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UNIVERSIDAD TÉCNICA PARTICULAR DE LOJA La Universidad Católica de Loja MAESTRÍA EN GERENCIA DE SALUD PARA EL DESARROLLO LOCAL “Fortalecimiento de la gestión del laboratorio clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga 2012” Tesis de grado Autor: Herrera Cuenca, Wilma Piedad Directora: Buele Maldonado,Norita Angelita,Dra. CENTRO UNIVERSITARIO LOJA 2013
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UNIVERSIDAD TÉCNICA PARTICULAR DE LOJA La Universidad Católica de Loja
MAESTRÍA EN GERENCIA DE SALUD
PARA EL DESARROLLO LOCAL
“Fortalecimiento de la gestión del laboratorio clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga 2012”
Tesis de grado
Autor:
Herrera Cuenca, Wilma Piedad
Directora:
Buele Maldonado,Norita Angelita,Dra.
CENTRO UNIVERSITARIO LOJA
2013
ii
Certificación
Doctora.
Norita Angelita Buele Maldonado.
DIRECTORA DE TESIS DE GRADO
C E R T I F I C A:
Que el presente trabajo, denominado: “Fortalecimiento de la gestión del laboratorio
clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga 2012” realizado por
la profesional en formación: Herrera Cuenca Wilma Piedad; cumple con los
requisitos establecidos en las normas generales para la graduación en la universidad
Técnica Particular de Loja, tanto en el aspecto de forma como de contenido, por lo
cual me permito autorizar su presentación para los fines pertinentes.
Loja, febrero de 2013
f)…………………………………………………….
iii
Cesión de derechos
“Yo, Wilma Piedad Herrera Cuenca. declaro ser autor (a) de la presente tesis y
eximo expresamente a la Universidad Técnica Particular de Loja y a sus
representantes legales de posibles reclamos o acciones legales.
Adicionalmente declaro conocer y aceptar la disposición del Art 67 del Estatuto
Orgánico de la Universidad Técnica Particular de Loja, que en su parte pertinente
textualmente dice: Forman parte del patrimonio de la Universidad la propiedad
intelectual de investigaciones, trabajos científicos o técnicos y tesis de grado que se
realicen a través, o con el apoyo financiero, académico o institucional (operativo) de
la Universidad”
Firma……………………………….
Autor: Herrera Cuenca Wilma Piedad
Cedula 1102945480
iv
Dedicatoria
Con todo cariño a mis hijas a mi esposo y a mi madre por el apoyo incondicional en
la realización de este trabajo y todos y cada uno de quienes han hecho posible
cumplir con una meta trazada en mi vida muchas gracias a todos.
La Autora
v
AGRADECIMIENTO
Expreso mi más sincero agradecimiento al personal docente y administrativo del
Programa de Maestría en Gerencia de Salud para el desarrollo local de la
Universidad Técnica Particular de Loja, por compartir sus experiencias y brindarme
la oportunidad de capacitarmeprofesionalmente.
De manera muy especial a la Dra. Norita Buele Maldonado, docente y amiga, porsu
constante estímulo, su incondicional apoyo hacia la realización del presente trabajo.
Al Personal operativo de Salud, administrativo y de servicios de la Unidad de
Atención Ambulatoria del IESS Cariamanga por todo su incondicional apoyo.
A los usuarios que acuden a la prestación de servicios de la UAA Cariamanga por su
buena voluntad para participar, colaborar y apoyar el desarrollo del presente trabajo.
La capacitación adecuada que obtuvieron fue la motivación principal de este
proyecto.
A las personas que me apoyaron directa o indirectamente en la realización de este
trabajo, a mi familia por su motivación permanente y su colaboración inquebrantable
en la investigación, transcripción y diseño que posibilitó la mejor realización de este
trabajo.
vi
INDICE DE CONTENIDOS
Preliminares páginas.
Portada: I
Certificación: II
Autoría: III
Cesión de Derecho: IV
Dedicatoria: V
Agradecimiento: VI
Índice VII
Resumen: VIII
Abstract: IX
Introducción 1
Problematización: 2
Justificación 4
Objetivos: 5
Marco Teórico: 6
Diseño Metodológico: 20
Resultados: 28
Conclusiones: 41
Recomendaciones. 42
Bibliografía: 43
vii
Anexos: 46
viii
RESUMEN EJECUTIVO
El presente proyecto de gestión fue desarrollado en la Unidad de Atención
Ambulatoria del IESSCariamanga (UAAC), ubicada en la ciudad del mismo nombre
Cantón Calvas, Provincia de Loja. La Unidad presta servicios de Atención Primaria
en Salud a la población adscrita del IESS que es de 6643 afiliados, de los cuales
un 80 % acuden a realizarse exámenes de rutina para el control y tratamiento de
sus patologías.
Para cumplir con la intención se realizó un proyecto de intervención con la
metodología del marco lógico que constituye una herramienta dinámica para diseñar,
ejecutary evaluar los resultados obtenidos; cuyo propósito fue implementar un
programa de fortalecimiento de gestión para el laboratorio clínico de la UAA-
Cariamanga.
Se obtuvieron los siguientes resultados:
En cuanto a la implementación de normas de bioseguridad se logró establecer en un
100% además se motivó al equipo de salud en su cuidado personal; en la
capacitación del paciente previo a un examen de laboratorio se obtuvo
satisfactoriamente más del porcentaje planteado y en el diseño e implementación de
procesos gerenciales se pudo alcanzar el 100%.
ix
1. ABSTRACT
This management project was developed in the Unidad de Atenciòn
Ambulatoria IESS Cariamanga (UAAC), Canton Calvas, and Loja Provincia.
The unit provides services of Primary Healthcare to the enrolled members, of
6643 people, of which approximately 80% attend regularly routine exams to
control and treat illnesses.
To achieve the goal of this project through the following methodof intervention
which uses tools which are designed to help implement and evaluate the
results obtained. The purpose was to implement a program to strengthen the
management of the laboratorio clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria
Cariamanga.
The following results were obtained:The implementation of bio-safety
standards it was established by 100% and this motivated the medical team to
use equipment and uniforms to protect themselves from infections; as a result
of the training of the patients prior to a laboratory exams there was an
increased level of uncontaminated results more than expected and in the
design and the implementation of the processes , higher percentage in the
design and implementation of management processes could result reaching
100%.
1
2. INTRODUCCIÓN
Los avances tecnológicos, científicos y académicos que ocurren a nivel mundial,
representan un desafío y merecen especial atención desde el punto de vista
profesional. Dichos avances pretenden lograr objetivos claros en el desarrollo de
estrategias orientadas al progreso.
La tendencia a nivel mundial es que los laboratorios clínicos implanten un sistema de
gestión de calidad que les permitan garantizar la confiabilidad de sus resultados.
Esto requiere que los profesionales de la salud se familiaricen con los conceptos
relacionados con los sistemas de gestión de la calidad, y reconozcan que el
establecimiento de los programas de garantía de calidad, cuyo objetivos principal es
la obtención de resultados fidedignos y oportunos, deben ser considerados por la
importancia que tienen para lograr una eficiente prestación de servicios a la
comunidad.
El Laboratorio clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga
representa un apoyo primordial para el área médica, ya que a través de los análisis
se pueden diagnosticar diferentes patologías y establecer el tipo de tratamiento que
se debe administrar al paciente. Es por eso, que conscientes de la gran importancia
y con la finalidad de alcanzar un trabajo de calidad, es indispensable contar con un
manual que presente de manera formal y sistemática los procedimientos básicos de
un laboratorio clínico.
En el seno de los servicios de salud los profesionales nos esforzamos diariamente
por superar con existo el reto de cada día para satisfacer las necesidades de
atención de los pacientes utilizando recursos que siempre resultan escasos. La
necesidad de contar con métodos que lleven a una optimización de los recursos y a
una mejora continua de la calidad de los servicios a determinado en los últimos
años la aparición de nuevos paradigmas que se enmarcan en diferentes modelos
de gestión de la calidad y puede definirse como la utilización adecuada de los
recursos para mejorar la atención de los pacientes en un establecimiento de primer
nivel de atención en salud.
2
3. PROBLEMATIZACIÓN
El laboratorio clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga es un
departamento que realiza análisis clínicos para satisfacer la demanda de la
población adscrita, que de acuerdo a la C.D 308 es de 6643 habitantes, cifra que
se incrementa notablemente con la ampliación que se da a los menores de 18 años,
cónyuges y seguro social campesino.
Esta realidad hace que en años recientes la capacidad de atención de este
departamento se encuentre desbordada, debido entre otras causas, a la inexistencia
de una normativa que regule el funcionamiento del mismo, y que sea de
conocimiento de todos quienes laboramos en esta unidad y de los usuarios. Al no
existir horarios establecidos los usuarios se presentan a cualquier hora
interrumpiendo el normal funcionamiento de los procesos que se realizan en este
departamento dando como resultado pérdida de tiempo de insumos y materiales. En
cuanto a las muestras de orina y heces estas no son tomadas con las medidas
adecuadas ya que un examen no solo depende de un procedimiento analítico
correcto sino también de una correcta toma de muestra. También se agudiza el
problema con los pacientes del Seguro Social Campesino por no haber sido bien
informados por su médico en cuanto a la documentación que debe de presentar
para poderse realizar los exámenes, dando como resultado malestar en los usuarios
al no ser atendidos pese al esfuerzo que realizaron en trasladarse de lugares tan
apartados a nuestra Unidad de Salud, representándoles pérdida de tiempo y dinero.
A lo anterior se suma la falta de personal de apoyo ya que una sola persona debe
realizar todos los procedimientos, y de forma manual ya que no contamos con
equipos automatizados, esto retrasa la entrega de resultados ocasionando una
disminución de la efectividad y calidad de los análisis que se procesan en este
laboratorio, ante la demanda progresiva de los usuarios, que cada vez va en
aumento, además el centralismo nacional nos estanca con la adquisición de
insumos ya que a nivel local no se puede hacer la obtención de estos productos y
materiales necesarios para la realización de los diferentes procesos que se deben
cumplir en este departamento, dificultando el cumplimiento de las metas y objetivos
propuestos dentro del plan de acción de la unidad, causando retraso en los
tratamientos que los profesionales médicos deben seguir especialmente en
pacientes con enfermedades crónico degenerativas como la diabetes.
3
Los hechos descritos contribuyen a un deterioro de la calidad de prestaciones de
esta Unidad Médica, produciendo malestar tanto en los clientes internos como en los
externos que acuden a nuestra Unidad de Atención en demanda de un servicio
oportuno y de calidad; por tal razón se hace necesario el fortalecimiento de la
gestión de este departamento para mejorar la atención al usuario y satisfacer su
demanda en el cuidado de su salud.
4
4. JUSTIFICACIÓN
La implementación del fortalecimiento de la gestión del laboratorio clínico de la
Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga, va en beneficio de los usuarios
internos y externos, con un impacto positivo en la calidad de prestaciones de esta
Unidad, ya que se lograra cubrir la demanda insatisfecha y establecer normativas y
diseño de procesos que regulen el funcionamiento del Laboratorio Clínico
Con la aplicación de normas y métodos que se implementen tendremos un
laboratorio con cumplimiento de estándares de calidad, lo que mejorará la atención
al paciente, esto evitara que el usuario tenga que realizarse los exámenes en otras
unidades de salud, satisfaciendo su necesidad oportunamente con calidad,
eficiencia, eficacia, esto nos permitirá logar una mejor adecuación de la prestación
de servicios a la demanda de las necesidades de atención de los pacientes.
En el ámbito de los laboratorios de análisis clínicos diversos autores han reconocido
la necesidad de utilizar herramientas que lleven a una optimización de los recursos y
a una mejora progresiva de la calidad de gestión porque permite el desarrollo de
estrategias que puedan conducir al conocimiento de quienes son los clientes, cuáles
son sus necesidades, así como a la identificación de problemas y solucionarlos
eliminando errores en beneficio del laboratorio y de esta manera dar cumplimiento
de las acciones planificadas lo que incidirá positivamente en el mejoramiento de la
calidad de vida de los usuarios y poder lograr así el buen vivir de nuestra comunidad
local, provincial y nacional.
Por lo que es necesaria la ejecución del presente proyecto de acción ya que se
relaciona directamente con el mejoramiento de la calidad de prestaciones de esta
Unidad Médica, así como también en el estado de salud de nuestros usuarios
externos.
5
5. OBJETIVOS
OBJETIVO GENERAL
Mejorar la gestión del Laboratorio Clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria
IESS Cariamanga a través de la ejecución de estrategias organizativo-informativas
para brindar una mejor atención a los usuarios.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS
• Establecer normas para la organización funcional del laboratorio clínico de la
UAA-Cariamanga.
• Capacitar a los usuarios internos y externos en la preparación previa a un
examen de laboratorio.
• Establecer procesos gerenciales para la realización las actividades del
laboratorio de la UAA-Cariamanga.
6
CAPITULO I
6. MARCO TEÓRICO.
7.1 MARCO INSTITUCIONAL
1. Aspecto geográfico del lugar
El cantón Calvas ubicado en el centro sur de la provincia de Loja; limita al norte con
el cantón Paltas, al sur con la república del Perú, al este con los cantones
Gonzanamá, Quilanga y Espíndola; y al oeste con el cantón Sozoranga. Su
extensión territorial es de 1880.7 Km2 con una densidad poblacional de 32.9 Hab. /
Km2; y su altitud media es de 1.932 m/s.n.m. Su población es de 27.604 habitantes
que equivale al 43.2 % del total de la población de la provincia de Loja; de los cuales
10.920 habitan en la zona urbana en las parroquias San Vicente, Chile y
Cariamanga; y 16.684 en la zona rural en las parroquias Colaisaca, El Lucero,
Sanguillin y Utuana. Se caracteriza por ser habitada principalmente en las zonas
alejadas de la cabecera parroquial. Como se evidencia en el cuadro, la población de
Calvas en su mayoría es femenina y rural.
2 Dinámica poblacional
POBLACIÓN DE LOS CANTONES ABSCRITOS A ESTA UNIDAD
POBLACIÓN TOTAL POR SEXO Y CANTONES
CANTONES HOMBRES MUJERES TOTAL
CALVAS 13.950 14.235 28.185
GONZANAMA 6390 6326 12.716
QUILANGA 2221 2116 4.347
ESPINDOLA 7598 7901 14.799
TOTALES 30.159 30.578 60.047
Fuente: VII Censo de Población y VI de Vivienda, INEC 2010
Es importante señalar que en esta área geográfica, al igual que en el resto del país,
en los últimos 10 años debido a la precaria situación económica de sus habitantes,
se ha experimentado una migración tanto interna como externa correspondiente al
30 % de la población, circunstancia que ha generado pérdida de la estructura
7
familiar ocasionando un grave problema social que desencadena un elevado nivel
de violencia social y doméstica, por cambio o pérdida de valores y costumbres.
Al igual que el resto del país, tenemos una pirámide poblacional progresiva,
caracterizada por un predominio de población joven hasta los 24 años, y una
escasa población económicamente activa. Esto debido al fenómeno migratorio de la
última década.
PIRÁMIDE POBLACIONAL DEL CANTÓN CALVAS
% HOMBRES EDADES MUJERES %
0.26% 35 95 y + 56 0.40%
0.35% 48 90- 94 63 0.45%
0.63% 86 85 - 89 101 0.72%
1.22% 165 80 - 84 146 1.04%
1.71% 233 75 - 79 215 1.53%
2.30% 312 70 - 74 307 2.19%
2.97% 404 65 - 69 441 3.14%
3.34% 453 60 - 64 493 3.51%
3.62% 492 55 - 59 418 2.98%
3.92% 533 50 - 54 548 3.91%
4.27% 580 45 - 49 604 4.31%
4.46% 605 40 - 44 662 4.72%
4.60% 625 35 - 39 725 5.17%
4.38% 595 30 - 34 729 5.19%
4.17% 566 25 - 29 700 4.99%
5.44% 740 20 - 24 930 6.63%
11.86% 1611 15 - 19 1472 10.49%
14.24% 1934 10 - 14 1977 14.10%
13.47% 1830 5 – 9 1793 12.79%
12.74% 1731 0 – 4 1646 11.74%
100% 13578 14026 100%
Fuente: análisis situacional de la UAA_Cariamanga (2011)
8
POBLACIÓN DE AFILIADOS AL IESS / UNIDAD DE ATENCION AMBULATORIA
CARIAMANGA
BENEFIC. GRUPO
ETÁREO MASCULINO FEMENINO TOTAL PORCENTAJE
Activos 15 a 65 1100 1016 2116 75%
Voluntarios 15 a 65 116 108 224 8%
Jubilados 60 y + 146 134 280 10%
Montepío 15 a >65 0 140 140 5%
Hijos < de 18 a. 1 a 18 a 42 46 58 2%
Fuente: Estadística de la UAA-Cariamanga (2011).
3 Misión de la institución
La Unidad de Atención Ambulatoria de Cariamanga, protege la salud de la población
afiliada mediante una atención oportuna, eficiente y eficaz. Privilegia el trabajo en
equipo, la actualización, investigación y evaluación co-participativa permanente de
los servicios, a fin de preservar y conservar la vida y la salud de los afiliados.
4 Visión de la institución
Para el año 2015, el IESS Unidad de Atención Ambulatoria de Cariamanga, será una
unidad que brinde Atención Primaria en Salud, con calidad humana, científica y
técnica, respetando la identidad, educación y cultura de sus usuarios. Contará con
personal altamente calificado y recursos suficientes, acorde a sus demandas; con
equipamiento de acuerdo a su nivel de complejidad. Mantendrá adecuada red de
comunicación con otras unidades de mayor nivel y coparticipación permanente entre
usuarios internos y externos, para contribuir al mejoramiento de las condiciones de
vida de la población afiliada y no afiliada de su zona de influencia.
5 Organización administrativa
ORGANIGRAMA ESTRUCTURAL DE LA UNIDAD DE ATENCION
AMBULATORIA DEL IESS CARIAMANGA.
La Unidad de Atención Ambulatoria Cariamanga es un prestador de primer nivel de
atención, debidamente calificado/acreditado por el IESS, y por tanto es la puerta de
entrada obligada a la red plural (prestadores propios y externos) de servicios de
salud de la seguridad social, que es capaz de manejar la mayoría de problemas con
enfoque bio-psico-social y a la vez distribuir los flujos de pacientes a otros niveles de
complejidad cuando se requiera. El primer nivel también se encarga de estimular la
participación social el auto
equipo de salud y los usuarios del sistema.
La estrategia de atención primaria renovada que incluye las prestaciones que
nuestra Unidad ofrece a sus afiliados: promoción y prevenci
recuperación, rehabilitación, cuidados paliativos, en todos los ciclos de vida. El
abordaje es de atención familiar y a la comunidad
administrativa
ORGANIGRAMA ESTRUCTURAL DE LA UNIDAD DE ATENCION
AMBULATORIA DEL IESS CARIAMANGA.
La Unidad de Atención Ambulatoria Cariamanga es un prestador de primer nivel de
atención, debidamente calificado/acreditado por el IESS, y por tanto es la puerta de
entrada obligada a la red plural (prestadores propios y externos) de servicios de
la seguridad social, que es capaz de manejar la mayoría de problemas con
social y a la vez distribuir los flujos de pacientes a otros niveles de
complejidad cuando se requiera. El primer nivel también se encarga de estimular la
ción social el auto-cuidado y la responsabilidad sobre la salud entre el
equipo de salud y los usuarios del sistema.
La estrategia de atención primaria renovada que incluye las prestaciones que
nuestra Unidad ofrece a sus afiliados: promoción y prevenci
recuperación, rehabilitación, cuidados paliativos, en todos los ciclos de vida. El
abordaje es de atención familiar y a la comunidad.
ORGANIGRAMA ESTRUCTURAL DE LA UNIDAD DE ATENCION
La Unidad de Atención Ambulatoria Cariamanga es un prestador de primer nivel de
atención, debidamente calificado/acreditado por el IESS, y por tanto es la puerta de
entrada obligada a la red plural (prestadores propios y externos) de servicios de
la seguridad social, que es capaz de manejar la mayoría de problemas con
social y a la vez distribuir los flujos de pacientes a otros niveles de
complejidad cuando se requiera. El primer nivel también se encarga de estimular la
cuidado y la responsabilidad sobre la salud entre el
La estrategia de atención primaria renovada que incluye las prestaciones que
nuestra Unidad ofrece a sus afiliados: promoción y prevención, curación,
recuperación, rehabilitación, cuidados paliativos, en todos los ciclos de vida. El
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6 Servicios que presta la institución
La Unidad de Atención Ambulatoria oferta los siguientes servicios:
Servicios de Consulta Externa:
- Acciones de promoción de la Salud
- Acciones de prevención de la enfermedad
- Acciones de recuperación de la Salud
Servicios de Enfermería:
- Aplicación de Inyecciones, curaciones y asistencia al personal médico.
- Acciones de post consulta
Servicios de Odontología:
- Consulta Odontológica
- Profilaxis dental –Fluoraciones
- Exodoncias de pieza erupcionada
- Curaciones provisionales
- Restauraciones definitivas con resina y amalgama
- Urgencias odontológicas
- Reparaciones protésicas.
Servicios de Laboratorio:
- Exámenes de sangre
- orina
- heces
- secreciones
- hormonas
- cultivos y antibiogramas.
Servicio de Ecosonografía:
- Ecosonografía en general.
Funciones administrativa
- Gerencia: Directora: gestiona, administra, comunica todo lo concerniente al
accionar de la U. A. Ambulatoria.
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- Asistenta Administrativa: Maneja el área de secretaría, de presupuesto,
pagaduría y otros.
- Auxiliar de Contabilidad: Es la responsable de la contabilidad, consolidación
de costos, facturación y encargada de bodega de esta Unidad Médica.
- Oficinista: Es el responsable de adquisiciones, facturación de fármacos,
estadística, registro de certificados médicos para el pago de subsidios.
- Auxiliar de farmacia que se encarga de la entrega de medicina a los
pacientes.
Ventanilla de información universal
- Historia laboral
- Obtención de claves
- Trámites para prestamos
- Actualización de datos.
- Certificación a jubilados
- Registro de dependientes.
7 Datos estadísticos de cobertura (Estado de salud-enfermedad de la población
Entre las principales causas de morbilidad atendida en el IESS Unidad de Atención
Ambulatoria de Cariamanga, podemos resaltar la presencia predominante de
consultas por enfermedades, tales como la HTA, IRA, DIABETES entre la tres más
incrementadas en el año 2011 además de las otras patologías que a continuación se
representan en el siguiente cuadro.
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PERFIL EPIDEMIOLÓGICO DE LA POBLACIÓN ADSCRITA AL IESS U. A.A.
CARIAMANGA -2011.
PATOLOGÍA FRECUENCIA %
Hipertensión Arterial 1198 23.98
I.R.A. 532 10.65
Diabetes 520 10.41
ITU 476 9.54
Parasitosis 289 5.79
Hiperlipidemias 230 4.61
Vaginosis 196 3.93
Gastritis 117 2.34
Fiebre Reumática 24 0.48
Tricomoniasis 10 0.20
Otros 1402 28.07
TOTAL
4994
100
Fuente de información: Estadística U.A.A. Cariamanga (2011)
7. Características geo-físicas de la institución
La UAAC limita al Norte Barrio la Fragua al Sur con el Barrio Central, al Este con el
Barrio La Fragua; y, a l Oeste con el Barrio La Nube
• Área total del terreno =1.650 m2
• Área de construcción = 516.92 m2
• Antigüedad = 26 años
• Material predominante = Estructura metálica y hormigón.
• Valor monetario estimado = $. 205.560
Fuente de información UAA Cariamanga.
8. Políticas de la Institución
El Seguro de Salud Individual y Familiar (SGSIF) es una de las prestaciones del
IESS, y su misión es la de proteger al asegurado contra las contingencias de
enfermedad y maternidad. La cobertura de esta prestación alcanza al afiliado, su
cónyuge o conviviente con derecho, hijos hasta los menores de 18 años, jubilados,
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beneficiarios de Montepío (viudas y huérfanos con derecho) según el Art. 102 de la
Ley de la Seguridad Social.
La Dirección del Seguro General de Salud Individual y Familiar es el órgano
ejecutivo encargado del aseguramiento colectivo de los afiliados y jubilados contra
las contingencias enunciadas; para el efecto comprará servicios de salud a las
unidades médicas del IESS y otros prestadores públicos y privados, debidamente
acreditados mediante la suscripción de convenio o contratos, cuyo precio será
pagado con cargo al Fondo presupuestario de Salud, de conformidad con las
disposiciones legales vigentes.
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7.2 MARCO CONCEPTUAL
La gestión y Liderazgo van unidos porque el Liderazgo es necesario para una buena
Gestión.
La gestión responde a demandas oportunas dentro de una institución, con el
liderazgo se gana una serie de virtudes personales capaces de crear vínculos con
la gente basadas en la confianza mutua.
