UNIVERSIDAD DE EL SALVADOR
FACULTAD DE QUIMICA Y FARMACIA
RECOPILACION DE METODOS DE ANALISIS OFICIALES Y NO OFICIALES MAS EMPLEADOS PARA DETERMINAR FOSFATASA ALCALINA Y
LACTOPEROXIDASA EN LECHE Y QUESOS.
TRABAJO DE GRADUACION PRESENTADO POR
SONIA ELENA CRISTALES GEORGE
PARA OPTAR AL GRADO DE
LICENCIATURA EN QUIMICA Y FARMACIA
SEPTIEMBRE DE 2009
SAN SALVADOR, EL SALVADOR, CENTRO AMERICA.
UNIVERSIDAD DE EL SALVADOR
RECTOR
MSc. RUFINO ANTONIO QUEZADA SANCHEZ
SECRETARIO GENERAL
LIC. DOUGLAS VLADIMIR ALFARO CHAVEZ
FACULTAD DE QUIMICA Y FARMACIA
DECANO
LIC. SALVADOR CASTILLO AREVALO
SECRETARIA
MSc. MORENA LIZETTE MARTINEZ DE DIAZ
COMITE DE TRABAJO DE GRADUACION
COORDINADORA GENERAL
Lic. María Concepción Odette Rauda Acevedo
ASESORA DE AREA DE ANALISIS DE ALIMENTOS
Ing. Rina Lavinia Hidalgo de Medrano.
ASESORA DE AREA DE GESTION AMBIENTAL, TOXICOLOGIA Y
QUIMICA LEGAL
Lic. María Luisa Ortíz de López
DOCENTE DIRECTORA
Lic. Dinorah del Carmen Rodríguez de Laínez
AGRADECIMIENTOS
A Lic. Dinorah de Laínez, mi asesora directora de trabajo de tesis quien tuvo el interés
de embarcarse juntamente conmigo en este proyecto de tesis y que dispuso su tiempo y
esfuerzo en el, por su orientación, oraciones y motivación a seguir adelante confiando en
Dios. Reciba bendiciones del Altísimo en su vida en su familia y en su carrera. Muchas
gracias.
A Ing. Lavinia de Medrano y Lic. María Luisa de López docentes asesoras de área
quienes sin sus observaciones y revisiones de este trabajo no podrían haberse llevado a
fin. Agradezco su colaboración, su interés, esfuerzo y su valioso tiempo. Que Dios les
conceda muchas bendiciones en sus vidas y las peticiones de su corazón.
A Lic. Odette Rauda Coordinadora de Trabajos de Graduación de la Facultad de
Química y Farmacia, quien también me impulsó a seguir adelante, por sus consejos y me
inyectó animo para no rendirme en el proceso y culminar la carrera, por todo su tiempo y
esfuerzo. Que Dios la colme con su bendición a usted y a su familia.
A todos los laboratorios de análisis que amablemente me brindaron la información que
permitió la conformación de este trabajo.
A todas las autoridades y en especial a los docentes de la Facultad de Química y
Farmacia que brindaron sus conocimientos y experiencia para mi formación académica y
profesional, gracias por su entrega todos estos años, por sembrar parte de sus vidas en
las nuevas generaciones dentro de las aulas de nuestra amada facultad y por seguirlo
haciendo aún. ¡Que Dios los Bendiga y les muestre que Él es El Dios que esta
enamorado de ustedes!
DEDICATORIA
La honra sea para Él, que me dio un motivo de existir. Él que infundió vida a mi alma
cuando más lo necesite; cuando entre la gente camine pero sola y perdida me sentí. A
quien por todo y en todo de mi vida deseo que sea glorificado y que sus propósitos para
mi vida se cumplan en todo tiempo: A mi papi Dios, a su Santo Espíritu y a mi
Amado Cristo ofrezco el presente triunfo.
