO- 028; 1 especímen de 35.7 mm de longitud, Playa las Gatas, Zihuatanejo, Guerrero, 1/VI/1963,

CNMO- 035; 14 especímenes de 31.4- 60.2 mm de longitud, Pto. Vallarta, Jalisco, 3/I/1951, CNMO- 059; 1 especímen de 60.4 mm de

longitud, Pto. Acapulco, Guerrero, 15/IX/1948, CNMO- 024; 18 especímenes de 26.1- 66.9 mm de longitud, Pto. Angel, Oaxaca, (sin

loc.), CNMO-022; 6 especímenes de 41.7- 47.6 mm de longitud, Salina Cruz, Oaxaca, I/1961, CNMO- 058. Total de especímenes

revisados 132.

Descripción: Cuerpo ovalado, de gran talla 15.3- 36.4- 73.7 mm de longitud y 10.5- 25.7-

49.3 de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 19. A).

Color en preservación: verde olivo a café verdoso, especialmente en las zonas laterales del

organismo en donde se diferencia una banda periférica obscura hacia los bordes externos

del cuerpo. Las valvas cefálica y anal pueden presentar bandas delgadas de coloración muy

tenue beige o café claro, radiales con respecto al ápice y mucro respectivamente.

Tegumento: en general liso, con líneas de crecimiento evidentes (Fig. 19. A).

Cinturón: cubierto por escamas más o menos circulares traslapadas entre sí (Fig. 19. F),

que forman franjas verdes longitudinales de dos tonalidades diferentes, una más clara que la

otra (Fig. 19. E).

Valva cefálica (I): ventralmente, con 17 hendiduras en la placa de inserción, dientes

serrados, prolongados, de tamaños variables (Fig. 19. B).

112

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de

inserción y dientes pectinados. Apófisis muy prolongadas y bien desarrolladas, seno yugal

mediano y placa yugal dentada. La superficie ventral presenta coloraciones verdosas,

especialmente hacia la base de las apófisis. Pliegue periostracal muy angosto (Fig. 19. C).

En vista dorsal las áreas laterales son ligeramente elevadas (Fig. 19. A).

Valva anal (VIII): ventralmente con 22 hendiduras en la placa de inserción, dientes

amplios y serrados, mucro situado anteriormente; seno yugal amplio y placa yugal dentada,

apófisis anchas y poco elevadas (Fig. 19. D). Dorsalmente con región anteromucronal muy

angosta y poros de los estetos numerosos (Fig. 19. A).

Distribución: Desde Mazatlán, Sinaloa, hasta las Bahías de Huatulco, Oaxaca. Los

registros reportados para Guaymas, Sonora son hasta ahora muy dudosos (Bullock, 1998).

El material examinado corresponde a La Paz, B.C; Mazatlán, Sinaloa; Zihuatanejo y

Acapulco, Guerrero; Puerto Vallarta, Jalisco; Pto. Angel y Salina Cruz, Oaxaca, México.

Observaciones: Se les puede encontrar asociados a diferentes organismos, cirripedios,

monoplacóforos y algas. En los adultos, las valvas están parcial o completamente cubiertos

por estos organismos o por acumulaciones de sedimentos que se adhieren a las placas, en

caso más severos las valvas suelen estar dañadas hasta nivel del articulamento. Los

organismos juveniles presentan mayor número de bandas en el área central, coloración más

intensa y valvas mejor preservadas que en los adultos. C. (D) articulatus es

morfológicamente muy similar a C. marmoratus, con el cual se le confunde

frecuentemente. C. marmoratus es azul-verdoso obscuro, en las zonas de inserción de los

músculos del manto; valvas más redondeadas, con escultura irregulares concéntrica en

zigzag. Bullock (op. cit.) sugiere que C. goodallii puede ser el ancestro de C. (D)

articulatus por la presencia de escultura lisa y talla grande.

Discusión: Esta especie es reportada por Abbott (1954 y 1984). Thorpe (en Keen, 1971) y

Ferreira (1983). Estos autores en sus descripciones no incluyen esquema general del

organismo ni morfología de las placas.

113

Actualmente en algunas colecciones mexicanas, todavía es posible encontrar a la especie

identificada erróneamente como C. laevigatus Sowerby, 1832.

Thorpe (en Keen, 1971) y Ferreira (1983a), tomaron a Lophyrus striatosquamosus

Carpenter, 1857 como sinónimo de C. (D) articulatus. Bullock (op. cit.) menciona que no

ha podido observar al tipo, pero que según las fotografías existentes de la especie pudo

observar la superficie lisa característica de C. (D) articulatus, sin embargo, notó

estriaciones en la superficie de las escamas, elemento que indica que se trate de una especie

diferente o no descrita. Por lo que Bullock (op. cit.) sugiere que el estatus de L.

striatosquamosus es muy cuestionable. C. (D) articulatus, es muy abundante en nuestro

país, y aunque es una especie endémica no ha sido estudiada, por lo que su biología y los

aspectos básicos acerca de su ecología son totalmente desconocidos (Smith, 1983).

En observaciones personales, en algunas playas mexicanas, C. (D) articulatus forma parte

de la alimentación de las poblaciones locales, en donde las valvas desarticuladas suelen

encontrarse entre las rocas. Particularmente en el Estado de Oaxaca, México, donde se les

conoce como “lenguas de perro”. El consumo de esta especie se debe a dos razones,

primero por el tamaño de los organismos que es de alrededor de 35 mm de longitud, y por

que se adhieren a rocas más expuestas, donde son claramente visibles y fáciles de

desprender.

Para consumirlos generalmente, separan de la concha la parte muscular del pie ayudándose

con una cuchara, se preparan con limón y sal. En algunos poblados de Oaxaca, se les puede

disfrutar también en tamales. En otras regiones del país, por ejemplo en Guerrero, México

se les conoce como “cucarachas de mar”, aunque a veces se le llama de igual manera a una

especie de crustáceo decápodo comestible. En estas zonas las personas suponen que los

quitones son parte del grupo crustáceos, y en otras ni siquiera se les reconoce como

moluscos. Conviene profundizar en la explotación artesanal de esta especie aunque en

forma local, ya que representa un recurso comestible que se le pone en peligro de extinción

al afectar su ciclo de vida.

114

Fig. 19. Chiton (Diochiton) articulatus. A) Organismo completo en vista dorsal B) valva cefálica I, C) valva intermedia V, D) valva anal VIII en vista ventral, F) escamas en vista frontal y basal (en diferentes ángulos), E) disposición de las escamas en el cinturón.

A B

C

D

E

F

115

Chiton (Diochiton) squamosus Grupo de especies

Diagnosis: Organismos de talla grande, área yugal y central, generalmente lisa; áreas

laterales poco pronunciadas. Con superficie lisa o con nódulos radiales que forman un

patrón semejante a un tablero de ajedrez. Valvas poco aplanadas, escamas con finas

pústulas.

Comentario: Bullock (1988) en este grupo de especies, incluye a C. squamosus y C.

goodallii. Además menciona que el origen de este grupo no esta bien establecido, pero las

similitudes (principalmente de talla y superficie lisa del tegumento) entre estas especies

hacen pensar que divergieron a partir de un ancestro común.

116

Chiton goodallii Broderip, 1832

(Figura 20)

Chiton goodallii Broderip, 1832 en Thorpe en Keen, 1971: 864, Fig. 4; Smith y Ferreira, 1977: 89, Fig. 13.

Material revisado: 3 especímenes (en seco) de 97.4- 131.7 mm de longitud, San. Cristóbal, Chatham, Islas Galápagos, 6/VII/ 1960,

CNMO-067. Total de organismos 3.

Descripción: Cuerpo ovalado de 97.4- 117.2- 131.7 mm de longitud y 54.1- 56.9- 59.6 mm

de ancho incluyendo el cinturón, organismos de grandes tallas (Fig. 20. A).

Color en seco: de café obscuro con tonalidades claras en las áreas centrales, la región yugal

puede presentar líneas obscuras longitudinales, y cinturón café obscuro con algunos

manchones claros.

Tegumento: liso en organismos adultos, ya que en los juveniles, es posible encontrar un

tipo de granulación poco elevada y con forma irregular en las valvas cefálica y anal. Líneas

de crecimiento evidentes (Fig. 20. A).

Cinturón: grueso y cubierto por gruesas escamas (Fig. 20. E) con puntas o ápice muy

elevado y de color obscuro, traslapadas entre sí, 2 veces más grandes que las de C.

articulatus (Fig. 20. F).

Valva cefálica (I): ventralmente, con alrededor de 24 hendiduras en la placa de inserción,

dientes muy gruesos, anchos, serrados y prolongados; pliegue periostracal muy ancho (Fig.

20. B). Dorsalmente, presenta escultura lisa, con líneas de crecimiento evidentes (Fig. 20.

A).

Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con placa de inserción de 2-3 profundas

hendiduras, dientes angostos, prolongados y serrados. Apófisis medianas y delgadas; seno

yugal amplio y placa yugal dentada (Fig. 20. C). Ventralmente, ligeramente convexas.

Dorsalmente, las áreas centrales son amplias y con líneas de crecimiento evidentes. Las

áreas laterales se encuentran delimitadas por una línea diagonal ligeramente elevada (Fig.

20. A).

Valva anal (VIII): ventralmente, con alrededor de 26 hendiduras en la placa de inserción,

dientes serrados y prolongados. Apófisis medianas y delgadas; seno yugal amplio, placa

117

yugal dentada y ligeramente convexa en vista ventral; área anteromucronal pequeña y lisa

con líneas de crecimiento evidentes (Fig. 20. D). Dorsalmente, mucro anterior, región

postmucronal lisa a veces con huellas o reminiscencias de escultura granular poco elevada

(Fig. 20. A).

Distribución: Esta especie tiene una distribución bien delimitada para las Islas Galápagos e

Isla Cocos. Algunos registros reportados para Centro y Sur América son muy dudosos

(Bullock, 1988).

El material del presente estudio corresponde a la localidad de San Cristóbal, Chatham, Islas

Galápagos, Ecuador.

Discusión: C. (D) goodallii al igual que C. sulcatus son especies endémicas de las Islas

Galápagos. Al parecer esta especie es cercana a C. Marquesanus por la dimensión de su

talla y escultura tegumental lisa, aunque aún no se conoce como fue que éstas especies

divergieron. Según Bullock (1988) C. (D) goodallii es una especie muy lejana

filogeneticamente, con respecto a C. articulatus y C. albolineatus.

C. goodallii es la especie de mayor talla en la CNMO. Al igual que otras especies de

quitones de talla grande C. (D) goodallii es consumido por los habitantes cercanos a su área

de distribución.

118

A BCDEF

Fig. 20. Chiton (Diochiton) goodallii. A) vista dorsal del organismo completo; B) valva cefálica I; C) valva intermedia IV; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) escamas en vista basal y frontal; F) disposición de las escamas en el cinturón.

A B

C

D

E

F

119

Subfamilia Acanthopleurinae Dall, 1889

Diagnosis: Quitones que presentan en el tegumento ocelos bien desarrollados en todas las

valvas. Dorsalmente, el cinturón está cubierto densamente por espículas, escamas de

tamaños diferentes y de tipo calcáreo (Thiele, 1929).

Comentario: La subfamilia Acanthopleurinae fue considerada por Thiele (1929), como

parte de la familia Chitonidae. Smith (en Moore, 1960) propone que es un género de la

familia Chitonidae. Actualmente los taxónomos de los quitones, aceptan la subdivisión

propuesta por Thiele (op. cit.).

Género Acanthopleura Guilding, 1830

Diagnosis: Quitones grandes, con cuerpos ovalados y gruesos. Escultura ausente en las

valvas erosionadas. El tegumento presenta ocelos bien desarrollados evidentes a simple

vista, situados en los márgenes de las áreas laterales, estas estructuras se encuentran

rodeadas por una granulación pequeña. Valvas gruesas y generalmente de color obscuro en

vista ventral. Placas de inserción fuertemente pectinadas, las cuales se proyectan hacia

delante. La valva anal presenta dientes de inserción muy largos, más de la mitad de la

longitud del tegumento, los cuales se proyectan hacia delante. Las valvas intermedias

presentan dientes de inserción fuertemente pectinados, característica que define al género.

Mucro generalmente posterior. Cinturón grueso y ancho, cubierto densamente con anchas

espículas calcáreas, de diferentes tamaños.

120

Acanthopleura granulata Gmelin, 1729

(Figura 21)

Material Revisado: 10 especímenes de 41.4mm- 59.1mm de longitud, Isla Mujeres Q. Roo. 20 /I/ 1960, CNMO-060; 7 especímenes de

31.5mm– 39.9 mm de longitud, Isla Cozumel, Playa San. Juan, /XII/ 1959, CNMO-061; 5 especímenes de 42.4mm– 51.8mm de longitud,

Chankanab, Límite Nte, Q. Roo., 23/X/ 1998, CNMO-074. Total de organismos revisados 32.

Descripción: Cuerpo muy grueso y ovalado de 31.5– 45.3- 59.1 mm de longitud y 21.3–

30.6- 38.2 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 21. A).

Color en preservación: café, con bandeo longitudinal más obscuro en el área yugal de las

valvas intermedias, y ocasionalmente en las valvas anal y cefálica. El cinturón presenta

manchones café y blancos.

Tegumento: granular en la valva anal y cefálica al igual que en las áreas laterales de las

valvas intermedias. Región anteromucronal y áreas centrales con granulación más fina; en

organismos adultos las placas están muy erosionadas. Todas las valvas presentan ocelos en

la periferia del tegumento donde la escultura no ha sido dañada por la acción erosiva de las

olas (Fig. 21. A). Estas estructuras pueden ser de color obscuro y es notable su iridiscencia,

aún en preservado.

Cinturón: grueso y amplio, cubierto por numerosas y gruesas espículas de puntas roma de

dos diferentes tamaños, las pequeñas son las más numerosas, mientras que las grandes están

intercaladas entre las pequeñas, que pueden ser un poco más curvadas y blancas hacia la

punta. Las grandes son obscuras en su base y claras hacia la punta (Fig. 21. F). Debido a su

coloración forman gruesos manchones o franjas perpendiculares, con respecto al eje del

cuerpo (Fig. 21. E).

Valvas: en general gruesas, poco arqueadas y con tegumento desgastado, sobre todo en la

parte media de las valvas. La parte dorsal se describe parcialmente en el presente trabajo,

debido al desgaste del tegumento, que ha permitido que se pierda la regionalización de las

valvas.

Valva cefálica (I): con forma de abanico, ventralmente, verde con superficie lisa y de 9-15

hendiduras en la placa de inserción, las hendiduras son profundas y angostas. Dientes

prolongados de tamaños variados y en vista dorsal se aprecia claramente su longitud y su

superficie acanalada. Pliegue periostracal prominente y hacia la parte media de la placa es

121

evidente la región de inserción de los músculos del manto (Fig. 21. B). Dorsalmente, es

café y hacia la región yugal presenta líneas longitudinales del mismo color; presenta dos

tamaños de gránulos, los pequeños son los más numerosos que se encuentran rodeando a

los grandes, la disposición de estos permite un patrón bien definido. Entre los gránulos

pequeños podemos observar ocelos, los cuales aparecen como pequeñas esferas iridiscentes

en el tegumento no erosionado, es decir, hacia la periferia de las valvas (Fig. 21. A).

Valvas intermedias (II-VII): en vista ventral, con placa de inserción dentada, hendiduras

ausentes. Apófisis bien prolongadas aproximadamente el 75% del tegumento total de la

placa; seno yugal amplio, en vista dorsal cóncavo y placa yugal lisa. Ventralmente presenta

líneas obscuras que delimitan a las apófisis y a los dientes de inserción (Fig. 21. C).

Dorsalmente, la escultura es granular, las áreas laterales están bien delimitadas por una

línea diagonal, estas zonas presentan ornamentación granular gruesa similar al de las áreas

terminales. Las áreas centrales presentan una granulación microscópica y con líneas

longitudinales café obscuro, especialmente en la región yugal donde es posible encontrar

ocelos en la periferia del tegumento (Fig. 21. A).

