UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE ......A mis amigos de la facultad: Sonia, Joss, Naty,...
Transcript of UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE ......A mis amigos de la facultad: Sonia, Joss, Naty,...
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLAS
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
Monitoreo de Bactericera cockerelli en dos variedades de papa bajo manejo
fitosanitario no químico en el cantón Pedro Moncayo
Trabajo de Titulación previo a la obtención del Título de Ingeniera Agrónoma
AUTORA: Masapanta Molina Joselyn Clemencia
TUTOR: Ing. Agr. Manuel María Pumisacho Gualoto M. Sc.
Quito, 2020
ii
DERECHOS DE AUTOR
Yo, JOSELYN CLEMENCIA MASAPANTA MOLINA en calidad de autora y titular de
los derechos morales y patrimoniales del trabajo de titulación: MONITOREO DE
BACTERICERA COCKERELLI EN DOS VARIEDADES DE PAPA BAJO MANEJO
FITOSANITARIO NO QUÍMICO EN EL CANTÓN PEDRO MONCAYO, modalidad
presencial, de conformidad con el Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA
SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS , CREATIVIDAD E INNOVACIÓN, concedo a
favor de la Universidad Central del Ecuador una licencia gratuita, intransferible y no
exclusiva para el uso no comercial de la obra, con fines estrictamente académicos. Conservo a
mi favor todos los derechos de autor sobre la obra, establecidos en la normativa citada.
Así mismo, autorizo a la Universidad Central del Ecuador para que realice la digitalización y
publicación de este trabajo de titulación en el repositorio virtual, de conformidad a lo
dispuesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior.
La autora declara que la obra objeto de la presente autorización es original en su forma de
expresión y no infringe el derecho de autor de terceros, asumiendo la responsabilidad por
cualquier reclamación que pudiera presentarse por esta causa y liberando a la Universidad de
toda responsabilidad.
JOSELYN CLEMENCIA MASAPANTA MOLINA
C.C.: 1723172415
Dirección electrónica: [email protected]
iii
APROBACIÓN DEL TUTOR
En mi calidad de Tutor del Trabajo de Titulación, presentado por JOSELYN CLEMENCIA
MASAPANTA MOLINA, para optar por el Grado de Ingeniera Agrónoma; cuyo título es:
MONITOREO DE BACTERICERA COCKERELLI EN DOS VARIEDADES DE PAPA
BAJO MANEJO FITOSANITARIO NO QUÍMICO EN EL CANTÓN PEDRO
MONCAYO, considero que dicho trabajo reúne los requisitos y méritos suficientes para ser
sometido a la presentación pública y evaluación por parte del tribunal examinador que se
designe.
En la ciudad de Quito, a los 2 días del mes de octubre de 2020.
Ing. Agr. Manuel María Pumisacho Gualoto M. Sc.
DOCENTE-TUTOR
C.C.: 1705985479
iv
MONITOREO DE BACTERICERA COCKERELLI EN DOS VARIEDADES DE PAPA
BAJO MANEJO FITOSANITARIO NO QUÍMICO EN EL CANTÓN PEDRO
MONCAYO
APROBADO POR:
Ing. Agr. Manuel María Pumisacho Gualoto, M. Sc.
TUTOR
Ing. Agr. Carlos Alberto Ortega Ojeda, M. Sc.
TRIBUNAL LECTOR-EVALUADOR
Ing. Agr. Clara Cecilia Iza Madruñero, M. Sc.
TRIBUNAL LECTOR-EVALUADOR
2020
v
DEDICATORIA
A mis padres, Maricarmen Molina y Antonio Masapanta, por su esfuerzo, sacrificio, amor
incondicional, comprensión, apoyo, confianza y sobre todo por los valores que plasmaron en
mí, soy la mujer que soy, son mi pilar fundamental y mi inspiración para alcanzar mis metas.
Gracias a ustedes he obtenido muchos logros y entre ellos incluye este trabajo. A mis
hermanos Carlos y Anthonella, a los que amo demasiado, han estado para mí cuando más los
he necesitado, por ello, son mi motivación para seguir adelante.
Joselyn Clemencia
vi
AGRADECIMIENTOS
Agradezco a Dios y a la Virgen Santísima por absolutamente todo lo que ocurre en mi vida y
en la de mis familiares, por darme la fuerza, perseverancia, por mantenernos unidos a través
de la fé y por derramar muchas bendiciones sobre nosotros.
A mi tutor de tesis Ing. Manuel Pumisacho por su paciencia, su apoyo, por brindarme sus
conocimientos y amistad para la realización de esta investigación.
A la Ing. Clara Iza e Ing. Carlos Ortega por sus comentarios constructivos, por compartir sus
conocimientos y por el apoyo que me brindaron.
A la Ing. Nancy Panchi (Asistente de investigación del CIP-Quito) por su predisposición
para ayudarme en el transcurso de este trabajo.
A mis compañeros de Vinculación con la Sociedad: Jefferson, Ángel, Nelly, Emilia, Diana,
John, Paulo, María José y Bryan, los cuales tuvieron un rol importante para la
implementación del presente trabajo.
A mis padres, por su apoyo moral y económico, logré cumplir una de mis metas.
A mis hermanos, por sus palabras, juegos, chistes y travesuras que logran alegrarme cada
día.
A mis familiares: +Abuelitos, Abuelitas, tíos, tías, primas y primos, los que aportan con un
granito de arena para mi formación como persona y como profesional.
A mis mejores amigas: Gaby, Ale, Vivi y Joss, por ser mi apoyo incondicional en todo
aspecto, mis confidentes, mis consejeras. Las amo demasiado, hermanas.
A mis amigos de la facultad: Sonia, Joss, Naty, Nelly, Sebas, Luis, Alejo, Andrés, Diego, José,
Jorge y David, por compartir los mejores momentos en las aulas y fuera de ellas. Los quiero
demasiado colegas.
vii
ÍNDICE DE CONTENIDO
CAPÍTULOS PÁGINAS
DERECHOS DE AUTOR ....................................................................................................... ii
APROBACIÓN DEL TUTOR ............................................................................................... iii
APROBADO POR: ................................................................................................................. iv
DEDICATORIA ....................................................................................................................... v
AGRADECIMIENTOS .......................................................................................................... vi
ÍNDICE DE CONTENIDO ................................................................................................... vii
ÍNDICE DE CUADROS .......................................................................................................... x
ÍNDICE DE FIGURAS ........................................................................................................... xi
ÍNDICE DE GRÁFICOS....................................................................................................... xii
ÍNDICE DE ANEXOS .......................................................................................................... xiii
RESUMEN ............................................................................................................................. xiv
ABSTRACT ............................................................................................................................ xv
1. INTRODUCCIÓN ............................................................................................................ 1
2. REVISIÓN DE LITERATURA ...................................................................................... 4
2.1 Cultivo de papa, generalidades ................................................................................ 4
2.1.1 Variedad INIAP-Suprema .................................................................................... 4
2.1.2 Variedad Superchola ............................................................................................ 4
2.2 Punta morada de la papa .......................................................................................... 5
2.2.1 Bactericera cockerelli .......................................................................................... 5
2.2.1.1 Taxonomía ........................................................................................................... 6
2.2.1.2 Ciclo Biológico .................................................................................................... 7
2.2.1.3 Temperatura y desarrollo ..................................................................................... 9
2.2.1.4 Influencia del ambiente con la plaga .................................................................... 9
2.2.1.5 Hospedantes ....................................................................................................... 10
2.3 Manejo fitosanitario no químico ............................................................................ 10
2.3.1 Caldo sulfocálcico .............................................................................................. 10
2.3.2 MM-5 o Sutocho ................................................................................................ 10
2.3.3 Beauveria bassiana ............................................................................................ 11
2.4 Programa ILCYM ................................................................................................... 11
3. MATERIALES Y MÉTODOS ...................................................................................... 13
3.1 Ubicación .................................................................................................................. 13
viii
3.1.1 Situación geográfica ........................................................................................... 13
3.2 Características climáticas ....................................................................................... 13
3.3 Materiales ................................................................................................................. 14
3.3.1 Materiales de oficina .......................................................................................... 14
3.3.2 Herramientas de campo ...................................................................................... 14
3.3.3 Insumos .............................................................................................................. 14
3.3.4 Equipos............................................................................................................... 14
3.4 Métodos .................................................................................................................... 14
3.4.1 Factores en estudio ............................................................................................. 14
3.4.2 Tratamientos....................................................................................................... 15
3.4.3 Unidad Experimental ......................................................................................... 15
3.4.4 Parcela Neta ....................................................................................................... 16
3.4.5 Esquema del experimento en campo .................................................................. 16
3.4.6 Diseño experimental .......................................................................................... 16
3.4.7 Esquema del análisis de la varianza ................................................................... 16
3.4.8 Análisis funcional .............................................................................................. 17
3.5 Definición de variables ............................................................................................ 17
3.5.1 Número de agricultores ...................................................................................... 17
3.5.2 Variables relacionadas con la población del insecto en estudio ........................ 17
3.5.2.1 Monitoreo de oviposturas................................................................................... 17
3.5.2.2 Monitoreo de ninfas ........................................................................................... 18
3.5.2.3 Monitoreo de adultos ......................................................................................... 18
3.5.3 Frecuencia del monitoreo de las variables ......................................................... 18
3.5.4 Temperatura ....................................................................................................... 18
3.5.5 Información de los lotes ..................................................................................... 19
3.5.6 Colecta de B. cockerelli para los análisis moleculares ....................................... 19
3.5.7 Caracterización molecular de los triózidos colectados ...................................... 19
3.5.8 Mapa de riesgo de la plaga ................................................................................. 19
3.5.9 Variables Agronómicas ...................................................................................... 20
3.5.9.1 Rendimiento de la papa ...................................................................................... 20
3.5.9.2 Manejo del experimento..................................................................................... 20
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN .................................................................................... 22
4.1 Incidencia poblacional de B. cockerelli .................................................................. 22
4.1.1 Número de huevos ............................................................................................. 22
ix
4.1.2 Número de ninfas ............................................................................................... 25
4.1.3 Número de adultos ............................................................................................. 28
4.2 Análisis estadísticos de monitoreo de B. cockerelli ............................................... 31
4.2.1 Análisis estadísticos de huevos .......................................................................... 31
4.2.2 Análisis estadísticos de ninfas ............................................................................ 32
4.2.3 Análisis estadísticos de adultos .......................................................................... 34
4.2.4 Análisis molecular.............................................................................................. 35
4.3 Mapa de riesgo de la plaga ..................................................................................... 35
4.4 Rendimiento de papa............................................................................................... 37
5. CONCLUSIONES .......................................................................................................... 41
6. RECOMENDACIONES ................................................................................................ 42
7. RESUMEN ...................................................................................................................... 43
SUMMARY ............................................................................................................................ 44
8. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS.......................................................................... 45
9. ANEXOS .......................................................................................................................... 51
x
ÍNDICE DE CUADROS
Cuadro 1. Tratamientos para el monitoreo de Bactericera cockerelli en dos variedades de
papa bajo manejo fitosanitario no químico. ............................................................................. 15 Cuadro 2. Análisis de varianza (ANEVA) de los tratamientos a evaluarse. ............................ 17 Cuadro 3. Agricultoras con las que se trabajó en la investigación. ......................................... 17 Cuadro 4. Número de huevos de B. cockerelli en las tres localidades ..................................... 22 Cuadro 5. Número de ninfas de B. cockerelli en las tres localidades ...................................... 25 Cuadro 6. Número de adultos de B.cockerelli en las tres localidades ..................................... 28 Cuadro 7. Análisis de la varianza del monitoreo de huevos de B. cockerelli en Pedro Moncayo
.................................................................................................................................................. 32 Cuadro 8. Prueba DMS de variedades de papa utilizadas en el monitoreo de huevos en el
monitoreo de B. cockerelli ....................................................................................................... 32 Cuadro 9. Prueba DMS de productos no químicos utilizados en el monitoreo de huevos de B.
cockerelli .................................................................................................................................. 32 Cuadro 10. Análisis de la varianza del monitoreo de ninfas de B. cockerelli en Pedro Moncayo
.................................................................................................................................................. 33 Cuadro 11. Prueba DMS de variedades de papa utilizadas en el monitoreo de ninfas de B.
cockerelli .................................................................................................................................. 33 Cuadro 12. Prueba DMS de productos no químicos utilizados en el monitoreo de ninfas de B.
cockerelli .................................................................................................................................. 33 Cuadro 13. Análisis de la varianza del monitoreo de adultos de B. cockerelli en Pedro
Moncayo................................................................................................................................... 34 Cuadro 14. Prueba DMS de variedades de papa utilizadas en el monitoreo de adultos de B.
cockerelli .................................................................................................................................. 35 Cuadro 15. Prueba DMS de productos no químicos utilizados en el monitoreo de adultos de B.
