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UNIVERSIDAD REGIONAL AUTÓNOMA DE LOS ANDES UNIANDES FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS PROGRAMA DE MAESTRÍA EN FARMACIA CLÍNICA Y HOSPITALARIA PROYECTO DE INVESTIGACIÓN PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL GRADO ACADÉMICO DE MAGÍSTER EN FARMACIA CLÍNICA Y HOSPITALARIA TEMA: EFECTO IN VITRO ANTIMICROBIANO DEL ACEITE ESENCIAL Y EXTRACTO ETANÓLICO DE ZANAHORIA (Daucus carota) FRENTE A STREPTOCOCCUS MUTANS AUTOR: Q.F TUMBACO LINO PAUL LEONEL ASESORES: DR. VITERI RODRIGUEZ JUAN ALBERTO, MSc. ING. OÑA CISNEROS FABIAN DAVID, MSC PHD (C) . AMBATO-ECUADOR 2018

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UNIVERSIDAD REGIONAL AUTÓNOMA DE LOS ANDES

UNIANDES

FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS

PROGRAMA DE MAESTRÍA EN FARMACIA CLÍNICA Y HOSPITALARIA

PROYECTO DE INVESTIGACIÓN PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL GRADO

ACADÉMICO DE MAGÍSTER EN FARMACIA CLÍNICA Y HOSPITALARIA

TEMA:

EFECTO IN VITRO ANTIMICROBIANO DEL ACEITE ESENCIAL Y

EXTRACTO ETANÓLICO DE ZANAHORIA (Daucus carota) FRENTE A

STREPTOCOCCUS MUTANS

AUTOR: Q.F TUMBACO LINO PAUL LEONEL

ASESORES: DR. VITERI RODRIGUEZ JUAN ALBERTO, MSc.

ING. OÑA CISNEROS FABIAN DAVID, MSC PHD(C).

AMBATO-ECUADOR

2018

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APROBACIÓN DE LOS ASESORES DEL TRABAJO DE TITULACIÓN

CERTIFICACIÓN:

Quienes suscribimos, legalmente CERTIFICA QUE: El presente Trabajo de

Titulación realizado por el Q.F Paul Leonel Tumbaco Lino, maestrante del

Programa de Maestría en Farmacia Clínica y Hospitalaria, Facultad de Ciencias

Médicas, con el tema “EFECTO IN VITRO ANTIMICROBIANO DEL ACEITE

ESENCIAL Y EXTRACTO ETANÓLICO DE ZANAHORIA (Daucus carota)

FRENTE A STREPTOCOCCUS MUTANS ”, ha sido prolijamente revisado, y

cumple con todos los requisitos establecidos en la normativa pertinente de la

Universidad Regional Autónoma de los Andes -UNIANDES-, por lo que

apruebe su presentación.

Ambato, Mayo del 2018

___________________________________ _______________________________

Dr. Viteri Rodríguez Juan Alberto. Ing. Oña Cisneros Fabián David.

ASESOR ASESOR

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DECLARACIÓN DE AUTENTICIDAD

Yo, Q.F Paul Leonel Tumbaco Lino, maestrante del Programa de Maestría de

Farmacia Clínica y Hospitalaria, Facultad de Ciencias Médicas, declaro que

todos los resultados obtenidos en el presente trabajo de investigación, previo a

la obtención del Grado Académico de MAGÍSTER EN FARMACIA CLINICA Y

HOSPITALARIA, son absolutamente originales, auténticos y personales; a

excepción de las citas, por lo que son de mi exclusiva responsabilidad.

Ambato, Mayo 2018

______________________________

Q.F. Paul Leonel Tumbaco Lino

CI. 1312677931

Autor

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DERECHOS DEL AUTOR

Yo, Q.F Paul Leonel Tumbaco Lino, declaro que conozco y acepto la

disposición constante en el literal d) del Art. 85 del Estatuto de la Universidad

Regional Autónoma de los Andes, que en su parte pertinente dice: El

patrimonio de la UNIANDES está constituido por:” La propiedad intelectual

sobre las Investigaciones, trabajos científicos o técnicos, proyectos

profesionales y consultoría que se realicen en la Universidad o por cuenta de

ella;

Ambato, Mayo 2018

______________________________

Q.F. Paul Leonel Tumbaco Lino

CI. 1312677931

Autor

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DEDICATORIA

El presente proyecto de investigación se la dedico a mi Mamá (Gladys Lino), a

mi Hermano (Freddy Tumbaco), a mi Esposa (Denisse Moran), A mi hijo (Ian

Tumbaco), quiénes supieron guiarme por el buen camino, darme fuerzas para

seguir adelante y por ayudarme a enfrentar las adversidades sin perder nunca

la esperanza, ni rendirme en el intento.

Paul Tumbaco

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RESUMEN

La Organización Mundial de la Salud (OMS) estima que el 80 por ciento de la

población mundial utiliza actualmente hierbas medicinales para algún aspecto

de la atención primaria. Por la cual se evaluará el efecto in vitro antimicrobiano

de aceite esencial y extracto etanólico de Daucus carota frente a Streptococcus

mutans. La misma se basó en tres etapas: estudio etnofarmacológico,

preparación de extracto y aceite esencial, y análisis microbiológico. La presente

investigación indagó, a través de una encuesta aplicada en la ciudad de

Guayaquil con una población de 2450 personas, dando como resultado un

tamaño de muestra de 96 personas, sobre el uso de plantas medicinales. Entre

ellas, Daucus carota obtuvo un nivel de uso significativo del 50 % y un índice

de valor de uso igual a 0.03%, lo cual cumple con la aceptación cultural para

ser utilizado como tratamiento en los problemas de salud en la población. El

análisis fitoquímico de Daucus carota realizada mediante cromatografía líquida

mostró que la raíz contenía en mayor cantidad flavonoides y fenoles como

metabolitos secundarios. En el estudio microbiológico se utilizó el método de

difusión en disco para evaluar el efecto antimicrobiano en todas las

concentraciones; al 100% se obtuvo el mayor promedio de halo inhibitorio para

el aceite esencial y extracto etanólico, de 11,33mm y 12,33mm

respectivamente. Se realizó ANOVA para la estadística determinándose un

P<0,0001 para el extracto etanólico y aceite esencial de la zanahoria,

comprobándose que si existe un efecto antimicrobiano frente a Streptococcus

mutans.

Palabras clave: Daucus carota, Streptococcus mutans, aceite esencial,

extracto etanólico, halos de inhibición, concentración mínima inhibitoria

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ABSTRACT

The World Health Organization (WHO) estimates that 80 percent of the world's

population currently uses herbal medicines for some aspect of primary care. By

which the in vitro antimicrobial effect of essential oil and ethanol extract of

Daucus carota against Streptococcus mutans will be evaluated. It was based on

three stages: ethnopharmacological study, preparation of extract and essential

oil, and microbiological analysis. The present investigation investigated, through

a survey applied in the city of Guayaquil with a population of 2450 people,

resulting in a sample size of 96 people, on the use of medicinal plants. Among

them, Daucus carota obtained a significant use level of 50% and an index of

use value equal to 0.03%, which meets the cultural acceptance to be used as a

treatment in the health problems in the population. The phytochemical analysis

of Daucus carota by means of liquid chromatography showed that the root

contained in greater quantity flavonoids and phenols as secondary metabolites.

In the microbiological study the disc diffusion method was used to evaluate the

antimicrobial effect in all concentrations; At 100%, the highest average inhibitory

halo was obtained for the essential oil and ethanolic extract, 11.33mm and

12.33mm respectively. ANOVA was performed for the statistics, determining a

P <0.0001 for the ethanolic extract and essential oil of the carrot, proving that

there is an antimicrobial effect against Streptococcus mutans.

Keywords: Daucus carota, Streptococcus mutants, essential oil, ethanol

extract, halos of inhibition, minimum inhibitory concentration

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ÍNDICE GENERAL

APROBACIÓN DE LOS ASESORES DEL TRABAJO DE TITULACIÓN

DECLARACIÓN DE AUTENTICIDAD

DERECHOS DEL AUTOR

DEDICATORIA

RESUMEN

ABSTRACT

ÍNDICE GENERAL

INTRODUCCIÓN ................................................................................................ 1

Antecedentes de la investigación .................................................................... 1

Planteamiento del Problema ............................................................................ 2

Formulación del Problema ............................................................................... 3

Delimitación del Problema ............................................................................... 3

Objeto de Investigación ................................................................................... 4

Campo de Acción ............................................................................................ 4

Identificación de la Línea de Investigación ...................................................... 4

Objetivo General .............................................................................................. 4

Objetivos Específicos....................................................................................... 4

Hipótesis….. .................................................................................................... 5

Justificación Del Tema ........................................................................................ 5

Metodología ..................................................................................................... 6

Resumen de la estructura de la tesis ............................................................... 6

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Marco teórico ................................................................................... 6

Epígrafe I. Estudio de la zanahoria ............................................................... 6

Epígrafe II. Preparación de extractos y aceites de zanahoria....................... 6

Epígrafe III Estudio de cepas de microorganismos ...................................... 6

Epígrafe IV. Métodos de extracción en fitoquímica ............................................. 7

Elementos de novedad .................................................................................... 7

Aporte Teórico ................................................................................................. 7

Significación Práctica ....................................................................................... 8

Novedad Científica........................................................................................... 8

CAPÍTULO I. MARCO TEÓRICO .................................................................... 9

1. Epígrafe I. Estudio de la Zanahoria ................................................. 9

1.1. Generalidades ................................................................................. 9

1.1.1. Taxonomía ...................................................................................... 9

1.1.2. Descripción botánica ....................................................................... 9

1.1.3. Usos ................................................................................................ 9

1.1.4. Funciones Medicinales .................................................................. 10

1.2. Epígrafe II. Preparación de Extractos y Aceites de Zanahoria ...... 10

1.2.1.Selección y recolección de especímenes de Daucus carota.................... 10

1.2.2. Obtención de Aceite Esencial y Extracto Etanólico de Daucus carota.. .. 10

1.3. Epígrafe III. Estudio de cepas de microorganismos ...................... 11

1.3.1. Streptococcus mutans ................................................................... 11

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1.3.2. Morfología ..................................................................................... 11

1.3.3. Reproducción ................................................................................ 11

1.3.4. Crecimiento ................................................................................... 11

1.3.5. Clasificación del Streptococcus Mutans ........................................ 13

1.3.6. Transmisión, Colonización y estabilidad de Streptococcus mutans

en cavidad oral .............................................................................................. 14

1.3.7. Patogenicidad ................................................................................ 16

1.3.8. Mecanismo de Resistencia Antimicrobiana ................................... 16

1.3.9. Resistencia Antimicrobiana del Streptococcus Mutans ................. 17

1.3.10. Potencia o actividad antimicrobiana .............................................. 18

1.3.11. Actividad antimicrobiana de los aceites esenciales ....................... 19

1.3.12. Cepas Control ............................................................................... 19

1.4. Epígrafe IV. Métodos De Extracción En Fitoquímica ..................... 19

1.4.1. Extracción sólido-líquido ................................................................ 20

1.4.2. Maceración .................................................................................... 20

1.4.3. Percolación o lixiviación ................................................................ 20

1.4.4. Extracción líquido-líquido .............................................................. 21

1.4.5. Compuestos fenólicos ................................................................... 21

1.4.5.1. Análisis de fenoles totales. ............................................................ 22

1.4.5.2. Tamizaje fitoquímico ...................................................................... 22

1.5. Conclusiones del capítulo. ............................................................. 23

CAPÍTULO II. MARCO METODOLÓGICO ....................................................... 24

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2. Caracterización del sector ............................................................. 24