Valva anal (VIII): ventralmente, con 8-12 hendiduras en la placa de inserción, dientes de

tamaños variados y dentados, dorsalmente se pueden ver acanalados, fuertes y anchos.

Ventralmente, con superficie lisa, cóncava y obscura hacia la parte central en donde se

insertan los músculos del manto. Apófisis prolongadas con más o menos la misma longitud

de largo y ancho; placa yugal lisa y seno yugal ligeramente convexo y amplio, el cual

(sobresale en vista dorsal) del periostraco de la valva (Fig. 21. D).

Distribución: Del Sur de Florida (Golfo de México) a las Costas de Brasil (Rehder, 1981).

Los organismos estudiados corresponden a las islas del estado de Quintana Roo; Isla.

Mujeres, Isla. Cozumel y Límite Norte.

Observaciones: Generalmente se adhieren en la superficie de las valvas, algas e

invertebrados sésiles: esponjas, balanos y poliquetos tubícolas. Las placas pueden perder su

escultura tegumental y forma original, debido al desgaste provocado por la acción del

oleaje.

122

Las valvas se encuentran dañadas sobre todo en su parte más posterior. La valva anal

generalmente pierde sus estructuras taxonómicas (mucro y región antero y postmucronal).

Aunque la escultura del tegumento desaparece en su mayor parte, es fácilmente

identificable por los elementos del cinturón, es decir, espículas de dos tamaños y colores

diferentes (café y blanco). Además las valvas presentan ocelos evidentes en el tegumento

no erosionado.

Acanthopleura granulata, es la única especie de su género que se distribuye en aguas

mexicanas (Caribe Mexicano), ya que sus demás congéneres se distribuyen en Australia (A.

gemmata Blainville y A. spinosa Bruguiere) y Africa (A. borbonica Deshayes).

Esta especie es muy abundante en las costas del litoral rocoso y de arrecife de Quintana

Roo, México. No se ha reportado para el Golfo de México.

Comentarios: Mook (1983) realizó un estudio acerca de la distribución de esta especie en

el Mar Caribe, en su estudio observó que A. granulata vive en zonas someras y tranquilas,

pero que se establecen en zonas de alta energía, es decir, en rocas donde las olas rompen

con fuerza humectando las rocas constantemente. Por la noche se desplazan hacia zonas de

baja energía, donde pueden alimentarse y aparearse. Aparentemente la explicación para este

comportamiento, es que se protegen de la desecación cuando el nivel del agua marina

cambia por efectos de la marea.

Discusión: La sistemática de esta especie está bien estudiada y no existe ningún problema

con su estatus taxonómico. Los estudios más importantes, son los referentes a su

distribución y movimiento diurno y nocturno a lo largo de la costa rocosa (Mook, 1983). A.

granulata, probablemente sea la especie mejor conocida en cuanto a su comportamiento de

alimentación y reproductivo.

Aunque es una especie sin problemas sistemáticos, no había sido esquematizada ni descrita

en extenso.

123

A

Fig. 21. Acanthopleura granulata. A) vista dorsal del organismo completo.

A

124

BCD EF

Fig. 21. B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vistaventral; E) disposición de las espículas en el cinturón; F) espículas en vista frontal.

125

Suborden Acanthochitonina Bergenhayn, 1930

Diagnosis: Organismos de talla pequeña a grande con valvas parcial o completamente

cubiertas por el cinturón. Tegumento reducido con respecto al articulamento. Placas de

inserción bien desarrolladas. Valvas con tracto yugal triangular y dos áreas lateropleurales

(Smith, 1977).

Familia Acanthochitonidae Pilsbry, 1893

Diagnosis: Placas de inserción con fórmula de hendiduras 5-1-2 en la valva cefálica.

Cinturón con alrededor de 18 mechones de espículas que rodean a las valvas (Keen, 1971).

Comentarios: Esta familia incluye especies principalmente tropicales y subtropicales con

problemática en su identificación, debido a que presentan una historia taxonómica confusa.

Watters (1990) realizó una revisión histórica acerca de esta familia, donde menciona que

Thorpe (1971) publicó un recuento de las especies del Pacífico, y Lyons (1988) hizo una

revisión a las especies del Caribe usando microscopía de barrido, describiendo 6 nuevas

especies y donde cuestionó las clasificaciones de esta familia elaboradas anteriormente por

Ferreira (1987).

Por su parte Watters (1990) usando la misma técnica de microscopía realizó la revisión de

la familia para la provincia Panámica, proponiendo dos subfamilias: Acanthochitoninae y

Cryptoplacininae. También incluyó la descripción del nuevo género Americhiton. En el

presente trabajo se sigue la diagnosis de la Familia Acanthochitonidae elaborada por

Pilsbry, 1893 ya que describe de mejor manera, los caracteres taxonómicos comunes en

este grupo de quitones.

126

Género Acanthochitona Gray, 1821

Diagnosis: Valva cefálica con 5 hendiduras. Escultura del tegumento con pústulas que van

de planas a cóncavas. Sin regionalización de las valvas intermedias en áreas centrales y

áreas laterales; tracto yugal bien definido el cual puede ser liso o estriado

longitudinalmente. Fórmula de las hendiduras 5-1-2; cinturón ancho y cubierto por

espículas, presenta mechones suturales en la periferia del cinturón (Watters, 1990).

Comentarios: Watters (1990) en una revisión histórica menciona que Gray (1821) fue el

primer taxónomo en separar a los Acantochitones del género Chiton, ya que el único

organismo conocido hasta la época fue clasificado como Chiton fascicularis Linnaeus, 1767

que fue publicado en una revista científica poco conocida. Posteriormente se aceptó la

propuesta de Risso (1826) en llamar a estos especímenes Acanthochites.

Más tarde Gray (1843), modificó este nombre denominándolo Acanthochitona. Mientras

que Herrmannsen (1846) y muchos autores posteriores a él, adoptaron el nombre propuesto

por Gray (1843), ya que les pareció correcto agregar una “a” al final de la palabra “Chiton”

con la finalidad de latinizar el nombre de la especie.

Según ellos con este cambio se “mestizaba” la palabra, lo que significaba que al usar este

nombre se generalizaría para todas las especies del mundo. Además de los constantes

cambios de nombre, las especies comunes de éste género presentan problemática en su

identificación, debido a la falta de material completo disponible y a las descripciones poco

precisas.

Estos problemas nos indican que es necesaria a una reevaluación del género. La cual nos

permitiría separar a las especies desde un punto de vista más confiable y natural. Para ello

se requiere de un trabajo comparativo de especímenes actuales, de las diferentes localidades

de la Costa del Pacifico del Nuevo Mundo que nos permita definir a las especies, así como

determinar la distribución y ecología de las poblaciones (Watters, 1990).

127

Acanthochitona sp. A

(Figura 22)

Material revisado: 6 especímenes de 13.2- 23.2 mm de longitud, (sin localidad y fecha desconocida), CNMO- 062; 19 especímenes de

13.2- 27.2 mm de longitud, Isla Espíritu Santo, B.C, 20/IV/ 1966, CNMO- 063; 6 especímenes de 15.7- 23.3 mm de longitud, Bahía

Falsa, B.C, 28/IV/ 1966, CNMO- 069. Total de especímenes 31.

Descripción: Cuerpo moderadamente elongado, organismos de talla mediana; 13.2- 18.6-

27.2 mm de longitud y de ancho 9.7- 14.4- 18.1 mm, incluyendo el cinturón (Fig. 22. A).

Color en preservación: variable, de café grisáceo a café verdoso con tonalidades beige;

gruesos manchones café o verdes en el cinturón, perpendiculares con respecto a las valvas y

más evidentes en vista lateral.

Tegumento: escaso, de forma subtriangular (Fig. 22. E, F y G), especialmente en las valvas

VII, VIII y cefálica. Pústulas de ovaladas a circulares, ligeramente cóncavas, las cuales se

arreglan en líneas que se dirigen hacia el ápice de la valva, las pústulas adyacentes al tracto

yugal y ápice son generalmente más pequeñas. El número de pústulas varía en promedio:

para la valva cefálica (I): 202 en las pequeñas (4.0 long., 5.3 ancho); 235 en las medianas

(4.2 long., 5.6 ancho) y 340 en las grandes (4.8 long., 6.2 ancho); valva V: 118 en las

valvas pequeñas (4.3 long., 6.8 ancho), 148 en las medianas (5.0 long., 8.2ancho) y 173 en

las grandes (5.2 long., 8.5 ancho); valva VIII: 65 en las pequeñas (3.3 long., 3.4 ancho), 79

en las medianas (3.4 long., 5.5 ancho) y 98 en las grandes (3.5 long., 6.1 ancho). (Fig. 22.

E, F y G). Estetos no observados.

Cinturón: grueso y ancho, cubierto por espículas algunas pequeñas y otras más grandes

que las primeras, las cuales se intercalan entre las pequeñas que son más abundantes (Fig.

22. H). En la parte dorsal presenta 18 mechones de finas y alargadas espículas, su longitud

es de más de 8 veces la longitud de las pequeñas (Fig. 22. I), éstos se localizan a la altura de

las zonas de inserción entre valva y valva, formando una banda periférica situada hacia los

extremos del cuerpo (Fig. 22. A). Los primeros 4 mechones anteriores son más pequeños

que los demás. Superficie de las espículas no observadas.

Valvas: en general arqueadas, pequeñas, alineadas hacia el centro del cuerpo del

organismo; superficie ventral de la valva generalmente lisa con tonalidades azul-verdosas.

Apófisis delgadas y placas de inserción prolongadas con articulamento; dientes de inserción

128

anchos con bordes lisos; tracto yugal con estrías obscuras longitudinales en número de 5-

12.

Valva cefálica (I): semicircular, tres veces el tamaño del tegumento de la valva anal. En

vista ventral 5 hendiduras amplias y profundas en la placa de inserción (Fig. 22. B). En

vista dorsal escultura más densa que el resto de las valvas, ápice cóncavo y elevado (Fig.

22. C).

Valvas intermedias (II-VII): en vista dorsal con áreas lateropleurales más largas que

anchas, sin áreas laterales (Fig. 22. F). En vista ventral el tracto yugal sobresale en el seno

yugal, con dos hendiduras laterales en la placa de inserción, situadas alrededor de la región

media de la valva, apófisis muy prolongadas y elevadas (Fig. 22. C).

Valva anal (VIII): más pequeña que las demás, en vista dorsal, con tegumento en forma de

gota o rombo (Fig. 22. G). La placa de inserción se proyecta hacia las partes laterales con

una hendiduras por lado, dirigidas hacia la región posterior, formando dientes muy

prolongados; seno yugal amplio y placa yugal ventralmente semiacanalada (Fig. 22. D). El

tracto yugal sobresale en el área del seno yugal. Mucro situado en la parte central y

ocasionalmente en la región postmucronal de la valva.

Distribución: Los especímenes revisados corresponden a la Isla Espíritu Santo y Bahía

Falsa, Baja California, México.

Observaciones: En general las espículas de los mechones periféricos suelen ser muy

grandes. Sin embargo, las condiciones de preservado no permite en algunos especímenes

apreciar su longitud real así como los manchones obscuros característicos del cinturón.

Comentario sobre la sistemática de Acanthochitona hirudiniformis:

El estudio de las especies de éste género ha presentado problemas en su clasificación

taxonómica. Un ejemplo es A. hirudiniformis Sowerby, 1832. Esta especie ha sido

reportada con varios nombres y sinónimos, la lista completa puede consultarse en Watters

(1990).

Smith y Ferreira (1977) cuestionaron la identificación original de la especie. Por ello

realizaron observaciones al material de Paita, Perú recolectado en 1938 y lo compararon

con el de las Islas Galápagos. Encontraron que el material de Perú, presentaba diferencias

importantes de talla (mayor), pústulas más grandes y menos numerosas, así como tracto

yugal delgado. Esto significó para Smith y Ferreira que las diferencias entre los

especímenes eran el resultado de especies diferentes, clasificadas erróneamente en una sola

bajo el nombre de A. hirudiniformis. De tal forma, rechazaron el hecho de que Thorpe (en

Keen, 1971) haya considerado tres especies de Sur América (A. coquimboensis Leloup,

1941; A. peruvianus Leloup, 1941 y A. tabogensis Smith, 1961) como sinónimos de A.

hirudiniformis, además de que restringieron la localidad tipo de la especie a las Islas

Chatham, Ecuador (Isla San Cristóbal).

Así mismo, Watters (1990) cuestionó las conclusiones de Smith y Ferreira (1977) acerca de

restringir la localidad tipo de la especie y propone que sea replanteada, ya que A.

conquimboensis, A. peruviana, A. panamensis y A. tabogensis fueron propuestas para las

poblaciones variantes de A. hirudiniformis hirudiniformis.

Según Watters (op. cit) esta especie se distribuye a lo largo de las costas del Pacífico desde

Baja California a la Tierra de Fuego, ya que teóricamente las poblaciones pueden

entrecruzarse, aunque esto resulta más difícil para las poblaciones de los extremos.

También enfatizó en que estas poblaciones se diferencian entre sí, principalmente por las

129

130

características del tegumento. Bajo este criterio, Watters estudió la distribución de los

estetos presentes en las pústulas y tracto yugal para separar a las especies.

Watters (op. cit) concluyó que las especies de América del Norte presentan macroestetos en

el tracto yugal organizados en líneas longitudinales. Cada macroesteto está acompañado de

3-6 microestetos; las pústulas con 1 macroesteto central y de 0-4 microestetos localizados

en la región del premacroesteto. Para los especímenes del Sur de Perú y Chile, el tracto

yugal presenta 1 macroesteto por estría, sin microestetos adyacentes; pústulas con 1

macroesteto central y de 2-6 microestetos adyacentes al más grande.

Bajo éste punto de vista separó en dos subespecies: A. hirudiniformis hirudiniformis

Sowerby, 1832 para la región Norte (Golfo de California al Nte. de Perú) y A.

hirudiniformis peruviana (que presenta dos estetos centrales por pústula) para la región Sur

(Sur de Perú, Valparaiso, Chile hasta la Tierra de Fuego). Basándose en ese criterio

también propuso un arreglo sistemático de 2 subfamilias Cryptoplacinae y

Acanthochitoninae.

131

Discusión: La especie estudiada fue definida temporalmente como Acanthochitona sp. A

ya que los caracteres taxonómicos básicos no se ajustan a ninguna de las especies

reportadas por autores como Smith y Ferreira (1977) y Watters (1990). A continuación se

presenta comparación de las dos especies con mayor similitud a Acanthochitona sp. A

Cuadro comparativo de tres especies del género Acanthochitona

Caracter

A. hirudiniformis

Smith y Ferreira (1977)

A. h. hirudiniformis

Watters (1990)

Acanthochitona sp. A

Presente trabajo

Valvas Arqueadas no carinadas Arqueadas Arqueadas no carinadas

Color tegumento Negro con zonas claras

Café verdoso obscuro con bandas

paralelas al yugum

En preservado de café verdoso

obscuro

Forma tegumento Subtriangular Pentagonal Subtriangular

Superficie del

tracto yugal

Con líneas longitudinales y

huellas remanentes de gránulos

especies del Nte. liso con líneas de

crecimiento

Estriado (5-12), con líneas de

crecimiento horizontales

Tipo tegumento Gránulos “superficie aplanada” Pustulosa Pustulosa

Estetos No observados

Macroestetos alineados

longitudinalmente en el tracto yugal,

cada uno con 3-6 microestetos, pústulas

con un esteto central y de 0 a 4

microestetos área premacroestetal

No observados

Pústulas Ovaladas Ovaladas y con forma de gota De ovaladas a circulares

# promedio de

pústulas (valva V

área lateropleural

derecha)

Número no reportado, descrito

como “numerosas” y poco

espaciadas entre ellas

No reportado ,número tomado de pág.

