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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL

Facultad De Ingeniería Química

Carrera De Ingeniería Química

Trabajo De Titulación

Previo A La Obtención Del Título De Ingeniero Químico

TEMA

Evaluación Del Activador Enzimático En La Disminución De La Materia Orgánica En

Estanques De Camarones

AUTORES

Coronel Rojas Klever Iván

Yupa Cabadiana Glenda Katherine

DIRECTOR DEL TRABAJO DE TITULACION

ING. JOSE CARDENAS MURILLO MSc.

GUAYAQUIL-ECUADOR

2018-2019

REPOSITORIO NACIONAL EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA

FICHA DE REGISTRO DE TESIS/TRABAJO DE GRADUACIÓN

TÍTULO Y SUBTÍTULO: Evaluación Del Activador Enzimático En La Disminución De La Materia Orgánica En Estanques De

Camarones.

AUTOR(ES) (apellidos/nombres): Coronel Rojas Klever Ivan

Yupa Cabadiana Glenda Katherine

REVISOR(ES)/TUTOR(ES)

(apellidos/nombres):

Ing. Jose Cardenas Murillo msc

Ing. Miroslav Alulema Cuesta msc

INSTITUCIÓN: Universidad de Guayaquil

UNIDAD/FACULTAD: Ingeniería Química

MAESTRÍA/ESPECIALIDAD:

GRADO OBTENIDO:

FECHA DE PUBLICACIÓN: No. DE PÁGINAS:

ÁREAS TEMÁTICAS: Campo: desarrollo biotecnológico( enzimas)

Área: Ingeniería Química

Aspecto: Disminución de la materia orgánica en estanques de camarones.

PALABRAS CLAVES/ KEYWORDS: Optimización, Enzima, DQO, Calidad del Agua

RESUMEN/ABSTRACT

El siguiente estudio, tiene como propósito determinar la dosis óptima de un activador enzimático, para lograr la adecuada

degradación de materia orgánica no consumida en el agua, proveniente de la alimentación de los camarones; el mismo que actúa

como un catalizador que acelera la biodegradación. Dado que el deterioro de la calidad del agua, debido a la lenta descomposición

de los nutrientes, impacta negativamente en las condiciones de cría del crustáceo, produciendo liberación de compuestos nocivos

para la vida acuática, como amonio, nitritos, etc. Para lo cual se construyó 4 reactores con aireación mecánica, conteniendo las

muestras de agua y suelo de las piscinas camaroneras, con concentraciones C1= 2 �l/L, C2= 1,8 �l/L, C3= 2.4 �l/L, C4= 0 �l/L.,

para control de la enzima en estudio, con un tiempo de retención de 1 semana. Los parámetros físicos-químicos analizados en el

agua fueron: temperatura, salinidad, pH, DQO y conductividad. El estudio demostró una reducción sustancial en los tiempos de

degradación de la carga orgánica en términos de DQO como efecto de la utilización de la enzima, alcanzando una concentración

final de 3.33 mg/L, por debajo del límite máximo tolerable para los camarones, en comparación con la concentración final de 1200

mg/L de la pecera de control sin enzima; además de la disminución de malos olores mejorando la calidad de la misma. Los valores

para el pH fueron de 8.58, oxigeno 8.38 (mg/l), salinidad 18.5 (ppm) , conductividad 29.23 (mg/cm), temperatura 25.18(ºC)

ADJUNTO PDF: x SI NO

CONTACTO CON AUTOR/ES: Teléfono:

0993097808

0981543902/042253070

E-mail:

[email protected]

[email protected]

CONTACTO CON LA INSTITUCIÓN: Nombre: Universidad de Guayaquil

Teléfono: (04)228-7072,2287258

E-mail: http://www.ug.edu.ec

mailto:[email protected]

mailto:[email protected]

http://www.ug.edu.ec/

Guayaquil, 1 de Marzo del 2019

CERTIFICACIÓN DEL TUTOR REVISOR

Habiendo sido nombrado ING.MIROSLAV GONZALO ALULEMA CUESTA, Msc tutor del trabajo

de titulación Evaluación Del Activador Enzimático En La Disminución De La Materia Orgánica En Estanques De Camarones

certifico que el presente trabajo de titulación, elaborado por Coronel Rojas Ivan Klever , con

C.I. No.0921348835, Yupa Cabadiana Glenda Katherine, , con C.I. No. 0950280099 con mi respectiva

supervisión como requerimiento parcial para la obtención del título de Ingeniero Químico , en la Carrera

Ingeniería Química /Facultad de Ingeniería Química, ha sido REVISADO Y APROBADO en todas sus partes,

encontrándose apto para su sustentación.

ING.MIROSLAV GONZALO ALULEMA CUESTA, Msc

C.I. No. 1709365116

FACULTAD DE INGENIERÍA QUÍMICA

CARRERA DE INGENIERÍA QUÍMICA

UNIDAD DE TITULACIÓN

CERTIFICADO PORCENTAJE DE SIMILITUD

Habiendo sido nombrado Ing. José Guillermo Cárdenas Murillo, Msc, tutor del trabajo de titulación certifico

que el presente trabajo de titulación ha sido elaborado por Coronel Rojas Klever Iván con

C.I. 0921348835 y Yupa Cabadiana Glenda Katherine con C.I. 0950280099, con mi

respectiva supervisión como requerimiento parcial para la obtención del título de INGENIERO QUÍMICO.

Se informa que el trabajo de titulación: “EVALUACION DEL ACTIVADOR ENZIMATICO EN LA

DISMINUCION DE LA MATERIA ORGANICA EN ESTANQUES DE CAMARONES

, ha sido orientado durante todo el periodo de ejecución en el programa antiplagio (indicar el nombre del

programa antiplagio empleado) quedando el 1 % de coincidencia.

https://secure.urkund.com/view/47273285-975262-508918

Docente tutor

Ing. José Guillermo Cárdenas

C.I.090577842

ANEXO 6

https://secure.urkund.com/view/47273285-975262-508918

FACULTAD DE INGENIERIA QUIMICA

CARRERA INGENIERIA QUIMICA

UNIDAD DE TITULACIÓN

LICENCIA GRATUITA INTRANSFERIBLE Y NO EXCLUSIVA PARA EL USO NO

COMERCIAL DE LA OBRA CON FINES NO ACADÉMICOS

Nosotros, Coronel Rojas Klever Iván con C.I. 0921348835 y Yupa Cabadiana Glenda

Katherine con C.I. 0950280099, certifico que los contenidos desarrollados en este trabajo de titulación, cuyo

título es “EVALUACION DEL ACTIVADOR ENZIMATICO EN LA DISMINUCION DE

LA MATERIA ORGANICA EN ESTANQUES DE CAMARONES” son de

mi absoluta propiedad y responsabilidad Y SEGÚN EL Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA

SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN*, autorizo el uso de una licencia

gratuita intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la presente obra con fines no académicos, en

favor de la Universidad de Guayaquil, para que haga uso del mismo, como fuera pertinente

Coronel Rojas Klever Iván

C.I 0921348835

YUPA CABADIANA GLENDA KATHERINE

C.I 0950280099

ANEXO 12

*CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN

(Registro Oficial n. 899 - Dic./2016) Artículo 114.- De los titulares de derechos de obras creadas en las instituciones de educación superior

y centros educativos.- En el caso de las obras creadas en centros educativos, universidades, escuelas politécnicas, institutos superiores

técnicos, tecnológicos, pedagógicos, de artes y los conservatorios superiores, e institutos públicos de investigación como resultado de su

actividad académica o de investigación tales como trabajos de titulación, proyectos de investigación o innovación, artículos académicos,

u otros análogos, sin perjuicio de que pueda existir relación de dependencia, la titularidad de los derechos patrimoniales corresponderá a

los autores. Sin embargo, el establecimiento tendrá una licencia gratuita, intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la obra

con fines académicos.

DEDICATORIA

A Dios por permitirme culminar mis estudios, fue el que me dio sabiduría, paciencia ganas y sobre

todo amor para no darme por vencida durante el camino largo que fue mi carrera, no fue fácil este

proceso.

A mis padres Eulogio y Judith por siempre brindarme su apoyo, su fortaleza para no rendirme,

por sus valores de humildad, respeto, amor y responsabilidad.

A mis hermanos, Mónica y Sebastián por ser mi motivo principal de culminar mi carrera y ser

ejemplo de ellos.

A mis amigos quienes me demostraron que son parte de mí, y que me han apoyado en los

momentos difíciles que estuvieron siempre en mi crecimiento profesional.

A mis profesores por la gran labor de enseñarme y demostrarme sus conocimientos.

Glenda Yupa Cabadiana

VII

DEDICATORIA

Le dedico a Dios por darme la bendición y sabiduría para lograr mis metas.

A mi madre Inés Eleuteria Rojas Sevillano por haberme dado la vida y ser mi inspiración

para salir adelante durante todo este proceso.

A mi tía Cleofa Rojas Sevillano por darme el apoyo y estar siempre presente en todas las

actividades que me propuestos durante toda mi vida.

A mis abuelos Antonio Rojas e Inés sevillano por haber cuidado de mí en mis inicios.

Iván Coronel Rojas

VIII

AGRADECIMIENTO

Les agradezco:

A Dios

A mis Padres que me apoyaron incondicionalmente.

A mis tutores que me compartieron sus conocimientos en mí

A miguel que me apoyado con conocimiento en toda mi carrera. Y a mi compañero de tesis.

Glenda Yupa Cabadiana

IX

AGRADECIMIENTO

Agradezco a Dios por darme vida.

A mi madre Inés Rojas Sevillano por haberme educado con todas sus posibilidades y llegar

donde estoy.

A mi hermana Massiel Coronel Rojas por apoyarme, ser incondicional y estar siempre

conmigo en todo, te quiero mucho hermana

A mis ti@s Cleofa, Patricia, Fernando, Roberto Rojas Sevillano por estar presente en mis

retos de vida

A mis Herman@ Silvia y David, a mis prim@s

A mi tutor ing. José Caldena por haber sido mi guía tanto como decano, maestro y tutor

de tesis. Gracias ingeniero

A mi compañera de esta propuesta de trabajo por haber soportado mi mal carácter, mis

ofensas tanto en los trabajos que hicimos en la carrera universitaria, como durante la tesis.

Gracias Katy

Iván Coronel Rojas

X

ÍNDICE

CERTIFICACIÓN DEL TUTOR REVISOR ..................................................................................... 3

DEDICATORIA ........................................................................................................................... VI

DEDICATORIA ......................................................................................................................... VII

AGRADECIMIENTO ............................................................................................................... VIII

AGRADECIMIENTO .................................................................................................................. IX

RESUMEN ................................................................................................................................ XIII

ABSTRACT .............................................................................................................................. XIV

ÍNDICE DE TABLAS ............................................................................................................... XV

ÍNDICE DE FIGURAS ............................................................................................................. XVI

SIMBOLOGÍA ........................................................................................................................ XVII

INTRODUCCIÓN .......................................................................................................................... 1

CAPÍTULO I .................................................................................................................................. 3

1. Problema ............................................................................................................................... 3

1.1. Tema ................................................................................................................................... 3

1.2. Planteamiento del problema......................................................................................... 3

1.3. Formulación Y Sistematización De La Investigación ............................................ 3

1.3.1. Formulación del problema de investigación ........................................................ 3

1.3.2. Sistematización del problema .................................................................................. 4

1.4. Justificación De La Investigación ............................................................................... 4

1.4.1. Justificación Teórica ......................................................................................................... 4

1.4.2. Justificación Metodológica .............................................................................................. 4

1.4.3. Justificación Práctica ........................................................................................................ 5

1.5. Objetivos De La Investigación ..................................................................................... 5

1.5.1. Objetivo General ................................................................................................................. 5

1.5.2. Objetivos Específicos ........................................................................................................ 5

1.5.3. Delimitación De La Investigación ................................................................................... 6

1.6. Variables ............................................................................................................................ 6

1.6.1. Variable Dependiente.................................................................................................. 6

1.6.2. Variable Independiente ...................................................................................................... 6

1.7. Hipótesis ............................................................................................................................ 6

1.7.1. Hipótesis general o premisa: ........................................................................................... 6

1.7.2. Hipótesis Nula ..................................................................................................................... 7

1.7.3. Hipótesis Alternativa ......................................................................................................... 7

