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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO E HISTOTECNOLÓGICO
Correlación de monocitosis entre el método que utiliza el contador hematológico
automatizado y el método manual en un extendido de sangre periférica en
pacientes de consulta externa del Hospital de Especialidades Fuerzas Armadas N°1
en el periodo de Enero a Marzo del 2017.
Proyecto de Investigación presentado como requisito previo a la Obtención del Título
de Licenciado en Laboratorio Clínico e Histotecnológico
Autor: Sánchez Bonilla Rómulo Leandro
Tutor Académico: M.Sc. Tapia Cadena Mercedes Elisabeth.
D. M. DE QUITO: JULIO, 2018
ii
@DERECHOS DE AUTOR
Yo RÓMULO LEANDRO SÁNCHEZ BONILLA en calidad de autor del trabajo de
titulación, modalidad proyecto de investigación, “Correlación de monocitosis entre el
método que utiliza el contador hematológico automatizado y el método manual en
un extendido de sangre periférica en pacientes de consulta externa del Hospital de
Especialidades Fuerzas Armadas N°1 en el periodo de Enero a Marzo del 2017”.
Autorizo a la Universidad Central del Ecuador hacer uso de todos los contenidos que me
pertenecen o parte de los que contiene esta obra, con fines estrictamente académicos o de
investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los
artículos 5, 6, 8; 19 y demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su
Reglamento.
Asimismo, autorizo a la Universidad Central del Ecuador para que se realice la
digitalización y publicación de este trabajo de investigación en el repositorio virtual, de
conformidad a lo dispuesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior.
Rómulo Leandro Sánchez Bonilla
C.I 0503362998
Dirección Electrónica.
iii
APROBACIÓN DEL TRABAJO DE TITULACIÓN POR PARTE DEL
TUTOR
Yo, MERCEDES ELISABETH TAPIA CADENA en calidad de Tutor del Trabajo de
Titulación, modalidad Proyecto de Investigación, elaborado por el Señor. SÁNCHEZ
BONILLA RÓMULO LEANDRO; cuyo título es: “Correlación de monocitosis entre
el método que utiliza el contador hematológico automatizado y el método manual en
un extendido de sangre periférica en pacientes de consulta externa del Hospital de
Especialidades Fuerzas Armadas N°1 en el periodo de Enero a Marzo del 2017”.
Previo a la obtención de Grado de Licenciado en Laboratorio Clínico e Histotecnológico;
considero que el mismo reúne los requisitos y méritos necesarios en el campo
metodológico y en el campo epistemológico, para ser sometido a la evaluación por parte
del tribunal examinador que se designe, por lo que le APRUEBO, a fin de que el trabajo
investigativo sea habilitado para continuar con el proceso de titulación determinado por
la Universidad Central del Ecuador.
En la ciudad de Quito, a los 12 días del mes de Junio del 2018.
Msc. Mercedes Elisabeth Tapia Cadena
DOCENTE TUTOR
CI. 1712764453
iv
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL
El tribunal constituido por el Dr. Hernán Vinelli (Presidente), M.Sc. Bernardita Ulloa
(Vocal 1), M.Sc. Cristina Toscano (Vocal 2).
Proyecto de Investigación presentado como requisito previo a la Obtención del Título de
Licenciado en Laboratorio Clínico E Histotecnológico presentado por el señor:
SÁNCHEZ BONILLA RÓMULO LEANDRO
Con el título:
“Correlación de monocitosis entre el método que utiliza el contador hematológico
automatizado y el método manual en un extendido de sangre periférica en pacientes de
consulta externa del Hospital de Especialidades Fuerzas Armadas N°1 en el periodo de
Enero a Marzo del 2017”
Emite el siguiente veredicto: APROBADO
Fecha: 10 de julio del 2018
Para constancia de lo actuado firman:
Nombres y Apellidos Calificación Firma
Presidente Dr. Hernán Vinelli .................. . ………………….
Vocal 1 M.Sc. Bernardita Ulloa …………… ………………….
Vocal 2 M.Sc. Cristina Toscano …………… ………………….
v
DEDICATORIA
Este trabajo se lo dedico a mis padres, Sr. Bolívar Sánchez y Sra. Consuelo Bonilla,
quienes me han apoyado en mi carrera profesional, con amor, dedicación y honestidad
me guiaron por el camino del bien. A mi hermano, tíos y primos por sus consejos y apoyo
a lo largo de mi vida.
A mis maestros que con su conocimiento han ayudado a mi formación profesional, a mis
amigos y amigas en quienes encontré palabras de motivación para que este esfuerzo
llegue a feliz término con la culminación de mi carrera.
LEANDRO SÁNCHEZ.
vi
AGRADECIMIENTO
Doy gracias a Dios todo poderoso por darme la dicha de tener con vida a mis padres,
y agradezco a ellos por todo el esfuerzo y sacrificio que realizaron para cumplir mi
propósito.
Mi más sincero agradecimiento a la Universidad Central del Ecuador, Facultad de
Ciencias Médicas, Carrera de Laboratorio Clínico e Histotecnológico y a todas sus dignas
autoridades así como también a toda la planta docente.
Además agradezco a la Msc. Mercedes Tapia, tutora de este proyecto, por su apoyo
y paciencia en cada tutoría, y a quien me ayudo con cada detalle; Ing. Xiomara Cabrera.
Finalmente doy gracias a todas la personas que estuvieron junto a mí a lo largo de mi
formación profesional.
GRACIAS.
vii
ÍNDICE DE CONTENIDO
Pág.
@DERECHOS DE AUTOR .......................................................................................... ii
APROBACIÓN DEL TRABAJO DE TITULACIÓN POR PARTE DEL TUTO .. iii
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL ............................. iv
DEDICATORIA ............................................................................................................. v
AGRADECIMIENTO ................................................................................................... vi
ÍNDICE DE CONTENIDO ......................................................................................... vii
ÍNDICE DE TABLAS .................................................................................................... x
ÍNDICE DE FIGURAS ................................................................................................. xi
ÍNDICE DE GRÁFICOS .............................................................................................. xi
ÍNDICE DE ANEXOS ................................................................................................. xii
RESUMEN ................................................................................................................... xiii
ABSTRACT ................................................................................................................. xiv
INTRODUCCIÓN .......................................................................................................... 1
CAPÍTULO I .................................................................................................................. 2
1. EL PROBLEMA ................................................................................................ 2
1.1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA .......................................................... 2
1.2. FORMULACIÓN DEL PROBLEMA ............................................................... 2
1.3. PREGUNTAS DIRECTRICES ......................................................................... 3
1.4. OBJETIVOS ...................................................................................................... 3
1.4.1. OBJETIVO GENERAL .................................................................................... 3
1.4.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS ............................................................................ 3
1.5. JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA .............................................................. 3
1.6. CRITERIOS DE INCLUSIÓN .......................................................................... 4
1.7. CRITERIOS DE EXCLUSIÓN ......................................................................... 4
viii
CAPÍTULO II ................................................................................................................. 5
2. MARCO TEÓRICO ............................................................................................ 5
2.1 CORRELACIÓN ................................................................................................. 5
2.2 LEUCOCITOS .................................................................................................... 5
2.3 MONOCITOSIS .................................................................................................. 5
2.4 HEMATOPOYESIS ............................................................................................ 5
2.5 LINAJES HEMATOPOYÉTICOS ..................................................................... 6
2.6 MONOPOYESIS Y LINFOPOYESIS ................................................................ 6
2.7 MONOCITOS ..................................................................................................... 7
2.8 LINFOCITOS ...................................................................................................... 8
2.9 CARACTERÍSTICAS DE LOS LINFOCITOS REACTIVOS ........................ 10
2.10 AUTOMATIZACIÓN EN HEMATOLOGÍA .................................................. 11
2.11 CITOMETRÍA DE FLUJO ............................................................................... 11
2.12 COMO FUNCIONA UN CITOMETRO DE FLUJO ....................................... 12
2.13 EL HEMOGRAMA ........................................................................................... 13
2.14 RECUENTO LEUCOCITARIO ....................................................................... 14
2.15 RECUENTO DIFERENCIAL DE LEUCOCITOS POR DISPERSIÓN
ÓPTICA. ........................................................................................................... 15
2.16 RECUENTO DIFERENCIAL DE LEUCOCITOS MANUAL ....................... 15
2.17 ALTERACIONES MORFOLÓGICAS DE LOS LEUCOCITOS Y EN QUE
PATOLOGÍAS SE PRESENTAN. .................................................................. 17
2.17.1 VACUOLIZACIÓN CITOPLASMÁTICA ..................................................... 17
2.17.2 LINFOCITOS REACTIVOS ........................................................................... 18
2.17.3 GIGANTISMO O MACROPOLICITO ........................................................... 18
2.18 FUNDAMENTACIÓN LEGAL ...................................................................... 20
CAPÍTULO III ............................................................................................................. 29
3. METODOLOGÍA ............................................................................................. 29
3.1 DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN ................................................................ 29
3.2 TÉCNICAS E INSTRUMENTOS DE RECOLECCIÓN DE DATOS ............ 29
3.3 ASPECTOS BIOÉTICOS DE LA INVESTIGACIÓN EN SERES
HUMANOS… ................................................................................................... 30
3.4 POBLACIÓN Y MUESTRA ............................................................................ 30
3.5 MÉTODO ESTADÍSTICO ............................................................................... 31
