UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

ESCUELA DE MEDICINA VETERINARIA

“DETERMINACIÓN DE LA PRESENCIA DEL ANTÍGENO

DEL VIRUS DE LEUCEMIA FELINA DURANTE ABRIL Y

MAYO DEL 2011 EN SALIVA DE GATOS QUE SE

PRESENTAN A CONSULTA AL HOSPITAL DE LA

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA Y

SEIS DIFERENTES CLÍNICAS DE LA CIUDAD CAPITAL”

MADELYN GABRIELA MORALES GÓMEZ

Médica Veterinaria

GUATEMALA, AGOSTO DE 2012

UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

ESCUELA DE “MEDICINA VETERINARIA”

“DETERMINACIÓN DE LA PRESENCIA DEL ANTÍGENO DEL VIRUS DE LEUCEMIA FELINA DURANTE ABRIL Y MAYO DEL 2011 EN SALIVA DE GATOS QUE SE PRESENTAN A CONSULTA AL HOSPITAL DE LA FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA Y SEIS DIFERENTES CLÍNICAS DE LA CIUDAD CAPITAL”

TRABAJO DE GRADUACIÓN

PRESENTADO A LA HONORABLE JUNTA DIRECTIVA DE LA FACULTAD

POR

MADELYN GABRIELA MORALES GÓMEZ

Al conferírsele el título profesional de

Médica Veterinaria

En el grado de Licenciado

GUATEMALA, AGOSTO DE 2012

JUNTA DIRECTIVA

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA

DECANO: M. V. Leónidas Ávila Palma

SECRETARIO: M. V. Marco Vinicio García Urbina

VOCAL I: Lic. Sergio Amílcar Dávila Hidalgo

VOCAL II: M. V. MSc. Dennis Sigfried Guerra Centeno

VOCAL III: M. V. Carlos Alberto Sánchez Flamenco

VOCAL IV: Br. Mercedes de los Ángeles Marroquín Godoy

VOCAL V: Br. Jean Paul Rivera Bustamante

ASESORES

M.V. Carlos Fernando de León García

M.V. Andrea Lorena Portillo García

M.V. Federico Joaquín Villatoro Paz

HONORABLE TRIBUNAL EXAMINADOR

En cumplimiento con lo establecido por los reglamentos y

normas de la Universidad de San Carlos de Guatemala, presento

a su consideración el trabajo de graduación titulado:

“DETERMINACIÓN DE LA PRESENCIA DEL ANTÍGENO DEL

VIRUS DE LEUCEMIA FELINA DURANTE ABRIL Y MAYO DEL

2011 EN SALIVA DE GATOS QUE SE PRESENTAN A CONSULTA

AL HOSPITAL DE LA FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y

ZOOTECNIA Y SEIS DIFERENTES CLÍNICAS DE LA CIUDAD

CAPITAL”

Que fuera aprobado por la Honorable Junta Directiva de la Facultad de

Medicina Veterinaria y Zootecnia

Como requisito previo a optar el título profesional de:

MÉDICA VETERINARIA

DEDICATORIAS

A DIOS Y LA VIRGEN: Por regalarme día con día la sabiduría, paciencia y

serenidad para recorrer mi carrera y ayudarme a vencer

cada obstáculo puesto en mí camino.

A MI PADRES: Por ser la imagen de amor, lucha, sacrificio y por su

apoyo constante para seguir superándome

profesionalmente. Por ser el ejemplo e inspiración para

alcanzar mis metas y siempre estar a mi lado.

A MIS HERMANAS:

Nancy y Karen por ser mis mejores amigas, consejeras y

brindarme todos los momentos de alegría cuando más lo

necesité.

A MIS ABUELITOS: Por sus sabías palabras y enseñanzas para llegar al

éxito.

A MI NOVIO: Byron Rafael López por su apoyo, ser mi hombro donde

llorar, mi consejero, y con paciencia recordarme con una

sonrisa cada día que yo puedo y soy la mejor.

A MIS AMIGOS: Por todas las vivencias en las cuales compartimos

alegrías y penas durante la carrera, por su cariño y

amistad brindada. En especial a mi mejor amigo Paolo

Álvarez por su amistad incondicional.

A MI GATO: Sebastián ya que él fue la inspiración para la realización

de este estudio y ser una mejor veterinaria.

AGRADECIMIENTOS

A: La Universidad de San Carlos de Guatemala, por ser mi casa de estudios.

A: La Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia por abrirme las puertas

para alcanzar este logro.

A: Mis asesores Dr. Carlos De León, Dra. Andrea Portillo y Dr. Federico

Villatoro por su asesoría, revisión y corrección en la realización del presente

trabajo.

A: Mis profesores por haber compartido su conocimiento conmigo.

A: Todas las personas que participaron en la realización de este estudio, por

su valiosa colaboración e información.

