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1 Universidad Militar Nueva Granada – Facultad de Medicina Hospital Militar Central Servicio: Cirugía Oral y Maxilofacial Microbiología de las Infecciones Odontogénicas que son remitidas al Servicio de Cirugía oral y Maxilofacial del Hospital Militar Central, desde mayo 2012 hasta mayo 2013. Código: 2012-046 Autor principal: Elías José Franco Pretto: Residente de IV año, Programa de Cirugía Oral y Maxilofacial, Universidad Militar Nueva Granada – Hospital Militar Central. Co-autor: Sergio Mauricio Castellanos García DDS, Cirujano Oral y Maxilofacial, Hospital Militar Central. . Director de Trabajo de Grado. Co-autor: Iván Alberto Méndez MSc, Docente de Enfermedades Infecciosas. Facultad de Medicina, Universidad Militar Nueva Granada. Co-autor y Asesor temático: Luz Angela Pescador SMSM, Coordinadora de Sección de Microbiología, Laboratorio Clínico, Hospital Militar Central. Año: 2013

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Universidad Militar Nueva Granada – Facultad de Medicina

Hospital Militar Central

Servicio: Cirugía Oral y Maxilofacial

Microbiología de las Infecciones Odontogénicas que son remitidas al Servicio de

Cirugía oral y Maxilofacial del Hospital Militar Central, desde mayo 2012 hasta

mayo 2013.

Código: 2012-046

Autor principal: Elías José Franco Pretto: Residente de IV año, Programa de Cirugía Oral y

Maxilofacial, Universidad Militar Nueva Granada – Hospital Militar Central.

Co-autor: Sergio Mauricio Castellanos García DDS, Cirujano Oral y Maxilofacial, Hospital

Militar Central. . Director de Trabajo de Grado.

Co-autor: Iván Alberto Méndez MSc, Docente de Enfermedades Infecciosas. Facultad de

Medicina, Universidad Militar Nueva Granada.

Co-autor y Asesor temático: Luz Angela Pescador SMSM, Coordinadora de Sección de

Microbiología, Laboratorio Clínico, Hospital Militar Central.

Año: 2013

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Información de Autores

Elías José Franco Pretto (Investigador Principal)

Correo electrónico: [email protected]

Teléfono celular: 321 425 6902.

Sergio Mauricio Castellanos García (Director de Trabajo de Grado)

Correo electrónico: [email protected]

Teléfono celular: 310 764 6810.

Iván Alberto Méndez (Co-investigador y Asesor Temático)

Correo electrónico: [email protected]

Teléfono celular: 315 389 2958.

Luz Ángela Pescador (Co-investigador y Asesor temático)

Correo electrónico: [email protected]

Teléfono celular: 313 8252046

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2. Contenido

Página

Listado de tablas y gráficos 4

Resumen 5

Introducción 7

Marco teórico 8

Planteamiento del problema 35

Justificación 37

Objetivos 38

Metodología 39

Plan de análisis 45

Aspectos éticos 46

Resultados 48

Discusión 54

Conclusiones 57

Referencias bibliográficas 58

Anexos 63

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3. Lista de tablas y gráficos

Gráficos

Gráfico 1: Frecuencia de espacios anatómicos comprometidos.

Gráfico 2: Número de espacios anatómicos comprometidos.

Tablas

Tabla 1: Variables sociodemográficas

Tabla 2: Estadio clínico de la infección

Tabla 3: Frecuencia de manejo intrahospitalario y ambulatorio

Tabla 4: Tipo de cepa aislada

Tabla 5: Tipo de microbiota aislada

Tabla 6: Microorganismos anaerobios facultativos

Tabla 7: Microorganismos anaerobios estrictos

Tabla 8: Frecuencia de cepas en pacientes hospitalizados

Tabla 9: Perfil de susceptibilidad a antimicrobianos de uso común

Tabla 10: Frecuencia de comorbilidades

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4. Resumen

Objetivo: Describir los microorganismos más comunes y su perfil de susceptibilidad

antibiótica en pacientes con infecciones de origen dental atendidos en el servicio de

Cirugía Oral y Maxilofacial del Hospital Militar Central en un período de 12 meses.

Lugar: Servicio de Salud Oral y Cirugía Maxilofacial, Sección de Cirugía Maxilofacial.

Población: Todos los pacientes remitidos a la sección de Cirugía Maxilofacial con

infecciones faciales de origen dental.

Metodología: Mediante un estudio retrospectivo descriptivo se realizó revisión de las

historias clínicas en busca de información demográfica (edad, sexo), signos y síntomas más

comunes de los pacientes que hayan remitidos al servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial

con infecciones faciales de origen dental, identificación de los espacios anatómicos

involucrados, microorganismos identificados mediante Gram, cultivo en anaerobiosis,

aerobiosis y perfil de susceptibilidad, tiempo de resolución (evidencia clínica en casos

ambulatorios y culminación del período de hospitalización en pacientes ingresados).

Muestreo: Por conveniencia. Pacientes remitidos al servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial

del Hospital Militar Central con infección odontogénicas.

Medición y plan de Análisis: Los datos fueron tabulados para análisis mediante medidas

descriptivas, de variabilidad, tablas, gráficos y algunos indicadores epidemiológicos.

Resultados

Fueron incluidos 35 pacientes; 22 (62%) del género masculino ,13 (37%) del género

femenino, en un rango de edad desde 2 hasta 95 años (promedio 31.9). Las infecciones

odontogénicas comprometieron con mayor frecuencia el espacio vestibular (27 casos;

77%).

Predominaron los cocos gram positivos anaerobios facultativos (44%), de los cuales, las

cepas de Streptococcus mitis fueron las más frecuentes (23%). Los microorganismos

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anaerobios estrictos representaron un 28% de las cepas aisladas, de las cuales, las cepas

de Peptococcus spp y Fusobacterium nucleatum fueron las más frecuentes (26% y 15%

respectivamente). Con respecto al perfil de susceptibilidad de las cepas aisladas, se

registró un patrón de resistencia en más del 70% a la ampicilina y del 25% a ampicilina

sulbactam y cefalotina y sensibilidad del 100% a clindamicina y gentamicina.

El 30% de los pacientes presentaron más de dos espacios anatómicos comprometidos por

la infección, no existiendo comorbilidad en el 50%.

Conclusiones

Se enfatiza la importancia de abordar de manera integral a los pacientes con infecciones

odontogénicas, reconocer los microorganismos y la adecuada interpretación de la prueba

de susceptibilidad a los antibióticos, permitiendo establecer la terapéutica adecuada,

evitando tiempos prolongados de hospitalización.

Palabras clave. Infección odontogénica, celulitis facial, absceso odontogénico.

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5. Introducción

La celulitis facial odontogénica es un problema común en el campo de la Cirugía

Maxilofacial. A pesar del conocimiento de los principios quirúrgicos de manejo; la

aparición de cepas resistentes a los antimicrobianos puede prolongar el tiempo de

resolución del cuadro y modificar el manejo hospitalario.

La diabetes mellitus forma parte de un síndrome metabólico caracterizado por elevación

de niveles plasmáticos de glucosa (>126mg/dl) causado por ausencia parcial o completa

de insulina. Ésta enfermedad incrementa el riesgo del paciente a sufrir infecciones

bacterianas a expensas de la disfunción en la capacidad bactericida de los

polimorfonucleares neutrófilos, de la inmunidad celular y de la activación del sistema de

complemento

Existen estudios que comparan las características clínicas de las infecciones maxilofaciales

entre pacientes diabéticos y no diabéticos en términos de severidad, tasa de

complicaciones y biota. Los resultados demuestran que los pacientes diabéticos

presentan cuadros infecciosos más severos, con una microbiota distinta a los pacientes no

diabéticos. La celulitis cervical que involucra los espacios parafaríngeos, retrofaríngeos y

víscerovasculares es una complicación de naturaleza fulminante reportada en pacientes

con diabetes mellitus que requiere manejo inmediato; terapia antimicrobiana de amplio

espectro e intervención quirúrgica.

En nuestra práctica institucional, la penicilina sigue siendo el antimicrobiano empírico de

elección para el manejo de las infecciones odontogénicas, debido a su efectividad, pocos

efectos adversos, bajo costo y tolerancia del paciente.

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6. Marco Teórico

El manejo de las infecciones y la tasa de mortalidad cambiaron radicalmente cuando se

inicia la prescripción rutinaria de penicilina a partir del desarrollo de su forma

farmacéutica en polvo por parte de Howard Florey y Ernst Chain en 1943. La formulación

indiscriminada de penicilina trajo consigo la aparición de cepas resistentes a dicho

antimicrobiano tan solo cuatro años después del desarrollo de la forma farmacéutica. Es

por ello que surgen las formas sintéticas para ampliar el espectro contra las nuevas cepas

resistentes.(1)

Flynn en una revisión sistemática sobre la selección de antimicrobianos para el

tratamiento de infecciones odontogénicas refiere que los estudios in vitro recientes de las

cepas aisladas presentan una tendencia al incremento de la resistencia a antimicrobianos

de uso empírico, con tasas de resistencia menores para antimicrobianos de espectro más

amplio. Este autor sugiere la terapia empírica con Ampicilina/Sulbactam como primera

opción para el manejo intrahospitalario de pacientes con infecciones odontogénicas de

menor severidad; seguido de la Clindamicina, Penicilina / Metronidazol y Ceftriaxona

como segunda, tercera y cuarta opciones de manejo según incrementa la severidad del

cuadro infeccioso en cada caso.(2)

Storoe y cols, realizaron un estudio retrospectivo en donde compararon 2 cohortes de

pacientes admitidos a la misma institución por infección odontogénica durante un período

de 81 meses, cada grupo con una década de diferencia en período de admisión. El

propósito era revisar las características clínicas y microbiológicas de los pacientes

hospitalizados por infecciones odontogénicas en la década de los 80 y compararlas con las

mismas variables en otros pacientes una década después.(3)

Los resultados indicaron que los signos clínicos y síntomas permanecieron constantes en

ambos grupos, sin embargo registraron aumento en los períodos de hospitalización en los

pacientes de la década de los 90; sugiriendo incremento en la severidad de las infecciones

odontogénicas. La prevalencia de microorganismos fue variable; sin embargo, lo asocian a

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cambios en la nomenclatura, nuevos protocolos de toma de muestra y técnicas de

aislamiento.

Huang y cols, encontraron que las infecciones odontogénicas son la causa más común de

infecciones de espacios profundos del cuello en su estudio retrospectivo; refieren que el

59.3% de las muestras tomadas de esos focos crecieron en medio anaerobio, sugiriendo

que la terapia antimicrobiana empírica debería incluir un fármaco que incluya a dichos

microorganismos dentro de su espectro de acción.(4)

El patrón microbiológico de las infecciones profundas del cuello es usualmente

polimicrobiano, incluyendo aerobios, microaerofílicos y anaerobios. Varios reportes

señalan al Streptococcus viridans como el microrganismo aislado con mayor

frecuencia.(4,5)

La condición sistémica del paciente también parece ser un factor que influye en la

microbiología de las infecciones odontogénicas. La diabetes mellitus es reconocida como

la enfermedad sistémica asociada de manera más frecuente con las infecciones de

espacios profundos del cuello.

Klebsiella pneumoniae ha presentado abundante crecimiento en medios de cultivo a partir

de toma de muestras de infecciones de espacios profundos de cuello en pacientes

diabéticos. Factores contribuyentes para este hallazgo incluyen la colonización

orofaríngea por bacilos gramnegativos y la disfunción fagocítica que presentan los

pacientes diabéticos.(4,6)

Existen factores séricos que predisponen a esta disfunción. En un estudio, se realizó

cultivo de polimorfonucleares de pacientes no diabéticos en plasma de pacientes

diabéticos con el fin de estudiar la correlación de la glicemia y la actividad fagocítica.