256, Fig. 50 y 49

valva V: 247 (5.5 mm de ancho)

valva VIII: 147 (4 mm ancho)

Valva I: 340 (4.8 long. 6.8

ancho)

V: 173 (5.2 long. 8.5 ancho)

VIII: 98 (3.5 long. 6.1 ancho)

Tegumento valva

anal Circular

Circular, con extremos laterales,

prolongados En forma de gota

Posición mucro Anterior Central Central y postmucronal

Color del cinturón Café o sepia Verde obscuro Café-verdoso obscuro

Elementos del

cinturón

Muy pequeños, dan la apariencia

de una textura aterciopelada

Para las especies del Norte, espículas

puntiagudas y de un solo tipo

Espículas grandes y pequeñas,

las pequeñas son más numerosas

Mechones 18, pequeños con pocas espículas Espículas y mechones de tamaños

variables

18, pequeños, con espículas muy

largas y puntiagudas

Cuadro 3. Comparación de los caracteres taxonómicos de A. hirudiniformis, A. h.

hirudiniformis y Acanthochitona sp. A.

132

Como se ve en el cuadro 3. Smith y Ferreira (1977) describieron con poco detalle la

escultura del tegumento y los derivados epidérmicos, siendo estos caracteres muy

importantes en la definición de las especies de este género en particular.

Por otro lado la terminología que estos autores usan en su trabajo es antigua y su

interpretación ambigua. Por ejemplo, cuando se refieren a la escultura del tegumento

mencionan “gránulos con superficie aplanada”; término reemplazado por pústulas para

determinar el tipo de escultura en el género Acanthochitona desde Thiele (1929).

Además, tampoco esquematizan las valvas ni el tegumento, lo cual facilitaría la adecuada

interpretación de la descripción, ya que sólo presentan un esquema (fotografía) del

organismo en vista dorsal que no permite observar en detalle del tipo de tegumento y de los

derivados epidérmicos.

El trabajo de Smith y Ferreira (1977) es importante porque contiene la revisión del tipo y

otros especímenes de las localidades de las Islas Galápagos y del Perú, que les permitió

detectar deficiencias importantes entre estos especímenes. Ellos concluyeron que la

localidad tipo de Acanthochitona hirudiniformis era la Isla Chatham y que esta especie es

endémica para las Islas Galápagos. En cuanto a los especímenes del Perú, concluyeron que

pertenecían a otras especies que sólo serían definidas con material reciente, que presentaran

estructuras en buenas condiciones para ser estudiadas.

Acanthochitona sp. A se considera aquí como una especie diferente de A. hirudiniformis ya

que no comparten similitudes en los caracteres morfológicos del tegumento y de los

derivados epidérmicos de la especie tipo.

Watters (1990) enfatiza la importancia de observar los estetos bajo el microscopio de

barrido para separar a las especies de este género. Dando poco peso a la morfología

externa, como lo son las valvas, escultura del tegumento y derivados epidérmicos, ya que se

basa exclusivamente en la disposición y número de los estetos que ni siquiera los contó

para reorganizar la sistemática de A. hirudiniformis del Pacífico Oriental.

133

Así Watters (1990) bajo estos criterios propuso que la subespecie A. hirudiniformis

hirudiniformis se distribuye desde el Golfo de California hasta el Norte de Perú. Según su

división, esta especie presenta dos morfos los del Sur y los del Norte, los cuales se

diferencian principalmente en el tegumento y en el número y posición de los estetos.

Acanthochitona sp. A presenta un tracto yugal estriado y dos tipos de espículas en el

cinturón, que no coinciden con los caracteres de los especímenes del Norte de A. h.

hirudiniformis.

Así mismo, Acanthochitona sp. A, presenta una cobertura de su tegumento de

aproximadamente el 43% de la superficie dorsal de la valva V (5.6 mm de ancho). Mientras

que para A. h. hirudiniformis el esquema (en Watters, 1990:256, Fig. 50) de la valva V (5.5

mm de ancho) muestra una mayor cobertura del tegumento de aproximadamente el 80% de

la superficie dorsal de la valva.

La cobertura del tegumento de las valvas indica la proporción del ancho de las placas de

inserción (apófisis) que es menor para A. h. hirudiniformis y con mayor número de

pústulas. Según el mismo esquema de la valva V, las pústulas del tegumento que presenta

son más pequeñas y numerosas que las de Acanthochitona sp. A.

Por otro lado, tanto Smith y Ferreira (op. cit) como Watters (op. cit.) mencionan

únicamente que las pústulas son “numerosas”, pero es importante especificar que tan

numerosas son, es decir, el número de pústulas promedio por valva. De lo contrario, su

argumento es muy débil.

En las observaciones realizadas a Acanthochitona sp. A presenta diferencias en el número

de pústulas de acuerdo a la talla y tipo de valva con respecto a A .h. hirudiniformis. Por

ejemplo basándose en los esquemas de Watters (1990) se contaron las pústulas de cada

valva, siendo 247 para la valva V (5.5 mm de ancho) y 147 (4 mm de ancho) para la valva

VIII (en Watters, 1990:256, Fig. 50 [V] y [VIII]:256, Fig.49).

134

Mientras que un organismo adulto de Acanthochitona sp. A presenta aproximadamente 173

pústulas para la valva V (5.2 long., 8.5 ancho) y para la valva VIII, 98 pústulas (3.5 long.,

6.1 ancho). Por lo tanto esto demuestra que el área de cada pústula es mayor en

Acanthochitona sp. A así como la longitud de las apófisis, y por otro lado que la superficie

del tegumento de A. h. hirudiniformis es mayor así como el número de pústulas.

Watters (1990) sólo se basó en argumentos de la ultraestructura del tegumento, para

proponer dos subespecies sin tomar en cuenta que los eventos geológicos, climáticos y de

especiación que las Islas Galápagos presentan son parte de una dinámica biogeográfica

exclusiva de estas islas y que dichas características están dadas por su origen y que no

pueden ser compartidas por otras localidades por muy cercanas que se encuentren. De tal

manera que Watters (op. cit) al mencionar que las poblaciones se entrecruzan desde el

Golfo de California y a todo lo largo de la costa de Sur América hasta Perú, sea un

argumento sin fundamento.

Por lo tanto, el número de las pústulas y comparar la morfología de las valvas habría sido

suficiente para definir a las especies, ya que estos caracteres son diferentes como se ha

demostrado en el cuadro 3 del presente trabajo para Acanthochitona sp A, Acanthochitona

hirudiniformis y A. hirudiniformis hirudiniformis.

Es posible que las especies del Pacífico Oriental comparten un ancestro común que por los

eventos geológicos en la formación de las tierras del Nuevo Mundo, se hayan separado

quedando aisladas reproductivamente por barreras geográficas, oceanográficas y de

comportamiento. Al paso del tiempo estos quitones se vieron presionados por el ambiente,

adaptándose a las condiciones de su nuevo hábitat y modificaron sus estructuras de manera

consecuente. Probablemente la similitud en el número y disposición de los estetos

observados bajo la microscopía de barrido, sean un caracter conservado para las especies

del Norte, denominadas por Watters como A. h. hirudiniformis. Pero como se ha

demostrado los caracteres taxonómicos clave de las valvas y tegumento, presentan

diferencias que por sí mismas separan a las especies de este género en el Pacífico Oriental.

135

La comparación de caracteres permitió concluir que Acanthochitona sp. A es una especie

que no se puede definir basándose en la descripción de los autores anteriormente

mencionados. A reserva de que se realice un estudio comparativo entre especímenes de

diferentes localidades del Nuevo Mundo, será posible intentar asignarle un nombre

específico. Acanthochitona sp. A presenta caracteres que no coinciden totalmente con A.

hirudiniformis hirudiniformis, por lo que la división en subespecies propuesta por Watters

(1990) no ayuda a la definición de esta especie del Golfo de California.

En el presente trabajo se propone cuantificar las pústulas de la valva I, V y VIII, así como

el tamaño y morfología de las espículas de los mechones y cinturón, además de los

caracteres taxonómicos para determinar a las especies definidas en el Pacífico Oriental del

género Acanthochitona.

Otros caracteres que se proponen para estudiar la sistemática de este grupo son: placas de

inserción, forma del tegumento, amplitud y superficie del tracto yugal. Haciendo

innecesario observar el tegumento bajo la microscopía de barrido como propone Watters

(op. cit.) en su estudio de la sistemática del género.

Uno de los aspectos importantes de la problemática actual en el estudio de éste grupo de

quitones, es que la terminología usada por los taxónomos no es uniforme. Eso permite que

no sea muy clara la interpretación de los caracteres. Esta ambigüedad se hace mayor

cuando no se presentan esquemas de las estructuras que permitan ser comparadas con la

descripción de la especie y con material nuevo.

Watters (op. cit) esquematiza muy bien las estructuras, sin embargo, algunas de ellas las

presenta incompletas y no incluye a la valva cefálica. Por otro lado, su descripción

morfológica es breve, muy general y hace énfasis exclusivamente en las características de

los estetos, subestimando otros caracteres morfológicos de igual importancia. A pesar de

que la revisión de Watters (op. cit) es uno de los trabajos más recientes y con mucha

influencia en el estudio de los Acantochitones, no resuelve los problemas taxonómicos del

género.

136

A BCD

Fig. 22. Acanthochitona sp. A. A) vista dorsal del organismo completo; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral.

AB

C

D

137

Fig. 22. E) valva cefálica I; F) valva intermedia V; G) valva anal VIII; H) espículas del cinturón; I) espículas de los mechones suturales.

H

I

E

F

G

138

VII. DIS CUSIÓN

Biogeografía

Los quitones de México se distribuyen principalmente en la Región del Pacífico Oriental,

que presenta dos provincias biogeográficas, la del Golfo de California (de Bahía Magdalena

a Topolobampo, Sinaloa) y la Provincia Panámica (de la Bahía de Tangola-Tangola en el

Golfo de Tehuantepec al Noroeste de las costas de Sur América). Mientras que en la

Región del Atlántico Occidental se extiende desde Cabo Rojo, Veracruz, México al este de

Venezuela, siendo más diversos en el Golfo y en la Provincia Panámica (que corresponde a

la zona del Pacífico Tropical mexicano) (Briggs, 1974).

Thorpe (en Keen, 1971), reportó 37 especies, únicamente para las costas mexicanas en la

Región del Pacífico Oriental. Mientras que Smith (1977) sólo reportó 20 especies. Por otro

lado Abbott (1974) reportó 40 especies para el Pacífico Oriental y la región del Atlántico.

Ferreira (1979-1983) por su parte reportó alrededor de 15 especies (Ver apéndice II).

Kaas y Van Belle (1998), han reportado alrededor de 75 especies definidas para las costas

mexicanas, de las cuales 55 se localizan en el Golfo de California y la costa Oeste de Baja

California, 10 en el Caribe y 10 especies en el Pacífico Tropical.

El 80% de las especies reportadas son endémicas de nuestro país (Kaas y Van Belle, 1998).

Pero sí consideramos los nichos ecológicos tan variados que pueden mostrar las costas

mexicanas como las Islas del Pacífico, el Golfo de California y el Golfo de Tehuantepec

por sus características geológicas y oceanográficas, podemos entonces considerar que hay

un potencial de quitones muy alto.

Desgraciadamente los estudios ecológicos y de distribución son pocos o casi nulos, de tal

forma que es imposible conocer la situación actual de las poblaciones. Al igual que la

mayoría de los moluscos costeros, los quitones también se encuentran recibiendo

139

constantemente contaminantes producto de las poblaciones cercanas y del arrastre por el

oleaje.

Sistema de clasificación de los quitones

La clasificación sistemática de los quitones está basada principalmente en el sistema de

Pilsbry, publicado en el “Manual de Conchología”, vol. 14 y 15 (1892-94), el cual se basa

en las características de las valvas y el tipo de derivados epidérmicos del cinturón. Smith

(1960) considera los mismos caracteres en su clasificación (Smith en Moore, 1960).

Thiele (1929), incluye la descripción de los dientes centrales de la rádula como otro

caracter sistemático del grupo, pero Smith (en Moore, 1960) menciona que hasta ahora no

se ha comprobado la eficiencia de estos caracteres para separar a todas las especies de

quitones, ya que sólo en algunos géneros las diferencias entre los dientes radulares son

distinguibles.

Ferreira (1974, 1976-1987) y Smith (1960, 1976 y 1977) en sus estudios sistemáticos de los

quitones, han considerado la morfología de las valvas, el tipo de escultura del tegumento y

las características de los derivados epidérmicos, como caracteres taxonómicos

fundamentales. Para algunas familias complejas, Ferreira (op. cit.) ha descrito y

esquematizado algunos dientes radulares, para separar a las especies.

Bullock (1985), consideró sólo el diente mayor lateral como un caracter taxonómico de los

quitones, así como el sistema de los poros de los estetos. En su estudio al género Chiton del

Nuevo Mundo las diferencias que muestran las especies en del diente mayor lateral, son

evidentes. Para este grupo en particular la descripción del diente radular, resulta ser buen

caracter para separar a las especies, así como para determinar las relaciones filogenéticas

entre ellas. Aunque este caracter sea suficiente para separar a las especies de éste género,

Bullock (op. cit.) también tomó en cuenta la morfología de las valvas, escultura del

tegumento, derivados epidérmicos y poros de los estetos, los cuales, además de describirlos

presentó fotografías bajo microscopio de barrido.

140

Watters (1990), se basó casi exclusivamente en la distribución y densidad de los estetos del

tegumento bajo el microscopio de barrido, para resolver los problemas sistemáticos de

grupos complejos, como la familia Acantochitonidae Pilsbry, 1893. Mientras que Kaas y

Van Belle (1985a, 1985b, 1987, 1990, 1994), basan sus estudio taxonómicos en la

descripción detallada de las estructuras morfológicas de las valvas, tegumento, cinturón y

rádula, siendo estos estudios la monografía que representa el trabajo más completo en el

estudio sistemático de los quitones.

En el presente estudio se consideraron sólo los caracteres taxonómicos, aunque los dientes

radulares no se describen, ya que la mayoría de las especies estudiadas pueden ser

determinadas describiendo detalladamente el tipo y disposición de la escultura tegumental

así como las características morfológicas de las valvas I, V y VIII en vista ventral como lo

son: placas de inserción (hendiduras y dientes de inserción), apófisis y el tipo de los

derivados epidérmicos del cinturón.

Análisis de caracteres taxonómicos de los quitones

La clasificación de los quitones se ha modificado desde los comienzos de su estudio, pero

hasta ahora la descripción de los caracteres morfológicos de las valvas se ha mantenido

desde 1892 (Smith en Moore, 1960), sin embargo, es necesario estandarizar la terminología

usada en la sistemática actual de los quitones. Aquí se presenta un análisis de caracteres de

las estructuras con importancia taxonómica como fundamento básico en los estudios

actuales de filogenia del grupo.

Las valvas presentan estructuras como la placa de inserción, hendiduras de inserción,

dientes de inserción y apófisis. Otros caracteres que se han usado para definir a los quitones

son el cinturón y sus derivados epidérmicos, así como los dientes radulares.

La forma del cuerpo de los quitones es en general ovalada, pero puede también puede ser

semicircular (Mopalia ciliata) y de elongada a muy elongada (Ischnochiton y Stenoplax).

141

Este caracter así como la talla promedio de los quitones permite conocer a que suborden

pertenecen los organismos.

Las valvas son ocho unidades en forma de placas que conforman la concha de los quitones

(Fig. 4 y 5). Aunque cada valva presenta información taxonómica muy importante, por

convención se describen únicamente las valvas: cefálica I, una valva intermedia

(generalmente la valva V) y la valva anal VIII, ya que por su morfología presentan

estructuras y regionalización diferentes entre sí.