ÍNDICE

I. INTRODUCCIÓN123............................................................................... 1

II. HIPÓTESIS123…….………………………………………………………… 3

III. OBJETIVOS………………………………………………………………… 4

3.1 General…...…………………………………………………………… 4

3.2 Específicos.…………………………………………………………... 4

IV. REVISIÓN DE LITERATURA…………………………………………….. 5

4.1 Historia de Leucemia Felina .……………………………….……... 5

4.2 Definición………..………………………………………………….… 5

4.2 Etiología………………………………………………………………. 5

4.3.1 Estructura del virus .…………….....……………………… 6

4.4 Transmisión…………………………………….…….…………………. 7

4.5 Fisiopatología…...……………………………………………………. 8

4.6 Patogenia ……………………………………………………………… 8

4.7 Categorías de pacientes según evolución de la infección…………. 10

4.8 Signos y manifestaciones clínicas……………..…………………….. 11

4.8.1 Manifestaciones neoplásicas…………………………………. 12

4.8.1.1 Linfoma………………………………………………. 12

4.8.1.1.1 Signos gastrointestinales o hepáticos ……….. 12

4.8.1.1.2 Signos respiratorios…………………………….. 12

4.8.1.1.3 Signos del tracto urinario………………………… 13

4.8.1.1.4 Signos oculares …..…………………………… 13

4.8.1.1.5 Signos neurológicos…………………………….. 13

4.8.1.2 Otras neoplasias………………………………………. 13

4.8.2 Manifestaciones no neoplásicas ..……………………… 13

4.8.2.1 Anemia regenerativa…. ………………………….. 13

4.8.2.2 Signos reproductivos……………………………..... 14

4.8.2.3 Signos musculoesqueléticos………………………… 14

4.8.2.4 Signos gastrointestinales o hepáticos……………….. 14

4.8.2.5 Signos respiratorios ………………………………. 15

4.8.2.6 Signos neurológicos ……………………………….. 15

4.9 Diagnóstico de laboratorio ……………………………………………. 15

4.9.1 Inmunofluorescencia o IFA (Immunofluorescense Assay )…… 16

4.9.2 Prueba ELISA …………………………………………………… 16

4.9.3 ELISA e IFA ……………………………………………………… 17

4.10 Tratamiento……………………………………………………….. 18

4.11 Prevención ………………………………………………………… 19

4.12 Estudios en Guatemala ………………………………………….. 20

V. MATERIALES Y MÉTODOS …………………………………………….. 21

5.1 Área de estudio …………………………………………….…… 21

5.2 Materiales …………………………………………………………… 21

5.1.1 Recursos humanos …………………………………….. 21

5.1.2 De laboratorio ……………………………………… 21

5.1.3 De tipo biológico ………………………………………… 21

5.1.4 De escritorio …………………………………………….. 21

5.3 Metodología ………………………………………..………………… 22

5.4 Diseño del estudio …………………………………..…………….… 23

5.5 Análisis estadístico …………………………….…………………… 23

VI. RESULTADOS ………………………….…………..………………...... 25

VII. DISCUSIÓN…………………………………………….…………………. 26

VIII. CONCLUSIONES…… ……………………………….……………….. 29

IX. RECOMENDACIONES………………………………….…………..….. 30

X. RESUMEN ……………………………………………….…………….. 31

SUMMARY ……………………………………………………………. 32

XII. ANEXOS ……………………………………………………………… 33

XIII. BIBLIOGRAFÍA ………………………………………………………. 41

Tabla 1…………………………………………………………………………. 26

Tabla 2…………………………………………………………………………. 40

ÍNDICE DE TABLAS

ÍNDICE DE IMÁGENES

Imagen 1……………………………………………………………………… 34

Imagen 2……………………………………………………………………… 35

Imagen 3……………………………………………………………………… 35

Imagen 4……………………………………………………………………… 36

Imagen 5……………………………………………………………………… 37

1

I. INTRODUCCIÓN

El incremento gradual de la población felina en nuestro país está

acompañado del aumento en la presentación de enfermedades que ponen en

riesgo la salud animal. La infección por el virus de leucemia felina es una de las

principales enfermedades retrovirales de mayor morbilidad y mortalidad en los

felinos, que requiere de un diagnóstico oportuno que permita prolongar la vida de

los animales infectados y enfermos.

En diferentes clínicas veterinarias se diagnostica la leucemia felina, y hasta

la fecha no se utilizan rutinariamente métodos diagnósticos prácticos para realizar

y confirmar dichos resultados. Ya que la manera de diagnosticar la enfermedad es

a través de muestras de sangre de la vena cefálica o yugular exponiendo al gato a

mucho estrés.

El virus de Leucemia Felina (ViLeF) se transmite principalmente por saliva,

existen factores predisponentes como el contacto estrecho y prolongado entre

gatos y hacinamiento, entre otros. La importancia de dicha enfermedad radica en

que la misma no posee cura, causa una alta tasa de mortalidad, es de carácter

inmunosupresor para el animal y es altamente infecciosa.

Este estudio se realizó durante los meses de abril y mayo del 2011,

contemplando como área de estudio las zonas 5,7,10,12,15 y 17 de la ciudad

capital. El estudio es de carácter descriptivo y de corte transversal. En

comparación con dos estudios realizados previamente en Guatemala, el primer

estudio del año 2003 en el Hospital de la Facultad de Medicina Veterinaria y

Zootecnia, fue de tipo prospectivo, López (18) y el segundo del año 2007 en

Antigua Guatemala, Sacatepéquez, fue de tipo retrospectivo, Guerra (19); a

diferencia de los estudios previos en los cuales utilizaron muestras de sangre para

determinar anticuerpos en el animal, este estudio se realizó con muestras de

saliva para determinar la presencia del antígeno del virus de leucemia felina.

2

Lo más importante en este estudio es evaluar un método diagnóstico

menos invasivo y cómodo para el paciente que permita el diagnóstico de la

leucemia felina, buscando la presencia del antígeno viral en la saliva. Comparando

ésta investigación con los estudios sanguíneos demostró ser un método práctico

para el médico veterinario, seguro y cómodo para el paciente. Causando menos

estrés y evitándole inmunosupresión al paciente.

Utilizando saliva de gatos pude diagnosticar la presencia del antígeno p27

del virus de la leucemia felina (ViLeF).

3

II. HIPÓTESIS

Existe presencia del virus de leucemia felina en saliva de los gatos muestreados.

4

III. OBJETIVOS

3.1 GENERAL:

Determinar la presencia del antígeno del virus de leucemia felina en

la saliva de gatos que asisten a consulta al Hospital de la Facultad

de Medicina Veterinaria y Zootecnia y seis diferentes clínicas

veterinarias de la Ciudad Capital.

3.2 ESPECÍFICOS:

Determinar la correlación de la presencia en saliva del antígeno del

virus de leucemia felina con el sexo de los animales muestreados.

Determinar si existe presencia o no de signos clínicos en gatos

positivos al antígeno del virus de leucemia felina en la prueba de

saliva.

Determinar la correlación de la presencia de signos de los animales

positivos al virus de leucemia felina con los animales que siendo

negativos presentaron signos.

5

IV. REVISIÓN DE LITERATURA

LEUCEMIA FELINA

4.1 HISTORIA DE LEUCEMIA FELINA

El descubrimiento del virus de la leucemia felina fue en 1964 realizado por

los hermanos, Willian y Oswald Jarret, médicos veterinarios de la Universidad de

Glasgow, Escocia. Ellos demostraron que los gatos eran susceptibles a

infecciones por retrovirus, y en consecuencia a padecimientos de leucemias,

linfomas, anemias aplásicas y síndrome de inmunodeficiencia. Estos mismos

investigadores, además, demostraron que los gatos criados en casa eran

susceptibles a la infección.

(1,2)

4.2 DEFINICIÓN

La enfermedad de leucemia felina es una enfermedad viral, no una

enfermedad oncológica. Ésta es una enfermedad viral de los gatos domésticos

que altera la función del sistema inmunológico, puede asociarse a la aparición de

neoplasias a los pacientes que la padecen. La leucemia en gatos ha sido asociada

también con diversas manifestaciones clínicas como: anemias, procesos

antiproliferativos, inmunosupresión y neoplasias. Los diversos tipos de lesiones

clínicas a observarse en el animal infectado dependerán del genotipo viral

involucrado así como de la eficiencia del sistema inmune del hospedero.

(1,2)

4.3 ETIOLOGÍA

La edad en la que la incidencia es mayor es de 1-6 años,

siendo ligeramente más frecuente en gatos machos que en hembras.

6

La enfermedad es causada por el virus de la leucemia felina (ViLeF)

perteneciente a la familia de los Retrovirus, es un virus de ARN monofilamento, y a

la subfamilia de los Oncovirus.

(3, 4, 5,6)

Hay tres tipos de oncovirus felinos:

A. Los oncovirus endógenos son los que se encuentran presentes en algunas

células como genes normales, rara vez provocan enfermedad.

B. Los exógenos llamados provirus y capaces de replicarse, durante la

infección, integran su ADN al genoma de la célula huésped y por

recombinación son escindidos nuevamente del genoma portando consigo

un segmento del ADN de la célula huésped, como el caso de ViLeF.

C. Dentro de los exógenos que, para replicarse requieren la presencia de

ViLeF como el virus del sarcoma felino (FeSV).

(3, 4, 5,6)

Hay tres variedades de ViLeF (A, B y C) en función de las características de

la proteína gp 70 del envoltorio del virus. La mayoría de gatos infectados lo están

por la variedad A o bien por coexistencia de las variedades A y B.

(3, 4, 5,6)

4.3.1 Estructura del virus *:

NÚCLEO: contiene ARN y la enzima transcriptasa inversa, enzima

responsable de la inserción del ViLeF hacia el código genético del ADN de

una célula infectada.

PROTEÍNA INTERNA: Proteína común a todas las cepas (antígeno de

grupo) la proteína designada p27 se descubre como antígeno del ViLeF por

pruebas diagnósticas convencionales de ViLeF.