No se encontró correlación con el microambiente hiperglicémico y la actividad fagocítica,

sin embargo se registró aumento en la adherencia de esos polimorfonucleares a endotelio

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aórtico bovino. Éste hallazgo explicaría la disminución en la diapédesis y quimiotaxis en

éste grupo celular.(7-10)

A pesar de la disponibilidad a los antibióticos, las infecciones odontogénicas pueden

producir complicaciones que ponen en riesgo la vida, tales como obstrucción de la vía

aérea, mediastinitis descendente, trombosis de la vena yugular, erosión de la arteria

carótida, shock séptico y coagulopatía intravascular diseminada.

Flynn en su revisión sistemática es claro estableciendo puntos claros en el manejo actual

de las infecciones odontogénicas. La evidencia demuestra que no existen diferencias en

relación a la superioridad de un antimicrobiano frente a otro en el manejo de las

infecciones odontogénicas, ya que el manejo quirúrgico oportuno y eliminación del foco

infeccioso va a permitir la resolución del cuadro. Sin embargo, estas sugerencias están

dirigidas al manejo de pacientes sin compromiso sistémico.(2)

Debido a la continuidad anatómica de la cavidad oral con los espacios profundos del cuello

y su implicación en el manejo quirúrgico, es relevante conocer la anatomía de dicha

región.

Anatomía Quirúrgica de Espacios Fasciales de la Cabeza y el Cuello

La Anatomía de los espacios fasciales de la región de la cabeza y cuello siempre han sido

tema de discusión entre anatomistas y cirujanos. La importancia de las fascias del cuello

se debe a su capacidad para definir espacios, y limitar en cierto grado la diseminación de

las infecciones y algunos tumores. De cualquier manera, estas fascias varían en grosor y

composición y han sido descritas de manera diferente por muchos autores. No existe una

definición concreta de la constitución de la fascia. Ha sido descrita en la literatura como

un tejido fibrograso; una capa fibrosa delgada, bien definida de espesor variable parecido

a una aponeurosis que descansa sobre otra área más difusa.(11)

Tradicionalmente, la fascia de la cabeza y cuello se clasifican en dos divisiones: superficial

y profunda.

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Fascia Cervical Superficial (FCS): La cabeza y el cuello se encuentran rodeados de una fina

capa de tejido conectivo denominado fascia superficial o Sistema Músculo-aponeurótico

Superficial (SMAS). Ésta fascia cubre la cabeza, la cara y el cuello.

La fascia superficial en el cuello es laxa, contiene al músculo platisma en su porción

profunda y porciones del a vena yugular externa y yugular anterior. En la cara, es más

densa, y los músculos de la expresión facial se encuentran contenidos en dicha capa

(fig.1). En el cráneo incrementa aún más su densidad, contiene los músculos epicraneales

y la aponeurosis en su cara profunda. Existe un espacio virtual que contiene tejido

adiposo superficial y profundo al músculo platisma que puede convertirse en vía de

diseminación para fascitis necrotizante. Éste espacio es llamado Por Grodinsky y Holyoke

como espacio 1.(12)

Figura 1. Fascia Superficial (SMAS): Diagrama axial del cuello. Muestra la fascia cervical

superficial con el platisma y las opciones anterior y externa de las venas yugulares.

Tomado de Som P., Curtin H. Head and Neck Imaging. 5ª ed. Elsevier; 2011 pag. 1807.

Fascia Cervical Profunda (FCP): Es más compleja que la FCS y está constituida de capas

más delgadas y densas de tejido conectivo, más definidas que en la FCS. La FCP se localiza

en el cuello por debajo de la base craneal, cubriendo los músculos del cuello así como la

mandíbula y los músculos de la deglución y masticación.

LA FCP se subdivide a su vez en tres capas:

a. Superficial (de revestimiento): Es una capa de tejido fibroso bien definida que

rodea al cuello en su totalidad. Incorporando los músculos trapecio y

esternocleidomastoideo con inserción posterior en las espinas vertebrales y el

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ligamento nucal. Ésta capa se extiende cranialmente hacia la cara y

caudalmente hacia las regiones pectorales y axilares. La fascia se extiende

lateralmente hacia la derecha e izquierda, dividiéndose para rodear los

músculos trapecios para luego cruzar el triángulo posterior del cuello. Ésta

capa vuelve a dividirse para rodear los músculos Esternocleidomastoideos de

manera bilateral y vuelve a convertirse en una capa única cuando termina su

recorrido hacia la línea media.

Caudalmente, hacia la línea media, la capa superficial de la FCP se divide en dos

capas, una se inserta en el aspecto anterior y otra en el posterior del manubrio

del esternón creando entre ambas capas el espacio supraesternal de Burns

(Gruber). A este mismo nivel, la capa superficial se inserta lateralmente en

todo el borde superior de la clavícula hasta el acromion y la espina de cada

escápula (fig.2).

b. Media: Tiene tres subdivisiones: capa esternohioidea-omohioidea, capa

esternotiroidea-tirohioidea, capa visceral. Las primeras dos rodean los

músculos que poseen su nombre. Son continuas hacia la línea media y se

fusionan lateralmente una con otra y con la capa superficial de la FCP.

La capa visceral es la división más profunda y de mayor importancia clínica.

También denominada fascia bucofaríngea por encima del hueso hioides y fascia

pretraqueal o previsceral debajo del hueso hioides. Rodea completamente la

tráquea y la laringe, esófago, glándula tiroides por debajo del hueso hioides y

las paredes posteriores y laterales de la faringe por encima del hueso hioides.

Se inserta a la base de cráneo en el sector posterior y al hueso hioides y

cartílago tiroideo en el sector anterior y lateral respectivamente. Inferiormente

se fusiona con la porción alar de la capa profunda de la FCP y con el pericardio

fibroso que cubre el corazón y los grandes vasos del mediastino superior. Se

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continúa inferiormente para cubrir la porción torácica de la tráquea y el

esófago (fig.2).

Figura 2. Lámina superficial de la fascia cervical profunda. Diagrama axial del

cuello. Muestra la lámina superficial y media (gris) extendiéndose desde las

apófisis espinosas sobre los músculos pretraqueales. Tomado de Som P.,

Curtin H. Head and Neck Imaging. 5ª ed. Elsevier; 2011 pag. 1808.

c. Profunda: Su origen puede ser considerado igual al de la capa superficial del a

FCP; de las apófisis espinosas de las vértebras cervicales y del ligamento nucal.

Se subdivide en fascia alar y fascia prevertebral. La fascia alar se extiende a

través de la línea media entre las apófisis transversas de las vértebras

cervicales, detrás de la fascia visceral y desde la base del cráneo hacia un nivel

que varía entre la sexta vértebra cervical (C-6) y la cuarta torácica (T-4), en

donde se fusiona con la fascia visceral situándose anterior a esta última.

Lateralmente, la fascia alar forma una capa que envuelve la arteria carótida

interna, la vena yugular interna y el nervio vago llamado la vaina carotidea

(fig.3).

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Figura 3. Lámina profunda de la fascia cervical profunda. Diagrama axial del

cuello. Muestra la lámina profunda (gris) extendiéndose desde las apófisis

espinosas de las vértebras sobre los músculos de los triángulos posteriores del

cuello. La lámina se subdivide, ventralmente para formar la fascia

prevertebral, y una segunda capa, profunda a la anterior denominada fascia

alar. Estas dos láminas forman los límites del espacio de peligro.

La fascia prevertebral rodea las vértebras y los músculos posturales del cuello.

Se localiza posterior a la fascia alar hacia la línea media y se fusiona con ella al

nivel de las apófisis transversas de las vértebras. Continúa entonces

lateralmente como la fascia escalena para rodear los músculos escalenos,

esplenio de la cabeza, elevadora de la escápula, elevador de la escápula. Se

continúa inferiormente hasta el coxis. El espacio creado entre la fascia alar y la

prevertebral se denomina espacio 4 de Holyoke y Grodinsky o espacio de

peligro.(30-35)

Espacios Profundos Asociados a Infecciones Odontogénicas

Laskin en 1964 describió las vías por las que las infecciones odontogénicas progresan más

allá del proceso alveolar. Demostró que los músculos que se insertan al proceso alveolar

pueden dirigir el paso de las infecciones hacia los espacios adyacentes a los maxilares.

Este autor también resumió las vías posibles de diseminación en relación a cada diente. A

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continuación se describen los espacios anatómicos perialveolares que podrían verse

ocupados por procesos infecciosos odontogénicos.

La discusión de los espacios anatómicos asociados a infecciones odontogénicas será

agrupada como sigue:

1. Espacios Perialveolares

2. Espacios Profundos asociados a Infecciones Odontogénicas Mandibulares

3. Espacios Profundos asociados a Infecciones Odontogénicas Maxilares

1. Espacios Perialveolares

Espacio Vestibular

Corresponde a un espacio potencial que existe entre la mucosa vestibular los músculos

de la expresión facial. Este espacio limita posteriormente con el músculo buccinador, y

anteriormente con los músculos intrínsecos de los labios y el orbicularis oris. Este espacio

contiene principalmente tejido conectivo aerolar, lo atraviesa el conducto de la glándula

parótida, los nervios bucal largo y mentoniano.

Las infecciones vestibulares pueden pasar alrededor del musculo canino, para tener su

entrada en el espacio infraorbitario, o entre el buccinador y depresor del ángulo de la

boca para entrar a los espacios bucal o subcutáneo. El drenaje quirúrgico del espacio

vestibular se realiza mediante incisión a través de la mucosa oral paralela al vestíbulo y

dirigida a su mayor profundidad excepto en la zona del nervio mentoniano, donde es más

favorable dirigir la incisión paralela al trayecto de dicho nervio. Se realiza disección roma

para la exploración y drenaje del contenido purulento de este espacio.

Espacio Bucal

Los límites mediales de este espacio corresponden al músculo buccinador y sus

inserciones al proceso alveolar en el sector posterior en ambos maxilares. El límite

superior corresponde a la piel. Anteriormente, el espacio bucal está limitado por el

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espacio infraorbitario y la musculatura labial y posteriormente por el espacio masticatorio

y en especial la porción infra temporal.

El espacio bucal contiene una porción del ducto parotídeo, la arteria y vena faciales,

arteria y vena transversas de la cara, y el panículo adiposo bucal. Tiene comunicación

directa con el resto de los espacios subcutáneo e infraorbitario. La vena facial drena al

plexo pterigomaxilar, razón por la cual hay riesgo de que ocurra tromboflebitis séptica

hacia el espacio infratemporal.

El espacio bucal puede drenarse desde la cavidad oral a través de una incisión mandibular

vestibular, sin embargo, con el abordaje submandibular realizando una incisión paralela y

por debajo al borde inferior mandibular se puede favorecer la vía de drenaje a través de la

gravedad.

Espacio Subcutáneo

Es el espacio que guarda relación con el tejido conectivo superficial y en la profundidad de

los músculos platisma y de la expresión facial. Otros autores consideran que debería

considerarse como espacio subcutáneo aquel que se encuentra por encima de los

músculos antes descritos. Es importante tomar en cuenta que las infecciones profundas

de la cabeza y el cuello pueden dirigirse hacia este espacio, invadirlo. La fascitis

necrotizante es un ejemplo de estos procesos en donde la infección diseca planos

anatómicos entre el platisma y tejidos adyacentes antes de ocasionar la necrosis.

El drenaje quirúrgico va dirigido a ubicar la incisión en una zona favorable estéticamente,

siguiendo líneas de tensión a la vez que se favorece un drenaje gravedad-dependiente

evitando el progreso del proceso infeccioso y el colapso de los tejidos blandos dentro de la

cavidad abscedada.