ix
3.6 CUADRO DE VARIABLES ............................................................................ 32
CAPÍTULO IV ............................................................................................................ 34
4. PRESENTACIÓN DE RESULTADOS............................................................ 34
4.1 RESULTADOS ................................................................................................. 34
CAPÍTULO V ............................................................................................................... 39
5. DISCUSIÓN DE RESULTADOS .................................................................... 39
5.1 DISCUSIÓN ...................................................................................................... 39
CAPÍTULO VI .............................................................................................................. 41
6. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ................................................ 41
6.1 CONCLUSIONES ............................................................................................ 41
6.2 RECOMENDACIONES .................................................................................. 42
BIBLIOGRAFÍA .......................................................................................................... 43
ANEXOS. ...................................................................................................................... 45
x
ÍNDICE DE TABLAS
TABLA 1 CARACTERÍSTICAS DE LA MONOPOYESIS. ...................................................... 7
TABLA 2 CARACTERISTICAS DE LA LINFOPOYESIS ....................................................... 8
TABLA 3 CARACTERISTICAS DEL LINFOCITO ................................................................. 9
TABLA 4 CARACTERISTICAS DE LOS LINFOCITOS REACTIVOS ................................ 10
TABLA 5 CARACTERISTICAS ESTRUCTURALES DE LAS CÉLULAS DE ACUERDO
A LA COLORACIÓN DE WRIGHT. ........................................................................................ 17
TABLA 6 MATRIZ DE OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES ................................. 32
TABLA 7 PACIENTES CON MONOCITOSIS QUE SE REALIZARON UNA
BIOMETRÍA HEMÁTICA AUTOMATIZADA, RESPECTO AL GENERO. ......................... 34
TABLA 8 FRECUENCIA DE CASOS CON MONOCITOSIS AUTOMATIZADAS CON
RELACIÓN AL MES DE ESTUDIO. ........................................................................................ 35
TABLA 9 CORRELACIÓN DE MONOCITOSIS OBTENIDAS POR EL MÉTODO
AUTOMATIZADO ANTE EL MÉTODO MANUAL MEDIANTE LA OBSERVACIÓN DE
UN EXTENDIDO DE SANGRE PERIFÉRICA. ...................................................................... 36
TABLA 10 IDENTIFICACIÓN DE ALTERACIONES EN LOS LEUCOCITOS
CAUSANTES DE RESULTADO DE MONOCITOSIS AUTOMATIZADAS Y SU
PORCENTAJE EN FUNCIÓN DEL GÉNERO. ........................................................................ 37
TABLA 11 ALTERACIONES OBSERVADAS CON EL MÉTODO MANUAL
PRESENTES EN LOS RESULTADOS OBTENIDOS POR EL MÉTODO
AUTOMATIZADO. ................................................................................................................... 38
xi
ÍNDICE DE FIGURAS
FIGURA 1: MONOPOYESIS ......................................................................................... 6
FIGURA 2: LINFOPYESIS ............................................................................................ 6
FIGURA 3: DISPERSIÓN ÓPTICA ............................................................................. 15
ÍNDICE DE GRÁFICOS
GRAFICO 1 DISTRIBUCIÓN MONOCITOSIS AUTOMATIZADAS DE
ACUERDO AL RANGO DE EDAD. ........................................................................... 36
xii
ÍNDICE DE ANEXOS
ANEXO 1 PLANTILLA DE RECOLECCIÓN DE DATOS. ....................................... 45
ANEXO 2 CRONOGRAMA DE PRESENTACIÓN DE TESIS................................. 46
ANEXO 3 FOLLETO DE ESPECIFICACIONES XN 1000 ........................................ 47
ANEXO 4 FOLLETO DE ESPECIFICACIONES XN 1000 ........................................ 48
ANEXO 5 APROBACION DEL COMITÉ DE BIOETICA DE LA UNIVERSIDAD
CENTRAL DEL ECUADOR. ........................................................................................ 49
ANEXO 6 COMUNICADO DE AUTORIZACION POR PARTE DEL DIRECTOR
DEL HOSPITAL DE ESPECIALIDADES FUERZAS ARMADAS N°1. .................. 50
xiii
TEMA: ´´Correlación de monocitosis entre el método que utiliza el contador
hematológico automatizado y el método manual en un extendido de sangre periférica en
pacientes de consulta externa del Hospital de Especialidades Fuerzas Armadas N°1 en el
periodo de Enero a Marzo del 2017´´.
Autor. Rómulo Leandro Sánchez Bonilla
Tutora. Msc. Mercedes Elisabeth Tapia Cadena
RESUMEN
Introducción: La automatización cumple un papel fundamental en el campo de la
hematología dentro de los Laboratorios Clínicos en el diagnóstico médico. Gran parte de
la práctica del laboratorio hematológico se relaciona con observaciones que incluyen la
identificación de tipos de células y la interpretación de la composición de las poblaciones
celulares sanguíneas. Se describe la metodología empleada en los instrumentos
automatizados para el estudio hematológico convencional. Objetivo: Evaluar la
correlación de monocitosis entre el método que utiliza el contador hematológico
automatizado y el método manual en un extendido de sangre periférica en el Hospital de
Especialidades de las Fuerzas Armadas N°1 en el periodo de Enero a Marzo del 2017.
Metodología: Se realizó un estudio observacional, no experimental, descriptivo
transversal en 107 pacientes con valores de monocitos elevados, edad y diagnóstico
diferencial; la información de monocitosis falsas positivas se obtuvieron del sistema
DATALAB del Laboratorio Clínico y de los archivos del laboratorio que fueron
confirmados por el método manual de un extendido de sangre periférica. Resultados:
De 107 pacientes con monocitosis automatizada. El 64.49% de los casos corresponden a
linfocitos reactivos. El 24.30% de casos a gigantismo en serie mieloide. El 4.67% de casos
a vacuolas citoplasmáticas en PMN y 6.54% de casos resultaron positivos para
monocitosis confirmadas a través de microscopía óptica mediante un extendido de sangre
periférica. El estudio demuestra que el método de impedancia del contador hematológico
automatizado XN 1000, no es lo suficientemente confiable para determinar el valor exacto
de los monocitos, por lo que cada resultado fuera de los parámetros normales debe ser
confirmado por microscopia óptica.
Palabras claves: Correlación, Monocitosis, Automatización.
xiv
ABSTRACT
SUBJECT: “Correlation of monocytosis between the method used by the automated
hematology counter and the manual method in a peripheral blood smear in outpatients of
the Armed Forces Specialties Hospital No. 1 in the period January – March 20017”.
Author. Rómulo Leandro Sánchez Bonilla
Thesis Supervisor: Msc. Mercedes Elisabeth Tapia Cadena
SUMMARY
Introduction: Automation plays a fundamental role in the field of hematology within the
Clinical Laboratories in medical diagnosis. Much of the practice of the hematological
laboratory is related to observations that include the identification of cell types and the
interpretation of the composition of blood cell populations. The methodology used in the
automated instruments for the conventional hematological study is hereby described.
Objective: To evaluate the correlation of monocytosis between the method used by the
automated hematology counter and the manual method in a peripheral blood smear at the
Armed Forces Specialties Hospital No.1 from January to March 2017. Methodology: An
observational, non-experimental, cross-sectional descriptive study was conducted in 107
patients with elevated monocyte values, age and differential diagnosis; False positive
monocytosis information was obtained from the DATALAB system of the Clinical
Laboratory and from laboratory files that were confirmed by the manual method of a
peripheral blood smear. Results: Of 107 patients with automated monocytosis. 64.49%
of the cases correspond to reactive lymphocutes.24.30% of cases correspond to gigantism
in myeloid series. 4.67%of cases correspond to cytoplasmic vacuoles in PMN and 6.54%
of cases were positive for monocytosis confirmed through optical microscopy by means
of a peripheral blood smear. The study shows that the impedance method of the automated
hematological counter XN 1000 is not reliable enough to determine the exact value of
monocytes, so that each result outside of normal parameters must be confirmed by optical
microscopy.
Keywords: Correlation, Monocytosis, Automation
1
INTRODUCCIÓN
La automatización cumple un papel fundamental en el campo de la hematología
dentro de los Laboratorios Clínicos en el diagnóstico médico. La mayoría de estos
instrumentos son totalmente automatizados, es decir las mediciones se realizan a partir de
sangre entera sin necesidad de que el operador la diluya en forma manual. En efecto, con
el fin de garantizar un manejo seguro, la mayoría de los instrumentos cuenta con
dispositivos que atraviesan la tapa del tubo de colecta de sangre, de modo que el operador
no tiene que quitarla. También es común que los instrumentos mezclen las muestras de
sangre antes de que las mismas sean incluidas en el análisis (1).
Gran parte de la práctica del laboratorio hematológico se relaciona con observaciones
que incluyen la identificación de tipos de células y la interpretación de la composición de
las poblaciones celulares sanguíneas. En el estudio “AUTOMATIZACION EN
HEMATOLOGIA publicado en ABRIL del 2005”, se describe la metodología empleada
en los instrumentos automatizados para el estudio hematológico convencional (1).
En este trabajo de investigación se busca la correlación del método automatizado,
tomando en cuenta los errores expresados en los resultados, presto que los equipos
automatizados no son capaces de disgregar células como blastos y linfocitos reactivos de
los monocitos, los mismos que son llevados a análisis manual frente a un extendido de
sangre periférica tomando en cuenta las características morfológicas de las células, y así
ubicarlas en la denominación correcta.
.
2
CAPÍTULO I
1. EL PROBLEMA
1.1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
La hematología se relaciona en gran parte con la observación que incluye la
identificación de ciertos tipos de células. (1)
En nuestro medio donde los contadores automatizados reportan valores de monocitos
elevados, estos casos son llevados a evaluación por el método de observación
microscópica, donde se debe ser lo suficientemente cuidadoso y reconocer las
características morfológicas de las células observadas, para encasillarlas en su categoría
sean estas; células inmaduras, linfocitos reactivos o también llamados virocitos o
verdaderos monocitos (2)
El Hospital de Especialidad de las Fuerzas Armadas N°1. Ubicado en la Av. Queseras
del Medio 521 y Av. Gran Colombia. Es catalogado como uno de los mejores Hospitales
de referencia de nuestra capital (3).