XI

1.8. Operacionalización De Las Variables ........................................................................ 8

CAPÍTULO II ................................................................................................................................. 9

2. Marco Referencial ............................................................................................................... 9

2.1. Antecedentes .................................................................................................................... 9

2.2. Marco Teórico ................................................................................................................. 11

CAPÍTULO III .............................................................................................................................. 24

3. Materiales y Métodos ....................................................................................................... 24

3.1. Tipo de investigación ................................................................................................... 24

3.2. Materiales y Equipos .................................................................................................... 25

3.3. Toma de muestra ........................................................................................................... 25

3.4. Diseño de equipo de experimentación .................................................................... 26

3.5. Método de experimentación ....................................................................................... 26

3.6. Datos ................................................................................................................................. 27

3.6.1. Dosificación del Activador Enzimático .............................................................. 27

3.7. Técnica aplicada para la evaluación ........................................................................ 27

3.7.1. Protocolo De Muestreo ............................................................................................ 27

3.7.2. pH ................................................................................................................................... 27

3.7.3. Oxígeno disuelto ........................................................................................................ 28

3.7.4. Temperatura ................................................................................................................ 28

3.7.5. Salinidad y Conductividad ...................................................................................... 28

3.7.6. DQO ............................................................................................................................... 28

3.8. Normas aplicadas .......................................................................................................... 28

3.8.1. Conservación de la muestra ................................................................................... 28

3.8.2. Criterios de DQO ........................................................................................................ 28

3.8.3. Criterios de calidad del agua .................................................................................. 28

CAPÍTULO IV .............................................................................................................................. 29

4. Resultados .......................................................................................................................... 29

4.1. Resultados de análisis físico-químico..................................................................... 29

4.1.1. Parámetros Analizados de Semana 1 .................................................................. 29

4.1.2. Resultados de DQO semana 1 ............................................................................... 30

4.1.3. Grafica de diferencia en la disminución del DQO con las diferentes

concentraciones en estanques de camarones ................................................................ 31

4.1.4. Discusión de resultados .......................................................................................... 31

4.2. Tabla de resultados de la semana 2 ......................................................................... 32

4.2.1. Tabla de resultados DQO semana 2 ..................................................................... 33

XII



4.2.3. Discusión de análisis ................................................................................................ 34

4.3. Tabla de resultados la semana 3............................................................................... 35

4.3.1. Tabla de resultados de DQO semana 3 ............................................................... 36




4.4. Tabla de resultados la semana 4............................................................................... 38

4.4.1. Tabla de resultados DQO semana 4 ..................................................................... 39




4.5. DISCUSIÓN Y ANÁLISIS DE RESULTADOS ........................................................... 41

4.6. Análisis en las columnas de agua ............................................................................ 41

4.6.1. pH ................................................................................................................................... 41

4.7. Oxígeno ............................................................................................................................ 42

4.8. Temperatura .................................................................................................................... 43

4.9. Salinidad .......................................................................................................................... 43

4.10. Conductividad ............................................................................................................ 44

CAPÍTULO V ............................................................................................................................... 46

CONCLUSIONES ....................................................................................................................... 46

RECOMENDACIONES ............................................................................................................. 47

Bibliografía ................................................................................................................................. 48

Anexos A ..................................................................................................................................... 51

ANEXO B ............................................................................................................................................ 52

ANEXO C ............................................................................................................................................ 57

ANEXO D ............................................................................................................................................ 67

ANEXO E ............................................................................................................................................. 75

XIII


FACULTAD DE INGENIERIA QUIMICA

CARRERA DE INGENIERIA QUIMICA

AUTORES:

CORONEL ROJAS KLEVER IVAN


TUTOR:


RESUMEN

El siguiente estudio, tiene como propósito determinar la dosis óptima de un activador

enzimático, para lograr la adecuada degradación de materia orgánica no consumida

en el agua, proveniente de la alimentación de los camarones; el mismo que actúa como

un catalizador que acelera la biodegradación. Dado que el deterioro de la calidad del

agua, debido a la lenta descomposición de los nutrientes, impacta negativamente en

las condiciones de cría del crustáceo, produciendo liberación de compuestos nocivos

para la vida acuática, como amonio, nitritos, etc. Para lo cual se construyó 4 reactores

con aireación mecánica, conteniendo las muestras de agua y suelo de las piscinas

camaroneras, con concentraciones C1= 2 𝛍l/L, C2= 1,8 𝛍l/L, C3= 2.4 𝛍l/L, C4= 0 𝛍l/L.,

para control de la enzima en estudio, con un tiempo de retención de 1 semana. Los

parámetros físicos-químicos analizados en el agua fueron: temperatura, salinidad, pH,

DQO y conductividad. El estudio demostró una reducción sustancial en los tiempos de

degradación de la carga orgánica en términos de DQO como efecto de la utilización de

la enzima, alcanzando una concentración final de 3.33 mg/L, por debajo del límite

máximo tolerable para los camarones, en comparación con la concentración final de

1200 mg/L de la pecera de control sin enzima; además de la disminución de malos

olores mejorando la calidad de la misma. Los valores para el pH fueron de 8.58,

oxigeno 8.38 (mg/l), salinidad 18.5 (ppm) , conductividad 29.23 (mg/cm), temperatura

25.18(ºC).

Palabras claves: Optimización, Enzima, DQO, Calidad del Agua.

XIV

.


FACULTAD DE INGENIERIA QUÌMICA

CARRERA DE INGENIERIA QUIMICA

AUTHORS:

CORONEL ROJAS KLEVER IVAN


ADVISOR:


ABSTRACT

The purpose of the following study is to determine the optimal dose of an enzyme

activator, in order to achieve the adequate degradation of organic matter not

consumed in water, from the feeding of shrimp; the same that acts as a catalyst that

accelerates biodegradation. Since the deterioration of water quality, due to the slow

decomposition of nutrients, negatively impacts crustacean breeding conditions,

producing release of compounds harmful to aquatic life, such as ammonium, nitrites,

etc. To which end, 4 reactors with mechanical aeration were built, containing the water

and soil samples from the shrimp ponds, with concentrations C1 = 2 μl / L, C2 = 1.8 μl

/ L, C3 = 2.4 μl / L, C4 = 0 μl / L., To control the enzyme under study, with a retention

time of 1 week. The physical-chemical parameters analyzed in the water were:

temperature, salinity, pH, DQO and conductivity. The study showed a substantial

reduction in the degradation times of the organic load in terms of DQO as an effect of

the use of the enzyme, reaching a final concentration of 3.33 mg / L, below the

maximum limit tolerable for shrimps, in comparison with the final concentration of 1200

mg / L of the control tank without enzyme; In addition to the reduction of bad smells

improving the quality of it. The values for the pH were 8.58, oxygen 8.38 (mg / l),

salinity 18.5 (ppm), conductivity 29.23 (mg / cm), temperature 25.18 (ºC).

Keywords: Optimization, Enzyme, DQO, Water Quality.

XV

ÍNDICE DE TABLAS

Tabla 1 Operacionalización de las variables ............................................................................ 8

Tabla 2: Materiales, Equipos y Reactivos ............................................................................... 25

Tabla 3: diseño de experimentación ........................................................................................ 27

Tabla 4: protocolo de muestreo ................................................................................................ 27

Tabla 5: Parámetros Fisicoquímicos Semana 1 .................................................................... 29

Tabla 6: Resultado DQO semana 1 ......................................................................................... 30

Tabla 7: Pruebas de la enzima en Reactor con el agua ........................................................ 32

Tabla 8: Tabla de resultado DQO semana ............................................................................. 33

Tabla 9: Pruebas de la enzima en Reactor con el agua ...................................................... 35

Tabla 10: Tabla de resultados DQO semana 3 ..................................................................... 36

Tabla 11: Pruebas de la enzima en aguas de camaroneras: semana 4 ........................... 38

Tabla 12: Tabla de resultados DQO semana 4 ..................................................................... 39

Tabla 13: resultados de los análisis de DQO ......................................................................... 41

Tabla 14: Efecto del pH en el camarón ................................................................................... 41

Tabla 15: tabla de control semana 1 ................................................................................... 67




XVI

ÍNDICE DE FIGURAS

Figura 1: Principio de exclusión del patógeno ....................................................................... 12

Figura 2: Actividad Enzimática Vs Temperatura ................................................................... 14

Figura 3: Proceso De Reacción Del Sustrato - Producto ..................................................... 15

Figura 4: Reacción con Enzima ............................................................................................... 15

Figura 5: Hidrolisis del almidón ................................................................................................ 17

Figura 6: Proceso De Descomposición De La Materia ......................................................... 18

Figura 7: Balance de Materia Aeróbica ................................................................................... 19

Figura 8: Balance de Materia Anaeróbica .............................................................................. 19

Figura 9: Piscina Extensivas ..................................................................................................... 21

Figura 10: Piscina Semi- Extensiva ......................................................................................... 22

Figura 11: Piscina Intensiva ...................................................................................................... 22

Figura 12: Reactor con agua y aireador ................................................................................ 26

Figura 13: Grafica de diferencia del DQO con las diferentes concentraciones ................ 31

Figura 14: Grafica de diferencia del DQO 1con las diferentes concentraciones ............. 34



Figura 17: Parámetros de calidad de agua y sus valores estándar ................................... 42

Figura 18:Condiciones de temperatura para especies acuáticas. ...................................... 43

Figura 19: ficha técnica de enzima a utilizar .......................................................................... 51

Figura 20: colocación de muestras reactores ........................................................................ 57

Figura 21: Pesaje de la enzima ................................................................................................ 57

Figura 22: Reactores Listos ...................................................................................................... 58

Figura 23: visualización de una agua oscura antes de la enzima ...................................... 58

Figura 24: Reactor de calentamiento con muestras ............................................................. 59

Figura 25: Espectrofotómetro ................................................................................................... 59

Figura 26: Medidor de pH .......................................................................................................... 60

Figura 27: Medidor de Oxigeno ................................................................................................ 60

Figura 28: Reactores ya con la dosificación ........................................................................... 61

Figura 29 :Reactores ya puesta la enzima ............................................................................. 61

Figura 30: Ubicación de camaronera ...................................................................................... 62

Figura 31 Ubicación camaronera ............................................................................................. 62

Figura 32: Recolección de muestras en la camaronera ....................................................... 63

Figura 33: Estanque Camaronera ............................................................................................ 63

Figura 34: Reactor de DQO ...................................................................................................... 64

Figura 35: Solución A y Solución B con la muestra .............................................................. 64

Figura 36: Espectrofotómetro ................................................................................................... 65

Figura 37: Estanques acuático ................................................................................................. 65

Figura 38: Estanques para la recolección de la Muestras ................................................... 66

Figura 39: Norma Técnica Ecuatoriana .................................................................................. 75

Figura 40: Parámetros de DQO ..................................................................................................... 76

Figura 41: Criterios a partir de los parámetros de DQO ....................................................... 77

Figura 42: Soluciones A+B para DQO .......................................................................................... 78

Figura 43: Reactivos aplicados para los análisis de DQO ................................................... 79

XVII

SIMBOLOGÍA

𝛍l micro litro

ml mililitro

l litro

ha Hectárea

mg miligramo

ppm parte por millón

cm centímetro

Co control

T₁ tratamiento uno

T₂ tratamiento dos

T₃ tratamiento tres

Cd1 control día uno

Cd2 control día dos

Cd3 control día tres

Cd4 control día cuatro

Cd5 control día cinco

T₁d1 tratamiento uno día uno

T₁d2 tratamiento uno día dos

T₁d3 tratamiento uno día tres

T₁d4 tratamiento uno día cuatro

T₁d5 tratamiento uno día cinco

T₂d1 tratamiento dos días uno

T₂d2 tratamiento dos días dos

T₂d3 tratamiento dos días tres

T₂d4 tratamiento dos días cuatro

T₂d5 tratamiento dos días cinco

T₃d1 tratamiento tres días uno

T₃d2 tratamiento tres días dos

T₃d3 tratamiento tres días tres

T₃d4 tratamiento tres días cuatro

T₃d5 tratamiento tres días cinco

1

INTRODUCCIÓN

En el Ecuador las industrias acuícolas principalmente derivadas de la producción de

camarón, han logrado un rápido crecimiento económico y productivo, contribuyendo al

incremento del PIB del país; Los últimos 15 años las exportaciones de camaroneros

fluctuaron en 5000 toneladas, a pesar de diferentes problemas sanitarios en cuanto a

brotes virales como la Mancha Blanca, que marco un quiebre abrumador a las

exportaciones, con una reducción de la producción en un 30% (Plaza, 2002), a pesar de

aquello el camarón sigue estando entre los principales productos no petroleros de más

exportación (Mario, 2015).