2.1. Descripción del proceso metodológicos ........................................ 24

2.1.1. Etapa I: Estudio etnofarmacológico ............................................... 24

2.1.1.1. Criterios de inclusión ..................................................................... 24

2.1.1.2. Criterios de exclusión .................................................................... 24

2.1.1.3. Materiales y métodos: ................................................................... 25

2.1.2. Universo y muestra........................................................................ 25

2.1.3. Etapa II: Obtención de extracto y aceite esencial .......................... 26

2.1.3.1. Caracterización Botánica ............................................................... 26

2.1.3.2. Criterios de inclusión: .................................................................... 26

2.1.3.3. Criterios de exclusión: ................................................................... 26

2.1.3.4. Materiales y métodos: ................................................................... 26

2.1.3.4.1. Muestreo de una proporción ...................................................... 27

2.1.3.4.2. Evaluación cuantitativa de la diversidad de especies. ................ 27

2.1.3.5. Recolección y acondicionamiento de la materia prima vegetal. .... 28

2.1.3.6. Operaciones previas: ..................................................................... 28

2.1.3.7. Material vegetal y obtención de los extractos. ............................... 28

2.1.3.8. Extracto Etéreo .............................................................................. 29

2.1.3.9. Extracto Etanòlico.......................................................................... 29

2.1.3.10. Destilación por arrastre de vapor................................................... 29

2.1.4. Pruebas analíticas ......................................................................... 29

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2.1.5.Humedad ........................................................................................... 29

2.1.6. Cenizas totales .............................................................................. 30

2.1.6.1.Cenizas Totales en Agua ................................................................ 30

2.1.6.2.Cenizas Totales en Ácido Clorhídrico. ............................................ 30

2.1.7.Obtención del aceite esencial vegetal ............................................... 31

2.1.8.Preparación y Obtención de extractos ............................................... 31

2.1.4. Etapa III: Procedimiento microbiológico para determinar el efecto

antimicrobiano de la zanahoria frente a S. mutans ........................................ 31

2.1.4.1.Cepa de microorganismo ................................................................ 31

2.1.4.2. Procedimiento Microbiológico ........................................................ 31

2.1.4.3. Evaluación de la actividad bacteriana del aceite y extracto

preparados con la técnica de difusión en disco. ............................................ 31

2.1.4.4. Materiales y métodos .................................................................... 32

2.1.4.5. Pruebas microbiológicas. .............................................................. 33

2.1.4.6. Diluciones del aceite esencial y extracto etanólico ........................ 34

2.1.5. Conclusiones del capítulo. ............................................................. 34

CAPÍTULO III. ANÁLISIS DE RESULTADOS ................................................... 35

2.ESTUDIO ETNOFARMACOLÓGICO DE PLANTAS MEDICINALES ............ 35

Evaluación cuantitativa de la diversidad de especies. ................................ 37

Nivel de uso significativo (UST) .................................................................. 37

3.1.ANÁLISIS DE RESULTADOS MICROBIOLÓGICOS. ................................ 39

3.2.Conclusiones del capítulo ........................................................................... 49

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BIBLIOGRAFÍA

ANEXOS

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1

INTRODUCCIÓN

Antecedentes de la investigación

La Organización Mundial de la Salud (OMS), define a la Medicina Tradicional

(MT) como la suma de conocimientos, técnicas y prácticas fundamentadas en

las teorías, creencias y experiencias propias de diferentes culturas que se

utilizan para mantener la salud física y mental (1). Es importante mencionar

que la MT, también se conoce como: complementaria, alternativa, popular,

blanda, marginal, no oficial, no ortodoxa y no convencional (1).

Es un hecho que, en las últimas décadas la MT se ha difundido ampliamente a

nivel global incluyendo los países desarrollados, esto debido a los aspectos

migratorios, económicos, ineficacia e ineficiencia de la Medicina “convencional”

(MC) (1).

La medicina tradicional en Ecuador, al igual que en otros países andinos, es

una antigualla. Sus raíces pertenecen a un pasado de más de 10 mil años, su

vigencia ha continuado a lo largo de cinco siglos de regímenes coloniales y

republicanos. Dicha permanencia ha sido sostenida por los pueblos de más

bajos recursos: indios, mestizos, montubios y campesinos, quienes han

encontrado en la medicina tradicional una alternativa menos costosa y más

coherente con su cosmovisión (2)

Las plantas presentan un metabolismo secundario que les permite producir y

acumular compuestos de naturaleza química diversa. Estos compuestos se

denominan metabolitos secundarios, se distribuyen diferencialmente entre

grupos taxonómicos, presentan propiedades biológicas, desempeñan funciones

ecológicas y se caracterizan por sus diferentes usos y aplicaciones como

medicamentos, insecticidas, herbicidas, perfumes y colorantes (3)

Los aceites esenciales se han estudiado como agentes antimicrobianos por su

amplio espectro de inhibición microbiana y su origen natural. Existe una gran

variedad de alimentos que contienen una mezcla de terpenos, terpenoides,

aldehídos y alcoholes que pueden actuar como antimicrobianos, tal es el caso

de la zanahoria, rábanos picantes, apio, ajo, cebollas entre muchos otros (4).

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2

La zanahoria es una planta que se fija al suelo mediante una raíz ahusada, de

color entre blanco (variedades silvestres) y rojo-anaranjado, de la que brota un

tallo ramificado, anguloso, con hojas recortadas alternas. Su fruto es un

diaquenio (5). El extracto de zanahoria contiene un porcentaje considerable de

terpenos como el pineno, caratol, daucol, ácido isobutírico y asarona (6), estos

metabolitos secundarios son de conocida actividad antimicrobiana. Los

constituyentes mayoritarios del aceites esencial de semilla de zanahoria fueron

carotol (66.78%), dauceno (8.74%), (Z,Z)-farneseno (5.86%), germacreno D

(2.34%), trans-bergamoteno (2.41%), y -selineno (2.20%). Por su parte, carotol

(30.55%), ducol (12.60%) y capaenol (0.62%) fueron los componentes

principales del aceite comestible (7). La función conservadora de los aceites

esenciales se debe a que en su composición poseen compuestos tipo eugenol

o aldehído cinámico con poder antimicrobiano (8). La efectividad antimicrobiana

de los aceites esenciales se evidenció en el estudio realizado en Argelia, 2016,

para el aceite esencial obtenido de las partes aéreas (hojas, tallo) de D.

gracilis, el cual fue sometido a evaluación de su actividad antimicrobiana contra

cinco bacterias y tres hongos mediante difusión en agar método, producto de

este estudio se comprobó que el aceite esencial de D. gracilis inhibió

significativamente el crecimiento de Bacillus cereus y Proteus mirabilis con

concentraciones inhibitorias mínimas de 17,15 μg / ml mediante el método de

dilución en agar y 57,05 μg / ml y 114,1 μg / ml, respectivamente, mediante

microdilución líquida (9)

Planteamiento del Problema

La resistencia a los antimicrobianos, pone en peligro la eficacia de la

prevención y el tratamiento de las morbilidades provocadas por bacterias,

siendo una amenaza cada vez mayor para la salud pública, prolongando las

estadías hospitalarias, la utilización de fármacos más caros elevando los costos

médicos y aumentando la mortalidad (10)

El uso indiscriminado de antibióticos ha generado resistencia bacteriana, por lo

cual es preciso tener alternativas preventivas y terapéuticas, como los

propóleos a los cuales no se les ha descrito resistencia alguna (11)

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3

Streptococcus mutans es un microorganismo cariogénico, cuenta con alta

prevalencia en el mundo entero (afectando del 95% al 99% de la población),

situándose como la principal causa de pérdida de dientes (10). Este

microorganismo en asociación con el Streptococcus sobrinus son

colonizadores tempranos del biofilm que rodea a los dientes mediante procesos

de adhesión y co-adhesión, su patogenicidad se ha demostrado en relación a la

producción de caries del esmalte, debido a la capacidad que poseen de

producir ácidos dando la característica fundamental de ser acidogénicos,

acidúricos y acidófilos a partir de la sacarosa (12)

El uso de los aceites esenciales de frutas y hortalizas como agentes

antibacterianos es bien conocido a nivel empírico (13), sin embargo, hay

escasas investigaciones de los metabolitos secundarios de Daucus carota

frente a Streptococcus mutans.

La falta de estudios completos de fitofármacos y difícil acceso a los

medicamentos a gran parte de la población obliga a desarrollar más

investigaciones fitoquímicas y farmacognósticas en Ecuador a fin de aportar al

desarrollo nacional y a la salud de la población.

Formulación del Problema

¿Cuál será el efecto antimicrobiano del aceite esencial y extracto etanólico de

la zanahoria (Daucus carota) frente a Streptococcus mutans?

Delimitación del Problema

La presente investigación se llevará a cabo en la ciudad de Guayaquil, Ecuador

con la muestra de zanahoria recolectada en los mercados del norte de la

ciudad, Mercado de Sauces 9 y Mercado de Sauces 4; misma que es

consumida como jugos y ensalada principalmente para comida, pero que no ha

merecido suficiente atención en su actividad antimicrobiana.

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4

Imagen 1. Ciudad de Guayaquil, Ecuador. Tomado de Google Earth Pro bajo

licencia institucional.

Objeto de Investigación

Actividad antimicrobiana del aceite esencial y extracto etanólico de Daucus

carota frente a Streptococcus mutans

Campo de Acción

Actividad antimicrobiana del aceite esencial y extracto etanólico de Daucus

carota frente a Streptococcus mutans.

Identificación de la Línea de Investigación

Estudios Microbiológicos

Objetivo General

Evaluar el efecto in vitro antimicrobiano de aceite esencial y extracto etanólico

de Daucus carota frente a Streptococcus mutans

Objetivos Específicos

• Indagar sobre el uso de plantas medicinales en la población rural y

urbana de la ciudad de Guayaquil mediante la aplicación de una

encuesta.

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5

• Analizar los compuesto fitoquímicos de Daucus carota mediante revisión

bibliográfica.

• Extraer el aceite esencial y extracto etanólico de Daucus carota

mediante destilación de arrastre de vapor.

• Medir la actividad bactericida y/o bacteriostática del extracto etanólico y

aceite esencial de Daucus carota mediante un ensayo microbiológico in

vitro frente a Streptococcus mutans.

Hipótesis

Hipótesis alternativa (H1): El aceite esencial y extracto etanólico de Daucus

carota a diferentes concentraciones tiene efecto antimicrobiano frente al

Streptococcus mutans.

Hipótesis nula (H0): El aceite esencial y extracto etanólico de Daucus carota a

diferentes concentraciones no tiene efecto antimicrobiano frente al

Streptococcus mutans.

Justificación Del Tema

Las enfermedades periodontales tienen una alta prevalencia constituyendo un

problema de salud pública, el uso de aceites esenciales se han estudiado como

agentes antimicrobianos por su amplio espectro de inhibición microbiana y su

origen natural, además tienen una probada actividad antimicrobiana contra las

bacterias de la cavidad oral, pero también han manifestado efectos secundarios

adversos, no satisfaciendo completamente los requerimientos para el

tratamiento de la enfermedad periodontal.

Con el estudio etnofarmacológico se pretende determinar el valor de uso de las

plantas y cuales acorde a la experiencia de las comunidades vale la pena

emprender una investigación.

La originalidad de este trabajo de investigación radica sobre la actividad

antimicrobiana del aceite esencial y del extracto etanólico de la zanahoria

frente a Streptococos mutans.

