I INTRODUCCION.

El Ecuador es el primer productor mundial de banano, por su ubicación geográfica tiene la

facilidad de poseer grandes extensiones de tierras aptas para este cultivo, produce y exporta

un aproximado de 4 millones de cajas (22xU) de 18 kilogramos semanalmente, las cuales

tienen como destino varios países de la Unión Europea, Estados Unidos, Chile, Argentina,

Japón, Rusia, Oriente Medio entre otros, es muy demandado en los mercados

internacionales por su calidad.

En el 2012, el sector bananero ecuatoriano exportó 2 078 239 380 millones

de dólares por concepto de divisas y 5 196 065 090 toneladas ubicando al banano como  el

primer producto de exportación del sector privado del país y uno de los principales

contribuyentes al fisco. Entre los productos no tradicionales, las exportaciones Ecuatorianas

de banano, representan el 45,34 % del valor exportado y el 87,14 % toneladas exportadas

(PRO ECUADOR, 2013).

Su producción constituye una fuente de trabajo y de ingreso para miles de familias

tanto del campo como de la ciudad que laboran en las diferentes actividades, que van desde

la siembra, el manejo de las plantaciones, llegando al corte y traslado de la fruta a las

empacadoras, donde recibe el tratamiento previo al embalaje y finalmente conducida a los

puertos de embarque.

En este cultivo existe una gran competitividad, tanto en productores, exportadores,

proveedores de insumos agrícolas e incluso entre los países que producen esta fruta, como

ejemplo: tenemos que las bananeras de nuestro país logran una producción que va desde

las 1 800 a 2 200 cajas/hectárea/año en el mejor de los casos se llega a 2 500

cajas/hectárea/año en algunas haciendas bien tecnificadas, a diferencia de otros países como

Costa Rica que poseen una producción de 3 000 cajas/hectárea/año. Es por esta razón que

estamos en la necesidad de buscar alternativas y realizar investigaciones para lograr

incrementar nuestra producción. (PRO ECUADOR, 2013).

1

1.1 Antecedentes

Los reguladores de crecimiento actúan incrementando determinadas expresiones

metabólicas y/o fisiológicas de las plantas, tales como el desarrollo de diferentes órganos

(raíces, frutos, etc.), incentivando la fotosíntesis y a reducir los daños causados por stress

(fitosanitarios, enfermedades, frío, calor, toxicidad, sequías, etc.), eliminando así las

limitaciones del crecimiento y el rendimiento, de igual manera potenciando la defensa

natural de las plantas antes y después del ataque de patógenos.

Actualmente, la utilización de fitohormonas para regular y/o manipular eventos

fisiológicos específicos en los cultivos, está siendo cada vez más generalizada, ya que la

agricultura dispone de productos comerciales lo suficientemente específicos y eficientes

para ejercerlos. Existen ya infinidad de casos específicos del uso de estos reguladores de

crecimiento (Azcon, 1993).

1.2 Justificación.

La nueva alternativa de producción busca monitorear la aplicación de reguladores de

crecimiento, inyectados al pseudotallo de la planta, para verificar los efectos que tienen

sobre las características agronómicas y rendimiento del cultivo, estas fitohormonas actúan

sobre el crecimiento en longitud y engrosamiento de los tallos y otros efectos en los frutos,

esta se da cuando la división celular se encuentra en la fase de mayor intensidad, logrando

llevarlos a mayores tamaños y con mejor calidad, al incrementar el número de células de

los frutos , lo que se refleja en la producción de los racimos.

Es necesario contar con nuevas alternativas para el manejo del cultivo que permitan

incrementar su rendimiento, por tal razón se plantea la presente investigación, con la

finalidad de evaluar la respuesta del cultivo a la aplicación de reguladores de crecimiento,

en una plantación en producción variedad Valery, en la parroquia San Juan de Puebloviejo

en la provincia de Los Ríos.

2

1.3 Situación problematizadora

1.3.1 Descripción del problema.

En el cultivo de banano actúan muchos tipos de hormonas, mismas que la planta las

produce, pero por efectos de problemas climáticos, combinación de altas frecuencias y

volúmenes de riego, mala fertilización mineral que desfavorece el desarrollo de las

musáceas, el funcionamiento fisiológico generando un estrés que se evidencia en un

repollamiento de las hojas, racimo de mala calidad, poco desarrollo radicular con el

consecuente volcamiento.

1.3.2 Problema.

En el cultivo de banano el desarrollo de los retoños (hijos) es lento y heterogéneo, lo que

se refleja en racimos pequeños, afecta el ratio el ratio y consecuentemente la productividad

del cultivo, entre otros factores, por falta de la presencia de hormonas vegetales que

regulan el ciclo celular, para mejorar el crecimiento, la floración y desarrollo de frutos.

1.3.3 Preguntas de la investigación.

¿Es necesario aplicar reguladores de crecimiento al pseudotallo de los retoños (hijos) de las musáceas?

¿La respuesta de las musáceas está en función de los tipos de reguladores aplicados?

1.3.4 Delimitación del problema.

1.3.4.1 Temporal.

El estudio investigativo de la problemática planteada empezó en el primer semestre del año

2015 y necesitó de un tiempo aproximado de 8 meses a partir de la aprobación del

proyecto.

3

1.3.4.2 Espacial.

El trabajo se desarrolló en la hacienda bananera La Envidia, ubicada a 1,5 km en la vía San

Juan – Babahoyo, en la provincia de Los Ríos.

1.4 Objetivos

1.4.1 General.

Evaluar el cultivo de banano a la aplicación de reguladores de crecimiento en la parroquia

San Juan del cantón Puebloviejo para mejorar la productividad.

1.4.2 Específicos.

Determinar el comportamiento agronómico del cultivo de banano a la aplicación de reguladores de crecimiento.

Identificar cuál de los reguladores de crecimiento tiene mejor efecto sobre el cultivo, basados en el rendimiento.

1.5 Hipótesis

Aplicando reguladores de crecimiento se logrará un rápido desarrollo vegetativo que se traduce en una mejor productividad.