cockerelli .................................................................................................................................. 35 Cuadro 16. Rendimiento de papa de la variedad Superchola en las tres localidades .............. 37 Cuadro 17. Rendimiento de papa de la variedad INIAP-Suprema en las tres localidades ...... 38 Cuadro 18. Análisis de la varianza del rendimiento de la papa en Pedro Moncayo ................ 39 Cuadro 19. Prueba DMS para rendimiento de papa en kg/parcela de 324 m2 para las
variedades utilizadas en la investigación. ................................................................................ 40 Cuadro 20. Prueba DMS para rendimiento de papa en kg/parcela de 324 m2 para los productos
no químicos utilizados en la investigación. ............................................................................. 40
xi
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola
en la localidad 1 de Pedro Moncayo. ....................................................................................... 23 Figura 2. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola
en la localidad 2 de Pedro Moncayo. ....................................................................................... 23 Figura 3. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola
en la localidad 3 de Pedro Moncayo. ....................................................................................... 24 Figura 4. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-
Suprema en la localidad 1 de Pedro Moncayo. ........................................................................ 24 Figura 5. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-
Suprema en la localidad 2 de Pedro Moncayo. ........................................................................ 24 Figura 6. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-
Suprema en la localidad 3 de Pedro Moncayo. ........................................................................ 25 Figura 7. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola
en la localidad 1 de Pedro Moncayo. ....................................................................................... 26 Figura 8. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola
en la localidad 2 de Pedro Moncayo. ....................................................................................... 26 Figura 9. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola
en la localidad 3 de Pedro Moncayo. ....................................................................................... 27 Figura 10. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-
Suprema en la localidad 1 de Pedro Moncayo. ........................................................................ 27 Figura 11. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-
Suprema en la localidad 2 de Pedro Moncayo. ........................................................................ 27 Figura 12. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-
Suprema en la localidad 3 de Pedro Moncayo. ........................................................................ 28 Figura 13. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola
en la localidad 1 de Pedro Moncayo. ....................................................................................... 29 Figura 14. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola
en la localidad 2 de Pedro Moncayo. ....................................................................................... 29 Figura 15. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola
en la localidad 3 de Pedro Moncayo. ....................................................................................... 30 Figura 16. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-
Suprema en la localidad 1 de Pedro Moncayo. ........................................................................ 30 Figura 17. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-
Suprema en la localidad 2 de Pedro Moncayo. ........................................................................ 31 Figura 18. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-
Suprema en la localidad 3 de Pedro Moncayo. ........................................................................ 31 Figura 19. Temperatura máxima y mínima de la comunidad de Cubinche, parroquia La
Esperanza, cantón Pedro Moncayo. El color rojo representa la temperatura máxima y el color
azul representa la temperatura mínima. ................................................................................... 36 Figura 20. Humedad relativa máxima y mínima de la comunidad de Cubinche, parroquia La
Esperanza, cantón Pedro Moncayo. El color rojo representa la HR máxima y el color azul
representa la HR mínima.......................................................................................................... 36 Figura 21. Rendimiento de papa en kg/parcela de 324 m2 de la variedad Superchola en las tres
localidades de Pedro Moncayo ................................................................................................ 38 Figura 22. Rendimiento de papa en kg/parcela de 324 m2 de la variedad Suprema en las tres
localidades de Pedro Moncayo ................................................................................................ 38
xii
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Gráfico 1. Ciclo biológico de B. cockerelli (OIRSA, 2015) ...................................................... 9 Gráfico 2. Mapa político del cantón Pedro Moncayo (Acosta, 2010) ..................................... 13 Gráfico 3. Esquema del monioreo de B. cockerelli en dos variedades de papa bajo manejo
fitosanitario no químico en Pedro Moncayo. ........................................................................... 16 Gráfico 4. Etapa fenológica del cultivo de papa (MAG, 2018) ............................................... 22 Gráfico 5. Mapa Isotérmico (º C) para la presencia de Bactericera cockerelli en la parroquia
La Esperanza ............................................................................................................................ 36
xiii
ÍNDICE DE ANEXOS
Anexo 1. Elaboración del caldo sulfocálcico ........................................................................... 51 Anexo 2. Elaboración del MM-5 o Sutocho ............................................................................ 52 Anexo 3. Siembra de las variedades de papa Superchola e INIAP-Suprema .......................... 53 Anexo 4. Preparación del caldo sulfocálcico ........................................................................... 53 Anexo 5. Preparación del MM-5 o Sutocho ............................................................................ 53 Anexo 6. Monitoreo de huevos de B.cockerelli ....................................................................... 53 Anexo 7. Monitoreo de ninfas de B. cokerelli ......................................................................... 53 Anexo 8. Monitoreo de adultos de B.cockerelli ....................................................................... 53 Anexo 9. Trampas amarillas con presencia de adultos de B.cockerelli ................................... 53 Anexo 10. Variedad INIAP-Suprema, Localidad 1, Tratamiento: MM-5 ............................... 53 Anexo 11. Variedad INIAP-Suprema, Localidad 1, Tratamiento: Caldo sulfocálcico ............ 53 Anexo 12. Variedad INIAP-Suprema, Localidad 1, Tratamiento: Testigo ............................. 53 Anexo 13. Variedad INIAP-Suprema, Localidad 2, Tratamiento: MM-5 ............................... 53 Anexo 14. Variedad INIAP-Suprema, Localidad 2, Tratamiento: Caldo sulfocálcico ............ 53 Anexo 15. Variedad INIAP-Suprema, Localidad 2, Tratamiento: Testigo ............................. 53 Anexo 16. Variedad INIAP-Suprema, Localidad 3, Tratamiento: Caldo sulfocálcico ............ 53 Anexo 17. Variedad INIAP-Suprema, Localidad 3, Tratamiento: MM-5 ............................... 53 Anexo 18. Variedad INIAP-Suprema, Localidad 3, Tratamiento: Testigo ............................. 53 Anexo 19. Variedad Superchola, Localidad 1, Tratamiento: MM-5 ....................................... 53 Anexo 20. Variedad Superchola, Localidad 1, Tratamiento: Caldo sulfocálcico .................... 53 Anexo 21. Variedad Superchola, Localidad 1, Tratamiento: Testigo ...................................... 53 Anexo 22. Variedad Superchola, Localidad 2, Tratamiento: MM-5 ....................................... 53 Anexo 23. Variedad Superchola, Localidad 2, Tratamiento: Caldo sulfocálcico .................... 53 Anexo 24. Variedad Superchola, Localidad 2, Tratamiento: Testigo ...................................... 53 Anexo 25. Variedad Superchola, Localidad 3, Tratamiento: MM-5 ....................................... 53 Anexo 26. Variedad Superchola, Localidad 3, Tratamiento: Caldo Sulfocálcico ................... 53 Anexo 27. Variedad Superchola, Localidad 3, Tratamiento: Testigo ...................................... 53 Anexo 28. Tubérculo de la variedad Superchola con síntoma de la punta morada de la papa 53 Anexo 29. Tubérculo de la variedad INIAP-Suprema con síntoma de la punta morada de la
papa .......................................................................................................................................... 53
xiv
TÍTULO: Monitoreo de Bactericera cockerelli en dos variedades de papa bajo manejo
fitosanitario no químico en el cantón Pedro Moncayo.
Autora: Joselyn Clemencia Masapanta Molina
Tutor: Manuel María Pumisacho Gualoto
RESUMEN
La investigación realizada estuvo orientada a monitorear la población de Bactericera
cockerelli en dos variedades de papa bajo manejo fitosanitario no químico en el cantón Pedro
Moncayo. Conociendo la biología del insecto se pudo monitorear huevos, ninfas y adultos
según la etapa fenológica del cultivo de papa; en las variedades Superchola e INIAP-
Suprema. Se aplicó los productos no químicos MM-5 y caldo sulfocálcico para controlar B.
cockerelli. Estableciendo un diseño experimental de Parcela Dividida (DPD) con seis
tratamientos y tres repeticiones se obtuvieron los siguientes resultados: mayor número de
huevos, ninfas y adultos en la etapa de floración y engrosamiento de los tubérculos,
comparando las dos variedades y utilizando caldo sulfocálcico, en la variedad INIAP-
Suprema se obtuvo un menor número de huevos, ninfas y adultos de B.cockerelli, con un total
de 173 huevos, 228 ninfas y 239 adultos; a diferencia de la variedad Superchola que obtuvo
206 huevos, 244 ninfas y 324 adultos. Posteriormente se aplicó el programa ILCYM y se creó
mapas de riesgo de la plaga, para determinar la presencia del triózido en la comunidad
Cubinche. Por otro lado se tomó en cuenta el análisis molecular del triózido para conocer sus
haplotipos, confirmándose la presencia del haplotipo, el cual es el causante del daño en el
cultivo de papa. Con base en el rendimiento de la papa se pudo concluir que el caldo
sulfocálcico resulta mejor para suprimir al triózido en la variedad INIAP-Suprema.
PALABRAS CLAVE: TRIÓZIDO/ PUNTA MORADA DE LA PAPA/ PROGRAMA
ILCYM/ CALDO SULFOCÁLCICO/ MM-5 O SUTOCHO.
xv
TITLE: Monitoring of Bactericera cockerelli in two potato varieties under non chemical
phytosanitary management in the Pedro Moncayo canton.
Author: Joselyn Clemencia Masapanta Molina
Tutor: Manuel María Pumisacho Gualoto
ABSTRACT
The research was aimed to monitoring the population of Bactericera cockerelli in two potato
varieties under non-chemical phytosanitary management in Pedro Moncayo’s canton.
Knowing the biology of the insect, it was possible to monitor it eggs, nymphs and adults
according to the phenological stage of the potato crop; in the varieties Superchola and INIAP-
Suprema the non-chemical products MM-5 and sulfocalcic broth were applied to control B.
cockerelli. Establishing an experimental design of Divided Plot (DPD) with six treatments
and three repetitions, the following results were achieved: higher number of eggs, nymphs and
adults in the stage of flowering and thickening of the tubers, comparing both varieties and
using sulfocalcic broth, in the variety INIAP-Suprema there were fewer number of eggs,
nymphs and adults of B. cockerelli, with a total of 173 eggs, 228 nymphs and 239 adults;
unlike the variety Superchola that obtained 206 eggs, 244 nymphs and 324 adults. Later, the
ILCYM program was applied and pest risk maps were created, where the presence of the
triozid in the Cubinche community was indicated. On the other hand, the molecular analysis
of the triozid was considered to know its haplotypes, confirming the presence of the
haplotype, which is the cause of the damage in the potato crop. Considering the potato yield,
it was concluded that the sulfocalcic broth is better to control the triozid in the INIAP-
Suprema variety.
KEY WORDS: TRIOZIDAE/ PURPLE POINT OF THE POTATOE/ ILCYM PROGRAM/
SULPHOCALCIUM BROWN/ MM-5 OR SUTOCHO.
1
1. INTRODUCCIÓN
La papa (Solanum tuberosum) es un cultivo de importancia agrícola que forma parte
fundamental de la seguridad alimentaria del Ecuador. En el país se registró una producción de
422 589 t de papa con un área de siembra de 32 188 hectáreas en el 2018 (MAG, 2019) lo que
indica la importancia de este cultivo.
La producción se ve afectada por plagas que disminuyen el rendimiento en campo y en
poscosecha, estimándose una disminución de hectáreas sembradas de 47 mil en el 2013 a un
promedio de 31 mil hectáreas en los dos siguientes años, y otra reducción de 53 mil hectáreas
sembradas en el 2016 a un promedio de 32 mil hectáreas en los dos siguientes años (MAG,
2019). Estas reducciones podrían ser efecto de la presencia de punta morada de papa.
Recientemente fue reportado la presencia del triózido de la papa Bactericera cockerelli Sulc
1909 (Hemiptera: Psylloidea: Triozidae) en Ecuador (Castillo, Fu & Burckhardt, 2009),
insecto que, en otros países, ha sido reportado como vector de Candidatus Liberibacter
solanacearum (Rhizobiales: Rhizobiaceae), el agente causal del chip cebra (Munyaneza et al.,
2007). Se presume que B. cockerelli está involucrado en la transmisión de fitoplasmas o en la
sintomatología de punta morada de papa en Ecuador.
Varias investigaciones mencionan que este insecto se disemina con facilidad ya que puede
moverse a grandes distancias aprovechando las corrientes de aire. En un estudio realizado en
USA ha sido capturado este insecto flotando en el aire hasta alturas de 1 500 msnm. El rango
de temperatura para vivir va de 7 a 32 °C. Por su fácil movilidad, esta plaga tiene la capacidad
de invadir de manera inmediata los lugares con condiciones climáticas que favorecen su
desarrollo (Espinoza, 2014).
Debido a la intensa aplicación de fertilizantes sintéticos, los suelos se han deteriorado,
produciendo un desbalance en la agricultura y también un desequilibrio ambiental (Altieri &
Nicholls, 2000) además, potencia la aparición de nuevas plagas o la resistencia de estas a los
insumos químicos, ocasionando una dependencia cada vez mayor a la industria agroquímica
(Pérez & Landeros, 2009).
Para el control de Bactericera cockerelli es muy generalizado el uso de pesticidas sintéticos,
práctica que incrementa los costos de producción y contamina el ambiente y al ser humano
(Rubio et al., 2006).
En el Ecuador, por tratarse de una plaga nueva y para evitar grandes pérdidas, los productores
han adoptado un sin número de insecticidas recomendados en otros países o por casas
2
comerciales, aplicándolos semanalmente sin conocer la dinámica poblacional del insecto
vector (Cuesta et al., 2018).
Con la finalidad de reducir el uso de insecticidas sintéticos y a la vez apoyar una producción
más limpia, se propuso usar dos insecticidas no químicos como el caldo sulfocálcico y MM-5
o Sutocho ya que tienen un efecto insecticida al tiempo que resultan saludables, eficientes y
ecológicamente aceptables, lo cual constituye una forma de retorno a una práctica agrícola
tradicional (Cabrera et al., 2016).
La aplicación de los insecticidas no químicos en diversos estudios provee resultados
favorables como sustenta Quishpe, 2013 donde los insecticidas no químicos utilizados en su
investigación redujeron la incidencia y severidad de la polilla de la papa, evitando la mayor
incidencia de las plagas e impidiendo las cosechas precoces; permitiendo tener un buen
rendimiento en el desarrollo de las fases del cultivo de papa.
Para realizar un manejo adecuado es necesario, conocer la biología de la plaga, además de un
apropiado monitoreo, práctica que permite identificar huevos, ninfas y adultos, su incidencia y
severidad, lo cual a su vez permite la toma de decisión para aplicar el insecticida correcto para
cada estado, con una rotación adecuada de productos.
En la presente investigación se plantea utilizar información del monitoreo y según el ciclo
biológico del insecto vector aplicar en forma rotativa diferentes productos no químicos para
su control.
La Facultad de Ciencias Agrícolas de la Universidad Central del Ecuador se encuentra
realizando prácticas comunitarias en la comunidad Cubinche, parroquia La Esperanza, donde
los productores siembran pequeñas cantidades de papa, entre 1 a 5 qq, la producción obtenida
es básicamente para el autoconsumo y el resto para comercializar en el mercado de la
localidad.
Desde el 2018, los productores manifiestan la pérdida total de la producción de papa,
observando al momento de la floración marchitamiento de las plantas y tubérculos muy
diminutos, significando pérdida total. Los síntomas observados se asocian a la punta morada
de la papa, cuyo insecto vector se atribuye al triózido Bactericera cockerelli. Ante esta
realidad los agricultores pasaron de ser productores a compradores para el consumo.
En el semestre 2019-2020, los estudiantes que realizan prácticas comunitarias en la
comunidad Cubinche, implementaron parcelas de investigación orientadas al manejo
fitosanitario no químico de la punta morada de la papa con base en el monitoreo del triózido
3
en tres fincas de la comunidad. La importancia de esta investigación radica en la necesidad de
conocer la fluctuación de la población de B. cockerelli en la comunidad y en el periodo
señalado, donde ya se ha registrado la presencia de este insecto-vector. Se conoce que B.
cockerelli tiene como hospedero a otras solanáceas, entre estas, tomate riñón, pimiento y
tomate de árbol, cultivos presentes en la comunidad, aunque en pequeñas superficies. Además
del monitoreo, se examinó la estructura genética de las poblaciones de B. cockerelli y se
aprendió a utilizar el programa ILCYM (Insect Life Cycle Modeling) desarrollado por el
Centro Internacional de la Papa, para realizar análisis de riesgo de esta plaga, y poder
desarrollar manejo integrado y medidas de prevención más acertadas, para posteriormente
realizar mapas de riesgo y saber cuáles son los lugares más probables para que se establezca
B. cockerelli.
En las parcelas de la investigación, el control de B. cockerelli se realizó mediante la
aplicación de caldo sulfocálcico y MM-5, insecticidas no químicos, los insumos para su
elaboración son baratos y fáciles de conseguir en los huertos o predios de los agricultores.