La placa de inserción: puede presentar de pocas a numerosas hendiduras en su superficie

(Fig. 5), sólo en el Suborden Lepidopleurina están ausentes. Ventralmente se visualiza de

mejor manera la placa de inserción, misma que puede presentar longitudes muy variadas,

puede ser de poco a muy prolongada hasta sobresalir en vista dorsal y de angosta a muy

gruesa. Este caracter es muy importante, ya que muchos géneros y familias han sido

separados exclusivamente bajo este criterio, uno de los ejemplos más conocidos es el del

género Chiton (Bullock, 1988).

Las hendiduras de inserción: pueden ser de poco a muy profundas, aunque este caracter

no haya sido hasta ahora considerado en las descripciones de las especies, en los

especimenes aquí estudiados se pudieron observar las diferencias que presentan sobre todo

a nivel genérico. Aunque algunos grupos taxonómicos de quitones como el del género

Chiton hayan sido modificados para su mejor estudio sistemático, las hendiduras de

inserción permiten definir a los quitones principalmente a nivel genérico.

Los dientes de inserción: son porciones de la placa de inserción, los cuales pueden ser

serrados y lisos (Eernisse, 1994). En el género Acanthochitona la valva I presenta

exclusivamente 5 hendiduras y dientes de inserción lisos, las valvas intermedias con 1

hendidura a cada lado de la placa de inserción y la valva anal con 2 hendiduras. La

simplificación de la descripción de la placa de inserción se define por convención como

fórmula de las hendiduras de inserción: 5-1-2 (para el caso de Acanthochitona), donde el

primer número corresponde al número de hendiduras en la valva cefálica, el segundo al

142

número de hendiduras por cada lado en las valvas intermedias y el último para la valva anal

(Eernisse, 1994).

Las apófisis: son prolongaciones formadas por la placa de inserción (Fig. 4-B, C y 5-B y

C). Estas estructuras permiten el contacto entre valva y valva, así como permitir que los

organismos presenten cierto grado de flexibilidad en sus cuerpos, sobre todo cuando los

quitones se enrollan en sí mismos para protegerse de sus depredadores (Eernisse, 1994).

Estas estructuras pueden ser de dimensiones variadas tanto en su longitud como en su

ancho. Algunos autores que han investigado la filogenia de los quitones, han mencionado

que las apófisis son un caracter que apareció en los grupos más recientes de quitones

(Hyman, 1967).

Las apófisis son importantes para definir a los quitones al nivel de género y especie, un

ejemplo es el del género Chaetopleura, donde las apófisis son muy cortas y poco

prolongadas. Por otro lado el ancho de las apófisis determinan la amplitud del seno yugal,

que es un caracter principalmente usado para definir a las especies (Ferreira, 1983b).

Las valvas en vista ventral presentan poros, los cuales corresponden a los canales por los

cuales se albergan las terminaciones nerviosas que forman a los estetos que son estructuras

sensoriales características de los quitones (Fig. 5) (Bullock, 1985). Estos poros pueden estar

ausentes o ser de poco a muy numerosos, alineados radialmente con respecto al pliegue

periostracal (Fig. 5-A y B) o estar dispersos. Este caracter es usado generalmente para

definir a los quitones al nivel de género. En el presente estudio se ha observado que ésto es

correcto, ya que los poros en su disposición y densidad son similares en especies de un

mismo género, por ejemplo en el género Ischnochiton, Stenoplax y Chiton.

El tegumento: caracteriza a las valvas en vista dorsal, proporcionan información sobre

todo en el tipo y disposición de la escultura tegumental. El tipo de escultura de las valvas

puede ser liso, con costillas, gránulos, surcos y mixto (Fig. 3). Este caracter es fundamental

en el estudio de los quitones, ya que proporcionan información sobre todo al nivel de

familias, un ejemplo claro es el del género Ceratozona que presenta escultura granular de

143

diferentes tipos, los cuales pueden formar una gruesa escultura en la superficie de las

valvas.

La disposición de la escultura en el tegumento puede ser longitudinal (sobre todo en el

área central de las valvas intermedias), radial (en las áreas laterales y terminales) o mixta.

Pocos son los autores que detallan en sus descripciones la disposición de la escultura

tegumental, ya que hacen mayor énfasis en describir el tipo de la escultura. Este caracter es

clave para definir a especies muy cercanas, tal es el caso Stenoplax limaciformis. Bullock

(1985) en un estudio sistemático al género Stenoplax, mencionó que el tipo y disposición de

la escultura tegumental puede definir a especies complejas, que por su parecido son

difíciles de determinar. Bullock (op. cit.), analizó el tipo y disposición de la escultura que le

permitió determinar la cercanía de las especies de un mismo género.

La forma y dimensión del tegumento corresponde a la porción de la valva que se observa en

vista dorsal, este caracter también puede proporcionar información para clasificar a los

quitones, principalmente al nivel de familias, un ejemplo muy claro es el grupo de

Callistoplacidae, Chaetopleuridae y Acanthochitonidae

El ápice es una porción que generalmente sobresale hacia la parte posterior de las valvas,

en vista dorsal. En la valva cefálica puede ser convexo o cóncavo (Fig. 5-A y 9-A)

(Eernisse, 1994), mientras que en las valvas intermedias presentan generalmente un ápice

convexo (Fig. 4-B). Aunque en algunas especies puede estar desgastado por la erosión

provocada por las olas, es un caracter usado para definir a los quitones al nivel de especie.

En la valva anal el mucro es una elevación en vista dorsal, que se encuentra en el límite de

la región antero y postmucronal (Fig. 4-C) (Jones y Baxter, 1987). Para definir a las

especies es importante mencionar su posición con respecto a la superficie del tegumento de

la valva, es decir, anterior, medio o posterior. El uso de esta estructura taxonómica es muy

variable, ya que algunos autores la consideran al nivel de familia, género y otros la

describen únicamente cuando definen a las especies. Este caracter además de proporcionar

información acerca de la posición del mucro, también nos permite conocer la dimensión de

144

la región antero y postmucronal, ya que está relacionado con la línea diagonal que divide a

estas dos regiones. Aunque el mucro puede prolongarse hasta la región postmucronal, su

punto de origen se encuentra en la línea diagonal (Fig. 4-C). En el presente estudio se

observó que este caracter permite definir a los quitones a nivel genérico.

El cinturón: es una estructura muscular muy desarrollada en los quitones actuales, de

diferentes grosores y que presenta una cutícula que alberga glándulas productoras de

derivados epidérmicos (Smith en Moore, 1960). El grosor del cinturón define a los quitones

sobre todo al nivel de familia y subfamilia. Aunque pueden existir variaciones en las

dimensiones del cinturón, esta estructura junto con los derivados epidérmicos permiten

separar a los quitones al nivel genérico. Un ejemplo claro es el de la familia

Acanthochitonidae y del género Acanthochitona, en estos grupos taxonómicos el cinturón

es muy grueso y ancho, cubiertos densamente por finas espículas y por mechones suturales

a las valvas (Fig. 22-E, F y G).

Los derivados epidérmicos: son unidades localizadas sobre todo dorsalmente en el

cinturón, los más comunes son: escamas (elongadas, ovaladas y circulares), espículas (de

diferentes longitudes y grosores), espinas y pelos (Fig. 3). Ventralmente el cinturón

también presenta una cutícula (de glucoproteinas) y derivados epidérmicos, los cuales son

principalmente de forma rectangular. Estas escamas se encuentran fuertemente traslapadas

entre sí y están constituidas de material calcáreo exclusivamente (Eernisse, 1994).

Los derivados epidérmicos pueden presentar una superficie lisa, estriada, granular, con

costillas, reticular o mixta (Fig. 8-C) (Bullock, 1985). Algunas veces se puede observar con

microscopio estereoscópico, pero en la mayoría de las especies la ornamentación se observa

únicamente bajo microscopia de barrido. La superficie de los derivados del cinturón son

usados para definir a los quitones a nivel de especie, por ejemplo, Ischnochiton aethalotus y

Stenoplax (Stenoradsia) conspicua.

Los derivados epidérmicos, están constitudos de aragonita (estructuras calcáreas), pero

también el cinturón de algunas puede presentar pelos fibrosos y córneos. Muchas de las

145

especies que presentan un tegumento muy erosionado como Acanthopleura granulata (Fig.

21. A), pueden ser determinadas mediante las características del cinturón y de los derivados

epidérmicos, ya que las estructuras de las valvas en vista ventral se pierden, principalmente

la escultura tegumental. De tal forma que la descripción detallada del cinturón y de los

derivados epidérmicos, ayudarían a definir a las especies cuando el tegumento de las valvas

se encuentre erosionado.

La rádula es una estructura que presenta varias hileras y filas de dientes quitinosos, los

cuales se encuentran adheridos en una membrana cartilaginosa. Esta estructura es el aparato

alimentario de los quitones, con ella raspan la superficie de las rocas y de las conchas. Los

quitones, son el único grupo de moluscos que presentan una cobertura de magnetita en el

diente mayor lateral (Fig. 8. A) que le proporciona la dureza suficiente para raspar todo tipo

de superficies. Muchos autores (Ferreira, 1986, 1978, 1981; Bullock 1985; Eernisse, 1994)

han mencionado que los caracteres de las estructuras radulares no presentan importancia a

nivel sistemático, ya que dentro de una misma especie las variaciones son muy frecuentes.

Bullock (1985) menciona que sólo algunos géneros presentan especies con morfología

radular uniforme, tal es el caso del género Chiton.

En el presente estudio, se propone usar únicamente los caracteres morfológicos para definir

a los quitones, ya que en la mayoría de las especies mexicanas muestran diferencias en la

disposición y tipo de escultura tegumental, aún en especies muy cercanas.

Esta propuesta se refiere fundamente al uso de un conjunto o grupo de caracteres para

definir a las especies de quitones. Estos caracteres taxonómicos son: placas y hendiduras de

inserción, disposición y tipo de la escultura del tegumento de las áreas laterales y centrales

de las valvas intermedias y tipo de los derivados epidérmicos del cinturón. Estos caracteres

morfológicos han sido usados anteriormente por Ferreira (1976, 1977-1987), Smith (1977)

y Kaas y Van Belle (1994) quienes han aportado estudios importantes de los quitones y

resuelto problemas sistemáticos de varias especies y géneros, como Chaetopleura,

Lepidozona y Callistochiton.

146

Estudios recientes aplicados a los quitones

Los avances en la microscopia electrónica de barrido, sin duda han representado

actualmente una herramienta importante en el estudio taxonómico de los quitones, ya que

ha permitido observar claramente el detalle de la escultura tegumental y la superficie de las

escamas. Watters (1981, 1990) y Lyons (1988), han publicado varios estudios usando estas

técnicas, pero desgraciadamente han abusado en el uso de esta tecnología, ya que los

quitones han sido estudiados bajo este punto de vista exclusivamente, es decir, estos

trabajos se basan únicamente en la microestructura de los caracteres taxonómicos,

ignorando totalmente las estructuras básicas con la misma importancia taxonómica.

Un ejemplo muy claro es el reportado por Watters (1990) para la familia

Acanthochitonidae, quién basó su estudio en la densidad y número de estetos del tegumento

y de las pústulas. De acuerdo a sus resultados, Watters propone varios subgéneros y una

nueva familia. Sin embargo, como aquí se ha mencionado su propuesta no soluciona los

problemas sistemáticos de esta familia, ya que Acanthochitona sp. A de la CNMO no pudo

ser definida de acuerdo a los caracteres morfológicos en su división de subespecies.

Eernisse (1986, 1988 y 1994), ha usado la microscopia electrónica para estudiar a los

quitones en su desarrollo embrionario y algunos aspectos de su biología de la reproducción,

aportando valiosa información al estudio de estos organismos. Desgraciadamente las

nuevas técnicas de microscopia no se han usado como herramientas alternativas en los

estudios taxonómicos, sino que han sido actualmente considerados como métodos

exclusivos para la definición de las especies, dando poco interés a las estructuras

morfológicas de igual importancia.

En nuestro país son pocas las facilidades para estudiar a los quitones usando la microscopia

de barrido, de tal forma, si las especies se describen y definen únicamente con caracteres de

la ultraestructura tegumental, los resultados no podrán ser corroborados por malacólogos

mexicanos y latinoamericanos, debido a la carencia de la tecnología en microscopia

electrónica.

147

Problemática en la sistemática de los quitones

La problemática sistemática de los quitones radica principalmente en dos puntos: la

terminología y la falta de ilustraciones de las estructuras taxonómicas.

La terminología es muy variada desde el origen del estudio de los quitones y que se

modificó a medida de que su estudio se retomó en la primera década de este siglo. Esta

situación permitió que muchas de las especies ya descritas y reportadas hayan sido

consideradas como nuevas en trabajos posteriores. Más tarde las revisiones al espécimen

tipo de muchas especies, permitieron observar que estas ya habían sido definidas

anteriormente. Estos estudios también permitieron detectar errores en las descripciones

originales en el tipo de la escultura del tegumento, ya que este caracter es el más difícil de

describir, debido a que las formas que puede presentar son variadas y sinuosas. Ésta fue una

de las razones por la que hasta ahora existen confusiones para interpretar muchas

descripciones originales de las especies.

Bullock (1988), hace énfasis en que se ha usado terminología muy variada e inadecuada

para estudiar a los quitones, y menciona que esto ha provocado una serie de confusiones en

el estudio taxonómico actual de los poliplacóforos. Esta observación fue mencionada

también por Ferreira (1983b) pero sólo para algunas especies en particular, así como la

ambigüedad de la terminología ha ocasionado que la mayoría de las especies presenten

muchas sinonimias.

Bullock (op. cit.) propuso uniformizar la terminología del género Chiton y esquematizó la

mayoría de sus estructuras taxonómicas, que también pueden ser aplicables para otros

géneros. Watters (1990) en un estudio a la familia Acanthochitonidae, también mencionó la

necesidad de delimitar la terminología, sobretodo para familias complejas.

Bullock (op. cit.) y Watters (op. cit.), coincidieron en esquematizar las estructuras que usan

en sus descripciones, para evitar ambigüedades en su interpretación, al contrario de Smith

148

(op. cit.), quién se limitó a mencionar que los esquemas de las especies que él estudió se

podían consultar en el Instituto de Santa Bárbara, California.

Kaas y Van Belle (1985a, 1985b, 1987, 1990, 1994) en la Monografía de los quitones

actuales (Monograph of Living Chitons), presentan un estudio que trata de corregir estos

errores sistemáticos, ya que todas las especies que se reportan en dicho trabajo se

encuentran ilustradas, descritas en su versión extensa y con su rango de distribución,

además de que presentan claves sistemáticas de géneros y familias. Actualmente esta

investigación representa la obra más completa y fidedigna en el estudio sistemático de los

quitones. Sin embargo, la obra presenta el 50% del total de las especies definidas.

Quitones de la CNMO

El total de las especies depositadas en la CNMO es de 7 géneros y 13 especies (Cuadro. 2).

Material muy escaso en comparación con los datos de las especies reportadas para las

costas mexicanas, que son alrededor de 16 géneros y 70 especies (Kaas y Van Belle, 1998).

Estas especies fueron recolectadas principalmente en zonas del Pacífico Mexicano, pero

dentro de esta zona las localidades muestreadas son pocas. Las localidades con mayor

número de muestras fueron: Isla Ixtapa y Playa las Gatas en Zihuatanejo, Guerrero y el

Puerto de Mazatlán, Sinaloa que representan el 90% de las localidades muestreadas.

Mientras que las zonas del Golfo de México y Caribe Mexicano son escasas, ya que en el

Pacífico Tropical presenta sólo una especie en dos áreas de colectas Puerto Angel y Salina

Cruz, Oaxaca, al igual que el Caribe Mexicano, Isla mujeres e Isla Cozumel. Mientras que

el Golfo de México no cuenta con ningún registro de muestreo en la colección.