El laboratorio clínico de esta casa de salud tiene como propósito mejorar la calidad
del trabajo en sus reportes hematológicos, para lo cual se ha visto la necesidad de analizar
el potente desempeño analítico sobre el método de impedancia en el contador
hematológico automatizado, con la finalidad de recabar información útil y sea un aporte
para el personal que labora en esta casa de salud.
1.2. FORMULACIÓN DEL PROBLEMA
¿Existe concordancia entre los resultados de monocitosis reportados por el contador
hematológico automatizado y el extendido de sangre periférica en el Laboratorio Clínico
del Hospital de Especialidades de las Fuerzas Armadas N° 1 en el periodo de Enero a
Marzo del 2017?
3
1.3. PREGUNTAS DIRECTRICES
¿Cuál es la prevalencia de falsas monocitosis reportadas por el contador
hematológico automatizado?
¿Es necesario identificar las alteraciones leucocitarias que producen falsas
monocitosis reportadas en el contador hematológico automatizado?
¿Cuál es la prevalencia de la alteración leucocitaria interferente en las monocitosis
reportadas por el contador hematológico automatizado?
1.4. OBJETIVOS
1.4.1. OBJETIVO GENERAL
Evaluar la correlación de monocitosis entre el método que utiliza contador
hematológico automatizado y el método manual en un extendido de sangre periférica en
el Hospital de Especialidades de las Fuerzas Armadas N°1.
1.4.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS
Determinar la prevalencia de monocitosis reportadas por el contador
hematológico automatizado del Hospital de Especialidades de las Fuerzas
Armadas N°1.
Identificar las alteraciones leucocitarias que producen falsas monocitosis
reportadas por el contador hematológico automatizado del Hospital de
Especialidades de las Fuerzas Armadas N°1.
Determinar la prevalencia de la alteración leucocitaria interferente en las
monocitosis reportadas por el contador hematológico automatizado en el Hospital
de Especialidades de las Fuerzas Armadas N°1.
1.5. JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA
A nivel mundial la automatización en hematología ha ayudado con la optimización
del trabajo en el laboratorio clínico (1), sin embargo existen casos donde el contador
4
automatizado cuya metodología de trabajo se basa en el principio de impedancia no es lo
suficientemente sensible y específica para disgregar las células inmaduras, linfocitos
reactivos de los monocitos.
De igual manera sucede en nuestro medio donde los contadores automatizados
reportan valores de monocitos elevados y estos casos son llevados a evaluación por el
método de observación microscópica para lo cual se recomienda evaluar la muestra de
manera manual mediante un extendido de sangre periférica donde se debe ser lo
suficientemente cuidadoso y reconocer las características morfológicas de las células
observadas para encasillarles en su categoría sean estas; células inmaduras, linfocitos
reactivos o también llamados virocitos o verdaderos monocitos (2).
Estudios realizados entre noviembre y marzo de 1974 en el área de pediatría en un
hospital de Chile, donde el reporte de monocitos en el hemograma es mayor al 15%,
fueron revisados mediante la observación del frotis de sangre periférica catalogando
como monocitos solo a células que por su tamaño, configuración nuclear y citoplasmática
no ofrecían ninguna duda al respecto. Mientras que todas las células de aspecto
monocitoide se englobaron en la denominación de linfocitos atípicos (2).
1.6. CRITERIOS DE INCLUSIÓN
Se incluirá todos los resultados de pacientes que en sus reportes haya un número elevado
de monocitos (monocitosis) reportados de manera automatizada.
1.7. CRITERIOS DE EXCLUSIÓN
Se excluirá a todos los resultados de los pacientes que en el recuento de monocitos se
encuentre dentro de los parámetros normales.
5
CAPÍTULO II
2. MARCO TEÓRICO
2.1 CORRELACIÓN
Desde el punto de vista la probabilidad y estadística es un indicador de la fuerza y
la relación entre dos variables estadísticas, Se considera que dos variables cuantitativas
están correlacionadas cuando los valores de una de ellas varían sistemáticamente con
respecto a los valores homónimos de la otra. (4)
2.2 LEUCOCITOS
Conocidos como glóbulos blancos, son células que presentan núcleos, citoplasma
y membrana celular., en condiciones normales se encuentran de 6.000 mil a 10.000 mil
por milímetro cubico de sangre.
Los leucocitos están clasificados como granulocitos y agranulocitos; en este estudio solo
se tomará en cuenta a los agranulocitos; Linfocitos y monocitos que son las células
implicadas en nuestro estudio. (5)
2.3 MONOCITOSIS
Se habla de monocitosis cuando el recuento de monocitos en sangre periférica está
por arriba de 8%, considerando los valores de referencia entre 0-8%. Los monocitos
son células defensivas y se encuentran en la sangre de forma transitoria ya que migran
hacia los tejidos, donde se transforman en macrófago su cifra se encuentra aumentada
secundariamente por diversas infecciones crónicas y procesos inflamatorios (6).
2.4 HEMATOPOYESIS
La hematopoyesis es el proceso de desarrollo y maduración de los elementos formes
de la sangre a partir de un precursor indiferenciado el cual es conocido como célula madre
hematopoyética pluripotencial.
6
2.5 LINAJES HEMATOPOYÉTICOS
2.1.1. Mielopoyesis.- A partir de células madre pluripotentes, se producen las
células progenitoras que luego de varios pasos se van comprometiendo con
la serie mieloide: CFU-GM (unidades formadoras de colonias monocitoides
y granulocíticas) y luego las CFU-G (formadoras de colonias granulocitos,
eosinófilos y basófilos) (7).
2.1.2. Linfopoyesis.- Da origen a linfocito B, linfocito T y células NK.
2.6 MONOPOYESIS Y LINFOPOYESIS
2.1.3. MONOPOYESIS
FIGURA 1: Monopoyesis
Fuente: http://gfalinearoja.blogspot.com/2015/09/serie-blanca.html
2.1.1. LINFOPOYESIS
FIGURA 2: Linfopyesis
Fuente: http://gf alinearoja.blogspot.com/2015/09/serie-blanca.html.
7
2.7 MONOCITOS
Los monocitos tienden a ser células sanguíneas circulantes de mayor tamaño de entre 15 µm a 20 µm de diámetro. (5)
TABLA 1 CARACTERÍSTICAS DE LA MONOPOYESIS.
CÉLULA RELACIÓN
N:C NÚCLEO CROMATINA NUCLÉOLOS CITOPLASMA TAMAÑO
MONOBLASTOS
Alta Redondeado Laxa >5
Basófilo adquiriendo
una tonalidad azul
plomiza
15 – 25
µm
PROMONOCITOS
Alta Irregular, con pliegues e
indentaciones
Poco más
condenada que la
de su precursor
Uno o dos
intensamente
basófilo por su gran
riqueza en poli-
rribosomas
12 -20 µm
MONOCITOS
Moderada
Posición central, es
voluminoso y adopta
formas abigarradas en
herradura, indentado o
doblado
Densa y con
aspecto como
peinada en finas
franjas
cromatínicas
Desprovistos de
nucléolos
Es amplio con
ocasionales
mamelones
periféricos, de color
azul plomizo
12 – 20
µm
Fuente: Shirlyn B M. PHD & (Rodak. Hematología, Fundamento y Aplicaciones Clínicas.)
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla.
8
2.8 LINFOCITOS
Los linfocitos son pequeños y redondos de entre 6 y 15 µm de diámetro.
TABLA 2 CARACTERÍSTICAS DE LA LINFOPOYESIS
Fuente: Rodak. Hematología, Fundamento y Aplicaciones Clínicas. 2nd ed. Octavio Giovanello JO, editor. Buenos Aires: Editorial Medica Panamericana; 2015.
Elaborador: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla.
CÉLULA RELACIÓN
N:C
NÚCLEO CROMATINA NUCLÉOLOS CITOPLASMA TAMAÑO
LINFOBLASTO
Alta Redondo a
ovalado Laxa uno o más
Escaso y
presenta
basofilia
10-18µm
PROLINFOCITO
Alta
Redondo a
ovalado
Levemente
condensada
uno o mas
Basófilo sin
granulaciones
11-15 µm
9
TABLA 3 CARACTERÍSTICAS DEL LINFOCITO
Fuente: Rodak. Hematología, Fundamento y Aplicaciones Clínicas. 2nd ed. Octavio Giovanello JO, editor. Buenos Aires: Editorial Medica Panamericana; 2015.
Elaborador: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla.
LINFOCITO
Linfocito
pequeño: Relación
N: C similar.
Linfocito
pequeño:
núcleo
redondo u
oval.
Linfocito
pequeño:
cromatina en
bloque.
Nucléolos:
Ninguno
Linfocito
pequeño:
citoplasma
escaso.
Tamaño
pequeño:
7-10 µm.
Linfocito
mediano: Relación
N: C similar.
Linfocito
mediano:
núcleo
redondo u
oval
Nucléolos:
Ninguno
Linfocito
mediano:
citoplasma
posee gránulos.
Tamaño
mediano:
11 a 14
µm
Linfocito grande:
Relación N: C
similar.
Linfocito
grande:
Redondo u
oval
Linfocito
grande:
cromatina en
bloque un poco
más laxa.
Nucléolos:
Ninguno
Linfocito
grande: color
azul oscuro.
Tamaño
grande:
15 µm o
más.