La salud debe ser prevención y fomento, fundamentada en la educación, capacitación
continua y permanente a la comunidad tendientes a fortalecer la cultura sanitaria colectiva,
programas de defensa del medio ambiente, seguridad nutricional, agro-alimentaria, salud
mental y recreación deben ser asumidas con prioridad para prevenir comportamientos
patológicos.
En el art. 367. De los principios del Sistema de Seguridad Social, el sistema es
público y universal, no podrá privatizarse y atenderá las necesidades contingentes
de la población. La protección de las contingencias se hará efectiva a través del
seguro universal obligatorio y de sus regímenes especiales(UTPL, 2010).
La resolución CD 308. Es un reglamento para la atención de salud integral y en red
de los asegurados del Instituto Ecuatoriano de Seguridad Social, cuyo objetivo es
regular los procedimientos a seguir para brindar la cobertura efectiva en la atención
de salud.
Art. 22. De las Unidades Operativas del IESS. Las unidades de salud propias de
lESS cumplirán con los requisitos estandarizados acerca de las condiciones de
personal, infraestructura física, equipamiento, procedimientos técnicos y
administrativos establecidos.
Art. 52. Derecho a bienes y servicios de óptima calidad. Las personas tienen
derecho a disponer de bienes y servicios de óptima calidad y a elegirlos con libertad,
así como una información precisa y no engañosa sobre su contenido y
características(UTPL, 2010).
La ley establecerá los mecanismos de control de calidad y los procedimientos de
defensa de las consumidoras y consumidores; y las sanciones por vulneración de
estos derechos, la reparación e indemnización por deficiencias, daños o mala
calidad de bienes y servicios, y por la interrupción de los servicios públicos que no
fuera ocasionada por caso fortuito o fuerza mayor.
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Normas ISO 9000:2000
En 1994 la norma ISO fue objeto de una revisión y surge una nueva edición que en
esencia mantiene las características de la versión de 1987. Ambas versiones hacen
énfasis en la documentación, estandarización y aunque también exigen la mejora, en
la práctica, por lo general, ésta no se daba en la medida que la misma norma lo
planteaba. De esta manera, a finales de 1990 se empieza a preparar una nueva
edición que respondiera a la importancia creciente de la calidad y de las nuevas
prácticas administrativas. Así, la versión 2000 de la ISO 9000 recibe una forma
radical, disminuyendo el énfasis en la documentación y afianzando la necesidad de
la mejora continua y el enfoque al cliente. Las nuevas normas ISO 9000:2000,
cubren, como ya lo hacían desde el año 1994 los requisitos para la implementación
de un sistema de calidad. El propósito central de la familia de normas ISO 9000:2000
es apoyar a las organizaciones de todo tipo y tamaño, en la implementación y
operación de sistemas de gestión de la calidad eficaces.
Lo relevante de esto radica no sólo en la importancia de la calidad, sino que estas
normas se reflejan lo que a juicio de expertos de todo el mundo debe ser un sistema
de administración de calidad. La estructura de las nuevas normas ha cambiado
drásticamente, para reflejar los modernos enfoques de gestión y para mejorar las
prácticas organizativas habituales, aunque se mantienen los requisitos esenciales,
las ISO 9000:2000 están compuestas de 4 normas básicas.
NORMA ESTABLECE.
ISO 9000:2000 Sistemas de gestión de la calidad principios y vocabulario, donde se establece la terminología y definiciones utilizadas
ISO 9001:2000 Los requisitos del sistema de gestión de calidad para su utilización como un medio para asegurar la conformidad de los productos y servicios y puede ser utilizada con fines de certificación.
ISO 9004:2000 Recomendaciones sobre todos los aspectos de un sistema de gestión de calidad, para mejorar las prestaciones globales de una organización.
ISO 1911:2000 Directrices para la auditoría de los sistemas de gestión de la calidad y/o medioambientales
Norma ISO 9001:2000
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ISO 9001:2000 es un sistema de gestión de calidad que establece los métodos para
administrar eficientemente los procesos de operación, de manera que tengan la
capacidad de producir bienes y servicios que satisfagan las necesidades de los
clientes, todo ello de forma documentada que demuestre evidentemente que se
cumple con los requisitos. Este sistema ha sido desarrollado por el comité técnico
ISO/TC 176 de la Organización Internacional de Normalización, que es una
federación mundial de organismos nacionales de normalización por otra parte, la
Norma ISO-9001:2000, con la cual se aspira a mejorar y mantener la calidad de los
servicios, exige que los prestadores de servicios mantengan, actualicen y mejoren
constantemente la calidad otorgada. En ambos casos, los procedimientos que se
realizan deben ser documentados y controlados, con la única excepción de que la
última de estas normas, es más estricta y exigente la norma ISO 9001:2000
especifica los requisitos para los sistemas de gestión de calidad que se aplican a
toda la organización que necesite demostrar su capacidad para proporcionar
productos que cumplan con los requisitos de sus clientes así como los
reglamentarios que sean de aplicación, además de que los objetivos de calidad sean
mesurables y consistentes con la política de calidad. La intención de este
requerimiento es asegurar que la responsabilidad y autoridad sobre las dimensiones
estratégicas del sistema de administración de la calidad se comprendan y
desplieguen en toda la organización, con la participación de la alta
dirección(Gonzalez Ortiz, 2008).
La gestión de la calidad es incrementar el compromiso de la dirección, orientación a
procesos, incluir la satisfacción del cliente y mejora continua. En conclusión, ISO
9000 define las normas de los sistemas de calidad con base en la premisa de ciertas
características genéricas de las prácticas administrativas que se pueden
estandarizar, y que en un sistema de calidad bien diseñado, bien implementado y
administrado con cuidado ofrece la confianza de que los resultados van a cubrir las
necesidades y expectativas de los clientes.
La norma ISO 9001:2000 especifica los requisitos para los sistemas de gestión de
calidad que se aplican a toda la organización que necesite demostrar su capacidad
para proporcionarproductos que cumplan con los requisitos de sus clientes así como
los reglamentarios que seande aplicación, además de que los objetivos de calidad
sean mesurables y consistentes con la política de calidad. La intención de este
17
requerimiento es asegurar que la responsabilidad y autoridad sobre las dimensiones
estratégicas del sistema de administración de la calidad se comprendan y
desplieguen en toda la organización, con la participación de la alta dirección.
Por último cabe mencionar que el objetivo principal es aumentar la satisfacción del
cliente, ya que esta norma aplica cuando se quiere certificar el sistema de calidad de
una organización o para propósitos contractuales.
Resaltando la importancia del enfoque en el cliente, la norma señala: “Las
organizaciones dependen de sus clientes y por lo tanto, deberían comprender las
necesidades actuales y futuras de estos, satisfacer sus requisitos y esforzarse en
exceder sus expectativas”. El significado de este principio es sumamente claro: las
organizaciones se deben a sus clientes, por lo que son el primer elemento en el que
se tiene que basar la gestión de la calidad, ya que de no hacerlo así conduce a
mediano o largo plazo a que éstos se alejen de la organización y con ello su
prestigio y viabilidad se ponga en serios cuestionamientos. Por lo tanto la
organización debe orientar la mejora continua de todos los procesos.
Normas Oficiales de Laboratorio
En la actualidad nos enfrentamos a una sociedad cada vez más informada de lo que
la ciencia médica puede ofrecer, más consciente de sus derechos como usuario y
más deseosa de participar en las decisiones que afectan su salud. Esta sociedad
está también más clara de que la calidad de los servicios de salud está directamente
relacionada con la eficacia de la atención que recibirá. Los laboratorios clínicos en el
mundo no han sido la excepción a esta regla. Sus usuarios (médicos, pacientes,
etc.) no se conforman con la declaración de excelencia que los laboratorios pueden
dar con relación a sus servicios, en la sociedad actual, existen diversos mecanismos
para demostrar al usuario la calidad del laboratorio.
Calidad en el Laboratorio Clínico
En el laboratorio clínico, el concepto de calidad no es nuevo, sin embargo,
muchoslaboratorios no cumplen con la normatividad y los estándares publicados. La
calidad en los laboratorios clínicos puede contribuir de manera importante a mejorar
la salud de la población.
18
El desarrollo científico y tecnológico de la medicina de laboratorio durante las tres
últimas décadas, ha provocado que la importancia de los resultados analíticos haya
crecido en forma constante en todo el mundo, generando retos que se deben
resolver no sólo desde la perspectiva tecnológica y económica sino sobre todo
desde el punto de vista humano.
Las decisiones del diagnóstico, pronóstico y tratamiento se basan con frecuencia en
los resultados y las interpretaciones de las pruebas de laboratorio, por lo que es
posible que se pueda causar un daño irreversible por resultados erróneos. Los
usuarios de los servicios del laboratorio clínico (médicos y pacientes), pueden no
tener suficiente conocimiento técnico para evaluar si un laboratorio funciona en un
nivel satisfactorio.
El enfoque de los sistemas de calidad ha evolucionado desde la búsqueda de la
confiabilidad en los resultados, a través de indicadores de precisión y exactitud,
hacia un espectro más amplio en el que se evalúa la efectividad, eficiencia y eficacia
de todos y cada uno de los componentes, con la finalidad de integrarlos en un
sistema de gestión de calidad.
Sistema de Gestión de Calidad en el Laboratorio Clínico
La implementación de un sistema de gestión de calidad es importante porque
permite el desarrollo de estrategias que pueden conducir al conocimiento de cuáles
son las necesidades de los clientes, así como, a la identificación de problemas
analíticos, con lo cual pueden dirigirse esfuerzos para la resolución, limitación,
eliminación o prevención de errores en beneficio del laboratorio y de la comunidad
que solicita el servicio.
Con la finalidad de lograr la implementación del sistema, se utilizan los lineamientos
metodológicos y normativos en el diseño de un sistema de gestión de calidad cuya
estructura documental se realizará de acuerdo a lainfraestructura y organización del
laboratorio, con elpropósito de mejorar la calidad del servicio otorgado y la
satisfacción de los clientes internos yexternos.
La gestión de la calidad se refiere a un conjunto de actividades coordinadas como
sistema, para dirigir una organización en lo relativo a la calidad. Comprende una
política y objetivos, la planificación, el aseguramiento, el control y la mejora de la
19
calidad. Este modelo de Sistema de Gestión de la Calidad (SGC) está basado en los
procesos con un énfasis en el cumplimiento de los requisitos establecidos y la
satisfacción del cliente.
Es claro que el laboratorio clínico es un subsistema inmerso en el sistema de salud y
juega un papel de suma importancia en la medicina, no sólo con el establecimiento
del diagnóstico, sino en el pronóstico y vigilancia del tratamiento, influyendo también
en la salud pública y la medicina preventiva, así mismo, el laboratorio clínico debe
contar con diferentes áreas o secciones de análisis de acuerdo a las diferentes
especialidades bioquímicas, por ejemplo hematología, microbiología, inmunología,
etcétera.
La gestión en seguridad y salud ocupacional nos permite trabajar permanentemente
por la reducción de riesgos que la actividad del laboratorio clínico genera para la
salud desarrollando programas preventivos mediante la identificación de peligros y la
evaluación del control de riegos relacionados con el sitio de trabajo. Riesgos que se
han controlado bajo la norma OHSAS 18001: 1999.
En el laboratorio clínico se realizan exámenes y análisis que deben aportar
información precisa, segura y confiable para que el médico diagnostique
adecuadamente, siga la evolución de una enfermedad durante el tratamiento, los
utilice como medida preventiva para conocer el estado de salud de los individuos,
detectar precozmente alguna alteración y hacer vigilancia epidemiológica.
La atención en el laboratorio requiere una estructura y el desarrollo de procesos pre
analíticos, analíticos y post analíticos(Principios para una educación en gestión).
La gestión del laboratorio clínico puede definirse como la utilización adecuada de los
recursospara la mejor atención de los pacientes, siendo la responsabilidad de las
decisiones tomadas del equipo de salud. Es por ello que su implementación implica
una descentralización de la organización y un impulso hacia una nueva forma de
trabajo enfocada hacia la gestión de procesos, la mejora continua. Éstos se basan
en la gestión de los procesos desarrollados en todas las áreas de la empresa,
comprendiendo a la estructura organizativa y a la dirección de la misma con el objeto
de obtener una producción de bienes o servicios cuyas características y utilización
sean funcionalmente correctas y que satisfagan las necesidades y requerimientos de
los usuarios.
20
CAPITULO II.
8. DISEÑO METODOLOGICO
Este trabajo se realizó con la metodología del Marco Lógico, el mismo que
constituye una herramienta dinámica para diseñar, ejecutar y evaluar el trabajo.
Para ello el método utiliza los siguientes instrumentos:
a. Matriz de Involucrados
b. Árbol de Problemas,
c. Árbol de Objetivos y
d. Matriz del Marco Lógico.
8.1 MATRIZ DE INVOLUCRADOS
GRUPOS Y/O
INSTITUCIONES
INTERESES RECURSOS Y
MANDATOS
PROBLEMAS
PERCIBIDOS
Directivos del
Instituto
Ecuatoriano de
Seguridad Social
Ejecutar y mejorar
la calidad de vida
y salud de la
comunidad
Recursos:
humanos
materiales
financieros
Mandato:
Art. 367.
Resolución CD
308
Falta de
coordinación en el
trabajo con las
unidades medicas
Directivos de la
Unidad de
Atención
Ambulatoria IESS
Cariamanga.
Incrementar la
cobertura de los
servicios de salud
Recursos:
humano
materiales y
financieros
Mandato:
Art. 22. De las
unidades de salud
del IESS.
Demanda
insatisfecha de
usuarios en el
servicio de
laboratorio
Comunidad
adscrita a la UAAC
Que se de
atención con
calidad, calidez y
Recursos:
humanos
materiales
Afiliados reclaman
calidad y rapidez
en los análisis de
21
oportunamente Mandatos:
Art. 52. Derecho a
bienes y servicios
de óptima calidad
laboratorio en el
momento que ellos
lo solicitan
Médicos,
paramédicos y
personal de
enfermería
Satisfacer la
demanda del
usuario
Recursos:
humanos
materiales
educativos
Mandatos:
Ejecutar proyectos
de ayuda social
Pacientes
requieren mayor
cobertura de
exámenes de
laboratorio
Posgradista Gestionar el
fortalecimiento del
laboratorio clínico
Recursos:
Humano
materiales
educativos
Mandato:
Gestionar
proyectos en
beneficio de la
comunidad
Usuarios
molestos por no
poder satisfacer su
demanda de
exámenes.
22
8.2 ÁRBOL DE PROBLEMAS
Limitada Gestión de Laboratorio Clínico en la UAAC
Usuarios no cumplen con horarios para la toma y recepción de muestras
Mala preparación de los pacientes previo a la obtención de la muestra.
Usuarios inconformes con resultados de laboratorio
Ausencia de normativa para el funcionamiento del laboratorio
clínico
Pacientes desinformados en la entrega adecuada de muestra a
laboratorio
No existen procesos gerenciales en el laboratorio
Pérdida de tiempo, insumos y materiales.
Alteración en el resultado de los análisis
Disminución de la efectividad en el trabajo del técnico
No existen estándares de calidad.
Médicos no informan adecuadamente al paciente
Deterioro de la calidad de servicios de la UAA Cariamanga.
Efectos
Causas
Gestión administrativa escasa
23
8.3 ÁRBOL DE OBJETIVOS
Programa de fortalecimiento del laboratorio de la UAAC.
Análisis secuencial de los procedimientos de laboratorio
Pacientes preparados adecuadamente
Reducción de las exigencias laborales
Funcionamiento adecuado del laboratorio clínico
Pacientes bien informados Se desarrollan procesos gerenciales en el laboratorio
Estándares de calidad establecidos
Médicos dan información adecuada al paciente
Uso eficaz del tiempo, insumos y materiales
Análisis de laboratorio confiables
Incremento de la efectividad laboral
Mejora en la prestación de servicios del laboratorio clínico
24
8.4 Matriz de Marco Lógico
Problemática: Limitada gestión de laboratorio clínico en la Unidad de Atención
Ambulatoria IESS Cariamanga
OBJETIVO INDICADORES MEDIOS DE
VERIFICACIÓN SUPUESTOS
FIN
Contribución al
mejoramiento de
la calidad de
prestaciones de la
UAA-Cariamanga.
Los afiliados que
acuden a la unidad
se sentirán
satisfechos por
recibir sus
resultados a tiempo
PROPOSITO
Implementación de
un programa de
fortalecimiento de
gestión para
ellaboratorio
clínico de la UAA-
Cariamanga.
Se fortalecerá la
gestión del
laboratorio clínico
en un 80% hasta
agosto del 2012.
Encuestas a los
usuarios
Encuestas a los
médicos
Distribución
material de
difusión
El laboratorio clínico
funcionara de
manera organizada
para alcanzar
estándares de
calidad.
COMPONENTES
O RESULTADOS
ESPERADOS
1. Normas
para la
organización
funcional del
laboratorio clínico
de la UAAC
elaboradas e
implementadas
100% de las
normas
establecidas e
implementadas en
el laboratorio con
calidad hasta
Octubre del 2012
Reglamentación,
organización y
funcionamiento del
laboratorio clínico.
Aprobación del
reglamento por
directivos de la
UAAC.
Procesos cumplidos
de acuerdo a la
normativa vigente
2. Pacientes
capacitados en la
80 % de los
pacientes estarán
Registro de
evaluación de los
Usuarios con
resultados
25
preparación
previa a un
examen de
laboratorio clínico
capacitados
acerca de la
preparación previa
a un análisis de
laboratorio hasta
agosto del 2012
pacientes
Fotos de la
capacitación
Entrega de folletos
confiables
3. Procesos
gerenciales para la
realización de las
actividades del
laboratorio clínico
de la UAA-
Cariamanga,
diseñados e
implementados.
El 100% de los
procesos
gerenciales
estarán diseñados
e implementados
hasta Octubre del
2012
Registros de
entrevistas a
usuarios internos.
Demanda del
usuario satisfecha
ACTIVIDADES RESPONSABILIDADES CRONOGRAMA RECURSOS
A1
1.1 Elaboración
del manual
normas para
mejorar el
funcionamiento
del laboratorio de
la UAAC.
Autora del proyecto Abril del 2012 $ 5.00
1.2 Diseño – e
impresión del
manual de
normas para el
laboratorio de la
UAAC.
Autora del proyecto
Abril del 2012 $ 20.00
1.3 taller de Autora del proyecto Octubre del 2012 20.00
26
capacitación del
manual de
normas al
personal médico
de la U AAC
para su
aplicación
A2
2.1 Elaboración
del manual de
toma de
muestras
Autora del proyecto
Mayo del 2012 $ 50. 00
2.2 taller de
capacitación a
los pacientes del
manual para
toma de
muestras.
Autora del proyecto
Mayo del 2012 $ 20.00
2.3. Diseño de
material impreso
para información
de pacientes.
(trípticos)
Autora del proyecto
Agosto del 2012 $ 200.00
2.4 Encuestas a
los pacientes
capacitados en
cuanta
preparación
previa a un
examen.
Autora del proyecto
Agosto del 2012 20.00
A3
3.1 Elaboración Autora del proyecto Agosto del 2012 $ 5.00
27
del manual de
procesos de
laboratorio de la
UAAC.
3.2 Diseño e
impresión del
manual de
procesos de
laboratorio de la
UAAC.
Autora del proyecto Septiembre del
2012
$ 20.00
3.3 Entrega y
socialización del
manual de
procesos a los
directivos de la
UAAC:
Autora del proyecto Octubre del 2012 Manual
Total : $ 340
28
9. RESULTADOS.
10.
9.1 RESULTADO ESPERADO # 1 NORMAS PARA LA ORGANIZACIÓN
FUNCIONAL DEL LABORATORIO CLÍNICO DE LA UAA_CARIAMANGA
ELABORADOS E IMPLEMENTADOS.
ACTIVIDAD # 1.
1.1 Elaboración del manual de normas para mejorar el funcionamiento del
laboratorio de la UAAC.
Para llevar a cabo esta actividad primero recabe información actualizada e en
cuanto a las normas existentes en el país y a nivel universal, para dar cumplimiento
a la elaboración de este manual en el cual se presente la información de una manera
sistematizada y compresible para todo el personal que labora en esta Unidad de
Atención.
Aportando de esta manera a la institución con ideas que conduzcan al mejoramiento
de la gestión del laboratorio en beneficio de la comunidad ya que es una estrategia
informativa en el autocuidado personal, como también para todo el personal que
labora en esta institución.
Este manual consta de elementos de protección personal indispensables para el
control de riegos y protección del trabajador para evitar la transmisión de
infecciones, determinándose estos de acuerdo al procedimiento a seguir, entre estos
tenemos los siguientes:
• Protección ocular.
• Protección buco nasal y facial.
• Protección de cuerpo y extremidades superiores.
• Y normas generales de bioseguridad.
1.2 Diseño e impresión del manual de normas para el laboratorio de la Unidad
de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga.
El diseño de este manual se lo realizo con la información obtenida en diferentes
bibliografías existentes en internet y textos de laboratorio que tienen relación con
29
Las normas de bioseguridad, en este manual se tomó en cuenta tolo referente a la
protección personal, hacia todo el personal que labora en una institución de salud
abarcando todas la áreas que existen en la Unidad en la cual estamos trabajando
tratando de focalizar en el cuidado y manipulación de los procesos que se deben
desarrollar en cada área de trabajo, empleando las técnicas correctas para minimizar
el riesgo de contaminación, por ejemplo al trabajar en una área de riesgo biológico,
se debe utilizar los elementos de protección personal como son : mono gafas ,
mascarilla, bata plástica y guantes. La bata se la debe manejar como material
contaminado y se la desecha en bolsa roja debidamente marcada y sellada.
Cuando se realiza procedimientos o técnicas que ameriten riesgo o salpicaduras se
debe utilizar delantal plástico, también se debe utilizar pipetas automáticas para
evitar contaminación oral, los tubos de ensayo con muestras de sangre se deben
desinfectar con hipoclorito de sodio durante 30 minutos y después desechar para
poder proceder a la des germinación y esterilización.
Los materiales contaminados que deban ser desechados fuera del laboratorio deben
introducirse en recipiente resistentes herméticamente cerrados antes de salir del
laboratorio.
El personal que trabaja en el área de microbiología, debe utilizar además del equipo
de protección básica la mascarilla de alta eficiencia.
Luego de la revisión con la docente y los compañeros médicos y paramédicos se
sugiere la impresión de dicho manual.
1.3 Taller de capacitación delmanual de normas al personal de la UAA
Cariamanga para su aplicación.
Este taller se realizó en la Unidad de Atención Ambulatoria con el equipo operativo
de salud de la unidad conformada por la Directora Técnica, Médicos, Odontólogos y
personal de enfermería, donde se socializo el manual tomando en cuenta los
parámetros de las normas de seguridad existentes. Promoviendo de esta manera el
fortalecimiento y la gestión, ya que es muy importante la participación de los
usuarios internos motivándoles a llevar acabo con responsabilidad el manejo y
cuidado personal en cuanto a los riesgos eventuales que pueden ocurrir en estas
áreas de salud, minimizando de esta manera el riego biológico. (AnexoResultado
30
1). Personal operativo de salud bajo la coordinación de la Directora Técnica, y la
Maestrante de la UTPL.
Se revisaron todos los temas que constan en el manual y en la lista de
requerimientos para la protección del personal (Anexo Resultado 1.1) quedando
aprobado por todos los asistentes, y se realizó la entrega del manual.
CONCLUSION: Se logró conseguir el objetivo del resultado 1, ya que se cumplió
en el 100% la implementación de Normas quedando establecidas y aprobadas
por todo el personal operativo de la institución.
9.2 RESULTADO ESPERADO # 2 PACIENTE CAPACITADO EN LA
PREPARACIÓN PREVIA A UN EXAMEN DE LABORATORIO CLÍNICO
ACTIVIDAD # 2.
1 Elaboración del manual de toma de muestras.
En primer lugar investigamos manuales en base a la toma de muestras para
realización de exámenes de laboratorio, diseñamos las partes de la cual consta el
manual, empezamos elaborando los horarios de recepción de muestras y entrega
de resultados, luego formulamos las indicaciones para cada tipo de exámenes sean
estos de sangre, orina y heces, para cada examen sus debidas indicaciones en su
preparación previa a realizarse sus exámenes.
Ayudándome de la bibliografía investigada se fue formulando todos los pasos
referentes a la toma de muestras previas a la realización de un examen. Por ejemplo
para realizarse un examen de sangre el paciente debe de tener por lo menos 12
horas de ayuno para que sus resultados sean fidedignos. Para que un examen de
orina nos muestre un resultado confiable debe de ser tomando en cuenta las
siguientes precauciones: realizarse lavados genitales y eliminados el primer chorro
de la emisión en el inodoro y recoger la muestra del segundo chorro directamente en
el frasco recolector ser tapado inmediatamente y llevarlo al laboratorio antes de dos
horas siguientes para ser procesadas inmediatamente.