4

II. MARCO TEÓRICO

2.1 El cultivo de banano

El banano tiene su origen probablemente en la región Indomalaya donde han sido

cultivados desde hace miles de años. Desde Indonesia se propagó hacia el Sur y el Oeste,

alcanzando Hawaii y la Polinesia. Los comerciantes Europeos llevaron noticias del árbol a

Europa alrededor del siglo III a. C., aunque no fue introducido hasta el siglo X, de las

plantaciones de África Occidental los colonizadores portugueses lo llevarían a Sudamérica

en el siglo XVI, concretamente a Santo Domingo (Infoagro, 2012).

2.2 Taxonomía

En general, las clasificaciones modernas de los cultivares de banano siguen el sistema de

Simmonds y Shepherd. Los cultivares se colocan en grupos basándose en el número de

cromosomas que tienen y que las especies que se derivan así: el plátano Latundan se

coloca en el Grupo AAB, demostrando que es un triploide derivado de tanto M. acuminata

y M. balbisiana. Para obtener una lista de las variedades clasificadas bajo este sistema véase

la lista de los cultivares de banano (Cheesman, 1977).

2.3 Variedad Valery

Variante de Robusta más resistente a sigatoka negra, pero cuyo fruto es menos firme y

ligeramente resistente en textura, además tiene fuste vigoroso, alto, hojas en general en

disposición anguladas hacia arriba, permitiendo buena aireación y luminosidad sud foliar,

excelente racimo, levemente cónico que permite gran aprovechamiento de todas las manos.

Numero de manos un poco menor a Williams. Es una variedad que permite un alto grado de

ambientación en climas húmedos (Biogreen, 2010).

2.4 Reguladores decrecimiento

Son sustancias orgánicas o sintéticas que tienen efectos reguladores en el metabolismo,

nutrición y crecimiento de las plantas, pueden ser de origen endógeno o exógeno, entre los

grupos tradicionales de sustancias reguladoras del crecimiento vegetal tenemos:

Citoquininas, giberelinas, etileno, auxinas, ácido abscísico.

5

Una característica común en los reguladores de crecimiento es su capacidad para

inducir o reprimir algún proceso de crecimiento en la planta o también el hecho de actuar

en forma localizada en un sitio que no es el propio de su síntesis (Jhonston, 1986).

Los reguladores de crecimiento o fitohormonas, son utilizados en diversos campos de la

Agronomía, entre otras se pueden mencionar: combate malas hierbas, desarrollo de frutos,

defoliación, propagación vegetativa y control del tamaño de las plantas (Arevalo, 1994).

2.5 Efectos fisiológicos de los reguladores de crecimiento sobre las plantas.

La aplicación de reguladores de crecimiento estimula el aumento del ciclo celular, causan

una dominancia apical reducida o anulada, otro efecto es retardar la senescencia de las

hojas, provocando que las hojas permanezcan más tiempo verdes por mayor contenido de

clorofila y funcionales, permiten el desarrollo de cloroplastos (con formación de granas) en

oscuridad, reemplazando parcialmente la demanda de luz (Ross, 1994).

Otros efectos son inducir crecimiento en altura, estimulan fuertemente la división y

elongación celular en la porción sub-apical de los tallos, promover el desarrollo inesperado

de inflorescencias y la floración en muchas plantas, particularmente en aquellas de día

largo, aunque no en aquellas de día corto, promueve el desarrollo de muchos frutos (Talon,

1996).

2.6 Citoquininas.

Las Citoquininas o citocininas constituyen un grupo de hormonas vegetales que promueven

la división y la diferenciación celular. Su nombre proviene del término «citokinesis» que se

refiere al proceso de división celular, el cual podría ser considerado como el segundo

proceso madre de todos los procesos fisiológicos en los vegetales, ya que a este proceso le

antecede en importancia la diferenciación celular, la cual se encarga de dar origen a la

formación de cada uno de los órganos de cualquier vegetal (P.P. O. C., 2013).

Mediante este proceso (el más primordial del reino vegetal) predominantemente

citocinínico, las células vegetales son transformadas en otro tipo de células específicas para

6

formar un órgano en particular, ya sean raíces, hojas, flores o frutos, ya que cada uno tiene

diferentes tipos de células. Estos eventos, no se realizan de manera exclusiva por las

citoquininas, desde luego, sino que estas hormonas son las encargadas de causar el efecto

diferenciación celular, de «dar la orden» y de dirigir el proceso, en el cual intervienen otras

sustancias con las que las citoquininas realizan esta tarea conjuntamente (P.P. O. C., 2013).

2.7 Tipos de citoquininas.

Las Citoquininas que se producen en los tejidos vegetales son diversas aunque se acepta la

presencia e importancia de dos grupos químicos: los conformados a base de adeninas y los

que son a base de fenilureas. De las primeras se han identificado químicamente a la

Zeatina, de la cual parece que se derivan muchas otras Citocininas activas como la

ribofuranosil zeatina, la glucopiranosida de Zeatina, etc. En el caso del segundo tipo de

Citocininas destaca la presencia de la Difenilurea y algunos derivados de ésta, casos

puntuales de moléculas como Forclorfenurón (CPPU) o Tidiazurón (TDZ).

Las citoquininas naturales pueden definirse estructuralmente como moléculas derivadas

de la adenina con una cadena lateral unida al grupo amino 6 del anillo purínico. La cadena

lateral puede ser de naturaleza isoprenoide o aromática. Dentro de las Citoquininas

isoprenoides se encuentran la zeatina, la isopenteniladenina y la dihidrozeatina. Entre las

aromáticas se incluyen la benciladenina, la kinetina y la topolina. También se consideran

citoquininas ciertos compuestos sintéticos derivados de la difenilurea como el CPPU y el

tidiazuron, que actúan como análogos estructurales de la molécula natural y presentan una

actividad muy potente (P.P. O. C., 2013).

2.8 Lugar de biosíntesis de las citoquininas.

Las citocininas se forman (sintetizan) en cualquier tejido vegetal: tallos, raíces, hojas,

flores, frutos o semillas, aunque se acepta generalmente que es en las raíces donde se

producen las mayores cantidades de estas hormonas. Regularmente, hay mayor producción

en sitios y momentos en los que haya iniciado un proceso de diferenciación celular y/o una

intensa división celular, sea porque se requiere para inducir el proceso y/o porque las

nuevas células formadas sintetizan mayores cantidades de esta hormona.