7

GLUCOPROTEíNAS DE CUBIERTA (gp70): consisten en un subgrupo de

antígenos A, B, C o combinaciones de éstos determinan la infectividad,

rango de huéspedes y patogenicidad, (son la causa de los variados cuadros

clínicos de la infección). También estimulan una respuesta protectora

neutralizada del huésped que ocurre bajo exposición natural o vacunación.

Todos los gatos virémicos llevan el subgrupo A solo o combinado con B, C

ó ambos. Parece ser que la unión de los subgrupos A y B determinan

cuadros tumorales, mientras que la presencia del subgrupo C se asocia con

anemias no regenerativas.

PROTEINA DE CUBIERTA (p15): mediadora de la anemia y de la

inmunodeficiencia provocada por el ViLeF.

ANTÍGENO FOCMA (Feline Oncornavirus Cell Membrane Antigen): En

realidad no es un componente del virus. Se crea en la membrana de las

células neoplásicas infectadas por el ViLeF al interactuar las proteínas del

virus con las de la membrana celular. Esta transformación es reconocida

por el hospedador y se sintetizan anticuerpos anti-FOCMA. Altas

concentraciones de Ac anti-FOCMA protegen al gato de los síndromes

proliferativos (tumorales), pero no del resto de enfermedades asociadas al

ViLeF.

(3,7)

* Ver imagen # 1 en anexos.

4.4 TRANSMISIÓN

Principalmente por contacto oronasal íntimo con saliva infecciosa. La mayor

concentración de virus se presenta en la saliva de un gato infectado de forma

8

permanente. El virus se disemina por hábitos donde hay intercambio de saliva

entre los gatos, como el acicalamiento o compartir el comedero y el bebedero.

(3,8, 9,10)

Alternativamente, la infección por ViLeF puede estar causada por

mordeduras o por contacto con orina y heces que contengan el virus. También es

posible que el virus se transmita de la madre a los cachorros durante la gestación

o a través de la leche materna infectada. Sin embargo, no es frecuente que los

gatos infectados por ViLeF den a luz ya que el virus normalmente causa muerte

prenatal de los cachorros provocando reabsorciones o abortos.

(3,8, 9,10)

4.5 FISIOPATOLOGÍA

La biología de la infección por ViLeF en los gatos es muy compleja. Cuando

se infecta una célula, el ARN vírico es capaz de copiarse a sí mismo dentro de un

provirus ADN que se integra en el cromosoma hospedador. En un 20% de los

gatos infectados, esta integración culminará en una transformación maligna,

especialmente linfosarcoma. Muchos más gatos están afectados por la profunda

inmunodeficiencia que acompaña a la infección. Las causas predominantes de la

muerte de los gatos infectados son: anemia, infecciones oportunistas y tumores.

(3,4,6,7)

A pesar de que los gatos adultos son susceptibles a enfermarse, la

susceptibilidad a infectarse es mayor en gatos menores de un año de edad. Los

gatos de edades superiores presentan una significativa resistencia natural a la

infección. Una vez infectados, sin embargo, la infección por ViLeF se mantiene

durante meses ó años antes de desembocar en un deterioro físico y muerte. La

capacidad de los gatos infectados de eliminar altas concentraciones de virus en la

9

saliva favorece la transmisión rápida y eficaz del virus a gatitos susceptibles,

especialmente a los que viven en grupo.

(3,4,6,7)

4.6 PATOGENIA **

Conocer la patogénesis de la infección es fundamental para el diagnóstico y

prevención de la enfermedad. La infección por el ViLeF se produce en varias

fases:

(10, 11)

FASE I (2 a 12 días): El virus entra en el organismo y se replica en la

orofaringe o los nódulos linfáticos. Esta fase puede durar hasta 12 días y el

virus aún no ha pasado a la sangre.

FASE II (2 a 12 días): El virus se disemina en linfocitos y monocitos

circulantes (VIREMIA PRIMARIA).

FASE III (2 a 12 días): Replicación en centros linfoides sistémicos (centros

germinales). Estas tres primeras fases se dan en todos los casos de

infección por ViLeF. A partir de aquí la infección avanzará hasta las

siguientes fases ó no, dependiendo del tipo de cepa, edad del gato al

momento de la infección, número de gatos que conviven en el mismo

ambiente, estado inmune del animal o presencia de enfermedades

concurrentes.

FASE IV (2 a 6 semanas): Replicación en células epiteliales y de la

médula ósea. A partir de aquí, si la infección progresa, las pruebas de

diagnóstico comúnmente resultan positivas.

10

FASE V (4 a 6 semanas): Replicación en células madre de la médula y

viremia generalizada.

FASE VI (4 a 6 semanas): Viremia medular, replicación generalizada en

los epitelios y tejidos linfoides.

(7,10,11)

El ViLeF reproductor por lo general es eliminado 4 a 6 semanas después de

la exposición, a veces luego de una viremia transitoria que dura 1 a 5 semanas.

Los gatos no virémicos que se han recuperado de la infección transitoria por lo

general se vuelven portadores latentes de ViLeF por un período variable. En

infecciones latentes de ViLeF, el provirus no reproductor de ViLeF permanece

adormecido dentro del código genético del ADN de ciertas áreas de la médula

ósea y células linfoides.

En la mayor parte de los gatos infectados de manera transitoria, todo el

ViLeF latente se elimina por último sin mayor problema como parte del proceso de

recuperación normal. Esto por lo general ocurre entre los 6 a 9 primeros meses de

exposición, pero en ocasiones puede requerir un año o más.

En algunos gatos con ViLeF latente (menos de 10% de los gatos

expuestos) la latencia persistirá por tiempo indefinido.

** Ver imagen # 2 en anexos. (3,4,6,12)

11

4.7 CATEGORÍAS DE PACIENTES SEGÚN EVOLUCIÓN DE LA

INFECCIÓN***

GRUPO 1 No infectados: el grupo 1 contiene el 28% de los gatos

expuestos que no se infectan, ya sea porque tienen resistencia inherente a

la infección o a causa de exposición insuficiente.

(3, 4, 11,13,14)

GRUPO 2 Infección persistente: el grupo 2 contiene el 30% de los gatos

expuestos que desarrollan infección progresiva con viremia persistente,

esto puede durar de días a meses. Esto ocasiona una enfermedad

relacionada con el ViLeF después de un intervalo variable libre de

enfermedad. El virus está en la sangre tanto libre como asociado a células,

diseminándose a múltiples tejidos epiteliales y glandulares, favoreciendo así

el contagio a otros gatos. El pronóstico de los gatos persistentemente

virémicos es malo.

(3, 4, 11,13,14)

GRUPO 3 Infección transitoria: el grupo 3 contiene el 42% de los gatos

expuestos que desarrollan infección reproductora transitoria que es

rechazada subsecuentemente por el sistema inmunitario. Los gatos

inmunes que restringen la multiplicación y expresión viral, pueden padecer

una infección latente si el provirus está integrado en las células precursoras

de la médula ósea y en linfocitos circulantes. En estos casos, ViLeF no se

expresa, pero sí el animal sufre alguna depresión del sistema inmune

(estrés, corticoides), se puede reactivar la infección. El período de latencia

puede durar meses, años, e incluso toda la vida del animal, pudiéndose

revertir en una infección productiva.