También debo reconocer el profundo amor y apoyo de una mujer valiente, calida y
decidida: Zonia Mirian George; que desde mi nacimiento hasta el día de hoy se ha
sacrificado por mí, la que día a día se enfrento conmigo al desanimo, a la ansiedad y al
desaliento empujándome a seguir adelante hasta alcanzar la meta, teniendo paciencia y
comprendiéndome muy bien, la que nunca dejo de elevar su agradable oración delante
de Dios por mi vida. Ella a quien Dios escogió para que fuera la que trajera en su vientre
a este mundo mi persona: Infinitas Gracias Mamita Te Amo.
Sin duda mí amada abuelita: Maria Luisa George, a quien debo agradecer me halla
cuidado durante mi infancia; quien también me ha apoyado constantemente en oración y
ruegos por mi vida durante este largo proceso. Que Dios te cuide siempre Abueli.
A toda mi amada familia, a mis amigos y hermanos amados en Cristo quienes
también han sido de fortaleza para mí en este camino: Muchísimas Gracias.
A ti que tienes la bondad de abrir este trabajo quiero decirte: Nunca te Rindas y No
Tengas Miedo a nada, si amas a Dios y le buscas le encontrarás y El estará contigo para
siempre. Prepárate Jesucristo Regresa Pronto. Búscale mientras puedas hallarlo. Isaías
55:6 y 7. Con el corazón, Sonia George.
INDICE
Resumen
Capítulo
I. Introducción xxi
II. Objetivos
2.1 Objetivo General
2.2 Objetivo Especifico
III. Marco Teórico 25
3.1 Marco contextual 26
3.2 Leche 27
3.3 Leche cruda 29
3.4 Leche pasteurizada 30
3.4.1 Procesamiento de la Leche 30
3.5 Queso 34
3.6 Queso maduro 37
3.7 Queso fresco 39
3.8 Fabricación general del queso 40
3.9 Pasteurización 43
3.9.1 Tipos de pasteurización y esterilización
3.9.1.1 Pasteurización discontinua o pasteurización
Baja (pasteurización lenta). 46
3.9.1.2 Pasteurización alta o (HTST) Alta Temperatura
en Corto Tiempo (pasteurización rápida). 48
3.9.1.3 Sistema Ultra-Temperaturas o
Ultra Pasteurización (UHT). 50
3.9.2 Ventajas en la pasteurización de leche destinada a quesería.51
3.9.3 Desventajas en la pasteurización de leche destinada
a quesería 52
3.10 Enfermedades causadas por ingesta de productos lácteos
no pasteurizados. 53
3.11 Fosfatasa Alcalina
3.11.1 Generalidades 56
3.11.2 Características de la Fosfatasa alcalina 61
3.11.3 Mecanismos de reactivación de la Fosfatasa alcalina. 62
3.11.4 Actividad in vivo de la enzima Fosfatasa alcalina 65
3.12 Lactoperoxidasa
3.12.1 Generalidades 66
3.12. 2 Características de la Lactoperoxidasa 68
3.12. 3 Mecanismos de Inactivación de la Lactoperoxidasa 70
3.12. 4 Actividad in vivo de la enzima Lactoperoxidasa 71
3.13 Espectroscopia visible 72
3.14 Fundamentos de los métodos investigados.
3.14.1 Fundamentos de los Métodos para Fosfatasa alcalina 74
3.14.1.1 Método de Scharer 74
3.14.1.2 Método de Cornell 74
3.14.1.3 Método de Sanders y Sager 75
3.14.1.4 Método de Rutgers 75
3.14.1.5 Método de Aschaffenburg y Mullen 77
3.14.1.6 Prueba para Fosfatasa con 4-Aminoantipirina 77
3.14.1.7 Método Fluorimétrico 78
3.14.1.8 Método para Fosfatasa alcalina reactivada 79
3.14.2 Fundamento de los Métodos para determinar
Lactoperoxidasa 80
3.14.2.1 Reacción de Dupoy 80
3.14. 2.2 Método de Storch 81
3.14. 2.3 Método de Rothenfusser 81
3.14. 2.4 Método ABTS [Acido 2,2’-Azino-bis].