10
2.9 CARACTERÍSTICAS DE LOS LINFOCITOS REACTIVOS
Los linfocitos reactivos son linfocitos T (en su mayoría CD-8), y se caracterizan por su mayor tamaño (< 30µm) por consecuencia de
una estimulación antigénica, citoplasma pálido, abundante, a veces vacuolar, y núcleo de forma irregular (monocitoide) (8)
TABLA 4 CARACTERÍSTICAS DE LOS LINFOCITOS REACTIVOS
FORMA VARIADA
NÚCLEO CITOPLASMA GRÁNULOS MEMBRANA
Llega a ser redondo,
pero muchas veces
es alargado, estirado
o irregular.
Aumento en basofilia difusa o
localizada del citoplasma y a
veces hay vacuolas presentes.
Azurófilos
suelen estar
aumentados en
número.
Aspecto festoneado por
los eritrocitos que están
circulando a su
alrededor.
Fuente: García-Callejo FJ BMCEG. Aproximación no serológica para el diagnóstico de mononucleosis infecciosa mediante la orientación clínica, analítica y citológica.
2013. & Shirlyn B M. PHD
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla.
11
2.10 AUTOMATIZACIÓN EN HEMATOLOGÍA
Para permitir que el recuento celular fuera automatizado, tuvieron que diseñarse
métodos de dilución de la sangre e ingresar cantidades relativamente pequeñas de células
dentro y fuera de una zona conocida como zona sensora. Así, las células podían ser
contadas con exactitud a medida que pasaban a través de esa zona sensible, siempre y
cuando la misma fuera lo suficientemente pequeña como para hacer factible el recuento.
Los primeros contadores hematológicos fueron semiautomatizados; esto era así
porque la preparación de una dilución adecuada era una operación manual y el
instrumento entonces, aspiraba la dilución ya preparada. Sin embargo, a fines de la década
del 60 se dispuso de instrumentos totalmente automatizados, que aspiraban muestras de
sangre entera y llevaban a cabo los pasos necesarios para diluir y aislar las células a ser
contadas. Nos ocuparemos en el presente trabajo sólo de los instrumentos totalmente
automatizados. Los instrumentos semiautomatizados, si bien se fabrican todavía, se
utilizan casi con exclusividad en laboratorios pequeños porque la preparación de
diluciones manuales a partir de una gran cantidad de muestras sanguíneas, demanda
mucho tiempo además de ser poco precisa (1).
Los primeros contadores fueron descriptos por Coulter y Crosland-Taylor, quienes
adoptaron diferentes enfoques para limitar el volumen en la zona sensora y realizar el
recuento (1).
2.11 CITOMETRÍA DE FLUJO
Es un método analítico capaz de especificar ciertas propiedades físicas y químicas
de las células que se encuentran en un medio líquido el cual produce una señal individual
al interferir con una fuente de luz (9).
La capacidad más importante de un citómetro de flujo es la característica de medir
varios parámetros celulares, tales como el tamaño, forma, complejidad y cualquier
componente celular que pueda ser marcada con fluorocromo (9).
12
2.12 COMO FUNCIONA UN CITOMETRO DE FLUJO
Se encarga de la medición de las propiedades de las células en suspensión, también
de la separación de las células tomando en cuenta las propiedades medidas. La detección
de las células ocurre cuando un haz de luz atraviesa una célula y sufre una dispersión la
cual va a ser captada por un foto detector (1).
Además del detector de luz situado frente al haz laser, existe otro grupo óptico, el
más importante, que detecta la luz dispersada por las células y que se coloca formando
un ángulo de 90º con el haz laser. Esta luz es descompuesta, mediante los filtros
apropiados para poder estudiar tanto la dispersión de luz de la misma longitud de onda
del láser como la emitida por los fluorocromos. La mayor o menor dispersión de la luz y
por tanto la mayor o menor detección de luz en éste detector, será proporcional a la
rugosidad de la superficie celular y a las estructuras y organelas celulares (1).
¿Que son los fluorocromos? son productos químicos que al ser estimulados con
fotones por una longitud de onda comprendida entre determinados rangos de excitación,
emiten a su vez otro fotón de longitud de onda mayor. El prototipo es la fluoresceína que
al ser estimulada con luz ultravioleta (no visible) emite luz de color verde (visible) aunque
existen muchos otros como picoeritrina, rodamina, rojo de Texas, entre otros. (1)
2.1.2. IMPEDANCIA
También conocida como principio Coulter, en honor al ingeniero Wallece Henry Coulter
quien lo describió en 1956, no sólo revolucionó la hematología sino que inició la era de
los contadores automatizados de hematología, con excelente eficiencia analítica
(precisión y exactitud), y ha aportado nuevos parámetros de utilidad clínica (10).
13
2.1.3. PRINCIPIO DE IMPEDANCIA
En el conteo de células de la sangre se basa en el aumento de la resistencia
producida cuando una célula sanguínea con baja conductividad pasa a través de un campo
eléctrico. El número de intermitencias indica la cifra de células sanguíneas y la amplitud
de cada intermitencia es proporcional a volumen de las células (7). La dispersión óptica
de la luz en el conteo de células sanguíneas se basa en mediciones de dispersión de luz
obtenidas en una sola célula sanguínea que pasa a través de un haz de luz. Las células
sanguíneas crean una dispersión hacia adelante y una lateral, las cuales son detectadas
mediante foto detectores. El grado de dispersión hacia adelante nos ayuda a medir el
tamaño de la célula y el grado de dispersión lateral es una medición de la complejidad o
granularidad de la célula (7).
Los contadores hematológicos automatizados también presentan limitaciones para
diferenciar la presencia en la sangre periférica de células propias de patologías
hematológicas como: blastos, células inmaduras, prolinfocitos, linfocitos atípicos, células
velludas, células plasmáticas, células de Sezary y otras, que deben ser reportadas de
inmediato por el laboratorio al médico tratante (11).
Estudios realizados en niños hospitalizados que tuvieran más del 15% de monocitos
en el hemograma. Se les realizó la evaluación del extendido de sangre periférica donde
se catalogó como monocitos solo a las células sanguíneas que por su tamaño y
configuración nuclear y citoplasmática no ofrecían ninguna duda al respecto, todas las
células de aspecto monocitoide se englobaron en la categoría de ‘’linfocitos atípicos’’
virocitos. (2)
2.13 EL HEMOGRAMA
El hemograma se define como el análisis cuantitativo y cualitativo de los componentes
celulares de la sangre periférica. Las diferencias y las variaciones en la metodología
utilizada definen el tipo de hemograma, el número de parámetros o datos aportados y los
coeficientes de variación, como índice de precisión y de exactitud, de cada una de las
14
medidas. La utilidad clínica de la prueba está en relación directa con la calidad analítica
y el número de parámetros que lo componen, esto es con la exactitud y la precisión de los
resultados (10).
Actualmente se han incluido toda una generación de hemogramas, donde se incluye los
menos complejos con pocos parámetros que se los puede obtener manualmente, hasta los
más sofisticados, que cuentan con una gran variedad de parámetros obtenidos de forma
automatizada (12).
Tomando en cuenta la metodología empleada, sea esta manual o automatizada para la
realización de la biometría hemática y el número de parámetros que emplea. La Sociedad
Colombiana de Patología Clínica, sugiere 6 tipos de hemogramas que son reconocidos
por el Colegio Americano de Patólogos y la Asociación Médica Americana (12).
2.14 RECUENTO LEUCOCITARIO
Recuento automatizado. El recuento leucocitario a partir del método electrónico se
obtiene cuando la muestra de sangre anticoagulada y debidamente mezclada, es aspirada
por el equipo y distribuida en dos compartimentos denominados baños, en donde la sangre
es diluida en proporciones diferentes de acuerdo con el fabricante y la tecnología
utilizada. En términos generales, en el primer baño se prepara la muestra para determinar
el recuento de eritrocitos, el volumen corpuscular medio, el recuento de plaquetas y el
volumen medio plaquetario; en el segundo baño se prepara la muestra para determinar el
recuento total y diferencial de leucocitos y la hemoglobina (13).
En el baño de leucocitos los eritrocitos son hemolizados mediante la utilización de
sustancias ácidas que dejan libre los leucocitos y la hemoglobina. El recuento total de
leucocitos es determinado, en la mayoría de los equipos de la misma manera que los
eritrocitos, mediante el principio de la impedancia eléctrica (13)
15
2.15 RECUENTO DIFERENCIAL DE LEUCOCITOS POR DISPERSIÓN
ÓPTICA
Mediante este método es posible realizar un análisis tridimensional de las células,
tomando en cuenta las características de volumen, conductibilidad y de dispersión de la
luz permitiendo así una clasificación de cinco grupos celulares. Neutrófilos, linfocitos,
monocitos, eosinófilos y basófilos. (13).
Con los datos obtenidos el equipo realiza una gráfica tridimensional en forma de
cubo. Pero el método más empleado por las casas comerciales consiste en graficar el
volumen en el eje Y del plano cartesiano y la dispersión de luz láser en el eje X (13).
La interpretación del dispersograma es sencilla, se ubican las cinco poblaciones
celulares con un grado total de coincidencia de los tres parámetros, por lo tanto, el grado
de confiabilidad es grande. Las células inmaduras, las anormales y las consideradas como
no blancos, se ubican en zonas ya establecidas como se puede observar a continuación
(13).
FIGURA 3: Dispersión Óptica
Fuente: Cárdenas VEG. EL LEUCOGRAMA. Aprende en Linea. UNIVERSIDAD DE
ANTIOQUIA. 2005 Noviembre.
2.16 RECUENTO DIFERENCIAL DE LEUCOCITOS MANUAL
2.1.4. FROTIS DE SANGRE PERIFÉRICA
El estudio e interpretación del frotis de sangre periférica como parte del
hemograma representa la extensión morfológica de los elementos celulares de la sangre.
16
Constituye un examen rutinario que cuando es debidamente interpretado por el
observador tiene una enorme utilidad diagnóstica para el médico y puede considerarse el
paso más importante (14).