Para un examen de heces de bebe coger la muestra en una pequeña cantidad
tomando de diferentes partes del espécimen.
31
De esta manera se diseñó el manual de toma de muestras para la realización de los
exámenes en el laboratorio de la Unidad de Atención Ambulatoria Cariamanga.
2 Taller dirigido a los usuarios que acuden UAA-Cariamanga, para
capacitarlos sobre indicaciones para realizarse exámenes de laboratorio
en la UAA-Cariamanga.
Lugar: Municipio del Cantón Calvas
Fecha: miércoles 09 de mayo de 2012
Objetivo General: Capacitar al paciente en cómo debe presentarse a dejar sus
muestras en el laboratorio clínico de la UAA Cariamanga.
Objetivos Específicos:
1. Evaluar el nivel de conocimientos del paciente en cómo debe presentar
sus muestras.
2. Determinar causas por la cual el paciente desconoce cómo debe
presentarse en el laboratorio.
AGENDA DE TRABAJO
HORA ACTIVIDAD RESPONSABLE
14h a 14h30 Inscripción de los
participantes
Tmd. Wilma Herrera
C.
14h30 a14h40 Saludo de bienvenida a los
asistentes
Tmd. Wilma Herrera
C.
14h40 a 15h20 Charla: indicaciones para
realizarse exámenes de
laboratorio en la UAAC.
Tmd. Wilma Herrera
C.
15h20 a 15h40 Socialización Participan todos los
asistentes
15h40 a 15h55 Refrigerio Comparten todos
los asistentes
15h55 a 16 h Agradecimiento y clausura Tmd.Wilma Herrera
C.
32
DESARROLLO DE LA AGENDA.
En la ciudad de Cariamanga, el día miércoles 9 de mayo de 2011 desde las 14
horas previa convocatoria escrita, nos reunimos en el municipio del Cantón Clavas,
bajo la coordinación de la Tmd. Wilma Herrera C. Maestrante de la UTPL, los
asistentes trabajadores y administrativos del municipio de Calvas, (Anexo
Resultados 2), para asistir a la charla de capacitación sobre indicaciones para
realizarse los exámenes de laboratorio en la UAAC. Siendo las 14h 40 se inicia la
capacitación con siguiente orden del día:
Lectura y desarrollo de la agenda de trabajo planificada.
Luego de que los asistentes registraron su firma, la Tmd. Wilma Herrera ofrece un
saludo de bienvenida a todos por su asistencia.
A continuación les da a conocer los objetivos de la reunión de capacitación y
presenta la expositora de la misma, quien desarrolla el tema propuesto en la agenda
apoyándose diapositivas (anexo Resultado 2.1), a la participación interactiva del
personal con preguntas al final de la charla.
Se socializan los conocimientos que aprendieron con la charla.
Al finalizar la charla se realizó una retroalimentación de conocimientos con preguntas
relacionadas a la charla evidenciando la comprensión de lo aprendido se
compartieron experiencias y se concretó lo aprendido en los siguientes aspectos:
• Realizarse lavado genital para tomar muestra de orina.
• Tener ayuno de 12 horas para muestra de examen de sangre
• Para realizarse exámenes de secreción no hacerse lavado genital el día de
la toma de la muestra
• Para el examen de heces llevar una cantidad adecuada de muestra (como
un maní).
• Cuando van a realizarse en el mismo día un examen de secreción y también
de orina deben presentarse sin lavado genital para la toma de secreción y
luego de un lavado tomar la muestra de orina.
33
Finalmente, se compartió entre todos los asistentes un refrigerio, y siendo las 16
horas se da por terminada la capacitación y se procede a la clausura de la misma
por parte de la Maestrante Tmd. Wilma Herrera.
3 Diseño de material impreso para información de pacientes(trípticos)
El diseño de material consistió en elaborar trípticos, tomando en cuenta los horarios
de atención, en cuanto a la recepción de muestras y la entrega de resultados, con
las debidas indicaciones que el paciente debe saber en cuanto a cómo debe
presentarse el día que se va a realizar los exámenes a y así puede obtener
resultados confiables siguiendo las normas de la institución y la que el médico le
sugiere. Además se realizó la revisión y aprobación del tríptico por la tutora quien
sugiere que se realice la impresión correspondiente (anexo Resultado 2.2), para la
entrega a los usuarios.
4 Realización de una encuesta a los usuarios que acuden a realizarse los
exámenes en el laboratorio de la UAA Cariamanga.
Para el diseño de la encuesta se tomó los parámetros realizados en cuanto a la
elaboración del manual de toma de muestras y el taller que se dictó a los usuarios.
Se la elaboro de la siguiente forma: se propuso cinco preguntas de opción múltiple
de manera que el paciente tenga mayor facilidad de contestar y no confundirse.(
anexo Resultado 2.3).
Desarrollo de la encuesta:
1. Sabe Usted con cuantas horas de ayuno debe presentarse en el
laboratorio para un examen de sangre:
a).8 horas
b). 12 horas
c). 6 horas.
Podemos observar que el paciente está capacitado ya que la respuesta
correcta es el literal b) y fue contestada en un 84 %.
34
Observamos los resultados en el siguiente gráfico.
2. Antes de recolectar la muestra de orina debe hacerlo previo a:
a). lavado genital.
b).sin lavado genital
Consideramos que el paciente tubo una adecuada información en lo referente a esta
pregunta.
Ya que un 90% de los encuestados contesto correctamente.
y un 10 % no capto la información.
Aquí los resultados en el siguiente gráficos.
6%
84%
10%
Pregunta 1
Literal a)
Literal b)
Literal c)
90%
10%
Pregunta 2
Literal a)
Literal b)
35
3. Para recolectar la muestra de heces lo debe hacer de siguiente manera:
a). llena la caja
b). en una caja de cartón
c). un volumen de 20ml (similar a un maní)
Podemos observar que los pacientes son idóneos porque contesto
correctamente en un 88%,
Expongo los resultados en el siguiente gráfico.
4. Como debe presentarse para un examen de secreción:
a). previo un lavado genital
b). no realizarse lavado genital el día de toma de la muestra
c). ninguna de las dos anteriores.
Después de ser capacitados los usuarios tienen una correcta comprensión ya
que demuestran que el 86%, está en lo correcto.
El siguiente grafico muestra los resultados.
10%2%
88%
Pregunta 3
Literal a)
Lieral b)
Lieral c)
36
5. Cuando se debe realizar en el mismo día la toma de muestra de
secreción y también examen de orina debe presentarse:
a). con lavado genital
b). sin lavado genital para toma de secreción y luego de un lavado toma la
muestra de orina
c). primero toma la muestra de orina y luego se hace la muestra de secreción.
De acuerdo a los porcentajes que observamos en esta interrogante
concluimos que el 80%, de los usuarios esta con la información correcta.
Los resultados en el siguiente grafico.
8%
86%
6%
Pregunta 4
Literal a)
Literal b)
Literal c)
10%
80%
10%
Pregunta 5
Literal a)
Literal b)
Literal c)
37
CONCLUSIÓN:
Análisis del cumplimiento de este resultado: podemos observar que de
acuerdo a lo que nos planteamos logar que el 80 % del usuario estén
capacitados hasta agosto del 2012, se logró satisfactoriamente ya que
obtuvimos un 85.6 % después realizar esta actividad para beneficio de los
usuarios internos y externos de nuestra comunidad.
9.3. RESULTADO ESPERADO # 3 PROCESOS GERENCIALES PARA LA
REALIZACIÓN DE LAS ACTIVIDADES DEL LABORATORIO CLÍNICO DE
LA UAA_CARIAMANGA DISEÑADOS E IMPLEMENTADOS.
ACTIVIDAD # 3.
3.1 Elaboración del manual de procesos de laboratorio de la UAA_Cariamanga.
La elaboración del manual de procedimientos se lo realiza en base a todos los
procesos que realizan en este departamento utilizando las técnicas de cada casa
proveedora de los insumos y materiales que se dispone en este laboratorio.
Se realiza en tres fases:
• Pre-analítica
• Analítica
• Pos-analítica
En la fase pre-analítica se puntualiza que el control de calidad radica en asegurar
que los productos finales es decir los valores analíticos que son producidos por el
laboratorio clínico sean suficientemente viables y adecuados a la finalidad que
persiguen.
En la fase analítica, es donde se realiza el proceso de todos los análisis que se
procesan en dicho departamento como:
• El propósito
• La muestra requerida
• Los materiales
• Los materiales y reactivo
• Equipo a utilizarse
38
• El procedimiento
En la fase pos-analítica es donde se transcriben los resultados de los análisis
realizados, para satisfacer la demanda de los usuarios.
3.2 Diseño e impresión del manual de procesos de laboratorio de la UAA-
Cariamanga.
El manual se lo diseño tomando en cuenta todos los parámetros, métodos y
técnicas existentes en cada uno de insumos que se utilizan para realizar el proceso
adecuado de los análisis y así obtener una herramienta de trabajo para el normal
desempeño de los técnicos que se lleva a efecto el proceso, con la finalidad de
entregar al personal médico resultados fidedignos que le sirvan de apoyo en el
diagnóstico y tratamiento de las enfermedades de los pacientes, alcanzado
estándares de calidad en los resultados en este establecimiento de primer nivel de
salud, ya que es un instrumento que contiene la secuencia de los pasos necesarios
que aseguran la ejecución de todos los procedimientos técnicos de cada uno de los
análisis y de esta manera contribuimos en el ordenamiento y estandarización de
los mismos, ya que esta es una guía efectiva y útil en la estandarización de los
procedimientos de calidad de los resultados obtenidos en el laboratorio clínico de la
Unidad Atención Ambulatoria IESS Cariamanga.
3.3 Entrega y socialización del manual de procesos a los directivos de la
Unidad de Atención Ambulatoria IEES Cariamanga.
Para la socialización del manual de procedimientos nos reunimos previa
convocatoria al personal Operativo de la Unidad, dirigido por la Maestrante de
UTPL, Tecnóloga Wilma Herrera C.( Anexo Resultado 3), en la cual revisamos los
contenidos del manual, en donde se definió y socializo todos los análisis que se
realizan en este departamento ya que son de gran ayuda para el personal Médico
en el diagnóstico y prevención de enfermedades , logrando de esta manera servir a
los usuario de una forma eficiente con calidad y oportunamente en el momento que
este lo solicita, su aplicación por el personal que labora en este departamento le
servirá de gran ayuda. (Anexo Resultado 3.1)
Quedando aprobado e implementado para beneficio de la Unidad de Atención
Ambulatoria IESS Cariamanga.
39
CONCLUSIÓN:
El objetivo del Resultado 3 fue logrado en el 100%, se pudo conseguir que sea
aprobado por el personal operativo de la institución e implementado para uso de
este departamento en beneficio de los usuarios internos y externos.
ANÁLISIS GENERAL:
Dentro del cumplimiento de resultados esperados se puede puntualizar lo siguiente:
En el Resultado esperado 1: Normas para la organización funcional del
laboratorio clínico de la UAAC elaboradas e implementadas, se cumplió con
todas las actividades, previstas toda vez que los supuestos que nos planteamos al
inicio del trabajo resultaron verdaderos; los procesos se cumplieron de acuerdo a
la norma vigente en todas las entidades de salud y se pudo conseguir que queden
implementados en u n 100 %.
En el Resultado esperado: Pacientes capacitados en la preparación previa a un
examen de laboratorio clínico, se cumplió con las cuatro actividades previstas
elaboración del manual, taller de capacitación a los usuarios, diseño de un tríptico,
y la encuesta que fueron programadas donde tuvimos la participación activa de los
asistentes, y el supuesto que nos planteamos fue verdadero ya que los usuarios
después de haber sido capacitados obtienen los resultados confiables y
oportunamente logramos satisfactoriamente más del porcentaje que nos habíamos
fijado que es del 85.6 %.
En el Resultado esperado 3: Procesos gerenciales para la realización de las
actividades del laboratorio clínico de la UAA-Cariamanga, diseñados e
implementados, se cumplió con las actividades previstas, de igual manera que los
resultados anteriores los supuestos planteados inicialmente fueron verdaderos. Los
procesos gerenciales fueron diseñados e implementados en este departamento
para satisfacer la demanda del usuario en el 100%.
Con estos antecedentes puedo afirmar que el propósito de este trabajo de acción
se ha logrado en el 80 % propuesto y el laboratorio clínico funciona de manera
organizada para alcanzar los estándares de calidad, se seguirá involucrando a
todos los usuarios conjuntamente con capacitaciones por parte del personal
40
operativo de la institución, además logre conseguir el fin de este Proyecto de
contribuir al mejoramiento de la calidad de prestaciones de la unidad de Atención
Ambulatoria IESS Cariamanga ,ya que los afiliados que acuden pedir el servicio se
sienten satisfechos por recibir sus resultados a tiempo y así apoyamos a tener una
mejor calidad de vida y salud de la comunidad local, regional y nacional.
41
11. CONCLUSIONES
1. Al promover las normas de seguridad se logró motivar a todo el equipo
operativo de saluda de la unidad en el auto-cuidado y prevención de
enfermedades utilizando las herramientas necesarias para la protección
adecuada de los mismos.
2. Se logró motivar a los usuarios internos y externos en la preparación previa
a realizarse un examen de laboratorio ya que con esto se obtienen resultados
fidedignos acorde a la patología que cada paciente presente.
3. Se logró capacitar a los usuarios en un 90% cifra que nos incentiva para
seguir realizando ´proyectos de gestión que vayan en beneficio de la
comunidad tanto local, regional y nacional
4. Se implementó los procesos gerenciales de una manera adecuada y
siguiendo los parámetros de los laboratorios proveedores de insumos y
materiales.
5. Se realizó con existo el fortalecimiento de la gestión del laboratorio clínico de
la UAA-Cariamanga.
6. Contribuimos con el mejoramiento de la calidad de prestaciones en el
laboratorio de la UAA-Cariamanga.
42
12. RECOMENDACIONES
1. Promover la realización de charlas para los usuarios internos y externos
en las diferentes casas de salud de la comunidad para compartir
experiencias tendientes a mejorar las diferentes prestaciones de salud.
2. Fortalecer y ejecutar actividades con el equipo operativo de salud de la
Unidad para tener una participación activa de los usuarios para mejorar su
estilo de vida.
3. Motivar a los usuarios internos y externos a seguir poniendo en práctica
todos los conocimientos adquiridos durante este trabajo con la finalidad
de mejorar y prevenir contratiempos.
4. Planificar y ejecutar talleres con los directivos de la Unidad de Atención
Ambulatoria hacia los usuarios para que todos vayan poniendo en práctica
los conocimientos adquiridos.
5. Vigilar el cumplimiento de las normas de bioseguridad ya que va en
beneficio de todo el equipo operativo de la institución y de los usuarios.
6. Contribuir con acciones de mejoramiento del departamento de laboratorio
en el plan operativo anual.
43
13. BIBLIOGRAFÍA
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46
47
Anexo 1
48
Anexo 2
49
50
Anexo Resultado 1.
Anexo Resultado 1.1
Manual de Normas de Bioseguridad en el Laboratorio
clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS
Cariamanga
Autora, Tecnóloga Médica Wilma P.
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Manual de Normas de Bioseguridad en el Laboratorio
clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS
Cariamanga
Autora, Tecnóloga Médica Wilma P. Herrera.
2012
Bioseguridad en el Laboratorio
Autora, Tecnóloga Médica
INTRODUCCIÓN.
El Laboratorio de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga realiza el presente documento denominada manual de normas de seguridad pretendiendo ser una propuesta de comprensión y lectura para todo el personal, retirando lo superfluo y delimitando el concepto específico del manual de limpieza y desinfección del laboratorio clínico. Es deber de la institución velar por el adecuado control de transmisiones e infecciones y proteger o asistir al personal en el eventual caso de la ocurrencia de un accidente ocupacional, en especial con exposición biológica dada la naturaleza de los riesgos propios de la actividad de un laboratorio de análisis clínico. Los límiteslo accidental y lo prevenible pasan por el cumplimiento de las normas mínimas de bioseguridad hoy día consideradas universales. Es este solo un aporte para la generación de ideas que conduzcan a un ambiente de trabajo más seguro, buscando convertirse en una estrategia informativa como cimiente de una nueva cultura organizacional altamente comprometida en su autocuidado tanto para el personal que labora en este departamento como también para todo el personal que labora en esta institución. OBJETIVO. Conocer los diferentes tipos de sustancias químicas para operar de manera segura dentro del laboratorio. SUSTANCIAS QUIMICAS. Es importante conocer las características, propiedades y riesgos que cada sustancia química podría representar durante su manipulación y según esto establecer las normas de seguridad que deben seguirse en el laboratorio. CLASIFICACION DE LAS SUSTANCIAS QUIMICAS.
• Clase 1. Explosivos
• Clase 2. Gases
• Clase 3. Líquidos inflamables
• Clase 4. Solidos inflamables
• Clase 5. Comburentes y peróxidos orgánicos
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El Laboratorio de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga realiza el presente documento denominada manual de normas de seguridad pretendiendo ser una propuesta de fácil comprensión y lectura para todo el personal, retirando lo superfluo y delimitando el concepto específico del manual de limpieza y desinfección
Es deber de la institución velar por el adecuado infecciones y
proteger o asistir al personal en el eventual caso de la ocurrencia de un accidente ocupacional, en especial con exposición biológica dada la naturaleza de los riesgos propios de la actividad de un laboratorio de análisis clínico. Los límites entre lo accidental y lo prevenible pasan por el cumplimiento de las normas mínimas de bioseguridad hoy día consideradas universales. Es este solo un aporte para la generación de ideas
que conduzcan a un ambiente de trabajo más se en una estrategia
informativa como cimiente de una nueva cultura organizacional altamente comprometida en su autocuidado tanto para el personal que labora en este departamento como también para todo el
Conocer los diferentes tipos de sustancias químicas para operar de manera segura dentro del
Es importante conocer las características, propiedades y riesgos que cada sustancia química
manipulación y según esto establecer las normas de seguridad que
CLASIFICACION DE LAS SUSTANCIAS QUIMICAS.
ntes y peróxidos orgánicos
• Clase 6. Sustancias toxicas e infecciosas
• Clase 7. Materiales radioactivas
• Clase 8. Materiales corrosivos
• Clase 9. Miscelanios. EXPLOSIVAS Son sustancias solidas o liquidas, o mezcla de ellas, que por si mismas son capaces de reaccionar químicamente produciendo gases a tales temperaturas, presiones y velocidades que pueden ocasionar danos graves en los alrededores. También incluye objetos que contienen sustancias explosivas.
GASES. Son sustancias que se encuentran totalmente en estado gaseoso a 20°C y una presión de 101.3 Kpa existen gases: � COMPRIMIDOS, que se encuentran totalmente en estado gaseoso al ser empacados o envasados para el transporte, a 20°C. ej. Aire comprimido. � LICUADOS, que se encuentran parcialmente en estado líquido al ser empacados o envasados para el transporte a 20 °C .ej. GLP.� CRIOGENICOS, que se encuentran parcialmente en estado líquido al ser empacados o envasados para el transporté a muy bajas temperaturas ej. Nitrógeno criogénico.� EN SOLUCION, que se encuentran disueltos en un líquido al ser empacados o envasados para el transporte. Ej. Acetileno (en acetona Clasificación de gases con respecto al tipo de riesgo que ofrecen, los gases se dividen en: � Gases inflamables pueden incendiarse fácilmente en el aire cuando se mezclan en proporciones inferiores o iguales al 13 % en volumen. Ej. Gas propano, aerosoles. � Gases no inflamables, no tóxicos; pueden pueden ser asfixiantes simples u oxidantes. Ej. Nitrógeno, oxigeno. � Gases tóxicos; ocasionan peligros para la salud, son tóxicos y/o corrosivos. Ej. Cloro, amoniaco.
Clase 6. Sustancias toxicas e infecciosas
Son sustancias solidas o liquidas, o mezcla de ellas, e reaccionar
químicamente produciendo gases a tales temperaturas, presiones y velocidades que pueden ocasionar danos graves en los alrededores. También incluye objetos que contienen sustancias
Son sustancias que se encuentran totalmente en estado gaseoso a 20°C y una presión de 101.3 Kpa
COMPRIMIDOS, que se encuentran totalmente en estado gaseoso al ser empacados o envasados para el transporte, a 20°C. ej. Aire
OS, que se encuentran parcialmente en estado líquido al ser empacados o envasados para el transporte a 20 °C .ej. GLP.
CRIOGENICOS, que se encuentran parcialmente en estado líquido al ser empacados o envasados para el transporté a muy bajas
. Nitrógeno criogénico. EN SOLUCION, que se encuentran
disueltos en un líquido al ser empacados o envasados para el transporte. Ej. Acetileno (en
Clasificación de gases con respecto al tipo de riesgo
lamables pueden incendiarse fácilmente en el aire cuando se mezclan en proporciones inferiores o iguales al 13 % en
Gases no inflamables, no tóxicos; pueden
pueden ser asfixiantes simples u oxidantes. Ej.
Gases tóxicos; ocasionan peligros para la salud, son tóxicos y/o corrosivos. Ej. Cloro,
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LIQUIDOS INFLAMABLES. Son líquidos o mezclas de ellos, que pueden contener sólidos en suspensión o solución, y que liberan vapores inflamables por debajo de 60 °C (punto de inflamación). Por lo general son sustancias que se transportan a temperaturas superiores a su punto de inflamación, o que siendo explosivas se estabilizan diluyéndolas o suspendiéndolas en agua o en otro líquido. Ej. Gasolina, benceno, y nitroglicerina en alcohol. SOLIDOS INFLAMABLES � Solidos inflamables, sustancias autorreactivas o explosivos solidos insensibilizados. Son aquellos que bajo condiciones de transporté entran fácilmente en combustión o pueden contribuir al fuego por fricción. Ej. Fosforo. � Sustancias espontáneamente combustibles son aquellas que se calientan espontáneamente al contacto con el aire bajo condiciones normales sin aporte de energía. Ej. Carbón activado. � Sustancias que emiten gases inflamables al contacto con el agua. Desprenden gases. Ej. Metales alcalinos como el sodio, potasio, (desprenden acetileno). COMBURENTES Y PEROXIDOS ORGANICOS. Las sustancias comburentes generalmente liberan oxígeno y causan la combustión de otros materiales o contribuyen a ella. Ej. Agua oxigenada, nitrato de potasio. Los peróxidos orgánicos. Sustancias de naturaleza orgánica que contienen estructuras bivalentes que generalmente son inestables y pueden favorecer a una descomposición explosiva, quemarse rápidamente, ser sensibles al impacto o fricción o ser altamente reactivas con otras sustancias. Ej. Peróxido de benzoílo. SUSTANCIAS TOXICAS E INFECCIOSAS. Sustancias toxicas son líquidos o solidos que pueden ocasionan daños graves a la salud o la muerte al ser ingeridos, inhalados o entrar en contacto con la piel. Ej. Cianuros, sales de metales pesados, plaguicidas.
Sustancias infecciosas. Son aquellas que contienen microorganismos reconocidos como patógenos (bacterias , hongos ,parásitos, virus e incluso híbridos o mutantes que pueden ocasionar una enfermedad por infección a los animales o a las personas. Ej. Ántrax, VIH, E. Coli, mico bacteria tuberculosa. MATERIAL RADIOACTIVO.(AMARILLO Y BLANCO). Son materiales que contienen radionúclidos y su peligrosidad depende de la cantidad de radiación que genere así como la clase de descomposición atómica que sufra. La contaminación por radiactividad empieza a ser considerada a partir de 0.4 Bq/cm2 para emisores beta y gama, o 0.04Bq/cm2 para emisores alfa. Ej. Uranio, torio,232, yodo 125, carbono 14. Son radiactivos fisionables. El uranio 233, uranio 135, plutonio 239,plutonio 241 o cualquier combinación de estos radionúclidos. SUATANCIAS CORROSIVAS. (BLANCO Y NEGRO). Corrosiva es cualquier sustancia que por su acción química, puede causar daño severo o destrucción a toda superficie con la que entre en contacto incluyendo la piel, los tejidos, metales, textiles, etc. Cusa entonces quemaduras graves y se aplica tanto en líquidos o solidos que tocan la superficies, como a gases y vapores que en cantidad suficiente provocan fuertes irritaciones de las mucosas. Ej. Ácidos y cáusticos. SUSTANCIAS Y ARTICULOS PELIGROSOS VARIOS. Sustancias no cubiertas dentro de las otras clases pero que ofrecen riesgo, incluyendo por ej. Material modificado genéticamente, sustancias que se transportan a temperaturas elevadas y sustancias peligrosas para el ambiente no aplicable a otras clases.