(3-etil- benzotiazolin) 6 - sulfónico] 81
3.14.2.5 Reacción de Trinder 83
3.15 Procedimiento de los métodos de análisis para determinar
Fosfatasa alcalina y Lactoperoxidasa en lácteos. 85
3.15.1 Métodos más conocidos para determinar
Fosfatasa alcalina. 85
3.15.1.1 Prueba rápida para Fosfatasa por
Método de Scharer. 85
3.15.1.2 Método Espectrofotométrico modificado
para Fosfatasa 93
3.15.1.3 Método de Cornell para Fosfatasa 99
3.15.1.4 Método de Rutgers para Fosfatasa 105
3.15.1.5 Método de Aschaffenburg y Mullen 109
3.15.1.6 Método de Sanders y Sager Modificado 112
3.15.1.7 Prueba con 4-aminoantipirina para
determinar Fosfatasa alcalina 120
3.15.1.8 Método Fluorimétrico para Fosfatasa Alcalina 123
3.15.1.9 Método para determinar Fosfatasa alcalina
reactivada por tratamientos (HTST) y (UHT) 136
3.15.2 Determinación de Lactoperoxidasa 140
3.15.2.1 Reacción de Dupoy 140
3.15.2.2 Método de Storch 142
3.15.2.3 Método de Rothenfusser 144
3.15.2.4 Método ABTS [Acido 2,2’-azino-bis
(3-etil-benzotiazolin) 6-sulfónico] 146
IV. Diseño Metodológico 149
V. Resultados 166
VI. Discusión de Resultados 170
VII. Conclusiones 176
VIII. Recomendaciones 179
Bibliografía
Glosario
Anexos
Indice de Cuadros
CUADRO Nº
1. Sistemas de Calentamiento. Pág. 52
2. Preparación de Estándares de fenol para el método
de Scharer. Pág. 90
3. Adición de Reactivos en el método de Scharer. Pág. 92
4. Estándares de fenol para el método de Cornell. Pág. 102
5. Adición de Reactivos en el Método de Cornell. Pág. 104
6. Adición de Reactivos en el Método de Rutgers. Pág. 107
7. Adición de Reactivos en el Método de Aschaffenburg
y Mullen. Pág. 111
8. Adición de Reactivos en el Método de Sanders y Sager. Pág. 117
9. Preparación de Estándares de fenol para Curva patrón
del método de Sanders y Sager. Pág. 118
10. Adición de Reactivos en el Método de 4-aminoantipirina
para Fosfatasa alcalina. Pág. 122
11. Adición de Reactivos en el tratamiento para determinar
Fosfatasa reactivada. Pág. 138
12. Adición de Reactivos en la Prueba de Dupoy. Pág. 141
13. Adición de Reactivos en la Prueba de Storch. Pág. 143
14. Adición de Reactivos en el método de Rothenfusser. Pág. 145
15. Preparación de Reactivo ABTS /Muestra en el método
ABTS. Pág. 147
16. Adición de Reactivos en el método ABTS. Pág. 147
Índice de Figuras FIGURA Nº
1. Subunidad polipeptídica de la enzima fosfatasa alcalina. Pág. 57
2. Molécula de Fosfatasa Alcalina totalmente funcional. Pág. 57
3. Reacción de hidrólisis producida por la enzima Fosfatasa
Alcalina sobre los esteres fosfóricos. Pág. 66
4. Subunidad de una molécula de peroxidasa. Pág. 67
5. Reacción de Scharer para Fosfatasa alcalina. Pág. 74
6. Reacción de Sanders y Sager para Fosfatasa alcalina. Pág. 75
7. Reacción de Rutgers para Fosfatasa alcalina. Pág. 76
8. Reacción de Aschaffenburg y Mullen. Pág. 77
9. Reacción de Fosfatasa alcalina con 4-aminoantipirina. Pág.78
10. Reacción de Método Fluorimétrico para determinar
Fosfatasa alcalina. Pág. 78
11. Reacción de Dupoy para Lactoperoxidasa. Pág. 80
12. Reacción de Storch para Lactoperoxidasa. Pág. 81
13. Reacción ABTS para Lactoperoxidasa Pág. 83
14. Reacción de Trinder para Lactoperoxidasa. Pág. 84
Indice de Anexos ANEXO Nº
1. Cuidados y precauciones para realizar las metodologías de análisis de
fosfatasa alcalina y lactoperoxidasa.