7

Así, cualquier tejido o etapa de la planta que no presente actividad de crecimiento

activo, estará produciendo pocas citocininas en sus partes terminales (puntos de

crecimiento). La aplicación externa de citocininas a un tejido que necesite de la hormona,

promueve en éste un mecanismo auto inductor de síntesis de citocininas, con lo que su

contenido y efecto fisiológico puede ir más allá del sitio en el que se aplicó (a todos los

órganos de la planta), produciendo beneficios más (P.P. O. C., 2013).

2.9 Trasladación de las Citoquininas

El movimiento de las citoquininas producidas por la planta, puede ser hacia arriba o abajo

de su sitio de síntesis, lo cual sugiere que estas hormonas se pueden mover en el xilema y el

floema. Así, pueden traslocarse desde la raíz a los frutos o desde las semillas a la raíz; en

todos los casos el flujo preferencial será hacia el tejido que esté demandando o necesitando

de la hormona para sus funciones específicas (Mok, 2001).

2.9.1 Función de las citoquininas en la planta

Entre las principales funciones tenemos: Control de la dominancia apical, las citoquininas

controlan la brotación de las yemas laterales, de esta forma, las citoquininas contribuyen a

determinar la arquitectura de una planta, retraso de la senescencia foliar: Las citoquininas

ralentizan el proceso de degradación de la clorofila, el ácido ribo nucleico (RNA), los

lípidos y las proteínas que ocurre en las hojas en el otoño o al ser separadas de la planta y la

expansión de los cotiledones: Durante la germinación, las citoquininas promueven la

elongación de las células de los cotiledones en respuesta a la luz (Mok, 2001).

2.9.2 Usos de las citoquininas en la agricultura

El uso de hormonas en la agricultura se ha enfocado principalmente a las auxinas como el

ácido indolbutirico (AIB) para enraizar, ácido naftalenacético (ANA) para raleo de fruto,

2.4-D como herbicida, etc., las giberelinas (Ácido Giberélico) para crecimiento de planta y

frutos, ethephon (madurez de frutos, caída de órganos), u otros más específicos por cultivo

como el mepiquat para detener crecimiento en algodón o la cianamida hidrogenada para

estimular la apertura de yemas en árboles frutales (Mok, 2001).

Actualmente, la utilización de Citoquininas para regular y/o manipular eventos

fisiológicos específicos en los cultivos, está siendo cada vez más generalizada, ya que la

8

agricultura dispone de productos comerciales lo suficientemente específicos y eficientes

para ejercerlos. Existen ya infinidad de casos específicos del uso de citoquininas en la

producción de cultivos comerciales que cuentan con productos con formulaciones de alta

reactividad, a base de Forclorfenurónó CPPU, que se aplican en todo tipo de hortalizas,

frutales, plantas como, uva de mesa, algodón, maíz, trigo, garbanzo, frijol, etc. Puede

afirmarse que todos los vegetales responden a la aplicación externa de citoquininas. El

nivel de respuesta de cada vegetal está especialmente ligado al momento de aplicación para

lograr el objetivo de la misma (Azcon, 1993).

2.9.3 Importancia de las citoquininas en el crecimiento vegetativo

La actividad de las plantas se refleja en la continuidad de crecimiento de los brotes y sus

hojas, lo cual repercute en mayor área foliar para maximizar la eficiencia fotosintética de

los cultivos. Las citoquininas son partícipes de este proceso en cuanto a que los tejidos

activos producen esa hormona para estimular la división celular y con ello establecer una

“base” o estructura sobre la cual continúe el crecimiento (Mok, 2001).

Con la aplicación de citoquininas no se obtiene una respuesta rápida de crecimiento

como la que se obtiene con aplicación de ácido giberélico, ni se induce una clorosis de las

hojas; la respuesta es lenta pero vigorosa, preparando la planta para la producción de flores

y frutos. En casos en que el crecimiento vegetativo haya estado bajo condiciones de estrés

(exceso de agua, sequía, no fertilización (desbalance nutrimental), salinidad, calor extremo,

frío intenso, carga excesiva, enfermedades, etc.), la respuesta a la aplicación de citoquininas

es más efectiva especialmente cuando se hace inmediatamente después de que el cultivo ha

salido de esa condición de estrés (Azcon, 1993).

2.9.4 Cytokin

Es una hormona natural reguladora del crecimiento vegetal que facilita la nutrición de las

plantas, promueve el brote y desarrollo de las yemas, espigas y flores, mejora el amarre de

las flores y el desarrollo de los frutos, crecimiento de la raíz y sobre todo el vigor de la

productividad de la planta. (Ecuaquimica, 2014).

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Cuadro 1. Composición química del Cytokin

Composición química p/p

Nitrógeno (N) 10,00 %

Fósforo (P2O5) 52,00 %

Potasio (K2O) 8,00 %

Boro (B) 0,020 %

Zinc (Zn) 0,050 %

Molibdeno (Mo) 0, 0005 %

Manganeso (Mn) 0,050 %

Hierro (Fe) 0 100 %

Citoquininas 0,0175 %

2.9.5 Dosis de Cytokin por inyección en la planta.

Inyectado al pseudotallo: en dosis de 5 % y10 % en 5 ml de volumen de agua (Bioagro,

2007).

2.9.6 Giberelinas

Descubiertas por un científico japonés que estudiaba una enfermedad en el cultivo de arroz:

“plántula loca” o “bakanae”, se obtiene del hongo Gibberella fujikuroi, comerciales entre

más de 100 giberelinas han sido aisladas de fuentes naturales, el Ácido Giberélico (GA3) es

el más abundante en los hongos y el más activo biológicamente.

Las Giberelinas son el resultado de procesos de fermentación natural, se fermentan

cepas naturales de G. fujikurois seleccionadas por su alta capacidad de producir GA3, un

sofisticado proceso de fermentación y recuperación permiten la obtención de un material

técnico de un grado altamente puro, son una familia de compuestos con una estructura

basada en ent-giberelina, el GA3 o Ácido giberélico, es el más abundante en los hongos y el

más activo biológicamente, sintetizado normalmente en las plantas a partir del ácido

mevalónico en los brotes tiernos, raíces y semillas inmaduras (Formunica, 2007).

10

Según (Garcia, 1996) todas las plantas son capaces de sintetizar giberelinas mediante la

ruta del Ácido Mevalónico, pero que aparentemente en los tejidos jóvenes (meristemos) es

donde se encuentran en mayor cantidad, es decir, se podría sintetizar en mayor proporción

en dicho tejido; sin embargo, también se encuentra en semillas, raíces, etc.