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2. Espacios Profundos asociados a Infecciones Odontogénicas Mandibulares

Espacio Perimandibular

Corresponde esencialmente al espacio subperióstico formado por la división de la capa

superficial de la Fascia Cervical Profunda alrededor del cuerpo de la mandíbula. Este

espacio subperióstico continúa posteriormente para cubrir la rama y el cóndilo

mandibulares. Su contenido: la mandíbula, los dientes, paquete vasculonervioso alveolar

inferior.

La diseminación de las infecciones más allá del periostio mandibular puede involucrar los

espacios: vestibular, bucal, sublingual, submandibular, masticatorio. Las infecciones de

estos espacios son usualmente de etiología traumática, odontogénica o postquirúrgica.

Las infecciones en el espacio perimandibular se drenan a través del surco dental o por una

incisión vestibular con plano de disección subperióstico.

El abordaje submandibular para acceso subperiostico por el borde inferior mandibular

puede ser una opción para el manejo de las infecciones que invaden este espacio.

Espacio Sublingual

Los límites del espacio sublingual son: superior, la mucosa del piso de la boca, la

mandíbula en sentido anterior y lateral, los músculos de la lengua medialmente, y los

músculos milohioideos inferiormente. Posteriormente el espacio sublingual es continuo al

espacio submandibular hacia la zona circundante al borde posterior del músculo

milohioideo. El contenido de este espacio: glándula sublingual, arteria sublingual, nervio

lingual, y ducto submandibular. Las infecciones de este espacio son usualmente

odontogénicas pero pueden estar relacionadas con sialadenitis y sialolitiasis y trauma.

El espacio sublingual se comunica con el espacio faríngeo lateral a través del espacio

bucofaríngeo donde el músculo estilogloso pasa entre los músculos constrictores superior

y medio para entrar al espacio sublingual y a la lengua.

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Las infecciones leves del espacio sublingual pueden ser manejadas mediante una incisión

a través de una incisión en el sector anterior y lateral del piso de boca paralela al ducto

submandibular. Se realiza entonces disección roma para explorar el espacio, para

posteriormente colocar un dren de una vía.

Las infecciones más severas son tratadas de manera combinada mediante incisiones

intraorales y submandibulares con disección a través del músculo milohioideo, para

posteriormente colocar un dren “through – through” ( del inglés a través – a través) para

favorecer el drenaje purulento gravedad – dependiente.

Espacio Submandibular

Está limitado anteriormente por el vientre anterior del músculo digástrico, el vientre

posterior del digástrico y el músculo estilohioideo posteriormente y la capa superficial de

la fascia cervical profunda en la porción más superficial. El límite superior corresponde a

las superficies inferior y lingual de la mandíbula y el ápex inferior del espacio limita con el

tendón del músculo digástrico. El límite profundo desde anterior hasta posterior, está

conformada por los músculos milohioideo, hiogloso, constrictor superior de la faringe.

El contenido el espacio submandibular: glándula submandibular, arteria y vena facial,

rama marginal mandibular del nervio facial, nervio milohioideo, nódulos linfáticos.

El espacio submandibular tiene comunicación libre alrededor del vientre anterior del

músculo digástrico con el espacio submental, y por ende, con el espacio submandibular

contralateral. Tiene comunicación también con el espacio faríngeo lateral a través de la

superficie lateral del músculo constrictor superior de la faringe. La diseminación de las

infecciones desde el espacio submandibular hacia las regiones inferiores del cuello se

limita por la fusión de la capa superficial de la fascia cervical profunda con los músculos

suprahioideos y el periostio del hueso hioides.

El drenaje extraoral del espacio submandibular se realiza mediante una incisión paralela a

las líneas de tensión por encima del hueso hioides, o mediante dos incisiones, cada una

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aplicada sobre los vientres del músculo digástrico. Se realiza disección roma hacia el

espacio submandibular. Debe tenerse en cuenta que la dirección de la disección será

orientada hacia la cara lingual de la mandíbula inferiormente a la inserción del músculo

milohioideo en donde existe una alta probabilidad de que el foco dental haya perforado la

cortical lingual y por esta vía haya ocupado el espacio submandibular.

Espacio Submental

Está limitado lateralmente por los vientres anteriores de los músculos digástricos de

ambos lados, superiormente por el músculo milohioideo, anteriormente por el borde

inferior de la mandíbula, y posteriormente por el hueso hioides. El límite superficial

corresponde a la capa superficial de la fascia cervical profunda. Contenido: vena yugular

anterior y nódulos linfáticos.

Debido a que es un espacio ubicado en la línea media, con comunicación libre con los

espacios submandibulares, el espacio submental permite el desarrollo de infecciones

bilaterales como la angina de Ludwig. La incisión extraoral para el drenaje debe ubicarse

sobre la línea media a nivel anterior del hueso hioides, o sobre los vientres anteriores de

los músculos digástricos.

Espacio Masticatorio

Se trata de un espacio anatómico cerrado formado por la división de la capa superficial de

la fascia cervical profunda a nivel del borde inferior de la mandíbula. Comprende tres

divisiones: espacio submasetérico, espacio pterigomandibular y el espacio temporal.

La capa superficial se encuentra lateral al músculo masetero, se inserta al arco cigomático

y pasa superficial al músculo temporal para insertarse a la línea curva temporal superior.

La capa profunda se origina del músculo pterigoideo medial y se continúa hacia la base de

cráneo hacia el hueso esfenoides entre las placas lateral y medial de las apófisis

pterigoides.

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1. Espacio Submasetérico: Se encuentra limitado por el borde inferior de la mandíbula

abajo, el arco cigomático arriba, la rama vertical de la mandíbula medialmente, y la

capa superficial de la fascia cervical profunda. Los bordes anterior y posterior de la

rama cubiertos por la fascia corresponde a los límites del espacio submasetérico. El

espacio submasetérico contiene al músculo masetero, la arteria y vena masetéricas.

El espacio submasetérico comunica con el espacio temporal superficial medialmente al

arco cigomático, en especial en el sector anterior. Donde el tendón temporal desliza

libremente posterior al canal retrocigomático. Se comunica con el espacio

pterigomandibular anterior y posteriormente a la mandíbula especialmente anterior a

la rama ascendente mandibular donde la fascia es laxa en la zona superficial del

músculo buccinador cuando se une al constrictor superior de la faringe en el rafé

pterigomandibular.

Los abordajes quirúrgicos para el espacio submasetérico corresponden a la incisión por

vía submandibular, con disección al borde inferior de la mandíbula, seguido por

disección roma del músculo masetero, y en el espacio entre el cuerpo del músculo y la

rama mandibular.

También se puede acceder al espacio desde una incisión a través de la línea de

inserción del cabello superior al arco cigomático. La disección se realiza a través de la

fascia superficial y temporal (capa superficial de la fascia cervical profunda) para

exponer el músculo temporal. Se realiza disección roma con dirección inferior

superficial al músculo y profundo al arco cigomático para acceder al espacio

submasetérico. Se coloca dren dependiente de gravedad para este abordaje.

La tercera opción para el drenaje es a través de cavidad oral, mediante incisión lateral

al rafe pterigomandibular, con disección directa al músculo buccinador y roma dirigida

al espacio submasetérico. Sin embargo, este abordaje no permite el drenaje gravedad

dependiente.

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2. Espacio Pterigomandibular: Está limitado por la capa superficial de la fascia cervical

profunda medialmente, la rama ascendente de la mandíbula lateralmente, el músculo

pterigoideo lateral superiormente y la cincha pterigomaseterina inferiormente.

En los sectores anterior y posterior, la misma fascia separa el espacio

pterigomandibular del músculo buccinador, del rafe pterigomandibular, el músculo

constrictor superior de la faringe y la glándula parótida. El espacio pterigomandibular

contiene la arteria y vena alveolares inferiores, y los nervios lingual, milohioideo y

alveolar inferior. La pericoronitis del tercer molar inferior es la causa más común de

infección en este espacio.

El drenaje quirúrgico de este espacio se realiza mediante incisión lateral al rafe

pterigomandibular a través del músculo buccinador. Se realiza disección roma dentro

del espacio por la porción medial mandibular. Podría realizarse conexión con el

espacio submandibular para permitir drenaje gravedad dependiente a través de este

último.

3. Espacio Temporal: Este espacio puede ser subdividido en espacios superficial y

profundo. El espacio superficial está limitado superiormente por la cresta temporal,

anteriormente por la pared lateral de la órbita y superficialmente por la capa

superficial de la fascia cervical profunda, medial o profundamente por el músculo

temporal y posteriormente por la fusión de la capa superficial de la fascia cervical

profunda con la vaina del músculo. Hacia límite inferior de este espacio, el arco

cigomático forma la porción superficial de ese borde. Posteriormente a través del

arco, la fascia temporal (capa superficial de la fascia cervical profunda) se divide en

dos capas. Anteriormente, esta capa interna se conforma de tejido conectivo laxo

dividiendo el músculo temporal y su tendón de la superficie interna del arco

cigomático y el músculo masetero.

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El espacio temporal profundo está delimitado por los huesos temporal y esfenoides

medialmente, el músculo temporal lateralmente y su unión al cráneo a nivel superior y

posterior. Su límite anterior corresponde a la superficie infratemporal del maxilar

superior y a la superficie posterior de la órbita. Inferiormente, el espacio temporal

profundo termina en la superficie superior del músculo pterigoideo lateral. La porción

de este espacio que es inferior a la cresta infratemporal de los huesos temporal y

esfenoides corresponde al espacio infratemporal.

La causa más común de infección en el espacio temporal es diseminación de los

subespacios masticatorios vecinos. El abordaje quirúrgico destinado al drenaje se

realiza mediante incisión en el cuero cabelludo dirigida profunda a la fascia temporal

(capa superficial de la fascia cervical profunda) para exponer el músculo temporal. La

disección puede ser llevada a cabo de manera roma a través del músculo temporal

para entrar al espacio temporal profundo si es necesario. Se realiza entonces

disección roma con dirección inferior a lo largo de las superficies profunda o lateral del

músculo temporal para explorar por completo el espacio.

Este abordaje puede ser combinado con un abordaje vestibular posterior mandibular o

maxilar superior con disección posterior y superior para encontrar el espacio de

disección superior.

Se puede pasar un dren a través de la incisión del cuero cabelludo hacia la cavidad

oral. Tal dren permite drenaje gravedad dependiente.

Espacio Faríngeo Lateral

Este espacio tiene forma de cono invertido, y se encuentra subdividido por la apófisis

estiloides en compartimientos anterior y posterior. El límite superior corresponde a la

base del cráneo en el hueso esfenoides y el inferior corresponde al ápex de dicho cono

invertido que constituye una bolsa ciega donde la cápsula de la glándula submandibular se

inserta a las fascias de los músculos estilohioideos y vientre posterior del digástrico.

Medialmente está limitado por los músculos constrictores superior y medio de la faringe,

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cubiertos por la fascia bucofaríngea. A medida que esos músculos se curvan alrededor de

la faringe, permiten comunicación sin límites con el espacio retrofaríngeo. El límite

posterior corresponde a la porción alar de la capa profunda de la fascia cervical profunda y

su conexión con la vaina carotídea. Pósterolateralmente, el límite es la glándula parótida

y su fascia profunda, y lateralmente la porción profunda del músculo pterigoideo medial y

su fascia.

Anterolateralmente, a medida que el constrictor superior de la faringe se une al rafe

pterigomandibular y al musculo buccinador, se crea la porción superior de este límite,

mientras que la comunicación con el espacio sublingual y submandibular a nivel inferior es

evidente.