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Sustancias peligrosas para el medio ambiente como: etiquetas. ALMACENAMIENTO SEGURO Todos los productos químicos deben ser almacenados de forma que no afecten la salud de los seres humanos ni el medio ambiente. CLASIFICACION DE RIESGOS:
SALUD EN RIESGOS. � Mortal � Muy peligroso � Peligroso � Poco peligroso Sin riesgo. INFLAMABILIDAD. � Debajo de los 25°C � Debajo de los 37°C � Debajo de los 93°C � Sobre los 93°C � No arde. RIESGO ESPECÍFICO. � Inflamable � Corrosivo � Toxico � Oxidante � Radiación ionizante � No usar agua. REACTIVO. � Estable � Inestable en caso de calentamiento � Cambio químico violento � Puede explotar en caso de choque o calentamiento � Puede explotar. ALMACENAMIENTO DE REACTIVOS.
COLOR RIESGO ALMACENAMIENTO
Azul Peligro para la salud Guardar como veneno
Rojo Peligro de inflamabilidad
Guarde como líquido inflamable
Amarillo Peligro de reactividad
Guardar separado, lejos de materiales inflamables o combustibles
Negro Peligro de contacto Guarde en lugar a prueba de corrosión
Verde ------------------------ Guarde como productos químicos en general
////////////// Evalué almacenamiento individual
El material es incompatible con otros del mismo color.
CODIFICACIÓN DE PRODUCTOS. � Si el contenido del frasco no es una sustancia
peligrosa es necesario solo el nombre del producto.
� Si su contenido es una sustancia peligrosa el frasco debe estar identificado con la señal de peligro respectiva.
� En caso de sustancias y preparaciones desconocidas marque con el uso exclusivo por el laboratorio.
SEGURIDAD EN EL LABORATORIO. Cada laboratorio está sometido a determinados riesgos, uno de tipo general y otros de tipo específicos relacionados con la actividad desarrollada en los mismos, por esto es necesario que cada uno establezca un programa de riesgo químico cuyo objetivo este acorde con la conciencia de calidad, salud, seguridad, y medio ambiente. RESPONSABLES DE LABORATORIO. � Planificar la utilización de productos peligrosos
y ser posible reemplazarlos por otros menos peligrosos.
� Consulte sobre los peligros específicos de los productos, los derivados de la manipulación.
� Fijar las medidas necesarias que permitan garantizar la seguridad en el laboratorio.
� Establecer unos manuales de procedimientos donde se describa los riesgos que se pueden producir así como determinar las medidas a tomar en caso necesario y las reglas de comportamiento.
MANIPULACION DE SUSTANCIAS QUIMICAS.
Elementos de protección: � Bata de laboratorio en material adecuado � Gafas protectoras � Guantes de nitrilo � Cabinas extractoras o vitrinas para gases � Zapatos planos y cubiertos � Cabello recogido � Respirador full face con filtros apropiados NORMAS DE SEGURIDAD EN EL LABORATORIO.
� Prohibido fumar, beber o comer� No guardar elementos ni bebidas en los
frigoríficos del laboratorio � No realizar reuniones o celebraciones� No llevar pulseras, colgantes, mangas anchas
ni prendas sueltas que puedan engancharse en montajes, equipos o maquinas.
� Lavarse las manos antes de dejar el laboratorio.
� No dejar objetos personales en la superficie de trabajo.
CONDICIONES DEL LABORATORIO � En cualquier laboratorio es conveniente tener
dos puertas de acceso. � Las redes de servicio deben estar protegidas � Los desagües deben disponer siempre de
sifón � La ventilación general debe
para evitar la concentración de vapores � Cada laboratorio debe tener una ducha de
disparo rápido y un lavaojos. � Solo debe tener en el laboratorio los reactivos
de uso habitual. � PRODUCTOS Y PROCESOS. � Evite trasvasar reactivos o productos
químicos a otros envases. � Rotule todos los productos con nombre,
procedencia, concentración y fecha de expiración, si no lo sabe indique la fecha en que fue preparado.
� Almacene los compuestos por compatibilidades
� Evite el contacto de la luz solar con los productos.
� Evite el desplazamiento de los productos durante trayectos largos
� Evite el desecho de residuos indiscriminadamente.
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Prohibido fumar, beber o comer No guardar elementos ni bebidas en los
No realizar reuniones o celebraciones No llevar pulseras, colgantes, mangas anchas ni prendas sueltas que puedan engancharse en montajes, equipos o maquinas. Lavarse las manos antes de dejar el
rsonales en la superficie
En cualquier laboratorio es conveniente tener
Las redes de servicio deben estar protegidas Los desagües deben disponer siempre de
La ventilación general debe ser suficiente para evitar la concentración de vapores Cada laboratorio debe tener una ducha de
Solo debe tener en el laboratorio los reactivos
Evite trasvasar reactivos o productos
Rotule todos los productos con nombre, procedencia, concentración y fecha de expiración, si no lo sabe indique la fecha en
Almacene los compuestos por
Evite el contacto de la luz solar con los
Evite el desplazamiento de los productos
Evite el desecho de residuos
PRIMEROSAUXILIOS � Lavar ojos abundantemente con agua,
utilizando dispositivos especiales.� En caso de intoxicación no dar de
accidentado y en especial leche, sin las indicaciones de una autoridad competente.
� Lavar con abundante agua fría las salpicaduras caídas sobre la piel.
� Despojarse de la ropa contaminada con productos químicos.
� Consultar en todos los casos con un m PREVENCIÓN DE INCENDIOS � La temperatura del laboratorio debe
mantenerse en los límites habituales de trabajo.
� La ventilación debe evacuar rápidamente vapores y gases.
� Evite la producción de chispas o de electricidad estática.
� Cuente siempre con un extintor de acuerdo a sus necesidades, los extintores de CO2 son los más prácticos y universales.
ELIMINACIÓN DE REACTIVOS Y RESIDUOSQUÍMICOS. � La utilización de productos químicos, el evitar
la producción de residuos se convierte cada vez más en un importante factor medioambiental y de costo. De ahí la importancia de llevar a cabo una planificación adecuada en el consumo de los productos químicos y así evitar el exceso de material de desecho.
CONTAMINACIÓN � En cuanto a nuestra responsabilidad frente
medio ambiente, está prohibido tirara residuos por los canales. Siempre se debe tener en cuenta que muchos productos químicos no pueden ser desactivados en una planta depuradora entrando por consecuencia inalterados en el medio ambiente. Antes de deciproducto tome como alternativa su reutilización, después de un tratamiento previo (destilación, separación, por decantación, etc.
RECOLECCIÓN DE RESIDUOS.
Lavar ojos abundantemente con agua, utilizando dispositivos especiales. En caso de intoxicación no dar de beber al accidentado y en especial leche, sin las indicaciones de una autoridad competente. Lavar con abundante agua fría las salpicaduras caídas sobre la piel. Despojarse de la ropa contaminada con
Consultar en todos los casos con un médico.
La temperatura del laboratorio debe mantenerse en los límites habituales de
La ventilación debe evacuar rápidamente
Evite la producción de chispas o de
extintor de acuerdo a sus necesidades, los extintores de CO2 son los más prácticos y universales.
DE REACTIVOS Y
La utilización de productos químicos, el evitar la producción de residuos se convierte cada
importante factor medioambiental y de costo. De ahí la importancia de llevar a cabo una planificación adecuada en el consumo de los productos químicos y así evitar el exceso de material de
En cuanto a nuestra responsabilidad frente al medio ambiente, está prohibido tirara residuos por los canales. Siempre se debe tener en cuenta que muchos productos químicos no pueden ser desactivados en una planta depuradora entrando por consecuencia inalterados en el medio ambiente. Antes de decidir eliminar un producto tome como alternativa su reutilización, después de un tratamiento previo (destilación, separación, por
� Solvente orgánicos y Sln. Que no contengan
alógenos. � Solventes orgánicos y Sln. Que contengan
alógenos � Residuos sólidos orgánicos � Soluciones salinas � Residuos orgánicos tóxicos, sales de metales
pesados � Compuestos combustibles tóxicos � Mercurio y residuos de sales orgánicas de
mercurio � Residuos de sales metálicas re generables� Residuos inorgánicos solidos � Almacenamiento separado de restos de
vidrio, metal o plástico. DERRAME DE PRODUCTOS QUIMICOS En caso de producirse un derrame es conveniente contar con un kit de derrames que pueda controlar el peligro asociado al producto químico derramado. Existen diferentes kits los cuales deben utilizarse dependiendo de las sustancias derramadas. KIT DE DERRAMES. Cada kit contiene: � Agente absorbente � Guantes y gafas protectoras � Escobilla y recogedor para levanta
residuos � Bolsa para colocar los residuos � Esponja para limpiar la superficie donde
ocurrió el derrame � Instrucciones de uso. � RECUERDE. La seguridad del laboratorio es mucho más que una serie de advertencias: es una forma de trabajo, es un respeto por los reactivos y microorganismos peligrosos y es la responsabilidad con que cada individuo encara su tarea. RIESGOS BIOLOGICOS � Virus � Bacterias � Hongos
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Solvente orgánicos y Sln. Que no contengan
Solventes orgánicos y Sln. Que contengan
Residuos orgánicos tóxicos, sales de metales
Mercurio y residuos de sales orgánicas de
metálicas re generables
Almacenamiento separado de restos de
En caso de producirse un derrame es conveniente contar con un kit de derrames que pueda controlar
o asociado al producto químico
Existen diferentes kits los cuales deben utilizarse dependiendo de las sustancias derramadas.
Escobilla y recogedor para levantar los
Esponja para limpiar la superficie donde
La seguridad del laboratorio es mucho más que una serie de advertencias: es una forma de trabajo, es un respeto por los reactivos y microorganismos peligrosos y es la responsabilidad con que cada
� Parásitos Contactos – con pacientes Exposición- fluidos corporales, agentes biológicos, desechos hospitalarios RIESGOS DE ACIDENTES DE TRABAJO. � Pinchazos � Cortes con material contaminado� Quemaduras � Resbalones USO DE LOS ELEMENTOS DE PROTEPERSONAL.
Los elementos de protección personal son un complemento indispensable de los métodos de control de riesgos para proteger al trabajador colocando barreras en las puertas de entrada para evitar la transmisión de infecciones. Sin embargo debe recordarse que muchos de los elementos de protección personal en instituciones de salud no fueron diseñados para ese propósito sino para evitar la contaminación de campos quirúrgicos y la transmisión de microorganismos de paciente a paciente a través del personal de salud, por lo cual tienen esa doble función. De acuerdo con el procedimiento a realizar, se determina el uso de elementos de protección específicos tales como: Uso de mascarilla y protectores oculares en los procedimientos que se generen gotas de sangre o líquidos corporales. Con esta medida se previene la exposición de mucosas de boca, nariz y ojos, evitando que se reciban inóculos infectados. Uso de mascarilla buco nasal: protege de eventuales contaminaciones con saliva, sangre o vómito, que pudieran salir del paciente y caer en la cavidad oral y nasal del trabajador. Al mismo tiempo, la mascarilla impide que gotitas de saliva o secreciones nasales del personal de salud contaminen al paciente. Uso de braceras: para evitar el contacto del antebrazo y brazo con sangre o líquidos corporales Uso de guantes: Reducen el riesgo de contaminación por fluidos en las manos, pero no evitan las cortaduras ni el pinchazo. Es
fluidos corporales, agentes biológicos,
RIESGOS DE ACIDENTES DE TRABAJO.
Cortes con material contaminado
USO DE LOS ELEMENTOS DE PROTECCIÓN
Los elementos de protección personal son un complemento indispensable de los métodos de control de riesgos para proteger al trabajador colocando barreras en las puertas de entrada para evitar la transmisión de infecciones. Sin embargo
be recordarse que muchos de los elementos de protección personal en instituciones de salud no fueron diseñados para ese propósito sino para evitar la contaminación de campos quirúrgicos y la transmisión de microorganismos de paciente a
l personal de salud, por lo cual
De acuerdo con el procedimiento a realizar, se determina el uso de elementos de protección específicos tales como: Uso de mascarilla y protectores oculares en los procedimientos que se generen gotas de sangre o líquidos corporales. Con
ene la exposición de mucosas de boca, nariz y ojos, evitando que se reciban
Uso de mascarilla buco nasal: protege de eventuales contaminaciones con saliva, sangre o vómito, que pudieran salir del paciente y caer en la
nasal del trabajador. Al mismo tiempo, la mascarilla impide que gotitas de saliva o secreciones nasales del personal de salud contaminen al paciente. Uso de braceras: para evitar el contacto del antebrazo y brazo con sangre
uantes: Reducen el riesgo de contaminación por fluidos en las manos, pero no evitan las cortaduras ni el pinchazo. Es
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importante anotar que el empleo de guantes tiene por objeto proteger y no sustituir las prácticas apropiadas de control de infecciones, en particular el lavado correcto de las manos. Los guantes deben ser de látex bien ceñidos para facilitar la ejecución de los procedimientos. Si se rompen deben ser retirados, luego proceder al lavado de las manos y al cambio inmediato de estos. Si el procedimiento a realizar es invasivo de alta exposición, se debe utilizar doble guante. El guante se diseñó para impedir la transmisión de microorganismos por parte del personal de salud a través de las manos; por tal motivo cuando se tengan los guantes puestos deben conservarse las normas de asepsia y antisepsia. Para personal de oficios varios y el encargado de manejo de residuos, los guantes deben ser más resistentes, tipo industrial. Delantal de caucho: Es un protector para el cuerpo; evita la posibilidad de contaminación por la salida explosiva o a presión de sangre o líquidos corporales. Gorro: Se usa con el fin de evitar en el trabajador de la salud el contacto por salpicaduras por material contaminado y además evita la contaminación del paciente con los cabellos del trabajador de salud. PROTECCIÓN OCULAR Debe utilizar personal de laboratorio clínico y de patología, deben poseer Ventilación indirecta mediante rejillas laterales, lo que las hace antiempañantes. Permitir el uso de anteojos prescritos. Absorber los rayos ultravioleta y tener lentes resistentes al impacto. Mantenimiento: Lavar los protectores oculares con agua y jabón de tocador � Utilizar un pañuelo facial para secador; no
emplear otro tipo de tela o material abrasivo, tampoco frotarlas con las manos.
� Evitar dejar caer las mono gafas o colocarlas con los lentes hacia abajo porque se pueden rayar fácilmente.
� En lo posible deben ser guardadas en el estuche respectivo.
� Almacenarla en un lugar seguro y en óptimas condiciones de aseo.
� No utilice soluciones cáusticas para su lavado o des germinación.
� No esterilice las mono gafas en autoclave. PROTECCIÓN BUCONASAL Y FACIAL. Mascarilla usuarios: � Todo el personal expuesto a factores de
riesgo biológico. � Características de la mascarilla:
� Es un elemento de protección personal y desechable por turno.
� Protege desde el puente nasal hasta el inicio del cuello; especial para cubrir la barba.
� Debe mantenerse alejada de líquidos inflamables y ácidos porque el roce con estas sustancias o la humedad, puede deteriorar la mascarilla.
� La mascarilla específica para manejo de paciente con diagnóstico de TBC debe tener las siguientes características:
� Filtro tipo Referencia 1860 resistente a los fluidos.
PROTECCIÓN DE CUERPO Y EXTREMIDADES SUPERIORES: Delantales usuarios: personal de laboratorio las características del delantal varían según el oficio a realizar. Para evitar el contacto del cuerpo con fluidos corporales. Lávelo con abundante agua para evitar que el hipoclorito que se utiliza en la desinfección debilite el material, seque el delantal al medio ambiente, evitando que presente quiebres. NORMAS GENERALES DE BIOSEGURIDAD. � Mantener el lugar de trabajo en óptimas
condiciones de higiene y aseo � No es permitido fumar en el sitio de trabajo. � No es permitido la preparación y consumo de
alimentos en las áreas asistenciales y administrativas.
� No guardar alimentos en las neveras ni en los equipos de refrigeración de sustancias contaminantes o químicos.
� Las condiciones de temperatura, iluminación y ventilación de los sitios de trabajo deben ser confortables.
� Las normas universales deben aplicarse con todos los pacientes independientemente del diagnóstico.
� Lávese cuidadosamente las manos antes y después de cada procedimiento e igualmente si se tiene contacto con material patógeno.
� Utilice en forma sistemática guantes plásticos o de látex en procedimientos que conlleven manipulación de elementos biológicos.
� Utilice un par de guantes crudos por paciente. � Absténgase de tocar con las manos
enguantadas alguna parte de su cuerpo y de manipular objetos diferentes a los requeridos durante el procedimiento.
� Emplee mascarilla y protectores oculares durante procedimientos que puedan generar salpicaduras o gotitas aerosoles de sangre u otros líquidos corporales.
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� Evite deambular con los elementos de protección personal fuera de su área de trabajo.
� Mantenga sus elementos de protección personal en óptimas condiciones de aseo, en un lugar seguro y de fácil acceso.
� Si presenta alguna herida, por pequeña que sea, cúbrala con esparadrapo o curitas. Mantenga actualizado su esquema de vacunación contra Hepatitis B.
� Las mujeres embarazadas que trabajan en ambientes hospitalarios expuestas a factor de Riesgo Biológico de transmisión parenteral deberán ser muy estrictas en el cumplimiento de las precauciones universales y, cuando el caso lo amerite, se deben reubicar en áreas de menor riesgo.
� Aplique en todo procedimiento asistencial las normas de asepsia necesarias.
� Utilice las técnicas correctas en la realización de todo procedimiento, maneje con estricta precaución los elementos corto punzante y deséchelos en los guardianes ubicados en cada servicio. Los guardianes deberán estar firmemente sujetos de tal manera que pueda desechar las agujas halando la jeringa para que caigan entre el recipiente, sin necesidad de utilizar para nada la otra mano. Cuando no sea posible la recomendación anterior, evite desenfundar manualmente la aguja de la jeringa. Deseche completo.
� No cambie elementos corto punzantes de un recipiente a otro.
� Absténgase de doblar o partir manualmente la hoja de bisturí, cuchillas, agujas o cualquier otro material corto punzante.
� Evite reutilizar el material contaminado como agujas, jeringas y hojas de bisturí.
� Todo equipo que requiera reparación técnica debe ser llevado a mantenimiento, previa desinfección y limpieza por parte del personal encargado del mismo. El personal del área de mantenimiento debe cumplir las normas universales de prevención y control del factor de riesgo Biológico
� Realice desinfección y limpieza a las superficies, elementos, equipos de trabajo, al final de cada procedimiento y al finalizar la jornada de acuerdo a el proceso descrito en el manual de limpieza y desinfección.
� En caso de derrame o contaminación accidental de sangre u otros líquidos corporales sobre superficies de trabajo. Cubra con papel u otro material absorbente; luego vierta hipoclorito de sodio a 5000 partes por millón sobre el mismo y sobre la superficie circundante, dejando actuar durante 30 minutos; después limpie nuevamente la superficie con desinfectante a la misma
concentración y realice limpieza con agua y jabón.
� El personal encargado de realizar dicho procedimiento debe utilizar guantes, mascarilla y bata.
� En caso de ruptura del material de vidrio contaminado con sangre u otro líquido corporal los vidrios se deben recoger con escoba y recogedor; nunca con las manos.
� Los recipientes para transporte de muestras debe ser de material irrompible y cierre hermético. Debe tener preferiblemente el tapón de rosca manipule, transporte y envíe las muestras disponiéndolas en recipientes seguros, con tapa y debidamente rotuladas, empleando gradillas limpias para su transporte. Las gradillas a su vez se transportarán en recipientes herméticos de plástico o acrílicos que detengan fugas o derrames accidentales. Además deben ser fácilmente lavables.
� En caso de contaminación externa accidental del recipiente, éste debe lavarse con hipoclorito de sodio a 1000 partes por millón y secarse.
� Restrinja el ingreso a las áreas de alto riesgo biológico al personal no autorizado, al que no utilice los elementos de protección personal necesarios y a los niños.
� la ropa contaminada con sangre, líquidos corporales u otro material orgánico debe ser enviado a la lavandería en bolsa plástica roja.
� Disponga el material patógeno en las bolsas de color rojo, rotulándolas con el símbolo de riesgo biológico
� En caso de accidente de trabajo con material corto punzante haga el auto reporte inmediato del presunto accidente de trabajo.
NORMAS DE BIOSEGURIDAD ESSIFICAS PARA EL ÁREA DE LABORATORIO CLÍNICO. Trabajar en áreas de alto riesgo biológico. Utilice permanentemente en el área de trabajo los elementos de protección Personal: mono gafas, mascarilla, bata plástica y guantes. Las batas deben manejarse como material contaminado. Deben disponerse en bolsa Roja y enviarlas a la lavandería debidamente marcada y sellada. Cuando el procedimiento lo amerite o se presuma un probable riesgo de salpicadura, usar delantal plástico. Realice los procedimientos empleando las técnicas correctas para minimizar el riesgo de aerosoles,
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gotitas, salpicaduras o derrames. Es fundamental el empleo de centrífugas provistas de carcazas. Use pipetas automáticas para evitar cualquier riesgo de contaminación oral. El pipetear líquidos con la boca es una práctica inadecuada y altamente riesgosa. Las cánulas, tubos contaminados y demás elementos de trabajo deben someterse a procesos de desinfección, des germinación y esterilización en autoclave; igual tratamiento deberá darse a las cánulas, tubos y demás elementos de trabajo. A los tubos de ensayo con sangre en coágulos, se les debe colocar hipoclorito de sodio a 5000 ppm. Durante 30 minutos, taparlos y una vez desechado este contenido, proceder a la des germinación y esterilización mediante calor húmedo o seco para su posterior reutilización. Los demás fluidos orgánicos (flujos, cultivos, entre otros) deben tratarse mediante desinfección con hipoclorito a 5.000 ppm. Durante 30 minutos. El material contaminado que deba ser desechado fuera del laboratorio, debe introducirse en recipientes resistentes, que se cerrarán antes de sacarlos del laboratorio, estos a su vez se depositaran en bolsa Roja rotulada como: “Riesgo Biológico – material contaminado a incinerar”, y entregarla al personal del Aseo para su disposición final. Los procedimientos que entrañan manipulación de cultivos de células infectadas, manejo de material con elevadas concentraciones de bacterias y actividades que generen aerosoles o gotitas como en los procedimientos de homogeneización y mezcla rigurosa, deben llevarse a cabo utilizando cabinas de seguridad biológica. El personal de Microbiología, debe utilizar además del equipo de protección personal básico, la mascarilla de alta eficiencia. En forma permanente se deben conservar las puertas del laboratorio cerradas, evitar el ingreso de personas ajenas al área; si ello ocurre éstas deben ser informadas sobre los posibles riesgos y deberán cumplir con las normas exigidas dentro del laboratorio. Igualmente se debe restringir el acceso de niños. Limite el empleo de agujas y jeringas utilícelas solo cuando sea estrictamente necesario. En tales casos emplee las precauciones universales indicadas.
NORMAS DE BIOSEGURIDAD PARA EL ÁREA DE CENTRAL DE ESTERILIZACIÓN Utilice siempre guantes de látex para procedimientos que conlleven manipulación de elementos biológicos y cuando maneje instrumental y equipo contaminado. Absténgase de tocar cualquier parte del cuerpo y de manipular objetos diferentes a los requeridos durante el procedimiento. Emplee mascarilla, gorro, delantal plástico y mono gafas durante los procedimientos que puedan generar salpicaduras y contacto con aerosoles. Utilice siempre dentro del área: pijama, gorro, mascarilla y evite deambular con ellos fuera de su lugar de trabajo. PROTOCOLO DE INMUNIZACIÓN Algunas de las patologías transmisibles que pudieren tener origen ocupacional pueden ser prevenibles por medio de vacunación y además en algunas es posible evaluar su efectividad por medio de titulación de anticuerpos. El propósito de este protocolo es exponer las actividades a desarrollar para la inmunización del personal expuesto a factores de riesgo biológico en la institución. El objetivo general es proteger a los trabajadores de salud expuestos a factores de riesgo biológicos de adquirir infecciones por microorganismos susceptibles de ser controlados mediante la aplicación de vacunas. PRECAUCIONES BASADAS EN LA FORMA DE TRANSMISIÓN PRECAUCIONES ESTÁNDAR. Bata Debe usarse siempre que exista el riesgo de salpicaduras o el contacto con sangre o líquidos corporales (peritoneal, cefalorraquídeo, pleural, articular, pericárdico, amniótico, semen y secreciones vaginales). Gafas o máscara facial Debe usarse siempre que exista el riesgo de salpicaduras por sangre o líquidos corporales en los ojos o en la cara. Guantes Se usan para el manejo de materiales contaminado con sangre o líquidos corporales. Precauciones basada en la transmisión. Precauciones Indicaciones Lavado de manos Gafas, mascarilla, bata protectora y guantes con todos los pacientes
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Se aplica a paciente quemado contacto con sangre, líquidos corporales, heces, orina, vómito, esputo, lágrimas, secreciones nasales y saliva, piel no intacta y membranas mucosas, se excluye el sudor e higiene de las manos debe realizarse antes y después del contacto con cada paciente y al tener contacto con sangre, líquidos corporales, excreciones y secreciones. Materiales corto punzantes evitar poner el protector a la aguja y disponer de recipientes rígidos para el desecho de estos materiales. PRECAUCIONES AÉREAS Las precauciones para la transmisión de microorganismos por vía aéreas buscan evitar la transmisión de partículas menores o iguales a 5 micras, que pueden permanecer suspendidas en el aire por períodos prolongados y que pueden ser inhaladas por individuos susceptibles. Para el contacto con pacientes con varicela se indica el uso de guantes y bata.