2. Información que debe acompañar a las muestras y controles.
3. Precauciones y cuidados a tomar para realizar análisis de fosfatasa
alcalina para evitar resultados falsos positivos en los ensayos.
4. Controles aplicables a todos los procedimientos para fosfatasa alcalina.
5. Esquema del Método Rápido de Scharer
6. Esquema del Método de Scharer Modificado
7. Esquema del Método de Cornell
8. Esquema del Método de Rutgers
9. Esquema del Método de Aschaffenburg Y Mullen
10. Esquema del Método de Sanders Y Sager Modificado
11. Esquema de la Prueba con 4- Aminoantipirina
12. Esquema del Método para Determinar Fosfatasa Alcalina Reactivada.
13. Esquema de Reacción de Dupoy
14. Esquema de Método de Storch
15. Esquema de Método de Rothenfusser
16. Esquema de Método de ABTS
17. Método por Reacción de Trinder
-Determinación Enzimática de Glucosa y Sacarosa en Alimentos.
(Reacción de Trinder)
-Determinación de Glucosa (Método Glucosa - Oxidasa) en Fluidos
Biológicos. (Reacción de Trinder)
18. Toxicidad de Sustancias Químicas Peligrosas Empleadas en los Análisis
y Hojas de datos de seguridad.
ABREVIATURAS
ABTS: [Acido 2,2’-Azino (3-etil-benzotiazolina)-6-sulfónico].
ACGIH: (American Conference of Governmental Industrial Hygienists)
Conferencia Americana Gubernamental de Higiene Industrial.
ALP: Actividad de la Lactoperoxidasa.
AOAC (Association of Official Analytical Chemists): Asociación de Químicos
Analíticos Oficiales.
BQC: 2,6 dibromoquinona clorimida.
CAS: (Chemical Abstracts Service) el número asignado por el Servicio de
Químicos Abstractos para identificar a una sustancia química específica.
CONACYT: Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología.
CQC: 2, 6 dicloroquinona clorimida.
DEP: (New Yersey Department of Environmental Protection). Departamento de
Protección Ambiental del Estado de New Yersey.
DOT (Department of Transportation): Departamento de Transporte que regula el
transporte de químicos.
EPA: (Environmental Protection Agency). Agencia de Protección Ambiental.
FAO: Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la
Alimentación.
FDA (Food and Drug Administration): Administración de Drogas y Alimentos.
FLU: Unidades de Fluorescencia.
HHAG (Human Health Assessment Group de la EPA): Grupo Evaluador de
Salud Humana.
HTST (High Temperatura Short Time): Tiempo Corto Alta Temperatura.
IPOA: Inspección de Productos de Origen Animal.
IRIS (Integrated Risk Information System): Sistema Integrado de Información de
Riesgos, base de datos de la EPA.
LP: Lactoperoxidasa.
MAG: Ministerio de Agricultura y Ganadería.
MSPAS: Ministerio de Salud Publica y Asistencia Socia.
NFPA: (National Fire Protection Association). Asociación Nacional para la
Protección contra Incendios.
NIOSH: (National Institute for Occupational Safety and Health). Instituto
Nacional para la Seguridad y Salud Ocupacional.
NSO: Norma Obligatoria Salvadoreña.
OMS: Organización Mundial de la Salud.
OPS: Organización Panamericana de la Salud.
UHT (Ultra High Temperatura): Temperatura Ultra Alta.