Es necesario conocer el recuento diferencial manual de leucocitos, realizando un
extendido de sangre periférica coloreado con Wright, también es conveniente evaluar la
eventual presencia de células atípicas, como blastos, células inmaduras de la serie
mieloide, eritrocitos nucleados (reticulocitos) y “linfocitos atípicos” reactivos (13).
Para el recuento manual observamos las células teñidas con la coloración de
Wright compuesto por eosina y azul de metileno. Se trata de un colorante seco que se
utilizado para la preparación de una solución de colorante en material de examen
hematológico, medula ósea y citológico. (15)
Su principio se basa en la interacción molecular entre el colorante Eosina A y un
complejo Azur B-ADN. Los dos colorantes forman un complejo Eosina A - Azur B-ADN,
dependiendo la intensidad de la tinción resultante del contenido de Azur B y de la relación
de Azur B respecto a la Eosina A. El resultado de la tinción puede ser influenciado además
por factores como la fijación. (15).
17
TABLA 5 CARACTERÍSTICAS ESTRUCTURALES DE LAS CÉLULAS DE
ACUERDO A LA COLORACIÓN DE WRIGHT.
CÉLULAS NÚCLEOS CITOPLASMA
Linfocitos
Fundamentos de microscopia óptica
Violeta azulado
Azulado
Monocitos
Violeta azulado
Azulado
Fuente: KGaA M. Eosina azul de metileno.
Elaborado: Rómulo Leandro Sanchez Bonilla.
Se encasilla las células según sus características y se lleva la contabilidad por medio de
un piano hematológico.
2.17 ALTERACIONES MORFOLÓGICAS DE LOS LEUCOCITOS Y EN QUE
PATOLOGÍAS SE PRESENTAN.
2.17.1 VACUOLIZACIÓN CITOPLASMÁTICA
Las vacuolas de los neutrófilos se pueden presentar como resultado de la fusión
de los gránulos específicos con vacuolas fagocíticas y usualmente se observan en
pacientes con infecciones; también se han observado en pacientes con intoxicación con
etanol y en los pacientes con la enfermedad de Jordan, en donde hay vacuolas de grasa
(16).También se acumula en estas células material relacionado con triglicéridos y cadenas
largas de lípidos en el síndrome de Dorfman-Chanarin y en pacientes con mielocatesis
(16).
La vacuolización familiar de los leucocitos o enfermedad de Jordan es una
anomalía extremadamente rara, no informada en el medio, caracterizada por la presencia
18
de 3 a 10 vacuolas, de 2 a 5 µm, en el citoplasma de los granulocitos, los monocitos y
ocasionalmente de los linfocitos y los plasmocitos (16) .
Las vacuolas de esta anomalía se deben distinguir de las que se presentan en pacientes
con infecciones graves, hepatitis tóxica y cetoacidosis diabética. Se ha observado que los
pacientes con la anomalía de Jordan pueden desarrollar distrofia muscular progresiva
(16).
2.17.2 LINFOCITOS REACTIVOS
Son las manifestaciones morfológicas más frecuentes de estas células. Los
linfocitos responden a las enfermedades virales y a diversos estímulos inmunológicos con
aumento en el número de células y en la actividad. Los linfocitos B pueden transformarse
a células plasmáticas y formas plasmocitoides, también denominadas células de Turk o
linfocitos reactivos.Algunas de estas células pueden mostrar gran producción de
inmunoglobulinas, dando las células espumosas o células Mott o la formación de cristales
de inmunoglobulinas.Tanto los linfocitos T como los linfocitos B se pueden transformar
a inmunoblastos y formas intermedias, dando origen a las células que los morfólogos
conocen como linfocitos o mononucleares atípicos, lo mismo que en pacientes con
toxoplasmosis activa, infección por citomegalovirus y mononucleosis infecciosa.
Además, algunas “agresiones” graves a los linfocitos, como la radiación, pueden
expresarse con linfocitos binucleados (16).
2.17.3 GIGANTISMO O MACROPOLICITO
El macropolicito o pleocariocito se define como un polimorfonuclear neutrófilo que
tiene un tamaño aproximado del doble del polimorfonuclear neutrófilo normal, esto es,
con un diámetro de 15 a 25 µm y núcleo hipersegmentado, con más de cinco lobulaciones.
Como ya se ha expresado, los macropolicitos característicamente se observan en
pacientes con anemia perniciosa, pero también se pueden observar en individuos
19
normales que los heredan en forma autosómica dominante y en pacientes con síndrome
mielodisplásico con síndrome de DiGeorge y tras la administración de G-CSF y
esteroides, por ejemplo en el tratamiento de la púrpura trombocitopénica idiopática.
También se pueden observar en pacientes con anemia ferropénica, especialmente
cuando hay deficiencia de otras vitaminas, en particular las relacionadas con el complejo
B y el ácido fólico. La hipersegmentación de los neutrófilos también puede obedecer a un
desorden hereditario autosómico dominante y en la mielocatesis, un trastorno hereditario
caracterizado por neutropenia y alteraciones en las lobulaciones de los
polimorfonucleares neutrófilos. Algunos macropolicitos pueden ser binucleados,
usualmente gigantes y tetraploides, como sucede en pacientes infectados por el virus de
la inmunodeficiencia humana (16).
20
2.18 FUNDAMENTACIÓN LEGAL
En la Constitución de la República del Ecuador se encuentran artículos relacionados
con la salud, que respaldan y favorecen a los ciudadanos en el ámbito de la salud pública.
Así:
CONSTITUCIÓN DE LA REPÚBLICA DEL ECUADOR
TITULO II -DERECHOS
Capítulo primero-Principios de la aplicación de los derechos. Sección séptima-Salud
Art. 32.- La salud es un derecho que garantiza el Estado, cuya realización se vincula al
ejercicio de otros derechos, entre ellos el derecho al agua, la alimentación, la educación,
la cultura física, el trabajo, la seguridad social, los ambientes sanos y otros que sustentan
el buen vivir. El estado garantizará este derecho mediante políticas económicas sociales,
culturales, educativas y ambientales; y el acceso permanente, oportuno y sin exclusión a
programas, acciones y servicios de promoción y atención integral de salud, salud sexual
y salud reproductiva. La prestación de servicios de salud se regirá por los principios de
equidad, universalidad, solidaridad, interculturalidad, calidad, eficiencia, eficacia,
precaución y bioética, con enfoque de género y generacional.
El Ecuador por medio de sus mandatarios, instituciones de salud, garantiza el
derecho a la salud de todos los ciudadanos, al igual que los demás derechos que se
encuentran establecidos en la Constitución de la República del Ecuador.
40 Capítulo tercero- Derechos de las personas y grupos de atención prioritaria Sección
séptima- Personas con enfermedades catastróficas.
Art. 50.- El estado garantizará a toda persona que sufra de enfermedades catastróficas o
de alta complejidad el derecho a la atención especializada y gratuita en todos los niveles,
de manera oportuna y preferente.
21
LEY ORGÁNICA REFORMATORIA A LA LEY ORGÁNICA DE SALUD, LEY
67, PARA INCLUIR EL TRATAMIENTO DE LAS ENFERMEDADES RARAS O
HUÉRFANAS Y CATASTRÓFICAS.
CAPITULO III-A
DE LAS ENFERMEDADES CATASTRÓFICAS Y RARAS O HUÉRFANAS
Artículo… (1).- El Estado ecuatoriano reconocerá de interés nacional a las enfermedades
catastróficas y raras o huérfanas; y, a través de la autoridad sanitaria nacional,
implementará las acciones necesarias para la atención en salud de las y los enfermos que
las padezcan, con el fin de mejorar su calidad y expectativa de vida, bajo los principios
de disponibilidad, accesibilidad, calidad y calidez; y, estándares de calidad, en la
promoción, prevención, diagnóstico, tratamiento, rehabilitación, habilitación y curación.
Las personas que sufran estas enfermedades serán consideradas en condiciones de doble
vulnerabilidad.
Artículo… (2).- Son obligaciones de la autoridad sanitaria nacional:
a) Emitir protocolos para la atención de estas enfermedades, con la participación de las
sociedades científicas, las mismas que establecerán las directrices, criterios y
procedimientos de diagnóstico y tratamiento de las y los pacientes que padezcan
enfermedades raras o huérfanas;
b) Promover, coordinar y desarrollar, conjuntamente con organismos especializados
nacionales e internacionales públicos y privados, investigaciones para el estudio de las
enfermedades raras o huérfanas y catastróficas con la finalidad de favorecer diagnósticos
y tratamientos tempranos en pro de una mejor calidad y expectativa de vida; En aquellos
casos en los que al Sistema Nacional de Salud le resulte imposible emitir el diagnóstico
definitivo de una enfermedad, la autoridad sanitaria nacional implementará todas las
acciones para que estos casos sean investigados en instituciones internacionales de la
salud con la finalidad de obtener el diagnóstico y tratamiento correspondiente.
c) Controlar y regular, en coordinación con los organismos competentes, a las compañías
de seguros y prestadoras de servicios de medicina pre pagada en lo referente a la oferta
de coberturas para enfermedades consideradas raras o huérfanas. Las compañías de
22
seguros y las empresas privadas de salud y medicina pre pagada, en el marco de las
políticas definidas por la autoridad sanitaria nacional y de la presente Ley, estarán
obligadas a cumplir las coberturas comprometidas en los respectivos contratos de seguro
sin que puedan negar dicha cobertura a pretexto del aparecimiento posterior de
enfermedades consideradas catastróficas y raras o huérfanas.
d) Controlar que los prestadores de servicios de salud mantengan la búsqueda activa de
casos relacionados con las enfermedades raras o huérfanas y catastróficas, de
conformidad con el Sistema de Vigilancia Epidemiológica que incluya el registro de los
pacientes que sufran este tipo de enfermedades.
e) Implementar las medidas necesarias que faciliten y permitan la adquisición de
medicamentos e insumos especiales para el cuidado de enfermedades consideradas raras
o huérfanas en forma oportuna, permanente y gratuita para la atención de las personas
que padecen enfermedades raras o huérfanas.
f) Establecer, en forma conjunta con las organizaciones de pacientes y científicas,
acciones para divulgar y promover el conocimiento de las enfermedades raras y
huérfanas.