(3, 4, 11,13,14)

12

GRUPO 4 Infecciones atípicas: el grupo 4 contiene a menos un 10% de

los gatos infectados, y se caracterizan por ser infecciones secuestradas en

diversas localizaciones (tejidos epiteliales, glandulares, médula ósea) por

una respuesta inmune parcialmente eficaz. Estos animales pueden sufrir

períodos alternantes de viremia y en algunos casos progresar a viremia

persistente.

(3, 4, 11,13,14)

*** Ver imagen # 3 en anexos.

4.8 SIGNOS Y MANIFESTACIONES CLÍNICAS

Los propietarios generalmente indican que los gatos infectados presentan

signos no específicos como anorexia, pérdida de peso y depresión o describen

alteraciones asociadas con órganos específicos. Pueden aparecer distintos

síndromes clínicos debido al efecto primario del virus o debido a la

inmunosupresión y las infecciones oportunistas (como en el caso del virus de la

inmunodeficiencia felina, FIV).

Las manifestaciones clínicas se pueden clasificar en dos grupos las

neoplásicas y las no neoplásicas.

(4,6,12,18)

Dentro de las neoplásicas (30%), los linfomas son los más frecuentes.

Los gatos infectados por ViLeF presentan un alto riesgo de formación de tumores

sólidos o leucemia. Además, la supresión de la médula ósea que afecta a células

blancas(leucocitos) y eritrocitos se detecta, con frecuencia, en el laboratorio.

Las no neoplásicas son las más frecuentes (70%). Presentando síntomas

muy variables y puede implicar a cualquier sistema orgánico infestado por ViLeF.

(4,6,12,18)

13

4.8.1 Manifestaciones neoplásicas:

4.8.1.1 Linfoma: las formas más comunes de neoplasias asociadas con el

ViLeF son los linfomas mediastínicos, multicéntricos y alimentarios; también

aparecen hiperplasias linfoides. El linfoma alimentario normalmente afecta al

intestino delgado, a los nódulos linfáticos mesentéricos, riñones y al hígado de los

gatos viejos. El linfoma renal puede afectar a uno o ambos riñones, que

normalmente, aparecen aumentados y con márgenes irregulares en la exploración

física. Aproximadamente en el 25% de los gatos infectados existe evidencia de

neoplasia (96% linfoma/leucemia) en la necropsia; el resto muere de

enfermedades no neoplásicas.

Debido a la presencia de linfomas en los animales éstos pueden presentar

diferentes signos por sistemas:

4.8.1.1.1 Signos gastrointestinales o hepáticos: Los animales pueden mostrar

debido a un linfoma alimentario vómitos o diarrea, ictericia hepática y post-

hepática.

(12,18)

4.8.1.1.2 Signos respiratorios: En ocasiones se observa disnea debido a un

linfoma tímico o mediastínico. Generalmente estos gatos son menores de tres

años y muestran una disminución en la distensibilidad craneal del tórax durante la

palpación; si existe derrame pleural, los sonidos cardíacos y pulmonares aparecen

amortiguados.

(12,18)

4.8.1.1.3 Signos del tracto urinario: en algunos gatos se presenta insuficiencia

renal debido a linfomas renales.

(12,18)

14

4.8.1.1.4 Signos oculares: algunos gatos debido a linfomas oculares presentan

miosis, blefarospasmos o turbidez en los ojos. En la exploración del ojo a menudo

aparecen masas, precipitados queráticos, desplazamiento del cristalino y

glaucomas.

(12,18)

4.8.1.1.5 Signos neurológicos: pueden desarrollarse alteraciones del sistema

nervioso debido a linfomas. Estas alteraciones incluyen anisocoria, ataxia,

debilidad, tetraparesia, paraparesia, cambios de comportamiento e incontinencia

urinaria.

(12,18)

4.8.1.2 Otras neoplasias: se han descrito leucemias linfocíticas, mielógenas,

eritroides y megacariocíticas secundarias a las infecciones por el virus de la

leucemia; las leucemias eritroides y mielomonocíticas son las más comunes. En

ocasiones se desarrollan fibrosarcomas en gatos jóvenes con infecciones

concomitantes por el virus del sarcoma felino.

(12,18)

4.8.2 Manifestaciones no neoplásicas:

4.8.2.1 Anemia regenerativa: a veces se acompaña de leucopenia y

trombocitopenia. El 75% de los felinos con anemia tienen el virus ViLeF. Un

porcentaje pequeño de estas anemias son hemolíticas regenerativas, y se asocian

a inmunosupresión provocada por la infección del subgrupo A. Además este virus

provoca alteración de la membrana celular de los glóbulos rojos provocando

hemólisis.

Las anemias normocíticas normocrómicas no regenerativas ocurren

secundarias a enfermedades mieloproliferativas (subgrupo B), a fibrosis medular y

osteoesclerosis.

15

La anemia aplásica es la más frecuente y se asocia al subgrupo C.

Generalmente esta ocurre en gatos entre los 2 a 3 años de edad y se caracteriza

por destrucción de los precursores eritroides.

(12,18)

4.8.2.2 Signos reproductivos: en algunas gatas infectadas por el ViLeF

aparecen abortos, partos prematuros o infertilidad. Los gatitos infectados en el

útero que sobreviven al parto, generalmente desarrollan síndromes agudos o

mueren en un corto plazo.

(12,18)

4.8.2.3 Signos musculoesqueléticos: algunos gatos positivos al ViLeF

desarrollan poliartritis neutrofílicas debido al depósito de complejos inmunes que

cursan con cojera o debilidad. En algunos gatos ocurre exóstosis cartilaginosa

múltiple que puede estar relacionada con el ViLeF.

(12,18)

4.8.2.4 Signos gastrointestinales o hepáticos:

En algunos gatos con infecciones por ViLeF aparecen estomatitis

bacterianas. Pueden presentar ictericia:

Prehepática, debido a una eritrolisis inmunomediada inducida por el ViLeF o

secundaria a una infección por Mycoplasma haemofelis.

Hepática, debido a un linfoma hepático, lipidosis hepática o necrosis

hepática focal.

Algunos de los gatos ViLeF positivos con ictericia tienen infecciones

concomitantes por el virus de la peritonitis infecciosa felina (PIF) o por Toxoplasma

gondii.

(12,18)

16

4.8.2.5 Signos respiratorios: en algunos casos con el ViLeF aparecen rinitis o

neumonía debido a las infecciones secundarias.

(12,18)

4.8.2.6 Signos neurológicos: En los gatos infectados por el ViLeF, los trastornos

nerviosos y oculares pueden deberse también a infecciones por otros agentes,

incluyendo el virus de la peritonitis infecciosa felina, Cryptococcus neoformans y

Toxoplasma gondii.

(12,18)

4.9 DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO

Las pruebas se utilizan para diagnosticar enfermedades relacionadas con

ViLeF, para buscar infecciones subclínicas, en gatos que son presentados para

vacunación y para identificar y eliminar infecciones en criaderos y albergues para

gatos.

Existen dos pruebas disponibles para el diagnóstico clínico sistemático de

infección por ViLeF la prueba de fluorescencia indirecta para anticuerpos (FIA) y la

inmunoabsorbencia ligada a enzimas (ELISA). Ambas pruebas determinan

antígenos de núcleo (p27) específicos de grupo de ViLeF. Para la prueba de FIA

se requiere de un laboratorio especializado, y utiliza un frotis de sangre periférica o

médula ósea. La prueba de ELISA puede hacerse en sangre, saliva o lágrimas

utilizando cualquier equipo desechable o a través de un laboratorio comercial.