El compartimiento anterior del espacio faríngeo lateral contiene solo grasa tejido

conectivo laxo y nódulos linfáticos. Posterior a los músculos estilogloso y estilofaríngeo, el

compartimiento posterior contiene los nervios glosofaríngeo, accesorio del vago e

hipogloso, así como la vaina carotídea y su contenido, incluyendo la cadena simpática

ganglionar.

Las infecciones del espacio faríngeo lateral pueden originarse por extensión directa de los

espacios retrofaríngeos, sublingual, submandibular o masticatorios. Las infecciones

también pueden pasar del espacio parotídeo al faríngeo lateral a través de la delgada

fascia que los separa. Otra posibilidad es la diseminación de infecciones peritonsilares por

ruptura del músculo constrictor superior de la faringe y diseminación directa al espacio en

mención. Los vasos linfáticos pueden transportar infecciones sinusales hacia el espacio

faríngeo lateral.

Las infecciones de larga duración que afectan el espacio faríngeo lateral pueden erosionar

la vaina carotídea o lesionar cualquiera de los nervios ubicados en su compartimiento

posterior. La vaina carotídea pasa a través de la porción posterolateral del espacio.

Signos premonitores de compromiso de la vaina carotídea incluyen:

1. Edema peritonsilar persistente después de drenaje del absceso

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2. Síndrome de Horner ipsilateral

3. Parálisis de los IX, X, XI XII pares craneales sin explicación lógica

4. Detrimento de la condición clínica

5. Hemorragias nasales recurrentes, por cavidad oral y oídos

6. Hematoma peritisular

7. Shock

Cualquiera de estos signos podría indicar el compromiso de la vaina carotídea en un

proceso infeccioso que invade el espacio faríngeo lateral, condición que merece la

evaluación mediante arteriografía, venografía, tomografía computarizada, e inspección

quirúrgica.

El compartimiento anterior podría ser abordado intraoralmente, a través de una incisión a

nivel del rafe pterigomandibular, disección roma alrededor de la porción medial del

músculo pterigoideo medial para entrar al espacio faríngeo lateral.

Dyzak y Zide actualizaron el abordaje extraoral propuesto por Mosher en 1929. Se realiza

incisión submandibular a 3 cm por debajo del borde inferior mandibular, la incisión puede

ser extendida y modificada a forma de T con una descarga vertical a nivel del borde

anterior del músculo esternocleidomastoideo si alguno de los signos premonitores

llegaran a observarse. Se realiza disección a través del platisma hacia la capa superficial

de la fascia cervical profunda, donde se identifican: el músculo esternocleidomastoideo, el

vientre posterior del digástrico, la glándula submandibular, y el asta mayor del hueso

hioides. A medida que el músculo esternocleidomastoideo se retrae posteriormente, se

realiza disección roma entre las superficies anterior y profunda del vientre posterior del

digástrico y los músculos estilohioideo y glándula submandibular hacia el espacio faríngeo

lateral. Si se encuentran coágulos antiguos, se indica extensión del abordaje para revisión

de la vaina carotídea previo a la exploración del espacio faríngeo lateral.

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Posteriormente a la exploración del espacio, se coloca el dren. Es posible realizar

comunicación con un abordaje intraoral, mediante la colocación de dren con hemostático

largo y curvo desde la cavidad oral dirigido a través del espacio submandibular hasta el

medio extraoral. Podría tomarse como guía inicial la introducción del hemostático previo

a la realización de la incisión. Se sugiere mantener flujo unidireccional cuando se intente

irrigar a través del dren.

Espacio Retrofaríngeo

Consiste en tejido conectivo aerolar laxo entre la fascia bucofaríngea y la fascia alar,

posterior a la nasofaringe, orofaringe e hipofaringe. Se extiende desde la base de cráneo

superior a la fusión de las fascias visceral y alar a un nivel variable entre C-6 y T-4.

Lateralmente, es continua con el espacio faríngeo lateral desde la base del cráneo hasta el

nivel del hueso hioides, donde termina el espacio faríngeo lateral, e inferiormente con las

extensiones anteriores y laterales del espacio 3 de Grodkinsky y Holyoke (Espacio

Pretraqueal).

El espacio retrofaríngeo contiene tejido conectivo aerolar y la cadena linfática

retrofaríngea que drenan la nariz, nasofaringe, oído medio y senos paranasales. Por ende,

las causas más probables de infección en esta zona las infecciones de la vía aérea superior,

faringe y otogénicas. Otras causas son las infecciones odontogénicas que se diseminan al

espacio retrofaríngeo a través del espacio faríngeo lateral, ruptura de las fascias alar y

prevertebral por osteomielitis vertebral y lesiones traumáticas de la región.

El abordaje quirúrgico intraoral es aceptable para localizar las infecciones retrofaríngeas

especialmente en los pacientes pediátricos. Se realiza una incisión en la línea media en la

pared posterior de la orofaringe, a través de la aponeurosis de los constrictores faríngeos

y la fascia visceral y de ahí hacia el espacio retrofaríngeo.

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Luego de realizar exploración, el dren es suturado en uno de los márgenes de la incisión.

Las desventajas de estos abordajes incluyen aspiración de material infectado y la falta de

un sistema de drenaje gravedad-dependiente.

En el caso de procesos infecciosos de mayor severidad, se indica un abordaje extraoral. Si

cualquiera de los signos premonitores de compromiso de la vaina carotidea está

presentes, entonces debe realizarse evaluación imagenológica y control quirúrgico previo

a la exploración del espacio anatómico. Levitt ha actualizado las técnicas de Mosher y

otros para el drenaje del espacio retrofaríngeo, vaina carotidea, espacio de peligro y

espacio prevertebral. Los puntos anatómicos para tomar en cuenta en la exploración de

estos espacios son: el cartílago cricoides en la línea media, la proyección anterior del asta

mayor del hueso hioides lateralmente y la punta de la apófisis estiloides como punto de

referencia profundo y superior. Los puntos anatómicos blandos corresponden al borde

anterior del músculo esternocleidomastoideo por debajo del hueso hioides, y el vientre

posterior del músculo digástrico superior al hueso hioides.

Existen dos abordajes para los espacios faríngeos posteriores: anterior al músculo

esternocleidomastoideo, y el segundo, posterior al músculo. El abordaje anterior es más

difícil debido a que las ramas de la arteria carótida externa se encuentran en íntima

relación con esa zona.

Se realiza una incisión en el borde anterior del músculo esternocleidomastoideo, desde el

nivel del hueso hioides hasta un punto justo superior al esternón. Se realiza disección

profunda a la capa superficial de la fascia cervical profunda, se identifican: el músculo

esternocleidomastoideo, hueso hioides, cartílago cricoides, y vaina carotidea. Se realiza

retracción lateral del músculo esternocleidomastoideo y la vaina carotidea, y la glándula

tiroides, vasos tiroideos superiores y el nervio laríngeo superior se retraen medialmente.

Si es necesario, la arteria tiroidea superior, vena tiroidea media y el músculo omohioideo

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pueden ser seccionados para lograr mayor acceso. El nervio hipogloso y la arteria y vena

faciales deben ser preservados.

Seguidamente, se realiza disección roma entre los espacios mediales de la vaina carotidea

y los músculos constrictores de la faringe para entrar al espacio retrofaríngeo el cual es

explorado mediante disección digital. Luego de abundante irrigación se coloca un dren

colapsable.

El abordaje posterior a los espacios faríngeos posteriores evita todas las ramas de la

arteria carótida y la vena yugular interna. La cabeza del paciente debe ser girado al lado

opuesto para poder realizar la marcación de la vaina carotidea. Se realiza la incisión en el

borde posterior del músculo esternocleidomastoideo desde el nivel del hueso hioides

hasta el músculo omohioideo. Se identifica la capa superficial de la fascia cervical

profunda y se incide posteriormente al músculo esternocleidomastoideo. Se retraen el

músculo

esternocleidomastoideo y la vaina carotidea, teniendo en cuenta la importancia de

identificar y proteger la cadena simpática cervical que está insertada a la superficie

posterior de la vaina carotidea.

La fascia alar se divide y se retrae posteriormente para entrar al espacio retrofaríngeo. El

plexo braquial se protege manteniendo la disección superior al músculo omohioideo.

Después de la exploración, irrigación e inserción del dren, la herida se afronta únicamente

al plano cutáneo.

Debe recalcarse que con cualquiera de los dos abordajes al espacio retrofarígneo, otros

espacios (pretraqueal, visceral, peligro y prevertebral) también pueden estar involucrados.

Por ende, se debe realizar disección roma en esos espacios como una extensión al

abordaje. Aquellas infecciones que no respondan bien al drenaje cervical, deben ser

abordadas urgentemente mediante toracotomía.

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Espacio Pretraqueal

Este espacio corresponde a la porción anterior del espacio 3 de Grodinsky y Holyoke. Se

extiende desde la fusión de la fascia media y pretraqueal (visceral) al nivel del cartílago

tiroides por encima de la división superior del mediastino, terminando a nivel de la

bifurcación traqueal. Por ende, el límite superficial es la capa media de la fascia cervical

profunda envolviendo los músculos infrahioideos, y el límite profundo es la fascia visceral

(división profunda de la capa media de la fascia cervical profunda) que encierra la glándula

tiroides, tráquea y esófago).

Lateralmente, el espacio pretraqueal se extiende alrededor de los aspectos laterales de la

glándula tiroides, tráquea y esófago para comunicarse con el espacio retrofaríngeo en una

especie de “puente” que se extiende desde la línea oblicua del cartílago tiroides

superiormente, a la arteria tiroidea inferior inferiormente donde las fascia visceral se

fusionan a la fascia alar.

No existe ningún septo en la línea media que separe los lados derecho e izquierdo del

espacio. El espacio pretraqueal puede verse afectado por infecciones que surgen del

esófago, tráquea o glándula tiroides, o a partir de procesos infecciosos de espacios

anatómicos vecinos como es el caso del espacio retrofaríngeo.

El espacio pretraqueal es abordado quirúrgicamente a través de una incisión vertical en

línea media que atraviesa piel, fascia superficial, y las capas superficial de la fascia cervical

profunda, y las dos divisiones de la capa media de la fascia cervical profunda. Se

identifican el cartílago cricoides, la tráquea, la glándula tiroides y la vaina carotidea, y

luego se procede a explorar el espacio pretraqueal, para entonces ser irrigado, y drenado.

De manera alternativa, se puede realizar la incisión a lo largo del borde anterior del

músculo esternocleidomastoideo.

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Espacio Visceral

Está encerrado por la fascia visceral. Es esencialmente el espacio que contiene la faringe,

laringe, tráquea, glándulas tiroides. Anteriormente, el espacio visceral se extiende desde

el cartílago tiroides en dirección inferior hasta el mediastino superior y posteriormente

desde la base del cráneo en el extremo superior de la nasofaringe, seguido por la faringe y

el esófago dentro del mediastino.

Las infecciones del espacio visceral suelen drenar hacia el esófago, faringe o tráquea, y su

abordaje quirúrgico suele ser realizado mediante una extensión al abordaje pretraqueal.

3. Espacios Profundos Asociados con Infecciones Maxilares

Las infecciones que surgen del maxilar superior pueden comprometer los espacios

anatómicos que fueron comentados previamente, sin embargo, existen espacios en el

maxilar superior que se ven afectados de manera más frecuente por focos odontogénicos.

Espacio Palatino

La diseminación inicial de las infecciones maxilares usualmente ocurre a través de

espacios comunes al proceso dentoalveolar: vestibular, bucal, subcutáneo. Además, las

infecciones maxilares pueden involucrar el espacio palatino, que corresponde a un espacio

subperióstico similar al espacio subperióstico del cuerpo mandibular. Debido a la

proximidad de los ápices dentales a la cortical palatina, los incisivos laterales, los

premolares y molares están involucrados de manera frecuentemente.