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6

Metodología

En la presente investigación estuvo dividido en tres etapas: mediante el estudio

etnofarmacológico está dado bajo la modalidad cuali-cuantitativa de tipo

descriptiva y exploratoria, se utilizó la encuesta como instrumento. La segunda

etapa consiste en la obtención del aceite esencial y el extracto etanólico de la

zanahoria mediante destilación de arrastre de vapor y la tercera etapa está

basado en el análisis microbiológico mediante la técnica de difusión en disco

por triplicados embebidos en concentraciones de 25%, 50%, 75% y 100%, con

un control positivo la Amoxicilina y con el control negativo agua destilada. Para

terminar con un análisis estadístico ANOVA que permitirá establecer la

discusión final.

Resumen de la estructura de la tesis

• Marco teórico

Epígrafe I. Estudio de la zanahoria

1.1 Generalidades

1.1.1. Taxonomía

1.1.2. Descripción botánica

1.1.3. Usos

1.1.4. Funciones Medicinales

Epígrafe II. Preparación de extractos y aceites de zanahoria

1.2.1. Selección y recolección de especímenes de Daucus carota

1.2.2. Obtención del Aceite Esencial y extracto etanólico de Daucus carota

Epígrafe III Estudio de cepas de microorganismos

1.3.1. Streptococcus mutans

1.3.2. Morfología

1.3.3. Reproducción

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7

1.3.4. Crecimiento

1.3.5. Clasificación del Streptococcus mutans

1.3.6. Transmisión, Colonización y estabilidad de Streptococcus mutans en

cavidad oral

1.3.7. Patogenicidad

1.3.8. Mecanismo de Resistencia Antimicrobiana

1.3.9. Resistencia Antimicrobiana del Streptococcus mutans

1.3.10. Potencia o actividad antimicrobiana

1.3.11. Actividad Antimicrobiana de los aceites esenciales

1.3.12. Cepas de control

Epígrafe IV. Métodos de extracción en fitoquímica

1.4.1. Extracción sólido-líquido

1.4.2. Maceración

1.4.3. Percolación o lixiviación

1.4.4. Extracción líquido-líquido

1.4.5. Compuestos fenólicos

1.4.5.1 Análisis de fenoles totales

1.4.5.2 Tamizaje fitoquímico

1.5. Conclusiones Parciales

Elementos de novedad

Aporte Teórico

La investigación aportará en reforzar los conocimientos de los mecanismos de

acción antimicrobiana del aceite esencial y extracto etanólico de la zanahoria

Daucus carota frente a la cepa de Streptococcus mutans, mediante el análisis

de los diversos metabolitos, en las diferentes revisiones bibliográficas tanto en

libros, artículos científicos, metaanálisis con la finalidad de proporcionar

información valiosa para futuras investigaciones y el desarrollo de fitofármacos

que presenten efectos adversos de menor frecuencia y menor intensidad.

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Significación Práctica

El estudio fitoquímico de la zanahoria y la demostración del efecto

antimicrobiano del aceite esencial y extracto etanólico de esta raíz sobre

Streptococcus mutans aportará al desarrollo de fitofármacos que puedan ser

usados para prevenir y/o restaurar la salud oral. Un adecuado conocimiento de

las bondades terapéuticas de esta hortaliza de amplio cultivo en Ecuador

contribuirá al desarrollo de la industria fitoterapéutica aplicando el conocimiento

científico en los productos existentes en la naturaleza.

Novedad Científica

La determinación de la actividad antimicrobiana del aceite esencial y del

extracto etanólico de la zanahoria permitirá establecer su comportamiento en

Streptococos mutans. Este tipo de estudios son un pendiente en

fitofarmacología y microbiología a nivel nacional. Tanto los estudios

etnobotánicos como los farmacognósticos en Ecuador están en desarrollo y

pretenden utilizar el valioso recurso vegetal nacional como una fuente

inagotable de antimicrobianos que sustituyan a la medicina tradicional y que no

causen efectos secundarios.

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CAPÍTULO I. MARCO TEÓRICO

1. Epígrafe I. Estudio de la Zanahoria

1.1. Generalidades

La carota, es una planta herbácea, bienal, que crece entre 30 y 60 cm,

con un tallo sólido, rígido. Las hojas son de forma triangular finamente

divididas y pinnadas. Las flores son pequeñas de un color blanco opaco,

agrupadas en planos, con umbelas densas. Estas umbelas son

terminales y de aproximadamente 8-10 cm de ancho (17).

1.1.1. Taxonomía

La zanahoria pertenece a la división magnoliophyta, del orden de las

apiales, familia apiaceae, género daucus, especie daucus carota (18).

1.1.2. Descripción botánica

El fruto de la Daucus Carota es pequeño, seco y duro, con pilosidades

alrededor. Presenta dos mericarpos y su endospermo crece antes del

embrión (19)

1.1.3. Usos

Como zanahoria cultivada, la raíz de D. carota es comestible mientras

joven, pero rápidamente se vuelve muy dura como para consumir. Las

flores a veces son aplastadas y fritas. Las hojas también son

comestibles pero no en grandes cantidades (20)

La recolección de la D. carota debe ser realizada con precaución porque

guarda una cercana similitud con la cicuta. Adicionalmente, las hojas de

la zanahoria salvaje pueden causar fitofotodermatitis (21). Las semillas

de zanahoria han sido utilizadas tradicionalmente en la elaboración de

preparados abortivos (22)

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10

1.1.4. Funciones Medicinales

Existe reciente evidencia que apunta que gran cantidad de las

enfermedades padecidas por el ser humano aparecen en respuesta al

estrés oxidativo. El extracto oleico de la Daucus carota presenta alto

contenido de fenoles y flavonoides con altísimo poder antioxidante (23)

Se ha demostrado que la fracción de aceite de zanahoria exhibe una

composición química única, con significativo poder antioxidante incluso

con efecto hepatoprotector en células hepáticas con daño previamente

inducido (23).

El aceite esencial de la Daucus carota L. obtenido de las partes aéreas

al final del estadio de florecimiento fue reportado como antimicrobiano

en contra del germen enteropatógeno Campylobacter jejuni. La molécula

responsable de esta acción fue identificada como (E)-metilisoeugenol y

la elemicina (24).

1.2. Epígrafe II. Preparación de Extractos y Aceites de Zanahoria

1.2.1. Selección y recolección de especímenes de Daucus carota

Para la obtención de una muestra representativa de la especie vegetal

se tomaron alrededor de 500 gramos de planta. Se incluyeron todos los

rizomas frescos, sin cortes y sin daños. Se excluyen los rizomas

partidos, con daños de putrefacción o inmaduros.

1.2.2. Obtención de Aceite Esencial y Extracto Etanólico de Daucus

carota

La droga agotada con el éter etílico se extrae por maceración con etanol

al 75% (tres veces el peso del residuo en volumen) durante 48 horas se

obtiene el extracto y el residuo sólido (secar y pesar) (15)

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1.3. Epígrafe III. Estudio de cepas de microorganismos

1.3.1. Streptococcus mutans

Se ha demostrado que está directamente involucrado en la patogénesis

de la caries dental. Sin embargo, utilizando sondas moleculares para la

identificación de genes específicos demuestran que los sujetos con

actividad de caries poseen una abundancia de especies como S.

mutans, lactobacillus y actinomices sp, en contraste con una disminución

de especies asociadas al estado de salud como S. parasanguis,

abiotrophia defectiva, gemella hemolysans, S. mitis/oralis y sanguis;

estas modificaciones en los componentes de la flora y el

microecosistema bucal, refleja lo complejo que es la valoración de la

actividad y el riesgo de desarrollo de caries dental (25)

1.3.2. Morfología

Streptococcus mutans es un estreptococo α-hemolítico o no hemolítico,

que se visualiza como bacilo cuando se aísla de un medio con pH ácido

y como cocácea cuando se sub-cultiva en un medio neutro o alcalino (a

lo que debe su nombre) (25)

1.3.3. Reproducción

La reproducción del S. mutans es asexual binaria (26).

1.3.4. Crecimiento

En general hay muchas dificultades técnicas para obtener muestras

representativas de diferentes sitios orales y para aislar, cultivar y contar los

microorganismos. No existe un solo método de cultivo para examinar la

variable y compleja placa dental que satisfaga todas las condiciones

necesarias. En algunos casos se requieren procedimientos estrictamente

anaeróbicos. Afortunadamente, muchas de las especies de estreptococos

orales pueden aislarse de varios sitios usando medios selectivos como el

Agar Mitis Salivarius (MS). Aunque el Agar MS fue originalmente

desarrollado para aislar enterococcus faecalis, su uso ha predominado

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sobre otros medios de cultivo para el aislamiento de estreptococos orales,

incluyendo Streptococcus mutans. En el agar MS, muchos estreptococos

orales muestran una morfología característica de las colonias

(blanquecinas, de bordes definidos, colonias firmes muy adherentes al

medio de cultivo) lo cual permite su diferenciación inicial. Usualmente, la

placa de agar se cultiva en una atmosfera del 95% de nitrógeno y 5% de

dióxido de carbono a 37°C por 1 o 2 días seguida de una incubación en aire

por 1 o 2 días. Además de la morfología característica de las colonias, los

estreptococos orales pueden diferenciarse por su habilidad para fermentar

ciertos azucares (especialmente manitol y sorbitol) y por adherirse a

superficies lisas en presencia de sacarosa (27).

El cultivo en agar es considerado como el estándar de oro ya que permite

realizar recuentos bacterianos para establecer proporciones relativas,

mediante métodos cuantitativos en medios no selectivos. Actualmente hay

5 medios de cultivo diferentes para el aislamiento de Streptococcus mutans.

Estos son: Agar Mitis salivarius con bacitracina (MSB), Agar

Mitis Salivarius con bacitracina y kanamicina (MSKB) Agar glucosa-

sacarosa-telurito bacitracina (GSTB) Agar Tripticasa de soya con sacarosa

y bacitracina (TYS20B) y Agar triptona extracto de levadura cisteína con

sacarosa y bacitracina (TYCSB). El agar MS es el medio más ampliamente

usado para aislar S. mutans y otras especies orales de estreptococos. El

agar MS ha sido modificado para ser más selectivo en el aislamiento de

S. mutans adicionando tanta sulfonamida (Agar MC), bacitracina (Agar

MSB), polimixina o aun sacarosa (MS40S). Los métodos de recuento de

colonias permiten determinar el grado de colonización producida

por Streptococcus mutans según las edades, siendo de gran utilidad para

identificar la población de alto riesgo de caries dentales y su aplicación

permitiría desarrollar programas de prevención en salud oral en poblaciones

específicas y vulnerables (27).

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1.3.5. Clasificación del Streptococcus Mutans

Con base en la composición y los enlaces de los polisacáridos de la pared

celular, estreptococos del grupo mutans se pueden clasificar en 8

serotipos: Streptococcus mutans (serotipos c, e, f y k), Streptococcus

sobrinus (serotipos d y g), Streptococcus cricetus (serotipo a),

Streptococcus rattus (serotipo b), Streptococcus ferus (serotipo c),

Streptococcus macacae (serotipo c) y Streptococcus downei (serotipo h).

Se sabe que el serotipo c de S mutans es el tipo predominante en la

cavidad oral humana más que las cepas e, d, f y k (27).

Los polisacáridos de la pared celular juegan un papel importante en la

colonización de sus nichos ecológicos. Las diferencias en las afinidades

para la unión de los antígenos de polisacáridos a los tejidos humanos

pueden ser la causa de esta distribución tan variada. Por otro lado, se cree

que el ancestro de S mutans haya sido el serotipo c y que las cepas f y e

pueden haberse originado por mutaciones del determinante del serotipo c

(27).