Las zonas de colecta se limitan a unas cuantas localidades (Fig. 2), ya que eran el destino

de las excursiones de los estudiantes y profesores de la asignatura de Ecología Marina que

se impartía en la Facultad de Ciencias de la UNAM, entre los cuarentas a los sesentas. El

90% del material disponible actualmente es producto de dichas prácticas de campo que

estuvieron depositadas en el Laboratorio de Sistemática y Ecología de Equinodermos del

149

Instituto de Ciencias del Mar y Limnología, UNAM (ICMyL), hasta que fue recientemente

donada a la CNMO del Instituto de Biología (Naranjo, 1993).

El método de recolecta que se ha usado para obtener las muestras malacológicas ha sido

poco planeado, ya que se restringe a la zona intermareal de las playas rocosas. Por esto la

mayoría del material existente en las colecciones en México se limita a las conchas de

moluscos marinos, que se obtienen en las playas rocosas y que han sido arrastradas por el

oleaje hasta la orilla. En particular para los quitones no sucede así, ya que las valvas se

desarticulan muy fácilmente pero se recogen siempre los quitones de las zonas más

accesibles o expuestas.

Aunque algunos géneros como Acanthochitona y Stenoplax se encuentran a mayor

profundidad (Fig. 1), también se recolectaron con cierta facilidad debido a que se

aprovechó la marea baja que permite que las zonas expuestas de la costa sean de varios

metros, de tal forma que se tuvo acceso a estas especies que en general se localizan a

profundidades mayores a los 5 m (Fig. 1).

Esto es evidente, cuando se estudian moluscos que se distribuyen a mayores profundidades

y que en las colecciones malacológicas mexicanas no existen o sólo está disponible la

concha. Es probable que se encuentren especies de gasterópodos y quitones de medias y

grandes profundidades (mayores a los 100 m), obtenidas en arrastres de red en las

campañas oceanográficas del ICMyL, pero desafortunadamente no han sido publicados los

resultados de este material.

La carencia de material malacológico de las especies conocidas, se debe a que no ha

existido un proyecto nacional para contar con un inventario de la biodiversidad de

moluscos, ya que lo que se ha hecho hasta ahora es realizar muestreos muy puntuales

donde los moluscos son recolectados como parte de la fauna acompañante de grupos

taxonómicos, para los cuales si existen líneas de investigación, como los peces y algas,

mientras que para los moluscos poco se ha hecho para reunir la información disponible

respecto al Phylum.

150

Estudio de los quitones en México

Los estudios de moluscos en México son principalmente bibliográficos basados en Keen

(1958, 1971) y Abbott (1954, 1974), dentro de los cuales los más comunes son los listados

de especies para ciertas localidades (González en Salazar, V. y N. E. González, 1993;

Reguero, R. y A. C. García, 1993). En estos listados reportan solo unas cuantas especies y

con nombres antiguos e incorrectos en la sistemática actual de los quitones.

En el presente trabajo se presenta un listado actualizado de las especies reportadas para las

costas mexicanas de la Región del Pacífico Oriental y del Caribe (Pág. 52).

Reguero y García (1993) mencionan que es necesario estudiar a los moluscos poco

conocidos, pero desgraciadamente el estudio de estos grupos en México no es una tarea

fácil, debido a que el acceso a las colecciones malacológicas es muy limitado o totalmente

denegado. Por ello no es suficiente reconocer la problemática en cuanto a la carencia de

estudios malacológicos, sino que también se requiere fomentar y facilitar el estudio de los

moluscos con el material existente en las colecciones científicas depositadas en las

diferentes instituciones. Así mismo es necesario crear proyectos de estudio que contemplen

a dichos grupos taxonómicos y donde se incorporen investigadores expertos que participen

en la formación de estudiantes con interés en la malacología.

Existen colecciones que cuentan con material malacológico, pero que no está disponible

para ser estudiado por estudiantes de biología, por ejemplo, el material obtenido en

campañas oceanográficas del ICMyL, UNAM, donde sólo se toma en cuenta para estudios

de ecología de comunidades, ya que posteriormente es almacenado por tiempo indefinido,

por lo que su estado de preservación actual es muy dudoso.

La colección de referencia de Invertebrados, Estación Mazatlán del Instituto de Ciencias

del Mar y Limnología, UNAM, es probablemente la única colección actualizada y veraz de

referencia de los quitones en México. Ya que el curador de dicha colección el Dr. Michel E.

151

Hendrickx (1994), en su catálogo de moluscos en el apartado de la Clase Polyplacophora,

menciona que la identificación de la mayoría de las especies corrió a cargo del ya

desaparecido especialista en quitones Dr. José Antonio Fernández Ferreira de la Academy

of Sciences, San Francisco, EUA y de un notable investigador del CIAD, Mazatlán el Dr. A

van der Heiden.

A pesar de la gran biodiversidad de los quitones en nuestro país, no existe hasta ahora un

estudio de sistemática básica del grupo, ni siquiera un especialista que aporte nuevos

estudios acerca del grupo. Por ello el conocimiento de estos moluscos se limita a las pocas

colecciones con ejemplares determinados por malacólogos mexicanos generalmente

inexpertos en el grupo. La falta de estudios acerca de los quitones, también ha ocasionado

que se desconozca la cantidad real de especies en nuestro país, ya que los investigadores

extranjeros sólo han estudiado parte de nuestras costas rocosas, principalmente en el Golfo

de California y parte del Mar Caribe (Ver apéndice II).

Esta falta de bibliografía en español acerca de los quitones ha ocasionado que la

bibliografía básica usada en las colecciones continuen siendo Keen (1958, 1971) y Abbott

(1954, 1974), aunque ya hayan transcurrido más de 40 años desde su aparición. Desde

entonces este material bibliográfico ha representado la única guía sistemática para

determinar quitones en las colecciones malacológicas, debido a la carencia de expertos y

por consiguiente de bibliografía más especializada de este grupo en español y a la falta de

revisiones, al menos bibliográficas.

En el presente trabajo, se ha demostrado que ambas ediciones de Keen (op. cit.) y Abbott

(op. cit.) ya no son la guía sistemática adecuada para el estudio de las especies de quitones

en nuestro país, ya que en trabajos recientes (Smith, 1976, 1977; Ferreira, 1979-1983;

Mook, 1981; Bullock, 1985, 1988; Eernisse, 1986, 1988, 1994; Kaas, 1993; Kaas y Van

Belle, 1985a, 1985b, 1987, 1990, 1994 y 1998; Lyons, 1988; Reindly y Haszpruner, 1996;

Watters, 1981, 1990 y 1991) de las especies han presentado cambios en su sistemática y no

pueden ser consideradas bajo el punto de vista de Keen (1958 y 1971) y Abbott (1954 y

1974).

152

En el presente trabajo se propone esquematizar a las especies y la escultura tegumental de

las mismas, aún con la complejidad que el grupo presenta, ya que permitiría comparar la

descripción de la especie con los esquemas, sobre todo en el tipo y disposición de la

escultura tegumental. Para expresar correctamente los caracteres de las estructuras

taxonómicas y evitar variaciones y confusiones en el lenguaje sistemático para definir a las

especies de este grupo, es necesario uniformizar la terminología usada en el estudio

sistemático de los quitones.

Atendiendo a estas necesidades de clarificar las bases del estudio taxonómico del grupo, en

esta obra se ha elaborado un glosario (Pág. 26) con las estructuras de importancia

sistemática (esquematizadas sólo las más importantes), para el adecuado estudio de dichos

organismos, así como de entender fácilmente su clasificación y la problemática en su

sistemática actual.

El presente trabajo es un esfuerzo por iniciar el estudio básico de este grupo en nuestro

país, de tal forma que represente una pequeña guía sistemática para México y

Latinoamérica, ya que algunas especies que se distribuyen en las costas mexicanas también

se distribuyen en las costas de países latinoamericanos (Ver apéndice II). Aunque las

especies que se presentan en esta obra son pocas, el glosario ilustrado, la primera lista de

quitones en México y los esquemas de las especies de la CNMO representan una aportación

importante para el estudio de los quitones en nuestro país.

Por otro lado, es necesario ampliar el número de especies posibles a la CNMO, mediante la

realización de nuevas recolectas planeadas en zonas diferentes a las reportadas en este

estudio, ya que no se ha incorporado material nuevo a la colección, desde que fue ésta fue

formada, para contar con una Colección Nacional completa y de referencia actualizada para

el estudio de los quitones en México.

153

VIII. CONCLUSIONES

1. Se estudió por primera vez la sistemática de los quitones en México y se evaluó el

conocimiento de este grupo de moluscos en nuestro país.

2. Se describieron e ilustraron a partir de 457 ejemplares, 11 especies definidas y 2

probables especies no definidas de quitones en la CNMO.

3. Se elaboró un glosario ilustrado de la terminología usada en la sistemática actual de los

quitones.

4. Se elaboró el primer listado sistemático actualizado de los quitones en México.

5. Se realizó un análisis de caracteres morfológicos de los quitones para la realización de

estudios filogenéticos futuros, así como de las relaciones entre los diferentes grupos

sistemáticos de la Clase Polyplacophora.

6. Se propone el uso de un conjunto o grupos de caracteres morfológicos para la

identificación de las especies: placa y hendiduras de inserción, tipo y disposición de la

escultura del tegumento y los derivados epidérmicos del cinturón.

7. Se propone realizar recolectas programadas en localidades particulares, que permitan

incluir un mayor número de especies en la Colección Nacional de Moluscos, así como

intercambios de material con otras colecciones malacológicas.

154

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X. APÉNDICE

Abreviaturas:

Ind. # (número para cada espécimen).No. Cat. (número de catálogo).Loc. (se refiere a la región de colecta, P, Pacífico; G, Golfo de México; A, Caribe; IG, Islas Galápagos). Zona: (corresponde a la localidad de recolecta). L: (longitud total del organismo, incluyendo cinturón). A: (ancho del organismo). V: (longitud de la valva intermedia V). AC: (ancho del cinturón). WG: (peso del organismo en gr.).

Observaciones: en esta sección se indican las condiciones de los especimenes, generalmente no se registra el peso en los ejemplares secos, lo cual se indica según sea el caso./: sin datos

I. Tablas de datos merísticos

Chaetopleura scabricula

ind # No. Cat.

Loc Zona L A V AC WG Observ.

1 055 P Bahía Eclipse, BC. 9.8 6.4 5.8 / / Org. secos2 055 P Bahía Eclipse, BC. 12.2 12.4 10.3 / / Org. Secos3 055 P Bahía Eclipse, BC. 12.5 11.7 6.8 / / Org. Secos4 055 P Bahía Eclipse, BC. 14.6 12.6 8.1 / / Org. Secos5 055 P Bahía Eclipse, BC. 17.3 12.7 9.8 / / Org. Secos6 055 P Bahía Eclipse, BC. 19.8 12.9 10.9 / / Org. Secos7 055 P Bahía Eclipse, BC. 23.4 13.5 12.3 / / Org. Secos8 055 P Playa Las Gatas, Zih. Gro. 10.1 6.9 6.2 2.1 0.08 Org. Secos9 055 P Playa Las Gatas, Zih. Gro. 20.3 13.1 11.7 3.8 2.59 Org. Secos10 055 P Playa Las Gatas, Zih, Gro. 23.7 13.6 12.1 4.5 4.18 Org. Secos11 055 P Playa Las Gatas, Zih, Gro. 26.2 16.5 15.7 5.8 4.32 Org. Secos12 055 P Playa Las Gatas, Zih, Gro. 27.3 16.5 15.9 5.8 4.57 Org. secos

Ischnochiton muscarius

Ind. # No. Cat.

Loc. Zona L A V AC WG Observ.

1 013 P Isla Ixtapa, Zih, Gro. 13.2 10.2 8.1 2.9 0.142 014 P Isla Ixtapa, Zih, Gro. 15.5 10.2 8.1 2.3 0.113 045 P Playa las Gatas, Zih, Gro 8.1 9.1 6.7 3.8 1.04

165

4 019 P Playa las Gatas, Zih, Gro 16.7 10.7 9.7 3.3 0.635 019 P Playa las Gatas, Zih, Gro 18.4 12 9.5 2.9 0.686 019 P Playa las Gatas, Zih, Gro 19.8 13.2 11.6 3.4 1.047 026 P Embarcadero, Zih, Gro. 7.4 6.2 5 1.5 0.18 026 P Embarcadero, Zih, Gro. 15.1 12 9.3 3.1 0.649 042 P Bahía, Zih, Gro. 25.1 13.8 12.4 3.5 1.2710 043 P P. camino al almacén,

Zih.12.1 9.4 6 1.6 0.25

11 043 P P. camino al almacén, Zih.

13.2 9.9 6.8 1.9 0.17

12 043 P P. camino al almacén, Zih.

13.9 10.4 7.4 2.3 0.27

13 043 P P. camino al almacén, Zih.

14.4 10.2 8.5 2.2 0.29

14 043 P P. camino al almacén, Zih.

17.1 12.9 10 3.3 0.58

15 043 P P. camino al almacén, Zih.

17.4 12.2 9.9 2.9 0.57

16 043 P P. camino al almacén, Zih.

18.1 13 11.4 2.9 0.78

17 021 P P. Camino Contramar, Zih 13 9.3 7.4 2.2 0.2318 021 P P. Camino Contramar, Zih 15.2 10.7 8.1 2 0.2119 021 P P. Camino Contramar, Zih 18.2 12.8 10.4 2.9 0.6920 008 P Isla Chivos, I. Piedra, Maz 13.4 8.6 7.3 1.6 0.2421 008 P Isla Chivos, I. Piedra, Maz 17.3 10.9 9.1 3.5 0.6322 008 P Isla Chivos, I. Piedra, Maz 17.7 6.1 5 1.7 0.4123 052 P Isla de la Piedra, Maz 9.4 8.2 6.1 2.3 0.1724 052 P Isla de la Piedra, Maz 17.2 10.6 8.5 2.7 0.4725 068 P Pto. Mazatlán, Sin 11.9 8.7 6.1 2.3 0.1826 071 P Isla Pájaros, Maz, Sin 4.7 3.4 2.9 1 0.04

127 071 P Isla Pájaros, Maz, Sin 5.2 3.6 3.1 1.1 0.03

928 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 5.4 5 4.2 1.2 0.02

129 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 6 5.2 4.1 1.7 0.03

330 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 6.5 5.9 4.6 2.7 0.04

231 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 6.7 5.1 4.8 2.9 0.04

132 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 8 7.4 5.9 3.6 0.0533 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 8.1 6.7 5.6 2.8 0.04

934 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 11.5 7.5 5.8 1.9 0.06

135 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 6.3 5.4 4.7 1.4 0.3736 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 6.9 5.7 5 2.3 0.437 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 7.9 5.9 5.3 2.3 0.4938 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 8.4 6.6 5.7 3.4 0.5139 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 9.7 7.5 5.8 4.4 0.6340 072 P I. Sacrificios, Ver 10.1 8.4 6.4 1.7 0.141 072 P I. Sacrificios, Ver 13.7 9.1 8.4 2.4 0.33

Ischnochiton aethalotus

Ind.# No. Cat.