Jankiewicz (2003), comenta que las giberelinas están presentes en plantas ya sean

angiospermas como gimnospermas, al igual que en helechos, algas verdes y pardas, así

como en hongos y bacterias. Este autor describe que las giberelinas se pueden encontrar en

la naturaleza en distintas formas químicas como lo son: compuestos libres (extraídos

comúnmente con alcoholes y acetatos), conjugados de tipo glicósidos o esteres glicosídicos,

y en formas conjugadas con proteínas solubles en agua y extraídas con butanol.

El mismo autor también menciona que los órganos que sintetizan giberelinas en

abundancia, son las partes apicales de las raíces así como las hojas más jóvenes; sin

embargo, excluye esta síntesis de los meristemos apicales de ambas partes. Otras fuentes

de síntesis como lo pueden ser los nudos de los tallos de las gramíneas, nudos de tallos de

las plantas dicotiledóneas, partes de la flor (estambres) así como semillas en desarrollo.

2.9.7 Efectos fisiológicos de las giberelinas

Según (Salisbury, 1994), los efectos de las giberelinas en las plantas son: aumentan a

menudo la plasticidad de la pared celular, estimula el crecimiento de las yemas, el

crecimiento de hojas y de frutos (parteno cárpicos y no parteno cárpicos), división celular,

floración, germinación y brotación de yemas, al suprimir la inhibición causada por procesos

de dormancia, producen el alargamiento de entrenudos, promueve la germinación de

semillas, el crecimiento celular debido a que se incrementan la hidrólisis de almidón,

fructanos y sacarosa, originando moléculas de fructuosa y glucosa, y retrasa la senescencia

en hojas y frutos.

2.9.8 Mecanismos de acción de las giberelinas.

(Barceló, Nicolás, Sabater, García, & Sánchez, 2001) comenta que debido a la estrecha relación

estructural que presentan las giberelinas respecto a las hormonas esteroídicas animales, su

mecanismo de acción podría ser similar, por esto es de esperar que éstos reguladores se

11

unan a un receptor en específico, el cual le permita a la giberelinas atravesar la membrana

celular, donde una vez dentro se fijaría a una proteína receptora, con ello la asociación

hormona receptor pasaría al interior del núcleo donde alteraría la síntesis del Ácido

Desoxirribo Nucleico (ADN). También se menciona que pueden existir receptores solubles,

los cuales permiten el ingreso de la giberelinas hacia el citoplasma.

Las giberelinas tienen la capacidad de estimular la síntesis de la amilasa, la cual es

una enzima que se encarga de hidrolizar el almidón, lo que a su vez fomenta la formación

de compuestos energéticos las giberelinas tienen un efecto sobre la organización de la

membrana, participando en la síntesis activa de enzimas implicadas en la formación de los

lípidos que conforman la membrana celular (Instituto Interamericano de Cooperación para

la Agricultura, 1984).

2.9.9 Usos prácticos de las giberelinas.

La aplicación a nivel comercial de hormonas en la agricultura está muy enfocada a

promover crecimiento (vegetativo, frutos, raíz), para lo cual las giberelinas han sido los

compuestos más comunes en estas prácticas. La razón de ello es de que su efecto es rápido,

consistente y de amplio espectro en cuanto a especies y/o órgano, además de ser accesible

económicamente (Bioagro, 2007).

2.9.10 Ryzup.

Es un regulador de crecimiento que actúa en forma sistémica, siendo absorbido por vía

foliar promueve el alargamiento celular, incrementa el crecimiento, interrumpe la latencia

de semillas, tubérculos y bulbos. La acción de todo regulador de crecimiento está sujeta a

factores tales como clima, sanidad de la planta, variedad (Agroprodusca, 2010).

2.9.11 Efectos de Ryzup en la planta

Mejora el cultivo ante condiciones adversas (lluvia, sequía, heladas, etc.), incrementa la

producción, alargamiento de los tallos y pedúnculos de las hojas, induce y acelera la

floración en algunas plantas, ruptura de latencia en semillas y órganos vegetativos, aumento

en tamaño, número y calidad de frutos, uniformiza las cosechas, promueve el mejor cuajado

12

de los frutos, inhibe la caída de flores y por consiguiente aumenta el número de frutos, se

mueven a través del floema y xilema, promueven la elongación y división celular, mejora el

cultivo en condiciones adversas (Formunica, 2007).

Cuadro 2. Composición química del Ryzup.

Ingrediente activo Símbolos %

Ácido Giberelico GA3 3,20

Ingredientes inertes 96,80

Total 100,00

2.9.12 Dosis de Ryzup por inyección en la planta.

Inyectado al pseudotallo en dosis de 5 ml por planta en una mezcla de 200-400 g por 100

litros de agua, a plantas de una altura mayor de 1,5 m (Agroprodusca, 2010).

2.9.13 Experiencias investigativas.

En el trabajo investigativo “Estudio comparativo de dos alternativas nutricionales

inyectadas en plantas de banano (musa AAA) en el cantón milagro, provincia del guayas”

realizado por (Lopez, 2014) encontró que en parámetros como peso de racimos, se obtuvo

una media general de 35,28 kg, en número de manos la media general fue 8,97 con un ratio

un promedio de 1,38.

(Urban, 2014) en su experimento “Aplicación de soluciones nutritivas inyectadas y en

drench más la adición de leonardita en el cultivo de banano (musa AAA.) variedad

Williams” logró una media general de 7,06 manos por racimos.

13

III. MARCO METODOLÓGICO

3.1 Metodología3.1.1. Característica del lote experimental.

El presente trabajo se desarrolló en los terrenos de la hacienda bananera “La Envidia”

ubicada en la parroquia San Juan del cantón Puebloviejo, a 1,5 km en la vía San Juan

Babahoyo, en la provincia de Los Ríos. Las coordenadas geográficas son: latitud Sur

1º 40´ y longitud Oeste 79° 45´, temperatura de 26 ºC y su precipitación anual promedio es

de 1 400 mm1/.

3.1.2 Factor en estudio.

Reguladores de crecimiento.