RESUMEN
El presente trabajo es una recopilación bibliográfica, de metodologías para el
análisis cuantitativo y cualitativo en la determinación de las enzimas Fosfatasa
alcalina residual, reactivada y Lactoperoxidasa, con la finalidad de que puedan
ser consideradas e implementadas en las normativas del país, ya que en la
actualidad solo se ha contemplado la metodología para fosfatasa alcalina en
leches pasteurizadas. Y en el caso de las leches UHT únicamente se realizan
análisis microbiológicos.
Así también se realizo una investigación sobre los métodos específicos de
análisis que se realizan para verificar los procesamientos térmicos en las leches
y quesos. Se empleó como instrumento de investigación una encuesta realizada
a profesionales responsables que laboran en laboratorios gubernamentales y
privados, especializados en el análisis de alimentos y de esta forma conocer si
emplean métodos como el de la enzima Fosfatasa alcalina, que se aplica para
pasteurizaciones normales y la enzima Lactoperoxidasa para procesos de
pasteurización HTST y ultra pasteurización (UHT).
En el país, el Ministerio de Agricultura y Ganadería emplea el Método
Fluorimétrico para Fosfatasa alcalina residual y los dos laboratorios privados
consultados emplean el Método de Scharer. Estos métodos son útiles para
verificar pasteurizaciones normales en leches, muestreadas en la planta
procesadora. Sin embargo estas metodologías no son aplicables a leche en
estantería o anaquel debido a que la Fosfatasa alcalina tiende a reactivarse de
acuerdo al tiempo y a la temperatura a la que se exponga. La reactivación
puede darse en un par de días a una semana, según sean de extremas las
condiciones a las que se haya procesado la leche.
En el país no se tiene un método específico para verificar este tipo de procesos
de pasteurizaciones HTST y UHT. Por lo que se recomienda la revisión de la
NSO 67.01.15:07 Productos Lácteos. Leches pasteurizadas y
ultrapasteurizadas con sabor. Especificaciones, para la inclusión de
metodologías como la de determinación de Fosfatasa alcalina reactivada, los
métodos de ABTS o el de Dupoy para Lactoperoxidasa. Los cuales resultan ser
menos tóxicos que otros métodos de análisis.
También es necesario optar por el empleo de más metodologías para Fosfatasa
alcalina que sean amigables con el medio ambiente y con menores riesgos a la
salud, como pueden ser: El método fluorimétrico (empleado actualmente por el
MAG), el método de Rutgers o el método de 4-aminoantipirina.
CAPITULO I
INTRODUCCION
xxi
1. 0 INTRODUCCION
La efectividad de los tratamientos térmicos a los que se somete la leche,
garantiza la salubridad y calidad del producto tanto de consumo nacional como
de exportación. Sin embargo, el organismo de control gubernamental, y los
laboratorios privados especializados en el control de calidad en alimentos, así
como también los productores industriales de lácteos, en el país emplean en la
actualidad los métodos químicos de análisis que determinan la enzima fosfatasa
alcalina residual los cuales en caso de que los resultados muestren
incertidumbre, no permite verificar la presencia de la enzima reactivada o si ésta
es residual a un tratamiento térmico ineficaz lo cual genera sospecha en los
resultados de los análisis que se realizan para determinar la efectividad del
proceso de pasteurización en los lácteos.
Así también hay que mencionar que el consumo de leches procesadas a
temperaturas ultra altas, es cada vez mayor pero en el país actualmente no se
emplea ningún método para la verificación de la eficiencia de este proceso y el
sobrecalentamiento en la leche, para lo cual es útil la enzima Lactoperoxidasa.
Es por ello que en este trabajo se presentan las metodologías más conocidas
para verificar los procesos térmicos comprobando la presencia de las enzimas
mencionadas, las cuales podrían ser útiles a los sectores antes citados.