Artículo… (3).- La autoridad sanitaria nacional creará e implementará un sistema de
registro e información de pacientes que padezcan enfermedades raras o huérfanas y
requerirá los reportes que en forma obligatoria deberán remitir todas las instituciones
prestadoras de servicios de salud de los sectores públicos y privados respecto de los
pacientes que sean diagnosticados o aquellos en los cuales no se pudiere emitir el
diagnóstico definitivo. El organismo encargado de la política migratoria y las
instituciones diplomáticas coordinarán con la autoridad sanitaria nacional y con el
ministerio encargado de la inclusión económica y social, la implementación del registro
de personas residentes en el extranjero que padezcan enfermedades raras o huérfanas, a
fin de brindar atención oportuna en el país de residencia y de ser el caso en el territorio
nacional.
Artículo (4).- La autoridad sanitaria nacional promoverá acciones destinadas a la
capacitación, a nivel de pregrado, postgrado y la educación permanente, para todo el
personal y profesionales de la salud, a fin de divulgar el conocimiento científico de las
enfermedades raras o huérfanas.
23
Artículo… (5).- La Autoridad Sanitaria nacional regulará la producción e importación de
medicamentos e insumos especiales para tratar enfermedades consideradas raras o
huérfanas; y, procurará a través de la normativa que expida para el efecto, la provisión
suficiente y necesaria de tales medicamentos para los pacientes según sus necesidades.
La Autoridad Sanitaria nacional promoverá los mecanismos que permitan a las y los
pacientes que sufran estas enfermedades, el acceso a los medicamentos e insumos
especiales para su tratamiento." Art. 4.- En el artículo 259, luego de la definición de:
“Donante”, agréguese las siguientes definiciones: “Enfermedad Catastrófica.- Es aquella
que cumple con las siguientes características:
a) Que implique un alto riesgo para la vida de la persona
b) Que sea una enfermedad crónica y por lo tanto que su atención no sea emergente;
c) Que su tratamiento pueda ser programado o que el valor promedio de su tratamiento
mensual sea mayor al determinado en el Acuerdo Ministerial de la Autoridad Sanitaria.”
Enfermedades Raras y Huérfanas: Las enfermedades raras o huérfanas, incluidas las de
origen genético, son aquellas enfermedades potencialmente mortales, o debilitantes a
largo plazo, de baja prevalencia y de alta complejidad.
REGISTRO OFICIAL N0. 625 PUBLICADO EL 24 DE ENERO DE 2012
En el registro oficial N0. 625 publicado el 24 de enero de 2012, se publicó la Ley Orgánica
Reformatoria a la ley Orgánica de Salud, Ley 67, para incluir el tratamiento de la
Enfermedades Raras o Huérfanas y Catastróficas26; en uno de sus acuerdos:
Art. 3.- Publíquese el listado de entidades enfermedades catastróficas Forma parte de este
listado Todo tipo de Cáncer.
24
LEY ORGÁNICA DE EDUCACIÓN SUPERIOR (LOES)
CAPÍTULO III
FINES DE LA EDUCACIÓN SUPERIOR
Art. 3.- Fines de la Educación Superior.-La educación superior de carácter humanista,
cultural y científica constituye un derecho de las personas y un bien público social que,
de conformidad con la Constitución de la República, responderá al interés público y no
estará al servicio de intereses individuales y corporativos.
Art. 4.- Derecho a la Educación Superior.- El derecho a la educación superior consiste en
el ejercicio efectivo de la igualdad de oportunidades, en función de los méritos
respectivos, a fin de acceder a una formación académica y profesional con producción de
conocimiento pertinente y de excelencia.
Art. 8.- Serán Fines de la Educación Superior.- La educación superior tendrá los
siguientes fines:
a) Aportar al desarrollo del pensamiento universal, al despliegue de la producción
científica y a la promoción de las transferencias e innovaciones tecnológicas;
b) Fortalecer en las y los estudiantes un espíritu reflexivo orientado al logro de la
autonomía personal, en un marco de libertad de pensamiento y de pluralismo ideológico;
c) Contribuir al conocimiento, preservación y enriquecimiento de los saberes ancestrales
y de la cultura nacional;
d) Formar académicos y profesionales responsables, con conciencia ética y solidaria,
capaces de contribuir al desarrollo de las instituciones de la República, a la vigencia del
orden democrático, y a estimular la participación social;
e) Aportar con el cumplimiento de los objetivos del régimen de desarrollo previsto en la
Constitución y en el Plan Nacional de Desarrollo;
f) Fomentar y ejecutar programas de investigación de carácter científico, tecnológico y
pedagógico que coadyuven al mejoramiento y protección del ambiente y promuevan el
desarrollo sustentable nacional;
g) Constituir espacios para el fortalecimiento del Estado Constitucional, soberano,
independiente, unitario, intercultural, plurinacional y laico
25
h) Contribuir en el desarrollo local y nacional de manera permanente, a través del trabajo
comunitario o extensión universitaria.
Art. 9.- La educación superior y el buen vivir.- La educación superior es condición
indispensable para la construcción del derecho del buen vivir, en el marco de la
interculturalidad, del respeto a la diversidad y la convivencia armónica con la naturaleza.
Art. 13.- Funciones del Sistema de Educación Superior.- Son funciones del Sistema de
Educación Superior:
c) Formar académicos, científicos y profesionales responsables, éticos y solidarios,
comprometidos con la sociedad, debidamente preparados para que sean capaces de
generar y aplicar sus conocimientos y métodos científicos, así como la creación y
promoción cultural y artística.
m) Promover el respeto de los derechos de la naturaleza, la preservación de un ambiente
sano y una educación y cultura ecológica.
26
ESTATUTO DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
Art 5. Fines. Son fines de la Universidad Central del Ecuador
1. Crear y recrea conocimiento, ciencia, tecnología, arte y cultura, como aportes a la
construcción de la base científico-tecnológica nacional y de la sociedad del conocimiento.
2. Promover, fortalecer y difundir la investigación científica, tecnológica, artística, y
cultural.
3. Formar profesionales humanistas, con profundo sentido de solidaridad y de alta calidad
científica, que les permita conocer la realidad transformarla y comprometidos con el
desarrollo soberano del país.
4. Contribuir al desarrollo del Estado unitario plurinacional, mediante la presentación de
soluciones a los problemas del país, con miras a las creación de una sociedad justa, crítica,
incluyente, solidaria y equitativa.
5. Recuperar, desarrollar fortalecer y difundir la pluriculturalidad nacional y de la
humanidad. 6. Desarrollar propuestas para la integración cultural, universitaria,
económica, social y política, de Latinoamérica y del mundo.
Art. 6. Objetivos. Son objetivos de la Universidad Central del Ecuador
1. Crear, promover y difundir el desarrollo del conocimiento, la ciencia, la filosofía el arte
y la tecnología.
2. Formar y capacitar profesionales, investigadores y técnicos en los niveles de pregrado
y posgrado; para que sean competentes, éticos, humanistas, con la calidad académica, de
acuerdo con las necesidades del país y del mundo.
3. Investigar en todas las disciplinas los problemas fundamentales de la sociedad, y
proponer alternativas que superen las inequidades, permitiendo mejorar la calidad de vida
de la población.
4. Promover y ejecutar programas y proyectos de extensión universitaria y de vinculación
con la sociedad, de preferencia con los sectores menos favorecidos.
5. Liderar la defensa de la biodiversidad y la multiculturalidad como elementos esenciales
de nuestro patrimonio e identidad.
27
6. Lograr una moderna y eficaz estructura administrativa para la gestión académica.
7. Establecer y desarrollar vínculos de colaboración e intercambio con universidades e
instituciones científicas del país y del mundo.
8. Producir bienes y prestar servicios que contribuyan al fortalecimiento científico,
tecnológico y a la autogestión universitaria.
9. Promover la creación de un pensamiento crítico.
RÉGIMEN DEL REGLAMENTO ACADÉMICO
Art. 21.-Unidades de organización curricular en las carreras técnicas y tecnológicas
superiores, y de grado.-Estas unidades son:
3. Unidad de titulación Es la unidad curricular que incluye las asignaturas, cursos o sus
equivalentes, que permiten la validación académica de los conocimientos, habilidades y
desempeños adquiridos en la carrera para la resolución de problemas, dilemas o desafíos
de una profesión. Su resultado final fundamental es:
a) el desarrollo de un trabajo de titulación, basado en procesos de investigación e
intervención. El trabajo de titulación el resultado investigativo, académico o artístico, en
el cual el estudiante demuestra el manejo integral de los conocimientos adquiridos a lo
largo de su formación profesional; el resultado de su evaluación será registrado cuando
se haya completado la totalidad de horas establecidas en el currículo de la carrera,
incluidas la unidad de titulación y las prácticas pre profesionales.