Previamente se ha clasificado en tres serotipos c, e y f debido a la diversa

composición química de los polisacáridos específicos de los serotipos los

cuales están compuestos por un esqueleto de ramnosa y cadenas laterales

de glucosa. Recientemente se designó una cepa de S. mutans con serotipo

no c/e/f como serotipo k el cual se caracteriza por una drástica reducción

en la cantidad de cadenas laterales de glucosa. Un rasgo biológico común

del serotipo k es su bajo nivel de cariogenicidad debido a las alteraciones

de varios de los mayores antígenos proteicos de superficie. En cuanto a la

virulencia en sangre, estas cepas sobreviven en la sangre por mayor

tiempo debido a su baja antigenicidad. Otros estudios revelan la

participación de este serotipo en la patogénesis de enfermedades

cardiovasculares, en la cuales se ha detectado su alta frecuencia (27).

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1.3.6. Transmisión, Colonización y estabilidad de Streptococcus mutans

en cavidad oral

La caries dental es una enfermedad dental transmisible en la cual los

Streptococos del grupo mutans juegan un papel principal. Como en muchas

enfermedades infecciosas, se requiere la colonización de un patógeno

antes de que ocurra la infección. Hay un rango de factores de virulencia

importante para el establecimiento de Streptococcus mutans en la compleja

comunidad microbiana de la biopelícula dental. Estudiar los factores de

virulencia de Streptococcus mutans y su correlación con la biodiversidad de

especies es fundamental para entender el papel que juega en la

colonización por los diferentes genotipos en el mismo individuo y la

expresión de las características que puedan o no influenciar su capacidad

de virulencia y su habilidad para sobrevivir bajo diferentes condiciones

ambientales. El papel de los estreptococos del grupo mutans,

especialmente Streptococcus mutans y Streptococcus sobrinus, en la

etiología de la caries dental ha sido extensamente investigado y claramente

demostrado. La evidencia indica que una forma importante de transmisión

de Streptococcus mutans durante los primeros años de vida es la que se

produce de madre a hijo por contacto directo (transmisión vertical),

mientras que el contacto con otros familiares, incluidos el padre, los

hermanos y demás posibles cuidadores constituye otra vía de transmisión

(transmisión horizontal) que cobra importancia durante edades posteriores.

Una característica importante de Streptococcus mutans es la persistencia

de sus genotipos en la cavidad oral de adultos, adolescentes y niños

mayores de cinco años. Este fenómeno es conocido como persistencia

“intraindividual” y revela la relativa estabilidad que estos alcanzan en un

hospedador y la relación con la expresión de características fenotípicas que

les pueden dar ventajas para la supervivencia, como la capacidad de

formar biopelículas, de adherirse y soportar fluctuaciones del pH. Se ha

considerado comúnmente que la colonización de la cavidad oral de los

niños por S. mutans (“ventana” de infección) ocurre al producirse la

erupción del primer diente, es decir, alrededor de los seis meses de edad.

Sin embargo, es lógico pensar que en niños expuestos a factores que

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facilitan los procesos de transmisión, la colonización se produzca antes de

la aparición de los primeros dientes. Hay dos factores que sugieren que S.

mutans pueda aparecer durante la etapa predental: 1) Streptococcus

mutans y Streptococcus sobrinus son capaces de colonizar superficies

mucosas. 2) Algunos niños desarrollan lesiones de caries poco después de

la erupción dental. La colonización temprana de la cavidad oral (antes de la

erupción dental) por S. mutans puede aumentar el riesgo de caries y hacer

que su desarrollo se produzca a edades más tempranas (27).

Se han identificado unos 52 genotipos diferentes en niños, pero las madres

trasmiten cerca de 16 de ellos. Se observa una tendencia hacia la

estabilidad de los genotipos transmitidos por las madres, en parte, porque

la colonización del genotipo materno pueda interferir con la colonización de

otros genotipos. Se ha observado que los niños albergan de uno a cinco

genotipos diferentes de S. mutans en diferentes edades. La diversidad

genotípica de Streptococcus mutans en cuatro sitios de muestreo (saliva,

dorso de la lengua, mucosa alveolar y biopelícula dental) de niños parece

ser homogénea, sin embargo, la biopelícula dental es un lugar muy

importante dado el gran número de genotipos de Streptococcus mutans y

las cepas aisladas. Se ha demostrado un alto grado de homología entre

cepas de S. mutans recuperadas de miembros de la misma familia

indicando tanto la transmisión vertical y horizontal y una persistente

colonización de Streptococcus mutans adquiridos previamente hasta la

adultez temprana (27).

La colonización inicial por Streptococcus mutans fue investigada en un

estudio prospectivo de 46 niños estadounidenses desde el nacimiento a 5

años de la edad cuyas madres portaban altos niveles de Streptococcus

mutans. De aquel estudio, la ventana de infectividad fue definida como el

período a partir de 19 a 31 meses de edad, cuando el riesgo de adquisición

de Streptococcus mutans era alto (27).

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16

1.3.7. Patogenicidad

Se ha demostrado que Streptococcus mutans está directamente

involucrado en la patogénesis de la caries dental. Sin embargo, utilizando

sondas moleculares para la identificación de genes específicos demuestran

que los sujetos con actividad de caries poseen una abundancia de

especies como además del S. mutans, el lactobacillus y actinomices sp, en

contraste con una disminución de especies asociadas al estado de salud

como S. parasanguis, abiotrophia defectiva, gemella hemolysans, S.

mitis/oralis y sanguis; estas modificaciones en los componentes de la flora

y el microecosistema bucal, reflejan lo complejo que es la valoración de la

actividad y el riesgo de desarrollo de caries dental (26).

1.3.8. Mecanismo de Resistencia Antimicrobiana

La resistencia antimicrobiana de las bacterias ha devenido problema de

salud, tanto para los países del norte como para los del sur. Cuando se

desarrollaron por primera vez, los antibióticos fueron vistos como "balas

mágicas" que cambiarían radicalmente el tratamiento de la enfermedad

infecciosa. Desde la introducción de la penicilina en la terapéutica hace

más de 50 años, se inició una incesante búsqueda de nuevos compuestos

antibacterianos con el fin de erradicar las enfermedades infecciosas que

iban surgiendo. La mayoría de estas enfermedades se deben a infecciones

respiratorias agudas, enfermedades diarreicas, tuberculosis, paludismo,

sarampión y VIH/SIDA. La resistencia a los antimicrobianos amenaza

actualmente la capacidad existente de solucionar con eficacia por lo menos

4 de los procesos antes mencionados: las infecciones respiratorias agudas

(neumonía), las enfermedades diarreicas, el paludismo y la tuberculosis. En

algunas regiones del planeta, más de la mitad de todos los casos de

neumonía estreptocócica son resistentes a la penicilina. La eficacia de la

cloroquina, considerada como la piedra angular del tratamiento del

paludismo, hoy día es discutida en muchos países (28).

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17

Sin dudas, el uso excesivo y con frecuencia empírico de los

antimicrobianos para el tratamiento de diferentes situaciones clínicas ha

conducido a modificaciones de la ecología bacteriana, lo que puede

determinar consecuencias fatales para la salud pública (28).

Las bacterias adquieren la capacidad de resistir la acción de los antibióticos

por medio de varios mecanismos como la variabilidad genética, la

modificación de la permeabilidad de la membrana interna, la extracción del

compuesto y la inhibición enzimática, así como por la modificación del

blanco ribosomal o la alteración de la composición y el contenido de

glicoproteínas de la pared bacteriana (28).

Esta resistencia es transmitida entre microorganismos de un mismo género

(transmisión horizontal) y entre microorganismos de géneros diferentes

(transmisión vertical). A todo lo anterior se adiciona el hecho de que se

dispone de escasos datos de susceptibilidad a los antibióticos y la

vigilancia de la resistencia no se lleva a cabo en todos los países (28).

1.3.9. Resistencia Antimicrobiana del Streptococcus Mutans

Los estreptococos orales, normalmente no patógenos, son residentes de la

microflora humana; pero pueden actuar como “reservas genéticas” y

transferir genes de resistencia a las bacterias transitorias de la cavidad

oral, punto de entrada para una gran variedad de microorganismos (29)

Barrientos et al, realizaron un estudio con el propósito de establecer si la

prevalencia de resistencia a la amoxicilina de S. mutans varía según el

consumo o no de antibióticos β-lactámicos. Los resultados muestran que el

tratamiento con este tipo de antibióticos produce una baja sustancial en la

recuperación de cepas de S. mutans, lo que significa que continúa siendo

un tratamiento efectivo de la mayoría de infecciones odontogénicas y para

profilaxis de endocarditis; pero es evidente que producen un desequilibrio

en los ecosistemas orales. El grupo de pacientes en el que se encontró

menor frecuencia de aislamiento de cepas de S. mutans fue en quienes

reportaron uso de β-lactámicos durante más de tres semanas (46,4 %), lo

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18

cual muestra el efecto de los antibióticos sistémicos sobre la flora

constitutiva de la cavidad oral, que podría generar la aparición de

infecciones oportunistas como la candidiasis. Cabe anotar que se debe

determinar si esta disminución es permanente o transitoria, dadas las altas

tasas de recambio bacteriano en el medio oral, ya que en la población

general es frecuente encontrar portadores de cepas de S. mutans

resistentes que pasarán inadvertidas mientras no se requiera el uso de

amoxicilina. En cuanto a la resistencia a penicilinas, en esta investigación

se encontró que el 4,4 % de los individuos eran portadores de cepas de S.

mutans resistentes a amoxicilina, lo que corresponde al 5,2 % de las cepas

aisladas. Estos resultados contrastan con diferentes investigaciones que

han evidenciado porcentajes de cepas resistentes de microrganismos

aerobios y anaerobios aisladas de infecciones orofaciales entre el 29 % y el

39 % —incluso a la amoxicilina con ácido clavulánico (12,16-19) —, lo que

indica que existen mecanismos diferentes a la producción de β-lactamasas.

En estreptococos obtenidos de infecciones odontogénicas agudas en

niños, el porcentaje de cepas del S. mutans resistentes a la amoxicilina se

encuentra en el 45 % con concentraciones inhibitorias mínimas superiores

a los 8 μg/ml, lo que evidencia que, independientemente de la edad, la

resistencia de S. mutans se asocia con la ingesta de antibióticos (29)

La resistencia a la penicilina (esto es, Concentración Mínima Inhibitoria –

CIM- > 4µg/mL) entre los streptococos mutans ha estado incrementándose

alrededor del mundo. La resistencia se debe a alteraciones en las proteínas

de unión a la penicilina (PBPs) (30)

1.3.10. Potencia o actividad antimicrobiana

Los productos naturales de las plantas pueden poseer una nueva fuente de

agentes antimicrobianos con un posible novedoso mecanismo de acción.

Son efectivos en el tratamiento de enfermedades infecciosas mitigando

muchos de los efectos colaterales que son frecuentemente asociados con

antimicrobianos convencionales (31)

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19

1.3.11. Actividad antimicrobiana de los aceites esenciales

Los ensayos antimicrobianos de los aceites esenciales son en la mayoría

de los casos realizados con un objetivo específico y/o aplicación en mente.

El seteo experimental debería ser hecho en vista de este objetivo, porque

mientras más cerca la situación experimental emule a la situación práctica,

más fuerte será su valor predictivo. Los aceites esenciales han sido

evaluados para los siguientes propósitos:

- Para monitorear aceites esenciales antimicrobianos o sus constituyentes;

- Para monitorear actividades antisépticas o desinfectantes;

- Para monitorear propiedades conservantes para alimentos.

- Para estudiar el posible rol de los aceites esenciales en las interacciones

biológicas.