3.1.3 Material de siembra.

Se utilizó una plantación de banano establecida del clon Valery de aproximadamente 25

años de edad, de las cuales se seleccionaron hijos de un rango de 1-1,5 m de altura.

3.1.4 Tratamientos.

Cuadro 3. Número de aplicaciones, productos y dosis utilizados en el ensayo.

Aplicaciones Productos Dosis

1 Cytokin

Ryzup

2 cc/planta

5 cc/planta

2 Cytokin

Ryzup

2 cc/planta

5 cc/planta

3.1.5 Métodos.

En la investigación se utilizaron los métodos: deductivo-inductivo, análisis síntesis y el

método denominado experimental.

El método deductivo fue utilizado en el objetivo general del proyecto, el inductivo

en los objetivos específicos, el análisis fue utilizado en los resultados del proyecto, la síntesis en las conclusiones y recomendaciones y el experimental en todo el desarrollo de la investigación.

14

1/ Datos meteorológicos tomados de la estación Puebloviejo.

3.1.6 Análisis estadístico.

Se utilizó el estadígrafo de desviación estándar, coeficiente de variación y para establecer el

nivel de significancia se aplicó la prueba de t (Student) en el programa infostat.

3.1.7 Delineamiento del experimento.

Tratamientos 2

Repeticiones 4

Plantas/parcela 40

Distancia entre parcela (m) 2

Distancia entre bloques (m) 2

Longitud de la parcela (m) 100

Ancho de la parcela (m) 30

Área total de la parcela (m2) 6 000

3.2 Manejo del ensayo

3.2.1 Aplicación de los reguladores de crecimiento.

Se seleccionaron 80 hijos, para posteriormente proceder a inyectarlos (40 con Ryzup y 40

con Cytokin).

3.2.1 Aplicación de los tratamientos.

Con una jeringuilla (capacidad de 10 ml de volumen) se aplicó vía inyección al pseudotallo

en dos ocasiones los reguladores de crecimiento en las siguientes dosis.

15

Cuadro 4. Productos y dosis utilizados en los tratamientos

Productos DosisCytokin 2 cc/planta

Ryzup 5 cc/planta

3.2.3 Frecuencias de las aplicaciones.

Se realizaron dos aplicaciones, una al momento de establecer el ensayo y la segunda a las 8

semanas posteriores a la primera aplicación.

3.2.4 Fertilización de las plantas.

Esta labor se la realizó conforme a los planes de fertilización que maneja la hacienda, el

cual consiste aplicaciones cada tres meses con una combinación de urea más muriato de

potasio, en dosis de 250-300 g/planta por ciclo.

3.2.5 Manejo de malezas.

Se realizó de forma manual y química, en función al tipo de maleza presente en el área.

Manual una chapea y química los bordes y canales usando un herbicida sistémico Glifosato,

en dosis de 200 cc/bomba de 20 L.

3.2.6 Manejo de plagas y enfermedades.

Se realizaron monitoreos de plagas y enfermedades, para el manejo de sigatoka negra

(Mycospharella finjiensis), se aplicaron los fungicidas recomendados por los técnicos de

acuerdo a la incidencia de la enfermedad y se utilizó el insecticida Mack para las plagas,

cuando éstas superaron el umbral de daño económico.

3.2.7 Riego.

Por sus características botánicas se mantuvo de una manera adecuada y permanente la

humedad de los suelos por medio del riego de aspersión, (sudfoliar) el que se aplicó

diariamente durante la época seca.

16

3.2.8 Cosecha.

Cuando los racimos alcanzaron el grado correspondiente según las semanas necesarias las

cuales son de 11, 12 y 13 semanas con un grado de 43-38 requeridas por la compañía

exportadora se procedió a cosechar los racimos, los mismos que se pesaron y se evaluaron

sus características agronómicas.

3.3 Datos evaluados

3.3.1 Altura de planta en metros.

Se medió la altura de la planta cada 30 días, después de la primera aplicación (hasta la

emisión de la inflorescencia).

3.3.2 Diámetro del tallo en centímetros.

Se medió cada 30 días, después de la primera aplicación hasta cuando empiece la emisión

de la inflorecencia. Con la ayuda de una cinta métrica se procederá a medir la

circunferencia, luego éste valor se lo dividió para el valor π 3,1416 para obtener finalmente

el diámetro.

17

3.3.3 Emisión foliar.

Se contabilizó el número de hojas cada 30 días, después de la primera aplicación (hasta la

emisión de la inflorescencia).

3.3.4 Días a la emisión de la inflorescencia.

Se contabilizó los días transcurridos desde la primera aplicación hasta que apareció la

inflorescencia.

3.3.5 Días a la cosecha.

Se contabilizó los días transcurridos desde la primera aplicación hasta el momento que los

racimos lograron el grado de cosecha apropiado.

3.3.6 Peso del racimo en kilogramos.

Con la ayuda de una balanza de gancho se procedió a pesar los racimos cosechados en los

tratamientos, este valor se expresó en kilogramos.

18

3.3.7 Número de manos/racimo.

Se procedió a contabilizar el número de manos por racimo al momento de la cosecha,

posteriormente se promediaron.

3.3.8 Largo de los dedos en centímetros.

Con la ayuda de una cinta métrica se procedió a medir el largo de los dos dedos centrales de

la segunda mano y se lo expresó en centímetros.

3.3.9 Cantidad de cajas por racimo (ratio).

Se determinó la relación del número de cajas para la cantidad de racimos al momento de la

cosecha.

3.3.10 Análisis económico.

Este análisis se lo determinó en base al rendimiento en caja y el costo de cada tratamiento,

finalmente se obtuvo la relación beneficio-costo.

3.3.10.1 Ingreso bruto.

Se lo determinó basado en el ingreso obtenido por concepto de la venta de la producción

de las cajas de banano de cada tratamiento por el precio de venta del mercado, para sus

cálculos se utilizó la siguiente fórmula.