Estos insecticidas no químicos pueden aplicarse de manera preventiva con el fin de proteger a
la planta antes que se enfermen, o curativa cuando se presentan los primeros síntomas (IPES /
FAO, 2010).
La investigación realizada estuvo orientada a monitorear la población de B. cockerelli en dos
variedades de papa bajo manejo fitosanitario no químico en el cantón Pedro Moncayo; de
manera específica se buscó determinar la dinámica poblacional de B. cockerelli, aplicar el
programa ILCYM con los datos obtenidos en el muestreo para crear mapas de riesgo de la
plaga y caracterizar molecularmente a B. cockerelli para determinar la existencia de
haplotipos.
4
2. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1 Cultivo de papa, generalidades
La papa (Solanum tuberosum L.) es uno de los cultivos alimenticios más importantes a nivel
mundial, ocupa el cuarto lugar en importancia como alimento, después del maíz, el trigo y el
arroz (Devaux, Ordinola & Hibon, 2010). En el Ecuador se siembra sobre los 2 800 msnm, en
las tres regiones diferentes, ya que es un cultivo de alta importancia para las comunidades
rurales, pues son alrededor de 42 000 familias las que se dedican a cultivar papa; destacando
la provincia de Carchi por producir el 40 % de la cosecha anual del país (Pumisacho &
Velásquez, 2009). Según los datos del MAG, (2018) a través del informe de rendimientos
objetivos de papa en el Ecuador 2018 del SIPA, en el país, el rendimiento promedio es de
16.28 toneladas por hectárea con una densidad de siembra de 19 687 plantas por hectárea. Al
respecto, como en todo cultivo, la utilización de semilla de calidad es determinante para
lograr producciones sanas y abundantes (Montesdeoca, 2005).
2.1.1 Variedad INIAP-Suprema
INIAP-Suprema es una variedad de papa para consumo en fresco. Proviene del material
generado por el Centro Internacional de la Papa (CIP), procesado y seleccionado por el
Programa Nacional de Raíces y Tubérculos-papa (PNRT-Papa). Entre sus características
morfológicas se menciona que son plantas vigorosas, de tamaño medio, con tres tallos de
color verde intenso, follaje de desarrollo rápido, con buena cobertura del suelo, hojas de color
verde intenso, imparipinadas con tres pares de foliolos primarios, flores de color blanco no
muy abundantes. La forma del tubérculo es oblonga-alargada, color de piel blanca, con ojos
superficiales bien distribuidos en el tubérculo, color de pulpa crema. Las características
agronómicas de INIAP-Suprema son: bajo condiciones favorables produce rendimientos
promedios de hasta 42.7 t/ha, la precocidad es otra característica de la variedad pues a
altitudes de 2 630 msnm se obtiene la madurez a los 110 días. Sin lugar a dudas la mayor
ventaja de esta papa es la resistencia expresada a lancha (Phytophthora infestans). Las zonas
recomendadas para sembrar esta variedad se encuentran en la sierra-centro del país
(Tungurahua y Cotopaxi); sin embargo se desarrolla bien en la zona Norte (Carchi) (Torres et
al., 2011).
2.1.2 Variedad Superchola
La variedad Superchola es una papa para consumo fresco (sopas y puré) y para procesamiento
(papa frita en forma de hojuelas y de tipo francesa). Esta variedad fue generada por el señor
Germán Bastidas. Proviene de los cruzamientos realizados con las variedades (Curipamba
5
negra x Solanum demissum) x (clon resistente con comida amarilla x chola seleccionada).
Liberada en 1984. Las características morfológicas son: plantas de crecimiento erecto, con
numerosos tallos verdes con pigmentaciones púrpura, bien desarrolladas y pubescentes,
follaje frondoso de desarrollo rápido que cubre bien el terreno, hojas de color verde intenso,
abiertas (con tres pares de foliolos primarios, tres pares de foliolos secundarios y cinco pares
de foliolos terciarios), flores de color morado y tubérculos medianos, elípticos a ovalados, de
piel rosada y lisa, con ojos superficiales y pulpa amarilla pálida con un período de reposo de
80 días. En las características agronómicas señalan que la zona recomendada para esta
variedad se encuentra entre las zonas norte y centro desde los 2 800 a 3 600 m de altitud, tiene
una maduración entre 180 días a 3 000 m de altitud y un rendimiento de 30 t/ha. Es
susceptible a lancha (Phytophthora infestans), medianamente resistente a roya (Pucccinia
pittieriana) y tolerante al nematodo del quiste de la papa (Globodera pallida) (Torres et al.,
2011).
2.2 Punta morada de la papa
La enfermedad conocida como punta morada de la papa (PMP), causada por fitoplasmas, es
de importancia mundial ya que afecta cultivos en América, Europa, Asia y Australia
(Maramorosch, 1998). Los síntomas de la PMP se observaron en México desde 1948 y en los
últimos 10 años se ha visto un incremento acelerado de la enfermedad, especialmente en la
región centro del país (Cadena et al., 2003). Los síntomas de la PMP se caracterizan por un
achaparramiento de la planta, abultamiento del tallo en los lugares de inserción de las hojas,
formación de tubérculos aéreos y una decoloración en las hojas superiores, las cuales tienden
a tornarse moradas en algunas variedades. Los tubérculos provenientes de plantas con
síntomas de PMP desarrollan un pardeamiento interno y generalmente no brotan, o si lo
hacen, sus brotes son muy delgados o ahilados. Se ha demostrado que los síntomas descritos
previamente pueden estar asociados con la presencia de fitoplasmas y con el efecto de una
posible toxina inyectada a las plantas por el triózido de la papa Bactericera cockerelli Sulc.
(Hemiptera: Triozidae) antes conocida como Paratrioza cockerelli Sulc (Almeyda, Rubio &
Zavala, 1999; Cadena et al., 2003; Maramorosch, 1998).
2.2.1 Bactericera cockerelli
Es una plaga que tiene la capacidad de causar daño directo al succionar savia de las plantas, lo
que provoca una enfermedad conocida como “punta morada”, aparentemente ocasionada por
inyectar una toxina que provoca modificaciones en el color normal de las hojas, tornándolas
amarillas o moradas, por ello dicho padecimiento se conoce como “el amarillamiento del
6
triózido”, lo que impide el desarrollo normal de la planta y como consecuencia su muerte
(Servín, Tejas & Cota, 2008). En fechas recientes ha causado enormes pérdidas económicas a
la producción de papa en México, debido a que en las últimas investigaciones se ha
encontrado una nueva enfermedad asociada a este insecto, inducida por la bacteria Candidatus
Liberibacter solanacearum (CESAVEM, 2007).
Para un desarrollo más adecuado de MIP para todas las plagas en los cultivos de papa, en
particular para el triózido de la papa, el monitoreo con trampas amarillas pegajosas y los
conteos de oviposturas y ninfas han sido utilizados para monitorear la fluctuación de las
poblaciones de plagas. El monitoreo de poblaciones y el establecimiento de umbrales es
difícil (Vereijssen, Smith & Weintraub, 2018), sin embargo existen software de modelos
matemáticos desarrollados para utilizar los datos obtenidos en los muestreos para predecir el
desarrollo de las plagas. Las trampas de color amarillo de tamaño estándar (23 cm x 14 cm)
logran capturar mayor número de adultos de B. cockerelli que las de tamaño pequeño (7.5 cm
x 12.5 cm) y las de color anaranjado neón, y capturaron significativamente igual que las de
color verde neón. Se colocan sobre una estaca de madera a un metro de altura (Henne et al.,
2010). Los monitoreos se pueden realizar mediante la observación y conteo de los diferentes
estados de desarrollo de B. cockerelli, siendo los más adecuados el conteo de oviposturas y de
ninfas durante un determinado tiempo (Castillo et al., 2016; Vereijssen, Smith & Weintraub,
2018).
2.2.1.1 Taxonomía
OIRSA, (2015) menciona la taxonomía de B. cockerelli de la siguiente manera:
Reino Animalia
Phylum Arthropoda
Subfilum Hexápoda
Clase Insecta
Orden Hemíptera
Suborden Sternorrhyncha
Superfamilia Psylloidea
Familia Triozidae
Género Bactericera (=Paratrioza)
Especie cockerelli cockerelli (Sulc)
Nombre de la plaga Bactericera cockerelli (Sulc) 1909
Sinónimo Paratrioza cockerelli (Sulc)
7
2.2.1.2 Ciclo Biológico
El ciclo biológico de B. cockerelli (Gráfico 1) es el siguiente (Marín et al., 1995):
a) Huevecillos. De forma ovoide, de color anaranjado-amarillento, corion brillante,
presentan en uno de sus extremos un pequeño filamento, con el cual se adhieren a la
superficie de las hojas, depositados por separado, principalmente en el envés de la hoja
y por lo general cerca del borde de la misma. El tiempo de la embriogénesis es de 6.7
días (rango 5.7 – 8.2 días) en condiciones controladas de 26 - 27 °C y 60 – 70 % de
humedad (Abdullah, 2008).
b) Estadíos ninfales. Presenta cinco estadíos con forma oval, aplanados dorso-
ventralmente, con ojos bien definidos. Las antenas presentan sensilias placoides
(estructuras circulares con función olfatoria), las cuales aumentan en número y son
más notorias conforme el insecto alcanza los diferentes estadíos. El perímetro del
cuerpo presenta estructuras cilíndricas que contienen filamentos cerosos, los cuales
forman un halo alrededor del cuerpo. El periodo ninfal es de 21.9 días con un rango de
(19.1 – 23.8 días) en condiciones controladas de 26 - 27 °C y 60 – 70 % de humedad
(Abdullah, 2008).
■ Primer estadío. Las ninfas presentan una coloración anaranjada. Las antenas
presentan los segmentos basales cortos y gruesos y se van adelgazando hasta finalizar
en un pequeño segmento con dos setas sensoras; ojos notorios tanto en vista dorsal
como ventral con una tonalidad anaranjada. Tórax, con paquetes alares poco notables.
La segmentación en las patas es poco visible. La división del cuerpo no está bien
definida.
■ Segundo estadío. A partir de este estadío, se aprecian claramente las divisiones entre
cabeza, tórax y abdomen. La cabeza presenta un matiz amarillento, las antenas son
gruesas en su base y se estrechan hacia su parte apical presentando en estas dos setas
sensoras. Los ojos presentan un color anaranjado oscuro. El tórax es de color verde-
amarillento y los paquetes alares se hacen visibles; la segmentación en las patas se
hace notoria. Tanto el tórax como el abdomen incrementan su tamaño y con esto las
diferentes estructuras contenidas en ellos. El abdomen presenta una coloración
amarilla, y se aprecia un par de espiráculos en cada uno de los cuatro primeros
segmentos.
■ Tercer estadío. En éste, la segmentación entre cabeza, tórax y abdomen es notoria.
La cabeza es de color amarillo, las antenas presentan las mismas características que el
estadío anterior. Los ojos presentan una coloración rojiza. El tórax, presenta un tono
8
verde-amarillento y se observa con mucha facilidad los paquetes alares en mesotórax y
metatórax. El abdomen es de color amarillo.
■ Cuarto estadío. La cabeza y antenas presentan las mismas características del estado
anterior. El tórax es de color verde-amarillento, la segmentación de las patas está bien
definida y se aprecia en la parte terminal de las tibias posteriores, los segmentos
tarsales y un par de uñas; estas características se aprecian fácilmente en ninfas
aclaradas y montadas. Los paquetes alares están bien definidos. La coloración del
abdomen es amarilla y cada uno de los cuatro primeros segmentos abdominales
presenta un par de espiráculos. La separación entre el tórax y el abdomen es notoria.
■ Quinto estadío. La segmentación entre cabeza, tórax y abdomen está definida. Tanto
la cabeza como el abdomen presentan una coloración verde claro y el tórax una
tonalidad un poco más oscura. En la cabeza, las antenas están seccionadas en dos
partes por una hendidura marcada cerca de la parte media; la parte basal es gruesa y la
parte apical filiforme presentando seis sensilias placoides visibles en ninfas aclaradas
y montadas. Los ojos adquieren un color rojo oscuro a un púrpura rojizo. El tórax
presenta los tres pares de patas con su segmentación bien definida y la parte terminal
de las tibias posteriores presentan las características anteriormente señaladas. Los
paquetes alares están claramente diferenciados, sobresaliendo del resto del cuerpo. El
abdomen es semicircular y presenta un par de espiráculos en cada uno de los cuatro
primeros segmentos.
c) Adulto. Al emerger el adulto presenta una coloración verde-amarillento; es inactivo y
de alas blancas que al paso de 3 o 4 horas se tornan transparentes (se conoce como
adulto teneral). La coloración del cuerpo pasa de ligeramente ámbar a café oscuro o
negro; este cambio se presenta en los primeros 7 a 10 días de alcanzar esta etapa (se
tienen datos que la coloración cambia cuando el adulto se aparea. Cabeza: 1/10 del
largo del cuerpo, con una mancha de color café que marca la división con el tórax,
ojos grandes de color café y antenas filiformes. Tórax: blanco amarillento con
manchas café bien definidas, la longitud de las alas es aproximadamente 1.5 veces el
largo del cuerpo, venación propia de la familia. El periodo de desarrollo total es de 25
a 33 días, con un promedio de 28 días, en condiciones controladas de 26 - 27 °C y 60
– 70 % de humedad (Abdullah, 2008).
Adulto hembra. Abdomen con cinco segmentos visibles más el segmento genital, este
es de forma cónica en vista lateral, en la parte media dorsal se presenta una mancha en
forma de “Y” con los brazos hacia la parte terminal del abdomen.
9
Adulto macho. Con seis segmentos visibles más el genital, este último segmento se
encuentra plegado sobre la parte media dorsal del abdomen; al ver este insecto
dorsalmente se distinguen los genitales con estructuras en forma de pinza que
caracteriza a este sexo.
Gráfico 1. Ciclo biológico de B. cockerelli (OIRSA, 2015)
2.2.1.3 Temperatura y desarrollo
El rango óptimo de temperatura es de 21 – 27 °C (Capinera, 2001; Munyaneza, 2010),
temperatura arriba de 32 °C es perjudicial para B. cockerelli porque reduce la puesta de
huevos y la eclosión, 27 °C es la temperatura óptima para el triózido (Cranshaw, 2001).