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Anexo Resultado 2.
Taller de capacitación a los usuarios que acuden a la UAA Cariamanga.
Tema: indicaciones para la realización exámenes de laboratorio clínico en la UAA
Objetivo general: capacitar al paciente en cómo debe presentarse a dejar las muestras en el laboratorio clínico de la UAA Cariamanga.
Objetivos específicos:
1. Evaluar el nivel de conocimientos del paciente en cómo debe presentar sus muestras.
2. Determinar causas por la cual el paciente desconoce cómo debe presentarse en el laboratorio.
Agenda de trabajo:
1. Inscripción de participantes. 2. Saludo de bienvenida. 3. Exposición de la charla a todos los asistentes. 4. Socialización. 5. Refrigerio. 6. Agradecimiento.
Desarrollo del taller:
1. Inscripción de los participantes. 2. Saludo de bienvenida a todos los presentes. 3. Exposición de la charla a todos los asistentes.
3.1. Horarios de atención. 3.2. Indicaciones para los diferentes exámenes a realizarse. 3.3. Indicaciones para la recolección de muestras de los diferentes exámenes.
• Muestra de sangre, 12 horas de ayuno. 4. Preguntas de todos los asistentes.
5. Refrigerio
6. Clausura y agradecimiento.
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Anexo resultado 2.1
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Toma de muestra de sangre.
Toma de muestra de orina
Toma de muestra de heces
Toma de muestra se secreción vaginal.
Anexo 2.2
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Anexo 2.3
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ENCUESTA
UNIDAD DE ATENCION AMBULATORIA IESS CARIAMANGA
TEMA: Indicación de la toma de muestras en el laboratorio Clínico
OBJETIVO:” Determinar el nivel capacitación de los pacientes que acuden al laboratorio clínico”.
DATOS INFORMATIVOS:
Encuestador:
Encuestado:
Fecha:
Lugar:
1. Sabe Usted con cuantas horas de ayuno de presentarse en el laboratorio para un examen de sangre:
a).8 horas
b). 12 horas
c). 6 horas
2. Antes de recolectar la muestra de orina debe hacerlo previo a:
a). lavado genital.
b).sin lavado genital
6. Para recolectar la muestra de heces lo debe hacer de siguiente manera:
a). llena la caja
b). en una caja de cartón
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c). un volumen de 20ml (similar a un maní)
7. como debe presentarse para un examen de secreción: a). previo un lavado genital
b). no realizarse lavado genital el día de toma de la muestra
c). ninguna de las dos anteriores.
8. Cuando se debe realizar en el mismo día la toma de muestra de secreción y también examen de orina debe presentarse:
a). con lavado genital
b). sin lavado genital para toma de secreción y luego de un lavado toma la muestra de orina
c). primero toma la muestra de orina y luego se hace la muestra de secreción
Anexo Resultado 2.4
Manual de Toma de Muestras en el Laboratorio
clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS
Cariamanga.
Autora, Tecnóloga Médica Wilma P. Herrera.
Manual de Toma de Muestras en el Laboratorio
clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS
Cariamanga.
Autora, Tecnóloga Médica Wilma P. Herrera.
2012
Muestras en el Laboratorio
Atención Ambulatoria IESS
Autora, Tecnóloga Médica
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INTRODUCCION
El laboratorio clínico de la Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga es un apoyo primordial para los profesionales médicos ya que mediante los análisis ellos pueden confirmar los diagnósticos que son sospechados clínicamente de las diferentes patologías y así poder iniciar los tratamientos respectivos. Por lo tanto para alcanzar estándares de calidad los laboratorios deben contar con un manual de toma de muestras y de esta manera garantizar resultados de calidad. La calidad de un examen no solo depende de un procedimiento analítico correcto sino también de una correcta toma de muestra. En esta etapa se deben considerar una serie de factores tales como: preparación del paciente, horario de punción, traslado y conservación de la muestra, identificación correcta de la muestra, etc. Esta Unidad de Atención Ambulatoria. Consciente de que la etapa pre analítica, corresponde a uno de los principales puntos críticos para la obtención de un resultado que refleje el estado real del paciente a preparado un Manual de toma de muestras de exámenes de laboratorio con información actualizada sobre el conjunto de exámenes procesados en un laboratorio, nos hemos preocupado de organizarlo de tal manera que resulte fácil y rápida la consulta sobre un determinado examen. Este documento se desarrolló con la finalidad de contar con un instrumento que contenga la secuencia de los pasos necesarios, que aseguren la correcta ejecución de todos los procedimientos técnicos de cada uno de los laboratorios, y de esta manera contribuir al ordenamiento y estandarización de los mimos. Este manual será un instrumento que sirva de guía para todos cuantos trabajamos en esta unidad de salud, en beneficio de todos los usuarios que demandad atención en este laboratorio. OBJETIVO GENERAL • Establecer parámetros que faciliten el desarrollo adecuado de los procedimientos a seguir en el laboratorio de la UAA Cariamanga. OBJETIVOS ESPECIFICOS • Brindar capacitación al personal que labora en esta institución. • Contar con un instrumento que sirva de guía para la evaluación y monitoreo de las actividades de laboratorio. • Ejecutar los pasos de forma ordenada y sistematizada. El presente manual servirá de guía para la correcta recepción de muestras en el laboratorio de Unidad de Atención Ambulatoria IESS Cariamanga. Primera parte. Elaboración de horarios para la recepción de muestras y entrega de resultados En el laboratorio de la UAA Cariamanga los horarios están establecidos de la siguiente manera: � 7 horas a 9 horas 30 minutos la recepción de muestras. � entrega de resultados de 13 horas a 16 horas. Segunda parte. Indicaciones a los pacientes en la preparación previa a realizarse los exámenes. Exámenes de sangre:
Toma de muestra de sangre. � Para realizarse un examen de sangre el paciente debe de tener por lo menos 12 horas de ayuno, antes de tomarse la muestra. � Evitar el estrés antes y durante la toma de la muestra. � No ingerir bebidas alcohólicas antes ni el día de la toma de la muestra. � No fumar antes ni cuando se está tomando la muestra. � Informar al laboratorista si está administrándose algún medicamento. En el caso de pacientes con enfermedades crónico degenerativas como es el caso de los diabéticos que se tengan que realizar exámenes como el examen de la glucosa basal, tiene que presentarse en ayunas de 12 horas y tomarse la muestra, luego ir a desayunar y a las dos horas siguientes de haber desayunado tomarse la segunda muestra para realizarse la prueba pos-pradial. Para realizarse la toma de muestra de sangre primero debemos observar el pedido de examen para saber qué análisis el medico requiere y de esta manera procedemos a tomar la muestra, si es para realizar una biometría debemos tomar la muestra en un tubo color de tapa lila ya que este esta con heparina para que no se produzca la coagulación. Cuando es para realizar análisis de química sanguínea tomamos la muestra en tubo tapa roja para centrifugar y separar el coágulo del suero, de esta misma manera para la realización de análisis de hormonas. Exámenes de orina.
� Para recolectar la muestra de
orina de lo debe recoger en un frasco estéril de boca ancha. � Antes de la recolección debe practicarse un lavado genital con agua y jabón. � Se debe recolectar la primera orina de la mañana desechando la primer chorro de la misión, y recolectar la segunda directamente en el frasco. � No recoger muestras de orina si se encuentra menstruando. � Informar al laboratorista si se encuentra administrándose algún medicamento. Exámenes de Heces.
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� Recolectar la muestra en un recipiente estéril de tapa rosca. � No usar recipientes de cartón. � Con una cucharilla de plástico desechable, recoger una parte del espécimen y deposite en el recipiente estéril. � Bastara con un volumen similar al de un maní ( 20 ml). � Debe evitar la presencia de orina en la muestra de heces. � Para los exámenes seriados se recomienda recolectar las muestras en tres días seguidos. Exámenes de secreción vaginal.
� No realizarse duchas vaginales el día de la toma de la muestra. � Evitar el uso de óvulos, o medicamentos intravaginales en 8 días antes. � Si requiere de un examen de orina y de secreción vaginal acudir al laboratorio para que le tomen la muestra de secreción y luego de un previo lavado recoja la muestra de orina. INTRUCCIONES AL PACIENTE PARA LA TOMA DE MUESTRAS
AYUNO DEL APCIENTE Para la toma de muestras de los exámenes que necesita el apaciente previamente debe seguir las siguientes instrucciones: � No debe ingerir alimentos sólidos o líquidos (excepto agua) durante 8 horas antes del examen. � El día anterior a la toma de la muestra, no debe beber alcohol, fumar ni comer después de las 22 horas. � No debe esperar de pie, ni cargar objetos pesados mientras espera. � Los pacientes diabéticos no deben tomar sus medicamentos o inyectar la insulina hasta después de obtenida la muestra a menos que el médico tratante indique otra cosa Los pacientes diabéticos deben indicar su condición al momento de presentarse a la toma de la muestra. RECOLECCION DE ORINA PARA: ORINA COMPLETA, SEDIMENTO DE ORINA Y UROCULTIVO. Para la correcta interpretación de los resultados es muy importante su colaboración y es fundamental que usted recolecte la primera orina de la mañana. No forzar la obtención de la muestra mediante la ingestión de líquidos ya que estos diluyen la orina, alterando el recuento de microorganismos. Antes de la recolección de la orina se procede a un aseo de la zona genital con agua y jabón Paciente mujer. Lave los genitales, separando cuidadosamente los labios mayores con un algodón embebido en agua jabonosa y limpiando de adelante hacia atrás una sola vez. Elimine el algodón y repita el procedimiento con otro algodón. Enjuague con agua eliminando totalmente el resto de jabón y seque la zona con un paño seco y limpio. En lo posible evite recolectar la muestra si está en su periodo menstrual, en caso contrario cubra la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se contamine. Paciente hombre: Retraiga la piel anterior del pene (prepucio) y lave la zona con algodón embebido en agua
jabonosa. Enjuague con agua y no toque la zona aseada. Seque con un paño seco y limpio. Luego del aseo genital, elimine el primer chorro de orina y sin cortar la misión, recolecte el segundo chorro de orina en un frasco o tubo, llene hasta la mitad, tape lleve la muestra antes de 2 horas; a la toma de muestra correspondiente. PARASITOLOGICO • El paciente debe tomar una muestra de deposición de acuerdo a las siguientes instrucciones: • Debe defecar un recipiente limpio y seco y sin orina • Con una paleta saque una porción del tamaño de una nuez pequeña deposite en el recipiente. • Si el paciente usa pañal debe tomarse de este la muestra y depositarla en el recipiente • Rotule el frasco con los nombres y apellidos del paciente • No deben ingerir en los últimos días antes al examen antibióticos quimioterapéuticos purgantes aceitosos, antiparasitarios
SECCION DE QUIMICA SANGUINEA.
ACIDO URICO. USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Se utiliza para el diagnóstico y tratamiento de numerosos desordenes renales y metabólicos, entre los que se incluye gota, leucemia, psoriasis, falla renal, mieloma múltiple, linfoma, policitemia, toxemia de embarazo, entre otros. RANGOS DE REFERENCIA: Hombres: 3.4- 7.0 mg/dl (adultos) Mujeres: 2.4 – 5.7 mg/dl (adultos) INSTRUCCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. Evitar el consumo de café y otros alimentos ricos en cafeína. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 2ml en pacientes pediátricos y en adultos 4 ml TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin Anticoagulante) CONDICIONES DEL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. Evitando agitación para prevenir hemolisis, hasta un tiempo de 4 horas después de la toma de la muestra.
BILIRRUBINA TOTAL Y DIRECTA USO REFERENCIAL DE LA PRUEBA: Evaluación, clasificación y seguimiento de las ictericias tanto del adulto como de los neonatales. La hiperbilirrubinemia se clasifica como conjugada y no conjugada. La conjugada es hepática., colestasia, cirrosis biliar primaria, hepatitis, ictericia familiar y la post hepática, obstrucción biliar por cálculos, cáncer o mal formaciones de la vía biliar. La no conjugada se clasifica en pre hepática (en estados hemolíticos y hematomas extensos) y la hepática. RANGOS DE REFERENCIA: Adultos: Bilirrubina total menor o igual a 1.1 mg/dl Bilirrubina directa menor o igual a 0.30mg/dl Recién nacidos: Mayor de 24 horas 2.0 a 6.0 mg/dl Mayor a 48 horas 6.0 a 10.0 mg/dl INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. Evitar el consumo de alimentos amarillos (zapallo, zanahoria) tres días antes del examen. INSTRUCIONES AL PRESONAL DE LA TOMA DE MUESTRA: En niños pequeños se utiliza la recogida de sangre en tubos capilares de Vidrio heparinizado, de la zona lateral media plantar del pie desinfectándola correctamente.
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TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 2 ml en pacientes pediátricos y 4 ml en adultos. TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin anticoagulante) o capilar heparinizado). CONDICIONES DEL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. Evitando agitación para prevenir hemolisis, hasta un tiempo de 4 horas después de la toma de la muestra, proteger la muestra de la luz. LIMITACIONES: La hemolisis y la lipemia invalidan la prueba, medicamentos que alteran el resultado (ácido ascórbico, ácido acetilsalicílico, clorpromazina, eritromicina entre otros). COLESTEROL TOTAL USO PREFERENTE DE LA MUESTRA: Medición del riesgo de aterosclerosis, hipercolesterolemia, enfermedad coronaria entre otros. Se asocia a exámenes como colesterol HDL, colesterol LDL y triglicéridos. RANGOS DE REFERENCIA: Menor o igual a 200 mg/dl (adultos). INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 12 a 14 horas antes de la prueba. No ingerir alcohol 24 horas antes de la prueba. Consumir una dieta estable en colesterol tres semanas antes de la prueba debe ser con bajo contenido graso y no tener elementos ricos en colesterol. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 4 ml. TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin anticoagulante). CONDICIONES DEL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. Evitando agitación para prevenir hemolisis, hasta un tiempo de 4 horas después de la toma de la muestra. LIMITACIONES: Muestras lipemicas, ictéricas y muy hemolisadas invalidad la prueba. COLESTEROL HDL USO PREFERENCIAL DE LA PRUEBA: Medición del riego de aterosclerosis e hipercolesterolemia enfermedad coronaria entre otros. Se asocia a exámenes como colesterol total, colesterol LDL y triglicéridos. RANGOS DE REFERENCIA: Hombres > 35 mg/dl (adultos) Mujeres > 40 mg/dl (adulto) INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 12 a 14 horas antes de la prueba. No ingerir alcohol 24 horas antes de la prueba. Consumir una dieta estable en colesterol tres semanas antes de la prueba debe ser con bajo contenido graso y no tener elementos ricos en colesterol. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 4 ml. CONDICIONES DEL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. Evitando agitación para prevenir hemolisis, hasta un tiempo de 4 horas después de la toma de la muestra. LIMITACIONES: Muestras lipemicas, ictéricas y muy hemolisadas invalidad la prueba. LIMITACIONES: La hemolisis y la lipemia invalidan la prueba. CREATININA EN SUERO. USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Es un indicador específico de función renal, muestra el equilibrio entre la formación y la excreción de creatinina. Los valores son en un 20 a 40 % mayores en las últimas horas de la tarde que en la mañana. La creatinina se eleva en daño renal, en necrosis musculo-esquelética, trauma, distrofia muscular progresiva, esclerosis lateral amiotrofia, amiotonia congestiva, dermatofitosis, miastenia gravis, ayuno prolongado y acidosis diabética. RANGOS DE REFERENCIA: Hombres: 0.70 a 1.2 mg/dl (adultos) Mujeres: 0.5 a 0.90 mg/dl (adultos) INSTRUCIONES AL PACIENTE:
Ayuno de 8 horas antes de la prueba. Evitar el ejercicio 8 horas antes y la ingesta de carnes rojas 24 horas antes de la prueba. INSTRUCIONES AL PRESONAL DE LA TOMA DE MUESTRA: No obtener la muestra durante la hemodiálisis. Evitar la hemolisis de la muestra. TIPO DE MUESTRA: Sangre un volumen de 4 ml. TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja CONDICIONES D EL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. Evitando agitación para prevenir hemolisis, hasta un tiempo de 4 horas después de la toma de la muestra LIMITACIONES: La hemolisis y la lipemia invalidan la prueba. GLUTAMICO OXALOACETICO TRANSAMINSA (GOT) GLUTAMICO PIRUVICO TRANSAMINASA (TGP) USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Para el diagnostico, pronostico y valoración de afecciones hepáticas. Estas enzimas se elevan significativamente en afecciones agudas, como en hepatitis y necrosis hepática de diferente etiología y en menor nivel en cirrosis, ictericia obstructiva, carcinoma metastasico, congestión hepática y colestasia intrahepatica. Puede haber elevación ligera en IAM y pancreatitis aguda, aunque la elevación de la GOT en el IAM es más significativa. RANGOS DE REFERENCIA. GOT hombres < 37U/L, mujeres <31 U/L (adulto) GPT hombres < 41 U/L, mujeres <31 U/L (adulto) INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba INSTRUCIONES AL PRESONAL DE TOMA DE MUESTRA: Evitar el uso prolongado del torniquete y la hemolisis de la muestra. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 4 ml TIPO DE TUBO: Tubo de tapa roja CONDICIONES D EL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. Evitando agitación para prevenir hemolisis, hasta un tiempo de 4 horas después de la toma de la muestra LIMITACIONES: La hemolisis y la lipemia invalidan la prueba. Fármacos que interfieren isoniazida, fenotiazinas, eritromicina, esteroides opiáceos y salicilatos producen un aumento de GOT en el suero. GLUCOSA EN SANGRE USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Para el diagnóstico y seguimiento de trastornos en el metabolismo de los hidratos de carbono (diabetes mellitus, hipoglicemia neonatal hipoglicemia idiopática). RANGOS DE REFERENCIA: 70 – 105 mg/dl (adultos) INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 a 12 horas antes de la prueba. No administrar hipoglicemiantes orales hasta obtención de la muestra TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 4 ml. TIPO DE TUBO: Tubo de tapa roja. CONDICIONES D EL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. Evitando agitación para prevenir hemolisis, hasta un tiempo de 4 horas después de la toma de la muestra. LIMITACIONES: En pacientes diabéticos, la muestra sanguínea debe obtenerse antes del tratamiento con insulina o con hipoglucemiantes orales. Muestra muy hemolizada y lipemicas invalidad la prueba. HEMOGLOBINA GLICOSILADA (HBA1C) USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Seguimiento a largo plazo de la glicemia en pacientes con diabetes mellitus. Proporciona un pronóstico de la evaluación de complicaciones diabéticas (neuropatías y retinopatías) en pacientes con diabetes. En su empleo clínico de rutina, por lo general basta en realizar la prueba cada 3 o 4 meses. En situaciones como la diabetes gestacional o al modificar el
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tratamiento puede ser conveniente medir la HBA1C en intervalos de 2 a 4 semanas. RANGOS DE REFERENCIA: 4.8 a 5.9 % INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 4 ml. TIPO DE TUBO: Tubo de tapa roja CONDICIONES D EL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. En un tiempo de 4 horas LIMITACIONES: Cualquier situación que produzca una reducción en la vida media de los eritrocitos (anemia hemolítica, embarazo, hemorragias crónicas o agudas recientes de gran magnitud) y la lipemia disminuirá los valores de HBA1C. TRIGLICERIDOS USO PREFERENCIAL DE LA PRUEBA: Evaluación del riego de enfermedad cardiaca y vascular valores aumentados se encuentran en las hiperlipoproteinemias, obesidad, hepatitis viral, alcoholismo, cirrosis alcohólica biliar, pancreatitis aguda y crónica, síndrome nefrótico, falla renal crónica, IAM, trombosis cerebral, hipotiroidismo, lactosuria, malnutrición, síndrome de mala absorción. RANGOS DE REFERENCIA: < 200 mg/dl INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 12 a 14 horas antes de la prueba. No beber alcohol antes de la toma de la muestra. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 4 ml. TIPO DE TUBO: Tubo de tapa roja CONDICIONES D EL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. En un tiempo de 4 horas LIMITACIONES: la ingesta calórica excesiva y la dieta rica en carbohidratos aumentan los niveles de triglicéridos séricos. Fármacos que interfieren (ácido ascórbico, catecolaminas, cortico esteroides, ciclosporina, diazepan, diuréticos, estrógenos, anticonceptivos orales, etanol, retinol, aumentan los niveles séricos) El ácido aminosalisilico, asparaginasa, heparina, niacina disminuyen los niveles séricos. SECCION INMUNOLOGICA. PROTEINA C REACTIVA. (PCR). USO PREFERENTE DE LA MUESTRA: Diagnóstico de enfermedades infecciosas de origen bacteriano y desordenes inflamatorio, Herramienta útil en el monitoreo de la respuesta antimicrobiana. RANGOS DE REFERENCIA: < 5.0 mg/L INSTRUCIONES AL PACIENTE: ayuno de 8 horas TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 4 ml. TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin anticoagulante). CONDICIONES DEL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. Evitando agitación para prevenir hemolisis, hasta un tiempo de 4 horas después de la toma de la muestra. LIMITACIONES: Muestras lipemicas, y hemolisadas invalidad la prueba. Fármacos que interfieren: Estrógenos progesterona provocan un aumento en los niveles séricos. Fibratos, niacina, estatinas , provocan una disminución. ANTICUERPO ANTIESTREPTOLISINA O (ASO). USO PREFERENCIAL DE LA PRUEBA: La detención de anticuerpos anti-estreplisina o se utiliza para el diagnóstico de infección post Estreptococos-beta-hemolíticos de los grupos A, C, G. Los niveles máximos alcanzados son entre tres a cinco semanas post infección y se puede asociar con fiebre reumática. RANGOS DE REFERENCIA: Negativo. < 200 Ul / mL. INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. INSTRUCIONES AL PACIENTE DE TOMA DE MUESTRA: Evitar hemolisis de la muestra.
TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 2 a4 ml TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin aditivos) CONDICIONES DE TRANSPORTE: Temperatura ambiente. LIMITACIONES: La hemolisis, lipemia e ictericia invalidad la prueba. FACTOR REUMATOIDEO (FR). USO PREFERENCIAL DE LA PRUEBA: El factor reumatoideo es un auto anticuerpo contra la inmunoglobulina (IGG), comúnmente presente en altas concentraciones en muestras de pacientes con artritis, la medición de factor reumatoideo es muy útil en el diagnóstico y evaluación de terapia de enfermedades como artritis reumatoidea, lupus eritematoso sistémico. Síndrome de sjogren´s, crioglobulinemia RANGOS DE REFERENCIA: Negativo. < 8.0Ul / mL. INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la toma de muestra. INSTRUCIONES AL PACIENTE DE TOMA DE MUESTRA: Evitar hemolisis de la muestra. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 2 a4 ml TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin aditivos) CONDICIONES DE TRANSPORTE: Temperatura ambiente. LIMITACIONES: La hemolisis, lipemia e ictericia invalidad la prueba. V.D.R.L. EN SUERO. USO PREFERENTE DE LA MUESTRA: detección de anticuerpos reaginicos contra el treponema pallidum. RANGOS DE REFERENCIA: no reactivo INSTRUCIONES AL PACIENTE: ayuno de 8 horas TIPO DE MUESTRA: sangre TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin anticoagulante). CONDICIONES DEL TRASPORTE: Los tubos deben trasportase tapados en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a temperatura ambiente. Evitando agitación para prevenir hemolisis, hasta un tiempo de 4 horas después de la toma de la muestra. LIMITACIONES: Muestras lipemicas, y hemolisadas invalidad la prueba pueden presentarse falsos positivos en embarazo o personas con enfermedad autoinmunes. ANTIGENO PROSTATICO ESPECIFICO TOTAL (PSA TOTAL) USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: La detención de la PSA total es de gran utilidad en el diagnóstico y especialmente, en la monitorización pre y pos quirúrgico del adenocarcinoma prostático y de terapia anti androgénica. RANGOS DE REFERENCIA: Hasta 0.8 ng/ml. INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. INSTRUCIONES AL PERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: Evitar hemolisis de la muestra TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 4ml TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin aditivos) CONDICIONES DE TRANSPORTE: temperatura ambiente. LIMITACIONES: La hemolisis, lipemia e ictericia invalidad la prueba. Muestras de pacientes con terapia de anticuerpos monoclonales pueden presentar falsos valores por interferencia con el método. La presencia de anticuerpos halterófilos puede interferir en la determinación. Se puede elevar los valores de PSA después de manipulación rectal, biopsia o ultrasonografía prostática y después de eyacular. HORMONA GONADOTROPINA CORIONICA (B-hCG) USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: La detención de la B-hCG se utiliza para la confirmación de embarazos, seguimiento de embarazos anormales (intrauterinos o ectópicos) con mediciones seriadas cuantitativas de B-hCG. Niveles relativamente bajos se asocian a embarazos intrauterinos anormales. Niveles elevados de B-hCG se encuentran en mola hidatiforme y casos de carcinoma RNGOS REFERENCIALES: Adultos < 5 mlU/ml. INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba.