El drenaje quirúrgico se realiza mediante incisión a través de la mucosa palatina hacia la

cavidad del absceso. La dirección de la incisión debe ser paralela a la vasculatura regional.

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Espacio Infraorbitario

El espacio infraorbitario, o espacio canino, es el espacio potencial que existe entre el

músculo elevador del ángulo del a boca (cuyo origen es la superficie anterior del maxilar),

elevador común del labio superior y ala nasal, cigomático mayor y menor (cuyo origen es

el reborde infraorbitario. Estos músculos corresponden a los límites profundos y

superficiales respectivamente.

Medial y lateralmente, los límites son esencialmente subcutáneos, y las infecciones del

espacio infraorbitario pueden dirigirse a cualquier lado de la inserción del músculo

elevador del labio superior en el valle naso orbitario, o en el aspecto lateral del párpado

inferior.

Existe conexión lateral con el espacio bucal, y la infección puede diseminar libremente

entre estos dos espacios. Las infecciones dentales del maxilar superior pueden pasar a

través de la inserción del músculo elevador del ángulo de la boca desde el espacio

vestibular o directamente si los ápices dentales están localizadas superiores al origen

muscular. Existen dos estructuras importantes en el espacio: nervio infraorbitario y vena

angular. La tromboflebitis de la vena angular puede desencadenar una infección venosa

ascendente con potencial diseminación a la órbita, resultando en trombosis del seno

cavernoso. Por ende, las infecciones del espacio infraorbitario deben ser tratadas de

manera temprana y definitiva.

El espacio infraorbitario debe ser manejado idealmente mediante una incisión que

permita drenaje gravedad-dependiente. Una incisión es realizada paralelamente al

vestíbulo labial. Se debe realizar disección roma a través del músculo elevador del ángulo

de la boca y dentro del espacio infraorbitario, con la adecuada exploración que permita la

evacuación de pus. Debe evitarse trauma al nervio infraorbitario, que puede resultar en

parestesia del labio superior. Debe insertarse un dren en el espacio, el cual debe ser

suturado únicamente a uno de los márgenes de la incisión.

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Espacio Orbitario

Las infecciones orbitarias son complicaciones de las infecciones de espacios faciales

superiores. La causa más común corresponde a las sinusitis paranasales, seguido por las

infecciones de vías aéreas superiores, tromboflebitis séptica, cirugía, trauma e infecciones

odontogénicas. El espacio orbitario está definido por paredes orbitarias de la órbita per sé

y por tejidos blandos palpebrales.

La región entre los tejidos blandos palpebrales y la órbita se denomina septum orbitario,

que no es más que una reflexión del periostio del reborde infraorbitario hacia los

párpados que separa la musculatura de los párpados de los músculos extrínsecos oculares

y la grasa circundante. El septum orbitario funciona como barrera contra la diseminación

de las infecciones provenientes de la región palpebral. Chandler y colaboradores

clasifican las infecciones orbitarias de la siguiente manera:

1. Celulitis Preseptal

2. Celulitis Orbitaria

3. Absceso Subperióstico

4. Absceso Orbitario

5. Trombosis del Seno Cavernoso

Las infecciones pueden entrar a la órbita pasando a través del septum orbitario o a través

de los vasos perforantes que lo penetran, entre los senos paranasales y la órbita. La otra

vía corresponde a la ruta venosa, ya sea a través de la vena angular u oftálmica inferior, o

a través de las venas emisarias que pasan entre la vena oftálmica inferior y el plexo

pterigoideo a través de la fisura orbitaria inferior. La falta de estructuras valvulares de las

venas de la cabeza y el cuello permite el ascenso de los procesos infecciosos.

La infección orbitaria puede progresar de tal manera que comprometa estructuras vitales

que pasan a través de la fisura orbitaria superior, las cuales proceden en orden desde

superolateral a inferomedial:

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Nervio lacrimal, nervio frontal, nervio troclear, división superior del nervio

oculomotor.

Vena oftálmica superior

Nervio nasociliar, división inferior del nervio oculomotor y nervio abducens

Vena oftálmica inferior.

Por ende, si la infección resulta en un síndrome de fisura orbitaria superior, entonces se

observarán: anhidrosis, anestesia de párpado superior y región frontal ipsilateral, pupila

fija y dilatada, oftalmoplejia, congestión venosa de las venas orbitarias y periorbitarias. El

síndrome del ápex orbitario incluye todos los signos del síndrome de fisura orbitaria

superior incluyendo neuropatía óptica lo que provoca disminución o ausencia de la

agudeza visual.

Los abordajes quirúrgicos para la órbita varían de acuerdo al modo de entrada de las

infecciones a dicho sitio. Las infecciones preseptales inferiores pueden ser drenadas

desde el espacio infraorbitario, accediendo al párpado desde cualquiera de las zonas,

medial o lateral del músculo elevador del labio superior.

Las infecciones intraorbitarias pueden ser drenadas a través de cantotomías laterales o

incisiones palpebrales para drenaje directo de la órbita. Los abscesos orbitarios

subperiósticos son drenados usualmente a través de los senos paranasales involucrados.

Espacio Infratemporal

El espacio infratemporal es realmente una extensión anterior, inferior y medial del espacio

temporal profundo. No existe ningún límite que separe el espacio infratemporal del

espacio temporal profundo, porque el infratemporal está localizado en el sector posterior

del maxilar. Su compromiso es usualmente ocasionado por infecciones sinusales o

dentales; el espacio temporal profundo se compromete como una extensión de las

infecciones de los espacios masticatorios vecinos.

El límite anterior del espacio infratemporal es la superficie posterior de la tuberosidad del

maxilar medialmente, lateralmente, la superficie superficial del músculo buccinador en su

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inserción superior en el maxilar superior. Es en esta zona donde el espacio infratemporal

se comunica con los espacios bucal e infraorbitario. El límite lateral corresponde a la

superficie profunda del músculo temporal, su tendón, y el proceso coronoides de la

mandíbula.

El límite posterior lo conforman la articulación temporomandibular y el lóbulo profundo

de la glándula parótida. El límite medial lo forma la apófisis pterigoides y el músculo

pterigoideo lateral, este último también forma el límite inferior del espacio. El techo del

espacio lo forma la superficie infratemporal del ala mayor el esfenoides y hueso temporal.

Contenido del espacio infratemporal:

División media de la arteria maxilar interna

División mandibular del nervio trigémino

Cuerda del tímpano

Porción posterior del panículo adiposo bucal

Plexo venoso pterigoideo.

La infección del plexo venoso puede desencadenar infección orbitaria a través de la

diseminación por la fisura orbitaria inferior, o producir trombosis del seno cavernoso por

la vía de las venas emisarias del plexo venoso al seno petroso dural a través del foramen

oval, agujero rasgado anterior y el foramen de Vesalius en el ala mayor del esfenoides y

hueso temporal. Entonces, el seno petroso inferior puede permitir la extensión de la

infección al seno cavernoso.

El espacio infratemporal forma parte del espacio masticatorio, y las infecciones que

surgen del espacio pterigomandibular pasan a través de él para entrar al resto de los

espacio temporal profundo. Las infecciones odontogénicas del sector posterior y del seno

maxilar pueden acceder al espacio infratemporal a partir de los espacios bucal o

infraorbitarios o a través de las paredes óseas del seno maxilar.

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Las infecciones del espacio infratemporal pueden diseminarse a la fosa pterigopalatina a

través de la fisura pterigomaxilar hacia la órbita a través de la fisura orbitaria inferior, o

hacia el cráneo a través de las venas emisarias por el seno petroso inferior.

El espacio infratemporal puede ser drenado desde incisiones extraorales o intraorales.

Cuando la evidencia clínica e imagenológica muestra que solo existe compromiso de la

porción infratemporal del espacio masticatorio, es posible realizar el drenaje mediante

una incisión vestibular del sector posterior maxilar a través del músculo buccinador

incluyendo el sector de la tuberosidad maxilar. La disección roma es importante para

evitar hemorragia de la arteria maxilar interna y de sus ramas.

Cuando el espacio pterigomandibular está afectado, ambos espacios pueden ser drenados

a través de una incisión submandibular con disección medial a la mandíbula a través de la

cincha pterigomaseterina. También puede ser abordado a través del espacio temporal

profundo y drenado a partir de un dren que atraviese la porción profunda del músculo

temporal que entre por cavidad oral por una incisión vestibular ya descrita.

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7. Planteamiento del Problema

La celulitis facial odontogénica es un problema común en el campo de la Cirugía

Maxilofacial. A pesar del conocimiento de los principios quirúrgicos de manejo; la

aparición de cepas resistentes a los antimicrobianos, sobre todo en pacientes con

compromiso sistémico puede prolongar el tiempo de resolución del cuadro y modificar el

manejo hospitalario.

Existen estudios que comparan las características clínicas de las infecciones maxilofaciales

entre pacientes con compromiso sistémico como en el caso de la diabetes; en términos de

severidad, tasa de complicaciones y biota. Los resultados demuestran que los pacientes

diabéticos presentan cuadros infecciosos más severos, con una microbiota distinta a los

pacientes no diabéticos. La celulitis cervical que involucra los espacios parafaríngeos,

retrofaríngeos y víscerovasculares es una complicación de naturaleza fulminante

reportada en pacientes con Diabetes Mellitus que requiere manejo inmediato; terapia

antimicrobiana de amplio espectro e intervención quirúrgica.

Un ejemplo claro de las diferencias en la microbiota en pacientes con compromiso

sistémico corresponde a la diabetes mellitus. Varios estudios han demostrado que en

pacientes diabéticos los microrganismos aislados con mayor frecuencia de las secreciones

de infecciones odontogénicas corresponden a las especies de Klebsiella; a diferencia de los

encontrados en pacientes no diabéticos en donde las especies de Streptococcus son las

más frecuentes. La recomendación general frente a estos hallazgos es evitar utilizar

antimicrobianos como la clindamicina para el manejo empírico en pacientes diabéticos

con infecciones odontogénicas, sin embargo no existe un protocolo establecido en nuestra

práctica institucional.

Klebsiella pneumoniae es una bacteria gram negativa en forma de bastón, productora de

ureasa, localizada comúnmente en el tracto gastrointestinal y aislada en manos del

personal hospitalario. La razón de su patogenicidad es la gruesa cápsula que rodea a ésta

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bacteria. Un hecho importante que contribuye a su virulencia, es la capacidad de K.

pneumoniae de producir enzimas KPC (del inglés Klebsiella pneumoniae carbapenemases),

codificadas en plásmidos; el espectro de hidrólisis de éstas enzimas incluyen a cefotaxime

y los carbapenémicos; complicando el manejo antimicrobiano de las infecciones

odontogénicas.

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8. Justificación

Actualmente no existe un protocolo de manejo antimicrobiano para las infecciones

odontogénicas que sea individualizado según la condición general y características de cada

paciente.

La falla en la individualización trae como consecuencia fracaso terapéutico, exacerbación

del proceso infeccioso, aumento en el periodo de estadía intrahospitalaria, incremento de

costos y riesgo de muerte; complicando el manejo de las infecciones de cabeza y cuello

de origen dental. Es relevante entonces conocer las cepas más comunes y sus perfiles de

resistencia permitiendo conocer la tendencia actual.

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38

9. Objetivos

a. General

Describir los microorganismos más comunes y su perfil de susceptibilidad antibiótica en

pacientes con infecciones de origen dental atendidos en el servicio de Cirugía Oral y

Maxilofacial del Hospital Militar Central en un período de 24 meses.

b. Específicos.