- Para estudiar el posible uso de los aceites esenciales como agentes

terapéuticos (31)

1.3.12. Cepas Control

Para que los resultados del antibiograma de discos sean realmente

confiables es de primordial importancia, además de los aspectos técnicos,

introducir un control de calidad interno mediante el uso de cepas de control

(32)

1.4. Epígrafe IV. Métodos De Extracción En Fitoquímica

Al iniciar un estudio fitoquímico es necesario considerar qué tipo de

metabolitos es posible determinar en la especie a estudiar, y de manera

más específica la parte de la planta de la que se realizará la extracción.

La correcta selección de estos factores será importante al momento de

seleccionar el método de extracción. Una extracción realizada con

material seco y pulverizado permite una mayor permeabilidad del

solvente y de este modo existe un mayor rendimiento en la extracción.

Muchos compuestos permanecen intactos en la estructura de la planta,

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20

sin embargo, en algunos estudios como aquellos relacionados con

aromas consideran la absoluta necesidad de la utilización de material

vegetal fresco. La polaridad de las sustancias a extraer determina el tipo

de solvente, por ende, si se desean extraer mayoritariamente

compuestos como esteroles, se requerirá utilizar un solvente como éter

de petróleo; el hexano permite una extracción de las cumarinas y para

los alcaloides primero se emplea alcohol etílico y posteriormente un

ácido diluido. El etanol es un solvente muy utilizado, permitiendo la

extracción de sustancias de todas las polaridades, además resulta

estable (poco reactivo), se evapora fácilmente y no es caro (33)

1.4.1. Extracción sólido-líquido

Es extraer un componente sólido con el contacto de un disolvente, en

fitoquímica la fase portadora sólida sería el material vegetal, y el

producto de esta extracción conocido como soluto sería el extracto

resultante de este disolvente (33)

1.4.2. Maceración

Se obtienen extractos gracias a un amplio tiempo de contacto que el

solvente debe tener con el material vegetal, el cual debe estar

pulverizado o molido para lograr una mayor superficie de contacto con el

solvente, todo esto a temperatura ambiente. Las agitaciones son

recomendables para la homogenización del producto y de este modo

influenciar el rendimiento de la extracción; el poder de extracción del

solvente se reducirá al pasar el tiempo de contacto con el material

vegetal; para este tipo de extractos es útil la protección del recipiente de

extracción de la luz solar, debido a la descomposición de sustancias

fotolábiles. Después de la filtración se requiere lavar el material vegetal

restante con más solvente para la obtención del extracto total (33)

1.4.3. Percolación o lixiviación

El disolvente pasa a temperatura ambiente por gravedad sin necesidad

de presión a través del material vegetal finamente molido, el paso

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21

detenido del solvente por las partículas del sólido hace que disuelvan la

mayor cantidad de metabolitos que sean posibles y por la continua la

adición de solvente se logra una alta efectividad

1.4.4. Extracción líquido-líquido

La extracción líquido-líquido se basa en la transferencia de una o varias

sustancias desde una fase líquida a otra líquida que no puede mezclarse

con la primera sustancia. Esto sucede por el reparto entre las dos fases

de compuestos de diversas polaridades. Una fase suele ser acuosa y la

otra conocida llamada extractarte es orgánica, esta última es la que

transfiere los compuestos.

1.4.5. Compuestos fenólicos

Los compuestos fenólicos, entre los cuales se encuentran los

flavonoides, presentan una amplia ubicuidad en la naturaleza. Son

responsables del buen funcionamiento de las plantas y, en su relación

con el hombre, son utilizados para tratar desordenes cardiovasculares y

prevenir algunos cánceres. Poseen una estructura química adecuada

para ejercer actividad antioxidante, la cual está íntimamente relacionada

con tales propiedades. Para su extracción se utilizan solventes polares

cuyo extracto posteriormente se concentra. Los compuestos fenólicos

constituyen una de las principales clases de metabolitos secundarios de

los vegetales, donde desempeñan diversas funciones fisiológicas

Los flavonoides, uno de los dos grandes grupos de compuestos

fenólicos junto con los ácidos fenólicos, son un grupo extenso de

compuestos derivados del benzo-γ-pirano. Dependiendo del grado de

oxidación y de sustitución del anillo pirano central pueden subdividirse

en flavonas, flavonoles, flavononas, isoflavonas, flavanos y antocianinas.

Está comprobado que los flavonoides son importantes para el desarrollo

y buen funcionamiento de las plantas al protegerlas contra agentes

agresores externos, como la radiación UV, microorganismos, animales

herbívoros y del medio ambiente (34)

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22

1.4.5.1. Análisis de fenoles totales.

La concentración de fenoles totales en extractos fue medida por

espectrofotometría, basándose en una reacción colorimétrica de óxido-

reducción. El agente oxidante utilizado fue el reactivo de Folin-Ciocalteu

(38).

El ensayo Folin-Ciocalteu se utiliza como medida del contenido en

compuestos fenólicos totales en productos vegetales. Se basa en que

los compuestos fenólicos reaccionan con el reactivo de Folin-Ciocalteu,

a pH básico, dando lugar a una coloración azul susceptible de ser

determinada espectrofotométricamente a 765 nm. Este reactivo contiene

una mezcla de wolframato sódico y molibdato sódico en ácido fosfórico,

y reacciona con los compuestos fenólicos presentes en la muestra. El

ácido fosfomolibdotúngstico (formado por las dos sales en el medio

ácido), de color amarillo, al ser reducido por los grupos fenólicos da lugar

a un complejo de color azul intenso (35)

El mecanismo de reacción es una reacción redox, por lo que además

puede considerarse también, como un método de medida de la actividad

antioxidante total. La oxidación de los polifenoles presentes en la

muestra, causa la aparición de una coloración azulada que presenta un

máximo de absorción a 765 nm, y que se cuantifica por

espectrofotometría en base a una recta patrón de ácido gálico (35)

1.4.5.2. Tamizaje fitoquímico

Con el propósito de sintetizar la amplia información referente al tamizaje

fitoquímico se ha elaborado la Tabla 4 que resumen los distintos

métodos que se emplean para la citada técnica.

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23

1.5. Conclusiones del capítulo.

➢ El extracto de la Daucus carota presenta alto contenido de fenoles y

flavonoides con poder antioxidante.

➢ Los polifenoles pueden transformarse en una herramienta para sustituir

los antibióticos, suministrando un producto de origen natural inocuo para

la salud humana.

➢ El S mutans es una bacteria cariogénica que habita en el biofilm de la

cavidad bucal, y las cepas más frecuentes son e, d, f y k y su

colonización se da alrededor de los seis meses de edad en el primer

diente.

➢ El etanol es estable, adecuado y de fácil evaporación durante la

extracción de sustancias de diversas polaridades.

➢ El etanol atraviesa las membranas de las células de las muestras

orgánicas extrayendo así las moléculas polares.

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24

CAPÍTULO II. MARCO METODOLÓGICO

2. Caracterización del sector

Este trabajo de investigación fue realizado bajo la modalidad cualitativa y

cuantitativa, siendo su diseño del tipo cuasi experimental, dado el alcance de la

misma.

Se realizó el estudio etnofarmacológico de plantas medicinales en el barrio

urbano de Bastión Popular es una cooperativa de vivienda de Guayaquil,

cuenta con una población total de 73.655 según el Instituto Nacional de

Estadisticas y Censo (INEC 2010)., siendo su temporada de cosecha el cuarto

trimestre del año, fueron adquiridas en el Mercado de Sauces 9, al Norte de la

ciudad; Guayaquil, es la ciudad más grande y habitada de Ecuador, está

ubicada a 4.0 msnm, localizada a una latitud y longitud: -79.9332613, -

2.0854446 respectivamente.

2.1. Descripción del proceso metodológico

Existen tres etapas para realizar la investigación:

• Estudios etnofarmacològico

• obtención del extracto etanólico y aceite esencial

• Procedimiento microbiológico para determinar el efecto antimicrobiano

de la zanahoria frente a S. mutans.

2.1.1. Etapa I: Estudio etnofarmacológico

2.1.1.1. Criterios de inclusión

o Grupo etario de 30 a 60 años de edad, madres de familia y

abuelas, conocedoras del uso ancestral de plantas para tratar

dolencias.

o Para las encuestas se incluyeron a personas oriundas o que

hubieran radicado en Bastión Popular por no menos de 5 años.

o Personas sin problemas mentales.

2.1.1.2. Criterios de exclusión

o Habitantes de otras zonas.

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25

o Personas menores de edad.

o Personas con problemas mentales o discapacidades mentales

2.1.1.3. Materiales y métodos:

El presente trabajo de investigación es de tipo transversal y descriptivo,

después se realizó la aplicación de las encuestas etnofarmacológicas de

plantas medicinales en la ciudad de Guayaquil en el sector Bastión Popular. Es

descriptivo porque se describió la utilización de plantas medicinales por las

personas encuestadas y es transversal porque se estudia de forma simultánea

en un momento dado.

Las personas encuestadas fueron muestreadas por el método no probabilístico

del tipo cuotas, ya que tienen que cumplir con todos los criterios de inclusión.

En primer lugar, por medio de encuestas se verificará los usos potenciales de

la planta en base al conocimiento popular de los informantes.

Universo y muestra

El sector Bastión Popular de la ciudad de Guayaquil cuenta con un universo de

73.655 personas según el Instituto Nacional de Estadisticas y Censo (INEC

2010).

La utilizada fue una población 2450 personas que se ubican en un grupo etario

de mujeres de 30 a 60 años de edad, se aplica la siguiente ecuación:

𝑛 =𝑁𝑧2 𝑝𝑞

𝑑2 (𝑁 − 1) + 𝑧2 𝑝𝑞

Donde:

N= Tamaño de la población

Z = 1.96 para I.C. igual a 95%

E = d = Margen del error es el 5% que es igual a 0.05.

P = Proporción de ocurrencia del evento es el 50% que es igual a 0.5.

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26

q = 1 - p = Proporción de no ocurrencia del evento

𝒏 = (2) 2450 (0.5)(0.5)

(0.1) 2 (2449 − 1) + (2)2 (0.5)(0.5)

𝒏 = 2450

20.79

El tamaño de la muestra es: 𝒏 = 96,1

Resultando la muestra 96 personas que serán encuestadas, se ubican en un

grupo etario de mujeres de 30 a 60 años de edad, madres de familia y abuelas,

conocedoras del uso ancestral de plantas para tratar dolencias.

2.1.2. Etapa II: Obtención de extracto y aceite esencial

2.1.2.1. Caracterización Botánica

Se realizó la identificación botánica de la Daucus carota en el Herbario de la

Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad de Guayaquil, anexo 2.

2.1.2.2. Criterios de inclusión:

• Todos los rizomas frescos, sin cortes, sin daños

2.1.2.3. Criterios de exclusión:

• Rizomas partidos, con daños de putrefacción, inmaduros

2.1.2.4. Materiales y métodos:

• Equipo de destilación por arrastre con vapor

• Balón de extracción

• Cilindros 250ml

• Balón 250 ml

• Rotavapor

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27

La selección de la Daucus carota se lo hizo mediante un estudio

etnofarmacológico, utilizado las fórmulas de muestreo de una proporción,

índice de valor de uso (IVU) y nivel de uso significativo (UST).

2.1.3.4.1. Muestreo de una proporción

2.1.3.4.2. Evaluación cuantitativa de la diversidad de especies.

Índice de valor de uso (IVU)

Para evaluar las preferencias del pueblo hacia las plantas utilizadas, se empleó

el concepto de Valor de Uso (Philips y Gentry, 1993). Esta valoración muestra la

cantidad de usos que se otorga a una determinada planta. La fórmula es la

siguiente:

𝑉𝑈𝑖𝑠 =𝛴𝑈𝑖𝑠

𝑁𝑖𝑠

Donde:

VUis= es el valor de uso atribuido a una especie particular (s) por un informante

(i)

Uis = número de usos mencionado por el informante.