Loc. Zona L A V AC WG

1 056 P Baja California 6.2 4.3 3.9 / Org. secos2 056 P Baja California 6.9 4.5 4.1 / Org. Secos3 056 P Baja California 7.1 5.3 4.9 / Org. secos4 056 P Baja California 7.3 5.5 5 / Org. Secos5 056 P Baja California 8.4 5.6 5.5 / Org. Secos6 056 P Baja California 8.8 6.1 6 / Org. secos7 056 P Baja California 9 5.6 5.5 / Org. secos8 056 P Baja California 9.1 5.9 5.8 / Org. secos9 056 P Baja California 9.2 5.8 5.6 / Org. Secos10 056 P Baja California 9.2 6.3 5.5 / Org. secos11 056 P Baja California 9.2 6 5.7 / Org. Secos12 056 P Baja California 10.1 7.2 6.7 / Org. Secos13 056 P Baja California 10.9 7.3 7.1 / Org. secos14 056 P Baja California 11.3 7.2 7.1 / Org. secos15 056 P Baja California 11.7 7.2 7 / Org. secos16 056 P Baja California 13.1 7.8 7.5 / Org. Secos17 056 P Baja California 13.4 9.1 8.8 / Org. secos18 056 P Baja California 13.9 9.3 9.1 / Org. Secos19 056 P Baja California 15 9 8.9 / Org. Secos20 056 P Baja California 15.2 9.5 9.3 / Org. secos21 056 P Baja California 15.2 9.8 9.6 / Org. secos22 056 P Baja California 15.5 9.9 9.8 / Org. secos23 056 P Baja California 15.5 9.8 9.6 / Org. Secos24 056 P Baja California 15.8 9.4 9.2 / Org. secos25 056 P Baja California 15.8 10.1 9.9 / Org. Secos26 056 P Baja California 15.8 9.5 9.4 / Org. Secos27 056 P Baja California 16.4 10 9.7 / Org. secos28 056 P Baja California 16.4 10.1 9.8 / Org. secos29 056 P Baja California 16.4 10 9.9 / Org. secos30 056 P Baja California 16.6 10.2 9.9 / Org. Secos31 056 P Baja California 16.6 9.8 9.7 / Org. secos32 056 P Baja California 16.7 10.1 9.9 / Org. Secos33 056 P Baja California 16.8 9.8 9.7 / Org. Secos34 056 P Baja California 16.9 9.9 9.8 / Org. secos35 056 P Baja California 17 10 9.8 / Org. secos36 056 P Baja California 17 10.2 9.8 / Org. secos37 056 P Baja California 17.2 9.9 9.7 / Org. Secos38 056 P Baja California 17.4 10.3 10 / Org. secos39 056 P Baja California 17.6 10.5 10.2 / Org. Secos40 056 P Baja California 17.9 10.4 10.2 / Org. Secos41 056 P Baja California 18.1 10.5 10.4 / Org. secos42 056 P Baja California 18.7 10.6 10.4 / Org. secos43 056 P Baja California 18.9 10.5 10.4 / Org. secos44 056 P Baja California 19.2 11.3 10.8 / Org. Secos45 056 P Baja California 20.1 11.4 11.3 / Org. secos46 056 P Baja California 20.7 11.6 11.3 / Org. Secos47 056 P Baja California 21.7 12.5 12.2 / Org. Secos48 056 P Baja California 22.4 13.1 12.9 / Org. secos

166

49 056 P Baja California 22.7 13.4 13.3 / Org. secos

Stenoplax (Stenoradsia) sonorana

Ind.# No. Cat.

Loc. Zona L A V AC WG Observ.

1 003 P Guaymas, Sonora 53.7 22.6 17.6 8.9 7.032 003 P Guaymas, Sonora 68.3 28.7 21.9 9.3 12.1

33 002 P Guaymas, Sonora 20.7 7.8 5.2 3.1 / Organismo

incompleto4 001 P Guaymas, Sonora 61.3 26.3 21.4 9.2 11.0

5

Stenoplax limaciformis

Ind.# No. Cat.

Loc. Zona L A V AC WG Observ.

1 019 P Playa, Las Gatas, Zih, Guerrero

19.7 8.3 6.6 3.4 0.35

2 019 P Playa, Las Gatas, Zih, Guerrero

24.6 8.9 7.1 3.7 1.05

Stenoplax sp. A

Ind.# No. Cat.

Loc. Zona L A V AC WG Observ.

1 031 P Mazatlán, Sin. 29.8 10.7 8.8 4 1.322 " P " 41 16.1 11.2 5.6 2.13 "3 068 P Rocas, Mazatlán,

Sinaloa28.5 10.7 9 4.2 1.05

Callistoplax retusa

Ind.# No. Cat.

Loc. Zona L A V AC WG Observ.

1 019 P Playa Las Gatas, Zih, Gro.

18.1 7.9 6.5 2.2 0.55

2 046 P Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zih, Gro.

9.2 5.6 4.2 1.6 0.08

3 046 P Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zih, Gro.

13.1 7.3 6 2 0.23

4 046 P Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zih, Gro.

13.4 7.3 6.1 1.8 0.36

5 046 P Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zih, Gro.

15.6 7.7 6.7 1.9 0.44

167

Chiton (Chiton) virgulatus

Ind# No. Cat.

Loc Zona L A V AC WG Observ.

1 004 P Guaymas, Sonora 22.8 15 11.1 4 1.122 004 P Guaymas, Sonora 26.4 14.6 11.9 4.9 1.083 004 P Guaymas, Sonora 26.4 19.2 10.7 3.4 1.044 004 P Guaymas, Sonora 26.5 15.2 13 4.7 1.55 004 P Guaymas, Sonora 47.9 24.5 20.7 7.7 6.76 004 P Guaymas, Sonora 67.5 37 27.3 8 16.0

77 062 / / 21.2 14.5 10.6 3.7 0.778 064 P Isla Espíritu Santo,

B.C19.8 13 9.6 4 0.6

9 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

21.7 13.5 11 4.1 0.85

10 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

21.8 15.7 11.3 4.2 0.9

11 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

21.8 13.3 10.9 4.4 0.8

12 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

22.2 16.7 12.3 4.8 1.06

13 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

22.3 15.7 11.8 4.6 1.13

14 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

22.8 16.3 12.3 5 1.02

15 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

23.1 17 12.8 5.5 1.46

16 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

23.2 15.4 12.6 5.3 1.35

17 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

23.4 16 12.3 5 1.28

18 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

25.1 16 11.9 4.8 0.94

19 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

25.3 14.4 12.1 5.2 1.23

20 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

25.5 16.2 12.4 5.4 1.2

21 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

28.1 19.3 13.4 4.7 1.56

22 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

28.6 17.3 13.5 4.9 1.45

23 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

29.2 17.8 13.5 4.6 1.76

24 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

29.3 18.3 13.1 4.8 1.34

25 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

29.5 18.2 14.1 5.5 1.59

26 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

30.1 18.2 14.1 5.5 1.78

27 064 P Isla Espíritu Santo, B.C

34.6 22.3 16.6 6.4 3.02

28 065 P B.Eclipse e I. Piedra B.C

30.3 16.9 11.4 3.4 /

29 065 P B.Eclipse e I. Piedra 56.9 30.3 22.1 6 / organismos en seco

168

B.C30 070 P Bahía Falsa, La Paz,

B.C15.7 12.4 9.3 3.3 0.67 organismos en seco

31 032 P Bahía Falsa, La Paz, B.C

42.1 24.5 20.8 7.6 6.68 organismos en seco

32 032 P Bahía Falsa, La Paz, B.C

34.2 19.2 17.2 6.4 3.12 organismos en seco

Chiton (Diochiton) albolineatus

ind # No. Cat.

Loc. Zona L A V AC Wg

1 009 P Mazatlán, Sinaloa 10.6 7.8 6.4 1.9 0.12 009 P Mazatlán, Sinaloa 13.5 9.3 7.5 2.3 0.153 008 P Entre I. Chivos & I. Piedra. Maz,

Sin.15.2 8.1 6.7 2.3 0.1

4 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

20 10.2 8.9 2.6 0.71

5 009 P Mazatlán, Sinaloa 21.1 16.2 12.8 3.8 0.796 008 P Entre I. Chivos & I. Piedra. Maz,

Sin.21.3 12.5 9.4 2.5 0.58

7 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

21.4 14.7 11.3 3.5 0.48

8 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

21.7 13.7 10.7 3.3 0.67

9 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

22.3 11.9 10.7 3.2 0.78

10 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

22.8 11.9 9.2 3.7 1.32

11 008 P Entre I. Chivos & I. Piedra. Maz, Sin.

22.9 12.3 10.1 2.5 0.81

12 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

23.7 14.4 12.5 4.1 1.72

13 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

25.6 18.2 13.4 4.5 1

14 054 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

27.4 17.4 13 4.4 1.7

15 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

27.6 16.1 12.5 2.5 1.24

16 008 P Entre I. Chivos & I. Piedra. Maz, Sin.

28.1 16.7 12.6 3.7 1.92

17 054 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

28.2 15.4 12.8 3.5 1.57

19 054 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.

29.6 17.6 13.4 4.1 2.02

20 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

6.1 4.6 3.5 1.5 0.03

21 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

7.8 5.7 4.5 1.9 0.43

22 044 P Playa camino al almacén, Zih, Gro.

8.3 5 3.7 1 0.03

23 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

9.3 8 6.3 1.5 0.15

24 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

9.4 7.1 5.7 1.6 0.14

25 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

10.9 5.6 4.6 1.6 0.11

169

26 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

11.9 6.5 5.2 1.7 0.12

27 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

12.3 6.4 5.5 1.7 0.13

28 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

12.7 9.8 7.2 2.3 0.22

29 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

13.2 6.4 5.2 1.9 0.13

30 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

13.5 6.7 5.5 1.6 0.14

31 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

14.3 7.8 5.8 1.8 0.16

32 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

14.6 10.6 8.1 2.8 0.35

33 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

15.7 11.1 8.3 2.5 0.34

34 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

16.6 11.2 8.8 3 0.48

35 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

17.3 11.9 9.2 3.2 0.45

36 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

17.3 11.7 9.4 2.9 0.54

37 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

17.6 11.8 9.4 3.3 0.52

38 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

18 10.9 8.7 3 0.53

39 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

18.2 12.9 9.5 3.2 0.64

40 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

18.4 11.2 9.3 2.8 0.43

41 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

18.5 11.7 9.5 3.2 0.59

42 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

18.8 12.4 9.3 3.4 0.59

43 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

19 12.4 10.8 3.5 0.63

44 044 P Playa camino al almacén, Zih, Gro.

19.3 11.6 3.7 2.6 0.35

45 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

19.5 11.4 9.6 3.3 0.61

46 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

19.5 12.6 10 3.5 0.67

47 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

19.6 12.2 10.1 3.5 0.68

48 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

19.8 11.8 9.8 3.6 0.65

49 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

20.1 12.8 10.7 3.7 0.89

50 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

20.3 14 10.4 3.4 0.72

51 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

20.5 14 11.4 3.7 0.91

52 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

20.6 12.7 10.8 3.4 0.64

53 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

21.5 13.2 11.2 3.5 0.88

54 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.

22.8 13.7 11.5 3.7 0.97

55 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, 10.2 7.1 5.5 1.3 0.09

Gro.56 040 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo,

Gro.15.8 11.1 8.5 2.9 0.38

57 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

17.6 12.8 10.2 2.9 0.62

58 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

19.2 12.1 10.3 3.1 0.66

59 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

23.4 13.1 9.9 2.3 0.47

60 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

25.3 15.7 13.2 4.5 1.7

61 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

27.2 16.8 13.1 4.7 1.6

62 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

28.9 14.3 11.9 3.3 1.17

63 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

29.6 16.8 12.9 3.1 1.7

64 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

30.1 15.7 13.4 3.4 1.9

65 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

32.1 16.4 13.3 3.2 1.5

66 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.

33.2 21.7 16.3 5.2 3.27

67 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

14.3 9.4 7.2 1.9 0.17

68 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

17.5 11.2 8.3 2.7 0.38

69 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

21.3 14.5 10.6 3.3 0.76

70 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

21.8 13.1 9.8 3.4 0.71

71 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

22.4 13.7 10.1 2.9 0.9

72 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

23.2 13.8 10.5 2.8 0.85

73 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

23.7 13.4 11.2 2.8 0.86

74 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

23.9 14.7 10.4 3.2 0.86

75 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

24.3 13.6 10.7 3.2 0.78

76 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

24.6 13.8 10.5 2.6 0.78

77 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

25.1 14.3 11.1 2.9 0.9

78 041 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

25.6 15.4 12.4 3.8 1.11

79 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

25.7 14.6 11.2 3.9 0.94

80 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

25.7 14.9 11.3 3 0.79

81 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

25.7 14.5 10.7 3.1 0.83

82 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

25.8 14.5 10.3 3 0.9

83 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

26.3 14.7 11.1 3.1 0.99

84 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

26.8 16.7 12 3.3 1.01

170

85 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

27.4 14.6 11.4 3.2 1.05

86 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

27.6 16.1 12.1 3.4 1.06

87 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

28.5 16.3 12.5 3.6 1.15

88 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

28.6 18.1 12.6 3.6 1.23

89 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

28.6 16.1 12.5 3.6 1.19

90 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

28.9 17.3 12.8 3.4 1.25

91 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

30.3 16.5 12.9 3.3 1.5

92 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

30.4 19.3 13.7 3.6 1.64

93 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

31.2 17.6 13.2 3.5 1.44

94 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

32.3 17.2 13.4 3.5 1.32

95 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

33.1 21.4 15.4 3.7 2.1

96 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

33.2 18.3 13.7 3.8 1.89

97 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

33.2 17.7 14.3 3.5 2

98 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

34.6 19.4 14.5 3.5 1.97

99 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

34.7 19.2 14.3 3.7 1.96

100 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro

35.1 18.6 14.1 3.2 1.97

101 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 14.2 8.9 7.3 2.2 0.24102 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 17.5 11.5 9.1 2.5 0.44103 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 18.2 10.4 8.4 2.6 0.43104 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 20.3 13.2 10.1 2.8 0.62105 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 22.3 15.6 12.5 4.1 1.41106 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 23.2 11.9 10.3 3.2 0.89107 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 26.5 14.7 12.4 3.6 1.35108 039 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 28.1 16 13.7 3.7 1.65109 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 28.5 16.7 14.8 4.6 1.84110 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 10.6 9.2 6.7 1.5 0.16

111 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 13.3 9.9 7.5 2.4 0.2112 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 18.5 11.1 9 2.6 0.35113 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 21.8 13.2 11.5 3.4 0.93114 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 23.1 14.7 12.4 3.9 1.27115 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 23.4 14.2 11.9 4.1 1.1116 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 25.3 14.5 12.2 3.8 1.16117 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 26.1 15.7 14.2 3.7 1.46118 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 26.8 17.4 14.5 4.6 1.91119 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 27.4 18.3 14.5 4.8 2.2120 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 28.2 16.4 14.7 5 2.07121 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 30.7 17.9 15.8 5 2.34122 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 32.3 19.2 15.5 5.1 2.53

171

Chiton (Diochiton) articulatus

Ind #

No. Cat.

Loc. Zona L A V AC Wg observ.