1. Identificar los espacios anatómicos que se ven involucrados en las infecciones de

cabeza y cuello de origen dental.

2. Identificar los signos y síntomas más comunes de los pacientes atendidos en el servicio

de Cirugía Oral y Maxilofacial del Hospital Militar con infecciones de cabeza y cuello de

origen dental.

3. Establecer el período de resolución de las infecciones odontogénicas de cabeza y cuello

4. Identificar y establecer la frecuencia de los microorganismos asociados a infecciones

odontogénicas en pacientes atendidos en el servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial del

Hospital Militar Central en un período de 24 meses.

5. Establecer el perfil de susceptibilidad antibiótica a los microorganismos asociados a

infecciones odontogénicas en pacientes atendidos en el servicio de Cirugía Oral y

Maxilofacial del Hospital Militar Central en un período de 24 meses.

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39

10. Metodología

a. Tipo y diseño general del estudio

Es un estudio retrospectivo descriptivo.

Mediante un estudio retrospectivo descriptivo, se realizó revisión de las historias clínicas

en busca de información demográfica (edad, sexo), signos y síntomas más comunes de los

pacientes que fueron remitidos al servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial con infecciones

faciales de origen dental, identificación de los espacios anatómicos involucrados,

microorganismos causales con perfiles de susceptibilidad, tiempo de resolución (evidencia

clínica en casos ambulatorios y culminación del período de hospitalización en pacientes

ingresados).

Todos los datos fueron tabulados para análisis, mediante medidas descriptivas, de

variabilidad, tablas, gráficos y algunos indicadores epidemiológicos.

b. Lugar donde se realiza la investigación

Servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial y Laboratorio Clínico sección Microbiología del

Hospital Militar Central.

c. Población blanco

Pacientes que ingresan al Hospital Militar Central.

d. Población accesible

Pacientes que son remitidos al servicio de cirugía oral y maxilofacial con infecciones

cérvico-faciales.

e. Población blanco

Pacientes que son remitidos al servicio de cirugía oral y maxilofacial con infecciones

odontogénicas.

f. Selección y Tamaño de Muestra

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40

Se realizó muestreo por conveniencia. Los pacientes ingresados o remitidos al servicio de

Cirugía Oral y Maxilofacial con infecciones de origen dental.

g. Criterios de inclusión y exclusión

Criterios de inclusión:

1. Pacientes con infección de origen dental.

Criterios de exclusión:

1. Pacientes con infecciones cérvico-faciales de origen distinto al odontogénico.

2. Pacientes con datos clínicos ausentes o insuficientes que no permitan el análisis

adecuado de las variables en el estudio.

h. Definición de variables

Variable Definición conceptual

Definición operativa

Operatividad Tipo de variable

Número de identificación

Número que identifica a un individuo en una nación

Número de identificación personal en la historia clínica

Número de identificación

Ordinal

Edad Tiempo cronológico medido en años de una persona

Edad en años cumplidos al momento del procedimiento

Edad en años Discreta

Género Estatura medida en metros de una persona

Estatura en metros al momento del procedimiento

Estatura en metros

Cualitativa nominal

Ciudad de procedencia

Ciudad donde reside un individuo

Ciudad en donde reside el individuo al momento en el que fue

Ciudad en donde vive el paciente

Cualitativa nominal

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41

ingresado según datos de la historia clínica

Días de Hospitalización

Número de días de estancia intrahospitalaria de una persona

Tiempo medido en días de estancia intrahospitalaria posterior al procedimiento

Días de estancia intrahospitalaria

Discreta

Número de espacios anatómicos comprometidos

Cantidad de espacios anatómicos involucrados en la infección

Cantidad de espacios anatómicos involucrados en la infección según lo reportado en la historia clínica

Número de espacios anatómicos comprometidos

Discreta

Espacio anatómico Zona virtual o real limitada usualmente por inserciones musculares, fascias y ligamentos

Espacios anatómicos comprometidos por infecciones odontogénicas según historia clínica de ingreso

Espacios anatómicos comprometidos por infecciones odontogénicas

Cualitativa nominal

Síntomas Manifestación física subjetiva de una condición o enfermedad en una persona

Manifestación física subjetiva del paciente la fecha del ingreso

Síntomas al momento del ingreso

Cualitativo nominal

Microorganismo Ser vivo unicelular de organización microscópica

Microorganismo (s) aislado en la infección según historia clínica

Microorganismo(s) aislado de manera más frecuente

Cualitativo nominal

Comorbilidad Condición o enfermedad asociada a otro trastorno primario

Enfermedad (es) que presenta el paciente según revisión de historia clínica al

Comorbilidades del paciente

Cualitativo nominal

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42

momento del ingreso

Tiempo de evolución Evolución cronológica del cuadro clínico medido en horas

Tiempo de evolución en horas desde el inicio del cuadro clínico hasta la consulta según lo referido en la historia clínica

Evolución de cuadro clínico en horas

Discreta

Tinción de Gram Método de diferenciación morfológico bacteriano

Resultado de tinción de Gram de muestra tomada, registrada en historia clínica

Prueba Gram establecida como negativa o positiva

Cualitativa nominal

Microorganismo Aerobio

Ser vivo unicelular que utiliza el oxígeno como su principal fuente de energía

Microorganismos aerobios aislados a partir de la toma de muestra de infecciones odontogénicas en las historias clínicas de pacientes ingresados

Microorganismo o cepa(s) de aerobio(s) aislada

Cualitativa nominal

Anaerobios facultativos

Ser vivo unicelular que tolera condiciones hipóxicas, su fuente metabólica principal sigue siendo el oxigeno

Microorganismos anaerobios facultativos aislados a partir de la toma de muestra de infecciones odontogénicas

Microorganismo o cepa(s) de anaerobio(s) facultativos aislada

Cualitativa nominal

Anaerobios estrictos Ser vivo unicelular que requiere condiciones

Microorganismos anaerobios estrictos aislados a partir de la

Microorganismo o cepa(s) de anaerobio(s) estrictos aislada

Cualitativa nominal

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43

microambientales libres de oxígeno para su viabilidad

toma de muestra de infecciones odontogénicas en las historias clínicas de

Toma de muestra por aspiración

Método de obtención de muestra microbiológica que utiliza jeringa y aguja en un medio libre de oxígeno

Método utilizado en la toma de muestras microbiológicas de pacientes con infecciones odontogénicas

Número de casos en que la muestra fue tomada mediante aspiración

Discreta

Toma de muestra por escobillón

Método de obtención de muestra microbiológica que utiliza hisopo contenido en un medio de transporte de carbón vegetal

Método utilizado en la toma de muestras microbiológicas de pacientes con infecciones odontogénicas

Número de casos en que la muestra fue tomada mediante escobillón

Discreta

Toma de muestra por curetaje

Método de obtención de muestra microbiológica que utiliza una cureta y transporte en tioglicolato

Método utilizado en la toma de muestras microbiológicas de pacientes con infecciones odontogénicas

Número de casos en que la muestra fue tomada curetaje

Discreta

Susceptibilidad antimicrobiana

Método de diagnóstico microbiológico que mide el grado de susceptibilidad de las bacterias a un antimicrobiano

Resultado de pruebas de susceptibilidad de microorganismos aislados en pacientes con infecciones odontogénicas

Patrón de resistencia antimicrobiana

Cualitativa nominal

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i. Instrumento de Recolección

Microbiología de las Infecciones Odontogénicas que son remitidas al Servicio de Cirugía oral y

Maxilofacial del Hospital Militar Central, desde mayo 2012 hasta mayo 2013.

Número de Historia Clínica: ________________

Edad: _____________

Género (marcar con X): Masculino: __ Femenino: __

Ciudad de procedencia:

Síntomas: _____________________ _____________________

_____________________ _____________________

Tiempo de Evolución de Cuadro Clínico (días):

Número de espacios anatómicos:

Espacios anatómicos comprometidos:_____________, _____________, ________________

Método(s) de toma de muestra: ___________, ___________

Microorganismo(s) aislado(s):

Tiempo de resolución de cuadro clínico

Tiempo cronológico medido en días en que resuelve el cuadro clínico

Tiempo medido en días que fueron necesarios para la resolución de la infección según historia clínica

Días de resolución Discreta

AEROBIOS ANAEROBIOS FACULTATIVOS ANAEROBIOS ESTRICTOS

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Perfil de Susceptibilidad:

Días de Hospitalización (días):

Tiempo de resolución (días):

11. Plan de análisis

a. Procesamiento de datos: Los datos fueron tabulados para análisis, mediante

medidas descriptivas, de variabilidad, tablas, gráficos y algunos indicadores

epidemiológicos con Microsoft Excel ®. El Análisis descriptivo de las variables

sociodemográficas y medidas de tendencia central se realizó con SPSS® versión 15 para

Windows.

b. Medidas de promedios y proporciones: Se calculó frecuencia para variables

cualitativas nominales, promedio para variables discretas.

MICROORGANISMO ANTIBIÓTICO PATRON DE RESISTENCIA

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46

12. Aspectos éticos

Clasificación de riesgo

Declaramos que en este estudio se respeta la dignidad y se protegen los derechos de los

participantes. Se trata de una investigación según decreto 8430 de 1993 sin riesgo, en

donde se revisarán las historias clínicas en busca de información demográfica, signos y

síntomas más comunes y resultados de prueba de susceptibilidad antimicrobiana en

pacientes con infecciones odontogénicas.

Al tratarse de un estudio descriptivo no experimental, el Código de Núremberg, Reporte

de Belmont y Declaración del Helsinki excluyen al paciente de la necesidad del

consentimiento informado y de riesgos asociados con experimentación en humanos. Los

sujetos que serán seleccionados en el estudio no serán sometidos a ningún tipo de

procedimiento. La obtención de información de manera retrospectiva a partir de las

historias clínicas excluye la posibilidad de contacto directo con los pacientes.

Declaración de Impacto Ambiental

Declaramos que el estudio tiene mínimo impacto ambiental. Se utilizarán elementos

reciclables como hojas blancas tamaño carta para la impresión de documentos necesarios

para el registro de información.

Declaración de Pertinencia Social

Declaramos que el estudio tiene pertinencia social, basado en el hecho de que pretende

determinar cuáles son las cepas de microorganismos más frecuentes involucradas en las

infecciones odontogénicas, de manera que, dicho conocimiento permitirá abordar de

manera más precisa las infecciones odontogénicas en el futuro repercutiendo en mejores

prácticas clínicas en beneficio de los pacientes.

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Declaración sobre aporte a la Educación

Declaramos que el estudio tendrá aporte significativo a la educación basado en el hecho

de que llena un vacío en el conocimiento relacionado al comportamiento microbiológico

de las infecciones odontogénicas en la población de estudio

Declaración de Pertinencia Institucional

Declaramos que el estudio es pertinente para la institución, ya que con el nuevo

conocimiento se podría abordar de manera más eficaz los casos de infecciones

odontogénicas, disminuyendo periodos de hospitalización.

Consentimiento Informado

No requiere para el estudio, la toma de muestra microbiológica forma parte del protocolo

establecido por el servicio de Salud Oral y Cirugía Maxilofacial en el manejo de infecciones

odontogénicas.

El estudio se llevará a cabo por expertos en las áreas implicadas en el estudio como son

cirujanos maxilofaciales entrenados, docente de enfermedades infecciosas y bacterióloga

adscrita al Hospital Militar Central.

Se mantendrá la confidencialidad de los pacientes involucrados en el estudio. No se

revelarán las identidades, se tabularán los datos identificando cada caso mediante el

número de historia clínica.