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INSTRUCIONES AL PERSONAL EN LA TOMA DE MUESTRA: evitar la hemolisis de la muestra. TIPO DE MUESTRA: Sangre. En un volumen de 4ml. TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja. LIMITACIONES: La hemolisis, lipemia e ictericia invalidad la prueba. Muestras de pacientes con terapia de anticuerpos monoclonales pueden presentar falsos valores por interferencia con el método. La presencia de anticuerpos heterofilospueden interferir en la determinación. HORMONA TETRAYODOTIRONINA (T4). USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: La determinación de la T4 resulta útil para el control de la mayoría de los pacientes con hipertiroidismo o hipotiroidismo. En embarazo y en el tratamiento hormonales anticonceptivos, existe un aumento en la concentración de la TBG que conduce a un aumento de la T4 total. RANGOS DE REFERENCIA: Adultos.4.87 a 11.72 ug/dl. INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba INSTRUCIONES AL PERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: Evite hemolisis de la muestra TIPO DE MUESTRA: Sangre. En un volumen 2 a 4 ml TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin anticoagulante) CONDICIONES DE TRANSPORTE: Temperatura ambiente. LIMITACIONES: La hemolisis, lipemia e ictericia invalidad la prueba. Los ácidos grasos compiten con la tiroxina por los sitios de unión de la TGB. HORMONA TIROESTIMULANTE (TSH) USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Esta hormona regula la producción de hormonas tiroideas T3 y T4, por lo tanto es de gran utilidad en el diagnostico deferencial de hipotiroidismo y como ayuda en el monitoreo de terapia tiroidea. Se encuentra disminuida e incluso indetectable en los hipertiroideos, en el hipertiroidismo secundario a tumores se encuentra elevada. Y bajo o normal en el hipotiroidismo pituitario. RANGOS DE REFERENCIA: Adultos de 0.35 a 6.2 uUl /ml. INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. INSTRUCIONES AL PERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: Evitar hemolisis de la toma de muestra. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen 2 a 4 ml TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin anticoagulante) CONDICIONES DE TRANSPORTE: Temperatura ambiente. LIMITACIONES: La hemolisis, lipemia e ictericia invalidad la prueba. La presencia de auto anticuerpos anti- TSH interfiere en la determinación de TSH. HORMONA TRIYODOTIRONINA (T3). USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Esta hormona tiene un importante rol en el diagnóstico de pacientes con desordenes de función tiroidea, también en condiciones de deficiencia de yodo. Los niveles de T3 se encuentran en la mayoría de los estados de hipertiroidismo, el estrés y el ayuno prolongado producen disminución en los niveles de T3 los que caen rápidamente en el transcursos de 24 a 48 horas RANGOS DE REFERENCIA: Adultos de 0.60 a 2.02 ul /dl. INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. INSTRUCIONES AL PERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: Evitar hemolisis de la toma de muestra. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen 2 a 4 ml TIPO DE TUBO: Tubo tapa roja (sin anticoagulante) CONDICIONES DE TRANSPORTE: Temperatura ambiente. LIMITACIONES: La hemolisis, lipemia e ictericia invalidad la prueba. Las anfetaminas incrementan los niveles de T3. SECCIOON DE HEMATOLOGIA. HEMOGRAMA COMPLETO. USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Diagnostico de patologías hematológicas, infecciones, hemorragias. RANGOS DE REFERENCIA: Recuento de eritrocitos
Hombres: 4.6-6.2 milon/ul Mujeres: 4.2-5 millon/ul Hematocrito Hombres: 39-48% Mujeres: 36-46 % Hemoglobina: Hombres: 13-16 Mujeres: 12-15.6 g/dl HCM 27 -3 1pg VCM 82-97 fl CHCM 32-36 g/dl Recuento de leucocitos: 5-10 miles/ul Formula leucocitaria: Basófilos : 0-1% Eosinofilos: 2-4 % Segmentados: 40-60 % Linfocitos: 30-40 % Monocitos. 4-8 % Recuento de plaquetas: 150-450 miles/ul INSTRUCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 8 horas. INSTRUCIONES AL PERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: Una vez extraída la muestra, se debe realizar una inversión completa y suave del tubo 10 veces, para mezclar adecuadamente la sangre y el anticoagulante. TIPO DE MUESTRA: Sangre en un volumen de 4 ml. TIPO DE TUBO: Tubo tapa lila (anticoagulante EDTA) CONDICCIONES DEL TRASPORTE: Los tubos se deben trasportar en posición vertical, tapados, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente .Hasta 4 horas desde la toma de la muestra. LIMITACIONES: No se procesan muestras coaguladas y micro coaguladas. TIEMPO DE SANGRIA. USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Esta prueba se utiliza para valorar principalmente el número y la función capilar (vasoconstricción). El tiempo de sangría puede estar alargado en trombocitopenias, purpuras trombocitopenias tanto centrales como periféricas, trobopatias hereditarias, afibrinogenia, insuficiencia hepática grave con síndrome hemorrágico, en la enfermedad de won willebrand y en tratamiento con aspirina y antiinflamatorios no esteroides. RANGOS DE REFERENCIA: Niños: hasta 9 minutos Adultos. Hasta 8 minutos INSTRUCCIONES AL PACIENTE: No es necesario el ayuno. Se recomienda tomar un desayuno liviano INSTRUCIONES AL ERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: Este procedimiento es realizado por profesional del laboratorio. TIPO DE MUESTRA. Sangre, cantidad no procede TIPO DE TUBO: No procede CONDICCIONES DEL TRASPORTE: No procede LIMITACIONES: Los antiinflamatorios, aspirinas, antihistamínicos (antialérgicos) pueden aumentar el tiempo de sangría. VELOCIDAD DE SEDIMENTACION GLOBULAR (VSG) USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Indicador de amplio espectro en patologías inflamatorias, inmunológicas, infecciosas y tumorales. La VSG se encuentra elevada en situaciones fisiológicas como el embarazo, menopausia, crecimiento y envejecimiento, y en patologías como infecciones agudas y crónicas, neoplasias monoclonales, procesos inflamatorios agudos y crónicos, anemias intensas, insuficiencia renal, infarto agudo al miocardio, presencia de crio aglutininas. Se observa disminución de la VSG en la policitemia vera, alteraciones congénitas eritrocitarias, hipofibrinogenemia, insuficiencia cardiaca congestiva, etc. RANGOS DE REFERENCIA: Hombres: 17-50 años 1-7 mm/hora. > 50 años 2-10 mm/hora Mujeres: 17-50 anos 3-9 mm/hora. > 50 años 5-15 mm/hora.
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INSTRUCCIONES AL PACIENTE: Ayuno de 12 horas INSTRUCIONES AL ERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: Una vez extraída la muestra se debe realizar una inversión completa y suave del tubo varias veces de tal forma de mesclar adecuadamente la sangre y el anticoagulante. TIPO DE MUESTRA. Sangre. En un volumen 4ml TIPO DE TUBO: Tubo tapa lila con EDTA. CONDICCIONES DEL TRASPORTE: Los tubos se deben trasportar en posición vertical, tapados, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente en un tiempo de 4 horas luego de la toma de la muestra. LIMITACIONES: Muestras coaguladas no se procesan. SECCION URINARIA. USO PREFERENTE DE LA MUESTRA: En las afecciones de las vías urinarias y renales, afecciones cardiovasculares, desequilibrio hidrosalino, trastornos metabólicos y afecciones hepáticas. RANGOS DE REFERENCIA: Aspecto: transparente Densidad Glucosuria C. Cetonicos Proteínas Bilirrubinas Hemoglobina Urobilinogeno PH Nitritos METODO: Incluye la determinación fisicoquímica y la observación microscópica del sedimento urinario. INSTRUCIONES AL PACIENTE: Antes de toma de la muestra, el paciente se debe realizar un cuidadoso aseo en la zona genital con abundante agua y jabón: mujeres: lavar los genitales separando cuidadosamente los labio mayores, con un algodón embebido en agua jabonosa y limpiando de adelante hacia atrás una sola vez. Elimine el algodón y repita el procedimiento con otro algodón, enjuague con agua eliminando totalmente el resto de jabón y seque la zona con paño seco y limpio. Hombres: retraer la piel anterior del pene y lavar la zona con algodón embebido en agua jabonosa, enjuague con agua sin tocar la zona aseada, secar con un paño limpio y seco. Luego del aseo genital eliminar el primer chorro de orina y sin cortar la misión recolectar el segundo chorro de orina en el frasco tapar y rotular con nombres y apellidos. Lactante femenino: colocar la bolsa recolectora sobre la zona del periné, fijando la parte adhesiva a la piel. Lactante masculino: colocar la bolsa recolectora alrededor del pene. En ambos casos es necesario revisar periódicamente la bolsa recolectora para verificar su correcta posición. Si en media hora no se ha cogido la muestra en la bolsa recolectora se ensucia, hay que sustituirla, ya que la contaminación con micro biota fecal es un problema bastante frecuente. Se puede colocar el pañal para asegurar la integridad de la bolsa, revisando revisando la presencia de orina en las bolsas recolectores frecuentemente. INSTRUCCIONES AL PRESONAL DE TOMA DE MUESTRA: Si la muestra es tomada Las muertas extraídas se deben rotular por el paciente. TIPO DE MUESTRA: Primera orina de la mañana, segundo chorro. CONTENEDOR: Tubo tapa roja Frascos boca ancha estériles Tubos uro cultivo VOLUMEN MINIMO NECESARIO: 10 ml CONDICIONES DE TRANSPORTE: Los tubos, frascos y botellas se deben trasportar tapados en posición vertical, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente. LIMITACIONES: contaminación de la muestra debido al inadecuado aseo genital. SECCION PARASITOLOGIA. IDENTIFCACION MACROSCOPICA DE PARASITOS. USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Identificación de gusanos, ectoparásitos arañas y proglotidas de la tenía. RANGOS DE REFERENCIA: No aplica
INSTRUCIONES AL PACIENTE: Rotular el envase con un nombre y dos apellidos. INSTRUCIONES AL PERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: verificar que la rotulación de la muestra este correcta y corresponda al paciente. Verificar que la muestra ha sido transportada correctamente de acuerdo al tipo de parasito que se quiere identificar. TIPO DE MUESTRA: Macroparasitos intestinales, ectoparásitos arañas. CONDICIONES DE TRANSPORTE: Si los elementos a identificar son parásitos intestinales trasportar en frasco con agua. Y si son ectopasitos o arañas el frasco debe estar seco. En un tiempo de cuatro horas. LIMITACIONES. Respetar las condiciones de transporte para mantener la integridad de los elementos a identificar. PARASITOLOGICO SERIADO. USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Sospecha de cualquier parasitosis intestinal o elementos parásitos que se eliminen con la deposición. RANGOS DE PREFERENCIA: Ausencia de quistes, trofosoitos, ooquistes y huevos de parásitos. INSTRUCIONES AL PACIENTE: No debe ingerir en los últimos días antibióticos, purgantes, oleosos, antiparasitarios. TIPO DE MUESTRA: deposición, sin contaminación con orina. LIMITACIONES: Para la búsqueda de huevos de fasciola hepática se debe recolectar 10 muestras seguidas en lo posible en dos frascos diferentes. SECCION BACTERIOLOGICA. SECRECION VAGINAL. USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Detención de la presencia de microorganismos causantes de vaginitis (bacterias, hongos, parásitos) y vaginosis bacteriana. RANGOS DE PREFERENCIA: No aplica. INSTRUCIONES AL PACIENTE: No tiene INSTRUCIONES AL PERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: La toma de muestra debe ser realizada por el medico obstetra o el técnico de laboratorio. Reunir el material, lavarse las manos e informar al paciente del procedimiento. Colocar el especulo en la zona vaginal introducir un aplicador estéril frotar las paredes de la mucosa vaginal y los fondos de saco vaginal, insertar el aplicador con la muestra en un tubo estéril con 0.5ml de suero fisiológico estéril, para la tinción de Gram introducir el aplicador en el fondo de la vagina y hacer un estiramiento en una placa porta objetos. TIPO DE MUESTRA: Secreción vaginal. CONDICIONES DE TRANSPORTE: Los tubos se deben transportar en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a prueba de derrames y a temperatura ambiente hasta una hora después de la toma. LIMITACIONES: La muestra sin identificación del paciente y sin indicación del tipo de muestra invalidad la ejecución del examen. SECRECION URETRAL. USO PREFERENTE DE LA PRUEBA: Detención de la presencia de bacterias causantes de uretritis. RANGOS DE PREFERENCIA: No aplica. INSTRUCIONE AL PACIENTE: No tiene INSTRUCIONES AL PERSONAL DE TOMA DE MUESTRA: La toma de muestra debe ser realizada personal entrenado, reunir el material, lavarse las manos e informar al paciente del procedimiento. Retraer el prepucio y con un aplicador coger la muestra, en una placa portaobjetos hacer un estiramiento para prueba de gram, el aplicador introducir en un tubo estéril con suero fisiológico para el examen en fresco. Si se requiere hacer un estudio de gonorrea se toma una muestra de mismo manera. TIPO DE MUESTRA: Secreción uretral.
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CONDICIONES DE TRANSPORTE: Los tubos se deben transportar en posición vertical en un recipiente o gradilla dentro de un contenedor solido a prueba de derrames y a temperatura ambiente hasta una hora después de la toma. LIMITACIONES: La muestra sin identificación del paciente y sin indicación del tipo de muestra invalidad la ejecución del examen.
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Anexo Resultado 3
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Manual de procedimientos y técnicas del Laboratorio clínico de la Unidad de
Atención Ambulatoria IESS Cariamanga.
Autora, Tecnóloga Médica Wilma P. Herrera.
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Manual de procedimientos y técnicas del Laboratorio clínico de la Unidad de
Atención Ambulatoria IESS Cariamanga.
Autora, Tecnóloga Médica Wilma P. Herrera.
2012
Manual de procedimientos y técnicas del Laboratorio
Atención Ambulatoria IESS
Autora, Tecnóloga Médica
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INTRODUCCIÓN
Los laboratorios clínicos representan un apoyo primordial para el área médica, ya a través de los análisis realizados en ellos se puede diagnosticar diferentes patologías y establecer el tipo de tratamiento que se debe administrar al paciente. Es por eso, que consientes de la gran importancia y con la finalidad de alcanzar un trabajo de calidad es indispensable contar con un manual que presente de manera formal y sistemática los procedimientos de la red de laboratorios de los establecimientos de primer nivel de Atención en Salud. Este documento se a desarrollado con la finalidad de contar con un instrumento que contenga la secuencia de los pasos necesarios, que aseguren la correcta ejecución de todos los procedimientos técnicos de cada uno de los laboratorios, y de esta manera contribuir al ordenamiento y estandarización de los mimos. Se espera que este manual sea una guía efectiva y útil para lograr la estandarización de los procedimientos de calidad de los resultados obtenidos en el laboratorio clínico de UAAC. OBJETIVO GENERAL • Contribuir con el IESS un instrumento que facilite el desarrollo a adecuado, sistematizado y estandarizado de los procedimientos técnicos que se realizan en los laboratorios de primer nivel de atención OBJETIVOS ESPECIFICOS • Brindar una herramienta que permita realizar los procesos técnicos de laboratorio uniformemente, de manera que se eviten desviaciones en su desarrollo. • Contar con un instrumento que sirva de guía para la evaluación y monitoreo de las actividades de laboratorio • Contribuir a la aplicación de controles de calidad que deben cumplirse, cuando se desarrolle un procedimiento técnico. CONTROL DE CALIDAD El control de calidad de un laboratorio clínico implica todo un conjunto de medidas encaminadas a lograr una adecuada confiabilidad de los resultados del laboratorio teniendo como propósito garantizar que los resultados obtenidos sean acorde al estado de salud del paciente. Tiene dos objetivos fundamentales: • Mantener bajo control el proceso. • Eliminar las causas de errores. La calidad se obtiene y se mejora a lo largo de todo el proceso por lo que el control de calidad debe ejercerse en las tres fases de proceso: • Pre-analítica • Analítica • Pos-analítica El objetivo del control de calidad radica en asegurar que los productos finales, es decir los valores analíticos que son producidos por un laboratorio clínico, sean suficientemente viables y adecuados a la finalidad que persiguen.
COPROLÓGICA
EXAMEN FÍSICO DE HECE
Propósito Por medio de la observación macroscópica de la muestra de heces se determina el color, la consistencia, la presencia de mucus, sangre, restos alimenticios o paracitos en estado larvario. Muestra Requerida 5 gr de heces recién emitidas, colectar en una caja la porción de muestra que evidencie el daño intestinal, no es recomendable recolectar muestras obtenidas con laxantes o enemas. Materiales y reactivos • Caja de plástico de boca ancha y tapón de rosca con capacidad para 2 onzas. • Aplicadores de madera. • Guantes descartables. • Marcadores de vidrio. Procedimiento • Observar el color de la muestra. • Observar la consistencia de la muestra. • Utilizar un aplicador de madera para buscar la presencia de mucus en la muestra. • Observar la presencia de restos alimenticios en la muestra. • Anotar los hallazgos.
EXAMEN MICROSCÓPICO DE HECES.
Propósito Analizar microscópicamente una muestra de heces en busca de la presencia de leucocitos parásitos protozoarios y metazoarios en sus diferentes estados. Muestra requerida 5gr de heces recién emitidas, no es recomendable muestras obtenidas con laxantes o enemas . Materiales y reactivos • Laminas portaobjetos • Laminillas cubreobjetos • Lápiz marcador de vidrio • Aplicadores de madera • Guantes descartables • Solución salina 0.85% • Solución de lugol para heces Equipo • Microscopio
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Procedimiento • Identificar la lámina portaobjeto • Colocar en un extremo de la lámina portaobjeto una gota de solución salina al 0.85% • Seleccionar la parte más representativa de la muestra ( mucus o sangre, si ay presencia de estos) • Agregar con un aplicador 1 a 2 mg de material fecal seleccionada y emulsionar • Cubrir la preparación con una laminilla cubreobjetos, colocándola en agulo de 45° sobre el borde de la preparación y bajándola con cuidado a fin de que no queden burbujas entre el cubre y el portaobjetos. • Colocar en el otro extremo del portaobjetos una gota de lugol para heces y repetir el procedimiento anterior. • Observar en forma sistemática al microscopio, con el objetivo 10x y luego con el 40x. • Reportar todo lo observado.
URUANALISIS
Toma de muestras para análisis de orina
Propósito Obtener unas muestra de orina con el volumen y condiciones adecuadas para realizar un análisis físico, químico y microscopio. Muestra requerida 30ml de orina de chorro intermedio, recomendable la primera micción de la mañana. Materiales Frascos plásticos trasparente de boca ancha con capacidad de 30ml limpio y seco.
Examen físico de orina.
Propósito Por medio de observación directa de la muestra de orina determinar el color y el aspecto de esta, lo cual puede sugerir una patología del tacto urinario u otras enfermedades que estén en diferente localización, pero en sus manifestaciones secundarias son a nivel del riñón. Muestra requerida 30ml de orina. Preferiblemente la primera de la mañana, 10ml de orina en niños Materiales
• Frascos plásticos transparentes de boca ancha con capacidad de 30ml • Bolsa pediátrica recolectora de orina • Papel toalla • Marcador de vidrio • Guantes descartables Procedimiento • Verificar que el frasco este bien identificado y completamente tapado • Agitar en forma circular sobre la mesa de trabajo • Observar color y aspecto • Anotar lo observa
Examen químico de orina.
Propósito Determinar las sustancias químicas presentes, así como su descidad y pH, a través de las zonas de reacción presentes en una tira reactiva. Muestra requerida 30ml de orina. Preferible la primera de la mañana, 10ml de orina en muestra de niños. Materiales y Reactivos • Frascos plásticos transparentes de boca ancha con can acidad de 30ml • Bolsa pediátrica recolectora de orina • Tubos cónicos con capacidad de 15ml • Gradilla para tubos • Papel toalla • Marcador de vidrio • Guantes descartables • Tiras reactivas para orina Procedimiento • Identificar él tuvo cónico • Agitar la muestra de orina en forma circular sobre la mesa de trabajo • Verter la orina en un tuvo cónico • Introducir la tira reactiva en la orina • Eliminar el exceso de orina colocando la tira sobre un papel absorbente • Esperar el tiempo recomendado por el fabricante para su lectura • Anotar los resultados
Examen microscópico del sedimento urinario.
PROPÓSITO:
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Observar microscópicamente en el sedimento urinario elementos celulares, cilindros, cristales, parásitos, filamentos mucoides y bacterias. Con el fin de sugerir una patología del tracto urinario u otras enfermedades que estén en diferente localización. .MUESTRA REQUERIDA: 15 mL de orina. MATERIALES: • Tubos cónicos de 15 mL . • Láminas portaobjetos. • Laminillas cubreobjetos. • Marcador para vidrio. • Gradillas para tubos. • Guantes descartables. EQUIPO: • Reloj marcador. • Macro centrífuga. • Microscopio. PROCEDIMIENTO: • Centrifugar durante 5 minutos a 2,500 rpm . • Descartar el líquido sobrenadante. • Suspender el sedimento urinario golpeando ligeramente con la mano. • Colocar una gota de sedimento entre un porta y un cubreobjetos. • Observar la preparación con el objetivo 10x para lograr una visión general del sedimento.
QUÍMICA CLÍNICA
Toma de muestras de sangre venosa para exámenes de química clínica.
PROPÓSITO: Obtener sangre venosa para realizar pruebas de química sanguínea. MUESTRA REQUERIDA: de 5 a 10 mL. de sangre venosa sin anticoagulante.
MATERIALES: • Jeringa estéril para extraer 5 - 10 mL. O aguja de vacutainer 21 X 1 ½ o sistema de extracción al vacío. • Torundas de algodón. • Alcohol etílico (70%). • Marcador de vidrio. • Torniquete. • Tubos sin anticoagulante 3ml o 10 ml y tapón de hule o tubos del sistema de extracción al vacío. • Gradilla para tubos. • Guantes descartables. PROCEDIMIENTO: • Lavar y secar las manos y colocarse los guantes. • Identificar el tubo de acuerdo a la solicitud. • Explicar al paciente sobre el procedimiento que se le va a realizar. • Sentar cómodamente al paciente para la extracción tomando en cuenta que el área de sangría debe contar con suficiente iluminación. • Seleccionar la vena apropiada para la punción. • Realizar asepsia con torunda de algodón humedecida con alcohol etílico al 70% de adentro hacia fuera. • Colocar el torniquete firmemente alrededor del brazo, y pedir al paciente que abra y cierre la mano varias veces para favorecer la dilatación de las venas. • Proceder a puncionar la vena seleccionada. • Colocar la aguja con el bisel hacia arriba sobre la vena a puncionar. • Introducir la aguja en el centro de la vena y penetrar a lo largo de la vena de 1 a 1.5 cm. • Tirar hacia atrás el émbolo de la jeringa muy lentamente para que penetre la sangre en la jeringa hasta llenar con la cantidad de sangre necesaria. Si utiliza sistema de sangrado al vacío introducir el tubo en el dispositivo (holder) de manera que al ejercer presión se atraviese el extremo inferior de la aguja, para que la sangre fluya hacia el tubo por efecto del vacío. • Retirar torniquete tirando del extremo doblado y colocar una torunda de algodón sobre la piel donde se encuentra oculta la punta de la aguja. • Extraer la aguja con un movimiento rápido por debajo de la pieza de algodón, pedir al paciente que presione firmemente la torunda durante 3 minutos con el brazo extendido. • Separar la aguja de la jeringa o del holder cuidadosamente, llenar los tubos deslizando la sangre por las paredes del mismo. • Esperar que la muestra se coagule a temperatura ambiente. • Centrifugar la muestra a 3000 rpm por 10 minutos. • Separar el suero del paquete globular. • Verificar nuevamente la identificación del paciente.
Glucosa sanguínea PRINCIPIO: La glucosa se determina después de la oxidación enzimática en presencia de glucosa oxidasa. El peróxido de hidrógeno formado reacciona bajo catálisis de la peroxidasa con fenol y 4-aminofenazona produciendo un complejo rojo violeta usando la quinoneimina como indicador. MUESTRAS REQUERIDA: Para valor de glucosa en ayunas: Suero Tomado completamente en ayunas de 12 horas. Para valor de glucosa posprandial: primera muestra completamente en ayunas de 12 horas y segunda muestra 2 horas después de haber ingerido un desayuno completo.