1 057 P La Paz, BC. 43.4 30.5 27.8 6.4 7.522 057 P La Paz, BC. 44.3 32.8 30.1 6.2 10.623 057 P La Paz, BC. 49.6 32.8 30.9 6.9 11.484 057 P La Paz, BC. 49.6 37.9 34.7 7.8 16.695 057 P La Paz, BC. 54.3 44.7 32.8 8.1 15.656 057 P La Paz, BC. 59.2 38.5 37.1 8.3 22.97 057 P La Paz, BC. 60.7 40.2 38.3 8.7 26.678 057 P La Paz, BC. 62.8 37.6 37.6 8.9 29.619 057 P La Paz, BC. 70.4 45.3 45.3 9.7 42.5110 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 23.5 16.6 14.5 4.3 1.4411 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 27.7 19.3 15.3 4.1 1.5312 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 28.2 17.8 14.8 3.8 1.6213 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 28.5 18.6 15.9 5.1 2.4314 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 28.7 19.2 15.7 3.9 1.5215 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 30.7 22.2 18.7 5.7 3.5216 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 30.8 19.3 17.4 5.7 2.8117 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 31.2 19.8 16.4 4 2.118 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 33.2 22.1 18.7 5.3 3.7719 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 34.6 23.8 19.5 5.8 4.8920 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 35.1 22.6 20.1 5.5 4.4721 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 35.2 22.3 17.9 5.8 2.922 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 36.3 26.1 23.5 6.7 7.7723 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 36.2 23.2 20 4.9 4.1924 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 36.4 23.3 18.5 5.3 3.3425 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 37 24.5 21 6.2 4.6726 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 38.3 26.1 23.2 6.6 6.1227 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 38.3 25.1 21.4 5.9 5.128 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 38.7 26.4 23.5 6.6 7.3329 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 38.7 25.7 23.4 6.5 630 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 38.7 24.4 22.7 6.7 5.2131 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 39.1 27.1 23.7 7.1 6.8632 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 39.4 29.1 26.1 7.8 8.3433 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 39.5 26.3 23.4 6.7 6.6134 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 39.9 25.6 22.8 6.8 5.9835 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 40 26.4 22.8 7.2 6.7936 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 40.5 26.1 23 6.9 7.0837 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 40.8 30.2 25.2 7.3 8.8938 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 41.4 22.5 20.1 5.3 4.8239 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 42.2 26.3 24.6 7.1 8.9240 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 42.3 30.3 26.5 8.1 10.6341 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 42.3 26.8 22.1 6 5.1342 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 42.5 29.4 26.4 7.8 11.1243 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 42.9 28.4 24.4 7.1 9.3544 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 43.4 28.4 24.9 6.9 8.0945 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 43.5 30.8 26.8 7.7 11.8946 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 43.7 28.3 25.4 7.4 8.9547 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 44.1 28.3 24.8 7.1 8.12

172

48 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 44.1 28.4 24.4 7.1 9.3549 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 44.2 29.2 26.2 7.3 9.4950 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 44.2 31.2 26.3 7.3 12.5151 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 45.2 31.1 26.2 7.6 9.152 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 45.2 32.1 28.5 7.9 12.6653 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 45.8 31.4 28.2 7.8 11.8854 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 46.4 29.3 25.8 7.4 9.8955 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 48.7 30.1 28.3 7.9 8.4456 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 54.6 36.4 34.9 7.9 20.1357 011 P Cerro del Crestón, Maz, Sin 54.8 33.7 28.7 8.9 17.3358 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 56.3 33.7 30.5 8.5 17.8259 014 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 32.6 20.8 18.7 4.6 3.560 015 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 42.3 27.6 25.4 7 8.4661 015 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 43.9 28.9 26.4 6.4 8.8562 034 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 48.5 30.2 27 6.7 9.7463 014 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 52.2 34.8 30.7 7.3 15.9264 034 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 58.2 37.1 31.9 6.8 14.2665 038 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 59.1 41.7 36.2 7.9 / organismo

seco66 016 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 59.4 37.1 32.9 7.9 18.6967 017 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 60.5 37.8 32.9 7.7 18.3968 012 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 65.1 40 33.7 7.8 23.4569 017 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 66.8 39.7 37.3 7.8 32.6370 012 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 73.7 39.6 35.9 8.2 25.3271 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 30.5 19.6 17.1 4.2 2.4872 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 33.6 21.3 18.7 4.3 3.4473 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 45.7 28.8 26.2 6.8 9.7174 027 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 46.7 31.2 28.2 6.2 9.8575 027 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 46.9 29.2 26.4 6.9 10.8876 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 47.5 28.7 25.7 6.2 7.9577 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 49.5 28.9 26.5 6.7 10.7678 027 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 52.1 32.3 30.3 7.1 12.4379 027 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 54.4 33.1 29.9 7.3 14.4280 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 65.5 36.5 33.8 7.3 26.881 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 66.5 36.7 34.5 7.5 25.4482 029 P P. Camino Contramar, Zih,

Gro22.3 14.7 12.3 3.7 1.1

83 029 P P. Camino Contramar, Zih, Gro

24.5 15.7 14.1 4.5 1.31

84 037 P P. Camino Contramar, Zih, Gro

58.1 37.3 33.2 8.2 16.87

85 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 15.3 10.5 8.7 1.8 0.1986 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 15.4 10.7 8.9 2.1 0.2787 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 17.4 11.7 9.3 2.7 0.4588 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 17.7 11.4 9.6 2.4 0.4189 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 17.9 11.7 10.9 2.7 0.5490 044 P P. Las Gatas, Zih, Gro. 35.7 22.2 18.6 6.2 3.8691 028 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 42.3 31.8 28.4 6.8 11.992 028 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 46.4 26.8 26.5 6.4 10.2493 028 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 70.1 49.3 45.3 9.7 42.5194 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 31.4 23.1 18.8 3.9 / organismos

secos

173

95 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 39.1 25.9 23.2 4.7 /96 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 42.3 30.8 25.5 3.7 / "97 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 42.8 31.7 28.4 5.5 / "98 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 43 28.2 27.9 5.4 / "99 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 45.7 32.9 26.4 5.7 / "100 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 46.1 31.4 27.2 5.7 / "101 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 49.2 34.2 29.3 6.1 / "102 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 50.8 34.7 30.9 7 / "103 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 50.9 32.5 28.7 5.6 / "104 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 51.9 36.1 31.2 6.3 / "105 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 52 33.5 31.1 6.8 / "106 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 54.2 37.3 32.8 6.4 / "107 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 60.2 39.6 34.5 6.7 / "108 024 P Pto. Acapulco, Gro. 60.4 35.5 31.3 7.3 17.28109 022 P Pto. Angel, Oaxaca 26.1 16.4 14.2 4.2 1.33110 022 P Pto. Angel, Oaxaca 30.4 19.4 15.6 4.3 1.81111 022 P Pto. Angel, Oaxaca 30.8 21.1 17.3 5 2.65112 022 P Pto. Angel, Oaxaca 31.5 20.1 16.4 4.3 2.13113 022 P Pto. Angel, Oaxaca 34.5 19.3 16.2 4.1 2.28114 022 P Pto. Angel, Oaxaca 36.4 22.1 18.7 5.2 3.58115 022 P Pto. Angel, Oaxaca 38.5 22.6 20.2 5.4 3.58116 022 P Pto. Angel, Oaxaca 48.6 29.4 24.1 6.4 7.66117 022 P Pto. Angel, Oaxaca 47.9 32.1 28.1 6.3 10.75118 022 P Pto. Angel, Oaxaca 49.2 30.4 27.9 7.3 12.56119 022 P Pto. Angel, Oaxaca 49.7 31.3 26.9 7.1 11.3120 022 P Pto. Angel, Oaxaca 52.3 32.3 28.6 7.7 12.57121 022 P Pto. Angel, Oaxaca 54.5 31.4 27.8 7.8 10.32122 022 P Pto. Angel, Oaxaca 58.5 35.3 30.9 7.6 17.67123 022 P Pto. Angel, Oaxaca 62.3 39.6 34.2 8 24.13124 022 P Pto. Angel, Oaxaca 63.1 40.2 35.1 7.8 24.55125 022 P Pto. Angel, Oaxaca 66.9 42.4 39.1 8.7 30.47126 022 P Pto. Angel, Oaxaca 0 0 0 organismo muy

pequeño127 058 P Salina Cruz, Oaxaca 41.7 25.3 22.1 4.6 5.24128 058 P Salina Cruz, Oaxaca 42.4 25.7 21.3 5.2 5.3129 058 P Salina Cruz, Oaxaca 42.8 26.6 21.2 4.9 5.08130 058 P Salina Cruz, Oaxaca 43.5 26.7 23.4 5.1 5.98131 058 P Salina Cruz, Oaxaca 46.4 28.3 23.7 5.5 5.74132 058 P Salina Cruz, Oaxaca 47.6 29.7 23.7 5.5 7.3

Chiton (Diochiton) goodallii

Ind.

#

No. Cat.

Loc. Zona L A V AC WG Oserv.

1 067 IG Sn. Cristóbal Chatam, Islas Galápagos, Ecuador.

97.4 59.6 56.4 10.2 / Org. seco

2 067 IG " 131.7 57.2 53.5 12.4 " "3 067 IG " 122.5 54.1 51.7 11.3 " "

174

Acanthopleura granulata

Ind. #

No. cat

Loc. Zona L A V AC WG Observ.

1 060 C Isla Mujeres, Qroo. 41.4 28.4 20.8 10.9 10.92 060 C Isla Mujeres, Qroo. 43.5 30.5 23.5 12.8 12.83 060 C Isla Mujeres, Qroo. 44.2 30.6 23.2 13.4 13.44 060 C Isla Mujeres, Qroo. 46.4 30.8 23.7 13.3 13.35 060 C Isla Mujeres, Qroo. 50.2 31.1 24 13.5 13.56 060 C Isla Mujeres, Qroo. 51 34.3 27.1 13.6 13.67 060 C Isla Mujeres, Qroo. 51.7 34.1 26.8 13.5 13.58 060 C Isla Mujeres, Qroo. 55.9 35 27.4 13.8 13.89 060 C Isla Mujeres, Qroo. 57 35.3 26.7 13.4 13.410 060 C Isla Mujeres, Qroo. 59.1 38.2 28.5 14.1 14.111 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 31.5 21.3 16.2 7.6 4.8212 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 33.8 23.1 18.3 9.2 5.9613 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 34 24.2 19.1 9.4 6.4214 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 36.2 24 18.2 8.9 5.7415 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 39.2 25.2 19.9 9.8 7.1816 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 39.8 24.6 19.8 9.6 7.1617 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 39.9 26.8 19.8 10.1 8.6218 074 C Chankanab, Límite Nte,

Qroo42.4 32.6 24.3 11.2 12.99

19 074 C Chankanab, Límite Nte, Qroo

48.2 34.2 24.9 11.7 16.98

20 074 C Chankanab, Límite Nte, Qroo

49.3 35 25.1 13.2 17.29

21 074 C Chankanab, Límite Nte, Qroo

50.2 36.4 26.9 13.5 18.69

22 074 C Chankanab, Límite Nte, Qroo

51.8 37.9 28.1 14.6 22.92

Acanthochitona sp. A

Ind. #

No. cat

Loc. Zona L A V AC WG Observ.

1 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 13.2 10.2 2.8 6.1 0.322 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 18.4 13.4 4.4 8.5 0.943 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 18.7 14.5 3.7 7.8 0.854 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 20.5 14.6 4.5 9.1 1.625 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 21.3 17.1 4.6 9.4 1.376 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 23.2 18.1 4.7 9.3 1.26

175

7 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 13.2 9.7 3.2 5.5 0.428 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 15.1 11.5 3.8 6.9 0.579 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 15.4 12.3 4.1 7.7 0.87

10 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 15.8 12 3.6 7 0.7911 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16 12.3 4.2 7.5 1.0212 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16.1 11.8 4 6.8 0.63213 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16.3 13.4 4.6 7.8 1.0214 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16.6 11.7 4.2 7.4 0.8715 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16.7 13.1 4.2 7.8 1.0916 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 17.9 13 4.4 7.8 0.8317 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 18.2 13.5 4.1 7.3 0.9818 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 18.7 17.5 5.5 10.1 1.9119 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 20.1 16.1 4.3 8.9 1.7820 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 21.6 16.2 5.7 11 2.121 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 22.1 14.2 5.4 8.7 1.7322 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 22.6 16.1 5.4 11.2 2.123 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 22.8 16.4 5.5 11 2.1424 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 22.9 16.3 5.6 10.6 2.1625 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 27.2 17.8 5.3 10.3 2.0326 069 P Bahía Falsa, B.C 15.7 12.8 3.6 7.5 0.8927 069 P Bahía Falsa, B.C 17.1 13 4.7 7.8 0.9728 069 P Bahía Falsa, B.C 19.1 15.2 5 8.8 1.3229 069 P Bahía Falsa, B.C 19.4 14.8 5.1 10.2 1.4530 069 P Bahía Falsa, B.C 19.5 15.3 5.4 10.4 1.4831 069 P Bahía Falsa, B.C 23.3 16.3 6.3 10.8 1.99

176

DATOS MORFOMÉTRICOS

Especie Long x (mm) Ancho x (mm) Cinturón x (mm)

Chaetopleura scabricula 18.1 12.4 4.1

Ischnochiton muscarius 23.5 12.1 3.1

Ischnochiton aethalotus 14.6 8.9 2.6

Stenoplax (Stenoradsia) sonorana 50.2 20.8 8.4

Stenoplax limaciformis 20.6 8.7 3.2

Stenoplax sp. A 33.1 12.2 4.1

Callistoplax retusa 11.8 7.1 1.7

Chiton (Chiton) virgulatus 28.9 17.9 4.7

Chiton (Diochiton) albolineatus 22.3 13.7 3.2

Chiton (Diochiton) articulatus 37.4 26.4 6.9

Chiton (Diochiton) goodallii 117.2 56.9 11.5

Acanthopleura granulata 45.3 30.6 13.4

Acanthochitona sp. A 18.6 14.4 6.7

Cuadro 4. Relación que muestra el valor promedio (media x) en mm de los datos

morfométricos registrados en los quitones de la CNMO.

177

II. Lista de especies reportadas para el Golfo de California, Pacífico y Caribe Mexicano

Abbott, 1974. Smith, 1977. Ferreira, 1979-1983

Orden Lepidopleurida Orden Lepidopleurida Orden LepidopleuridaFamilia Acanthochitonidae Familia Acanthochitonidae

Del Sur de Florida al Oeste de las Indias Golfo de CaliforniaGénero Acanthochitona Gray,1821 Género Acanthochitona Gray,1821

Acanthochitona spiculosa ReeveAcanthochitona pygmaea Pilsbry

Acanthochitona angelica Dall, 1919

Subfamilia AcanthopleurinaeGénero Acanthopleura Guilding, 1829

Subgénero Maugeria Gray, 1857Acanthopleura granulata Gmelin

Familia CallistoplacidaeEnsenada, Baja California

Género Callistochiton Dall, 1879Callistochiton connellyi Willett, 1937

Familia Chitonidae Familia Chitonidae Familia ChitonidaeDel Golfo de California a Panamá Del Golfo de California a Panamá Islas Revillagigedo

Subfamilia ChitoninaeGénero Chiton Linné, 1758 Género Chiton Linné, 1758 Género Chiton Linaeus, 1758

Chiton articulatus Sowerby Chiton articulatus Sowerby, 1832Chiton virgulatus Sowerby

Chiton petaloides Gould, 1846

De Florida al oeste de la IndiasChiton tuberculatus LinnéChiton squamosus LinnéChiton marmoratus LinnéGénero Tonicia Gray,1847

Tonicia schrammi ShuttleworthOrden Ischnochitonina

Bergenhayn, 1930Familia Ischnochitonidae Fam. Chaetopleuridae Plate, 1899De la baja Forida a Brazil Baja California Sur a America del Sur

Género Calloplax Thiele, 1909 Género Calloplax Thiele, 1909Calloplax janeirensis Gray

Calloplax hanselmani Ferreira, 1982Familia Criptoplacidae

Florida a Pto.RicoGénero Criptoconchus Burrow,1815

Criptoconchus floridanus DallGénero Cryptochiton Middendorff,1847 Orden Ischnochitonina

Cryptochiton stelleri Middendorff Bergenhayn, 1930Familia Ischnochitonidae Familia Chaetopleurinae Fam. Chaetopleuridae Plate, 1899

Las dos costas de Florida y el Golfo Mazatlán, Sin. Baja California Sur a America del SurGénero Chaetopleura Shuttleworth,1853 Género Chaetopleura Shuttleworth,1853 Género Chaetopleura Shuttleworth,1853

Chaetopleura apiculata SayChaetopleura scabricula Sowerby, 1832

Chaetopleura lanuginosa Dall, 1879Chaetopleura unilineata Leloup, 1954Chaetopleura shyana Ferreira, 1983

Chaetopleura gemma Dall, 1879

178

Abbott, 1974 Smith, 1977 Ferreira, 1979-1983

Lepidopleurus bullatus Carpenter, 1857Género Tonicia Gray, 1847

Tonicia mixta Dall, 1919

Familia Ischnochitonidae Familia Ischnochitonidae Dall, 1889 Familia Ischnochitonidae Dall, 1889De la alta California al Golfo de Cal. Golfo de California Islas Revillagigedo

Género Ischnochiton Gray,1847 Género Ischnochiton Gray,1847 Género Ischnochiton Gray,1847Ischnochiton californiensis Berry Ischnochiton californiensis Berry, 1931Ischnochiton magdalensis HindsIschnochiton conspicuus PilsbryIschnochiton acrior Pilsbry