La demanda de camarón en el país ha tenido un rápido y sostenido crecimiento, en

cuanto a exportaciones, como se puede observar durante los años 2003-2010, dichas

exportaciones subieron en 284.7%, representando 849,5 millones de dólares; lo que nos

demuestra la evolución importante del sector y el aporte a la economía (Varela, 2011).

La alimentación del camarón, es uno de los rubros económicos más importantes en

cuanto a la producción, representando el 60% de la inversión, siendo las proteínas el

nutriente clave en el crecimiento de los especímenes (Dean M. Akiyama, 2012).

Dependiendo del tipo de cultivo, ya sea semi–intensivo o Intensivo; existe una

considerable contribución de nutrientes, que no logra ser aprovechado en su totalidad

por los crustáceos, acumulándose en el fondo de los estanques; impidiendo que la biota

no se desarrolle naturalmente; representando una pérdida económica para el acuicultor

(Julian, 2010).

El exceso de materia de origen orgánica en el agua es generado principalmente por los

alimentos no consumidos, heces y plantas acuáticas muertas (algas), lo que deriva una

serie de problemas, como malos olores y enfermedades infecciosas, derivadas de

hongos, virus o bacterias; llevando a la muerte inminente de los camarones, además de

disminuir el crecimiento y la producción de los especímenes (Tayron, 2017a).

2

Además, de que el cultivo de este crustáceo está impactando negativamente al ambiente,

debido a que los afluentes son vertidos directamente en cuerpos naturales de agua, con

altas concentraciones de carga orgánica y metabólicos, haciendo que la calidad de agua

que se desecha de las piscinas sea pésima (Tello, repositorio, 2015).

Es por ello, que la aplicación de enzimas, para ayudar a la biodegradación son cada vez

más utilizadas; dado que aceleran el tiempo de degradación de la materia orgánica y la

eliminación de sustancias nocivas como el amoníaco; las mismas que actúan como

catalizadores en las reacciones bioquímicas en las piscinas, favoreciendo en una mejor

calidad de agua y de suelo, durante la cría de camarones (aquafeed, 2014).

Con estos antecedentes, se procedió a realizar un estudio de laboratorio, con el fin de

evaluar la óptima dosificación de una enzima bio-degradadora, determinando la

eficiencia y la velocidad de degradación de la materia orgánica, a través de diferentes

recipientes que contenían concentraciones enzimáticas variadas, el control del proceso

fue monitoreado por medio de parámetros físico-químicos importantes para el adecuado

crecimiento de los crustáceos, como: temperatura, pH, salinidad, DQO y conductividad,

en un intervalo de tiempo de 24 horas para los parámetros físicos y de 7 días para los

fisicoquímicos.

3

CAPÍTULO I

1. Problema

1.1. Tema

Evaluación de un Activador Enzimático en la Disminución de la Materia Orgánica en

Estanques De Camarones.

1.2. Planteamiento del problema

En la actualidad, la utilización de bio-degradadores, ya sea del tipo enzimático o

microbiológico, en el control de materia orgánica en estanques de camarón, se lo realiza

de manera casi empírica, ósea basándose en el nivel de turbidez observable en el

momento de la dosificación; o siguiendo las recomendaciones del proveedor, las cuales

no toman en cuenta las condiciones físico-químicas de los mismos. Generando así un

consumo excesivo (sobredosificación), lo que se traduce en pérdidas de carácter

económico debido al gasto inadecuado del producto; o a su vez un consumo de la

enzima, dando como resultado una ineficiente degradación de materia orgánica.

1.3. Formulación Y Sistematización De La Investigación

1.3.1. Formulación del problema de investigación

a) ¿De qué manera influye el uso del activador enzimático, en la economía de los

acuicultores?

b) ¿Cómo incide la correcta dosificación de la enzima, en la velocidad de

degradación de los compuestos orgánicos?

4

1.3.2. Sistematización del problema

a) ¿Cuál ha sido la inversión en cuanto a adquisición de activador enzimático, que

han tenido que incurrir los acuicultores, antes de la dosificación adecuada?

b) ¿Cuál es el impacto sobre la tasa diaria de renovación de agua en los estanques,

con la aplicación del activador?

1.4. Justificación De La Investigación

1.4.1. Justificación Teórica

El control del proceso para la determinación de la eficiencia del activador se fundamenta

en las normativas:

NTE INEN 1203:2013, Determinación de la demanda química de oxígeno (DQO), la cual

determina la concentración de materia orgánica presente en el agua.

NTE INEN 2169:2013, sobre la calidad del agua para Muestreo, además del manejo y

conservación de muestras.

1.4.2. Justificación Metodológica

El uso de tratamientos biológicos con bacterias y enzimas en el tratamiento de aguas de

camaroneras, está dado buenos resultados en la mejora de la calidad de la misma. Entre

los principales beneficios de estos tratamientos, es la eliminación de olores

desagradables, aumenta de la productividad, descomposición de sulfuro de hidrógeno,

amoníaco, nitritos; además de menor tasa de renovación de agua e impacto positivo al

medio ambiente. El estudio pretende evaluar y determinar la dosificación óptima de la

enzima para el control del exceso de materia orgánica.

5

1.4.3. Justificación Práctica

El consumo óptimo del activador enzimático, proveerá un ahorro económico importante,

durante todo el proceso de cría y engorde de los camarones; dado que, al dosificar

correctamente, se asegurará una eliminación máxima carga orgánica presente en el

agua del estanque, evitando el exceso o la insuficiencia en cuanto a enzima, mejorando

la calidad de la misma; además de contribuir al control de otros parámetros físicos-

químicos importantes para la vida de los crustáceos.

1.5. Objetivos De La Investigación

1.5.1. Objetivo General

Evaluar el uso del activador enzimático en la disminución de la materia orgánica en

estanques de camarones.

1.5.2. Objetivos Específicos

Determinar los parámetros físico-químicos iniciales y finales de las muestras de

agua de los estaques de camaroneros (oxígeno, salinidad, conductividad, temperatura,

pH, DQO).

Establecer la concentración óptima del activador enzimático, para cumplir los

límites permisibles de calidad del agua.

Calcular la tasa de remoción de DQO, utilizando la enzima en los reactores piloto

durante el tratamiento.

6

1.5.3. Delimitación De La Investigación

El estudio se realizó en la Universidad de Guayaquil, en el Laboratorio de Investigación

de Medio Ambiente, de la Facultad de Ingeniería Química.

1.6. Variables

1.6.1. Variable Dependiente

Parámetros Físico - Químicos del agua de los estanques de camarón.

Indicadores:

Salinidad

Conductividad

DQO

pH

1.6.2. Variable Independiente

Enzimas

Indicadores:

Concentraciones

Temperatura

1.7. Hipótesis

1.7.1. Hipótesis general o premisa:

La aplicación de un activador enzimático, incide significativamente en la eliminación de

la carga orgánica presente en el agua de las camaroneras.

7

1.7.2. Hipótesis Nula

Ho= La aplicación de un activador enzimático, NO incide significativamente en la

eliminación de la carga orgánica presente en el agua de las camaroneras.

1.7.3. Hipótesis Alternativa

H1: La aplicación de un activador enzimático, SI incide significativamente en la

eliminación de la carga orgánica presente en el agua de las camaroneras.

8

1.8. Operacionalización De Las Variables

Tabla 1 Operacionalización de las variables Elaborado por: Coronel & Yupa

Tipo de

variables

Variable Definición Equip

o

Método unidad

Dependiente

DQO

Parámetro para medir el grado

de contaminación y la cantidad

de materia orgánica presente en

el agua (Industrial, 2015)

HACH

-DRB

200

HACH

-

DR/40

00U

Calidad del agua

determinación

DQO.metodo del

dicromato. Norma UNE

77004:2002,ISO

6060:1989

mg/l

Salinidad

Parámetro que mide el contenido

salino del agua. (Lutenberg, s.f.)

Se mide directamente

introduciendo la sonda en

las columnas de agua

ppm

Conductivida

d

Capacidad del fluido para conducir

corriente eléctrica a través de los

iones disueltos, lo que da una idea

del grado de mineralización del

agua (waterboards, 2010)

Se mide directamente

introduciendo la sonda

en las columnas de

agua

mS/cm

pH

Parámetro que mide la

concentración de iones de

hidrógeno en una solución

(López, 2016)

HACH

-

HG30

D

Medición directa,

introduciendo la

sonda en las aguas.

Independiente

Enzima

Proteínas que aceleran las

reacciones bioquímicas.(Cuadro,

n.d.).

Balanz

a

analitic

a

Aplicación directa mg/l

Temperatura

Propiedad que determinan si los

sistema se encuentran en

equilibrio térmico (Inzunza, 2002)

HACH

-

HG30

D

El método para la

lectura de este

parámetro es Introducir

directamente el Equipo

de medición

(/termómetro de sonda)

°C

9

CAPÍTULO II

2. Marco Referencial

2.1. Antecedentes

A nivel mundial, los impactos ambientales derivados Acuicultura son severos; los mismos

que dependiendo del tipo de cultivo; existe una considerable contribución de nutrientes,

que no logra ser aprovechado en su totalidad por los crustáceos, acumulándose en los

estanques, lo que ocasiona que el agua se renueve a una tasa permanente (Julian,

2010).

Es así que la aplicación de la biotecnología, en el control de exceso de materia orgánica

es cada vez más prometedora y contribuye al desarrollo sostenible de la acuicultura, a

través del control de la contaminación de las aguas (Rodríguez-Miranda, 2017); en vez

de verter dichos afluentes directamente en cuerpos naturales de agua, con altas

concentraciones de carga orgánica y metabólicos, haciendo que la calidad de agua que

se desecha de las piscinas sea pésima (Tello, repositorio, 2015).

La biodegradación, a través de microorganismos o enzimas, juegan un papel importante

en el control y/o eliminación de materia orgánica con efectos nocivos para las especies

acuáticas (camarones). Dicha método permite acelerar la degradación de la materia

orgánica, ofreciendo una excelente tasa de remoción (LÓPEZ, 2007).

Existen diferentes trabajos realizados, sobre la biodegradación de la materia orgánica

con la ayuda de activadores enzimáticos; como a continuación se detalla:

Título: Biodegradación De La Materia Orgánica Presente En Las Aguas Residuales De

Una Empresa De Pinturas

10

Autores: Luisa Fernanda Posada Uribe y Sandra Mosquera López

Año: 2007

Sinopsis: “la Compañía de Pintura, preocupada por la calidad de su efluente, desarrolló

un tratamiento biológico con cepas nativas, que permitió disminuir la carga orgánica y

darle al agua otro uso. Durante el proceso de aislamiento se obtuvieron cuatro (4) cepas,

utilizándose dos métodos para transferir las colonias a medio líquido y lograr su

crecimiento: procesos con y sin adaptación. Se realizó la evaluación económica del

proceso de biodegradación y se encontró un VPN de $581.325,2, una relación B/C de

1.10 y una TIR del 10%. Indicando viabilidad para el tratamiento” (LÓPEZ, 2007).

Título: Estudio De Tratabilidad Utilizando La Enzima Bioenzymar Para El Uso De

Tratamiento De Aguas Residuales De La Industria Cartonera.

Autores: Albán Quinto Jessy Elizabeth y Tumbaco Castillo Jhordy Steven

Año: 2018

Sinopsis: “La utilización de enzima en el efluente de la Cartonera , redujo en un 89% la

Demanda Química de Oxígeno y en un 92% la Demanda Biológica de Oxígeno, en

cuanto a la caracterización fisicoquímicas, los parámetros alcanzaron valores permitidos

por la norma de efluente de descarga de agua marina” (ELIZABETH, 2018).

11

2.2. Marco Teórico

El camarón durante su etapa de crecimiento presenta diferentes hábitos alimenticios, es

así que en la etapa juvenil consumen los bentos y en su adultez son netamente

omnívoros, además de alimentarse de balanceado (EEUU, 2010).

El compuesto principal del balanceado es la proteína, la cual es provista a través de la

soya y la harina de pescado; siendo el nutriente de mayor valor económico, la misma

que es suministrada sin conocer los requerimientos proteicos de los crustáceos,

acumulándose paulatinamente en los estanques. (EEUU, 2010).