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MATERIALES Y REACTIVOS: • Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de glucosa (concentración 100 mg/dL). • Sueros controles comerciales. • Papel toalla. • Papel para film. • Guantes descartables. EQUIPO: • Espectrofotómetro. • Baño de María con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga. • Refrigeradora. • Reactivo PROCEDIMIENTO: • Llevar los reactivos a temperatura ambiente. • Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. • En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. • Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente de 500 a 546nm y de acuerdo al equipo utilizado.
Colesterol PRINCIPIO: El colesterol se determina después de la hidrólisis enzimática y la oxidación. En presencia de un Indicador el cual desarrolla el color de acuerdo a la concentración del colesterol presente en la muestra. MUESTRA REQUERIDA: Suero tomado con 12 horas de ayuno. MATERIALES Y REACTIVOS: • Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de colesterol (concentración 200 mg/dL). • Sueros controles comerciales. • Guantes descartables. EQUIPO: • Espectrofotómetro. • Baño de María. con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga. • Refrigeradora con termómetro.
PROCEDIMIENTO: • Llevar los reactivos a temperatura ambiente. • Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. • En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. • Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente de 500 a 546nm y de acuerdo al equipo utilizado.
Triglicéridos PRINCIPIO: El triglicérido se determina después de la hidrólisis enzimática con lipasa. En presencia de un indicador que desarrolla color de acuerdo a la concentración del triglicérido presente en la muestra. MUESTRA REQUERIDA: Suero tomado con 12 horas de ayuno. MATERIALES Y REACTIVOS: Pipetas automáticas. Puntas plásticas. Tubos. Gradilla para tubos. Marcador para vidrio Reactivo enzimático. Estándar de triglicéridos (concentración 200 mg/dL). Sueros controles comerciales. Papel toalla. Papel para film. Guantes descartables. EQUIPO: Espectrofotómetro. Baño de María. con termómetro. Reloj marcador. Centrífuga. Refrigeradora con termómetro. PROCEDIMIENTO: Llevar los reactivos a temperatura ambiente. Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente de 500 a 546nm y de acuerdo al equipo utilizado.
Ácido Úrico
PRINCIPIO El Ácido Úrico se determina después de la hidrólisis enzimática de la uricasa, que en presencia de un indicador que desarrolla color rojo-violeta que es proporcional a la concentración de Ácido Úrico presente en la muestra. MUESTRA REQUERIDA Suero (dentro de las 24 horas no ingerir embutidos, mariscos y carnes rojas).
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MATERIALES Y REACTIVOS • Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de Ácido Úrico (concentración según lo indica el fabricante). • Sueros controles comerciales. • Guantes descartables. EQUIPO • Espectrofotómetro. • Baño de María. con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga. • Refrigeradora con termómetro. PROCEDIMIENTO • Llevar los reactivos a temperatura ambiente. • Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. • En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. • Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente de 500 a 546nm y de acuerdo al equipo utilizado.
Úrea
PRINCIPIO La urea es hidrolizada en presencia de agua y de ureasa para producir amonio y dióxido de carbono. El amonio producido en la primera reacción se combina con dos oxoglutarato y NADH en presencia de glutamato y NDA. La prueba ha sido optimizada de forma que la GLDH es la enzima limite. La ureasa en presencia de un indicador desarrolla un color verde que es proporcional a la concetracion de la urea presente en la muestra. MUESTRA REQUERIDA Suero o plasma, excepto plasma heparinato de amonio , o orina diluida en agua destilada. MATERIALES Y REACTIVOS • Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de urea (concentración según lo indica el fabricante). • Sueros controles comerciales. • Guantes descartables. EQUIPO • Espectrofotómetro. • Baño de María. con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga.
• Refrigeradora con termómetro. PROCEDIMIENTO • Llevar los reactivos a temperatura ambiente. • Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. • En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. • Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente de 340 a 365 nm y de acuerdo al equipo utilizado.
CREATININA
PRINCIPIO La creatinina en solución alcalina forma un complejo coloreado anaranjado –rojo con ácido pícrico. La absorbancia de este complejo es proporcional a la concentración de creatinina en la muestra. MUESTRA REQUERIDA Suero o plasma, heparinizado, u orina evitando la hemolisis. MATERIALES Y REACTIVOS • Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de creatinina (concentración según lo indica el fabricante). • Sueros controles comerciales. • Guantes descartables. EQUIPO • Espectrofotómetro. • Baño de María. con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga. • Refrigeradora con termómetro. PROCEDIMIENTO • Llevar los reactivos a temperatura ambiente. • Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. • En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. • Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente de 492 a 510 nm y de acuerdo al equipo utilizado.
BILIRRUBINAS
PRINCIPIO La bilirrubina reacciona con el acidosulfanilicodiazotado formando un color rojo. La absorbancia de este color a 546 nm es directamente proporcional a la concentración de bilirrubinas en la muestra.
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MUESTRA REQUERIDA Suero o plasma, con heparina evitando la hemolisis y muestras lipemicas. MATERIALES Y REACTIVOS • Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de bilirrubinas (concentración según lo indica el fabricante). • Sueros controles comerciales. • Guantes descartables. EQUIPO • Espectrofotómetro. • Baño de María. con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga. • Refrigeradora con termómetro. PROCEDIMIENTO • Llevar los reactivos a temperatura ambiente. • Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. • En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. • Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente es d 546 nm y de acuerdo al equipo utilizado.
COLESTEROL LDL
PRINCIPIO El LDL es un ensayo enzimático homogéneo para determinación cuantitativa del colesterol LDL , es conocido como un componente lípido que aumenta el riesgo de enfermedades coronarias junto con el colesterol HDL. MUESTRA REQUERIDA Suero o plasma MATERIALES Y REACTIVOS • Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de colesterol LDL (concentración según lo indica el fabricante). • Sueros controles comerciales. • Guantes descartables. EQUIPO • Espectrofotómetro. • Baño de María. con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga. • Refrigeradora con termómetro. PROCEDIMIENTO • Llevar los reactivos a temperatura ambiente.
• Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. • En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. • Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente es de 570 a 610 nm y de acuerdo al equipo utilizado.
COLESTEROL HDL
PRINCIPIO El HDL es un ensayo enzimático homogéneo para determinación cuantitativa del colesterol HDL , es conocido como un componente lípido protector contra las que enfermedades coronarias junto con el colesterol LDL. MUESTRA REQUERIDA Suero o plasma MATERIALES Y REACTIVOS • Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de colesterol HDL (concentración según lo indica el fabricante). • Sueros controles comerciales. • Guantes descartables. EQUIPO • Espectrofotómetro. • Baño de María. con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga. • Refrigeradora con termómetro. PROCEDIMIENTO • Llevar los reactivos a temperatura ambiente. • Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. • En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. • Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente es de 570 a 610 nm y de acuerdo al equipo utilizado.
GOT (ASAT)
PRINCIPIO Es un método cinético para la determinación de la actividad de ASAT de acuerdo a las recomendaciones del panel de expertos de la IFCC. MUESTRA REQUERIDA Suero o plasma con heparina. MATERIALES Y REACTIVOS
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• Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de GOT (concentración según lo indica el fabricante). • Sueros controles comerciales. • Guantes descartables. EQUIPO • Espectrofotómetro. • Baño de María. con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga. • Refrigeradora con termómetro. PROCEDIMIENTO • Llevar los reactivos a temperatura ambiente. • Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal. • En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. • Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente es de 340 a 365 nm y de acuerdo al equipo utilizado.
GPT (ALAT)
PRINCIPIO Es un método estandarizado y optimizado de acuerdo a las recomendaciones de la Asociación de Química Alemana, MUESTRA REQUERIDA Suero o plasma con heparina. MATERIALES Y REACTIVOS • Pipetas automáticas. • Puntas plásticas. • Tubos. • Gradilla para tubos. • Marcador para vidrio. • Reactivo enzimático. • Estándar de GPT (concentración según lo indica el fabricante). • Sueros controles comerciales. • Guantes descartables. EQUIPO • Espectrofotómetro. • Baño de María. con termómetro. • Reloj marcador. • Centrífuga. • Refrigeradora con termómetro. PROCEDIMIENTO • Llevar los reactivos a temperatura ambiente. • Los reactivos se preparan de acuerdo a las instrucciones del fabricante en el cual estará indicado la estabilidad del reactivo. • Rotular 4 tubos de la siguiente manera: blanco, estándar, muestra y control normal.
• En caso que los Espectrofotómetros no lean la cantidad de 1 mL, duplicar las cantidades. • Mezclar e incubar de acuerdo a las indicaciones del fabricante. Leer a la longitud de onda indicada por el fabricante generalmente es de 340 a 365 nm y de acuerdo al equipo utilizado HEMATOLOGÍA
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE CAPILAR PARA EXÁMENES HEMATOLÓGICOS PROPÓSITO Obtener sangre capilar para realizar pruebas hematológicas. MUESTRA REQUERIDA Sangre capilar, Obtener 5 capilares heparinizados. MATERIALES • Torunda de algodón. • Alcohol etílico (70%). • Marcador de vidrio. • Capilares heparinizados. • Plastilina para sellar capilares con su respectiva base numerada. • Lancetas desechables. • Láminas esmeriladas. • Guantes descartables. PROCEDIMIENTO • Lavar, secar las manos y colocar los guantes. • Explicarle al paciente sobre el procedimiento que se le va a realizar. • Seleccionar el dedo anular de la mano a puncionar y dar masaje para mejorar la irrigación sanguínea. • Realizar asepsia con torunda de algodón humedecida con alcohol etílico al 70%. • Con lanceta desechable efectuar la punción limpia y rápida de 2 a 3mm. De profundidad. • Eliminar la primera gota de sangre con un trozo de algodón seco. • Colocar el capilar de modo que penetre la sangre libremente. • Cuando se ha obtenido la cantidad de sangre adecuada se presiona el lugar de la punción con un trozo de algodón humedecido con alcohol etílico al 70% hasta que cese el sangramiento. • Colocar los capilares verticalmente en la plastilina
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE VENOSA PARA EXÁMENES HEMATOLÓGICOS PROPÓSITO Obtener sangre venosa para realizar pruebas hematológicas. MUESTRA REQUERIDA De 2 a 3 mL de sangre venosa con anticoagulante para hematología (se emplean de 1 mg ± de EDTA por mL de sangre). MATERIALES • Jeringa estéril para extraer 3 mL con aguja 21 X 1 ½ o sistema de extracción al vacío. • Torundas de algodón. • Alcohol etílico (70%). • Marcador de vidrio. • Láminas esmeriladas. • Torniquete. • Tubos con anticoagulante 12 x 75 mm y tapón de hule o tubos del sistema de extracción al vacío.
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• Gradilla. • Guantes descartables. PROCEDIMIENTO: • Lavar, secar las manos y colocarse los guantes. • Identificar el tubo y la lámina adecuadamente. • Explicar al paciente sobre el procedimiento que se le va a realizar. • Sentar cómodamente al paciente para la extracción tomando en cuenta que el área de sangría debe contar con suficiente iluminación. • Seleccionar la vena apropiada para la punción. • Realizar asepsia con torunda de algodón humedecida con alcohol etílico al 70% de adentro hacia fuera. • Colocar el torniquete firmemente alrededor del brazo, y pedir al paciente que abra y cierre la mano varias veces para favorecer la dilatación de las venas. • Proceder a puncionar la vena seleccionada. • Colocar la aguja con el bisel hacia arriba sobre la vena a puncionar. • Introducir la aguja en el centro de la vena y penetrar a lo largo de la vena de 1 a 1.5 cm. • Tirar hacia atrás el émbolo de la jeringa muy lentamente para que penetre la sangre en la jeringa hasta llenar con la cantidad de sangre necesaria. Si utiliza sistema de sangrado al vacío introducir el tubo Sen el dispositivo (holder) de manera que al ejercer presión se atraviese el extremo inferior de la aguja, para que la sangre fluya hacia el tubo por efecto del vacío. • Retirar torniquete tirando del extremo doblado y colocar una torunda de algodón sobre la piel donde se encuentra oculta la punta de la aguja. • Extraer la aguja con un movimiento rápido por debajo de la pieza de algodón, pedir al paciente que presione firmemente la torunda durante 3 minutos con el brazo extendido. • Separar la aguja de la jeringa o del holder cuidadosamente, llenar los tubos deslizando la sangre por las paredes del mismo.- Mezclar la sangre invirtiendo los tubos suavemente varias veces.
• Verificar nuevamente la identificación del paciente
PREPARACIÓN Y TINCIÓN DEL FROTIS SANGUÍNEOS
PROPÓSITO Obtención de un frotis sanguíneo coloreado para el reconocimiento de los elementos celulares de la sangre. MUESTRA REQUERIDA Sangre capilar o venosa recién extraída sin anticoagulante o sangre con anticoagulante EDTA. MATERIAL Y REACTIVOS • Portaobjeto de vidrio con extremo esmerilado. • Alcohol etílico al 70%. • Torunda de algodón. • Marcador de vidrio. • Bandeja o soporte para la coloración. • Aceite de inmersión. • Reloj marcador. • Perilla de hule. • Papel toalla. • Guantes descartables. • Solución de Wright. • Buffer pH 6.8. • PROCEDIMIENTO
• Antes de utilizar los portaobjetos de vidrio, limpiarlos con alcohol y aclarar con agua. • Identificar la lámina adecuadamente en el extremo del portaobjeto (parte esmerilada). • Colocar en el portaobjeto una pequeña gota de sangre de 2 mm de diámetro a una distancia de 2 a 3 mm del extremo del portaobjeto y hacer rápidamente el extendido. • Para evitar la coagulación; se puede utilizar sangre con EDTA. (Siempre conviene realizar cuando menos dos frotis). • Poner la lámina extensora a un ángulo de 45° del portaobjeto y moverla hacia atrás para que haga contacto con la gota, que debe extenderse rápidamente. • El extendido debe tener unos 30 mm. de largo. • Dejar secar a temperatura ambiente. • Colocar la preparación de sangre, completamente seca, sobre un soporte. (no necesita fijación previa pues el metanol del Wright fija la preparación). • Cubrir todo el frotis con coloración de Wright y dejarlo en reposo 3 minutos (o el tiempo necesario según la maduración del colorante). • Agregar una cantidad igual de buffer (pH 6.8) evitando derramar el Wright, mezclar con una perilla de hule con suavidad para asegurar una mezcla uniforme, aparecerá un apelícula verde metálico, dejarlo en reposo por 5 minutos o el tiempo necesario según lamaduración del Wright. • Lavar la lámina con agua de chorro hasta quitar el exceso de la mezcla. • Limpiar la parte posterior del portaobjeto con una torunda de algodón impregnada con alcohol, para eliminar todos los restos de colorante. • Dejar secar la preparación al aire colocando la lámina en posición vertical en una rejilla para portaobjeto.
EXAMEN MICROSCÓPICO DEL FROTIS SANGUÍNEO PARA FÓRMULA DIFERENCIAL PROPÓSITO: Establecer y evaluar las características morfológicas de cada tipo de células y ver la frecuencia de las diferentes líneas leucocitarias. MUESTRA REQUERIDA: Frotis de Sangre coloreado. MATERIALES • Frotis de sangre coloreado. • Aceite de inmersión. • Papel limpia lente. • Guantes descartables. EQUIPO • Microscopio con objetivo 40x y 100x. • Contómetro diferencial manual. PROCEDIMIENTO • La observación inicia con el objetivo 40x para obtener un cuadro general del número de células, la distribución de las mismas y la calidad de la tinción. • Seleccionar las áreas a observar con objetivo de inmersión 100x buscando una distribución homogénea de las células. • Realizar el recuento diferencial identificando las características y grado de desarrollo de las células; estos se reportan en porcentajes para lo cual tiene que contarse un mínimo de 100 leucocitos estos pueden convertirse en número de células por mm³ (número absoluto). • Observar en los eritrocitos: el tamaño, la forma, la reacción de coloración, las inclusiones intracitoplasmáticas y la presencia del núcleo (eritroblastos).
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FROTIS DE SANGRE PERIFÉRICA PROPÓSITO Observación detallada de todos los elementos de la sangre, con el fin de evaluar la condición hematológica del paciente. MUESTRA REQUERIDA Frotis de sangre periférica coloreado con Wright. MATERIALES • Aceite de inmersión. • Papel limpia lente. EQUIPO • Microscopio con objetivo 40x y 100x. PROCEDIMIENTO • Cada técnico debe aprender a observar todos los elementos del frotis mientras lleva a cabo el recuento diferencial. Debe formar el hábito de verificar los puntos siguientes. • ERITROCITOS � Tamaño: microcitosis, macrocitosis y normocitos. El grado de variación en tamaño se reduce al término de anisocitosis. � Forma: esferocitos, codocitos, eliptocitos, megalocitos, drepanocitos, acantocitos, equinocitos etc. El grado de variación en forma se reduce al término de poiquilocitosis. � Concentración de hemoglobina: Grado importante de hipocromía, e hipercromía aparente, observar el aumento aparente o evidente de la proporción de glóbulos rojos policromáticos. � Otros hallazgos anormales: La policromatofilia (basófilia difusa), punteado basófilo, anillo de Cabot, cuerpos de Howell-Joly, etritroblastos, las células parasitadas y la formación de Rouleaux. • LEUCOCITOS: � Observar la madurez de los leucocitos, el número promedio, anormalidades morfológicas, signos de malignidad, la variante de leucocitos que predominan. � Comparar el recuento de leucocitos por milímetro cúbico con lo observado en el frotis. • PLAQUETAS: � Observar si se encuentran en cantidades aproximadamente normales (de tres a ocho plaquetas por cien glóbulos rojos). La disminución de las plaquetas en un frotis puede deberse a la manera de realizarlo, pero su falta o su disminución considerable, en un frotis bien hecho pueden hacer sospechar de trombocitopenia. Debe observarse si las plaquetas que se encuentran parecen normales o existen muchas formas gigantes (macroplaquetas) o notablemente pequeñas. � Comparar el recuento de plaquetas por milímetro cúbico con lo observado en el frotis
HEMATOCRITO PROPÓSITO El hematocrito es el volumen de eritrocitos expresados en porcentaje del volumen de sangre como una fracción del volumen de sangre, para determinar si un paciente presenta o no anemia. MUESTRA REQUERIDA
Sangre venosa con EDTA o sangre capilar tomada directamente en tubos capilares heparinizados. MATERIALES • Tubos capilares heparinizados o no heparinizados. • Plastilina. • Lector de hematocrito. EQUIPO • Micro centrífuga para hematocrito con una fuerza de 10,000 - 13,000 rpm. PROCEDIMIENTO: • Llenar el tubo de micro hematocrito mediante acción capilar, ya sea por una punción que hace que la sangre fluya libremente o por sangre venosa bien mezclada. Los tubos capilares deben estar llenos en dos terceras partes. • El extremo opuesto y exento de sangre se llena con plastilina para sellarlo. • Colocar el capilar sellado en una centrífuga para el micro hematocrito, con el extremo abierto hacia el centro de la microcentrífuga. • Centrifugar a velocidades de 10,000 a 13,000 rpm por 5 minutos. • Después de centrifugado leer en la tabla para hematocrito haciendo coincidir el menisco del plasma con el final de la marca de la tabla y el fondo del empacado de eritrocitos que coincidan con el inicio de la marca de la tabla. • Leer siempre en la dirección de la numeración ascendente cuantos mL de empacados de eritrocitos tiene la muestra.
HEMOGLOBINA
MÉTODO DE LA CIANAMETAHEMOGLOBINA
PROPÓSITO Evaluar la presencia y la severidad de la anemia. Este método consiste en efectuar una dilución exacta de sangre en una solución que contiene ferrocianuro de potasio, que convierte la hemoglobina en cianameta hemoglobina y se compara colorimetricamente con una solución patrón de cianameta hemoglobina de concentración exacta y estable. MUESTRA REQUERIDA Sangre venosa con EDTA o sangre capilar. MATERIAL Y REACTIVO • Cubetas estandarizadas de lectura. • Pipeta automática de 20 μL. • Tubos de 13 x 100 mm. • Gradilla para tubos. • Marcador de vidrio. • Puntas plásticas. • Papel parafilm. • Guantes descartables. • Pipeta serológica. • Propipeta o bulbo de hule. • Reactivo de cianametahemoglobina. • Estándar de hemoglobina. EQUIPO • Espectrofotómetro. • Mezclador mecánico (opcional). • Reloj marcador. PROCEDIMIENTO
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• Hacer una serie de tres tubos con el estándar de hemoglobina para calcular el factor de calibración. • Colocar al primer tubo 5 mL de estándar puro. • Colocar al segundo tubo 2.5 mL de estándar puro. • Colocar al tercer tubo 1 mL de estándar puro. • Llevar al volumen de 5 mL con cianametahemoglobina el segundo y tercer tubo. • Mezclar y dejar reposar 10 minutos. • Leerlos en espectrofotómetro a 540 nm y anotar la densidad óptica de los tubos. • Obtener la concentración de cada tubo en gramos por decilitros. • Dividir la concentración de cada tubo entre la densidad óptica. • Sumar los 3 factores y sacar un promedio. • Este será el factor de calibración por el cual se multiplicarán las densidades ópticas de lasmuestras. • La preparación de la cianametahemoglobina estará sujeto a las indicaciones del fabricante del reactivo. • Medir exactamente 5 mL solución de cianametahemoglobina en un tubo de 13x100 mm. • Con pipeta automática colocar 20 microlitos de sangre. • Mezclar bien y dejar reposar por 10 minutos. • Transferir a la cubeta de lectura y leer en el espectrofotómetro a 540 nm.
RECUENTO DE LEUCOCITOS PROPÓSITO: Evaluar la cantidad de células nucleadas que se encuentran en la muestra de sangre (leucocitos y eritroblastos). MUESTRA REQUERIDA: 2-3 mL de sangre venosa con EDTA o sangre capilar. MATERIALES Y REACTIVOS • Tubos de 12x75 mm. • Cámara de Neubauer. • Laminilla para cámara de Neubauer. • Pipeta automática de 20 μL. • Puntas plásticas. • Guantes descartables. • Gradillas para tubos. • Acido acético glacial al 3%. EQUIPO • Microscopio. • Contómetro manual. • Agitador. PROCEDIMIENTO (Técnica en tubo): • Colocar 0.4 mL de ácido acético glacial al 3% en un tubo 12x75mm. • Mezclar perfectamente la sangre, y tomar exactamente 20 μL con pipeta automática. Y colocarla en el tubo que contiene el acido acético glacial al 3 % lo que hace una dilución de la sangre 1:20. • Mezclar por un mínimo de 2 minutos. • Dispensar con pipeta automática o con capilar la dilución en el borde de la laminilla para cámara Neubauer. (Anexo 8) • Esperar 3 - 5 minutos Para que la célula se estabilicen. • Luego se procede a contar los glóbulos blancos en el microscopio con el objetivo 10x y con poca luz en las dos áreas primarias opuestas de la cámara, contar las células que aparecen. Cuando el trabajo no es excesivo se cuentan las cuatro áreas primarias para tener un dato más exacto. • En caso de una leucopenia de menos de 1,000 leucocito/mm³, la dilución se hace 1:10.
• En caso de una leucocitosis de mas de 30,000 leucocito/mm³, la dilución se hace 1:200 con diluyente de leucocitos.
RECUENTO DE PLAQUETAS (Método directo en cámara) PROPÓSITO Evaluar la cantidad de plaquetas existentes en la sangre para lo cual se diluye una muestra de sangre con una sustancia con un líquido diluyente que hace a las plaquetas más visibles. MUESTRA REQUERIDA Sangre venosa con EDTA o sangre capilar. MATERIAL Y REACTIVOS • Tubos de vidrios 12x75mm. • Cámara Neubauer. • Laminilla para cámara de Neubauer. • Tubo capilar. • Papel filtro. • Caja de Petri. • Pipeta automática de 10 μL. • Puntas plásticas. • Guantes descartables. • Gradilla para tubos. • Solución de Gower. EQUIPO: • Microscopio. • Contómetro manual. • Reloj marcador. PROCEDIMIENTO (técnica en tubo): • Colocar 2 mL de reactivo de Gower en un tubo de 12 x75 mm. • Mezclar bien la muestra de sangre varias veces. • Colocar exactamente 10 μL de sangre en el tubo que contiene el diluyente. • Mezclar por un mínimo de 3 minutos. • Dispensar con pipeta automática o con capilar la dilución en el borde de la laminilla de la cámara Neubauer. (Anexo 8) • Colocar la cámara en una caja de petri sobre un disco del papel filtro húmedo, para evitar la evaporación, se tapa y se espera de 10 a 20 minutos para que se depositen bien las plaquetas. • Proceder al conteo de las plaquetas en el microscopio con el objetivo 40x y poca luz. • Contar toda el área central. • Observar las plaquetas como pequeñas partículas de gran refringencia. • Correlacionar el recuento de plaquetas obtenido en la cámara con las plaquetas que se observan en el frotis
ESTIMADO DEL NÚMERO DE PLAQUETAS (Método indirecto) PROPÓSITO: Evaluar el número de plaquetas presentes en la sangre, a través de la observación de un frotis coloreado, con el fin de comparar con el conteo directo. MUESTRA REQUERIDA: Frotis de sangre coloreado con Wright. MATERIALES Y REACTIVOS: • Papel limpia lentes.