2.2.1.4 Influencia del ambiente con la plaga
Cuando se dan invasiones de nuevos insectos vectores, existe la posibilidad de que nuevos
patógenos ingresen a una región. Los movimientos de estos insectos son generalmente
transportados por cambios climáticos, uso de la tierra y el comercio (Chunco, 2014). Cuando
los insectos se alimentan de cultivos, el movimiento de poblaciones a nuevas regiones puede
llegar a desarrollar “súper plagas” debido a los intercambios, a los rasgos específicos de la
población (capacidad adaptativa), incluida una mayor resistencia a los pesticidas, una mayor
variedad de plantas hospedadoras y una mayor capacidad para tolerar la variación climática
(Oliveira, Henneberry & Anderson, 2001). Además, la dispersión de estos insectos que son
vectores de patógenos de plantas altera la incidencia y la gravedad de los brotes de
10
enfermedades de los cultivos debido a su mayor capacidad para transmitir patógenos
(Czosnek et al., 2017).
2.2.1.5 Hospedantes
Los principales hospedantes de B. cockerelli son las solanáceas, tanto cultivadas como
silvestres (EPPO Glogal Database., 2002), entre ellas están las especies cultivadas más
importantes como papa (Solanum tuberosum L.), tomate (Solanum lycopersicum L.), ají
(Capsicum annum L.), tomate de cáscara (Physalis ixocarpa), tabaco (Nicotiana tabacum),
berenjena (Solanum melongena L.), en las silvestres se encuentra el chamico (Datura
stramonium L.) y la hierba mora (Solanum nigrum L.) (Martin, 2008).
2.3 Manejo fitosanitario no químico
Los insecticidas no químicos son productos hechos a base de ingredientes que provienen de
restos de origen vegetal o sustancias de origen mineral o animal que ayudan a disminuir o
evitar los problemas de plagas, incluso pueden mejorar el desarrollo de los cultivos, ya que
según la función, poseen propiedades nutritivas para las plantas, repelentes y controladoras de
insectos, o curativas de enfermedades. Los insecticidas no químicos pueden ser utilizados
para reducir los costos de producción en las actividades agrícolas y favorecer el ambiente, ya
que se reduce la contaminación ambiental (CLAC, 2016).
2.3.1 Caldo sulfocálcico
Es un producto de preparación casera elaborado con base en azufre y cal, que sirve para la
prevención y control de algunas plagas, entre ellas: mildiú, cenicilla, botritis, ácaros y trips. El
efecto tóxico se debe a la liberación de gas sulfhídrico y azufre coloidal, el mismo que ha sido
utilizado con éxito para el control de insectos y ácaros, especialmente en las ninfas (Cabrera,
Robledo & Soto, 2018). Otro efecto que causa el caldo sulfocálcico es la respiración celular y
la parálisis del insecto (Glové et al., 2002). Además, estimula el crecimiento y ayuda a
superar las deficiencias de calcio y azufre de los cultivos. (Tejada & Escola, 2014).
2.3.2 MM-5 o Sutocho
MM-5 o Sutocho, como se conoce en Japón, es un fermento en donde interviene la mezcla del
vinagre natural, alcohol, melaza, alimentos con pungencia como (ají, jengibre, cebolla
colorada y ajo) y MM. La palabra Sutocho se descompone en: “Su” significa vinagre, “to”
quiere decir melaza y “cho” alcohol (GADPEDROMONCAYO, 2019). Es un producto que
funciona como repelente natural y no tóxico. Se usa asperjando sobre las plantas para prevenir
enfermedades y evitar el acercamiento de gusanos, mosca blanca, pulgones, ácaros,
11
cochinillas. Previene y controla hongos dañinos como: Fusarium y Botrytis, además de ayudar
a prevenir la “virosis”. Se debe almacenar en un lugar fresco y oscuro en condición
anaeróbica. El MM-5 en su preparación forma esteres que pueden impedir la digestión del
producto en la parte intestinal de insectos y provocar intoxicación por la presencia de
capsaicina, piperina y allicina que se encuentran en su compuesto químico. Además del
estímulo del crecimiento de plantas, la aplicación del mismo fortalece más la barrera de
protección (capa, cutícula) en la superficie de las plantas parta evitar la invasión de patógenos
( FEDECOOPADES, 2011).
2.3.3 Beauveria bassiana
Es un hongo que crece de forma natural en los suelos de todo el mundo, al ser un hongo
entomopatógeno tiene la capacidad de causar enfermedades en los insectos de tal manera que
controla a las poblaciones de insectos plaga por ello es producido en muchos países porque
está asociada precisamente para controlar lepidópteros y coleópteros. Al igual que otros
hongos entomopatógenos, antes de matar a su hospedero le causa síntomas importantes como
son: pérdida de sensibilidad, falta de coordinación, letargo, inapetencia, melanización y
parálisis. El modo de acción de este hongo consta de distintas etapas. Cuando las esporas
microscópicas del hongo entran en contacto con las células de la epicutícula del insecto, estas
se adhirieren e hidratan. Las esporas germinan y penetran la cutícula del insecto. Una vez
dentro, las hifas crecen destruyendo las estructuras internas del insecto y produciendo su
muerte al cabo de unas horas. Tras ello, si las condiciones ambientales son favorables, se
cubre de una esporulación blanquecina – amarillenta, que son las esporas del hongo con
capacidad para ser propagadas de nuevo y reinfectar a nuevos insectos. Con la muerte del
insecto, el beneficio se incrementa pues la esporulación y posterior dispersión del hongo,
permite un control más allá de la aplicación (Estrada et al., 1997; Vargas, 2003; Malpartida,
2004).
2.4 Programa ILCYM
El programa ILCYM (Insect Life Cycle Modeling) (ILCYM - version 4.0) es un paquete de
software que se utiliza para el desarrollo de modelos fenológicos de insectos, basándose en la
temperatura para predecir, evaluar y comprender su dinámica poblacional en agroecosistemas,
bajo una variedad de condiciones ambientales. Los resultados obtenidos proporcionan una
mejor comprensión de la biología del insecto y de su ecología; a largo plazo debería apoyar
un proceso racional de toma de decisiones en el manejo de plagas y mejorar la seguridad
alimentaria de los agricultores y la vida cotidiana realizando mapas de riesgo donde puedan
12
informar sobre el establecimiento potencial de la plaga. El enfoque utilizado en ILCYM es
definir sub-modelos que describen el desarrollo y la mortalidad en cada etapa de la vida de
inmaduros el insecto con su variación entre los individuos en una población, y la senescencia
tiempo y frecuencias de reproducción de los adultos de acuerdo con la temperatura. ILCYM
analiza datos de diferentes tipos. La pregunta al modelar los efectos de la temperatura en el
desarrollo de la población de insectos no es tanto una cuestión de "qué datos se deben
recopilar", sino más bien "cómo se deben utilizar estos datos". Por lo tanto, ILCYM permite
el uso de un tipo de datos experimentales como información de entrada para desarrollar un
modelo de fenología de plagas; sin embargo, los datos deben permitir modelar el ciclo de vida
completo de la especie y deben organizarse de manera que cumplan ciertos criterios
empleados dentro del software (Sporleder et al., 2017).
13
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1 Ubicación
El lugar donde se realizó la investigación se describe a continuación (Gráfico 2) (SIN,
2015):
Comunidad: Cubinche
Parroquia: La Esperanza
Cantón: Pedro Moncayo
Provincia: Pichincha
Gráfico 2. Mapa político del cantón Pedro Moncayo (Acosta, 2010)
3.1.1 Situación geográfica
El Sistema Nacional de Información, muestra la situación geográfica del cantón Pedro
Moncayo con la siguiente información (SIN, 2015):
Latitud: 0º N
Longitud: -78.25º O
Altitud: 2 600 msnm
3.2 Características climáticas
La parroquia-La Esperanza, tiene un clima templado frío, con un promedio anual de 13
grados Celcius; es la más pequeña en extensión del Cantón Pedro Moncayo ya que tiene un
área total de 3 778 hectáreas (SIN, 2015).
14
3.3 Materiales
3.3.1 Materiales de oficina
Libreta
Bolígrafos
Lápiz
Borrador
Calculadora
Marcadores
3.3.2 Herramientas de campo
Trampas HORIVER (Koppert) (amarillo): Tamaño: 25 x 10 cm.
Rollo pack
Etiquetas
Lupa 10X
Libro de campo
Flexómetro
Estacas
3.3.3 Insumos
Semilla de papa
Caldo sulfocálcico
Formulado biocida MM-5 o Sutocho
Formulado de Beauveria bassiana (1x109 ufc/cm3)
3.3.4 Equipos
Data logger CEM DT-171
Aplicación EPICOLLECT5
Cronómetro
Kit de purificación
Kit de extracción
Reactivos para PCR
3.4 Métodos
3.4.1 Factores en estudio
Se evaluaron dos factores en estudio:
Factor A: Variedades:
V1: Superchola
15
V2: INIAP-Suprema
Factor B: Productos no químicos para el control de B. cockerelli
PNQ1: MM-5
PNQ2: Caldo sulfocálcico
PNQ3: Testigo absoluto (sin aplicación)
3.4.2 Tratamientos
Los tratamientos para esta investigación resultaron de la combinación de los dos factores en
estudio (Cuadro 1).
Cuadro 1. Tratamientos para el monitoreo de Bactericera cockerelli en dos variedades de
papa bajo manejo fitosanitario no químico.
N° Sigla Descripción
T1 V1- PNQ1 Superchola + MM-5
T2 V1- PNQ 2 Superchola + Caldo sulfocálcico
T3 V1- PNQ 3 Superchola + Testigo
T4 V2- PNQ 1 INIAP-Suprema + MM-5
T5 V2- PNQ 2 INIAP-Suprema + Caldo sulfocálcico
T6 V2- PNQ 3 INIAP-Suprema + Testigo
3.4.3 Unidad Experimental
A continuación, se describen las características de la unidad experimental
Número de surcos: 6
Longitud de surcos: 9 m
Distancia entre surco: 1 m
Distancia entre planta o golpe: 0,40 m
Área de unidad experimental: 54 m2
Número de tratamientos: 6
Número de repeticiones: 3
16
Número de unidades experimentales: 18
Área total del experimento= 972 m2
3.4.4 Parcela Neta
Estuvo compuesta de cuatro surcos centrales, con un borde de 1 m a cada extremo de la
parcela.
Área de parcela neta = 28 m2
Área total neta = 504 m2
3.4.5 Esquema del experimento en campo
Gráfico 3. Esquema del monioreo de B. cockerelli en dos variedades de papa bajo manejo fitosanitario no
químico en Pedro Moncayo.
3.4.6 Diseño experimental
Para el monitoreo de Bactericera cockerelli en dos variedades de papa bajo manejo
fitosanitario no químico en el cantón Pedro Moncayo, el experimento fue dispuesto en un
Diseño de Parcela Dividida (DPD) con tres repeticiones, en el cual el primer factor A
(variedades de papa), correspondió a la parcela grande y el segundo factor B (manejo no
químico), a la subparcela.
3.4.7 Esquema del análisis de la varianza
Al combinar los dos factores (dos variedades y tres productos no químicos) se establecieron
un total de seis tratamientos: obteniendo un total de 18 unidades experimentales en tres
repeticiones, como se observa en el Cuadro 2.
17
Cuadro 2. Análisis de varianza (ANEVA) de los tratamientos a evaluarse.
Fuentes de Variación Grados de Libertad
Total 17
Bloque 2
Variedad (V) 1
Error (a) 2
Productos no químicos (B) 2
V X B 2
Error (b) 8
3.4.8 Análisis funcional
Se realizó la prueba de Diferencia Mínima Significativa (DMS) al 5% para las
comparaciones planteadas en la investigación con los tratamientos y bloques implantados.
3.5 Definición de variables
3.5.1 Número de agricultores
Se trabajó con tres agricultoras como se puede observar en el Cuadro 3.
Cuadro 3. Agricultoras con las que se trabajó en la investigación.
N° Agricultor Superficie (m2)
1 Laura Chorlango 324
2 Nancy Chorlango 324
3 Rosario Sánchez 324
3.5.2 Variables relacionadas con la población del insecto en estudio
Las tres variables que se utilizaron para la comparación de la población de insectos con la
temperatura son:
3.5.2.1 Monitoreo de oviposturas
Se seleccionó el 10 % de las plantas al azar en la parcela neta. En cada planta se contabilizó
las oviposturas en cinco minutos (utilizando un cronómetro) (Castillo et al. 2016). Para
18
realizar un conteo adecuado, se inició por los brotes jóvenes de las plantas (parte apical
principalmente) para contabilizar con lupa todas las oviposturas dentro del tiempo
determinado. Se registraron los datos en el libro de campo y directamente en un aplicativo
EPICOLLECT5.
3.5.2.2 Monitoreo de ninfas
Se seleccionó el 10% de las plantas al azar en la parcela neta. En cada planta se tomaron
cuatro hojas compuestas del tercio inferior de la planta, en las que se contabilizaron las ninfas
(de los estadios IV y V) con lupa. Se registraron los datos en el libro de campo y directamente
en un aplicativo EPICOLLECT5.
3.5.2.3 Monitoreo de adultos
Se colocaron trampas amarillas, una al borde del cultivo y otra al centro, seis por lote. Las
trampas fueron reemplazadas cada 15 días y enviadas al Departamento Nacional de
Protección Vegetal de la Estación Santa Catalina del INIAP, donde los triózidos fueron
identificados y contabilizados. Previo al envío, se las cubrió con plástico transparente para
proteger a los insectos adheridos. Se registraron las fechas del periodo en el que las trampas
estuvieron en el campo, el lugar de monitoreo, y las coordenadas geográficas (Vereijssen,
Smith & Weintraub, 2018).
3.5.3 Frecuencia del monitoreo de las variables
La frecuencia de monitoreo de ninfas y huevos se realizó cada 7 días durante 6 meses y las
trampas para el monitoreo de adultos se cambiaron cada 15 días.
3.5.4 Temperatura
Se colectó la información de la temperatura registrada en el dispositivo data logger (equipo
para registro de datos en el tiempo, con sistema de posicionamiento global, programado para
tomar los datos cada hora durante el tiempo de monitoreo) instalado en la zona más cercana a
los sitios seleccionados para los monitoreos.
Los grados días (GD) acumulados fueron calculados de la media de la temperatura por hora
usando las mínimas y máximas (Butler, R., Taylor, N. & Vereijssen, 2013). En estudios de
laboratorio se estimó el tiempo de desarrollo entre huevo a adulto, que en papa fue de 358 GD
para temperaturas debajo del umbral de 7.1 °C, de este modo se pudo calcular el número
potencial de generaciones del triózido por año en la región (Vereijssen, Smith & Weintraub,
2018).