En los estanques están presentes diferentes tipos de desechos orgánicos como: algas,

fitoplancton, zooplancton, heces y alimento no consumido, creando un ambiente

favorable para la proliferación de microorganismos patógenos para los camarones

(Ching, 2003).

Es así que para resolver esta problemática de la materia orgánica no aprovechada,

existen tres puntos de vista: 1) Conocer a fondo los requerimientos de consumo y de

digestibilidad del tipo de camarón cultivado 2) Tener una tasa de renovación constante

de agua del estanque con caudales frescos del exterior 3) Acelerar la degradación de los

desechos alimenticios con la ayuda de enzimas catalizadoras (EEUU, 2010).

2.2.1 Principio De Exclusión De Agentes Patógenos

Las enfermedades de los crustáceos, pueden ser causados por factores tan bióticos

como abióticos; los patógenos forman parte del componente biótico, mientras que el

componente abiótico lo componen factores ambientales como la temperatura, pH,

niveles de nitrógenos, DQO, pesticidas, etc, como se muestra en la figura 1 (EEUU,

2010).Los patógenos necesitan de un ambiente adecuado y de un huésped para

desarrollarse y enfermar a los organismos cultivados; es así que el principio de exclusión

nos dice, que solamente cuando un agente patógeno es excluido del ambiente o del

huésped, se evitaría una enfermedad (EEUU, 2010).

A continuación como se muestra en la figura 1 respectivamente:

12

Figura 1: Principio de exclusión del patógeno Fuente: (EEUU, 2010).

Dado que el camarón, naturalmente tiene una diversidad de microorganismos en estado

latente hasta que estas dos condicionantes se logren.

2.2.2 Nitrógeno

El nitrógeno es uno de los elementos cruciales en la nutrición de los camarones; el

mismo que forma parte de los restos de materia orgánica y que es liberado durante la

degradación de la misma, causando ascensos de concentración súbitas de amoniaco,

que a su vez eutrofiza el agua del estanque, consumiendo el oxígeno disuelto.

Además de ser un fertilizante para el desarrollo de la biota; entre lo cual tenemos el

fitoplancton, bacterias autótrofas y las heterótrofas. Pero el exceso de este elemento

provoca niveles intolerables de amoniaco, nitratos y nitritos que son resultado del ciclo

normal del nitrógeno (Gurrola, 2016).

2.2.3 Calidad del agua

Los parámetros físicos-químicos más importantes que se deben tener en cuenta en los

estanques para el adecuado desarrollo de los camarones son: Temperatura, pH,

salinidad, turbidez, materia orgánica, oxígeno disuelto y alcalinidad (Boyd, 2018).

13

2.2.4 Temperatura

Los camarones se desarrollan a temperaturas entre 25 y 32ºC. En regiones

subtropicales, dicho parámetro puede bajar a menos de 25 °C por periodos largos, por

lo que el crecimiento de los camarones se ve inhibido(Boyd, 2018).

2.2.5 Oxígeno disuelto

Es un elemento esencial para todas las especies acuáticas; el mismo que se reduce, a

mayor número de organismos vivos y de actividades bioquímicas; dando lugar a

ambientes anaeróbicos, produciendo componentes contaminantes como Amonio,

Metano, etc (ceniacua, 2010).

El desarrollo de las bacterias nitrificantes está controlado por la cantidad de oxígeno

disuelto presente en el medio, dado que son aeróbicas, por lo que necesitan oxígeno

para desarrollarse; por lo cual el OD establece la oxidación del nitrógeno amoniacal que

pasa a nitritos y posteriormente a nitratos cuyas transformaciones solamente suceden

en medios que contengan suficiente OD. Las bacterias nitrificantes son muy sensibles a

las concentraciones de OD , en comparación con las bacterias heterótrofas(Jarpa, n.d.).

2.2.6 Ph y Alcalinidad

El pH, es un parámetro que muestra la concentración del ion de hidrogeno, mientras que

la alcalinidad mide el potencial de neutralizar ácidos fuertes. En los estanques de

camarón este parámetro es afectado por el proceso de la fotosíntesis de las algas

(Gurrola, 2016).

2.2.7 Salinidad

La salinidad afecta directamente a la presión osmótica del agua, es así que cada especie

acuática tolera rangos de presión; una salinidad menor al límite permisible afecta

directamente a la fisiología del crustáceo, mientras que una alta salinidad forzar al

camarón a gastas mucha más energía de osmo-rregulación (Gurrola, 2016).

14

2.2.8 Enzimas

Las enzimas son biomoléculas (proteínas), que aceleran las reacciones bioquímicas;

dichos catalizadores aumentan la energía de activación del proceso; Siendo solubles,

no pudiéndose separar del sustrato, ni reutilizarlas en otras reacciones (ELIZABETH,

2018).

Un factor crucial en la actividad catalítica de las enzimas, es la temperatura; siendo esta

un inhibidor cuando se sobrepasa de la temperatura a la que la enzima puede resistir

(ELIZABETH, 2018).

A continuación, en el grafico 2 se muestra la relación de la actividad enzimática vs la

temperatura:

Figura 2: Actividad Enzimática Vs Temperatura Fuente: (Mezquita A. , 2016)

2.2.9 Reacciones enzimáticas

La enzima se acopla al sustrato para transformar en otro compuesto. Posteriormente

sigue la transformación del sustrato a producto, dando la libertad al producto y así de

esta manera queda separada la enzima para iniciar un nuevo proceso con el sustrato.(De

Lera Santín, 2015)

A continuación, se muestra el proceso de la reacción en la figura 3

15

Figura 3: Proceso De Reacción Del Sustrato - Producto Fuente: (De Lera Santín, 2015).

en la figura 4 cómo se la da reacción entre enzima:

Figura 4: Reacción con Enzima Fuente: (De Lera Santín, 2015)

16

2.2.10 Resultado de concentraciones de enzima y de sustrato

El dinamismo enzimático está definido por la concentración de enzimas, sustratos, la

disponibilidad de cofactores; siendo la rapidez de la reacción cambiante, en función de

la concentración enzimática. Existe un tiempo inicial llamado estado pre-estacionario,

que es la mezcla del exceso de sustrato en la enzima y posteriormente llega el estado

estacionario que es donde persiste constante en el tiempo.(De Lera Santín, 2015)

2.2.11 Tipos de enzimas

En el mercado existen una extensa variedad enzimática; pero las más comunes son las

de tipo hidrolasas, como la proteasas, lipasas y amilasas. Las enzimas hidrolasas, tienen

la función de degradar macromoléculas, catalizando el rompimiento de las misma (De

Lera Santín, 2015).

2.2.12 Enzima amilasas

La hidrolisis del almidón en enlaces éter de los polisacáridos que se encuentran en el

almidón; las mimas que se dividen en: α-amilasa, β-amilasa y gluco-amilasa (“science-

direct-topic-amylase.pdf,” n.d.). El α- amilasa es una enzima que cataliza la hidrolisis de

los enlaces glucosídicos; la misma que se utiliza en el sector: textil, panificación, jarabes

de glucosa y fructuosa; representando unas de las más importante, tanto que se estima

que tiene el 30% del mercado mundial de enzima(Montor-Antonio et al., 2014).

17

Se puede observar en la figura 5 estructura del Almidón cuando cambia Amilasa por

medio del hidrolisis.

Figura 5: Hidrolisis del almidón Fuente: (google imagenes, 2019)

2.2.13 Enzima lítica

Las enzimas líticas son reguladas por el genoma de los fagos, la misma que destruye

la pared bacteriana desde la parte interior de la célula mala y así posibilitar la libertad de

la especie fagica; esta enzima destruye el huésped por lo que varían las designaciones

que se desarrollan por los enlaces químico de la reacción, recientemente esta enzima es

utilizada para eliminar y prevenir los agentes patógenos (Ronda, Vasquez, & López,

2003).

2.2.14 Dinámica Bacteriana

El objetivo principal de las bacterias, es la degradación de la materia orgánica y otros

nutrientes que se encuentran, ya sea suspendida en el agua de forma coloidal o

sedimentada en el suelo de los estanques (ELIZABETH, 2018).

18

A continuación, se muestra en la figura 6, el proceso de descomposición de la materia

de origen orgánico:

Figura 6: Proceso De Descomposición De La Materia Fuente: (Muñoz, 2012)

El metabolismo de los microorganismos, hace que la materia orgánica una vez

metabolizada sea trasformada en una nueva biomasa (anabolismo), además de

transformarla en otros compuestos químicos, mediante la liberando energía

(catabolismo) (Ramalho, 2016).

Existen dos tipos de condiciones que dan origen a la degradación de los compuestos

orgánicos, las cuales son: Aeróbico y Anaeróbico.

2.2.15 Proceso Aeróbico

En este proceso interviene el oxígeno disuelto en el agua, donde la materia orgánica se

oxida mediante catabolismo; Para ayudar a que este proceso tenga lugar, se introduce

suficiente oxígeno con la ayuda de aireadores mecánicos.

19

Se observar en la figura 7, el balance de la materia Aeróbica:

Figura 7: Balance de Materia Aeróbica

Fuente: (Rodríguez, 2016)

Ventajas

Reducción de malos olores

Degradación de compuestos

Disminución de parámetros físico-químicos (DQO y DBO5)

2.2.16 Proceso Anaeróbico

Proceso de fermentación que se lleva a cabo sin la presencia de oxigeno; el mismo que

finaliza la degradación de materia orgánica ya descompuesta, liberando metano.

A continuación, se observa en la figura 8:

Figura 8: Balance de Materia Anaeróbica Fuente: (Rodríguez, 2016)

20

Ventajas

Producción mínima de lodos.

Generación de metano, que puede ser aprovechado en otros procesos.

Ahorro en cuanto a la utilización de aireadores mecánicos.

2.2.17 Resultados prometedores

Las enzimas en los estanques de camarones como agente de control biológico tienen

una gran importancia específicamente en la calidad de agua y los lodos, ayudando al

desarrollo del crustáceo; demostrándose que utilizar bacterias y enzimas en los

estanques, mejora la calidad de los suelos negros con acumulación de materia orgánica,

además de la apariencia (color); aumentando el rendimiento productivo de los

camarones.

La utilización de enzimas determinadas como: amilasas, celulosas, proteasas o

bacterias como el bacillus, hacen posible la pre-digestión de algunos nutrientes con

mayor complejidad para ser digeridos. (Mayer, Enzimas – mejora en la calidad del agua

y el suelo en acuicultura, 2012).

.

2.3 Marco Conceptual

2.3.1 Enzimas

Son proteínas que ayudan a la catálisis de las reacciones biológicas, son una de las más

importantes biomoléculas debido a su poder catalítico (Alonso Mezquita, 2000).

Aceleran la transformación de un compuesto orgánico en otro, por ejemplo, la enzima

diastasa hidroliza más rápidamente el almidón que el ácido sulfúrico. En la actualidad se

han descubierto más de 2000 enzimas lográndose aislar unas 200, con las cuales se han

desarrollado productos para el mantenimiento industrial, alimenticio (Alonso Mezquita,

2000).

21

2.3.2 Materia orgánica

Son compuestos que contienen carbohidratos, proteínas, lípidos, etc. Los mismo son

susceptibles a la descomposición por microorganismos en dióxido de carbono y humus.

2.3.3 Sistema de producción extensivo

Tipo de estanques utilizan grandes extensiones de terreno >100 ha, con bajísima tasa

de recambio de agua, con una población inferior a 5 especímenes/m2, las especies que

habitan allí, se alimentan de los microorganismo que habita en los estanques, ya que

no reciben alimentación externa (Profesional, 2012).

Un tipo de estanque es la extensiva como podemos observar en la figura 9:

Figura 9: Piscina Extensivas Fuente: (google imagenes, 2019)

2.3.4 Sistema de producción semi-intensivo

Los estanques tienen una extensión < 20 ha, los cuales cuentan con una tasa de

recambio de agua cerca del 20% por día. Con una población de 25 especímenes /m2,

además reciben regularmente alimentación externa como una forma complementaria de

alimento(Profesional, 2012).