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• Aceite de inmersión. EQUIPO: • Contador hematologico • Microscopio. PROCEDIMIENTO: • Colocar la lámina coloreada en la platina del microscopio. • Observar con el objetivo 40x. • Colocar una gota de aceite de inmersión en la lámina coloreada. • Observar con el objetivo 100x. • Contar las plaquetas en 10 campos situados entre el cuerpo y la cola del frotis (los campos deben contener aproximadamente 100 glóbulos rojos).
RECUENTO DE RETICULOCITOS PROPÓSITO: Evaluar el funcionamiento de la médula ósea ya que los reticulocitos son glóbulos rojos jóvenes que constituyen un índice de la respuesta eritropoyética. MUESTRA: Sangre venosa con EDTA o sangre capilar. MATERIALES Y REACTIVOS: • Tubos de 12 x 75 mm. • Capilares. • Láminas portaobjeto en buen estado. • Gradilla para tubos. • Guantes descartables. • Azul de cresil brillante. EQUIPO: • Microscopio. • Baño de María o estufa a 37° C. • Contómetro manual. PROCEDIMIENTO: • Verter un capilar lleno de azul cresil brillante y dos capilares llenos de sangre en un tubo 12x75 mm. • Mezclar bien e incubar a 37°C o a temperatura ambiente durante 15 minutos. • Preparar frotis de la mezcla de la forma usual, dejar secar. • Leer al microscopio con objetivo de inmersión. • Contar 10 campos en donde se observen 100 eritrocitos por campo, anotar los meticulositos observados
VELOCIDAD DE ERITROSEDIMENTACIÓN PROPÓSITO: La velocidad de Eritro sedimentación mide la velocidad de sedimentación de los glóbulos rojos en el plasma. MUESTRA REQUERIDA: 3 mL de Sangre venosa con EDTA. MATERIALES: AgujasWintrobe. • Tubos Wintrobe. • Soporte para tubos de sedimentación. • Guantes descartables.
EQUIPO: • Reloj marcador. PROCEDIMIENTO: • Mezclar la muestra de sangre. • Llenar un tubo de Wintrobe hasta la señal cero, introduciendo cuidadosamente la aguja de Wintrobe adaptada a una jeringa, conteniendo la sangre hasta el fondo del tubo, cuidar de que no formen burbujas. • Colocar en el soporte, en posición perfectamente vertical durante 1 hora. • A la hora exacta leer de arriba hacia abajo el valor numérico en mm, midiendo la distancia que hay entre el punto más bajo del menisco de la superficie y el límite superior del sedimento de glóbulos rojos; los mm, leídos corresponden a la velocidad de sedimentación por hora. • Toda eritro sedimentación con hematocrito menor de 40%, se corregirá usando la tabla de corrección de la manera siguiente: • Llevar valores de hematocrito y sedimentación a la tabla de corrección. • Tome el punto dónde se interceptan ambos, este punto caerá sobre una de las líneas curvas de dicha tabla, la que deberá seguir hacia la derecha y abajo, hasta el punto de intercepción con la línea negra mas gruesa, que corresponde al valor de hematocrito de 40%. • Lea a la derecha de la tabla el valor de eritrosedimentación corregida, este valor es el que se deberá reportar.
TIEMPO DE SANGRAMIENTO PROPÓSITO: Evaluar el funcionamiento y número de plaquetas así como la contractilidad capilar. MUESTRA: Sangre capilar del dedo o del lóbulo de la oreja. MATERIALES: • Lanceta descartable estéril. • Papel filtro. • Torundas de algodón humedecidas con alcohol. • Guantes descartables. EQUIPO: • Cronómetro. PROCEDIMIENTO: • Lavar y secar las manos y colocarse los guantes. • Explicar al paciente sobre el procedimiento que se le va a realizar. • Desinfectar cuidadosamente el área de punción. • Puncionar el dedo índice a modo que corte transversalmente la dirección de las huellas digitales, o el lóbulo de la oreja. • Secar con el papel filtro cada medio minuto hasta que cese el sangramiento. • Realizar el secado en forma descendente o circular sin tocar la piel. • Anotar el tiempo desde que se punciona hasta que cesa el sangramiento y reportar. TIEMPO DE COAGULACIÓN. MÉTODO DE LEE Y WHITE PROPÓSITO:
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Evaluar en forma global el mecanismo intrínseco de la coagulación. MUESTRA: Sangre venosa. MATERIALES: • Jeringas descartables. • Tubos 12x75mm. • Torundas de algodón. • Gradillas para tubos. • Alcohol etílico al 70%. • Torniquete. • Guantes descartables. EQUIPO: • Baño de María a 37°C. • Reloj marcador. • Termómetro. PROCEDIMIENTOS: • Lavar y secar las manos y colocarse los guantes. • Identificar el tubo de acuerdo a la solicitud. • Explicar al paciente sobre el procedimiento que se le va a realizar. • Desinfectar cuidadosamente el área de punción. • Obtener sangre venosa con una jeringa descartable y estéril. • Poner en marcha el cronómetro en el momento en que la sangre penetre en la jeringa. • Verter cuidadosamente 1 CC de sangre en 3 tubos, mantenerlos en baño María a 37ºC. • Invertir cada medio minuto (sin agitar) los 3 tubos hasta que cada uno pueda invertirse sin que se vierta su contenido. • Tomar el tiempo de coagulación de cada uno de los tubos y luego sacar un promedio de los tres. INMUNOLOGÍA
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE VENOSA PARA EXÁMENES DE INMUNOLOGÍA
PROPÓSITO: Obtener sangre venosa para realizar pruebas de inmunología. MUESTRA REQUERIDA: 5 mL de sangre venosa sin anticoagulante. MATERIALES: • Jeringa estéril para extraer 5 mL con aguja 21 X 1 ½ o sistema de extracción al vacío. • Torundas de algodón. • Alcohol etílico (70%). • Marcador de vidrio. • Torniquete. • Tubos sin anticoagulante 13 x 100 mm y tapón de hule o tubos del sistema de extracción al vacío. • Gradilla para tubos. • Guantes descartables. PROCEDIMIENTO: • Lavar y secar las manos y colocarse los guantes. • Identificar el tubo de acuerdo a la solicitud.
• Explicar al paciente sobre el procedimiento que se le va a realizar. • Sentar cómodamente al paciente para la extracción tomando en cuenta que el área de sangría debe contar con suficiente iluminación. • Seleccionar la vena apropiada para la punción. • Realizar asepsia con torunda de algodón humedecida con alcohol etílico al 70% de adentro hacia fuera. • Colocar el torniquete firmemente alrededor del brazo, y pedir al paciente que abra y cierre la mano varias veces para favorecer la dilatación de las venas. • Proceder a puncionar la vena seleccionada. • Colocar la aguja con el bisel hacia arriba sobre la vena a puncionar. • Introducir la aguja en el centro de la vena y penetrar a lo largo de la vena de 1 a 1.5 cm. • Tirar hacia atrás el émbolo de la jeringa muy lentamente para que penetre la sangre en la jeringa hasta llenar con la cantidad de sangre necesaria. Si utiliza sistema de sangrado al vacío introducir el tubo en el dispositivo (holder) de manera que al ejercer presión se atraviese el extremo inferior de la aguja, para que la sangre fluya hacia el tubo por efectodel vacío. • Retirar torniquete tirando del extremo doblado y colocar una torunda de algodón sobre la piel donde se encuentra oculta la punta de la aguja. • Extraer la aguja con un movimiento rápido por debajo de la pieza de algodón, pedir al paciente que presione firmemente la torunda durante 3 minutos con el brazo extendido. • Separar la aguja de la jeringa o del holder cuidadosamente, llenar los tubos deslizando la sangre por las paredes del mismo. • Esperar que la muestra se coagule a temperatura ambiente. • Centrifugar la muestra a 3000 rpm por 10 minutos. • Separar el suero del paquete globular. • Verificar nuevamente la identificación del paciente
PRUEBA RÁPIDA DE REAGINA (Método RPR) PROPÓSITO: Detectar y cuantificar anticuerpos reagínicos en suero, que corresponde a un diagnostico presuntivo de Sífilis, La prueba de RPR, es una modificación del antígeno VDRL (pruebas no treponémicas). El RPR es una prueba que contiene micropartículas de carbón para visualizar la reacción antígeno– anticuerpo. MUESTRA REQUERIDA 5mL de sangre sin anticoagulante de preferencia tomada en ayunas (para obtener de 2 a 3 mL de suero). MATERIALES Y REACTIVOS: • Tarjeta o lámina en círculos de 18 mm. • Dispensadores de 50 uL. • Tapadera plástica para formar cámara húmeda. • Frasco plástico con aguja calibrada para depositar 16uL. • Antígeno: Cardiolipina, Lecitina, Colesterol y partículas de carbón. • Agua destilada. • Papel toalla. • Aplicadores de madera. • Solución salina 0.85%. • Puntas plásticas. • Marcador de vidrio. • Tubos 12x75 mm. • Gradilla para tubos. • Guantes descartables.
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EQUIPO: • Reloj marcador. • Rotador serológico de 100 rpm. • Macrocentrífuga. • Micropipeta automática regulable. • PROCEDIMIENTO: • Prueba cualitativa: • Centrifugar la sangre a 2,500 rpm durante 5 minutos. • Separar los sueros del paquete globular. • Identificar los sueros y círculos de la tarjeta o lámina de reacción. • Depositar en cada círculo de la tarjeta ó lámina, 50 uL. de los sueros en estudio y controles positivo y negativo, manteniendo el dispensador verticalmente para que el volumen sea exacto. • Extender el suero sobre la superficie del círculo con el extremo opuesto del dispensador. • Homogenizar el antígeno y depositar una gota (equivalente a 16 uL) sobre el suero. • Colocar la tarjeta en el rotador serológico y cubrirla con la cámara húmeda. • Rotar durante 8 minutos a 100 rpm. • Inclinando la lámina de adelante hacia atrás observar a simple vista con buena iluminación agregados bien diferenciados en el centro y en la periferia del círculo. • Toda prueba cualitativa que presente aglutinación se debe hacer prueba semicuantitativa. • Prueba semicuantitativa: • En cinco círculos poner con el dispensador una gota (50 μL) de solución salina 0.85 %, no extender. • Depositar con el dispensador en el primer círculo 50 μL de suero, mezclar aspirando y expeliendo 3 a 6 veces, evitando la formación de burbujas. • Manual de Procedimientos Técnicos de Laboratorio Clínico del Primer Nivel de Atención • A partir de esta mezcla que constituye la dilución 1:2 proseguir las diluciones seriadas, en base 2 mezclando y pasando sucesivamente de un círculo a otro 50 μL; descartar los 50 μL de la última dilución. • De esta manera se obtienen las diluciones siguientes: • Extender las gotas por la superficie del círculo, utilizando un mezclador e iniciando por la dilución más alta. • Colocar en cada círculo una gota (16 μL) de antígeno bien homogenizado, no agitar violentamente. • Colocar las placas en un rotador y cubrirlas con la tapadera • Rotar durante 8 minutos a 100 rpm. • Inclinando la lámina de adelante hacia atrás observar a simple vista con buena iluminación agregados bien diferenciados en el centro y en la periferia del círculo. • Toda prueba que de una reacción de 1:32 se debe hacer la prueba cuantitativa. • Prueba cuantitativa: • En un tubo colocar 1.5 mL de solución salina a 0.85 % y 0.1 mL de suero. (Esta constituye una dilución 1:16) • A partir de la dilución 1:16 hacer diluciones seriadas en base 2 mezclando y pasando • sucesivamente de un círculo a otro 50 μL.
ANTÍGENOS FEBRILES PROPÓSITO: Investigar en el suero del paciente anticuerpos producidos por infecciones causadas por Salmonellas, Brucellas, Rickettsias u otras infecciones bacterianas, por las cuales el organismo del paciente reacciona con la producción de anticuerpos específicos.
MUESTRA REQUERIDA: Suero. MATERIALES Y REACTIVOS: • Tubos de ensayo 12 x 75 mm. • Tubos de ensayo 13 x 100 mm. • Gradilla para tubos. • Puntas plásticas. • Lámina de reacción. • Pipeta Pasteur con bulbo o pipeta transfer. • Aplicadores de madera. • Marcador de vidrio. • Guantes descartables. • Papel toalla. • Solución salina 0.85%. • Antígeno somático “O”. • Antígeno flagelar “H”. • Antígeno paratyphico “A”. • Antígeno paratyphico “B”. • Antígeno somático O X 19. • Antígeno somático Brucellaabortus. • Control negativo y control positivo. EQUIPO: • Macrocentrífuga. • Reloj marcador. • Pipetas automáticas. • Rotador serológico. PROCEDIMIENTO: • Centrifugar la sangre a 2,500 rpm durante 5 minutos. • Separar los sueros del paquete globular. • Llevar los reactivos y las muestras a temperatura ambiente. Prueba cualitativa: • Mezclar las suspensiones cuidadosamente antes de su uso. • Colocar una gota de muestra en los 6 círculos y una gota de cada control positivo y negativo en su respectivo círculo. • Colocar sobre cada muestra o control una gota de reactivo. • Mezclar con palillos descartables por separado y esparcir el líquido sobre el área completa de cada círculo. • Colocar la lámina en un rotador a 100 rpm durante 1 minuto. • Leer los resultados bajo luz artificial inmediatamente. • Examine macroscópicamente la presencia o ausencia de aglutinación. Prueba semicuantitativa: • En caso de obtener resultados positivos hacer determinación semicuantitativa en lámina: • Colocar en seis tubos 100 μL. de solución salina 0.85% y adicionar en el primer tubo 100μL de muestra. • Hacer diluciones seriadas en base a 2 en los siguientes tubos, de modo de obtener las siguientes diluciones: 1:2, 1:4, 1:8, 1:16, 1:32 y 1:64. • Continuar el procedimiento como se describe en la prueba cualitativa, empleando cada dilución como muestra. • Leer los resultados bajo luz artificial inmediatamente. • Examine macroscópicamente la presencia o ausencia de aglutinación.
• Reportar la última dilución en la que se observe aglutinación.
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TIPEO SANGUÍNEO PRUEBA DIRECTA EN TUBO PROPÓSITO: Investigar en la sangre la presencia o ausencia de los antígenos A, B y Rh que se localizan en la superficie de los glóbulos rojos, utilizando anticuerpos específicos para cada uno de ellos. MUESTRA REQUERIDA: 1 mL de Sangre completa con o sin anticoagulante. MATERIALES Y REACTIVOS: • Tubos de ensayo 12 x 75 mm. • Gradilla para tubos. • Puntas plásticas. • Pipeta Pasteur con bulbo o pipeta transfer. • Aplicadores de madera. • Frasco lavador. • Marcador de vidrio. • Guantes descartables. • Papel toalla. • Solución salina 0.85%. • Antisuero “A”. • Antisuero”B”. • Antisuero RH (anti-D). EQUIPO: • Macrocentrífuga. • Reloj marcador. • Pipetas automáticas. • Lámpara para lectura de aglutinación. PROCEDIMIENTO: • Identificar previamente los tubos. • Depositar 2-3 gotas de sangre en un tubo. • Realizar 3 veces el lavado de células de la siguiente manera: • Agregar 1 mL de solución salina 0.85%. • Mezclar y llenar con solución salina 0.85% el tubo hasta 3/4 partes. • Centrifugar por 2 minutos a 3400 rpm . • Descartar toda la solución salina quedando en el fondo un paquete de glóbulos rojos. • Preparar una suspensión al 5%, colocando una gota de los glóbulos rojos lavados y 19 gotas de solución salina y mezclar. • Rotular 3 tubos con las letras A, B, Rh por cada muestra a analizar, a cada uno agregar una gota de glóbulos rojos al 5%. • Depositar los antisueros respectivos: • Tubo A antisuero A. • Tubo B antisuero B. • Tubo Rh antisuero D. Centrifugar 15 segundos a 3400 rpm . Leer la presencia o ausencia de aglutinación agitando suavemente los tubos. PRUEBA DE EMBARAZO PROPÓSITO: Investigar en orina la presencia de la hormona gonadotropina coriónica (HCG); el método se basa en la reacción de aglutinación de una suspensión de Látex recubiertas con anticuerpos monoclonales Anti-hormona gonadotropina coriónica. MUESTRA REQUERIDA: Orina, se recomienda utilizar la orina de la primera hora de la mañana, ya que generalmente contiene mayor concentración de hormona. Muestras de orina: estable 48 horas a 2-8°C o 3 meses a -20°C.
MATERIALES Y REACTIVOS: • Tarjetas o láminas de reacción. • Papel toalla. • Marcador de vidrio. • Dispensadores plásticos. • Tubos cónicos. • Guantes descartables. • Gradilla para tubos. • Suspensión de partículas de látex con anticuerpo monoclonal • Anti-hormona gonadotropina coriónica humana. • Control positivo: orina humana con una concentración conocida de hormona gonadotropina coriónica. • Control negativo: suero animal sin presencia de hormona gonadotropina coriónica. EQUIPO: • Macrocentrífuga. • Rotador serológico. • Lámpara de luz. • Reloj marcador. PROCEDIMIENTO: • La muestras de orina que presente turbidez debe centrifugarse antes de iniciar la prueba. • Llevar a temperatura ambiente los reactivos y las muestras. • Identificar correctamente lámina o tarjeta. • Sobre cada círculo de lámina o tarjeta depositar 100 μL de muestras a analizar e incluir un control Positivo y un negativo por cada tiraje. • Homogenizar suavemente el reactivo de Látex antes de usar. • Depositar una gota de reactivo de Látex sobre cada una de las muestras y los controles. • Mezclar con el extremo opuesto del dispensador, procurando extender la suspensión por toda la superficie interior del círculo • Emplear un dispensador distinto para cada muestra. • Colocar la tarjeta o lámina sobre un agitador rotatorio de 80 - 100 rpm durante 2 minutos. • Examinar macroscópicamente bajo una fuente de luz la presencia o ausencia de aglutinación inmediatamente después de retirar del agitador.
MICROBIOLOGÍA BÁSICA
PREPARACIÓN DE UN EXTENDIDO DE MUESTRA PROPÓSITO: Estudiar mediante un frotis teñido la presencia de bacterias, lo cual aporta una información útil para el diagnóstico de la enfermedad del paciente y contribuye a establecer un tratamiento inmediato. MUESTRA REQUERIDA: Pus, esputo, orina y secreciones. MATERIALES Y REACTIVOS: • Asa bacteriológica o aplicador de madera. • Lámina portaobjeto. • Marcador de vidrio. • Papel toalla. • Gasa. • Fósforos.
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• Guantes descartables. EQUIPO: • Mechero. PROCEDIMIENTO: • Identificar la lámina porta objeto. • Extender en el centro de una lámina portaobjeto una porción de la muestra con asa o aplicador de madera en forma de capa fina, trazando una espiral del centro a la periferia. • Dejar secar completamente al aire libre. • Fijar al calor. • Fijar al calor pasándolo rápidamente sobre la llama de un mechero, tres veces en forma horizontal con la muestra hacia arriba. • Dejar enfriar. • Aplicar coloración que corresponda, según agente a investigar.
EXAMEN MICROSCÓPICO (Coloración de Gram) PROPÓSITO: Colorear las bacterias presentes en un frotis mediante la tinción de Gram, la cual permite diferenciar en dos grandes grupos, bacterias gram positivas que toman el color violeta y bacterias gramnegativas que toman el color rosado. MUESTRA REQUERIDA: Frotis de la muestra a analizar correctamente identificado. MATERIALES Y REACTIVOS: • Aceite de inmersión. • Papel filtro. • Embudo. • Bandeja o soporte de coloración. • Guantes descartables. • Marcador de vidrio. • Papel toalla. • Papel limpia lente. • Cristal violeta modificado por Hucker. • Lugol o solución de Yodo para Gram. • Alcohol Acetona. • Safranina. EQUIPO: • Reloj marcador. • Microscopio. PROCEDIMIENTO: • Filtrar los colorantes antes de utilizar. • Colocar los frotis a colorear en la bandeja o soporte de coloración. • Cubrir el frotis completamente con Cristal Violeta, durante un minuto. • Enjuagar con agua corriente y escurrir. • Cubrir el frotis completamente con Lugol o solución de Yodo para Gram durante un minuto. • Enjuagar con agua corriente y escurrir. • Aplicar alcohol acetona gota a gota hasta que no salga Cristal Violeta. • Enjuagar con agua corriente y escurrir. • Cubrir el frotis con Safranina. • Dejar reposar por 30 segundos. • Enjuagar suavemente con agua corriente. • Dejar secar al aire libre. • Observar al microscopio con lente de inmersión 100x.
DIRECTO AL FRESCO DE SECRECIÓN VAGINAL PROPÓSITO: Investigar en una muestra de secreción vaginal, la presencia de Trichomonas vaginales, levaduras y/o pseudohifas. MUESTRA REQUERIDA: Secreción vaginal, tomada con un hisopo estéril y colocada en un tubo con 2 mL de solución salina estéril 0.85%. MATERIALES Y REACTIVOS: • Tubos de vidrio 16 x 150 mm. • Gradilla para tubos. • Lámina portaobjeto. • Laminilla cubreobjeto. • Hisopos estériles. • Marcador de vidrio. • Papel toalla. • Gasa. • Solución salina estéril 0.85%. EQUIPO: • Microscopio. PROCEDIMIENTO: • Identificar la lámina portaobjeto. • Colocar una gota en el portaobjeto y cubrir con laminilla cubre objeto, con el cuidado de no formar burbujas de aire. • Examinar toda la preparación al fresco en el microscopio con objetivo 10x. • Buscar presencia de Trichomonas vaginales, levaduras o pseudohifas.
DIRECTO DE SECRECIÓN VAGINAL COLOREADO CON GRAM
PROPÓSITO: Investigar en una muestra de secreción vaginal coloreada, la presencia de Lactobacilos, mobiluncos, o gardnerella. MUESTRA REQUERIDA: Secreción vaginal, tomada con un hisopo estéril y colocada en un tubo con 2 mL de solución salina estéril 0.85%. MATERIALES Y REACTIVOS: • Tubos de vidrio 16 x 150 mm. • Gradilla para tubos. • Lámina portaobjeto. • Hisopos estériles. • Marcador de vidrio. • Papel toalla. • Guantes descartables. • Gasa. • Aceite de inmersión. • Solución salina estéril 0.85%. EQUIPO: • Microscopio. PROCEDIMIENTO: • Identificar la lámina portaobjeto. • Proceder a la elaboración de frotis y coloración de Gram como está descrito en los procedimientos
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• Observar en el microscopio con objetivo de inmersión 100x, la presencia de Lactobacilos, mobiluncos, o gardnerella. • Reportar lo observado.
DIRECTO DE SECRECIÓN URETRAL COLOREADO CON GRAM PROPÓSITO: Investigar en una muestra de secreción uretral coloreada, la presencia de Diplococos gramnegativos intracelulares (leucocitos) y extracelulares. MUESTRA REQUERIDA: Secreción uretral, tomada si es posible en las primeras horas de la mañana antes de que el paciente haya orinado. MATERIALES Y REACTIVOS: • Lámina portaobjeto. • Aplicador de madera o asa bacteriológica. • Marcador de vidrio. • Guantes descartables. • Papel toalla. • Gasa. • Aceite de inmersión. • Solución salina estéril 0.85%. • Papel limpia lente. • Cristal violeta modificado por Hucker. • Lugol o solución de Yodo para Gram. • Alcohol Acetona. • Safranina. EQUIPO: • Microscopio. PROCEDIMIENTO: • Identificar la lámina portaobjeto. • Tomar la muestra aplicando una ligera presión en el pene de atrás hacia delante de manera que salga una gota de pus por el meato, la cual será recibida en una lámina portaobjeto. • Cuando la muestra es demasiada espesa, agregar una gota de solución salina estéril 0.85%. • Proceder a la elaboración de frotis y coloración de Gram como está descrito en los procedimientos • Observar en el microscopio con objetivo de inmersión 100x, la presencia de Diplococos gramnegativos de forma arriñonadas, tanto intracelulares (leucocitos) como extracelulares. • Prestar especial atención a las orillas del frotis donde los elementos se extienden en una capa más delgada, son más fáciles de reconocer y la tinción es menos concentrada.
• Reportar lo observado.
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