La toma de muestras de procesos infecciosos odontogénicos forma parte del protocolo

diagnóstico en nuestro servicio. No es un procedimiento que pone en riesgo al paciente

ya que no depende de maniobras que requieran un entrenamiento exhaustivo ni

desempeño sobre agregado al procedimiento quirúrgico al que fueron sometidos los

pacientes. Razón por la cual se considera que según el decreto 8430 de 1993 se trata de

una recolección de información sin riesgos.

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13. Resultados

En este estudio 35 pacientes cumplieron con el criterio de inclusión; predominaron

pacientes del género masculino (tabla1).

Tabla 1. Variables sociodemográficas

Los pacientes fueron manejados de manera ambulatoria en la mayoría de los casos, y el

estadio de absceso fue el más común (tabla 2 y 3). La toma de muestra mediante

escobillón se realizó en 32 pacientes (91%); escobillón y curetaje en 2 pacientes (5%) y 1

muestra fue obtenida mediante aspiración (2%).

Tabla 2. Estadio clínico de la infección

Hallazgos Resultado

Promedio de edad (rango) años 31.9 ±30.4( 2 – 95)

Mujeres (%) 13 (37)

Hombres (%) 22 (63)

Hallazgo Frecuencia (%)

Etapa Absceso 62

Etapa Celulitis 37

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49

Tabla 3. Frecuencia de manejo intrahospitalario y ambulatorio

†DE: Desviación estándar.

El espacio anatómico comprometido con mayor frecuencia fue el espacio vestibular,

siendo los casos con compromiso de más de un espacio anatómico lo más frecuente en

este estudio (gráficos 1 y 2).

Gráfico 1. Frecuencia de espacios anatómicos comprometidos.

†SM: submandibular, SMT: submentoniano, SL: sublingual, V: vestibular, B: bucal, IO: infraorbitario, C: canino, PM: pterigomandibular.

0

20

40

60

80

100

Frec

uen

cia

(%)

†Espacio anatómico

Hallazgo Resultado

Manejo intrahospitalario (%) 42

Manejo ambulatorio (%) 57

Promedio tiempo hospitalización (días±DE†) 10.5±4

Promedio tiempo de resolución (días±DE†)) 11.5±3

SM SMT SL V B IO C PM

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50

Gráfico 2. Número de espacios anatómicos comprometidos.

Se aislaron un total de 68 cepas de microorganismos. La mayoría de los casos

constituyeron procesos infecciosos mixtos con predominio de cepas de anaerobios

facultativos sobre los anaerobios estrictos y en menor frecuencia microorganismos

aerobios como algunos cocos Gram positivos (8%). En 4 pacientes se obtuvieron

resultados negativos para microorganismos (tablas 4, 5, 6 y 7).

Tabla 4. Tipos de cepas aisladas.

Tipo de cepa Frecuencia (%)

Anaerobios facultativos 64

Anaerobios estrictos 28

Aerobios 8

Tabla 5. Tipos de microbiota aislada

MICROBIOTA FRECUENCIA (%) Flora Mixta Anaerobios Estrictos (AE) 31

Flora Mixta Anaerobios Facultativos (AF) 17

Flora Mixta AF y AE 14

Negativo para microorganismos 11

Flora Única Anaerobios Facultativos 8

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

Frec

uen

cia

(%)

Número de espacios anatómicos comprometidos

Un espacio Dos espacios Más de dos espacios

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51

Flora Única Anaerobios Estrictos 8

Flora Única Aerobios 8

Tabla 6. Frecuencia de microorganismos anaerobios estrictos

MICROORGANISMOS ANAEROBIOS FRECUENCIA (%) Peptoniphilus asaccharolyticus 10

Finegoldia magna 5

Fusobacterium nucleatum 5

Peptostreptococcus anaerobius 5

Peptostreptococcus asaccharolyticus 5

Prevotella disiens 5

Prevotella melaninogenica 5

Peptococcus spp 26

Fusobacterium spp 15

Prevotella spp 10

Bacteroides spp 5

En el grupo de los pacientes que requirieron manejo intrahospitalario (15 pacientes), se

aislaron 26 cepas, siendo las más frecuentes las de anaerobios facultativos (Streptococcus

mitis) y bacilos gram negativos. En segundo lugar los anaerobios estrictos (Peptoniphilus

asacharolyticus ) (tabla 8).

Tabla 7. Frecuencia de microorganismos anaerobios facultativos

CEPAS AISLADAS FRECUENCIA (%) Streptococcus y Diplococcus Gram positivos 44 Streptococcus mitis 10 Streptococcus anginosus 5 Neisseria sicca 4 Granulicatella adiacens 3

Streptococcus gordonii 3 Streptococcus oralis 3 Streptococcus viridans 3 Streptococcus sanguinis 1 Otros diplococos gram positivos 1 Otros microorganismos Enterococcus faecalis 3

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Escherichia coli 3 Klebsiella pneumoniae 3 Actinomyces meyeri 3 Haemophilus parainfluenzae 1 Citrobacter freundii 1 Klebsiella ozaenae 1 Bacilos gram negativos pleomórficos 5

Tabla 8. Frecuencia de microorganismos en los pacientes que requirieron manejo intrahospitalario.

CEPAS AISLADAS FRECUENCIA (%) Streptococcus mitis 5

Peptoniphilus asacharolyticus 4

Granulicatella adiacens 3

Streptococcus anginosus 3

Klebsiella pneumoniae 3

Staphylococcus saprophyticus 1

Neisseria sicca 1

Prevotella disiens 1

Klebsiella ozaenae 1

Citrobacter freundii 1

Fusobacterium spp 4

Bacilos gram positivos 1

Bacilos gram negativos 5

En relación al perfil de susceptibilidad a antimicrobianos de uso común, se registró un

patrón de resistencia a antimicrobianos del grupo de las aminopenicilinas y

betalactámicos de amplio espectro, así como casos aislados resistentes a cefalosporinas

de tercera generación; ningún microorganismo resultó con patrón de resistencia

intermedia para los antimicrobianos de uso común (tabla 9.). La mitad de los pacientes

del estudio negaron comorbilidad (tabla 10).

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Tabla 9. Perfil de susceptibilidad a antimicrobianos de uso común.

Tabla 10. Frecuencia de comorbilidades.

Comorbilidad Frecuencia (%)

Hipertensión arterial 17

Diabetes mellitus 2 8

Comunicación interauricular 5

Síndrome de plaqueta pegajosa 2

Síndrome bronco obstructivo 2

Mieloma múltiple 2

Demencia senil 2

Paraganglioma maligno 2

Antimicrobiano Frecuencia (%) Frecuencia (%)

Resistente Sensible

Ampicilina 75 25

Ampicilina-Sulbactam 28 71

Aztreonam 0 100

Cefalotina 33 66

Cefepime 0 100

Cefotaxime 0 100

Cefoxitina 16 83

Ceftazidima 0 100

Ceftriaxona 0 100

Ciprofloxacina 0 100

Clindamicina 0 100

Eritromicina 75 25

Meropenem 0 100

Tetraciclina 50 50

Trimetoprim/Sulfametoxazole 20 80

Voriconazol 0 100

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14. Discusión

Las infecciones odontogénicas que comprometen múltiples espacios anatómicos son más

comunes que los procesos infecciosos de espacios únicos. El hallazgo en este estudio es

consistente con lo reportado previamente en la literatura.(1-17,28-37)

Las cepas de anaerobios facultativos fueron los microorganismos aislados con mayor

frecuencia, específicamente las de Streptococcus, como es el caso de los Streptococcus del

grupo mitis. Las cepas de anaerobios estrictos aislados con mayor frecuencia fueron las

de Peptococcus spp, Fusobacterium spp y Prevotella spp. Otros autores reportan mayor

proporción de anaerobios estrictos.(36) Si bien en esta serie del Hospital Militar Central

se aisló una buena cantidad de anaerobios estrictos, se puede suponer de haberse

utilizado la aspiración como único método de toma de muestra la proporción podría haber

sido mayor.

Flynn en el año 2011 (2) realiza una revisión sistemática de la literatura en relación al

estado del arte en el manejo de las infecciones odontogénicas. En dicha revisión

encuentra tres hallazgos importantes:

1. En pacientes con infecciones odontogénicas que reciben adecuado tratamiento

quirúrgico consistente en incisión y drenaje y/o exodoncia o terapia endodóntica, los

ensayos clínicos aleatorizados que comparan un antibiótico con otro no ha

demostrado diferencia significativa en la cantidad de pacientes curados.

2. Los estudios de laboratorio que describen los perfiles de susceptibilidad de los

aislamientos de bacterias de infecciones odontogénicas indican que los antibióticos

más nuevos de amplio espectro son más efectivos in vitro que los antiguos de espectro

más restringido.

3. En relación a la duración de la terapia antimicrobiana; pacientes con infecciones

odontogénicas que reciben adecuado manejo quirúrgico los ensayos clínicos

aleatorizados comparando 3. 4 7 días de terapia antibiótica no existe diferencia entre

los esquemas cortos y más prolongados de tratamiento.

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55

Puede ser razonable entonces concluir que cuando se implementa un adecuado

tratamiento quirúrgico para la eliminación o manejo del foco infeccioso, la selección del

antibiótico puede basarse solo en costo y efectividad. El régimen de 3 – 4 días de terapia

antibiótica debería ser adecuado entonces en el manejo de pacientes sistémicamente

sanos.

Los antibióticos betalactámicos son costoefectivos. El costo de penicilina G y amoxicilina

son comparativamente bajos. Sin embargo, la amoxicilina ha demostrado proveer

resolución del cuadro clínico de manera más eficaz y a menor costo que la penicilina G.

Flynn y colegas en una serie de casos prospectivos de infecciones odontogénicas que

requirieron hospitalización, encontró 21% de fracaso terapéutico con penicilina G; las

cepas resistentes fueron aisladas en 54% de los casos.(38,39) Estos hallazgos indicarían la

utilización de una combinación de antibiótico betalactámico con un inhibidor de

betalactamasas como la primera línea tratamiento contra las infecciones odontogénicas

que requieren manejo intrahospitalario. La aparente asociación entre virulencia e

infecciones odontogénicas requiere más investigación.

En esta serie del Hospital Militar Central, es interesante recalcar que en los casos de

pacientes hospitalizados, las cepas aisladas con mayor frecuencia constituyeron las de

microorganismos anaerobios facultativos como lo son los estreptococos del grupo mitis.

Los resultados revelan una elevada tasa de resistencia para antimicrobianos de uso común

incluyendo betalactámicos de amplio espectro y cefalosporinas de primera y segunda

generación (75% para ampicilina, 28% ampicilina-sulbactam, y entre 20% y 30% para

cefalotina y cefoxitina).

La literatura es clara estableciendo la asociación entre el aislamiento de estos

microorganismos y casos severos de infecciones odontogénicas. Nuestros hallazgos son

consistentes con lo reportado en la literatura.(37)

La presencia de comorbilidades juega un papel fundamental, sin embargo nuestro estudio

no es capaz de revelar una asociación directa.

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56

Existen estudios que comparan las características clínicas de las infecciones maxilofaciales

entre pacientes diabéticos y no diabéticos en términos de severidad, tasa de

complicaciones y biota. Los resultados demuestran que los pacientes diabéticos

presentan cuadros infecciosos más severos, con una microbiota distinta a los pacientes no

diabéticos. La celulitis cervical que involucra los espacios parafaríngeos, retrofaríngeos y

víscerovasculares es una complicación de naturaleza fulminante reportada en pacientes

con diabetes mellitus que requiere manejo inmediato; terapia antimicrobiana de amplio

espectro e intervención quirúrgica.(11,21,32)

Klebsiella pneumoniae ha sido reportado como el microrganismo más común en los casos

de celulitis facial odontogénica en pacientes diabéticos. Es un bacilo gram negativo

entérico oportunista capaz de producir betalactamasas de distintas clases siendo las del

tipo AmpC frecuentes en cepas de Citrobacter freundii, Enterobacter spp, Morganella

morganii y Serratia marcescens complicando el manejo farmacológico de las infecciones

asociadas a estos microrganismos.(11,37)

En la serie presentada en este trabajo, se aislaron cepas de Klebsiella pneumoniae en dos

pacientes con diabetes mellitus. Si bien, no eran cepas productoras de betalactamasas, el

manejo antimicrobiano empírico para infecciones odontogénicas establecido por el

servicio de Cirugía Maxilofacial no resultó efectivo.