22

A continuación podemos observar en la figura 10 otro tipo de estanque Semi-Extensiva:

Figura 10: Piscina Semi- Extensiva Fuente: (google imagenes, 2019)

2.3.5 Sistema de producción Intensivo

Los estanques cuentan con una extensión < 2 ha, utilizan una elevada tasa de recambio

de agua (>50%). La densidad poblacional es de alrededor de 100 especímenes/m2,

utilizando aireación mecánica continua y alimentación externa constante, que es una de

las más tradicional (Profesional, 2012).

A continuación como nos muestra la figura 11 la piscina intensiva:

Figura 11: Piscina Intensiva Fuente: (google imagenes, 2019)

23

2.3.6 DQO en columnas de agua

Es un parámetro del grado de contaminación del agua, indica la cantidad de oxigeno

necesario para oxidar compuestos orgánicos, acorde a condiciones de temperatura

(ambientum, 2016).

2.3.7 pH en estanques de camaroneros

El pH es uno de los parámetros más importantes de control, dado que afecta el

metabolismo y los procesos fisicoquímicos en las especies acuáticas. Puede crear

susceptibilidad y estrés y eso hace que disminuya la producción, el pH suele cambiar de

la noche a la mañana; El dióxido de carbono (CO₂) tiene un efecto sobre el pH, cuando

el CO₂ se encuentra bajo, el pH del agua tiende aumentar y viceversa.

En estanques de cultivo el rango óptimo de pH se encuentra entre 7.5 a 8.5, valores entre

8.6 a 9.9 bloquean el proceso de muda ya que el ion predominante en el agua es el CO₃.

Aguas con alcalinidad moderada están más amortiguadas y hay un menor grado de

variación del Ph (“Balnova | pH en estanques de camarón,” 2014).

24

CAPÍTULO III

3. Materiales y Métodos

3.1. Tipo de investigación

La presente propuesta de trabajo de titulación corresponde a una investigación de:

a) Investigación Documental y Bibliográfica

Se recabo información de distintas fuentes bibliográficas, dicha información fue del

tipo primaria y secundaria. La información primaria, contenía toda la normativa

aplicable a los cultivos semi-intensivos de camarón y la información

secundaria contenían publicaciones de internet, paper’s y libros; ambas

investigaciones se vieron plasmada en el marco teórico.

b) Investigación Cuantitativa

En el estudio se analizó diferentes parámetros cuantitativos, los mismos que fueron

comparados con los respectivos límites permisibles estipulados en las normativas

correspondientes.

c) Investigación Experimental

En este tipo de investigación, se corrió cuatro tratamientos o experimentos; en los

cuales se ejercieron injerencia (manipulando) en las variables, para luego analizar

los resultados generados por las variables de respuesta.

25

3.2. Materiales y Equipos

Tabla 2: Materiales, Equipos y Reactivos

Nombre Descripción

Materiales Muestra a tratar:

Agua de camaronera

80 litro

Enzima 1 litro

Equipos pH metro HACH-HG30D

Reactor de calentamiento HACH-DRB 200

Espectrofotómetro HACH-DR/4000U

Analizador de oxigeno HACH-HG30D

Aireador JAD-PUMP S-4000B

Reactivos Agua de destilación 99.5 % pureza

Papel filtros MN 615-Ɵ 125mn

COD Solución A para medir el rango 4.0 - 40.0; 10

- 150 y 100 - 1500 mg/ l; 0,30 ml

por determinación de

Espectrofotómetro 0.30 ml por

muestra

COD Solución B para el rango de medición 100 -

1500 mg/ l; 2.30 ml y 2.85 ml por

determinación de

Espectrofotómetro 2.85 ml por

muestra

Elaborado por: Coronel & Yupa

3.3. Toma de muestra

La muestra de agua y de suelo fueron recogidas de una camaronera, ubicada en

el km 19 vía a la costa de la provincia del Guayas; para luego ser trasladadas al

laboratorio de la Facultad de Ingeniería Química.

26

3.4. Diseño de equipo de experimentación

Se construyeron 4 reactores de 15cm de largo, 20cm de ancho y 30cm de altura, a

los cuales se les hizo lavado y desinfección por cada prueba, para posteriormente

colocarle el agua a evaluar; Además se incorporó 4 aireadores mecánicos para

recrear las condiciones naturales de los estanques.

Figura 12: Reactor con agua y aireador Fuente: Coronel & Yupa

3.5. Método de experimentación

Se colocaron 500 ml de agua de muestra en cada reactor; luego se vertieron 3

concentraciones diferentes de enzima C1= 2 𝛍l/L, C2= 1,8 𝛍l/L, C3= 2.4 𝛍l/L, C4=

0 𝛍l/L, la última de control. Luego se realizaron los respectivos análisis de los

parámetros físico-químicos (temperatura, pH, oxígeno) diariamente, DQO en

intervalos de 48 horas y Salinidad y Conductividad en el día 1 y el día 6 de cada

corrida; registrados los valores obtenidos de cada uno, durante 6 días.

Repitiéndose la experimentación durante 4 semanas consecutivas, con el fin de

obtener suficientes datos, para el respectivo análisis estadístico.

27

3.6. Datos

3.6.1. Dosificación del Activador Enzimático

Tabla 3: diseño de experimentación


3.7. Técnica aplicada para la evaluación

3.7.1. Protocolo De Muestreo

Tabla 4: protocolo de muestreo

PARÁMETROS MUESTREO

24 HORAS

MUESTREO

48 HORAS

MUESTREO

DIA 5

DQO X

Oxígeno Disuelto X

Potencial de

Hidrogeno

X

Temperatura X

Conductividad X

Salinidad X


3.7.2. pH

Para la determinación del potencial de hidrógeno, se utilizó el multi-parámetro de

HACH-HG30D

DOSIFICACION ENZIMATICA PARA 5 LITROS DE AGUA

REACTORES ml de ENZIMA /ha ml ENZIMA /ha 𝛍l ENZIMA

1 0 0 0

2 400 1,2E10ˆ-3 1,2

3 600 1,8E10ˆ-3 1,8

4 800 2,4E10ˆ-3 2,4

28

3.7.3. Oxígeno disuelto

El oxígeno disuelto que se midió mediante el equipo HACH-HG30D

3.7.4. Temperatura

La temperatura se mide con el equipo HACH-HG30D

3.7.5. Salinidad y Conductividad

Los análisis de salinidad y Conductividad se los realizaron en el laboratorio de

aguas, Petróleo y Medio Ambiente.

3.7.6. DQO

Este análisis se realizó en base a la NTE INEN 1203:2013, utilizándose 0.30ml del

reactivo COD Solución A se utilizó y 2.85 ml para el reactivo COD Solución B,

utilizándose el Espectrofotómetro HACH-DR/4000U y el Reactor de calentamiento

HACH-DRB 200 por el método de absorbancia.

3.8. Normas aplicadas

3.8.1. Conservación de la muestra

Norma técnica ecuatoriana NTE INEN 2169:2013 “AGUA. CALIDAD DEL AGUA.

MUESTREO. MANEJO Y CONSERVACION DE MUESTRAS. (Ver Anexo)

3.8.2. Criterios de DQO

NTE INEN 1203:2013, para la determinación de la demanda química de oxígeno

(DQO), la cual determina la concentración de materia orgánica presente en el agua.

(Ver Anexo)

3.8.3. Criterios de calidad del agua

Se tomó las normativas del N₀ 0.97-A-Tabla 2: criterios de calidad admisibles para

la preservación de la vida acuática y silvestre en aguas dulces, marinas y estuarios.

(Ver Anexo)

29

CAPÍTULO IV

4. Resultados

En esta experimentación se obtuvo los siguientes resultados de las variables

usadas con la enzima

4.1. Resultados de análisis físico-químico

Los análisis se hicieron diariamente para las columnas de agua:

4.1.1. Parámetros Analizados de Semana 1

Tabla 5: Parámetros Fisicoquímicos Semana 1

Muestras pH Oxigeno

(mg/l)

Salinidad

(ppm)

Conductividad

(mg/cm)

Temperatura

(ºC)

Cd1

Cd2

Cd3

Cd4

Cd5

T₁d1

T₁d2

T₁d3

T₁d4

T₁d5

T₂d1

T₂d2

T₂d3

T₂d4

T₂d5

T₃d1

T₃d2

T₃d3

T₃d4

T₃d5

Promedio

8.75

8.67

8.60

8.71

8.70

8.80

8.70

8.65

8.75

8.73

8.76

8.67

8.64

8.76

8.74

8.76

8.67

8.67

8.75

8.72

8.71

8.39

8.54

8.70

8.58

8.70

8.44

8.60

8.69

8.61

8.68

8.45

8.59

8.72

8.69

8.72

8.44

8.64

8.72

8.60

8.72

8.61

7.8

7.8

7.8

7.8

7.5

7.5

7.5

7.5

7.5

7.5

7.5

7.5

7.5

7.5

7.8

7.8

7.8

7.8

7.8

7.8

7.65

13.03

13.03

13.03

13.03

13.03

12.98

12.98

12.98

12.98

12.98

12.92

12.92

12.92

12.92

12.92

13.30

13.30

13.30

13.30

13.30

12.41

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

26

Fuente: Coronel & Yupa

30

4.1.2. Resultados de DQO semana 1

Tabla 6: Resultado DQO semana 1


Semana

1

TRATAMIENTOS

Días C (𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂) T₁(

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂) T₂(

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂) T₃(

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂)

1

1836.66

1836.66

1836.66

1836.66

3

-

1770

1703.33

636.66

5 - 1036.66 770 3.33

31


concentraciones en estanques de camarones

Figura 13: Grafica de diferencia del DQO con las diferentes concentraciones


4.1.4. Discusión de resultados

Los análisis del DQO(demanda química de oxigeno) para la primera semana se

mostró en la figura 13 está en 1836.66 al inicio sin la enzima en la que queda una

como control (C₀) , ya con la enzima con las diferentes concentraciones, para el

primer análisis en el tercer día en comparación del tratamiento (T₁) con la de control

es de 1770 la del tratamiento (T₂) 1703.33 y la del tratamiento (T₃) 636.66 hay una

diferencia entre la inicial según las concentraciones aplicadas y en el último día,

(T₁)1036.60, (T₂) 770 y (T₃) 3.33 lo que da como resultado que el tratamiento con

la enzima para la primera semana a dado buenos resultados.

1836.66 1836.66 1836.661836.66

1770

1036.6

1836.661703.33

770

1836.66

636.66

3.330

200

400

600

800

1000

1200

1400

1600

1800

2000

DQ

O

MUESTRAS

DIFERENCIA CON LAS DIFERENTES CONCENTRACIONES(semana 1)

C₀ T₁ T₂ T₃

Día 3Día 1 Día 5

32

4.2. Tabla de resultados de la semana 2

Tabla 7: Pruebas de la enzima en Reactor con el agua


Muestras pH Oxigeno

(mg/l)

Salinidad

(ppm)

Conductividad

(mg/cm)

Temperatura

(ºC)

C₀d1

C₀d2

C₀d3

C₀d4

C₀d5

T₁d1

T₁d2

T₁d3

T₁d4

T₁d5

T₂d1

T₂d2

T₂d3

T₂d4

T₂d5

T₃d1

T₃d2

T₃d3

T₃d4

T₃d5

Promedio

8.28

8.84

8.70

8.75

8.86

8.21

8.79

8.70

8.72

8.82

8.25

8.83

8.80

8.75

8.84

8.27

8.84

8.83

8.77

8.87

8.69

7.29

8.62

8.58

8.63

8.53

6.15

8.45

8.43

8.49

8.44

6.68

8.50

8.53

8.59

8.49

6.74

8.47

8.48

8.52

8.44

8.15

6.3

6.3

6.3

6.3

6.3

6.3

6.3

6.3

6.3

6.3

6.4

6.4

6.4

6.4

6.4

6.4

6.4

6.4

6.4

6.4

6.35

10.84

10.84

10.84

10.84

10.84

10.76

10.76

10.76

10.76

10.76

10.89

10.89

10.89

10.89

10.89

11.00

11.00

11.00

11.00

11.00

10.87

26

24

24

24

24

26

24

24

24

24

26

24

24

24

24

26

24

24

24

24

24.4

33

4.2.1. Tabla de resultados DQO semana 2

Tabla 8: Tabla de resultado DQO semana


Semana

2

TRATAMIENTOS

Días C (𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂) T₁(

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂) T₂(

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂) T₃(

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂)

1

1170

1170

1170

1170

3

-

1036.60

970

303.33

5 - 703.33 436.66 3.33

34



Figura 14: Grafica de diferencia del DQO 1con las diferentes concentraciones


4.2.3. Discusión de análisis

Los análisis del DQO para la segunda semana se mostró en la figura 14 está

en 1170 al inicio sin la enzima en la que queda una como control (C₀) , ya con

la enzima con las diferentes concentraciones, para el primer análisis en el tercer

día en comparación del tratamiento (T₁) con la de control es de 1036.60 la del

tratamiento (T₂) 970 y la del tratamiento (T₃) 303.33 hay una diferencia entre la

inicial según las concentraciones aplicadas y en el último día, (T₁)703.33, (T₂)

436.66 y (T₃) 3.33 lo que da como resultado que el tratamiento con enzima para

la segunda semana a dado buenos resultados.