En la educación técnica superior o sus equivalente, tecnológica superior o sus
equivalentes, y en la educación superior de grado. Los trabajos de titulación serán
evaluados individualmente. Estos trabajos podrán desarrollarse con metodologías
multiprofesionales o multidisciplinarias. Para su elaboración se podrán conformar
equipos de dos estudiantes de una misma carrera. Estos equipos podrán integrar a un
máximo de tres estudiantes, cuando pertenezcan a diversas carreras de una misma o de
diferentes IES. Estos casos el trabajo de titulación se desarrolla por más de un 50
estudiante y su evaluación se realizará de manera individual cuando el estudiante haya
concluido con todos los requisitos académicos para su titulación. Independientemente de
las horas asignadas a las asignaturas, cursos o sus equivalentes que integran la unidad de
28
titulación, para el desarrollo del trabajo de titulación, se asignarán 200horas e n la
educación técnica y sus equivalentes, 240 horas en la educación tecnológica y sus
equivalentes, y 400 horas e n la educación superior de grado. Estas horas podrán
extenderse hasta por un máximo del 100/0 del número total de horas, dependiendo de la
complejidad de su metodología, contenido y del tiempo necesario para su realización. Se
consideran trabajos de titulación en la educación técnica y tecnológica superior, y su
equivalentes, y en la educación superior de grado, los siguientes: examen de grado o de
fin de carrera, proyectos de investigación, proyectos integradores, ensayos o artículos
académicos, etnografías, sistematización de experiencias prácticas de investigación y/o
intervención, análisis de casos, estudios comparados, propuestas metodológicas,
propuestas tecnológicas, productos o presentaciones artísticas, dispositivos tecnológicos,
modelos de negocios, emprendimientos, proyectos técnicos, trabajos experimentales,
entre otros de similar nivel de competencia.
29
CAPÍTULO III
3. METODOLOGÍA
3.1 DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN
Descriptivo. Porque se describe la correlación entre el método automatizado y el
método de microscopía manual para realizar el recuento diferencial de los
monocitos. De 107 pacientes con resultados de monocitosis falsas positivas
obtenidas por el método automatizado, solo se confirmaron 7 verdaderas
monocitosis por el método manual. Los resultados obtenidos en este estudio es un
aporte para el Hospital de Especialidades de las Fuerzas Armadas N°1 y para todo
el personal que trabaja en el Laboratorio Clínico de esta institución médica.
Transversal. La correlación se realizó en el mismo periodo de tiempo (Enero a
Marzo 2017), para establecer las causas interferentes y la interrelación entre los
métodos usados.
3.2 TÉCNICAS E INSTRUMENTOS DE RECOLECCIÓN DE DATOS
Documental. Por la utilización de registros de información para facilitar el
análisis de la información.
Analíticas. Impedancia eléctrica utilizada en el contador Hematológico XN 1000
como técnica automatizada y la observación microscópica como técnica manual.
Instrumentos
Hoja de recolección de datos, se registró toda la información obtenida del
sistema DATALAB del Laboratorio Clínico y de los archivos del laboratorio; con
los siguientes datos que se detallan en el anexo #1
30
3.3 ASPECTOS BIOÉTICOS DE LA INVESTIGACIÓN EN SERES HUMANOS
Reconociendo la decisión del Comité de Ética de la Investigación en seres
humanos, para la revisión del trabajo de fin de carrera modalidad proyecto de titulación,
misma que está orientada a garantizar en cada estudio, centro o localidad en que se
investigue la adecuación de aspectos metodológicos éticos y jurídicos de las
investigaciones que impliquen intervenciones en seres humanos o la utilización de
muestras biológicas humanas. Además será un estudio de tipo analítico, donde se
realizará el análisis de los resultados que serán obtenidos de un contador hematológico
para correlación de monocitosis reportados de manera automatizada ante el contaje
manual de células en un extendido de sangre periférica. (17)
Los investigadores acogemos este mecanismo de control y garantía del correcto
desarrollo de la investigación biomédica y en ciencias de la salud, habilitado legalmente
con el propósito de precautelar los derechos de las personas implicadas en la
investigación. Para ello someto a evaluación el protocolo de investigación de mi autoría,
desde la perspectiva metodológica, ética y jurídica, tanto en aquellos casos en los que
participen personas o muestras biológicas de origen humano. Esta evaluación culminara
con la emisión de un informe y que vinculara la decisión de la autoridad competente
encargada de autorizar el desarrollo de la investigación biomédica o en ciencias de la
salud. (17)
3.4 POBLACIÓN Y MUESTRA
La población está compuesta por todas las personas que acudieron a realizarse una
biometría hemática en Laboratorio Clínico del Hospital de Especialidades de las Fuerzas
Armadas N1.
La muestra, estará conformada por los pacientes con resultados de monocitos mayor
a 8%, considerando los valores de referencia de entren 0-8%, valores que han sido
tomados de los reportes automatizados en el periodo de enero a marzo del 2017 en el
Hospital de Especialidades de las Fuerzas Armadas N1.
31
3.5 MÉTODO ESTADÍSTICO
Los datos estadísticos de este tema investigativo se expresaron con el programa
Excel versión 2013. Tomando en cuenta las herramientas estadísticas más apropiadas
como; las medidas de tendencia central.
32
3.6 CUADRO DE VARIABLES
TABLA 6 MATRIZ DE OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017
VARIABLE DEFINICIÓN DIMENSIÓN INDICADOR ESCALA TCD INSTRUMENTO FUENTE
EDAD
Tiempo que ha vivido una
persona contando desde su
nacimiento
Niños
Adolecentes
Joven
Adultos
Adultos mayores
0-12 años
12-18 años
18-29 años
29-65 años
Mayor a 65
años
Cuantitativo
Análisis
documental
Historia clínica del
paciente.
SISTEMA
DATALAB
Fuente
primaria
GÉNERO
Conjunto de
características
diferenciadas que cada
sociedad asigna a hombres
y mujeres
Masculino
Femenino
Hombre
Mujer
Cualitativo
Análisis
documental
Historia clínica del
paciente
SISTEMA
DATALAB
Fuente
primaria
33
MATRIZ DE OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017
VARIABLE DEFINICIÓN DIMENSIÓN INDICADOR ESCALA TCD INSTRUMENTO FUENTE
PATOLOGÍA
monocitosis
La monocitosis es una
condición médica en la
cual hay una elevación en
la presencia de un tipo de
glóbulos blancos de la
sangre conocidos
como monocitos.
Valores altos
emitidos por el
contador
hematológico
automatizado
Valores normales
emitidos por el
contaje manual.
>8%
0-8%
Cuantitativo
Análisis
documental
Historia clínica
del paciente
Fuente
primaria
TÉCNICA
Conjunto de
procedimientos o
recursos que se usan en
una ciencia o en una
actividad determinada, en
especial cuando se
adquieren por medio de
su práctica y requieren
habilidad.
Impedancia
eléctrica
Microscopia
Automatizado
Manual
Cualitativo
Análisis
Documental
Historia clínica
del paciente
Fuente
primaria
34
CAPÍTULO IV
4. PRESENTACIÓN DE RESULTADOS
4.1 RESULTADOS
TABLA 7 PACIENTES CON MONOCITOSIS QUE SE REALIZARON UNA
BIOMETRÍA HEMÁTICA AUTOMATIZADA, RESPECTO AL GENERO.
MASCULINO % FEMENINO % TOTAL DE
MONOCITOSIS
67 62.6% 40 37.4% 107 = 100%
Fuente: Base de datos “Hospital Fuerzas Armadas N°1”
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017.
ANÁLISIS. De 107 pacientes de género masculino y femenino con monocitosis
automatizadas. Se observa 67 casos en el género masculino correspondiente al 62.6% y
40 casos en el género femenino con el 34.7%
35
TABLA 8 FRECUENCIA DE CASOS CON MONOCITOSIS AUTOMATIZADAS
CON RELACIÓN AL MES DE ESTUDIO.
MES TOTAL DE
MONOCITOSIS
PORCENTAJE
ENERO 39 36.5%
FEBRERO 38 35.5%
MARZO 30 28.0%
TOTAL 107 100%
Fuente: Base de datos “Hospital Fuerzas Armadas N°1”
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017.
ANÁLISIS. En el mes de Enero se observa 39 casos de monocitosis automatizadas, con
un porcentaje de 36.5% en Febrero 38 casos de monocitosis automatizadas con el 35.5%
y en Marzo se observa 30 casos correspondientes al 28.0%. Dando un total de 107 casos
de monocitosis automatizadas correspondientes al 100%.
36
GRAFICO 1 DISTRIBUCIÓN MONOCITOSIS AUTOMATIZADAS DE ACUERDO
AL RANGO DE EDAD.
Fuente: Base de datos “Hospital Fuerzas Armadas N°1”
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017.
ANÁLISIS. Con el método automatizado se observó que las monocitosis reportadas de
manera automatizada en el Hospital de Especialidades Fuerzas Armadas N°1 son del
87.9% entre 29-65 años, el 8.4% entre 18-29 años, el 2.8% en edad mayor a los 65 años,
0.9% entre 0-12 años y de 0% entre 13 -17 años.
TABLA 9 CORRELACIÓN DE MONOCITOSIS OBTENIDAS POR EL MÉTODO
AUTOMATIZADO ANTE EL MÉTODO MANUAL MEDIANTE LA
OBSERVACIÓN DE UN EXTENDIDO DE SANGRE PERIFÉRICA.
MONOCITOSIS CASOS PORCENTAJE
MÉTODO
AUTOMATIZADO
107 100%
CONFIRMACIÓN POR EL
MÉTODO MANUAL
7 6.54%
Fuente: Base de datos “Hospital Fuerzas Armadas N°1”
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017
ANALISIS. Los 107 casos reportados con monocitosis por el contador hematológico
automatizado se observa que la correlación entre los dos métodos es el 6.54% para
monocitosis confirmadas por microscopia manual.