19
3.5.5 Información de los lotes
Se recopiló información secundaria como estado fenológico del cultivo de la papa y se
complementó con información sobre el manejo del cultivo como: prácticas culturales,
controles fitosanitarios realizados durante los 15 días previos a cada monitoreo, fertilización,
riego y/o precipitación, entre otras, información que ayudó a entender la distribución de B.
cockerelli.
3.5.6 Colecta de B. cockerelli para los análisis moleculares
Para el análisis molecular de los insectos se colectaron muestras de adultos de cada sitio
donde se realizaron los monitoreos, los cuales fueron preservados en tubos eppendorf con
alcohol al 96 %. Cada tubo fue rotulado con datos de fecha, lugar de colecta y nombre del
colector. Se colectaron muestras por una sola vez en los diferentes lotes de monitoreo.
3.5.7 Caracterización molecular de los triózidos colectados
Se realizó la extracción de ADN genómico del insecto completo en los laboratorios de
Biotecnología de la Estación Experimental Santa Catalina-EESC del INIAP, de acuerdo a
protocolos como los de Crosslin et al. (2013) u otros.
Se utilizaron primers o iniciadores determinados para la identificación de los diferentes
haplotipos y los utilizados para determinar la presencia o ausencia de Candidatus Liberibacter
solanacearum (Castillo et al. 2016). Se analizaron los triózidos con la metodología para
detectar fitoplasmas en general o específicos (16SrI-F u otro) (Castillo, Fu & Burckhardt,
2009).
Las pruebas de reacción en cadena de la polimerasa_PCR fueron realizadas en el
Departamento de Biotecnología del INIAP, bajo las siguientes características:
desnaturalización inicial a 94 oC por 5 min, seguido de 35 ciclos de: desnaturación a 94 oC por
1 min, para el proceso de templado o “annealing” a 59 oC por 1 min 30 s y extensión a 72 oC
por 1 min 30 s, extensión final a 72 oC por 5 min. Cada amplificación (25 µ) contenía 1 µ
DNA, 5 µ reacción buffer 5X, 3 µ MgCl2 25 mM, 0.6 µ dNTP 10 mM, 1 µ de cada primer a
10 mM y 1 unidad de Taq polymerase (Promega). Los productos de PCR fueron purificados
usando el PCR clean-up system (Promega). Los fragmentos fueron secuenciados y analizados
comparándolos con los resultados obtenidos por Torres et al. (2011).
3.5.8 Mapa de riesgo de la plaga
En colaboración con el Centro Internacional de la papa-CIP, se realizó un mapa de riesgo de
establecimiento de B. cockerelli con base en la temperatura obtenidas en campo con el data
20
logger y, con las tablas de vida generadas por el CIP con base en la revisión bibliográfica; los
datos obtenidos alimentaron el programa ILCYM el cual ayudó para obtener mapas de
establecimiento de la plaga.
3.5.9 Variables Agronómicas
3.5.9.1 Rendimiento de la papa
Número de tubérculos y peso en lb/planta
En la parcela neta de cada tratamiento se seleccionaron 10 plantas al azar, a las que se
cosechó, se contó el número de tubérculos y se pesó; obteniendo así el número de tubérculos
por planta y el peso expresado en gramos por planta.
Número total de tubérculos y peso en lb/variedad
Se contó y pesó todos los tubérculos de las plantas seleccionadas y cosechadas en las dos
variedades de papa.
3.5.9.2 Manejo del experimento
Trazado de la parcela
Se delimitaron los cuatro surcos centrales de la parcela neta con un borde de 1 m a cada
extremo de la parcela, manteniendo una distancia de 1 m para las variedades de papa y 0.50 m
para los tratamientos.
Preparación del suelo
Se preparó el suelo utilizando un tractor para el arado, rastra y surcado, de esta manera las
semillas de papa tuvieron condiciones favorables para poder desarrollarse.
Siembra
Se sembraron dos semillas de papa a una distancia de 0.40 m entre planta x 1 m entre surcos.
Abonamiento
Se aplicó abono de cuy al momento de la siembra en las parcelas de las tres localidades donde
se realizó la investigación.
Prácticas culturales
A los 30 días después de la siembra, se eliminó la maleza haciendo un “rascadillo”, posterior
a lo cual a los 45 días después de la siembra se realizó un “aporcado” con el fin de evitar que
los estolones se conviertan en tallos, manteniendo la humedad del suelo y lograr un desarrollo
vigoroso del cultivo.
21
Dosis y frecuencia de la aplicación de los insecticidas no químicos
El caldo sulfocálcico se aplicó al cultivo, a la concentración de 300 cm3 en una bomba de 20
litros de agua. Se aplicó una vez por semana, a partir de la cuarta semana después de la
siembra, en horas de la mañana (06h30) o en la tarde (17h30).
El MM-5 o sutocho, se aplicó al cultivo de papa en la concentración, de 300 cm3 por bomba
de 20 litros. Se aplicó regularmente una vez a la semana a partir de la quinta semana después
de la siembra, en el horario indicado para el caldo sulfocálcico.
El entomopatógeno Beauveria bassiana se aplicó una vez a la semana, a partir de la cuarta
semana después de la siembra, en una dosis de 100 cm3/ 20 litros de agua
Riego
En la comunidad existe riego pero es muy limitado, por lo que, aprovechando los días de
turno se regó por aspersión en la mayor parte del tiempo, por falta de caudal, dos días a la
semana (miércoles y sábados).
22
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4.1 Incidencia poblacional de B. cockerelli
El monitoreo de B. cockerelli para registrar y graficar la incidencia poblacional de huevos,
ninfas y adultos, se realizó durante las etapas fenológicas críticas del cultivo de papa (Gráfico
4), es decir para la brotación y emergencia, crecimiento vegetativo, inicio de tuberización,
floración y llenado, y madurez del cultivo (Torres et al., 2011). Se monitoreó comenzando
desde la tercera semana después de la siembra hasta la madurez del cultivo; así en la variedad
Superchola, el monitoreo duró 17 semanas y en la variedad INIAP-Suprema 14 semanas.
Gráfico 4. Etapa fenológica del cultivo de papa (MAG, 2018)
4.1.1 Número de huevos
La variedad Superchola obtuvo una mayor incidencia poblacional de huevos en las tres
localidades a diferencia de la variedad INIAP-Suprema (Cuadro 4), debido a las condiciones
climáticas donde se realizó el experimento, puesto que el rango óptimo de temperatura fue de
15 - 27 °C y esas condiciones son favorables en el desarrollo y sobrevivencia de los huevos de
B. cockerelli (Capinera, 2001; Munyaneza, 2010).
Cuadro 4. Número de huevos de B. cockerelli en las tres localidades
Variedad Localidad Tratamiento Estado
plaga
Número de individuos Total 29 dds* 35 dds* 50 dds* 105 dds* 127 dds*
Superchola 1 MM-5 huevo 2 7 12 28 18 67
Superchola 1 Caldo
sulfocálcico huevo 3 8 11 21 16 59
Superchola 1 Testigo
absoluto huevo 8 15 20 31 29 103
Superchola 2 MM-5 huevo 3 12 22 29 14 80
Superchola 2 Caldo
sulfocálcico huevo 8 11 19 25 9 72
Superchola 2 Testigo
absoluto huevo 12 19 26 31 25 113
Superchola 3 MM-5 huevo 7 14 24 27 19 91
Superchola 3 Caldo
sulfocálcico huevo 6 12 21 26 10 75
Superchola 3 Testigo
absoluto huevo 9 16 27 30 29 111
INIAP- 1 MM-5 huevo 2 8 26 13 13 62
23
Suprema
INIAP-
Suprema
1 Caldo
sulfocálcico huevo 3 6 22 11 11 53
INIAP-
Suprema
1 Testigo
absoluto huevo 7 16 35 22 19 99
INIAP-
Suprema
2 MM-5 huevo 5 12 26 16 12 71
INIAP-
Suprema
2 Caldo
sulfocálcico huevo 4 10 23 14 10 61
INIAP-
Suprema
2 Testigo
absoluto huevo 7 14 28 21 28 98
INIAP-
Suprema
3 MM-5 huevo 10 16 24 19 13 82
INIAP-
Suprema
3 Caldo
sulfocálcico huevo 7 13 19 13 7 59
INIAP-
Suprema
3 Testigo
absoluto huevo 12 19 29 23 27 110
*Dds: días después de la siembra
Figura 1. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola en la localidad 1 de
Pedro Moncayo.
Figura 2. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola en la localidad 2 de
Pedro Moncayo.
05
101520253035
15-30 30-45 45-55 55-130
130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
0
5
10
15
20
25
30
35
15-30 30-45 45-55 55-130
130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
24
Figura 3. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola en la localidad 3 de
Pedro Moncayo.
Figura 4. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-Suprema en la
localidad 1 de Pedro Moncayo.
Figura 5. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-Suprema en la
localidad 2 de Pedro Moncayo.
0
5
10
15
20
25
30
35
15-30 30-45 45-55 55-130
130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
0
10
20
30
40
15-30 30-45 45-55 55-130 130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
0
5
10
15
20
25
30
35
15-30 30-45 45-55 55-130 130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
25
Figura 6. Número de huevos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-Suprema en la
localidad 3 de Pedro Moncayo.
4.1.2 Número de ninfas
El mayor número de ninfas se presentó en la variedad Superchola a comparación de la
variedad INIAP-Suprema (Cuadro 5), el motivo pudo ser la etapa fenológica de la papa,
debido a que las ninfas causan el primer daño a la planta por su alimentación ya que inyectan
toxinas con su estilete causando el amarillamiento de la papa, de modo que la variedad
INIAP-Suprema al ser precoz tuvo menor incidencia de ninfas que la variedad Superchola
(Schaper, 2012; Torres et al., 2011).
Cuadro 5. Número de ninfas de B. cockerelli en las tres localidades
Variedad Localidad Tratamiento Estado
plaga
Número de individuos Total
29 dds* 35 dds* 50 dds* 105 dds* 127 dds*
Superchola 1 MM-5 ninfa 11 27 31 32 19 120
Superchola 1 Caldo
sulfocálcico ninfa 9 23 27 28 16 103
Superchola 1 Testigo
absoluto ninfa 15 29 34 39 29 146
Superchola 2 MM-5 ninfa 9 15 23 28 15 90
Superchola 2 Caldo
sulfocálcico ninfa 7 12 19 25 12 75
Superchola 2 Testigo
absoluto ninfa 13 22 26 30 32 123
Superchola 3 MM-5 ninfa 8 16 21 27 11 83
Superchola 3 Caldo
sulfocálcico ninfa 5 13 18 22 8 66
Superchola 3 Testigo
absoluto ninfa 10 19 26 37 25 117
INIAP-
Suprema 1 MM-5 ninfa 12 22 34 26 18 112
INIAP-
Suprema 1
Caldo
sulfocálcico ninfa 9 19 31 24 13 96
INIAP-
Suprema 1
Testigo
absoluto ninfa 11 25 36 31 25 128
INIAP-
Suprema 2 MM-5 ninfa 11 17 25 19 11 83
INIAP-
Suprema 2
Caldo
sulfocálcico ninfa 7 12 21 17 8 65
INIAP- 2 Testigo ninfa 15 22 32 24 24 117
0
10
20
30
40
15-30 30-45 45-55 55-130 130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
26
Suprema absoluto
INIAP-
Suprema 3 MM-5 ninfa 7 14 26 19 12 78
INIAP-
Suprema 3
Caldo
sulfocálcico ninfa 5 11 23 17 11 67
INIAP-
Suprema 3
Testigo
absoluto ninfa 11 18 28 25 29 111
*Dds: días después de la siembra
Figura 7. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola en la localidad 1 de
Pedro Moncayo.
Figura 8. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola en la localidad 2 de
Pedro Moncayo.
0
10
20
30
40
50
15-30 30-45 45-55 55-130
130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
0
5
10
15
20
25
30
35
15-30 30-45 45-55 55-130
130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
27
Figura 9. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola en la localidad 3 de
Pedro Moncayo.
Figura 10. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-Suprema en la
localidad 1 de Pedro Moncayo.
Figura 11. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-Suprema en la
localidad 2 de Pedro Moncayo.
0
5
10
15
20
25
30
35
40
15-30 30-45 45-55 55-130
130-140
Nú
me
ro d
e n
infa
s
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
0
10
20
30
40
15-30 30-45 45-55 55-130 130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
0
5
10
15
20
25
30
35
15-30 30-45 45-55 55-130 130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
28
Figura 12. Número de ninfas de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-Suprema en la
localidad 3 de Pedro Moncayo.
4.1.3 Número de adultos
Los adultos de B. cockerelli en la variedad Superchola mostraron una alta incidencia en el día
85 después de la siembra a diferencia de la variedad INIAP-Suprema donde su alta incidencia
fue en el día 71 después de la siembra (Cuadro 6), puesto que la variedad Superchola tiene un
ciclo biológico de 180 días, a los 85 días se encontraba en la etapa de floración y llenado,
diferente de la variedad INIAP-Suprema que tiene un ciclo biológico de 110 días, a los 71
días ya se encontraba en la etapa de floración y llenado (Torres et al., 2011).
Cuadro 6. Número de adultos de B.cockerelli en las tres localidades
Variedad Localidad Tratamiento Estado plaga Número de individuos
Total
57 dds* 71 dds* 85 dds* 98 dds*
Superchola 1 MM-5 adulto 18 31 63 35 147
Superchola 1 Caldo
sulfocálcico adulto 13 25 52 27 117
Superchola 1 Testigo
absoluto adulto 32 51 102 41 226
Superchola 2 MM-5 adulto 20 23 39 25 107
Superchola 2 Caldo
sulfocálcico adulto 15 18 25 19 77
Superchola 2 Testigo
absoluto adulto 31 43 67 32 173
Superchola 3 MM-5 adulto 21 35 72 26 154
Superchola 3 Caldo
sulfocálcico adulto 17 29 63 21 130
Superchola 3 Testigo
absoluto adulto 39 43 108 45 235
INIAP-
Suprema
1 MM-5 adulto 19 65 30 19 133
INIAP-
Suprema
1 Caldo
sulfocálcico adulto 14 49 21 14 98
INIAP-
Suprema
1 Testigo
absoluto adulto 27 106 45 32 210
INIAP-
Suprema
2 MM-5 adulto 21 35 22 18 96
INIAP-
Suprema
2 Caldo
sulfocálcico adulto 16 21 16 14 67
0
5
10
15
20
25
30
35
15-30 30-45 45-55 55-130 130-140
Nú
me
ro d
e h
ue
vos
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
29
INIAP-
Suprema
2 Testigo
absoluto adulto 29 41 31 35 136
INIAP-
Suprema
3 MM-5 adulto 22 42 26 16 106
INIAP-
Suprema
3 Caldo
sulfocálcico adulto 16 28 19 11 74
INIAP-
Suprema
3 Testigo
absoluto adulto 37 76 40 33 186
*Dds: días después de la siembra
Figura 13. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola en la localidad 1
de Pedro Moncayo.