IB = Y *PY

19

Donde

IB = Ingreso bruto

Y = Producto

PY = Precio del producto

3.3.10.2 Costos totales de los tratamientos.

Se lo determinó sumando los costos fijos (mano de obra, fertilizantes) y los costos variables

(siembra, control de maleza, insectos - plagas y enfermedades, fertilización, riego, cosecha)

se lo calculó mediante la siguiente fórmula:

CT = X + PX

Dónde:

CT = Costo total

X = Costo variable

PX= Costo fijo

3.3.10.3 Beneficio neto de los tratamientos.

Se obtuvo de restar el beneficio bruto, menos los costos totales de cada tratamiento, para lo

cual se aplicó la siguiente fórmula:

BN = IB – CT

Dónde:

BN = Beneficio neto

IB= Ingreso bruto

CT = Costo total

3.3.10.4 Relación beneficio / costo.

Para obtenerlo se dividió el beneficio neto de cada tratamiento para sus costos totales, se

aplicó la siguiente fórmula:

R (B / C) = B/N

Dónde:

R (B/C) Relación beneficio / costo

BN = Beneficio neto

CT= Costo total

20

3.4 Materiales e instrumentos

Materiales de oficina: computadora, calculadora, lapicero, cámara digital.

Materiales de campo: fundas, protectores, curvo, calibrador analógico, libro de campo,

balanza de gancho, platos, romanas, calibrador fijo, podón, cunas, garruchas.

Insumos: cinta métrica, spray, cintas de color blanco, jeringuilla de 10 cc, Cytokin y

Ryzup.

Equipo: bombas de aspersión, bombas de motor

21

IV. RESULTADOS

4.1 Determinar el comportamiento agronómico del cultivo de banano a la aplicación

de reguladores de crecimiento

4.1.1 Altura de planta en metros a los 30-60-90 días.

En el cuadro cinco, podemos observar que medias de los tratamientos, donde las plantas

tratadas con Ryzup obtuvieron mayor altura a los 30 días, con 1,77 m, a los 60 - 90 días el

Cytokin con 1,97-2,33 m logran mayor tamaño de plantas, con desviaciones estandar muy

bajas que variaron de 0,07-0,26 para todos los casos, con igual coeficiente de variación que

fueron de 4,32 % hasta 8,34 %, según la prueba de student resultó no significativo para

todas las fechas.

Cuadro 5. Promedio, desviación estándar, coeficiente de variación y prueba de t, de la

altura de planta, en la respuesta del cultivo de banano (Musa AAA) a la

aplicación de reguladores de crecimiento en la parroquia San Juan del cantón

Puebloviejo.

Altura de planta en metros

Fuentes de variación 30 días 60 días 90 días

Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup

Ẍ 1,54 1,77 2,05 1,97 2,33 2,26

Sd 0,07 0,26 0,10 0,17 0,11 0,14

CV (%) 4,32 6,16 4,89 8,43 4,74 6,23

Prueba de t 15,67 NS 2,51 NS 6,81 NS

NS = no significativo; *significativo; **altamente significativo

22

4.1.2 Altura de planta en m a los 120- 150-180 días.

Analizando las medias de los tratamientos, se observa que las plantas tratadas con Cytokin

obtuvieron mayor altura a los 120 días con 2,57 m, a los 150-180 días las plantas tratadas

con Ryzup alcanzaron alturas de 2,81-3,05 m respectivamente, con desviaciones estandar

muy bajas que obsilaron entre 0,08-0,16, igualmente coeficiente de variación que fueron de

5,30 % hasta 6 %, según la prueba de student resultó no significativo para todas las fechas.

Cuadro 6. Media de los tratamientos, desviación estándar, coeficiente de variación y

prueba de t, en la respuesta del cultivo de banano (Musa AAA) a la aplicación

de reguladores de crecimiento en la parroquia San Juan del cantón Puebloviejo.

Altura de planta en metros

Fuentes de variación 120 días 150 días 180 días

Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup

Ẍ 2,57 2,54 2,70 2,81 3,00 3,05

Sd 0,16 0,12 0,14 0,14 0,10 0,08

CV (%) 6 4,49 5,30 4,96 3,33 2,56

Prueba de t 1,16 NS 3,51 NS 2,67 NS

NS = no significativo; *significativo; **altamente significativo

23

4.1.3 Diámetro de planta en cm a los 30-60-90 días.

En el cuadro siete podemos observar que el mayor beneficio lo obtuvieron las plantas

inyectadas con Cytokin las cuales tuvieron medias que van de 13,58 a los 30 días y de

17,24-19,09 a los 60-90 días respectivamente, con desviaciones estandar que obsilaron

entre 1,66-1,93, igualmente coeficiente de variación que fueron de 12,20 % hasta 10,10 %,

según la prueba de t (Student) resultó no significativo para todas las fechas.

Cuadro 7. Media de los tratamientos, desviación estándar, coeficiente de variación y

prueba de t, del diámetro de planta en la respuesta del cultivo de banano (Musa

AAA) a la aplicación de reguladores de crecimiento en la parroquia San Juan del

cantón Puebloviejo.

Diámetro de planta en centímetros

Fuentes de variación 30 días 60 días 90 días

Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup

Ẍ 13,58 12,04 17,24 14,29 19,09 15,99

Sd 1,66 1,41 2,12 1,34 1,93 1,34

CV (%) 12,20 11,67 12,27 9,36 10,10 8,39

Prueba de t 5,24 NS 6,81 NS 7,60 NS

NS = no significativo; *significativo; **altamente significativo.

24

4.1.4 Diámetro de planta en cm a los 120-150-180 días.

Observando las medias de los tratamientos, se puede deducir que las plantas tratadas con

Cytokin alcanzaron mayor diámetro a los 120 días con 22,52 cm, a los 150-180 días

alcanzaron diámetros de 24,30-22,26 cm respectivamente, con desviaciones estandar que

van entre 1,21-2,37, igualmente los coeficientes de variación fueron de 5,48 % hasta

6,90 %, según la prueba de t (Student) resultó no significativo para todas las fechas.

Cuadro 8. Media de los tratamientos, desviación estándar, coeficiente de variación y

prueba de t, del diámetro de planta en la respuesta del cultivo de banano (Musa

AAA) a la aplicación de reguladores de crecimiento en la parroquia San Juan del

cantón Puebloviejo.

Diámetro de planta en centimetros

Fuentes de variación 120 días 150 días 180 días

Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup

Ẍ 22,52 20,26 24,30 22,26 26,02 24,96

Sd 1,23 1,40 1,26 2,37 1,02 1,21

CV 5,48 6,90 5,17 6,13 3,91 4,83

Prueba de t 7,24 NS 6,79 NS 3,83 NS

NS = no significativo; *significativo; **altamente significativo.