(3,4,12)

En cuanto a las manifestaciones neoplásicas se puede realizar como medio

de diagnóstico biopsias de los nódulos linfáticos o de las masas tumorales. Y

también por el análisis citológico del líquido torácico, observándose linfocitos

neoplásicos. Uno de los hallazgos en el hemograma es encontrar anemia

17

normocítica normocrómica sin respuesta y rara vez se observa linfocitosis o

linfocitos anormales en sangre.

(12,18)

4.9.1 Inmunofluorescencia o IFA (Immunofluorescense Assay): es una

técnica que emplea anticuerpos conjugados a fluorocromos. Los fluorocromos son

moléculas que al ser excitadas con la energía de una determinada longitud de

onda son capaces de emitir energía de una longitud de onda mayor.

(15,16)

INMUNOFLUORESCENCIA DIRECTA

La inmunofluorescencia directa permite la detección de antígenos en un

paso. Utiliza anticuerpos conjugados a isotiocianato de fluoresceína. La

lectura se realiza en un microscopio de fluorescencia, que emite luz

ultravioleta de una determinada longitud de onda.

INMUNOFLUORESCENCIA INDIRECTA

La inmunofluorescencia indirecta permite la detección de anticuerpos

circulantes.

(15,16)

4.9.2 Prueba ELISA: Existen dos formatos de la prueba:

ELISA directa: Mediante esta técnica se pueden descubrir antígenos

virales circulantes o los que se encuentran en los tejidos del huésped. La

sensibilidad de estas pruebas depende de la cantidad de antígeno presente y

su especificidad depende de la calidad de los antisueros disponibles para este

efecto. Estas pruebas permiten una demostración rápida y son muy prácticas

para el diagnóstico.

(3,4,12,16)

18

Es un inmunoensayo en fase sólida donde se fijan los anticuerpos

específicos para el virus en la superficie de una matriz, tubo o microplaca y luego

se pone en presencia del suero o muestra que contiene el antígeno que se quiere

demostrar; una vez ocurre la reacción antígeno-anticuerpo, se hace un lavado y se

agrega un anticuerpo marcado, que depende de la marcación del anticuerpo. Éste

se marca con una enzima que puede ser la fosfatasa alcalina (FA) o la peroxidasa

de rábano (PR) y para revelar la reacción se coloca el sustrato específico para la

enzima que es modificado por ésta y produce un compuesto coloreado. Para la

cuantificación se mide la absorbancia en una longitud de onda determinada en un

espectrofotómetro.

(3,4,12,16)

ELISA indirecta: Tiene un principio semejante al de la ELISA directa, sólo

que en este caso, un antígeno específico está unido a una fase sólida que

puede ser un tubo, microplaca o perlas de vidrio; luego se añade el suero del

paciente que posee los anticuerpos y después se adiciona el conjugado

constituido por un anti anticuerpo IgG o IgM unido a una enzima; posteriormente

se adiciona el sustrato específico para la enzima, que lo va a modificar y

produce un compuesto coloreado, cuya intensidad es proporcional a la

concentración de anticuerpo en el suero del paciente. Esta prueba se utiliza

ampliamente; más aún, con el advenimiento y la disponibilidad de los sistemas

automatizados se puede efectuar en un período de 1 a 2 horas.

(3,4,12,16)

4.9.3 ELISA e IFA

El ELISA detecta la viremia asociada a suero, lágrimas y saliva, el IFA lo

detecta en las células. El ELISA es mucho más sensible que el IFA ya que detecta

niveles antigénicos menores que el IFA, rara vez da falsos negativos, y se detecta

la enfermedad con mayor precocidad. Un problema asociado a ambos es que no

detecta el antígeno nuclear viral en gatos ya vacunados.

19

Los gatos con viremia transitoria se convierten en negativos en 4-6

semanas, por lo tanto todo gato positivo con ELISA se debe repetir a las 6-8

semanas.

Un resultado IFA positivo significa existencia de viremia, en la mayoría con

un 97% especificidad. Es un animal persistente e infectado para toda la vida, un

resultado negativo significa la ausencia de células sanguíneas infectadas, pero no

descarta una infección temprana o que se haya neutralizado la infección.

(15,16,17)

4.10 TRATAMIENTO

No existe tratamiento probado como eficaz para ViLeF, pero hay mucha

investigación y pruebas terapéuticas en progreso en que se usan diferentes

moduladores inmunológicos y fármacos antivirales. El cuidado de sostén, como los

antibióticos para infecciones bacterianas secundarias, la hidroterapia y el apoyo

nutricional pueden prolongar la supervivencia en pacientes seleccionados.

En pacientes positivos a ViLeF se han utilizado fármacos antivirales como

azidotimidina (AZT), 9-(2-fosfonilmetoxietil) adenina (PMEA), como inmunoterapia

interferón-α- recombinante humano, para prevenir la liberación de viriones.

La administración de quimioterapeúticos, ciclofosfamida continuada con

vincristina es escasamente eficaz incluyendo corticosteroides como prednisona.

Los gatos con enfermedad inmunosupresora presentan un pronóstico

especialmente desfavorable y se tratan mejor con la administración de sangre

entera, según necesidad, para resolver la anemia. Sin embargo, el valor de este

tratamiento está limitado por su costo y por las consecuencias de la

administración de transfusiones de sangre múltiples además por la dificultad de

conseguir donadores en nuestro medio.

(3,4,8,12)

20

4.11 PREVENCIÓN

Debido a las consecuencias devastadoras de la infección por ViLeF y su

prevalencia en la población de gatos, la prevención es de vital importancia. Las

medidas preventivas incluyen la vacunación individual de gatos para reducir la

susceptibilidad, restringir la salida de los gatos fuera de la casa para reducir la

exposición, y medidas de control para disminuir la diseminación de ViLeF en

criaderos y pensiones.

(3,4,12)

La mejor forma de prevención es evitar el contacto con el virus manteniendo

a los gatos dentro de casa. Los animales seropositivos y seronegativos no deben

compartir los bebederos, las bandejas ni cualquier otro posible vehículo de

contagio. En los criaderos libres de ViLeF y en los hogares con más gatos no

deben existir animales seropositivos.

GATOS INFECTADOS: los gatos ViLeF positivos deben permanecer

dentro de casa para evitar el contagio a otros gatos y a la exposición a agentes

oportunistas. Se debe realizar un control de las pulgas para evitar a Mycoplasma

haemofelis. Para evitar las infecciones por Toxoplasma gondii, Cryptosporidium

parvum, Giardia spp. Y otros agentes infecciosos con hospedadores intermedios

se debe impedir que los gatos positivos cacen o coman comida sin cocinar.

Se debe considerar la vacunación de aquellos gatos que no hayan sido

expuestos previamente al ViLeF y que se encuentren en alto riesgo, pero se debe

notificar a los propietarios que la vacuna puede provocar la formación de

sarcomas, principalmente si se usan adyuvantes y que la eficacia nunca es del

100%. La vacunación de los gatos con viremia persistente no resulta beneficiosa.

(4,11,12)

4.12 ESTUDIOS EN GUATEMALA

12345Se realizaron dos estudios en Guatemala para determinar la presencia de

anticuerpos de ViLeF en sangre de felinos.