Figura 14. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola en la localidad 2
de Pedro Moncayo.
0
20
40
60
80
100
120
57 71 85 98
Nú
me
ro d
e a
du
lto
s
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
0
10
20
30
40
50
60
70
80
57 71 85 98
Nú
me
ro d
e a
du
lto
s
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
30
Figura 15. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad Superchola en la localidad 3
de Pedro Moncayo.
Figura 16. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-Suprema en la
localidad 1 de Pedro Moncayo.
0
20
40
60
80
100
120
57 71 85 98
Nú
me
ro d
e a
du
lto
s
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
0
20
40
60
80
100
120
57 71 85 98
Nú
me
ro d
e a
du
lto
s
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
31
Figura 17. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-Suprema en la
localidad 2 de Pedro Moncayo.
Figura 18. Número de adultos de B. cockerelli en el cultivo de papa de la variedad INIAP-Suprema en la
localidad 3 de Pedro Moncayo.
4.2 Análisis estadísticos de monitoreo de B. cockerelli
4.2.1 Análisis estadísticos de huevos
De acuerdo a los resultados del ADEVA realizados para el monitoreo de huevos, se detectó
diferencias estadísticas altamente significativas en los productos no químicos es decir que
influyen en la oviposición de B. cockerelli, mientras que las variedades no influyen. Se realizó
la prueba de Diferencia Mínima Significativa (DMS) al 5 % para las comparaciones
planteadas en la investigación, dando como resultado un solo rango, corroborando los análisis
estadísticos. Por otro lado los productos no químicos presentaron tres rangos, en el primer
rango se encuentra el testigo con un valor de 105.67, en el segundo rango está ubicado el
MM-5 con un valor de 75.50 y el tercer rango ocupa el caldo sulfocálcico con unvalor de
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
57 71 85 98
Nú
me
ro d
e a
du
lto
s
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
0
10
20
30
40
50
60
70
80
57 71 85 98
Nú
me
ro d
e a
du
lto
s
Días en la etapa fenológica del cultivo de papa
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo
32
63.17. Según Pletsch (1947) menciona en su investigación que al utilizar caldo sulfocálcico,
las hembras no depositaban los huevos en las hojas de sus hospedantes, en cambio el producto
MM-5 al tener en su composición elementos químicos como: la capsaicina, allicina y
piperina, no son moléculas fuertes para generar un efecto ovicida (Claros, 2016).
Cuadro 7. Análisis de la varianza del monitoreo de huevos de B. cockerelli en Pedro
Moncayo
F.V. gl F p-valor
Total 17
Bloques (Localidades) 2 0.02 n.s 0.9840
Variedad (V) 1 0.0042 n.s 0.9541
Error (a) 2 26.32 0.0003
Productos no químicos (B) 2 159.11** <0.0001
V X B 2 1.08 n.s 0.3839
Error (b) 8
Cuadro 8. Prueba DMS de variedades de papa utilizadas en el monitoreo de huevos en el
monitoreo de B. cockerelli
Variedades Medias Rangos
INIAP-Suprema 81.78 A
Superchola 81.11 A
Cuadro 9. Prueba DMS de productos no químicos utilizados en el monitoreo de huevos de B.
cockerelli
Productos no químicos Medias Rangos
Testigo 105.67 A
MM-5 75.50 B
Caldo sulfocálcico 63.17 C
4.2.2 Análisis estadísticos de ninfas
Para el monitoreo de ninfas, el ADEVA indica que los productos no químicos son
estadísticamente altamente significativos, de manera que si influyen en la aparición de las
ninfas de B. cockerelli, mientras que las variedades no influyen en la presencia de ninfas de B.
cockerelli (Cuadro 10). Se realizó la prueba de Diferencia Mínima Significativa (DMS) al 5
% para las comparaciones planteadas en la investigación, dando como resultado un solo
rango para las variedades, así pues no intervienen en la presencia de ninfas, mientras que para
33
los productos no químicos se presentan tres rangos, el primer rango ocupó el testigo con el
valor más alto, 123.67 y en el segundo rango se ubica el producto MM-5 con un valor medio
de 94.33 y en el tercer rango se encuentra el producto caldo sulfocálcico con un valor medio
de 78.67 (Cuadro 11 y 12).
Los productos no químicos: MM-5 y caldo sulfocálcico, intervinieron en la aparición de
ninfas de B. cockerelli en diferentes niveles, siendo el testigo absoluto el que mayor número
de ninfas presentó, seguido del MM-5 y finalmente el caldo sulfocálcico. Por consiguiente el
caldo sulfocálcico fue un buen tratamiento debido a que tiene un efecto tóxico al liberar gas
sulfídrico y azufre coloidal, lo que ha sido utilizado con éxito como acaricida e insecticida. Es
importante enfatizar en que el efecto del azufre es letal sobre las ninfas y no en los adultos
(Cabrera, Robledo & Soto, 2018). El MM-5 también tiene un efecto inhibitorio en la
presencia de las ninfas a causa del contenido químico como la capsaicina, allicina y piperina,
el cual presenta un efecto neurotóxico y han sido usadas para controlar ácaros y pulgones
(Soto, 2013); sin embargo no fue tan efectivo para controlar a las ninfas.
Cuadro 10. Análisis de la varianza del monitoreo de ninfas de B. cockerelli en Pedro
Moncayo
F.V. gl F p-valor
Total 17
Bloques (Localidades) 2 0.82 n.s 0.5493
Variedad (V) 1 0.02 n.s 0.8925
Error (a) 2 52.17 0.0001
Productos no químicos (B) 2 171.82** <0.0001
V X B 2 1.11 n.s 0.3755
Error (b) 8
**: altamente significativo; ns: no significativo
Cuadro 11. Prueba DMS de variedades de papa utilizadas en el monitoreo de ninfas de B.
cockerelli
Variedades Medias Rangos
INIAP-Suprema 100.00 A
Superchola 97.78 A
Cuadro 12. Prueba DMS de productos no químicos utilizados en el monitoreo de ninfas de B.
cockerelli
Productos no químicos Medias Rangos
Testigo 123.67 A
MM-5 94.33 B
34
Caldo sulfocálcico 78.67 C
4.2.3 Análisis estadísticos de adultos
Para el monitoreo de adultos, el ADEVA indica que los productos no químicos son
estadísticamente altamente significativos, de modo que si influyen en la aparición de los
adultos de B. cockerelli, mientras que las variedades no influyen en la presencia de adultos de
B. cockerelli (Cuadro 13). Se realizó la prueba de Diferencia Mínima Significativa (DMS) al
5 % para las comparaciones planteadas en la investigación, dando como resultado un solo
rango para las variedades, por ende no intervienen en la presencia de adultos, mientras que
para los productos no químicos se presentan tres rangos, por consiguiente el testigo absoluto
ocupa el primer rango con un valor medio de 194.33, el MM-5 ocupa el segundo rango con un
valor medio de 123.83 y el caldo sulfocálcico se ubica en el tercer rango con un valor medio
de 93.83. Comparando estos valores se puede apreciar que el caldo sulfocálcico tiene el
menor número en la presencia de adultos de B. cockerelli (Cuadro 14 y 15).
Los productos no químicos intervinieron en la aparición de los adultos, teniendo en cuenta
que el caldo sulfocálcico presentó menos adultos que al aplicar MM-5, estos datos se
asemejan a los resultados alcanzados por Pletsch, (1947) quien en una investigación realizada
demostró que el caldo sulfocálcico causó una gran mortalidad de adultos y ninfas puesto que
su acción se enfoca en la respiración celular y causa parálisis (Grové et al., 2002) a diferencia
del producto MM-5 utilizado como control biológico por contener elementos con propiedades
pungentes y pigmentantes, el mismo que era usado como repelente desde la antigüedad por
tener efectos letales (Claros, 2016), a pesar de tener este efecto no fue suficiente para esta
investigación.
Cuadro 13. Análisis de la varianza del monitoreo de adultos de B. cockerelli en Pedro
Moncayo
F.V. gl F p-valor
Total 17
Bloques (Localidades) 2 6.53 n.s 0.1327
Variedad (V) 1 6.79 n.s 0.1212
Error (a) 2 5.34 0.0337
Productos no químicos (B) 2 154.02** < 0.0001
V X B 2 0.34 n.s 0.7207
Error (b) 8
*: significativo; **: altamente significativo; ns: no significativo
35
Cuadro 14. Prueba DMS de variedades de papa utilizadas en el monitoreo de adultos de B.
cockerelli
Variedades Medias Rangos
Superchola 151.78 A
INIAP-Suprema 122.89 A
Cuadro 15. Prueba DMS de productos no químicos utilizados en el monitoreo de adultos de
B. cockerelli
Productos no químicos Medias Rangos
Testigo 194.33 A
MM-5 123.83 B
Caldo sulfocálcico 93.83 C
4.2.4 Análisis molecular
De acuerdo al análisis molecular que realizó el INIAP, se observó la presencia de Candidatus
Liberibacter solanacearum (CLs) en el organismo de los insectos adultos de B. cockerelli que
se recolectaron en las parcelas de las localidades de esta investigación. Dando como resultado
positivo al haplotipo A, el cual es el causante del daño en el cultivo de papa, presentando
síntomas como: coloración púrpura del follaje, enrollamiento de las hojas e interrupción de la
formación de tubérculos. (Munyaneza et al., 2016). Estos resultados confirman la
investigación de Caicedo et al. (2020) quienes identificaron al haplotipo A de CLs en
Ecuador. Es importante saber el haplotipo de la bacteria, debido a que Swisher et al. (2018)
menciona que el haplotipo A es menos severo con respecto a los síntomas causados en el cultivo de
papa con el haplotipo B.
4.3 Mapa de riesgo de la plaga
De acuerdo a los datos obtenidos por el data logger de temperatura y humedad relativa, se
realizaron figuras donde se pueden observar los rangos máximos y mínimos (Figura 19 y 20)
con la ayuda del programa ILCYM se mostraron las zonas en las que existe la presencia de B.
cockerelli. Con base en la temperatura registrada, se comprobó las investigaciones de
Capinera (2001) y Munyaneza (2010), el insecto puede completar su ciclo biológico: huevos,
ninfas y adultos, durante el ciclo de la papa, dado que el rango óptimo de temperatura es de 21
- 27 °C.
36
Figura 19. Temperatura máxima y mínima de la comunidad de Cubinche, parroquia La Esperanza, cantón Pedro
Moncayo. El color rojo representa la temperatura máxima y el color azul representa la temperatura mínima.
Figura 20. Humedad relativa máxima y mínima de la comunidad de Cubinche, parroquia La Esperanza, cantón
Pedro Moncayo. El color rojo representa la HR máxima y el color azul representa la HR mínima.
Gráfico 5. Mapa Isotérmico (º C) para la presencia de Bactericera cockerelli en la parroquia La Esperanza
37
4.4 Rendimiento de papa
La comunidad Cubinche se encuentra ubicada a 2500 msnm, los suelos son arenosos y muy
pobres en materia orgánica. Los productores de la comunidad practican una agricultura
agroecológica, por lo tanto, no utilizan fertilizantes químicos como fuente de nutrición para
las plantas, tampoco pesticidas para controlar plagas. El cultivo principal es maíz y pocos
agricultores siembran papa, uno o dos qq; al momento de la siembra incorporan abono
orgánico, 10 sacos de 30 libras por 2 qq de semilla de papa y complementan con aplicaciones
de biol (entrevista personal Rocha, 2019); en estas circunstancias la producción es muy baja,
de 100 a 120 qq por ha.
En la investigación se utilizaron las variedades Superchola e INIAP-Suprema. Superchola se
adapta bien a altitudes de 2800 a 3600 msnm en el Norte del país y tiene un rendimiento
potencial de 30 t/ha; por su parte, INIAP-Suprema se recomienda para el Norte (Carchi),
Centro (Tungurahua y Cotopaxi) con un rendimiento potencias de 38 t/ha, (Pumisacho, M. &
Velásquez, J., 2009).
Aproximadamente a los 75 días de edad de las plantas, el cultivo soportó un periodo de sequía
acompañado de fuertes vientos; en esa época, en dos de las tres localidades no se dispuso de
suficiente caudal para realizar el riego por inundación y se realizó por aspersión, lo cual
perjudicó al área foliar, produciéndose una especie de quemazón, muy parecido a lancha;
posteriormente el cultivo también fue afectado por lancha (tizón tardío).
Los factores descritos incidieron significativamente en la producción (Cuadro 16 y 17),
obteniendo rendimientos muy pobres, casi cero en dos de las tres localidades. Pese a ello, para
cumplir con el protocolo establecido en el perfil, se presenta el análisis estadístico de la
variable rendimiento.
Cuadro 16. Rendimiento de papa de la variedad Superchola en las tres localidades
Tratamientos
Localidad
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo absoluto
1 0.91 kg 1.5 kg 0.5 kg
2 4.5 kg 5.91 kg 3.54 kg
3 0.86 kg 1.91 kg 0.45 kg
38
Figura 21. Rendimiento de papa en kg/parcela de 324 m2 de la variedad Superchola en las tres localidades de
Pedro Moncayo
Cuadro 17. Rendimiento de papa de la variedad INIAP-Suprema en las tres localidades
Tratamientos
Localidad
MM-5 Caldo sulfocálcico Testigo absoluto
1 1.6 kg 2.23 kg 1.5 kg
2 5 kg 6.7 kg 4.5 kg
3 3.73 kg 4.5 kg 2 kg
Figura 22. Rendimiento de papa en kg/parcela de 324 m2 de la variedad Suprema en las tres localidades de
Pedro Moncayo
Al realizar el ANOVA para el rendimiento de papa, los resultados muestran que las
localidades y los productos no químicos son estadísticamente altamente significativos y
significativos, respectivamente, dado que influyen en la producción como lo demuestra en el
Cuadro 18. Se realizó la prueba de Diferencia Mínima Significativa (DMS) al 5 % para las
comparaciones planteadas en la investigación (Cuadro 19 y 20), dando como resultado un
solo rango para las variedades, en cambio los productos no químicos presentan tres rangos, el
primer rango ocupó el caldo sulfocálcico con el valor más alto 8.34, en el segundo rango se
0
2
4
6
8
10
12
14
T1 (M5) T2(CS) T3 (TA)
Re
nd
imie
nto
kg/
par
cela
de
32
4
m2
Tratamientos
Localidad 1
Localidad 2
Localidad 3
0
2
4
6
8
10
12
14
16
T1 (M5) T2(CS) T3 (TA)
Re
nd
imie
nto
kg/
par
cela
de
3
24
m2
Tratamientos
Localidad 1
Localidad 2
Localidad 3
39
ubica el MM-5 con un valor medio de 6.09 y el tercer rango es para el testigo con un valor de
4.58. Al momento de comparar los valores de los productos no químicos, se observa que el
caldo sulfocálcico influye en el rendimiento de la papa en las dos variedades.