Ischnochiton regularis CarpenterIschnochiton mertensi Middendorff

Ischnochiton cooperi BerryIschnochiton palmulatus Pilsbry

Ischnochiton eucosmius Dall, 1919Ischnochiton mariposa Dall, 1919Ischnochiton acelidotus Dall, 1919Ischnochiton aethalotus Dall, 1919Ischnochiton aethorus Dall, 1919

I. aureotinetus Carpenter y Pilsbry, 1892Ischnochiton berryi Dall, 1919

Ischnochiton sinudentatus Pilsbry, 1892Ischnochiton corrugatus Pilsbry, 1892Ischnochiton subclathratus Pilsbry, 1892

Ischnochiton muscarius Reeve, 1847Ischnochiton carolianus Ferreira, 1984

Género Stenoplax Dall, 1879 Género Stenoplax Dall, 1879Stenoplax corrugata Carpententer y Pilsbry,

1892Stenoplax floridana Pilsbry, 1892

Stenoplax erythronota Adams, 1845Stenoplax limaciformis Sowerby, 1832

Stenoplax fallax Pilsbry, 1892Stenoplax corrugata Pilsbry, 1892Stenoplax heathiana Berry, 1946Stenoplax conspicua Dall, 1879

Stenoplax magdalensis Hinds, 1844Género Lepidozona Pilsbry, 1892

Lepidozona clarionensis Ferreira, 1983Lepidozona rothi Ferreira, 1983

Familia Lepidochitonidae Iredale, 1914San Diego a Baja California

Género Tonicella Carpenter, 1873Tonicella lineata Wood

Género Lepidochitona Gray, 1821Subgénero Cianoplax Pilsbry, 1892Lepidochitona hartwegi Carpenter

Islas RevillagigedoGénero Lepidochitona Gray, 1821

179

Abbott, 1974 Smith, 1977 Ferreira, 1979-1983

Lepidochitona keepiana Berry, 1948Lepidochitona beanii Carpenter, 1857Lepidochitona hartwegi Carpenter, 1855

Lepidochitona hartwegi Berry, 1948Lepidochitona flectens Carpenter, 1864

Lepidochitona dentiens Gould, 1846Género Dendrochiton Berry, 1911

Dendrochiton thamnoporus Berry, 1911Dendrochiton gothicus Carpenter, 1864Dendrochiton lirulatus Berry, 1863

Familia Lepidochitonidae Familia ChaetopleurinaeGénero Nutallina Carpenter,1879 Género Nutallina Dall, 1871 Género Nuttallina Dall, 1871

Nutallina californica Reeve Nuttallina californica Reeve, 1847Nutallina scabra Reeve

Nutallina allantophora Dall, 1919Nutallina magdalena Dall, 1919

Lophyrus striatosquamosus Carpenter, 1857

Nuttallina crossota Berry, 1956

Familia LepidopleuridaeGénero Lepidopleurus Risso, 1826Lepidopleurus cancellatus Sowerby

Familia Lepidopleuridae

Género Leptochiton Gray, 1847Leptochiton rugatus Pilsbry, 1892

Leptochiton nexus Carpenter, 1864Leptochiton incongeuus Dall, 1908Género Hanleyella Sirenko, 1973Hanleyella oldroydi Dall, 1919Género Oldroydia Dall, 1894Oldroydia percrassa Dall, 1894

Familia MopalidaeEste de Florida al Oeste de las Indias

Género Ceratozona Dall, 1882Ceratozona rugosa Sowerby

Género Katharina Gray,1847Katharina tunicata Wood

Género Mopalia Gray, 1847Mopalia ciliata Sowerby

Mopalia muscosa GouldMopalia lignosa Gould

Género Placiphorella Dall,1878Placyphorella velata Pilsbry

180

Thorpe en Keen, 1971 Fischer, 1995 (FAO) Presente trabajo, 1999

Orden Lepidopleurida Orden NeoloricataSuborden Acanthochitonina

Familia Acanthochitonidae Familia AcanthochitonidaeDe California a Mazatlán Isla Espíritu Santo, Baja California Sur.

Género Acanthochitona Gray, 1821 Género Acanthochitona Gray, 1821Acanthochitona arragorites Carpenter, 1857 Acanthochitona sp. AAcanthochitona auricula Carpenter, 1857

Acanthochitona exquisita Pilsbry, 1893De Acapulco a Perú

Acanthochitona rhodea Pilsbry, 1893

Familia CallistoplacinaeDe Manzanillo a Nicaragua

Género Callistochiton Dall, 1879Callistochiton colimensis

California, Mazatlán y GuaymasCallistochiton gabbi

Callistochiton infortunatusBja Cal., Golfo de Cal. Mazatlán y

ManzanilloGénero Lepidozona Pilsbry, 1892Lepidozona clathrata Reeve, 1847

Lepidozona crockeri Hertlein & Strong, 1951Lepidozona elenensis Sowerby, 1832

Lepidozona flavida Thiele, 1910Lepidozona serrata Carpenter, 1864

Lepidozona subtilis Berry, 1956

Orden ChitonidaFamilia Chitonidae Familia Chitonidae Familia Chitonidae

California a Mazatlán Del Pacífico a PanamáGénero Chiton Linnaeus, 1767 Género Chiton Linné, 1758 Género Chiton Linné, 1758

Chiton articulatus Sowerby, 1832 Chiton articulatus Sowerby, 1832 Chiton articulatus Sowerby, 1832Chiton virgulatus Sowerby, 1840 Chiton virgulatus Sowerby, 1840

Chiton albolineatus Broderip, 1829 Chiton albolineatus Broderip, 1829De México a Ecuador

Chiton stokessi Broderip, 1832 Chiton stokesii Sowerby, 1832

Orden ChitonidaFamilia Chitonidae Familia Chitonidae Familia Chitonidae

Género Chiton Linnaeus, 1767 Género Chiton Linné, 1758 Género Chiton Linné, 1758Islas Galápagos Islas Galápagos

Chiton goodallii Broderip,1832 Chiton goodallii Broderip,1832Chiton sulcatus Wood,1815

Islas GalápagosGénero Tonicia Gray, 1847Tonicia arnheimi Dall, 1903

Mazatlán a PanamaTonicia forbesii Carpenter, 1857

Thorpe en Keen, 1971 Fischer, FAO (1995) Presente trabajo, 1999

181

Orden IschnochitoninaBergenhayn, 1930

Subfamilia Chaetopleurinae Subfamilia ChaetopleurinaeGénero Chaetopleura Shuttleworth, 1853 Género Chaetopleura Shuttleworth, 1853

Chaetopleura euryplax Berry, 1945Chaetopleura lurida Sowerby, 1832 Chaetopleura scabricula Sowerby, 1832

Chaetopleura mixta Dall, 1882 I.Tres Marias, Mex. hasta Centro AméricaGénero Callistoplax Sowerby, 1882 Género Callistoplax Sowerby, 1882Callistoplax retusa Sowerby,1832 Callistoplax retusa Sowerby,1832

Familia Ischnochitonidae Familia IschnochitonidaeSufamilia IschnochitoninaeGénero Stenoplax Dall,1879 Género Stenoplax Dall,1879

S. conspicua conspicua Pilsbry,1892 Stenoplax conspicua Pilsbry,1892Stenoplax limaciformis Sowerby,1832 Stenoplax limaciformis Sowerby,1832

Stenoplax magdalensis Hinds,1845Stenoplax sp. A

De Mazatlán al Sur de México De Mazatlán al Sur de MéxicoGénero Radsiella Pilsbry, 1892 Género Ischnochiton Gray, 1847Radsiella muscaria Reeve, 1847 Ischnochiton muscarius Reeve, 1847

Ischnochiton aethalotus Dall, 1919Radsiella petaloides Gould, 1846

Bahía los Angeles a PerúRadsiella rugulata

Familia ChitonidaeSubfamilia Acanthopleurinae Dall, 1889

Género Acanthopleura Guilding, 1829Acanthopleura granulata Gmelin, 1791

Familia LepidochitonidaeBaja California Sur

Género Mopaliella Thiele, 1909Mopaliella beani Carpenter, 1857

Guaymas, SonoraGénero Nuttallina Dall, 1871

Nuttallina crossota Berry, 1956

Familia LepidopleuridaeCalifornia a Guaymas

Género Leptochiton Gray,1847Leptochiton rugatus

Familia MopaliidaeGolfo de California

Género Dendrochiton Berry , 1911Dendrochiton laurae Berry, 1963Dendrochiton lirulatus Berry, 1963Género Placiphorella Dall, 1879Placiphorella velata Dall, 1879

III. RECOLECTA Y PRESERVADO DE LOS QUITONES182

A continuación se presentan algunas recomendaciones metodológicas en cuanto al trabajo

de campo y de laboratorio, para la adecuada preservación de las estructuras de los quitones

con importancia taxonómica.

Los quitones, como ya se ha mencionado anteriormente, generalmente se encuentran en

áreas poco profundas en la zona intermareal de una costa rocosa, preferentemente donde las

rocas se encuentren fragmentadas, ya que en las zonas de grandes peñascos o acantilados

son poco comunes. Debido a que la mayoría de las especies son fotonegativas, es necesario

remover las rocas, buscar debajo de ellas y entre sus hendiduras, así como en las algas que

se encuentren adheridas al sustrato y en conchas de otros moluscos.

El material que se requiere para la recolecta de los quitones en el campo es mínimo, los

utensilios más importantes son cuchillos con punta delgada y poco filo, ya que se puede

maltratar el cinturón y provocar que los ejemplares se enrollen como mecanismo de

defensa. Se recomienda tener a la mano frascos y etiquetas para mantener a los quitones por

separado y con los datos de la recolecta, ya que el contacto entre ellos mismos también

provoca el enrollamiento de su cuerpo.

Se recomienda recolectar en condiciones de marea baja, ya que es posible tener acceso a

organismos que regularmente se distribuyen a profundidades mayores. Además de que es

más seguro recolectarlos cuando el oleaje es poco activo. Tenga siempre en cuenta que los

especímenes deben ser tratados con cuidado, ya que la manipulación prolongada de los

organismos puede ocasionar que se enrollen fuertemente.

Use ambas manos para desprenderlos de las rocas, con una tome el cuchillo y con la otra

tenga listo el frasco donde lo depositará. Nunca toque al quitón con sus manos o con el

cuchillo, primero busque algún ángulo del cinturón que no se encuentre adherido al

sustrato, esto es muy frecuente, ya que las rocas no presentan una superficie totalmente lisa.

183

Cuando encuentre esta hendidura, introduzca suavemente la punta del cuchillo y desprenda.

En el caso de que no encuentre ninguna zona para desprender al organismo, saque la roca

en donde se encuentre el quitón, éstos al estar expuestos a mayor cantidad de luz se

deslizarán sobre la roca para esconderse, en ese momento usted puede poner la palma de su

mano para que el organismo se desplace por ella, de tal forma que usted no tendrá

necesidad de usar el cuchillo e introducir al organismo en su recipiente con su propia mano.

El fijador inicial se preparará con agua salada (marina) al 60% de alcohol (etílico). Antes de

fijarlos en la solución se recomienda introducirlos en agua marina con 30% de agua dulce

(de la llave) durante media hora y posteriormente a una disolución al 50% durante diez

minutos. Posteriormente los ejemplares se introducirán en un recipiente de boca ancha,

donde se les agregará el fijador, procurando que al introducir la solución con una mano se

haga un poco de presión sobre el organismos en vista dorsal y con la otra vertir el fijador

(alcohol al 60% en agua salada), de tal manera que los organismos no se enrollen, haga

presión durante algunos minutos para asegurar que mantengan su forma aplanada.

Mientras los ejemplares son transportados al laboratorio para la fijación permanente, se

recomienda agregar 2 partes de glicerina al fijador inicial de agua marina. Recolectas

personales han demostrado que este es el método adecuado para obtener ejemplares en

perfectas condiciones de preservado y sobre todo la forma de los quitones es aplanada,

permitiendo que las observaciones a las estructuras taxonómicas sea la adecuada.

Algunos autores, han mencionado que el uso de láminas colocados en la parte dorsal y

ventral del organismo permiten obtener ejemplares totalmente aplanados, sin embargo, este

procedimiento en el campo resulta ser poco práctico, ya que toma mucho tiempo para su

preparación. Para ello se recomienda mantener a los quitones vivos en un recipiente grande

y de boca amplia en agua de mar al 100%, para que en el laboratorio sean procesados en un

periodo no mayor de 3 horas. El procedimiento de fijación y las sustancias (fijador de agua

marina) son las mismas, pero en este caso se necesita dos láminas de acrílico liso, una

servirá de base y la otra se colocará en la parte dorsal de los organismos, ambas láminas se

184

sujetarán con fuerza y se introducirán a la sustancia fijadora inicial, donde permanecerán

hasta que los quitones ya muertos, mantengan su forma aplanada.

La fijación definitiva se lleva a cabo 24 hrs. después de la recolecta, de ésta manera se

mantienen los colores originales de las valvas y de las estructuras epidérmicas. Cuando se

introduzcan los ejemplares al fijador definitivo, se recomienda mantenerlos por algunos

días en soluciones de alcohol a mayor concentración (con el fin de eliminar los residuos de

agua salada restantes) de 80% y 90% en agua destilada, este cambio de concentraciones de

alcohol debe hacerse cada 24 hrs. un día por solución. Posteriormente se les introduce en el

fijador permanente o definitivo, alcohol al 75%.

Si se desea mantener a los organismos en seco, se recomienda mantenerlos durante

periodos prolongados de tiempo (alrededor de 4 semanas) en soluciones concentradas de

alcohol (90%), así como en un lugar seco, ventilado y obscuro por 3 semanas, por ningún

motivo desprenda el pie ni la masa visceral de estos organismos, ya que su forma aplanada

se puede perder.

Las observaciones del material en espíritu o húmedo (fijados en solución de alcohol)

requieren de mantenerlos constantemente humectados por el fijador, ya que si se secan

demasiado, las partes blandas del quitón se pueden cuartear o compactar. Si se requiere

observar la morfología de las valvas, se recomienda desprender las valvas del ejemplar más

maltratado o enrollado. Para separar las valvas del cuerpo, se corta una pequeña porción del

cinturón y con pinzas de relojero se separa suavemente el tejido blando y se extraen las

valvas tomándolas de la región del ápice, nunca las tome de las apófisis, ya que las placas

de inserción se rompen muy fácilmente. No deseche el cinturón, ni el tejido blando de los

organismos desarticulados, ya que las escamas dorsales y ventrales, así como la rádula

pueden ser utilizados para observaciones futuras en microscopía electrónica, mientras tanto

manténgalos en la solución fijadora de alcohol al 75%.

El cinturón preservado en húmedo es muy frágil y se puede desprender con cualquier tipo

de contacto, para evitarlo, tome a los especimenes siempre con pinzas gruesas y de un solo

185

intento extráigalos del frasco, ya que la manipulación prolongada también permite la

pérdida de los derivados epidérmicos.

Cuando en el campo encuentre valvas o ejemplares completos de quitones, llévelos al

laboratorio, este material es el indicado para complementar las observaciones de los

estudiantes de biología, ya que se evitará desarticular ejemplares que se encuentren en

buenas condiciones de preservado, los cuales deben estar a disposición para la

investigación de este grupo de moluscos.

No use por ningún motivo formaldehído en su forma diluida o neutralizada (borato de

sodio), este ha sido un fijador usado comúnmente en las colecciones malacológicas en

México, sin embargo, para este grupo de moluscos no es recomendable ya que debilita el

cuerpo blando y las partes duras del organismo, así como permite que los pigmentos

originales de las valvas y derivados epidérmicos se pierdan con facilidad. Para finalizar, los

quitones no deben ser limpiados con sustancias removedoras, sólo en el caso de que usted

conozca las sustancias para ello y siempre y cuando tenga el conocimiento del proceso

adecuado de su mantenimiento.

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