Nis= número total de eventos.

Nivel de uso significativo

Para estimar el nivel de uso significativo para cada especie y verificar su

aceptación cultural, se utilizó la metodología propuesta por Germosén Robineau

(1995). Esta metodología, expresa que aquellos usos medicinales que son

citados con una frecuencia superior o igual al 20%, por las personas

encuestadas que usan plantas como primer recurso para un determinado

problema de salud, pueden considerarse significativos desde el punto de vista

de su aceptación cultural y, por lo tanto, merecen su evaluación y validación

científica. El UST se calcula dividiendo el número de citaciones de uso para

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28

cada especie (s), entre el número de informantes encuestados, se propone la

siguiente ecuación:

𝐔𝐒𝐓 = 𝐔𝐬𝐨𝐄𝐬𝐩𝐞𝐜𝐢𝐞(𝐬) 𝟏𝟎𝟎 /𝐍𝐢𝐬

Donde:

Uso Especie (s) = número de citaciones para cada especie.

Nis = número de informantes encuestados.

2.1.2.5. Recolección y acondicionamiento de la materia prima vegetal.

Esta investigación será realizada en la ciudad de Guayaquil, Ecuador con la

muestra de zanahoria recolectada en los mercados del norte de la ciudad,

misma que es consumida como alimento, pero que no ha merecido la suficiente

atención como antimicrobiano. Se adquirieron 5 kilos de zanahoria (Daucus

carota) fresca en el mercado de Sauces 9 (Guayaquil-Ecuador).

2.1.2.6. Operaciones previas:

• Limpieza: Se eliminaron cuidadosamente las raíces y la tierra adherida,

se utilizó cuchillos de acero inoxidables de hoja roma con el fin de

separar también las raicillas (14)

• Preparación de la muestra: Se toman las zanahorias y son peladas y

cortadas en hojuelas de 1cm de espesor. Se almacena en refrigeración

hasta el siguiente proceso.

2.1.2.7. Material vegetal y obtención de los extractos.

Luego de la recolección de las zanahorias bajo el criterio de inclusión se

procedió a su secado a 40°C, posteriormente se trituraron manualmente hasta

lograr una cantidad de 72 g. Se da preferencia al uso de etanol como solvente

porque los compuestos alcohólicos rompen la membrana celular y pueden dar

lugar a la extracción de grandes cantidades de material endocelular

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29

2.1.2.8. Extracto Etéreo

Pesar 25 g. de droga seca y molida y extraerlos con 200 ml de éter etílico por

maceración durante 48 horas. Se obtiene el extracto y el residuo sólido (secar y

pesar) (15)

2.1.2.9. Extracto Etanòlico

A la droga agotada con el éter etílico, extraer por maceración con etanol al 75%

(tres veces el peso del residuo en volumen) durante 48 horas se obtiene el

extracto y el residuo sólido (secar y pesar) (15)

2.1.2.10. Destilación por arrastre de vapor

Se toman 100g de zanahoria secada y triturada bajo criterios de inclusión. Se

conservan en refrigeración por un máximo de 2 horas, previo a la destilación.

Colocar en el balón A agua destilada, en el balón B la muestra, ensamblar el

equipo de destilación para arrastre de vapor y proceder a recoger el destilado,

verificar que el lugar tenga ventilación adecuada. Una vez colectado el líquido

que debe tener un color blanco lechoso, se procede a sangrarlo con Cloruro de

Sodio y extraerlo con cloroformo. Guardar el Aceite esencial obtenido en

frascos ámbar de tapa rosca. Repetir el procedimiento hasta agotar la muestra.

El proceso llevará alrededor de 3-5 días (35).

2.1.3. Pruebas analíticas

Para todas las pruebas analíticas se trabajaron las muestras por triplicado.

2.1.4. Humedad

Llevar al horno secador las zanahorias previamente trituradas para extraer la

humedad de las mismas a 60ºC durante 4 horas (14)

Porcentaje de humedad de la muestra:

% H = (p – p”)/ p x 100

p = peso inicial de la muestra

p”= peso final de la muestra

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30

2.1.5. Cenizas totales

Con la ayuda de 2 crisoles previamente tarados, pesamos 2 gr. de muestra

vegetal seca y molida en cada crisol, y llevamos a la mufla por el lapso de 3

horas a 750ºC, pasado este tiempo dejar en secador y pesar (14)

C=𝑀2−𝑀

𝑀1−𝑀𝑋100

M2 = Masa de crisol con cenizas

M1 = Masa de crisol con muestra de ensayo

M = Masa de crisol vacío

2.1.5.1. Cenizas Totales en Agua

Pesar 2 g de muestra vegetal seca y molida en dos crisoles respectivamente,

llevar a la mufla por 3 horas a 750ºC, pasado este tiempo dejar en secador y

pesar (Guanoluisa, 2017).

M2 = Masa de crisol con cenizas

M1 = Masa de crisol con muestra de ensayo

M = Masa de crisol vacío

C=𝑀2−𝑀

𝑀1−𝑀𝑋100

2.1.5.2. Cenizas Totales en Ácido Clorhídrico.

En el crisol con ceniza colocar 2 mL de HCl al 10 %, tapar el crisol con papel

aluminio, poner agua a hervir previamente en un vaso de precipitación,

posteriormente procedemos a filtrar el contenido del crisol con papel filtro

tarado, con la ayuda del agua caliente realizamos varios enjuagues al papel

filtro con residuo descartando el líquido del filtrado, en la último enjuague

tomamos una muestra el líquido y le adicionamos 1 gota de HNO3 y de 1-2

gotas de AgNO3, si se obtuviese un color blanco en el líquido se procederá a

seguir los enjuagues del papel filtro con agua caliente hasta que el líquido al

adicionarle las gotas de reactivo no tomasen ningún color es decir queden

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31

transparente. Luego de esto poner el papel filtro con residuo en el crisol

correspondiente para llevarlo a la mufla por 2 horas a 750 ºC (14).

2.1.6. Obtención del aceite esencial vegetal

Se procedió a realizar una Destilación por Arrastre de Vapor, se trataron los 5

kilos de zanahoria en un total de 5 días.

2.1.7. Preparación y Obtención de extractos

Estos se obtienen mediante la separación de porciones biológicamente activas

presentes en los tejidos de las plantas, con el uso de un solvente (alcohol,

agua, mezcla de estos u otro solvente selectivo) y un proceso de extracción

adecuado (15)

2.1.4. Etapa III: Procedimiento microbiológico para determinar el efecto

antimicrobiano de la zanahoria frente a S. mutans

2.1.4.1. Cepa de microorganismo

Streptococcus mutans ATCC25175

2.1.4.2. Procedimiento Microbiológico

El estudio se realizará con cepas de bacterias de Streptococcus mutans (ATCC

25175), en las cuales no se ha evidenciado contacto alguno con bacterias o

solución antimicrobiana; la manipulación de las cepas se hará considerando las

respectivas medidas de Bioseguridad.

El aceite esencial y el extracto hidroalcohólico de Daucus Carota al 25%, 50%,

75% y 100% serán embebidos en discos blanco. Se conoce que con el control

positivo experimentalmente los halos se inhiben con una dispersión de

alrededor de 16 mm.

2.1.4.3. Evaluación de la actividad bacteriana del aceite y extracto

preparados con la técnica de difusión en disco.

Posterior a la selección de las concentraciones para el aceite esencial y los

extractos, se preparan inóculos bacterianos de Streptococcus mutans con un

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32

criterio de sensibilidad positivo de difusión de 16 mm sembrado en cajas Petri

con agar Mueller Hinton. Se rotularán las placas indicando el número de

ensayo y la posición de los discos, así como también el control positivo (16).

Se harán cultivos bacterianos de Streptococcus mutans (ATCC 25175) usando

como medio el agar Mueller Hinton con 5% de sangre desfibrinada de oveja a

los cuales se les colocaron discos blanco embebidos con el aceite esencial y

extracto hidroalcohólico al 25%, 50%, 75% y 100% (16).

2.1.4.4. Materiales y métodos

Equipos, materiales, instrumentos y sustancias

Equipos

• Incubadora

• Autoclave

• Balanza de precisión

Materiales

• Discos: sensidiscos estériles

• Hisopos estériles

• Gasas

• Bioseguridad: Mascarilla, guantes, mandil

Instrumental

• Placas Petri

• Tubos de ensayo

• Mechero

• Varilla de vidrio

• Gradilla

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33

• Pipetas

• Calibrador Vernier

Reactivos y muestras

• Extracto alcohólico al 75%

• Aceite esencial Daucus carota en emulsión de 25%, 50% y 75%

• Amoxicilina

• Agua destilada

• Agar sangre desfibrinada de cordero al 5%

• Agar Muller Hinton

• Alcohol antiséptico

• Cepa liofilizada de Streptococcus mutans ATCC 25175

2.1.4.5. Pruebas microbiológicas.

Se procede al cultivo de las cepas de Streptococcus mutans ATCC 25175 en

tubos de ensayo con tapa rosca que contienen el medio Soya Tripticasa,

procediéndose a incubarlos a 37°C y así de esta manera obtener colonias

jóvenes. Al cumplirse las 24 horas de cultivadas se agrega solución salina

estéril, hasta obtener una turbidez semejante al tubo número 1 de la escala de

Mac Farland. Es recomendable tratar de girar entre las manos los tubos que

contienen a la bacteria estudiada antes de proceder al sembrado, para distribuir

los microorganismos adecuadamente.

Para el método de difusión en disco, se sembró masivamente por triplicado las

cepas diluidas sobre el agar y los discos fueron colocados en la superficie,

impregnados con 0,2 mL de cada una de las diluciones de los aceites

esenciales y extractos (al 25%, 50%, 75% y 100%) usando agua destilada

como control negativo y Amoxicilina como control positivo. Se incubó a 37 ° C,

por 24 horas. El diámetro del halo de inhibición del crecimiento de los

microorganismos fue medido para realizar el cálculo del porcentaje del efecto

inhibitorio relativo respecto al control positivo, utilizando para esto la siguiente

expresión (36).

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34

% 𝐸𝑓𝑒𝑐𝑡𝑜 𝐼𝑛ℎ𝑖𝑏𝑖𝑡𝑜𝑟𝑖𝑜 =𝑀𝑎𝑑𝑖𝑎 𝑑𝑖á𝑚𝑒𝑡𝑟𝑜 ℎ𝑎𝑙𝑜 𝑑𝑒 𝑖𝑛ℎ𝑖𝑏𝑖𝑐𝑖ó𝑛

𝐷𝑖á𝑚𝑒𝑡𝑟𝑜 ℎ𝑎𝑙𝑜 𝑑𝑒 𝑖𝑛ℎ𝑖𝑏𝑖𝑐𝑖ó𝑛 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙 𝑝𝑜𝑠𝑖𝑡𝑖𝑣𝑜 𝑋 100

2.1.4.6. Diluciones del aceite esencial y extracto etanólico

Se realizaron las diluciones para el aceite esencial y extracto etanólico al 25%,

50%, 75% y 100%, aplicando la siguiente ecuación:

V1C1=V2C2

Tabla 1. Diluciones de Extracto etanólico de zanahoria (Daucus Carota)

ACEITE ESENCIAL/EXTRACTO

ETANOLICO

Volumen inicial mL

DILUCION

%

VOLUMEN DE DILUCIÓN

Ml

33.33 mL 25 8.33 mL

33.33 mL 50 16.66 mL

33.33 mL 75 24.99 mL

33.33mL 100 33.33 L

2.1.5. Conclusiones del capítulo.

1. La destilación por arrastre de vapor demuestra ser un método eficiente

dando como resultado un aceite esencial de alta pureza.