21

El primer estudio fue realizado en el año 2003 en el Hospital de Medicina

Veterinaria y Zootecnia, fue de tipo prospectivo. Se tomaron las muestras de

sangre de la vena cefálica o yugular colectando aproximadamente 3 cc,

vertiéndola en un tubo de ensayo con anticoagulante para sangre entera y sin

anticoagulante para suero, y posteriormente se llevaron al laboratorio clínico para

su evaluación. Al observar los resultados se obtuvo positivo a ViLeF en 36.67% de

una población de 30 gatos.

(18)

El segundo estudio realizado en el año 2007 en Antigua Guatemala,

Sacatepéquez, se considera de tipo retrospectivo, tomando en cuenta que este

estudio se realizó como recopilación de datos de una sola clínica. Estos casos

hacían referencia al uso de un kit de ELISA para la prueba, tomando la muestra

de sangre con jeringa de la vena cefálica del paciente, se realizó la lectura de

resultados en el laboratorio siendo positivos al virus de leucemia felina 14.93% de

los machos y 10.44% de las hembras de los 134 gatos de la población

muestreada.

(19)

En dichos estudios podemos observar la prevalencia de anticuerpos en

gatos de Guatemala, la diferencia de los estudios mencionados con el presente

radica en que las muestras utilizadas fueron en base a suero sanguíneo para

comprobar presencia de anticuerpos mientras que este estudio utiliza saliva para

comprobar la presencia del antígeno p27 de ViLeF, además de que uno de los

estudios se le considera de tipo retrospectivo y otro es prospectivo mientras que

este es de tipo descriptivo de corte transversal.

(18,19)

22

V. MATERIALES Y MÉTODOS

5.1 ÁREA DE ESTUDIO****

El presente estudio fue realizado en el Hospital de la Facultad de Medicina

Veterinaria y Zootecnia de la Universidad de San Carlos de Guatemala y seis

diferentes clínicas distribuidas en las zonas 5,7,10,12,15 y 17 de la ciudad capital.

5.2 MATERIALES

5.2.1 Recursos humanos:

Tres asesores Médicos Veterinarios egresados de la Facultad de Medicina

Veterinaria y Zootecnia.

Estudiante Investigadora.

5.2.2 De laboratorio:

Guantes de látex

Cronómetro

FeLV Ag. Test kit® que detecta la proteína interna p27 como antígeno del

virus de leucemia felina, el cual contiene:

Hisopos plásticos.

Tubos A: con el conjugado de enzima peroxidasa de rábano y

anticuerpos.

Tubos B: con el sustrato cromogénico.

100ml por cada muestra de solución isotónica 0.9% de Cloruro de Sodio

(Solución salina fisiológica).

Recipiente de aluminio.

Hielera con hielo para el transporte del FeLV Ag. Test kit®.

23

5.2.3 De tipo biológico:

12345Felinos domésticos mayores de 1 año de edad, que asisten a consulta al

Hospital veterinario de animales de compañía de la Facultad de Medicina

Veterinaria y Zootecnia y a seis diferentes clínicas de la ciudad capital.

5.2.4 De escritorio:

12345Hojas de papel bond con la ficha de datos del paciente, lapiceros, tinta,

impresora, tabla de sujeción de hojas.

**** Ver imagen # 4 en anexos.

5.3 METODOLOGÍA*****

Muestreo de animales:

Realicé el muestreo en gatos tomando en cuenta que se presentaron a

consulta al Hospital de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia y a

seis clínicas participantes del estudio, distribuidas en diferentes zonas de la

ciudad capital dentro de las cuales están 5,7,10,12,15 y 17.

En el estudio cada gato debe cumplir con los siguientes criterios de

inclusión: gatos con o sin signos de la enfermedad presentes al momento

del muestreo, sin historia previa de vacunación contra leucemia felina,

mayores de 1 año de edad, ambos sexos, esterilizados o no, de cualquier

hábitat.

Evaluación de los gatos:

El Médico Veterinario responsable de cada clínica realizó el examen clínico

del paciente, previo a la toma de muestras.

24

Obtención de las muestras:

Para obtener 0.10 ml de saliva tomé el hisopo plástico; coloqué el extremo

inferior del mismo en la parte posterior de la boca entre el belfo y la encía

del gato y giré suavemente durante un período de 5 a 10 segundos.

Procesamiento de las muestras:

Homogenicé los 0.10ml de saliva (aproximadamente 2 gotas de saliva) en el

tubo A, el cual contiene el conjugado de la enzima peroxidasa de rábano y

el diluyente con los anticuerpos para que reaccionen con el antígeno.

Esperé10 minutos.

Preparé el tubo B, con tres gotas de sustrato cromogénico que actuará

como amortiguador.

En el recipiente de aluminio lavé con solución salina fisiológica el hisopo

durante 1 minuto, para eliminar los anticuerpos que no hayan reaccionado.

Introduje el hisopo dentro del tubo B, para que sea capaz de actuar la

enzima marcadora.

Esperé 10 minutos.

Observé los resultados.

***** Ver imagen # 5 en anexos.

Observación de resultados:

Observé los resultados, pasados los 10 minutos.

La presencia de color azul en el tubo B, indica que el resultado es positivo.

Anoté resultados en la ficha de datos del paciente.

5.4 DISEÑO DEL ESTUDIO

El estudio es de carácter descriptivo de corte transversal.

Obtuve una muestra de treinta gatos.

Realicé el estudio durante los meses de abril y mayo de 2011.

25

5.5 ANÁLISIS ESTADÍSTICO

Previo al estudio utilicé la fórmula de población infinita para analizar el

tamaño de la muestra, con un error de 17% y una prevalencia esperada del

50%.

En el presente estudio, para determinar si la presencia del antígeno en

saliva depende del sexo, propuse una prueba de distribución de frecuencias

para comparar la cantidad de machos y hembras positivas. La prueba de G

de heterogeneidad se utiliza para comparar frecuencias que son mayores o

iguales a 5. La prueba exacta de Fisher es la adecuada para comparar

frecuencias menores a 5, según Sokal y Rohlf (21).

Para determinar si existe presencia o no de signos clínicos en gatos

positivos al antígeno del virus de leucemia felina en la prueba de saliva,

propuse la prueba de G de heterogeneidad.

Para determinar la correlación de la presencia de signos de los animales

positivos al virus de leucemia felina con los animales que siendo negativos

presentaron signos propuse la prueba de G de heterogeneidad.

26

VI. RESULTADOS

12345La muestra estuvo conformada por 13 machos y 17 hembras (n= 30. Tabla

1) gatos de diferentes edades entre 1 1/2año y 12 años. Dentro del estudio el

rango de edad de los gatos positivos fue de 2 a 6 años.

Tabla 1: Presencia del virus de leucemia felina en gatos machos y hembras de la

ciudad capital, Guatemala, 2011.

Con el muestreo de los 30 gatos obtuve una prevalencia del 10% (3/30) de

la infección con el virus de leucemia felina, siendo todos machos, procedentes

de las clínicas en las zonas 10 y 5 de la ciudad capital. No existió asociación

significativa entre la prevalencia y el sexo del gato (P=0.07).

Ninguno de los 30 gatos muestreados presentó signos positivos al virus de

leucemia felina por lo que no pude determinar asociación entre signos y

presencia del virus de leucemia felina, ViLeF.