Se obtuvo una mayor producción utilizando el caldo sulfocálcico dado que en la investigación
realizada por Pletsch (1947) este producto tiene un efecto tóxico, siendo letal sobre ninfas, por
ello su acción se enfoca en la respiración celular del insecto adulto causando parálisis.
La variedad Superchola tuvo una producción menor comparado con la variedad INIAP-
Suprema puesto que bajo condiciones favorables, la variedad INIAP-Suprema produce
rendimientos promedios de hasta 42.7 t/ha, a una altitud de 2 630 msnm diferente de la
variedad Superchola que produce un rendimiento de 30 t/ha, a una altitud de 2 800 msnm
(MAG, 2018).
La parcela de la segunda localidad produjo mejor que las otras dos localidades, ésta contó con
una cortina rompeviento en la parte sur de la parcela y se regó por inundación en la mayor
parte de la época del ciclo del cultivo, probablemente estos factores favorecieron en algo la
producción; los posibles factores que incidieron en las otras dos localidades fueron: vientos
fuertes al momento de las aplicaciones de los tratamientos, otro factor fue el periodo de sequía
que soportó el cultivo, al tener suelos arenosos no retenían suficiente humedad para el
desarrollo del cultivo y evidentemente la presencia de B. cockerelli que inhibe el crecimiento
vegetativo de la planta, inhibe la tuberización y disminución de la calidad del tubérculo
(INIA, 2016).
El rendimiento promedio alcanzado en la variedad Superchola fue de 0.28 t/ha y en la
variedad INIAP-Suprema 0.68 t/ha, rendimientos muy bajos.
Si bien es cierto, la producción de papa obtenido fue muy baja por efecto de los factores
adversos mencionados, se podría mejorar la producción al garantizar mayor humedad al
cultivo y poniendo mayor atención a la aplicación de los insecticidas no químicos, sobre todo
el caldo sulfocálcico, con el cual se ha obtenido mejor resultado en cuanto al control de las
poblaciones de B. cockerelli en las diferentes etapas biológicas.
Cuadro 18. Análisis de la varianza del rendimiento de la papa en Pedro Moncayo
F.V. gl F p-valor
Total 17
Bloques (Localidades) 2 18.03* 0.0526
Variedad (V) 1 6.24n.s 0.1298
40
Error (a) 2 5.37 0.0332
Productos no químicos (B) 2 19.64** < 0.0008
V X B 2 0.08 n.s 0.9203
Error (b) 8
**: altamente significativo; *: significativo; ns: no significativo
Cuadro 19. Prueba DMS para rendimiento de papa en kg/parcela de 324 m2 para las
variedades utilizadas en la investigación.
Variedades Medias Rangos
INIAP-Suprema 7.76 A
Superchola 4.91 A
Cuadro 20. Prueba DMS para rendimiento de papa en kg/parcela de 324 m2 para los
productos no químicos utilizados en la investigación.
Productos no químicos Medias Rangos
Caldo sulfocálcico 8.34 A
MM-5 6.09 B
Testigo 4.58 C
41
5. CONCLUSIONES
Se observó un efecto positivo en la dinámica poblacional de Bactericera cockerelli al
someterlas a un control fitosanitario no químico, destacando el caldo sulfocálcico y la
variedad INIAP-Suprema, que reportan poblaciones más bajas del triózido.
La aplicación de caldo sulfocálcico en la variedad INIAP-Suprema reporta menor
número total de huevos (173), ninfas (228) y adultos (239), comparando con la
variedad Superchola que obtuvo 206 huevos, 244 ninfas y 324 adultos.
La variedad Superchola al ser una variedad de papa tardía, fue severamente afectada
por B.cockerelli a comparación de la variedad INIAP-Suprema por ser precoz.
En cuanto a los mapas de riesgo de la plaga, se pudo identificar que las zonas donde se
realizó la investigación tienen un alto riesgo de establecimiento de B. cockerelli.
Luego de analizar la temperatura y la presencia de huevos, ninfas y adultos de B.
cockerelli se concluye que las temperaturas promedio entre 15 y 27 ºC favorecen la
presencia de B. cockerelli en el cultivo de papa.
En el análisis molecular de B. cockerelli se identificó el haplotipo A presente en el
organismo de los insectos recolectados, confirmando la presencia de Candidatus
Liberibacter solanacearum (CLs) en la zona en estudio.
La producción de papa obtenido en las dos variedades fue muy bajo, sobre todo en
Superchola; fueron fuertemente afectados por sequía, viento y lancha (tizón tardío); a
esto se suma la presencia de B. cockerelli.
42
6. RECOMENDACIONES
Asegurar la aplicación de los productos no químicos para el manejo de Bactericera
cockerelli en la frecuencia y época de aplicación.
Validar la información obtenida, pero asegurando el abastecimiento de agua de riego.
Validar la investigación utilizando diferentes variedades precoces de papa, sobre todo
con aquellas variedades que se adapten a suelos arenosos y a altitudes bajas.
Incorporar al suelo cantidad adecuada de materia orgánica para proveer de una buena
nutrición al cultivo.
Desarrollar un enfoque de manejo integrado con la aplicación de todos los productos
biológicos, orgánicos y no químicos.
43
7. RESUMEN
El cultivo de papa (Solanum tuberosum) en el Ecuador es muy importante para los
agricultores, es por eso que se preocupan por la presencia del triózido de la papa Bactericera
cockerelli ya que afecta a la producción y por ende al rendimiento en campo. Al ser un insecto
de fácil movilidad los agricultores han optado por aplicar innumerables insecticidas sin
conocer el ciclo biológico del triózido; la presente investigación se orientó a monitorear la
población de B. cockerelli en dos variedades de papa bajo manejo fitosanitario no químico en
el cantón Pedro Moncayo. Los productos que se utilizaron fueron MM-5 y caldo sulfocálcico
para reducir la población de B. cockerelli, conociendo la biología del insecto se pudo
monitorear huevos, ninfas y adultos según la etapa fenológica del cultivo de papa utilizando la
variedad Superchola e INIAP-Suprema, dando como resultado un alto número de oviposición
en la localidad 3, para la variedad Superchola, con un valor de 91 huevos para MM-5, 75
huevos para el caldo sulfocálcico y 111 huevos para el testigo absoluto, a diferencia de la
variedad Suprema con un valor de 82 huevos para MM-5, 59 huevos para el caldo
sulfocálcico y 110 huevos para el testigo absoluto. En el monitoreo de las ninfas la localidad
1, en la variedad Superchola tuvo una mayor incidencia, con un valor de 120 ninfas para MM-
5, 103 ninfas para el caldo sulfocálcico y 146 ninfas para el testigo absoluto, en cambio la
variedad Suprema tuvo un valor de 112 ninfas para MM-5, 96 ninfas para el caldo
sulfocálcico y 128 ninfas para el testigo absoluto. De la misma manera, la localidad 1 tuvo un
mayor número de adultos en la variedad Superchola con un valor de 147 adultos en MM-5,
117 adultos en el caldo sulfocálcico y 226 en el testigo absoluto, distinto de la variedad
INIAP-Suprema que mostró un valor de 133 adultos en MM-5, 98 adultos en el caldo
sulfocálcico y 210 en el testigo absoluto. Posteriormente se aplicó el programa ILCYM y se
creó mapas de riesgo de la plaga, donde se indicó la presencia del triózido en la comunidad de
Cubinche. Por otro lado, se tomó en cuenta el análisis molecular del triózido para conocer sus
haplotipos y si estaba presente en la investigación. Tomando en cuenta el rendimiento de la
papa se pudo concluir que el caldo sulfocálcico resulta mejor para controlar al triózido en la
variedad INIAP-Suprema.
44
SUMMARY
The cultivation of potato (Solanum tuberosum) in Ecuador is very important for farmers, that
is why they are concerned about the presence of the potato triozide, Bactericera cockerelli, as
it affects the production and therefore yield in the field. Due to the insect’s easily motion,
farmers have chosen to apply countless insecticides without knowing the biological cycle of
the triozid. The present investigation is focus on monitoring the population of B. cockerelli in
two potato varieties under non-chemical phytosanitary management in Pedro Monaco’s town.
The products MM-5 and sulfocalcic were used in order to reduce the population of B.
cockerelli. Knowing the biology of the insect, it was possible to monitor eggs, nymphs and
adults according to the phenological stage of potato crop through the use of a variety of
Superchola and INIAP-Suprema, resulting in a high number of oviposition in the locality 3,
for the variety Superchola, with a value of 91 eggs for MM-5, 75 eggs for sulfocalcic broth
and 111 eggs for the absolute control, unlike the variety Suprema with a value of 82 eggs for
MM-5, 59 eggs for sulfocalcic broth and 110 eggs for the absolute control. Through the
monitoring process of nymphs, locality 1 in the Superchola variety had a higher incidence,
with a value of 120 nymphs for MM-5, 103 nymphs for sulfocalcium broth and 146 nymphs
for the absolute control, while the INIAP-Suprema variety had a value of 112 nymphs for
MM-5, 96 nymphs for sulfocalcium broth and 128 nymphs for the absolute control. Similarly,
locality 1 had a higher number of adults in the Superchola variety with a value of 147 adults
in MM-5, 117 adults in sulfocalcium broth and 226 in the absolute control, as opposed to the
INIAP-Suprema variety which showed a value of 133 adults in MM-5, 98 adults in
sulfocalcium broth and 210 in the absolute control. Subsequently, the ILCYM program was
applied and pest risk maps were created, where the presence of the triozid in the community
of Cubinche was indicated. On the other hand, the molecular analysis of the triozid was taken
into account to know its haplotypes and if it was present in the investigation. Taking into
account the potato yield, it was concluded that the sulfocalcic broth is better to control the
triozid in the INIAP-Suprema variety.
45
8. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Abdullah, N.M.M. (2008). Life history of the Potato Psyllid Bactericera cockerelli
(Homoptera: Psyllidae) in Controlled Environment agriculture in Arizona. African
Journal of Agricultural Research, 3(1).
Acosta, L. (2010). Impactos socio ambientales de la floricultura en el escenario de la gestión
local. Estudio de caso: cantón Pedro moncayo –barrio la alegría. Facultad
latinoamericana de ciencias sociales Sede Ecuador. Ecuador, 110p.
Almeyda, I., Rubio, O. & Zavala, T. (1999). Determinación de la implicación de fitoplasmas
con la expresión sintomatológica de punta morada en papa (Solanum tuberosum L.). IV
Simposio de Ciencia y Tecnología. Desarrollo Agropecuario. Secretaría de Educación
Pública, 45.
Altieri, M. &Nicholls, C. (2000). Teoría y práctica para una agricultura sustentable. Red de
Formación Ambiental para América Latina y el Caribe. México D.F., México, 250 p.
Butler, R., Taylor, N. & Vereijssen, J. (2013). Predicción de la primera aparición de psílido de
la papa de tomate en cultivos de tomate y papa. Informe de Platas y Alimentos No. 9350,
Investigación de Plantas y Alimentos, Lincoln, Nueva Zelanda., 27.
Cabrera, R., Morán, J., Mora, B., Molina, H., Moncayo, O., Díaz, E., Meza, G. & Cabrera C.
(2016). Evaluación de dos insecticidas naturales y un químico en el control de plagas en
el cultivo de frejol en el litoral ecuatoriano. Chile, 27-35.
Cabrera-Marulanda, M.A., Robledo-Buriticá, J. & Soto-Giraldo, A., (2018). Actividad
insecticida del caldo sulfocálcico sobre Hypothenemus hampei (Coleoptera:
Curculionidae). Bol.Cient.Mus.Hist. Nat.U.de Caldas, 22 (2): 24-32. DOI:
10.17151/bccm.2018.22.2.3
Cadena, M., Guzmán, I., Díaz, M., Zavala, T., Magaña, O., Almeyda, I., López, H., Rivera, A.
& Rubio, O. (2003). Distribución, incidencia y severidad del pardeamiento y la brotación
anormal en los tubérculos de papa en Valles Altos y Sierras de los estados de México,
Tlaxcala y el Distrito Federal, México. Mex. Fitopatol., 21(3), 248–259.
Caicedo, J., Simbaña, L., Calderón, D., Lalangui, K., & Rivera, L. (2020). First report of
‘Candidatus Liberibacter solanacearum’ in Ecuador and in South America. PLANT DIS.
Notes 15.
Capinera, J. (2001). Manual de plagas vegetales. Prensa Académica, San Diego, CA.
46
Castillo, C., Fu, Z. & Burckhardt, D. (2009). Primer registro del psílido del tomate patata
Bactericera cockerelli de América del Sur. Boletín de Insectología, 72(1), 85–91.
Castillo, C., Fu, Z., Jensen, S. & Snyder, W. (2016). Plagas de artrópodos y depredadores
asociados con la sombra agridulce, un huésped no cultivado del psílido de la papa
(Hemiptera: Triozidae). Entomología Ambiental, 45(4), 873–882.
CESAVEM. (2007). Manual operativo para la atención de la Paratrioza Bactericera cockerelli
Sulc. Comité Estatal de Sanidad Vegetal Del Estado de México – SAGARPA.
Chunco, A. (2014). Hibridación en un mundo más cálido., 4(10), 2019–2031.
CLAC. Coordinadora Latinoamericana y del Caribe de Pequeños Productores y Trabajadores
de Comercio Justo (2016). Manual de fertilizantes y plaguicidas orgánicos en el cultivo
de café. México: El Salvador
Claros, J. (2016). Bioinsecticidas de capsaicinoides y glucosinolatos en el control de los
insectos plaga en las plantas de spartium junceum l. (fabales: leguminosae) en el valle
del Mantaro. Perú: Huancayo.102.
Cranshaw, W. (2001). Enfermedades causadas por toxinas de insectos: amarillos psílidos.
Compendio de Enfermedades de La Papa., 2, 73–74.