2. El etanol es un solvente muy utilizado, permitiendo la extracción de

sustancias de todas las polaridades, además resulta estable (poco

reactivo), se evapora fácilmente y no es caro.

3. El extracto etanólico de zanahoria por ser polar, favorecerá la

preparación de las diluciones para el procedimiento microbiológico.

4. El extracto etanólico será el vehículo de los polifenoles totales presentes

en la muestra.

5. La técnica de difusión de disco permite realizar una evaluación

microbiológica cuantitativa y puede jerarquizar la efectividad de un

producto antimicrobiano.

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35

CAPÍTULO III. MARCO PROPOSITIVO

ESTUDIO ETNOFARMACOLÓGICO DE PLANTAS MEDICINALES

Las zanahorias se pueden consumir de muy diversas formas, Es un alimento

excelente desde el punto de vista nutricional gracias a su contenido en

vitaminas y minerales. El presente estudio etnofarmacológico fue realizado en

el sector Bastión Popular de la ciudad de Guayaquil. La muestra de

encuestados es de 96 personas se ubica en un grupo etareo que comprende

las edades de 30 a 60 años de edad, que incluyeron madres de familia y

abuelas, conocedores del uso ancestral de plantas para tratar dolencias.

GRAFICO 1. ¿CONOCE UD ALGUNA(S) PLANTA(S) UTILIZADA (S) CON

FINES MEDICINALES?

Fuente: Encuesta Etnofarmacologica Elaborado por el Autor

De acuerdo a la información recabada en una muestra de 96 personas

encuestadas, se pudo establecer que existe un grupo de alrededor de nueve

plantas de amplio uso por sus propiedades terapéuticas.

Así mismo, en la tabla del uso de la planta medicinal que se encuentra a

continuación se aprecia que la Zanahoria es una de las plantas cuya raíz se

usa para tratamientos direccionados a mejorar el cutis, en caso de que en el

rostro se presenten lesiones por acné, patología que suele estar asociada con

infecciones microbianas.

0102030405060708090

100

PLANTAS MEDICINALES

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36

Tabla 2. ¿LA (S) HA UTILIZADO UD ALGUNA VEZ? ¿PARA QUÉ?

PLANTA

MEDICINAL

SI/NO INDICACIÓN

ALBAHACA SI CÓLICO MENSTRUAL, INFLAMACION VIENTRE

COLA DE CABALLO

SI CISTITIS, CÁLCULO RENAL

ESTEVIA SI ENDULZANTE NATURAL, DIABETES

EUCALIPTO SI BRONQUITIS, PROBLEMAS RESPIRATORIOS

HIERBA BUENA SI CÓLICO MENSTRUAL, NERVIOS

LLANTÉN SI CISTITIS

MANZANILLA SI DOLOR ESTÓMAGO, INFLAMACIÓN, INSONMIO

ORÉGANO SI CÓLICO DE GASES

PELUSA DE CHOCLO

SI CISTITIS, CÁLCULOS RENALES

ROMERO SI CAIDA DE CABELLO, PROBLEMAS DIGESTIVOS

RUDA SI DESINFLAMATORIO, CÓLICOS DE GASES, INFECCIONES

SÁBILA SI QUEMADURAS, CÁNCER

VETERABA SI ANEMIA

ZANAHORIA SI PROBLEMAS DE VISIÓN, PIEL, ACNÉ

Fuente. Autor

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37

Evaluación cuantitativa de la diversidad de especies.

• Índice de valor de uso (IVU)

La fórmula es la siguiente:

𝑉𝑈𝑖𝑠 =𝛴𝑈𝑖𝑠

𝑁𝑖𝑠

𝑉𝑈𝑖𝑠 =3

96= 0.03

• Nivel de uso significativo (UST)

𝐔𝐒𝐓 = 𝐔𝐬𝐨𝐄𝐬𝐩𝐞𝐜𝐢𝐞(𝐬) 𝟏𝟎𝟎 /𝐍𝐢𝐬

UST= 48* 100/96

UST= 50

Aplicada las ecuaciones del muestreo de una población se obtuvo el 96, el

índice de valor de uso dio 0,03% y un nivel de usó significativo de 50 %. Estos

resultados determinan que la zanahoria está óptimo como muestra para

continuar con los estudios de sus metabolitos secundarios y cumple con la

aceptación cultural para ser utilizado como tratamiento en los problemas de

salud en la población.

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38

TABLA 3. INFORMACIÓN ETNOFARMACOLÓGICA DE ZANAHORIA

ZANAHORIA Daucus carota

¿Quién se

la indicó o

sugirió su

uso?

¿En qué

forma la ha

utilizado?

(Modo de

Uso)

Parte

Utilizada

¿Cómo la

preparó?

¿Dónde

encuentra

Ud. las

plantas?

¿Durante qué tiempo

la utilizó? (Duración

del tratamiento)

¿Qué

resultado

obtuvo

con su

empleo?

¿La ha

consumido

sola o

conjuntamen-

te con otras

sustancias?

¿Conoce Ud si esa

planta se ha

estudiado

científicamente?

SI …..( 83)

No …( 13)

¿Por qué vía llegó la

información de

dicho(s) estudio (s)?

¿Conoce

alguna

precaución

que

debe

tomarse

durante

el

tratamiento?

¿En qué

personas

las ha

usado?

Familiares Mascarilla

(acné)

Alimento

crudo y

cocido

Raíz,

sin piel

Como

mascarilla y

aplicar en

rostro por 20

minutos.

Como

ensaladas

crudas o

cocidas,

sopas, arroz

Compra.

En tienda

de

abastos y

mercados

Un

día

Menos

de una

semana

Un

mes

Mejoró Sola. televisión

Internet,

con

ayuda de

terceros

No

exponerse al

sol

En

Niños

Adultos

Ancianos

96 48

96

96 48

96

96 40 35 21 40 96 65 18 45 96

96

96

Fuente. Encuesta Etnofarmacològica Elaborado por: Paul Tumbaco L.

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39

De la información recabada en la tabla se puede apreciar que la zanahoria

forma parte de la medicina natural en Ecuador, pero es obvio que aún es bajo

su uso como un antimicrobiano que ayude al control de las lesiones causadas

por acné. Es de fácil adquisición en los centros de abastos, además, el tiempo

que duró el tratamiento es amplio, desde un día hasta un mes, pero en todos

los casos se apreció mejora de la condición, pero no cura total. No se

consumió ni aplicó ningún tratamiento conjunto.

La información es trasmitida de generación en generación, aunque los

encuestados afirman que en los tiempos actuales se ha formalizado dicha

información con estudios científicos de los cuales han tenido conocimiento por

medio de informes en programas de Televisión, y otros por medio de Internet,

con ayuda de terceras personas en el manejo de la tecnología.

El uso de la zanahoria como medicina natural varía según su indicación, ya sea

para tratar afecciones de la piel, donde prevalece su uso en adolescentes;

mientras que en el caso de proveedor de Vitamina A, el consumo es general.

3.1. ANÁLISIS DE RESULTADOS MICROBIOLÓGICOS.

Se determinó el efecto inhibidor del aceite esencial y extracto etanólico de

Daucus Carota al 25%,50%,75% y 100%, sobre el crecimiento in vitro de

Streptococcus Mutans, realizando un análisis estadístico de los datos mediante

la aplicación de a prueba estadística de ANOVA de dos vías (two way-ANOVA)

Por cada dilución bacteriana de Streptococcus mutans se utilizaron 3 placas de

agar Mueller Hinton con sangre desfibrinada de oveja al 5%, se aplicaron los

discos previamente impregnado con el aceite esencial y extracto etanólico de

Daucus Carota, para una posterior incubación a temperatura de 37 ° C. A las

18 horas se leyeron los halos de inhibición, verificándose el nivel de inhibición

de la cepa de Streptococcus mutans con el aceite y el extracto al 25%, 50%,

75% y 100%. La determinación de los intervalos en milímetro de los halos de

inhibición de crecimiento de microorganismos fue determinada por medio la

escala de Duraffourd que demuestra la sensibilidad de la bacteria frente al

aceite esencial y extracto etanólico.

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40

Tabla 4. Escala de Durafford

Nula si es inferior a 8 mm

Sensible de 8 - 14 mm

Sensibilidad mediana de 14 - 20 mm

Sumamente sensible superior a 20

mm

Realizándose así las siguientes tablas correspondientes al aceite esencial y

extracto etanólico de Daucus Carota.

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41

Tabla 5. Promedios de halos de inhibición del S mutans frente al aceite esencial de Daucus carota

HALOS DE INHIBICIÓN (mm)

TOTAL

PROMEDIO

MÍNIMO

MÁXIMO

MEDIANA

DESVIACIÓN

ESTÁNDAR CONCENTRACIÓN % P1 P2 P3

CONTROL

BLANCO

CONTROL

POSITIVO

25 7 6 6 0 16 19 6,33 6 7 6 0,577

50 9 7 7 0 16 23 7,67 7 9 7 1,155

75 11 9 10 0 16 30 10,00 9 11 10 1,000

100 12 10 12 0 16 34 11,33 10 12 12 1,155

En la tabla 5 se muestra la media de los resultados obtenidos de halos de inhibición para Streptococcus mutans frente a Daucus

carota se obtiene como promedio los halos de inhibición correspondientes a las concentraciones de 6.33mm (25%), 7.67mm

(50%), 10mm (75%) y 11.33mm (100%), por lo que su desviación estándar se conservó en 0.557 al 25%, 1.155 al 50%, 1 al 75% y

1.155 al 100%.

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42

Tabla 6. Promedios de halos de inhibición del S mutans frente al extracto alcohólico de Daucus carota

HALOS DE INHIBICIÓN

(mm)

TOTAL

PROMEDIO

MÍNIMO

MÁXIMO

MEDIANA

DESVIACIÓN

ESTÁNDAR CONCENTRACIÓN % P1 P2 P3

CONTROL

BLANCO

CONTROL

POSITIVO

25 8 7 7 0 16 22 7,33 7 8 7 0,577

50 10 8 8 0 16 26 8,67 8 10 8 1,155

75 12 10 11 0 16 33 11,00 10 12 11 1,000

100 13 11 13 0 16 37 12,33 11 13 13 1,155

En la tabla 6 se muestra la media de los resultados obtenidos de halos de inhibición para Streptococcus mutans, frente al extracto

alcohólico de Daucus carota se obtiene como promedio 7.33mm (25%), 8.67mm (50%), 11mm (75%) y 12.33mm (100%), Por lo

que su desviación estándar se conservó en 0.557 al 25%, 1.155 al 50%, 1 al 75% y 1.155 al 100%.

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43

Tabla 7. Comparación de control positivo versus los tratamientos con las

distintas diluciones del aceite esencial.

Bonferroni's multiple

comparisons test

Mean

Diff,

95,00% CI of

diff,

Adjusted P

Value

Control (Amoxicilina) vs. T1 (25%) 9,333 6,025 to 12,64 0,0064

Control (Amoxicilina) vs. T2 (50%) 8 2,27 to 13,73 0,0258

Control (Amoxicilina) vs. T3 (75%) 5,667 2,358 to 8,975 0,0172

Control (Amoxicilina) vs. T4

(100%) 4,333 1,025 to 7,642 0,0293

Control (Amoxicilina) vs. Blanco 15,39 12,08 to 18,7 0,0023

En este análisis se buscó comparar el control positivo (amoxicilina); frente a las

distintas diluciones del aceite esencial (25%,50%, 75% y 100%), con el

propósito de evaluar si existe diferencia estadística. El análisis estadístico

llevado a cabo a partir de los datos obtenidos en la experimentación in vitro se

muestra en la tabla 7. Determina que existe diferencia estadística al 25% y en

blanco con valor de p <0,0023.