SEXO Positivos Negativos Total

Machos 3 10 13

Hembras 0 17 17

Total 3 27 30

27

VII. DISCUSIÓN

En este estudio, la prueba estadística exacta de Fisher no detecta

asociación significativa entre la presencia en saliva del antígeno del virus de

leucemia felina con el sexo de los animales muestreados (P= 0.07). La prueba

compara frecuencias (magnitud de la ocurrencia de un evento) menores a 5 según

Sokal y Rohlf (21). Según Birchard (3) los machos presentan un mayor riesgo de

padecer la enfermedad, por factores como el vagabundeo, peleas por

territorialidad y reproducción en donde existe contacto con saliva infecciosa. Estos

factores se encontraron en la historia clínica de los machos positivos bajo estudio.

Según Babyak S. (22) el kit utilizado presenta una sensibilidad de 92% y

una especificidad de 97% con el uso de saliva considerándose adecuado para

detectar el antígeno del virus de leucemia felina. En este estudio confirmé que la

prueba tiene la capacidad de detectar casos positivos con una sensibilidad del

92% haciendo confiables los resultados de los tres gatos positivos a la

enfermedad y los veintisiete gatos negativos restantes. Así mismo posee una

especificidad del 97% pudiendo detectar que los tres gatos positivos a la

enfermedad son positivos al virus de leucemia felina, según Arjona Saz (14). Una

prueba muy sensible será especialmente adecuada en aquellos casos en los que

no diagnosticar la enfermedad puede resultar fatal para los enfermos. Así mismo,

las pruebas confirmatorias del diagnóstico deben ser de alta especificidad, para

evitar falsos positivos. Las pruebas diagnósticas de alta especificidad son

necesarias en enfermedades graves pero sin tratamiento disponible, cuando exista

gran interés por conocer la ausencia de enfermedad o cuando diagnosticar a un

paciente de un mal que realmente no padece pueda traer graves consecuencias,

ya sean físicas, psicológicas o económicas como lo es la leucemia felina.

De acuerdo a Birchard (3) y Gómez (20), los gatos pueden presentarse

como virémicos persistentes, regresivos, transitorios o atípicos. En éste estudio

diagnostiqué tres machos positivos lo cual es indicativo de viremia (transitorio o

persistente), sin embargo ninguno de éstos presentó signos positivos de la

28

enfermedad de leucemia felina al momento del muestreo, por lo que éstos pueden

encontrarse en fase transitoria o atípica. Ya que según Birchard (3), los animales

de fase transitoria desarrollan la infección temporal que subsecuentemente es

controlada por el sistema inmunitario. Los gatos inmunes que restringen la

multiplicación y expresión viral, pueden padecer una infección latente presentando

viremias temporales. Y los animales en la fase atípica se caracterizan por

presentar infecciones secuestradas en diversas localizaciones (tejidos epiteliales,

glandulares, médula ósea) por una respuesta inmune parcialmente eficaz.

La importancia de saber en cuál de las etapas se encuentra el gato, es que

éste continúa diseminando el virus a otros gatos, especialmente si viven en

grupos. Según Duarte (17), los gatos con viremia transitoria se convierten en

negativos en 4-6 semanas, por lo tanto todo gato positivo con ELISA se debe

repetir a las 6-8 semanas. Por esta razón es conveniente confirmar con la prueba

de saliva cualquier resultado positivo al cabo de 1 a 2 meses, según Birchard (3) y

Babyak S (22).

Uno de los criterios de inclusión en éste estudio fue la edad de los gatos

(mayores de 1 año), ya que según Schaer (4), la edad en que la incidencia de la

enfermedad es mayor es de 1 a 6 años. El rango de edad de los positivos en éste

estudio fue de 2 a 6 años siendo esta información acorde a la literatura. La mayor

incidencia en éstas edades se presenta porque los gatos inician su madurez

sexual alrededor de los 6 meses, teniendo entre sus actividades el vagabundeo,

aumentando el contacto oronasal con saliva infecciosa según Meiga (10). Se debe

considerar también el resultado positivo en éstos animales porque la incubación

del virus es un largo período que llega a tomar días o meses pero que en

ocasiones requiere de un año o más, para que se diagnostique la enfermedad

según Tilley & Smith (6).

El área de estudio fue propuesta en diferentes zonas de la ciudad capital

para que la muestra fuese significativa, se presentaron dos machos positivos en la

zona 5 y un macho positivo en la zona 10 de la Ciudad Capital, éste macho aún

29

cuando es paciente de la clínica en la zona 10, su hábitat diario se encuentra en la

zona 14, en áreas de nivel socioeconómico bajo, corriendo mayor riesgo de

infección por la cantidad de gatos vagabundos, el contacto de saliva de gatos que

pueden estar infectados con el virus de leucemia felina por la cercanía de las

casas y las peleas por territorialidad.

En éste estudio un 73.33% de los animales muestreados se encuentran

esterilizados, siendo un factor importante en la ausencia de casos positivos al

virus de leucemia felina en gatos muestreados en las clínicas de las diferentes

zonas de la ciudad capital. Estos gatos tienen como hábitat predominante sus

casas, es importante mencionar que uno de los tres gatos positivos lo habían

esterilizado un año antes del muestreo, a la edad de 5 años, pudiendo haber

diseminado el virus a otros gatos vecinos durante sus primeros años de vida.

30

VIII. CONCLUSIONES

1. Confirmé la presencia de la proteína interna p27 como el antígeno del virus

de leucemia felina en saliva de gatos sujetos a estudio.

2. No existe asociación significativa entre la presencia en saliva del antígeno

del virus de leucemia felina con el sexo de los animales muestreados.

3. Ninguno de los 30 gatos muestreados presentó signos al virus de leucemia

felina por lo que no se pudo determinar asociación entre signos y presencia

del virus.

31

IX. RECOMENDACIONES

1. Realizar nuevamente esta prueba a todo gato positivo al virus de leucemia

felina al cabo de 1 a 2 meses; tomando en cuenta medidas de aislamiento

para no interferir con el resultado y diseminación de la enfermedad.

2. Mantener seguimiento médico a los gatos que resulten positivos al virus de

leucemia felina, evitando así la exposición a agentes oportunistas.

3. Los gatos que al volver a ser muestreados resulten positivos deberá

recomendarse la eutanasia como medida de prevención para otros gatos.

4. Es recomendable para trabajos futuros comparar resultados positivos al

virus de leucemia felina en las muestras de saliva con muestras

serológicas, para determinar la diferencia entre las prevalencias resultantes.

5. Tomar medidas preventivas como la esterilización quirúrgica de los gatos

antes que alcancen su madurez sexual y restringirles la salida de casa.

6. El presente estudio se utilizó para informar a los propietarios de los gatos

sobre los riesgos que presenta la enfermedad de leucemia felina y que

medidas preventivas pueden tomar.

32

X. RESUMEN

12345El incremento gradual de la población felina en nuestro país está

acompañado del aumento en la presentación de enfermedades que ponen en

riesgo la salud animal. La infección por el virus de leucemia felina es una de las

enfermedades retrovirales de mayor morbilidad y mortalidad en los felinos, que

requiere de un diagnóstico oportuno que permita prolongar la vida de los animales

infectados y enfermos.

12345El objetivo es determinar la presencia del antígeno del virus de leucemia

felina en la saliva de gatos que asisten a consulta al Hospital de la Facultad de

Medicina Veterinaria y Zootecnia y seis diferentes clínicas veterinarias de la ciudad

capital.