0%
50%
100%
0-12 AÑOS 12-18 AÑOS 18-29 AÑOS 29-65 AÑOS > 65 AÑOS
0.9% 0.0%8.4%
87.9%
2.8%
DISTRIBUCIÓN MONOCITOSIS AUTOMATIZADAS DE ACUERDO AL RANGO DE EDAD
37
TABLA 10 IDENTIFICACIÓN DE ALTERACIONES EN LOS LEUCOCITOS CAUSANTES DE RESULTADO DE MONOCITOSIS
AUTOMATIZADAS Y SU PORCENTAJE EN FUNCIÓN DEL GÉNERO.
CAUSAS INTERFERENTES Masculino femenino masculino femenino masculino femenino
Linfocitos reactivos
CASOS % CASOS % CASOS % CASOS % CASOS % CASOS %
13 62% 10 56% 15 63% 9 65% 17 77% 5 63%
Gigantismo en serie mieloide 4 19% 7 39% 6 25% 3 21% 4 18% 2 25%
Vacuolas citoplasmáticas en PMN 1 5% 1 5% 1 4% 1 7% 1 12%
Monocitosis 3 14% 2 8% 1 7% 1 5%
Total 21 100% 18 100% 24 100% 14 100% 22 100% 8 100%
Fuente: Base de datos “Hospital Fuerzas Armadas N°1”
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017
ANÁLISIS. El número de alteraciones interferentes en los resultados automatizado es de 23 casos de linfocitos reactivos (62%) en el género
masculino y (56%) en el género femenino. 11 casos de gigantismo en la serie mieloide, (19%) en el género masculino y (39%) en el género
femenino. 2 casos de vacuolas citoplasmáticas, 1 caso, igual al (5%) en el género masculino y el otro, igual al (5%) en el género femenino.
Y solo 3 casos de monocitosis con el (14%) en el género masculino confirmados por microscopia óptica. 24 casos de linfocitos reactivos, el
(63%) en el género masculino y (65%) en el género femenino. 9 casos de gigantismo en la serie mieloide, (25%) en el género masculino y
(21%) en el género femenino. 2 casos de vacuolas citoplasmáticas, 1 caso por cada género, correspondientes al (4%) y al (7%) para cada
género. 3 casos de monocitosis confirmadas por microscopia, (8%) en el género masculino y (7%) en el género femenino. 22 casos de
linfocitos reactivos, (77%) en el género masculino y (63%) en el género femenino. 6 casos de gigantismo en la serie mieloide, (18%) en el
género masculino y (25%) en el género femenino. 1 caso de vacuolas citoplasmáticas correspondiente al (12%) en el género femenino. Y
solo 1 caso de monocitosis confirmada por microscopia correspondiente al (5%) en el género masculino.
38
TABLA 11 ALTERACIONES OBSERVADAS CON EL MÉTODO MANUAL
PRESENTES EN LOS RESULTADOS OBTENIDOS POR EL MÉTODO
AUTOMATIZADO.
ALTERACIONES CASOS PORCENTAJE
Linfocitos Reactivos 69 64.49%
Gigantismo en la Serie
Mieloide
26 24.30%
Vacuolas Citoplasmáticas
en PMN
5 4.67%
Monocitosis 7 6.54%
Fuente: Base de datos “Hospital Fuerzas Armadas N°1”
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017
ANÁLISIS. Las monocitosis reportadas por el contador hematológico automatizados, se
las llevó a observación microscópica por medio de un extendido de sangre periférica,
donde se identificó que la alteración interferente más frecuente es la presencia de
linfocitos reactivos con el 64.49 %, mientras que por el mismo método de observación
microscópica se confirmó que el 6.54% de las muestras analizadas corresponden al
verdaderas monocitosis.
39
CAPÍTULO V
5. DISCUSIÓN DE RESULTADOS
5.1 DISCUSIÓN
Se recopilaron datos en el Hospital de Especialidades Fuerzas Armadas N° 1 en el periodo
Enero a Marzo del 2017. De los 107 pacientes que presentaron valores de monocitos
elevados con el método automatizado respecto al método manual. Obteniéndose un
resultado de 6.54% de verdaderas monocitosis, frente al 93.46% de falsas monocitosis
emitidas por el contador hematológico automatizado (XN 1000). Si se compara los
resultados de este trabajo con estudios realizados en nuestro país, específicamente en la
Provincia de Loja se identifica que las falsas monocitosis se presentan por la presencia de
linfocitos reactivos. (18). Estudios realizados en América del Sur, indican un estudió en
un grupo de niños hospitalizados que tuvieran más del 15% de monocitos en el
hemograma, se les realizó la evaluación del extendido de sangre periférica donde se
registraron como monocitos solo a las células sanguíneas que por su tamaño,
configuración nuclear y citoplasmática no ofrecían ninguna duda al respecto, todas las
células de aspecto monocitoide se englobaron en la categoría de ‘’linfocitos reactivos’’ o
virocitos. (2)
Se comprueba que la alteración que más interfiere en el estudio es la presencia de
linfocitos reactivos con el 64.49 %, mientras que por el mismo método de observación
microscópica se confirmó que el 6.54% de las muestras analizadas corresponden a
verdaderas monocitosis.
Este trabajo de investigación tiene relación con la publicación realizada en la Revista
Médica Clínica Los Condes en Noviembre del 2015, donde los contadores hematológicos
automatizados también presentan limitaciones para diferenciar la presencia en la sangre
periférica de células con alteraciones como: blastos, prolinfocitos, linfocitos reactivos,
células velludas, células plasmáticas, células de Sezary y otras, que deben ser reportadas
de inmediato por el laboratorio al médico tratante (11); Demostrando así, que el intelecto
humano de un profesional competente es muy importante, para llevar a cabo la evaluación
40
correcta de muestras biológicas cuando se encuentre con alguna anormalidad en los
reportes automatizados, proporcionando un resultado preciso y confiable para
precautelar la salud de los pacientes.
41
CAPÍTULO VI
6. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
6.1 CONCLUSIONES
El estudio demuestra que la correlación entre método de impedancia del contador
hematológico automatizado no es lo suficientemente confiable para determinar el
valor exacto de los monocitos.
Las alteraciones leucocitarias que producen falsas monocitosis automatizadas
corresponden a la presencia de linfocitos reactivos como el factor interferente con
más frecuencia, seguido de gigantismo en la serie mieloide y vacuolas
citoplasmáticas en los PMN.
La prevalencia del factor interferente es de 69 casos de linfocitos reactivos dando
un porcentaje de 64.49%.
42
6.2 RECOMENDACIONES
Identificar las ventajas y desventajas de adquirir un equipo hematológico
automatizado.
El profesional en Laboratorio Clínico debe ser lo suficientemente capaz de
interpretar los resultados de la biometría hemática (fórmula leucocitaria) del
equipo automatizado, cuando se encuentra con problemas rutinarios sobre todo
con los resultados fuera de los rangos normales y confirmar con el método manual.
Seguir formando profesionales capaces de reconocer las características
morfológicas de las células comprometidas en el campo de la hematología clínica.
43
BIBLIOGRAFÍA
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https://www.registrocivil.gob.ec/wp-content/uploads/downloads/2014/01/este-es-
06-C%C3%93DIGO-DE-LA-NI%C3%91EZ-Y-ADOLESCENCIA-Leyes-
conexas.pdf.
45
ANEXOS.
ANEXO 1 PLANTILLA DE RECOLECCIÓN DE DATOS.
CORRELACIÓN DE MONOCITOSIS ENTRE EL CONTADOR HEMATOLÓGICO Y CONTAJE MANUAL
PROYECTO DE TESIS EN EL HOSPITAL DE ESPECIALIDADES DE LAS FF.AA N°1
DATOS RECOLECTADOS DEL CONTADOR HEMATOLÓGICO DE SYSMEX XN 1000
FECHA: FECHA:
NOMBRE: NOMBRE:
ORDEN: HC: ORDEN: HC:
HEMOGRAMA DE
SCHILLING
DATOS DEL
EQUIPO
HEMOGRAMA DE
SCHILLING
DATOS DEL
EQUIPO
BASOFILOS %
V.
PORCENTUAL: BASOFILOS %
V.
PORCENTUAL:
EOSINOFILOS % V. ABSOLUTO: EOSINOFILOS % V. ABSOLUTO:
BLASTOS % BLASTOS %
PROMIELOCITOS % PROMIELOCITOS %
MIELOCITOS % MIELOCITOS %
METAMIELOCITOS % METAMIELOCITOS %
CAYADOS % CAYADOS %
SEGMENTADOS % SEGMENTADOS %
LINFOCITOS % LINFOCITOS %
MONOCITOS % MONOCITOS %
TUTOR ACADÉMICO: MSC MERCEDES TAPIA TUTOR HOSPITALARIO: Dr.CHRISTIAN LOPEZ.
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017.
46
ANEXO 2 CRONOGRAMA DE PRESENTACIÓN DE TESIS
Elaborado: Rómulo Leandro Sánchez Bonilla Quito-2017.
ACTIVIDADES
MESES
ENERO Y
FEBRERO
MARZO Y
ABRIL MAYO Y JUNIO JULIO Y AGOSTO
SEPTIEMBRE Y
OCTUBRE
NOVIEMBRE Y
DICIEMBRE
Presentación del
Tema
Recopilación de
Bibliografía
Elaboración del
Protocolo
Recopilación de
datos
Tabulación de datos
Presentación al tribunal
lector
Defensa de tesis
47
ANEXO 3 FOLLETO DE ESPECIFICACIONES XN 1000
48
ANEXO 4 FOLLETO DE ESPECIFICACIONES XN 1000
49
ANEXO 5 APROBACIÓN DEL COMITÉ DE BIOÉTICA DE LA UNIVERSIDAD
CENTRAL DEL ECUADOR.
50
ANEXO 6 COMUNICADO DE AUTORIZACIÓN POR PARTE DEL DIRECTOR
DEL HOSPITAL DE ESPECIALIDADES FUERZAS ARMADAS N°1.