Tabla 8. Comparación de efectos entre todos los tratamientos empleados en

los ensayos experimentales.

Tukey's multiple comparisons

test

Mean

Diff,

95,00% CI of

diff,

Adjusted P

Value

Control (Amoxicilina) vs. T1

(25%) 9,333 9,193 to 9,474 <0,0001

Control (Amoxicilina) vs. T2

(50%) 8 7,859 to 8,141 <0,0001

Control (Amoxicilina) vs. T3

(75%) 5,667 5,526 to 5,807 <0,0001

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44

Control (Amoxicilina) vs. T4

(100%) 4,333 4,193 to 4,474 <0,0001

T1 (25%) vs. T2 (50%) -1,333 -1,474 to -

1,193 <0,0001

T1 (25%) vs. T3 (75%) -3,667 -3,807 to -

3,526 <0,0001

T1 (25%) vs. T4 (100%) -5 -5,141 to -

4,859 <0,0001

T2 (50%) vs. T3 (75%) -2,333 -2,474 to -

2,193 <0,0001

T2 (50%) vs. T4 (100%) -3,667 -3,807 to -

3,526 <0,0001

T3 (75%) vs. T4 (100%) -1,333 -1,474 to -

1,193 <0,0001

Se buscó comparar las diferencias entre cada uno de los tratamientos

aplicados en los ensayos experimentales. Los resultados de este análisis se

pueden observar en la tabla 8, del mismo modo fue observada esa

significancia estadística con el p<0.001.

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45

Gráfico 2. Muestra el efecto de los distintos tratamientos empleados y la

significancia estadística encontrada a partir de los análisis.

En el grafico 2 se concluye indicando que el aceite esencial de Daucus carota

en sus diferentes concentraciones, los halos de inhibición de crecimiento no

son mayores al control positivo. Acorde a la escala de Duraffourd el aceite

esencial en sus concentraciones 25% y 50 % presentaron sensibilidad nula; y

en las concentraciones al 75% y 100% resultaron ser sensibles para las cepas

de Streptococcus mutans.

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46

Tabla 9. Comparación de control positivo versus los tratamientos con las

distintas diluciones del extracto etanólico

Bonferroni's multiple comparisons

test

Mean

Diff,

95,00% CI of

diff,

Adjusted P

Value

Control (Amoxicilina) vs. T1 (25%) 8,417 5,435 to 11,4 0,0064

Control (Amoxicilina) vs. T2 (50%) 7 1,27 to 12,73 0,0337

Control (Amoxicilina) vs. T3 (75%) 4,667 1,358 to 7,975 0,0253

Control (Amoxicilina) vs. T4 (100%) 3,333 0,02505 to 6,642 0,0493

Control (Amoxicilina) vs. Blanco 15,39 12,08 to 18,7 0,0023

Por otra parte, en este análisis se buscó comparar el control positivo

(amoxicilina); frente a las distintas diluciones del extracto etanólico (25%,50%,

75% y 100%), con el propósito de evaluar si existe diferencia estadística o

similitudes. El análisis estadístico llevado a cabo a partir de los datos obtenidos

en la experimentación in vitro se muestra en la tabla 9. Determina que existe

diferencia estadística al 25% y en blanco con valor de p <0,0023.

Tabla 10. Comparación de efectos entre todos los tratamientos empleados en

los ensayos experimentales.

Tukey's multiple comparisons test Mean Diff, 95,00% CI of diff, Adjusted P Value

Control (Amoxicilina) vs. T1 (25%) 8,417 8,213 to 8,62 <0,0001

Control (Amoxicilina) vs. T2 (50%) 7 6,797 to 7,203 <0,0001

Control (Amoxicilina) vs. T3 (75%) 4,667 4,463 to 4,87 <0,0001

Control (Amoxicilina) vs. T4 (100%) 3,333 3,13 to 3,537 <0,0001

T1 (25%) vs. T2 (50%) -1,417 -1,62 to -1,213 <0,0001

T1 (25%) vs. T3 (75%) -3,75 -3,953 to -3,547 <0,0001

T1 (25%) vs. T4 (100%) -5,083 -5,287 to -4,88 <0,0001

T2 (50%) vs. T3 (75%) -2,333 -2,537 to -2,13 <0,0001

T2 (50%) vs. T4 (100%) -3,667 -3,87 to -3,463 <0,0001

T3 (75%) vs. T4 (100%) -1,333 -1,537 to -1,13 <0,0001

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47

Mediante ensayos posteriores se buscó comparar las diferencias entre cada

uno de los tratamientos aplicados en los ensayos experimentales. Los

resultados de este análisis se pueden observar en la tabla 10, del mismo modo

fue observada esa significancia estadística con el p<0.001.

Gráfico 3. Muestra el efecto de los distintos tratamientos empleados y la

significancia estadística encontrada a partir de los análisis.

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48

En el gráfico 3 se concluye indicando que el extracto Etanólico de Daucus

carota en sus diferentes concentraciones, los halos de inhibición de crecimiento

no son mayores al control positivo. Acorde a la escala de Duraffourd el extracto

etanólico en sus concentraciones 25% presentaron sensibilidad nula; y en las

concentraciones al 50%,75% y 100% resultaron ser sensibles para las cepas

de Streptococcus mutans.

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49

3.2. Conclusiones del capítulo

1. De acuerdo al estudio etnofarmacológico se concluye que el nivel de uso

significativo fue del 50 % en la zanahoria (Daucus carota) y un índice de

valor de uso de 0,03%, lo cual cumple con aceptación cultural para ser

utilizado como tratamiento en los problemas de salud en la población.

2. La presente investigación demostró que el Daucus carota presenta alto

contenido de fenoles y flavonoides con valioso poder antioxidante, cuyas

propiedades medicinales son desconocidas en la población.

3. Las concentraciones al 100% de aceite esencial y extracto etanólico

presentaron un mayor halo de inhibición, obteniéndose valores de 11,33

mm y 12,33 mm respectivamente.

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50

CONCLUSIONES GENERALES

• La presente encuesta fue aplicada en la ciudad de Guayaquil en el

sector de Bastión popular con una población de 2450 personas, dando

como resultado un tamaño de muestra de 96 personas, sobre el uso de

plantas medicinales. Entre ellas, Daucus carota obtuvo un nivel de uso

significativo del 50 % y un índice de valor de uso igual a 0.03%, lo cual

cumple con la aceptación cultural para ser utilizado como tratamiento en

los problemas de salud en la población.

• La zanahoria dentro de los parámetros físicos químicos es abundante en

alcaloides, carbohidratos, ácido clorogénico, flavonoides, fenoles,

aceites esenciales, terpenoides y cumarina.

• Acorde a la escala de Duraffourd el aceite esencial es sus

concentraciones al 25% y 50%; y el extracto etanólico en su

concentración al 25% presentaron sensibilidad nula para la cepa

Streptococcus mutans.

• De acuerdo a la escala de Duraffourd el aceite esencial al 75% y 100%,

y el extracto etanólico al 50%, 75% y 100% resultaron ser sensibles para

la cepa de Streptococcus mutans.

• Los efectos antimicrobianos sobre Streptococcus mutans presentados

tienen orígenes diferentes, por un lado, el aceite esencial de la

zanahoria debe su comportamiento a los terpenoides, mientras que el

extracto etanólico debe su actividad antimicrobiana a los polifenoles.

• El análisis estadístico ANOVA determinó que existen diferencias

significativas entre los valores promedio de los halos de inhibición, con

un valor de P= ˂0.0001 para el extracto y el aceite esencial, por lo tanto,

se confirma que el aceite esencial y extracto etanólico de Daucus carota

a diferentes concentraciones tiene efecto antimicrobiano frente al

Streptococcus mutans.

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51

RECOMENDACIONES

1. Realizar una valoración completa de los compuestos presentes tanto en

el aceite esencial como el extracto etanólico de zanahoria

2. Determinar las moléculas de activo comportamiento antimicrobiano

3. Realizar un estudio comparativo de la efectividad antimicrobiana de

otros extractos, por ejemplo, acuoso y metanólico.

4. Determinar las concentraciones tolerantes en un fitofármaco para

humanos.

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ANEXOS

Anexo 1. CUESTIONARIO ETNOFARMACOLÓGICO

La Universidad Regional Autónoma de los Andes (UNIANDES), se encuentra

desarrollando un proceso de investigación sobre el uso tradicional de las

plantas medicinales por la población ecuatoriana, es por ello que, teniendo en

cuenta la experiencia acumulada por usted al respecto le solicitamos su valiosa

cooperación, la cual se materializará llenando el siguiente cuestionario.

1.- ¿Conoce Ud. alguna(s) planta(s) utilizada(s) con fines medicinales?

Si: __ No: __ ¿Cuáles? _________________, _______________,

_________________

__________________, ______________________, _________________,

___________________,

2.- ¿La(s) ha utilizado Ud. alguna vez? ¿Para qué? (Indicación) Si: __ No:

__

Nombre de la Planta Indicación o Uso

a) a)

b) b)

c) c)

d) d)

3.- ¿Quién se la indicó o le sugirió su uso?

a) Médico___ b) Curandero ___ c) Familiares ___ d) Vecinos o amigos ___

4.- ¿En qué forma la ha utilizado? (Modo de uso)

a) ___Infusión b) ___Cocimiento c) ___Planta cruda d)

___Otra forma ¿Cuál? ________________________

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5.- ¿Cómo la preparó? (Describa el modo de preparación del remedio

especificando la parte de la planta empleada: hojas, tallo, raíces, flores,

frutos.

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________

__________________________________

6.- ¿Dónde encuentra Ud. las plantas?

a) ___ El patio b) ___ Fuera de la casa c) ___ Las compra.

¿Dispone de un ejemplar a su alcance? Si: ___ No ___ (Recolectar

muestra).

7.- ¿Durante qué tiempo la utilizó? (Duración del tratamiento)

a) ___ Un día b) ___ Menos de una semana c) ___ Más de una semana

d) ___ Un mes e) ___ Varios meses f) ___ Un año g) ___ Más de un año

8.- ¿Qué resultados obtuvo con su empleo?

a) ___ Mejoró b) ___ No mejoró c) ____ Empeoró

9.- ¿La ha consumido sola o conjuntamente con otras sustancias? En el

caso de que la haya consumido con otras sustancias responda:

Con medicamentos ¿cuáles? __________________, ___________________,

__________________

Con otras plantas medicinales ¿cuáles? _______________,

________________, _______________

10.- ¿Conoce Ud si esa planta se ha estudiado científicamente? Si: __ No:

__

¿Por qué vía le llegó la información de dicho(s) estudios (s)?

a) ___La radio b) ___T.V c) ___ Libros, revista, periódico d) ___ Internet

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11.- ¿Conoce alguna precaución que debe tomarse durante el

tratamiento? (Contraindicaciones) Si: ___ No: ___ ¿Cuál

(s)?______________, _____________, _____________

12.- En qué personas las ha usado:

En niños: ___

En adultos: ___

En ancianos: ___

OBSERVACIONES:

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ANEXO 2

Caracterización Botánica De La Zanahoria

Fuente: Universidad de Guayaquil Facultad de Ciencias Naturales Elaborado por : el autor

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Fuente: Universidad de Guayaquil Facultad de Ciencias Naturales Elaborado por: el autor

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ANEXO 3

Certificación Extracto Etanólico De Zanahoria

Fuente: Laboratorios UBA Elaborado por: el autor