Crosslin, J., Swisher, K. & Hamlin, L. (2013). Un método rápido para la preparación de
extractos de ácido nucleico de psílidos de papa para la detección de “Candidatus
Liberibacter solancearum” y el análisis molecular. Entomólogo Del Suroeste, 38(1), 41–
48.
Cuesta X., Peñaherrera D., Velásquez J., Castillo C. (2018) Guía de manejo de la punta
morada de la papa. Quito, Ecuador: INIAP, Estación Experimental Santa Catalina
(Manual no. 104).
Czosnek, H., Hariton, A., Sobol, I., Gorovits, R. & Ghanim, M. (2017). El increíble viaje de
los Begomovirus en su vector de mosca blanca. Virus, 9(10).
Devaux, A., Ordinola, A. & Hibon, A. (2010). El sector papa en la región andina: Diagnóstico
y elementos para una visión estratégica (Bolivia, Ecuador, Perú). Lima: Centro
Internacional de La Papa, 385.
EPPO Glogal Database. (2002). Bactericera cockerelli (PARZCO). INEC. Retrieved from
https://gd.eppo.int/taxon/PARZCO
Espinoza, H. (2014). El psílido de la papa, Bactericera cockerelli, un problema que podemos
47
manejar. Departamento de Protección Vegetal de La FHIA, La Lima, Cortés, Honduras,
C.A. Retrieved from https://es.scribd.com/document/242797228/El-psilido-de-la-papa-
Bactericera-cockerelli-un-problema-que-podemos-manejar
Estrada M. Romero M. & Snowball M. (1997). Aplicación de Beauveria bassiana en la Lucha
biológica contra Diatraea saccharalis. Revista Caña de Azúcar, Vol. 15 (1): 39-43.
Instituto Nacional de Investigaciones de la caña de Azúcar. La Habana Cuba.
FEDECOOPADES. (2011). Manual para la elaboración y uso de insumos agrícolas orgánicos.
El Salvador. Primera edición, 38.
GADPEDROMONCAYO. (2019). Manual de Capacitación para prácticas científicas
agroecológicas 2019. Ecuador.
Grové, T., Steyn, W.P., Beer, M.S. (2002). Evaluación de productos para el control del trips
de los cítricos Scirtothrips aurantii Faure (Thysanoptera:Thripidae) en mango. Mango
Research Journal: 28-31.
Henne, D., Paetzold, L., Workneh, F. & Rush, C. (2010). Evaluación de la tolerancia al frío
del psílido de la papa, la supervivencia del invierno, el muestreo de trampas pegajosas y
los efectos de liberibacter en las plantas huésped alternativas del psílido de la papa.
Sesión Anual de Representante de Zebra Chip., 149–153.
INIA. INSTITUTO DE INVESTIGACIONES AGROPECUARIAS. (2016). Estrés hídrico y
térmico en papas, avances y protocolos. Santiago, Chile. Boletín INIA Nº 331. 148p
IPES / FAO. (2010). Biopreparados para el manejo sostenible de plagas y enfermedades en la
agricultura urbana y periurbana. Primera Edición.
MAG. (2018). Informes de rendimiento de papa en el Ecuador 2018. Retrieved from
http://sipa.agricultura.gob.ec/descargas/estudios/rendimientos/papa/rendimiento_papa_2
018.pdf
MAG. (2019). Sistema de Información Pública (SIPA). Retrieved from
http://sipa.agricultura.gob.ec/
Malpartida J. (2004). Patogenicidad de Beauveria brongniartii en Premnotrypes suturicallus.
Tesis para optar el grado de Biólogo. Universidad Nacional Federico Villarreal.
Maramorosch, K. (1998). Estado actual del marchitamiento superior de la punta morada de la
papa. Plant Dis., 16, 61–72.
Marín, J., Garzón, T., Becerra, F., Mejía, A., Bujanos, M. & Byerly, M. (1995). “Ciclo
48
biológico y morfología del salerillo Paratrioza cockerelli (Sulc.) (Homoptera: Psyllidae)
vector de la enfermedad permanente del jitomate en el Bajío”. Manejo Integrado de
Plagas, Revista Técnica No. 38, 25–32.
Martin, N. (2008). “Anfitriones del psílido de tomate / papa: una historia de advertencia.” The
Weta, 35, 12–16. Retrieved from
http://www.ento.org.nz/nzentomologist/free_issues/Weta35_1_2008/Weta35-12-16.pdf.
Montesdeoca, F. (2005). Guía para la producción, comercialización y uso de semilla de Papa
de Calidad. INIAP, 40.
Munyaneza, J., Crosslin, J. & Upton, J. (2007). Asociación de Bactericera cockerelli
(Homoptera: Psyllidae) con “chip de cebra”, una nueva enfermedad de la papa en el
suroeste de los Estados Unidos y México. Revista de Entomología Económica, 100, 656–
663.
Munyaneza, J., Goolsby, J., Crosslin, J. & Upton, J. (2007). Evidencia adicional de que la
enfermedad de la papa con chips de cebra en el Valle del Bajo Río Grande de Texas está
asociada con Bactericera cockerelli. Ciencia de Plantas Subtropicales, 59, 30–37.
Munyaneza, J. (2010). “Psílidos como vectores de enfermedades bacterianas emergentes de
cultivos anuales”. Entomólogo Del Suroeste, 35(3), 471–477.
OIRSA. Organismo Internacional Regional De Sanidad Agropecuaria. (2015). El psílido de la
papa y tomate Bactericera (=Paratrioza) cockerelli (Sulc) (Hemiptera: Triozaidae): ciclo
biológico; la relación con las enfermedades de las plantas y la estrategia del manejo
integrado de plagas en la región del OIRSA. OIRSA. San Salvador, El Salvador.
Oliveira, M., Henneberry, T. &, & Anderson, P. (2001). Historia, estado actual y proyectos de
investigación colaborativa para Bemisia tabaci. Protección de Cultivos, 20(9), 709–723.
Pérez, A. & Landero, C. (2009). Agricultura y deterioro ambiental. Elementos, 73 (16) 19-25.
Pletsch, D.J. (1947). The potato psyllid Paratrioza cockerelli (sulc), its biology and control.
Montana Agric. Expt. Stn. Bull. 446:95
Pumisacho, M. & Velásquez, J. (2009). Manual del cultivo de papa para pequeños
productores. INIAP, Estación Experimental Santa Catalina, Programa Nacional de
Raíces y Tubérculos Rubro Papa. (Manual No. 78)., 103.
Quispe, M. (2013). Efecto de bioinsumos agrícolas en el cultivo de papa (Solanum
Tuberosum) y en las propiedades del suelo en la estación experimental de Quipaquipani,
49
provincia Ingavi - La Paz, 132.
Rubio, C., Almeida, I., Ireta, J., Sánchez, J., Fernández, R., Bordon, J., Diaz, C., Garzón, J.,
Rocha, R. & Cadena, M. (2006). Distribución de la punta morada y Bactericera
cockerelli Sulc. en las principales zonas productoras de papa en México. Agricultura
Técnica en México 32: 201-211
Schaper, E. (2012). Proceso de arribo de Bactericer cockerelli (Sulc) y su relación con la
aparición de síntomas de punta morada en el cultivo de la papa Solanum tuberosum L. en
Coahuila y Nuevo León. Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. México:
Saltillo, Coahuila.
Servín, R. Tejas, A. & Cota, A. (2008). “Primer Reporte de Bactericera cockerelli Sulc, en
Plantaciones Hortícolas de Baja California Sur, México,.” Entomólogo Del Suroeste,
33(3), 239–241.
SIN. Sistema Nacional de Información. (2015). Actualización Plan de Desarrollo y
Ordenamiento Territorial (PDyOT) de La parroquia rural de La Esperanza del Cantón
Pedro Moncayo, Provincia de Pichincha. Retrieved from http://app.sni.gob.ec/sni-
link/sni/PORTAL_SNI/data_sigad_plus/sigadplusdiagnostico/1768112770001_FASE I
DIAGNÓSTICO-LA ESPERANZA FINAL_30-10-2015_16-46-58.pdf.
Soto, A. (2013). Manejo alternativo de ácaros plagas. Revista de Ciencias Agrícolas 30(2):
34-44
Sporleder, M., Carhuapoma, P., Tonnang, E., Juarez, H., Gamarra, H., Simon, R. & Kroschel,
J. (2017). ILCYM - Insect Life Cycle Modeling. Un paquete de software para desarrollar
modelos de fenología de insectos basados en la temperatura con aplicaciones para el
análisis local, regional y global de la población de insectos y el mapeo. Centro
Internacional de La Papa, Lima, Perú, 175.
Swisher K., Mustafa, T., Cooper, R., & Munyaneza, J. (2018). Role of ‘Candidatus
Liberibacter solanacearum’ and Bactericera cockerelli Haplotypes in Zebra Chip
Incidence and Symptom Severity. A.J. Potato Res. 95., 709-719.
Tejada, T. & Escola, F. (2014). El caldo sulfocalcico para el control de plagas. Ministerio de
Agricultura y Riego, Instituto Nacional de Innovación Agraria. Editado por Plantwise.
Perú.
Torres, L., Cuesta, X., Monteros, C. & Rivadeneira, J. (2011). Variedades de papa. CIP e
INIAP. Quito-Ecuador. Consultado el 2 de Octubre de 2019
50
https://cipotato.org/es/latinoamerica/informacion/inventario-de-tecnologias/variedades/
Torres, M., Dupas, S., Dardon, D., Gómez, Y., Niño, L., Carnero, A. & Léry, X. (2011).
Inferir el rango nativo y los escenarios de invasión con ADN mitocondrial: el caso de T.
solanivora sucesivas introducciones escalonadas de norte a sur en América Central y del
Sur. Invasiones Biológicas, 13(7), 1505–1519.
Vargas M. (2003). Caracterización De tres cepas de Beauveria brongniartii y su efecto en
larvas de Phthorimaea opercullella. Tesis de Biólogo.UNMSM.
Vereijssen, J., Smith, G. & Weintraub, P. (2018). Bactericera cockerelli (Hemiptera:
Triozidae) y Candidatus Liberibacter solanacearum en papas en Nueva Zelanda:
biología, transmisión e implicaciones para el manejo. Revista de Manejo Integrado de
Plagas, 9(1), 13.
51
9. ANEXOS
Anexo 1. Elaboración del caldo sulfocálcico
Materiales
1 Kg de cal viva o apagada
1 Kg de azufre
20 litros de agua
Un recipiente de metal
Un palo de madera
Leña
Procedimiento para elaborar 20 litros
En el recipiente de metal depositar 20 litros de agua, hacer hervir, cuando el agua está
hirviendo se debe agregar la cal y luego el azufre. Hacer hervir por aproximadamente 1 hora,
moviendo constantemente la mezcla.
El caldo queda listo cuando la parte líquida cambia de color amarillo a color vino tinto. Dejar
reposar hasta que enfríe. Luego se envasa el caldo (parte líquida) en recipientes plásticos o de
vidrio de colores oscuros; pudiéndose guardar por más de un año en un lugar fresco y bajo
sombra. La pasta o sedimento que queda al fondo del recipiente metálico se puede utilizar
para cubrir heridas o cortes de los árboles frutales o forestales (Tejada & Escobal, 2014).
Es importante mencionar que la persona que mueve la mezcla debe usar una mascarilla, o
pañuelo, que cubra la nariz para evitar la inhalación de los vapores que emite el cocimiento
(Tejada & Escobal, 2014).
52
Anexo 2. Elaboración del MM-5 o Sutocho
Materiales
3 kilos de cebolla colorada
3 kilos de ajos
3 kilos de ají
3 kilos de jengibre
3 kilos de hojas de plantas aromáticas
1 galón de vinagre
1 galón de melaza
1 galón de alcohol (aguardiente)
20 litros de MM
50 litros de agua
Un tanque de plástico con tapa hermética de 100 litros.
Procedimiento para elaborar 100 litros
Se pican y se muelen los ingredientes juntos o por separado, esto puede hacerse en molinos o
se trituran con una piedra, se agrega la melaza, los MM, el vinagre y el alcohol, mezclados en
50 litros de agua, se agrega agua hasta completar el tanque, dejando un espacio pequeño entre
la tapa y la mezcla, sellar el recipiente y dejar reposar por 15 días antes de usar (
FEDECOOPADES, 2011).
53
Anexo 4. Preparación del caldo sulfocálcico Anexo 3. Siembra de las variedades de
papa Superchola e INIAP-Suprema
Anexo 6. Monitoreo de huevos de
B.cockerelli Anexo 5. Preparación del MM-5 o Sutocho
54
Anexo 8. Monitoreo de adultos de
B.cockerelli Anexo 7. Monitoreo de ninfas de B.
cokerelli
Anexo 9. Trampas amarillas con presencia de adultos de B.cockerelli
55
Anexo 11. Variedad INIAP-Suprema,
Localidad 1, Tratamiento: Caldo
sulfocálcico
Anexo 10. Variedad INIAP-Suprema,
Localidad 1, Tratamiento: MM-5
Anexo 12. Variedad INIAP-Suprema,
Localidad 1, Tratamiento: Testigo Anexo 13. Variedad INIAP-Suprema,
Localidad 2, Tratamiento: MM-5
56
Anexo 14. Variedad INIAP-Suprema,
Localidad 2, Tratamiento: Caldo
sulfocálcico
Anexo 15. Variedad INIAP-Suprema,
Localidad 2, Tratamiento: Testigo
Anexo 16. Variedad INIAP-Suprema,
Localidad 3, Tratamiento: Caldo sulfocálcico Anexo 17. Variedad INIAP-Suprema,
Localidad 3, Tratamiento: MM-5
57
Anexo 18. Variedad INIAP-Suprema, Localidad
3, Tratamiento: Testigo
Anexo 19. Variedad Superchola, Localidad 1,
Tratamiento: MM-5
Anexo 20. Variedad Superchola, Localidad
1, Tratamiento: Caldo sulfocálcico
58
Anexo 21. Variedad Superchola, Localidad 1,
Tratamiento: Testigo
Anexo 22. Variedad Superchola,
Localidad 2, Tratamiento: MM-5
Anexo 23. Variedad Superchola, Localidad 2,
Tratamiento: Caldo sulfocálcico Anexo 24. Variedad Superchola, Localidad
2, Tratamiento: Testigo
59
Anexo 26. Variedad Superchola, Localidad 3,
Tratamiento: Caldo Sulfocálcico Anexo 25. Variedad Superchola, Localidad
3, Tratamiento: MM-5
Anexo 27. Variedad Superchola, Localidad 3,
Tratamiento: Testigo
60
Anexo 29. Tubérculo de la variedad INIAP-Suprema con síntoma de la punta morada de la papa
Anexo 28. Tubérculo de la variedad Superchola con síntoma de la punta morada de la papa