25

4.1.5 Emisión foliar a los 30-60-90 días.

El cuadro nueve muestra la emisión foliar que presentaron los tratamientos, solo el Cytokin

a los 60 días logró mayor emisión foliar, con cinco hojas, el resto tuvieron igual

comportamiento, con desviaciones estandar muy bajas que variaron de 0,22-0,50, con

coeficiente de variación que fluctuaron de 5,74 % hasta 12,72 %, según la prueba de t

(Student) resultó no significativo para todas las fechas.

Cuadro 9. Media de los tratamientos, desviación estándar, coeficiente de variación y

prueba de t, de la emisión foliar en la respuesta del cultivo de banano (Musa

AAA) a la aplicación de reguladores de crecimiento en la parroquia San Juan

del cantón Puebloviejo.

Emisión foliar de las plantas

Fuentes de variación 30 días 60 días 90 días

Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup

Ẍ 4 4 5 4 4 4

Sd 0,50 0,50 0,38 0,22 0,28 0,35

CV (%) 12,44 12,72 9,24 5,44 7 8,9

Prueba de t 1,28 NS 6,81 NS 1,43 NS

NS = no significativo; *significativo; **altamente significativo.

26

4.1.6 Emisión foliar de planta a los 120-150-180 días.

Para estas fechas la emisión foliar fue igual en las fitohormonas inyectadas, con

desviaciones estandar que variaron de 0,16-0,32, con coeficiente de variación que oscilaron

entre 3,97 % hasta 10 %, según la prueba de t (Student) resultó no significativo para todas

las fechas.

Cuadro 10. Media de los tratamientos, desviación estándar, coeficiente de variación y

prueba de t, de la emisión foliar en la respuesta del cultivo de banano (Musa

AAA) a la aplicación de reguladores de crecimiento en la parroquia San Juan

del cantón Puebloviejo

Emisión foliar de plantas

Fuentes de variación 120 días 150 días 180 días

Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup

Ẍ 4 4 4 4 4 4

Sd 0,39 0,30 0,16 0,22 0,22 0,33

CV (%) 10 7,79 3,97 5,58 5,58 8,64

Prueba de t 0 NS 0,81 NS 1,13 NS

NS = no significativo; *significativo; **altamente significativo

27

4.1.7 Días de la emisión de la inflorescencia y días a la cosecha.

En lo correspondiente a los días de la emisión de la bellota podemos ver en el cuadro ocho

que las plantas que fueron tratadas con Ryzup fueron las que obtuvieron menor tiempo, con

una media de 197 días, una desviación estandar de 4,03 para Cytokin y 15,05 para Ryzup,

con coeficiente de variación de 2,01-7,63 respectivamente, según la prueba de t (Student)

resultó no significativo.

En el mismo cuadro podemos ver en lo que respecta a días a la cosecha que las

plantas que fueron inyectadas con Ryzup obtuvieron una media de 285 días y 291 días para

Cytokin, con una desviación estandar de 3,65-3,87, un coeficiente de variación de 3,65 para

Cytokin y 3,87 para Ryzup según la prueba de (student) resultó no significativo con un

valor de 4,08.

Cuadro 11. Media de los tratamientos, desviación estándar, coeficiente de variación y

prueba de t, la emisión de la inflorecencia y días a la cosecha en la respuesta

del cultivo de banano (Musa AAA) a la aplicación de reguladores de

crecimiento en la parroquia San Juan del cantón Puebloviejo.

Fuentes de variación Días a la emisión de lainflorescencia

Días a la cosecha

Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup

Ẍ 200 197 291 285

Sd 4,03 15,05 3,32 3,43

CV (%) 2,01 7,63 3,65 3,87

Prueba de t 1,06 NS 4,08 NS

NS = no significativo; *significativo; **altamente significativo

28

4.2 Identificar cuál de los reguladores de crecimiento tiene mejor efecto sobre el cultivo, basados en el rendimiento. 4.2.1 Peso del racimo, largo de dedos y número de manos por racimo

A continuación podemos observar en el cuadro doce que la variable a la cosecha, donde el

largo de dedos las plantas que fueron tratadas con citokyn obtuvieron mayor tamaño con

20,30 cm, las desviaciones estandar de 0,89 para Cytokin y 0,59 para Ryzup, con

coeficiente de variacion de 4,36 % y 3,0 % respectivamente, según la prueba de t (Student )

resultó no significativa para esta variable, con valor de 1,86.

En lo que respecta al peso de racimos, en el mismo cuadro se muestra que las

plantas que fueron tratadas con citokyn obtuvieron mayor peso con 30,47 kg, las

desviaciones estandar de 2,36 para Cytokin y 1,92 para Ryzup, el coeficiente de variación

fue de 7,75 % y 6,41 % respectivamente, según la prueba de t (Sstudent) resultó no

significativa para esta variable, con valor de 0,98.

Finalmente en el mismo cuadro en la variable número de manos, se observa que las

medias de los tratamientos fueron siete manos para el ryzup y ocho para las inyectadas con

Cytokin, la desviación estandar de 0,50 para Cytokin y 0,70 para Ryzup, con coeficiente de

variación de 6,52 % y 9,56 % respectivamente, según la prueba de t (Student) resultó no

significativa para esta variable, con valor de 1,81.

29

Cuadro 12. Media de los tratamientos, desviación estándar, coeficiente de variación y

prueba de t, en el largo de dedos, peso del racimo y número de manos por

racimo en la respuesta del cultivo de banano (Musa AAA) a la aplicación de

reguladores de crecimiento en la parroquia San Juan del cantón Puebloviejo.

Cosecha

Fuentes de variación Largo de dedoscm

Peso del racimokg

Número de manos

Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup Cytokin Ryzup

Ẍ 20,30 19,90 30,47 29,95 8 7

Sd 0,89 0,59 2,36 1,92 0,50 0,70

CV (%) 4,36 3,0 7,75 6,41 6,52 9,56

Prueba de t 1,86 NS 0,98 NS 1,81 NS

NS = no significativo; *significativo; **altamente significativo

4.2.2 Conversión racimos/caja (ratio)

En lo que corresponde al analisis de la conversión racimos/caja, en el cuadro diez se

muestra que el mayor conversión lo obtuvieron las plantas que fueron tratadas con Cytokin

con un valor de 1,30, con desviación estandar de 0,15 y en C.V de 11,48 %, y las plantas

tratadas con Ryzup obtuvieron una conversión de 1,25 y un C.V de 11,77 %, según la

prueba de t (Student) resultó no significativa para esta variable con valor de 1,51.