35

4.3. Tabla de resultados la semana 3

Tabla 9: Pruebas de la enzima en Reactor con el agua

Muestras pH Oxigeno

(mg/l)

Salinidad

(ppm)

Conductividad

(mg/cm)

Temperatura

(ºC)

C₀d1

C₀d2

C₀d3

C₀d4

C₀d5

T₁d1

T₁d2

T₁d3

T₁d4

T₁d5

T₂d1

T₂d2

T₂d3

T₂d4

T₂d5

T₃d1

T₃d2

T₃d3

T₃d4

T₃d5

Promedio

8.34

8.55

8.55

8.51

8.49

8.33

8.46

8.42

8.41

8.43

8.33

8.49

8.50

8.45

8.45

8.41

8.53

8.52

8.50

8.47

8.46

8.17

8.34

8.38

8.46

8.63

8.16

8.24

8.30

8.43

8.74

8.18

8.29

8.36

8.46

8.53

8.18

8.27

8.36

8.50

8.52

8.39

29.8

29.8

29.8

29.8

31.0

29.8

29.8

29.8

29.8

30.3

29.8

29.8

29.8

29.8

30.7

29.8

29.8

29.8

29.8

31.5

30

46.7

46.7

46.7

46.7

47.1

46.7

46.7

46.7

46.7

46.6

46.7

46.7

46.7

46.7

47.1

46.7

46.7

46.7

46.7

48.2

46.82

27

25

25

25

24

27

25

25

25

24

27

25

25

25

24

27

25

25

25

24

25.11


36

4.3.1. Tabla de resultados de DQO semana 3

Tabla 10: Tabla de resultados DQO semana 3


Semana

3

TRATAMIENTOS

Días C T₁ T₂ T₃

1

2103.33

2103.33

2013.33

2103.33

3

- 603.33 370 136.66

5 - 170 136.66 3.33

37






Los análisis del DQO para la tercera que se muestra en la figura 15 está en

2103.33 al inicio sin la enzima en la que queda una como control ( C₀ ) , ya con

la enzima con las diferentes concentraciones, para el primer análisis en el tercer

día en comparación del tratamiento (T₁) con la de control es de 603.33 la del

tratamiento (T₂) 370 y la del tratamiento (T₃) 136.66 hay una diferencia entre la

inicial según las concentraciones aplicadas y en el último día, (T₁)170, (T₂)

136.66 y (T₃) 3.33 lo que da como resultado que el tratamiento con enzima para

la tercera semana a dado buenos resultados.

38

4.4. Tabla de resultados la semana 4

Tabla 11: Pruebas de la enzima en aguas de camaroneras: semana 4

Muestras pH Oxigeno

(mg/l)

Salinidad

(ppm)

Conductividad

(mg/cm)

Temperatura

(ºC)

Cd1

Cd2

Cd3

Cd4

Cd5

T₁d1

T₁d2

T₁d3

T₁d4

T₁d5

T₂d1

T₂d2

T₂d3

T₂d4

T₂d5

T₃d1

T₃d2

T₃d3

T₃d4

T₃d5

Promedio

8.34

8.49

8.47

8.44

8.50

8.33

8.44

8.42

8.41

8.49

8.33

8.47

8.45

8.45

8.50

8.41

8.52

8.48

8.47

8.53

8.44

8.17

8.27

8.46

8.60

8.51

8.16

8.26

8.34

8.53

8.41

8.18

8.30

8.41

8.56

8.42

8.18

8.30

8.41

8.53

8.41

8.37

29.8

29.8

29.8

29.8

31.0

29.8

29.8

29.8

29.8

30.3

29.8

29.8

29.8

29.8

30.7

29.8

29.8

29.8

29.8

31.5

30

46.7

46.7

46.7

46.7

47.1

46.7

46.7

46.7

46.7

46.6

46.7

46.7

46.7

46.7

47.1

46.7

46.7

46.7

46.7

48.2

46.81

26

25

25

25

25

26

25

25

25

25

26

25

25

25

25

26

25

25

25

25

25.20


39

4.4.1. Tabla de resultados DQO semana 4

Tabla 12: Tabla de resultados DQO semana 4

FUENTE: Coronel & Yupa

Semana

1

TRATAMIENTOS

Días C T₁ T₂ T₃

1

1036.66

1036.66

1036.66

1036.66

3

- 536.66 203.33 36.66

5 - 160 130 3.33

40






Los análisis del DQO para la cuarta semana que se muestra en la figura 16 está

en 1036.66 al inicio sin la enzima en la que queda una como control ( C ) , ya

con la enzima con las diferentes concentraciones, para el primer análisis en el

tercer día en comparación del tratamiento (T₁) con la de control es de 536.66 la

del tratamiento (T₂) 203.33 y la del tratamiento (T₃) 36.66 hay una diferencia

entre la inicial según las concentraciones aplicadas y en el último día, (T₁) no se

le hizo análisis, (T₂) no se le hizo análisis (T₃) 3.33 lo que da como resultado que

el tratamiento con enzima para la cuarta semana a dado buenos resultados.

1036.66 1036.66 1036.661036.66

536.66

160

1036.66

203.33130

1036.66

36.66 3.330

200

400

600

800

1000

1200

DQ

O

MUESTRAS

DIFERENCIA DE DISMINUCION CON LASA DIFERENTES CONCENTRACIONES

C₀ T₁ T₂ T₃

Día 3 Día 5Día 1

41

4.5. DISCUSIÓN Y ANÁLISIS DE RESULTADOS

4.5.1. Análisis y resultados de DQO

Tabla 13: resultados de los análisis de DQO

SEMANAS DQO(o) DQO(f) % remoción

SEMANA 1 1836.66 3.33 99.81

SEMANA 2 1170 3.33 99.71

SEMANA 3 2103.33 3.33 99.84

SEMANA 4 1036.66 3.33 99.67


4.6. Análisis en las columnas de agua

4.6.1. pH

El pH es un parámetro muy importante en el agua de camaronera, los análisis

que se hicieron en el laboratorio de agua en comparación con la figura de las

normativas del N₀ 0.97-A-Tabla 2: criterios de calidad admisibles para la

preservación de la vida acuática y silvestre en aguas dulces, marinas y estuarios,

nos dice que los rangos son de 6.5-9.5, los valores que se anotaron durante el

control de este parámetros en la semana 1, semana 2, semana 3, semana 4 está

entre 8.00 a 8.85, lo que significa que se encuentran en los rango establecido en

la normativa, no afecta la enzima en el pH durante el tratamiento.

La siguiente tabla muestra el efecto del pH en el camarón:

Tabla 14: Efecto del pH en el camarón

pH Efecto

4 PH acido letal

4-6 Crecimiento lento

6-9 Condición optimo

9-11 Crecimiento lento

11 pH básico letal


42

4.7. Oxígeno

El oxígeno es un factor crítico en los estanques, los análisis que se hicieron en el

laboratorio de agua en comparación con la figura de las normativas del N₀ 0.97-

A-Tabla 2: criterios de calidad admisibles para la preservación de la vida acuática

y silvestre en aguas dulces, marinas y estuarios, los rangos son de porcentaje de

saturación mayor a 60%

Los datos que se anotaron en el control de estos parámetros son de 6.15 a 8.5

mg/l en la semana 1, semana 2, semana 3 y semana 4, lo que está en rango

normales según la tabla siguiente de parámetros de calidad de agua y sus valores

estándar que dice que deben ser mayor a 4.0 mg/l lo que significa que durante el

tratamiento con la enzima no fue afectado este parámetro.

A continuación, observaremos en la figura 17, los parámetros del agua y sus

valores:

Figura 17: Parámetros de calidad de agua y sus valores estándar

Fuente: (Mayer, 2012)

43

4.8. Temperatura

La temperatura es un factor crítico ya que si se encuentra en rango menor a 21ºC

afecta el metabolismo de los camarones y no crecen, los análisis que se hicieron

para este parámetro durante el tratamiento fueron de 24 ºC a 27 ºC en la semana

1, semana 2, semana 3, y semana 4, lo que es normal para los estanques de

estos crustáceos según la tabla de condiciones de temperatura para especies

acuáticas y la enzima a evaluar no afecto durante la experimentación.

A continuación, se puedes observar en la figura 18 los rangos de temperatura

para las especies acuáticas:

Figura 18:Condiciones de temperatura para especies acuáticas.

Fuente: (Mayer, 2012)

4.9. Salinidad

La salinidad también es un parámetro a controlar en los estanques de camarones

ya que si se encuentra en salinidad menores a 5ppt afecta el crecimiento del

camarón, los análisis durante el tratamiento fueron de 6-30 ppt que es un rango

normal para estos crustáceos, los datos a que se obtuvieron en la semana 1,

44

semana 2, semana 3, semana 4, fueron estable desde el inicio al final durante

cada experimentación.

4.10. Conductividad

La conductividad está en rango de 10-46 mg/cm para la semana 1, semana 2,

semana 3, semana 4 lo que significa que se mantiene en los estándares de limites

permisibles para aguas de camaroneras, dando buenos resultados con la enzima

aplicada ya que no artera este parámetro.

45

4.11. Tabla de promedios de variables usadas en la experimentación


4.12. Grafica promedios de variables

4.13. Análisis de resultados

La grafica nos muestra que en las variables usadas no hay una afectación de la enzima

ya que se mantiene con sus valores iniciales y un rango permisibles para las industrias

camaroneras.

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

50

ph oxigeno (mg/l) salinidad(ppm) conductividad (mg/cm) temperatura (ºC)

Promedios de variables

Promedio semana 1 Promedio semana 2 Promedio semana 3 Promedio semana 4 promedio total

promedios ph oxigeno (mg/l) salinidad(ppm)

conductividad (mg/cm) temperatura (ºC)

Promedio semana 1 8,71 8,61 7,65 12,41 26

Promedio semana 2 8,69 8,15 6,35 10,87 24,4

Promedio semana 3 8,46 8,39 30 46,82 25,1

Promedio semana 4 8,44 8,37 30 46,81 25,2

promedio total 8,575 8,38 18,5 29,2275 25,175

46

CAPÍTULO V

CONCLUSIONES

Se redujo la concentración de materia orgánica del agua, en términos de

DQO de más de 2000 mg/l a 3.33mg/l en un tiempo de residencia de 28 días,

mediante la utilización del activador enzimático.

Los parámetros físicos-químicos analizados (salinidad 18.5 (ppm),

conductividad 29.23 (mg/cm), temperatura 25.18 (ºC) , pH), se mantuvieron

constantes a pesar de la aplicación de la enzima; lo que demuestra que la

enzima, solo influye en la materia orgánica.

Se realizó 4 muestras con diferentes dosificaciones enzimáticas,

concluyendo que los resultados de tratamiento 3 es la más óptima para la

reducción de DQO con una concentración de 2.4 𝛍lha.

El uso de enzima demostró ser una alternativa muy favorable para la

disminución de materia orgánica en estanques de camarones, mejorándose

significativamente la calidad de agua para los crustáceos.

Se alcanzó la tasa de remoción de 99.6% de DQO.

47

RECOMENDACIONES

Extender los análisis de los parámetros físicos-químicos( nitritos, nitratos,

nitrógeno, nitrógeno total etc) al suelo de los estanques, dado que la mayor

concentración de materia orgánica, reside en el fondo de los estanques.

Incorporar el análisis de turbiedad del agua, entre los parámetros de estudios;

dado que el mismo puede afectar a la fotosíntesis de las algas, limitando la

generación de oxígeno para la vida acuática.

Utilizar en la medida posible, aireadores mecánicos para proveer de oxigeno

suficiente a los camarones, el mismo que es consumido rápidamente a través de

los procesos químico y la degradación de la materia orgánica.