En esta misma serie se presentó un caso de una paciente diabética con infección

odontogénica post exodoncia, en donde el microorganismo aislado correspondió a una

cepa de Citrobacter freundii productora de betalactamasas de amplio espectro (AmpC).

El caso fue manejado en conjunto con el servicio de infectología quienes sugirieron

manejo con meropenem; la paciente fue dada de alta después del día 21 de

hospitalización. Este es el primer caso reportado en la literatura de infección

odontogénica con aislamiento de Cirobacter freundii productora de AmpC reportado en la

literatura.(37)

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57

14. Conclusión

Este trabajo evidencia en una cohorte de 35 pacientes, la frecuencia y susceptibilidad a los

antibióticos de los microorganismos asociados a infecciones odontogénicas donde

predominaron los Streptococcus del grupo mitis y los anaerobios.

Se destaca que el casi 30% de los pacientes tenían más de dos espacios anatómicos

comprometidos, sin comorbilidades en el 50% de los casos, finalmente el manejo

hospitalario fue necesario de acuerdo a los lineamientos en casi el 50% de los pacientes.

Las cepas aisladas en este estudio corresponden a aquellas reportadas en la literatura, sin

embargo, en esta serie se reporta un elevada tasa de resistencia a antimicrobianos de uso

común en infecciones odontogénicas (betalactámicos de amplio espectro y cefalosporinas

de primera y segunda generación).

Lo anterior, enfatiza la importancia de abordar de manera integral a los pacientes con

infecciones odontogénicas, reconocer la asociación microbiológica, los microorganismos

más probables, y una adecuada interpretación de la prueba de susceptibilidad a los

antibióticos tomando en consideración las comorbilidades.

La interpretación correcta de las pruebas de laboratorio debe permitir establecer una

terapéutica adecuada, lo cual trae como consecuencia el evitar tiempos prolongados de

hospitalización en los casos más severos.

Recomendaciones: Si bien no fue posible establecer correlación estadística entre diabetes

y el tipo de cepa aislada debido al diseño del estudio, se recomienda continuar con

estudios prospectivos a largo plazo en donde se involucre un mayor número de pacientes

y se incluyan a pacientes diabéticos como una variable para dicha evaluación. Esto último

con el propósito de definir si ese grupo requiere o no de un manejo antimicrobiano

empírico diferente al establecido para la población general.

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58

15. Referencias

1. Rega A, Aziz S, Ziccardi V. “Microbiology and Antibiotic Sensitivities of Head and

Neck Space Infections of Odontogenic Origin”. J Oral Maxillofac Surg. 2006; 64: 1377-1380.

2. Flynn T. “What are the Antibiotics of Choice for Odontogenic Infections, and How

Long Should the Treatment Course last?” Oral Maxillofac Surg Clin N Am. 2011 November;

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3. Storoe W, Haug R, Lillich T. “The Changing face of Odontogenic Infections”. J Oral

Maxillofac Surg. 2001; 59: 739-748.

4. Rao DD, Desai A, Kulkarni RD, Gopalkrishnan K, Rao B. “Comparison of maxillofacial

space infection in diabetic and non-diabetic patients”. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral

Radiol Endod. 2010 April; 110:e7-e12.

5. Huang TT, Tseng FY, Yeh TH, Hsu CJ, Chen YS. “Factors affecting the bacteriology of

deep neck infection: a Retrospective study of 128 patients”. Acta Otolaryngol. 2006; 126:

396–401.

6. Huang TT, Tseng FY, Liu TC, Hsu CT, Chen YS. “Deep neck infection in diabetic

patients: Comparison of clinical picture and outcomes with nondiabetic patients”.

Otolaryngol Head Neck Surg. 2005; 132:943-947.

7. Muller LMA, Gorter KJ, Hak E, Goudzwaard WL, Schellevis FG, Hoepelman A et al.

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16. Anexos

ANEXO 1: GENERALIDADES PARA LA ADECUADA TOMA DE MUESTRAS EN INFECCIONES

ODONTOGÉNICAS

El laboratorio de Microbiología cumple una función de apoyo diagnóstico, de ahí la

importancia de brindar la información necesaria para la obtención de una muestra

representativa y adecuada para asegurar la calidad de los resultados.

En las infecciones odontogénicas intervienen un buen número de bacterias tanto aerobias

como anaerobias, por lo tanto un estudio microbiológico de esta localización debe

contemplar siempre la búsqueda de estos microorganismos.

A continuación recomendaciones generales

1-Seleccionar la zona afectada para la toma de la muestra, con el fin de aislar e identificar

el agente causal de la infección.

2-Utilizar la técnica y los materiales adecuados para la obtención de la muestra, evitando

arrastrar flora normal de la boca que contamine la muestra obtenida.

3-Obtener una cantidad adecuada para los análisis necesarios, rotular la muestra con

todos los datos del paciente. Recuerde que la muestra debe ser obtenida antes de iniciar

un tratamiento con antibióticos.

SOLICITUD DE EXAMEN

La orden médica debe contener la siguiente información completa y legible:

• Nombres y apellidos del paciente

• Número de historia clínica

• Número de Cuenta

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• Edad del paciente

• Localización del paciente ( C. Externa, Numero de Cama)

• Sitio anatómico de la obtención de la Muestra

• Especificar exámenes solicitados (Gram, cultivo y antibiograma gérmenes aerobios

y anaerobios)

• Hora de toma de la muestra

La orden Médica debe ser presentada en el Laboratorio de Microbiología para entregar el

material adecuado.

TOMA DE MUESTRA GERMENES AEROBIOS Y ANAEROBIOS

ABSCESO

Si se presenta un absceso la muestra debe ser obtenida por punción con jeringa para

asegurar una buena recuperación de gérmenes anaerobios.

Realizar la punción, sacar las burbujas de aire de la jeringa, retirar la aguja y volver a tapar

con la caperuza transparente, sellar con esparadrapo o micropore alrededor de la

caperuza, rotular la muestra y enviar inmediatamente al Laboratorio con la orden Médica

que debe incluir estudio para gérmenes aerobios y anaerobios.

No congelar ni refrigerar la muestra, su transporte debe ser inmediato para asegurar la

recuperación de los microorganismos.

BIOPSIA

Enviar orden Medica al Laboratorio de Microbiología con la solicitud de material para

toma de BIOPSIA

El Laboratorio proporciona un medio líquido enriquecido de TIOGLICOLATO, que permite

el crecimiento de gérmenes aerobios y anaerobios.

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Tomar el espécimen y depositarlo inmediatamente dentro del tubo estéril con el medio

de TIOGLICOLATO, tapar, rotular y enviar inmediatamente al Laboratorio.

No congelar ni refrigerar la muestra, su transporte debe ser inmediato para asegurar la

recuperación de los microorganismos.

SECRECIONES

Las muestras obtenidas por hisopado pueden arrastrar contaminación con la flora bucal

habitual, por eso su toma debe ser realizada por el especialista que conoce la localización

exacta de la lesión.

Enviar orden medica al Laboratorio de Microbiología con la solicitud de material para

toma de secreción bucal, dental o maxilofacial.

El Laboratorio de Microbiología suministra un medio de transporte AIMES con carbón

activado que permite la recuperación de gérmenes aerobios y anaerobios.

Tomar la muestra con el hisopo que va dentro del empaque (Escobillón de Nylon),

introducirlo en el medio de transporte, tapar, rotular y enviar inmediatamente al

laboratorio.

CAUSALES DE RECHAZO DE LA MUESTRA

Es importante que todo el personal involucrado en la elaboración de la orden médica,

obtención y transporte de la muestra conozca las causales de rechazo para evitar la

pérdida del espécimen y en consecuencia el conocimiento del posible agente causal de la

infección.

1-Muestras no rotuladas

Los datos que deben ir en el rotulo son los siguientes:

• Nombres y apellidos del paciente

• Número de Historia Clínica

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• Localización del paciente ( Consulta Externa, número de Cama )

• Sitio anatómico de obtención de la muestra

Si se toma más de una muestra del mismo sitio anatómico deben ir marcadas en el orden

que fueron obtenidas (1 y 2).

2- Errores de identificación

Cuando los datos de la orden medica no coinciden con los datos del rotulo, la muestra no

se procesara y se devolverá la orden medica con una anotación y la solicitud de una nueva

muestra.

3-Recipiente inadecuado, derramado o roto

Cuando la muestra para análisis es recogida en un recipiente inadecuado o que presente

roturas o derrames, puede ser rechazado por el laboratorio de Microbiología.

4-Transporte demorado

El transporte de las muestras representa un de los factores que contribuyen a una buena

recuperación de los microorganismos tanto aerobios como anaerobios, por lo cual se

insiste en que este transporte se realice de manera inmediata al Laboratorio. Un tiempo

prolongado puede ser causal de rechazo de la muestra.

5-No se especifica sitio anatómico

Siempre se debe especificar en la orden médica el sitio anatómico de la toma de la

muestra, en primer lugar para establecer en el laboratorio el protocolo de siembra

adecuado para el tipo de muestra, además hace parte de los datos del paciente que

facilitaran la correlación clínica y la inclusión en estudios epidemiológicos y de

infecciones.

6-La orden no especifica solicitud de examen

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Si en la orden médica no se especifica el tipo de análisis a realizar se ocasionaran demoras

en el procesamiento de la muestra muestras poniendo en riesgo la recuperación de los

gérmenes.

7-Datos ilegibles en orden médica o rotulo

Cuando los datos escritos en la orden médica tanto las letras como los números no son

legibles se presentan confusiones y demoras innecesarias en el procesamiento de las

muestras poniendo en riesgo la recuperación de los gérmenes.

8-Volumen inadecuado

Si la muestra obtenida no es suficiente para realizar los análisis requeridos, se debe tener

contacto directo con el Laboratorio de Microbiología para definir si la muestra puede ser

procesada.

En conclusión se recomienda una comunicación constante con el Laboratorio de

Microbiología para aclarar dudas sobre la toma, conservación y transporte de las

muestras y asegurar la calidad de los resultados.

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ANEXO 2: INSTRUMENTO DE RECOLECCIÓN

Microbiología de las Infecciones Odontogénicas que son remitidas al Servicio de Cirugía oral y

Maxilofacial del Hospital Militar Central, desde mayo 2012 hasta mayo 2013.

Número de Historia Clínica:

Edad:

Género (marcar con X): Masculino: __ Femenino: __

Ciudad de procedencia:

Síntomas: _____________________ _____________________

_____________________ _____________________

Tiempo de Evolución de Cuadro Clínico (días):

Número de espacios anatómicos:

Espacios anatómicos comprometidos:_____________, _____________, ________________

Método(s) de toma de muestra: ___________, ___________

Microorganismo(s) aislado(s):

Perfil de Susceptibilidad:

Días de Hospitalización (días):

Tiempo de resolución (días):

AEROBIOS ANAEROBIOS FACULTATIVOS ANAEROBIOS ESTRICTOS

MICROORGANISMO ANTIBIÓTICO PATRON DE RESISTENCIA

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