30

Cuadro 13. Media de los tratamientos, desviación estándar, coeficiente de variación y

prueba de t, en la conversión racimos/caja (ratio) en la respuesta del cultivo

de banano (Musa AAA) a la aplicación de reguladores de crecimiento en la

parroquia San Juan del cantón Puebloviejo.

Fuentes de variaciónConversión racimos/caja

(ratio)Cytokin Ryzup

Ẍ 1,30 1,25

Sd 0,15 0,15

CV (%) 11,48 11,77

Prueba de t 1,51 NS

NS = no significativo; *significativo; **altamente significativo

4.3 Análisis económico

En el cuadro catorce podemos observar el análisis económico de los tratamientos

efectuados, en el cual podemos ver que las plantas que fueron inyectadas con Cytokin

requieren menor inversión que las plantas a las que se aplicó Ryzup, con un costo total de

1 803,96 para cytokin, mientras que Ryzup obtuvo un costo de 1 818,96, por lo tanto

podemos determinar que la relación B/C de mayor inversión fue para Ryzup con un

promedio de 0,57 mientras que para Cytokin es de 0,54 siendo esta la más baja de los dos

tratamientos .

31

Cuadro 14. Análisis económico en base al rendimiento y costo de producción, en la

respuesta del cultivo de banano (Musa AAA) a la aplicación de reguladores

de crecimiento en la parroquia San Juan del cantón Puebloviejo.

Tratamientos Utilidad bruta ($)

C

Costototal ($)

F

Beneficio netoG

RelaciónB/C

Cytokin 10 010 1 803,96 8 206,04 0,54

Ryzup 9 625 1 818,96 7 806,04 0,57

32

V. DISCUSIÓN

Con base a los resultados obtenidos en las variables con dos alternativas de nutrición en

banano se puede deducir que no hubo diferencia entre las características morfológicas de

los tratamientos.

En la variable de altura no hubo significancia estadística, numéricamente el tratamiento que

alcanzó mayor altura fue Ryzup con un promedio total de 3,05 m a los 180 días, esto

concuerda con lo manifestado por Formunica (2007), quienes manifiestan que uno de los

efectos del Ryzup en la planta es el alargamiento de los tallos.

En lo que respecta al diámetro del tallo el mayor promedio lo obtuvo el Cytokin con un

valor de 26,02 cm, estos resultados tienen relación con lo expresado por Azcon (1993), el

mismo que manifiesta que aplicando Cytokin el crecimiento de la planta no es rápido.

En lo que corresponde a los días a la emisión de la inflorescencia y días a la cosecha los

resultados no difirieron estadísticamente, pero el mejor efecto lo obtuvieron aquellas

plantas que se les aplicó Ryzup con un promedio de 197 días, y 285 días respectivamente,

estos resultados concuerdan con los encontrados por Formunica (2007) quien en sus trabajos experimentales desarrollados encontró que las plantas emiten su floración más rápido y por ello los días de la cosecha serán menores.

En lo concerniente al largo de dedos, aunque las variables no difirieron estadísticamente,

existió diferencia numérica, siendo Cytokin el que alcanzó un promedio de 30,47 cm el

mismo que obtuvo un mayor resultado, lo cual concuerda con lo expresado por

Ecuaquimica (2014), quien manifiesta que al aplicar Cytokin existe un mayor desarrollo de

frutos.

En la variable peso del racimo, los resultados no difirieron estadísticamente, pero el mayor

valor correspondió al Cytokin, con un peso de 30,47 kg este valor es inferior al encontrado

por Lopez (2014), quien en su investigación alcanzó un peso de racimos con una media

general de 35,28 kg.

33

En lo referente al número de manos por racimos, la mayor cantidad correspondió al

regulador de crecimiento Cytokin con un promedio de 8 manos, valor similar encontró

Lopez (2014) en su trabajo de investigación quien logró una media general de 8,97, estos

valores son superiores a los alcanzados por a Urban (2014) en su experimento solo logró

una media de 7,06 manos por racimos.

En cuanto a la conversión racimos/cajas (ratio), el producto Cytokin logró la mayor

conversión con un promedio de 1,30, valor similar alcanzó Lopez (2014) en su

investigación utilizando fitohormonas, quien logró con un ratio con promedio de 1,38.

34

VI. CONCLUSIONES

De los resultados obtenidos en la presente investigación, se llega a las siguientes

conclusiones:

Las dos alternativas de nutrición inyectadas en el pseudotallo de las plantas de las

musáceas dieron resultados positivos, tal es el caso que la mayor altura de planta la

obtuvieron las plantas que se les aplico el Ryzup con un promedio de 3,05 m.

Las plantas que mayor diámetro alcanzaron fueron las que se empleó Cytokin con

un valor de 26,02 cm.

Con la aplicación del regulador de crecimiento Ryzup se reduce el día a la emisión

de la bellota y también el día a la cosecha.

Con la inyección de Cytokin al pseudotallo se logró el mayor peso del racimo con

30,47 kg, los dedos más largo con 20,26 cm en promedio y ocho manos por racimo

lo que se reflejó en el mayor ratio con 1,30.

Económicamente la mayor relación B/C correspondió al Ryzup con un valor de 0,57

y una rentabilidad del 57 %.

Basados en los resultados obtenidos se acepta la hipótesis que decía: “Aplicando reguladores de crecimiento se logrará un rápido desarrollo vegetativo que se refleja en la producción”.

De acuerdo a los resultados obtenidos se recomienda:

Aplicar Cytokin en dosis de 2 cc por planta inyectado al pseudotallo por dos

ocasiones (la primera aplicación al inicio y la segunda a las 8 semanas), lo que

genera un impacto positivo en la productividad del cultivo de banano.

35

Probar el Cytokin y Ryzup en otras dosis bajo otras condiciones climáticas.

Realizar investigaciones mezclando los dos reguladores de crecimiento (Cytokin y

Ryzup), para evaluar la reacción del cultivo de banano.

36

VII. BLIBLIOGRAFIA

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