Investigar el impacto de la utilización de la enzima, en la reducción de la tasa de

recambio del agua de los estanques y el ahorro económico que representa

(análisis económico).

48

Bibliografía

(s.f.). Obtenido de http://www.ujaen.es/huesped/pidoceps/telav/fundespec/materia_organica.htm

Añazco, C. . (agosto de 2017). MÉTODOS Y USO DE PROBIÓTICOS PARA LA ELIMINACIÓN

DE MATERIA ORGÁNICA DE SUELOS EN ESTANQUES DE CULTIVOS ACUÍCOLAS.

Machala: Universidad Tecnica de Machala. Obtenido de

http://repositorio.utmachala.edu.ec/bitstream/48000/11352/1/DE00014_EXAMENCOM

PLEXIVO.pdf

aerobios, C. d. (agosto de 2008).

http://cidta.usal.es/Cursos/simulacion/modulos/Libros/uni_08/8.pdf.

Air liquide. (2018). AGUA - Oxígeno para el tratamiento de aguas residuales. Obtenido de

https://industrial.airliquide.cl/medio-ambiente/agua/oxigeno-para-el-tratamiento-aguas-

residuales

ambientum. (2016). Obtenido de https://www.ambientum.com

aquafeed. (2014). aquafeed. Obtenido de http://www.aquafeed.co/enzimas-mejora-en-la-calidad-

del-agua-el-suelo-en-acuicultura/

ceniacua. (2010). CENIACUA-COLCIENCIAS. Obtenido de

http://www.ceniacua.org/assets/PDFS/Manual%20fisicoquimicos%20Aguas%20y%20S

uelos.pdf

Coronel & Yupa. (24 de FEBRERO de 2018). EVALUACION DE UN ACTIVADOR

ENZIMATICO EN LA DISMINUCION EN ESTANQUES DE CAMARONES.

GUAYAQUIL.

Cuéllar-Anjel, J. (Agosto de 2013). ENFERMEDAD DE LAS MANCHAS BLANCAS.

SINDROME DE LAS MANCHAS BLANCAS, 1-5. Obtenido de

http://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/white-spot-disease-es.pdf

Dagoberto Sánchez, Carlos Ching. (junio de 2003). NITRITOS EN ESTANQUES DE CULTIVO

INTENSIVO DE CAMARON . Nicovita, 1-2. Obtenido de

http://www.nicovita.com/extranet/Boletines/abr_jun_2003_01.pdf

Dean M. Akiyama, W. G. (2012). sciencedirect. Obtenido de

http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B978044488606450031X

EEUU, D. d. (2010). repositorio uca. Obtenido de

http://repositorio.uca.edu.ni/2279/1/2001_m%C3%A9todo_para_mejorar_la_camaronicu

ltura.pdf

ELIZABETH, A. Q. (2018). repositorio.ug. Obtenido de

http://repositorio.ug.edu.ec/bitstream/redug/35389/1/401-1339%20-

%20Estud%20tratabilidad%20utilizando%20la%20enzima%20bioenzymar.pdf

Folleto InformativoConductividad Eléctrica/Salinidad. (s.f.). Obtenido de

https://www.waterboards.ca.gov/water_issues/programs/swamp/docs/cwt/guidance/3130

sp.pdf

googgle maps. (2019). Obtenido de https://www.google.com.br/maps/place/Taura/@-

2.3109921,-

79.7343171,17z/data=!3m1!4b1!4m8!1m2!2m1!1scamaronera+futura!3m4!1s0x902d5d

846279c39d:0xfee687487168baea!8m2!3d-2.3114798!4d-79.7319031

google imagenes. (2019). Obtenido de

https://www.google.com/search?rlz=1C1CHZL_esEC756EC756&biw=1280&bih=818&

tbm=isch&sa=1&ei=-CI1XPavAcnU5gKfv4-

wDQ&q=amilasa+estructura+quimica&oq=amilasa+estr&gs_l=img.1.1.0l2j0i8i30j0i24l

3.99145.100005..101786...0.0..0.124.573.0j5......0....1..gws-wiz-img.

49

google maps. (5 de enero de 2019). Obtenido de https://www.google.com.br/maps/@-2.1674886,-

79.9014173,14z

google maps. (2019). Obtenido de https://www.google.com.br/maps/@-2.3243389,-

80.083207,12z

Gurrola, J. H. (Marzo de 2016). cibnor.repositorioinstitucional. Obtenido de

https://cibnor.repositorioinstitucional.mx/jspui/bitstream/1001/42/1/hernandez_j.pdf

H., I. J. (2008). MATERIA ORGANICA: LA SANGRE DE LA TIERRA. M.C. Santa Ana Rios

Ruiz, 1-2.

Industrial, M. (2015). Análisis, comparativas y relaciones entre la DBO, DQO, COT. aguas

residuales info.

Jorge Cuéllar-Anjel, Cornelio Lara, Vielka Morales. (Diciembre de 2010). MANUAL DE

BUENAS PRÁCTICAS DE MANEJO PARA EL CULTIVO DE CAMARON BLANCO

Penaeus vannamei. Panama: New Concept Publications, Inc. Obtenido de

http://industriaacuicola.com/biblioteca/Camaron/Practicas%20de%20manejo%20para%2

0reducir%20el%20impacto%20ambiental%20del%20cultivo%20de%20camaron.pdf

Julian, G. D. (2010). dspace. Obtenido de

https://www.dspace.espol.edu.ec/bitstream/123456789/8699/1/juliangamboa.pdf

López, M. A. (2016). Enriquecimiento de actividad nitrificante en sedimentos marinos mediante

sistemas discontinuos . Concepción, Chile.

LÓPEZ, S. M. (2007). repository.eafit. Obtenido de

https://repository.eafit.edu.co/bitstream/handle/10784/362/LuisaFernanda_PosadaUribe_

2007.pdf;jsessionid=977ABF1B7C5E929A0D5BC3D7B69FB4E5?sequence=1

LUCRECIA BRUTTI, MARCELO BERTRAN, INES GARCIA DE SALAMONE. (2018).

BIORREMEDIACION DE LOS RECURSOS NATURALES. HURLINGHAM, BUENOS

AIRES : INTA.

Lutenberg, O. (s.f.). La Salinidad y su Influencia en Suelos y Plantas. Obtenido de

http://www.ana.gob.pe/media/496359/salinidad.pdf

Mario, B. F.-M. (Julio de 2015). repositorio ug . Obtenido de

http://repositorio.ug.edu.ec/bitstream/redug/13586/1/TESIS%20MARICULTURA%20C

AMARON.pdf

MAROTO ARROYO, Mª Esther y ROGEL QUESADA, Juan Manuel. (s.f.). APLICACIÓN DE

SISTEMAS DE BIORREMEDIACIÓN DE SUELOS Y AGUAS CONTAMINADAS POR

HIDROCARBUROS. file:///F:/028.pdf.

Mayer, E. (17 de Mayo de 2012). Obtenido de http://www.aquafeed.co/monitoreo-de-la-calidad-

de-agua-del-estanque-para-mejorar-la-produccion-de-camarones-y-peces/

Mayer, E. (26 de julio de 2012). Enzimas – mejora en la calidad del agua y el suelo en acuicultura.

Obtenido de http://www.aquafeed.co/enzimas-mejora-en-la-calidad-del-agua-el-suelo-en-

acuicultura/

Mayer, E. (26 de julio de 2012). Enzimas – mejora en la calidad del agua y el suelo en acuicultura.

Obtenido de http://www.aquafeed.co/enzimas-mejora-en-la-calidad-del-agua-el-suelo-en-

acuicultura/

Mezquita, A. (junio de 1995). TRATAMIENTO BIOLOGICO DE AGUAS RESIDUALES A

BASE DE ENZIMAS Y BACTERIAS. Lehninger, 1-4.

Mezquita, A. (2016). Tratamiento Biologico De Aguas Residuales A Base De Enzimas Y

Bacterias. Obtenido de

http://Www.Ciap.Org.Ar/Ciap/Sitio/Archivos/Tratamiento%20biologico%20de%20agua

s%20residuales.Pdf

50

Muñoz. (2012). Catarina. Obtenido de

http://Catarina.Udlap.Mx/U_Dl_A/Tales/Documentos/Lic/Munoz_C_R/Capitulo2.Pdf

Neyra, Ó. A. (2009). UTILIZACIÓN DE BACTERIAS NITRIFICANTES COMO

BIORREMEDIADORAS DEL AGUA DE CULTIVO DE Litopenaeus vannamei EN

TUMBES, PERÚ. La Rabida, España: UNIVERSIDAD INTERNACIONAL DE

ANDALUCIA.

Plaza, J. J.-P. (Julio de 2002). dspace. Obtenido de

https://www.dspace.espol.edu.ec/bitstream/123456789/3642/1/6169.pdf

Ramalho, R. (2016). Tratamiento De Aguas Residuales. Barcelona, España: Reverté, S.A.

Rodríguez, J. A. (2016). Ingenieroambiental. Obtenido de

http://Www.Ingenieroambiental.Com/4014/Tratamiento545.Pdf

Rodríguez-Miranda, J. M. (Enero de 2017). scielo. Obtenido de

http://www.scielo.org.co/pdf/reus/v19n2/0124-7107-reus-19-02-00309.pdf

s/n. (2011). ENZIMAS.

TAYRON, G. A. (2017). REVISIÓN ACERCA DE LA UTILIZACIÓN DE MICROORGANISMOS

EN EL MEJORAMIENTO DE SEDIMENTOS EN GRANJAS CAMARONERAS.

MACHALA: file:///F:/DE00002_EXAMENCOMPLEXIVO.pdf.

Tello, U. (2015). Obtenido de

http://repositorio.utmachala.edu.ec/bitstream/48000/2009/1/CD681_TESIS.pdf

Tello, U. (2015). repositorio. Obtenido de

http://repositorio.utmachala.edu.ec/bitstream/48000/2009/1/CD681_TESIS.pdf

Varela, M. (Diciembre de 2011). flacso. Obtenido de

https://www.flacso.edu.ec/portal/pnTemp/PageMaster/v1h0ohbg78sb6mncmkkr5w3mwj

i4ep.pdf

Víctor Talavera, Luis Miguel Zapata, Dagoberto Sánchez. (1996). LAS BACTERIAS Y LA

DESCOMPOSICIÓN DE MATERIA ORGÁNICA EN LOS ESTANQUES DE. Nicovita

, 01.

51

Anexos A

Ficha técnica

Figura 19: ficha técnica de enzima a utilizar

Fuente: Naturelsa s.a

52

ANEXO B

CALCULO DE DOSIFICACION DE LA ENZIMA PARA LOS REACTORES

De 400 ml 800 ml por HA

A= 300 = 3.10ˆ-6 cmˆ2

Media = 800+400 = 1200

1200/2= 600

Control tratamiento sin enzima

Control (C)= 0 enzima

Tratamiento uno con enzima para 400 mililitro por hectárea

400 ml∗3.10−6Ha

1 HA= 1.2𝑒10−3 𝑚𝑙

Conversión a micro litro

1.2 ∗ 10−3 𝑚𝑙 =1000 μl

1 ml= 1.2 𝛍l

Tratamiento 1 (T₁) = 1.2 𝛍l enzima

Tratamiento dos con enzima para 600 mililitro por hectárea

600 ml∗3.10−6Ha

1 HA= 1.8𝑒10−3 𝑚𝑙


1.8𝑒10−3 𝑚𝑙 =1000 μl

1 ml= 1.8 𝛍l

Tratamiento 2 (T₂) = 1.8 𝛍l enzima

Tratamiento tres con enzima para 800 mililitro por hectárea

800 ml∗3.10−6Ha

1 HA= 2.4𝑒10−3𝑚𝑙

53


2.4𝑒10−3𝑚𝑙 =1000 μl

1 ml= 2.4 𝛍l

Tratamiento 3 (T₃) = 2.4 𝛍l enzima

CÁLCULOS PARA OBTENER EL DQO POR EL MÉTODO DE ABSORBANCIA SEMANA 1

Y=0.0006X+0.0249 𝑿 =𝒀−𝟎.𝟎𝟐𝟒𝟗

𝟎.𝟎𝟎𝟎𝟔

Calculo para el día 1 sin enzima

Disolución 20 ml/1 ml= 20 ml

𝐶 =0.060 − 0.0249

0.0006= 58.5

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 1170

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

Calculo para el día 3 con enzima

𝑇₁ =0.056 − 0.0249

0.0006= 51.83

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 1036.6

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₂ =0.054 − 0.0249

0.0006= 48.5

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 970

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₃ =0.034 − 0.0249

0.0006= 13.17

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 303.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂


𝑇₁ =0.046 − 0.0249

0.0006= 35.17

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 703.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₂ =0.038 − 0.0249

0.0006= 21.83

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 436.66

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

54

𝑇₃ =0.025 − 0.0249

0.0006= 0.16

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 3.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂


Y=0.0006X+0.0249 𝑿 =𝒀−𝟎.𝟎𝟐𝟒𝟗

𝟎.𝟎𝟎𝟎𝟔



𝐶 =0.060 − 0.0249

0.0006= 58.5

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 1170

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂


𝑇₁ =0.056 − 0.0249

0.0006= 51.83

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 1036.6

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₂ =0.054 − 0.0249

0.0006= 48.5

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 970

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₃ =0.034 − 0.0249

0.0006= 13.17

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 303.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂


𝑇₁ =0.046 − 0.0249

0.0006= 35.17

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 703.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₂ =0.038 − 0.0249

0.0006= 21.83

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 436.66

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₃ =0.025 − 0.0249

0.0006= 0.16

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 3.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

55




𝐶 =0.088 − 0.0249

0.0006= 105.16

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 2103.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂


𝑇₁ =0.043 − 0.0249

0.0006= 30.16

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 603.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₂ =0.036 − 0.0249

0.0006= 18.5

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 370

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇3 =0.029 − 0.0249

0.0006= 6.83

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 136.66

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂


𝑇₁ =0.030 − 0.0249

0.0006= 8.5

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 170

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₂ =0.029 − 0.0249

0.0006= 6.83

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 136.66

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₃ =0.025 − 0.0249

0.0006= 0.16

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 3.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

56




𝐶 =0.056 − 0.0249

0.0006= 51.83

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 1036.66

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂


𝑇₁ =0.041 − 0.0249

0.0006= 26.83

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 536.66

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₂ =0.031 − 0.0249

0.0006= 10.16

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 203.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₃ =0.026 − 0.0249

0.0006= 1.83

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 36.66

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂


𝑇₁ =Y − 0.0249

0.0006=

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 =

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₂ =Y − 0.0249

0.0006=

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 =

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

𝑇₃ =0.025 − 0.0249

0.0006= 0.16

𝑚𝑙

𝑙∗ 20 = 3.33

𝑚𝑙

𝑙𝐷𝑄𝑂

57

ANEXO C

Evidencia Fotográfica

Colocación de la muestra en los reactores, como podemos observar en la figura 20:

Figura 20: colocación de muestras reactores


Figura 21: Pesaje de la enzima Fuente: Coronel & Yupa

58

Este fue nuestro modelo de reactor donde 3 reactores y uno era de control, como

podemos observar en la figura 22:

Figura 22: Reactores Listos Fuente: Coronel & Yupa

Como se puede observar el color de agua de la camaronera previo de la dosificación

de la enzima, como podemos observar en la figura 23:

Figura 23: visualización de una agua oscura antes de la enzima


59

Equipo en el cual se colocaba para el análisis de DQO, como podemos observar en la

figura 24:

Figura 24: Reactor de calentamiento con muestras


Los resultados que nos dio después de calcular el DQO, como podemos observar en la

figura 25:

Figura 25: Espectrofotómetro


60

Este equipo con el que mediamos pH, la cantidad de oxigeno como podemos observar

en la figura 26:

Figura 26: Medidor de pH


El equipo completo con bulbo, como podemos observar en la figura 27:

Figura 27: Medidor de Oxigeno


61

Nuestros reactores ya con la dosificación y con aireación como podemos observar en

la figura 28:

Figura 28: Reactores ya con la dosificación Fuente: Coronel & Yupa

La aireación es importante la que le ayuda a la remoción de la enzima como podemos

observar la parte superior de la figura 29:

Figura 29 :Reactores ya puesta la enzima


62

Ubicaciones de las camaroneras que se adquirió la muestras como lo mostramos en la

figura 30 y 31:

Figura 30: Ubicación de camaronera

Fuente: (googgle maps, 2019)

Figura 31 Ubicación camaronera

(google maps, 2019)

63

Muestra de la recoleccion de las muestras podemos observar en a figura 32:

Figura 32: Recolección de muestras en la camaronera


Se observa los sedimentos y el agua con un tono opaco, para nuestro análisis como se

observa en la figura 33:

Figura 33: Estanque Camaronera


64

Análisis de DQO con su temperatura, como podemos observar en la figura 34:

Figura 34: Reactor de DQO


Prueba de evidencia de la solución A y B como se observa en la figura 35:

Figura 35: Solución A y Solución B con la muestra


65

Equipo espectrómetro que es fundamental para los análisis:

Figura 36: Espectrofotómetro


Vista panorámica de la camaronera como podemos observar en la figura 37:

Figura 37: Estanques acuático


66

Una de las piscinas que se recolecto las muestra podemos, observar en la figura 38:

Figura 38: Estanques para la recolección de la Muestras


67

ANEXO D

Tabla 15: tabla de control semana 1

AGUA SIN ENZIMA

MIERCOLES 7 DE NOVIEMBRE 2018

DIA (1) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)

CONTROL 8.39 8.75 7.8 13.03 26

TRATAMIENTO

1

8.44 8.80 7.5 12.98 26

TRATAMIENTO

2

8.45 8.76 7.5 12.92 26

TRATAMIENTO

3

8.44 8.76 7.8 13.30 26

AGUA CON ENZIMA

JUEVES 8 DE NOVIEMBRE 2018


CONTROL 8.54 8.67 7.8 13.03 26

TRATAMIENTO

1

8.60 8.70 7.5 12.98 26

TRATAMIENTO

2

8.59 8.67 7.5 12.92 26

TRATAMIENTO

3

8.64 8.67 7.8 13.30 26

AGUA CON ENZIMA

VIERNES 9 DE NOVIEMBRE 2018


CONTROL 8.70 8.60 7.8 13.03 26

TRATAMIENTO

1

8.69 8.65 7.5 12.98 26

TRATAMIENTO

2

8.72 8.64 7.5 12.92 26

TRATAMIENTO

3

8.72 8.67 7.8 13.30 26

AGUA CON ENZIMA

SABADO 10 DE NOVIEMBRE 2018


CONTROL 8.58 8.71 7.8 13.03 26

TRATAMIENTO

1

8.61 8.75 7.5 12.98 26

TRATAMIENTO

2

8.69 8.76 7.5 12.92 26

68


TRATAMIENTO

3

8.60 8.75 7.8 13.30 26

AGUA CON ENZIMA

DOMINGO 11 DE NOVIEMBRE 2018


CONTROL 8.70 8.70 7.8 13.03 26

TRATAMIENTO

1

8.68 8.73 7.5 12.98 26

TRATAMIENTO

2

8.72 8.74 7.5 12.92 26

TRATAMIENTO

3

8.72 8.72 7.8 13.30 26

69


AGUA SIN ENZIMA

MARTES 20 DE NOVIEMBRE 2018


CONTROL 7.29 8.28 6.3 10.84 26

TRATAMIENTO 1 6.15 8.21 6.3 10.76 26

TRATAMIENTO 2 6.68 8.25 6.4 10.89 26

TRATAMIENTO 3 6.74 8.27 6.4 11.00 26

AGUA CON ENZIMA

MIERCOLES 21 DE NOVIEMBRE 2018


CONTROL 8.62 8.84 6.3 10.84 24

TRATAMIENTO 1 8.45 8.79 6.3 10.76 24

TRATAMIENTO 2 8.50 8.83 6.4 10.89 24

TRATAMIENTO 3 8.47 8.84 6.4 11.00 24

AGUA CON ENZIMA

JUEVES 22 DE NOVIEMBRE 2018

DIA . (3) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)

CONTROL 8.58 8.70 6.3 10.84 24

TRATAMIENTO 1 8.43 8.70 6.3 10.76 24

TRATAMIENTO 2 8.53 8.80 6.4 10.89 24

TRATAMIENTO 3 8.48 8.83 6.4 11.00 24

AGUA CON ENZIMA

VIERNES 23 DE NOVIEMBRE 2018


CONTROL 8.63 8.75 6.3 10.84 24

TRATAMIENTO 1 8.49 8.72 6.3 10.76 24

TRATAMIENTO 2 8.59 8.75 6.4 10.89 24

TRATAMIENTO 3 8.52 8.77 6.4 11.00 24

AGUA CON ENZIMA

SABADO 24 DE NOVIEMBRE 2018


70


CONTROL 6.3 10.84 24

TRATAMIENTO 1 6.3 10.76 24



71


AGUA SIN ENZIMA

VIERNES 14 DE DICIEMBRE 2018


CONTROL 8.17 8.34 29.8 46.7 27

TRATAMIENTO

1

8.16 8.33 29.8 46.7 27

TRATAMIENTO

2

8.18 8.33 29.8 46.7 27

TRATAMIENTO

3

8.18 8.41 29.8 46.7 27

AGUA CON ENZIMA

SABADO 15 DE DICIEMBRE 2018


CONTROL 8.34 8.55 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

1

8.24 8.46 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

2

8.29 8.49 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

3

8.27 8.53 29.8 46.7 25

AGUA CON ENZIMA

DOMINGO 16 DE DICIEMBRE 2018


CONTROL 8.38 8.55 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

1

8.30 8.42 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

2

8.36 8.50 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

3

8.36 8.52 29.8 46.7 25

AGUA CON ENZIMA

LUNES 17 DE DICICIEMBRE 2018


CONTROL 8.46 8.51 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

1

8.43 8.41 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

2

8.46 8.45 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

3

8.50 8.50 29.8 46.7 25

AGUA CON ENZIMA

MARTES 18 DE DICIEMBRE 2018


72


CONTROL 8.63 8.49 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

1

8.74 8.43 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

2

8.53 8.45 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO

3

8.52 8.47 29.8 46.7 25

73


AGUA SIN ENZIMA

MARTES 18 DE DICIEMBRE 2018


CONTROL 8.17 8.34 29.8 46.7 26

TRATAMIENTO 1 8.16 8.33 29.8 46.7 26

TRATAMIENTO 2 8.18 8.33 29.8 46.7 26

TRATAMIENTO 3 8.18 8.41 29.8 46.7 26

AGUA CON ENZIMA

MIERCOLES 19 DE DICIEMBRE 2018


CONTROL 8.27 8.49 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 1 8.26 8.44 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 2 8.30 8.47 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 3 8.30 8.52 29.8 46.7 25

AGUA CON ENZIMA

JUEVES 20 DE DICIEMBRE 2018


CONTROL 8.46 8.47 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 1 8.34 8.42 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 2 8.41 8.45 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 3 8.41 8.48 29.8 46.7 25

AGUA CON ENZIMA

VIERNES 21 DE DICIEMBRE 2018


CONTROL 8.60 8.44 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 1 8.53 8.41 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 2 8.56 8.45 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 3 8.53 8.47 29.8 46.7 25

AGUA CON ENZIMA

SABADO 22 DE DICIEMBRE 2018


74


CONTROL 8.51 8.50 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 1 8.41 8.49 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 2 8.42 8.50 29.8 46.7 25

TRATAMIENTO 3 8.41 8.53 29.8 46.7 25

75

ANEXO E Norma Técnica Ecuatoriana aplicada para nuestro proyecto

Figura 39: Norma Técnica Ecuatoriana

Fuente: (Ecuador Patente nº primera revision, 2013)

76

Los parámetros que utilizamos como base de DQO a partir de la norma técnica como

vemos en la figura 40:

Figura 40: Parámetros de DQO


77

Criterios de calidad de acuerdo a la norma ecuatoriana NTE- INEN 2169-2013 como se

muestra en la figura 41:

Figura 41: Criterios a partir de los parámetros de DQO


78

Hoja técnica de las soluciones A y B para los análisis de DQO mostrados en la figura

42:

Fuente: DQO para análisis

Figura 42: Soluciones A+B para DQO

79

Los reactivos que se utilizo para los análisis como se muestra en la figura 43:

Figura 43: Reactivos aplicados para los análisis de DQO

Fuente: (Coronel & Yupa, 2018)

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