La muestra estuvo conformada por 13 machos y 17 hembras (n= 30) gatos

de diferentes edades entre 1 1/2año y 12 años. Dentro del estudio el rango de

edad de los gatos positivos fue de 2 a 6 años. Obtuve una prevalencia del 10%

(3/30) de la infección con el virus de leucemia felina (ViLeF), siendo todos machos,

procedentes de las clínicas en las zonas 10 y 5 de la ciudad capital.

Confirmé la presencia de la proteína interna p27 como el antígeno del virus

de leucemia felina en saliva de gatos sujetos a estudio. Ninguno de los positivos

presentó signos clínicos de la enfermedad y comprobé que los machos corren

mayor riesgo de presentar el virus de leucemia felina.

Medidas preventivas, la esterilización quirúrgica de los gatos antes que

alcancen su madurez sexual, vacunar a los gatos contra leucemia felina; tomando

en cuenta previamente: que sean mayores de seis meses de edad, realización de

prueba de leucemia felina con resultados negativos, administración de la vacuna

en el miembro pélvico izquierdo distalmente.

33

SUMMARY

The gradual increase of the cat population in our country is

accompanied by an increase in the presentation of diseases that threaten

animal health. Infection with feline leukemia virus is a retroviral disease

increased morbidity and mortality in cats, which requires early diagnosis that

allows extending the life of infected animals and patients.

The aim is to identify the presence of antigen feline leukemia virus into

the saliva of cats attending consultation Hospital, Faculty of Veterinary

Medicine and six different veterinary clinics in the Capital City.

The sample consisted of 13 males and 17 females (n = 30) cats of

different ages between 1 and 12 years 1/2año. Within the study the age range

of positive cats was 2 to 6 years. I got a prevalence of 10% (3/30) of infection

with feline leukemia virus (ViLeF), all males, from clinics in areas 10 and 5 of

the capital city.

Confirmed the presence of internal protein p27 antigen as feline

leukemia virus in saliva of cats subjected to study. None of the positive clinical

signs of disease and found that males are at higher risk for feline leukemia

virus.

Precautions surgical sterilization of cats before they reach sexual

maturity and cats vaccinated against feline leukemia, taking into account

previously: age over six months, conducting feline leukemia test with negative

results, administration of the vaccine in the left pelvic limb distally.

34

XI. ANEXOS

35

* Imagen 1: Estructura básica del virus de la Leucemia Felina

Alberto Carmona. 2008. Infección por FeLV en el gato. Madrid. España. En línea 28 de Octubre. Disponible

en: http://www.aamefe.org/felv_carmona.htm

36

* * Imagen 2: La patogenia puede dividirse en seis estadíos.

ESTADIO LOCALIZACIÓN DEL ORGANISMO TIEMPO

I Replicación en el tejido linfoide local (tonsilas y faringe con exposición

oronasal).

2-12 días

II Diseminación en linfocitos y monocitos circulantes. 2-12 días

III Replicación en el bazo, nódulos linfáticos y tejido linfoide asociado al

digestivo.

2-12 días

IV Replicación en las células de la médula ósea. 2-6

semanas

V Viremia periférica, diseminación a través de los neutrófilos y plaquetas

procedentes de la médula ósea.

4-6

semanas

VI Diseminación de la infección a las células epiteliales con presencia del

virus en la saliva y lágrimas.

4-6

semanas

Nelson, R., Couto, G. Manual Medicina Interna de Animales Pequeños. Segunda edición. Editorial Harcourt –

Morby. España. 2000. Pp. 1500.

* * Imagen 3: Categorías de pacientes según evolución de la infección

Nelida Gómez. 2006. Curso de Infectología Felina.

37

**** Imagen 4: ÁREA DE ESTUDIO POR ZONAS

Fuente: Guatemala en Mapas. http://www.gauss.estudios.50megs.com/catalog.html

ZONA 5 Clínica La Palmita

ZONA 7 Clínica Pet a Vet

ZONA 10 Clínica LeVet

ZONA 12 Clínica El

Doberman. Hospital de la

Facultad de Medicina

Veterinaria y Zootecnia

ZONA 15 Clínica Animal life

ZONA 17 Clínica Vetco

38

***** Imagen 5: Metodología

FeLV Ag. Test kit®:

Hisopos plásticos.

Tubos A: con el conjugado de

enzima peroxidasa de rábano y

anticuerpos.

Tubos B: con el sustrato

cromogénico.

Obtención de las muestras

Procesamiento de las muestras

Homogenicé los 0.10ml de saliva en el tubo A.

39

Esperé 10 minutos.

Preparé el tubo B

En el recipiente de aluminio lavé con solución salina normal el hisopo durante 1

minuto.

40

Introduje el hisopo dentro del tubo B.

Esperé 10 minutos.

Observé los resultados: La presencia de color azul en el tubo B, indica que el

resultado es positivo.

41

Tabla 2: Animales muestreados en el Hospital de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia y seis diferentes clínicas de la Cda. Capital

ANIMAL NOMBRE SEXO EDAD SIGNOS CASTRADO HABITAT VACUNA VILeF

OTROS GATOS

RESULTADOS

1 Tara Hembra 7 años No presenta Si Casa No si Negativo

2 Cosa Hembra 4 años No presenta Si Casa No si Negativo

3 Lula Hembra 3 años No presenta Si Casa No si Negativo

4 Sebastian Macho 9 años No presenta Si Casa No si Negativo

5 Boris Hembra 2 años No presenta Si Casa No si Negativo

6 Luna Hembra 12 años No presenta Si Casa No si Negativo

7 Paprika Hembra 3 años No presenta Si Casa No no Negativo

8 Frida Hembra 3 años No presenta No Casa No no Negativo

9 Dario Macho 5 años No presenta No Casa/Calle No si Negativo

10 Oliver Macho 2 años No presenta Si Casa/Calle No no Negativo

11 Gato Macho 6 años No presenta Si Casa No si Positivo

12 Paco Macho 5 años No presenta si casa No si Negativo

13 Rebeca Hembra 3 años No presenta si Casa No si Negativo

14 Bombon Hembra 2 años No presenta Si Casa/Calle No si Negativo

15 Moshi Hembra 3 años No presenta Si Casa/Calle No si Negativo

16 Orion Macho 1 1/2 años No presenta Si Casa No no Negativo

17 Luna Hembra 1 1/2 años No presenta Si Casa No no Negativo

18 Poly Macho 9 años No presenta Si Casa No no Negativo

19 Negra Hembra 2 años Mordidas no Casa/Calle No no Negativo

20 Travieso Macho 2 años Mordidas no Casa/Calle no no Negativo

21 Tigre Macho 1 año No presenta no Casa/Calle no si Negativo

22 Negrita Hembra 3 años No presenta si casa no si Negativo

23 Blanco Macho 4 años No presenta no Casa/Calle no no Negativo

24 Marcelo Macho 3 años Mordidas no Casa/Calle no no Positivo

25 Tatiana Hembra 7 años No presenta si casa no no Negativo

26 Bruno Macho 4 años No presenta Si Casa No no Negativo

27 Marla Hembra 2 años No presenta No Casa No no Negativo

28 Perla Hembra 5 años No presenta Si Casa No si Negativo

29 Pelusa Hembra 3 años No presenta Si Casa No si Negativo

30 Misifus Macho 2 años No presenta Si Casa No no Positivo

42

XIII. BIBLIOGRAFÍA

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Felina. Primera edición. México, D.F. editorial McGraw Hill. V.1, p.947

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http://books.google.com.gt/books?id=q0dVRs0eMm4C&pg=PA69&dq=enferm

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43

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