Estudios internacionales muestran el empleo de la enzima Fosfatasa alcalina
residual para determinar pasteurizaciones bajas en leche cruda en granjas y
también se ha estudiado la actividad de Lactoperoxidasa en leche con
xxii
procesamiento HTST y UHT, a través de métodos analíticos siendo algunos de
ellos más recomendados por la baja toxicidad de los reactivos que emplean.
Los estudios realizados en el país referentes de estas dos enzimas presentes
en la leche son pocos, donde únicamente se registra un estudio sobre la
Fosfatasa alcalina (residual) presente en quesillos de procedencia artesanal e
industrial (13). Y ninguna investigación referente a Lactoperoxidasa.
CAPITULO II
OBJETIVOS
2.0 OBJETIVOS
2.1 Objetivo General:
Recopilar bibliográficamente métodos de análisis químico, oficiales y no
oficiales para la determinación de fosfatasa alcalina y lactoperoxidasa en
leche y queso.
2.2 Objetivos Específicos:
2.2.1 Realizar una encuesta a las entidades gubernamentales y no
gubernamentales competentes para conocer los métodos de
verificación de la eficacia del tratamiento térmico para leche y quesos
en el país.
2.2.2 Investigar bibliográficamente los métodos analíticos de la fosfatasa
alcalina residual, reactivada y lactoperoxidasa en leches y quesos
considerados oficiales y no oficiales.
2.2.3 Describir el fundamento de los métodos de análisis para Fosfatasa
alcalina y para Lactoperoxidasa.
2.2.4 Desarrollar las metodologías para el análisis de fosfatasa alcalina
residual, reactivada y lactoperoxidasa así como los procesos de
preparación de reactivos a emplear en las pruebas analíticas
respectivas.
CAPITULO III
MARCO TEORICO
26
3.0 MARCO TEORICO
3.1 MARCO CONTEXTUAL
En 1960, se decretó por la Asamblea Legislativa, la ley de producción higiénica
de la leche, otros productos lácteos y la regulación de su expendio. (d L.
N.31443-10-1960), y su respectivo reglamento en 1971. (d. E. N. 4830-09-
1971).
El Código de Salud en el Art. 89: Establece como obligatoria la pasteurización,
esterilización u otro tratamiento de la leche en los lugares de procesamiento
industrial, artesanal o cualquier otro establecimiento que se dedique a tales
actividades.
Señalando una reforma del Código de Salud, que para el cumplimiento de esa
obligatoriedad, se establece un plazo prudencial, progresivo y paulatino.
Con todo ello la poca o ninguna tecnificación con la que la mayoría de
productores de leche se encuentra en el país, contribuye a que los productos
lácteos, en su mayoría artesanales, tengan los mínimos niveles estándar de
calidad y salubridad.
Aunque el código de salud en su art.89 no exige a los productores artesanales,
la pasteurización de la leche, sí estos procesan hasta 2000 botellas (1500
litros); sin embargo, es este sector artesanal donde el mayor porcentaje de
leche es procesado según el Ministerio de Agricultura y Ganadería, en
condiciones no adecuadas, resultando en productos lácteos que constituyen un
riesgo a la salud del consumidor.
27
El sector industrializado aunque realiza esfuerzos por tecnificarse y cumplir con
las normas de calidad, no está operando en su total capacidad de producción,
esto debido a los costos de producción que no se ven igualados con la
demanda local, además que la competencia regional de productos lácteos
beneficiada por la inexistencia de aranceles de importación, lo que acaba
generando una gran diferencia entre los precios con relación al producto
artesanal, lo cual influye mucho en el consumidor.
El interés por el monitoreo de la eficiencia de la pasteurización de la leche
debería ser en el país de gran importancia, ya que la deficiencia en la
pasteurización puede generar graves consecuencias en la salud de los
consumidores de ésta, como de sus derivados, sobre todo las mujeres en
embarazo. Recientemente la OMS y la FDA advirtió especialmente a las
mujeres en estado gestante no consumir productos lácteos sin pasteurizar, por
el riesgo que representa al feto la presencia de la Listeria monocytogenes.
3.2 LECHE
La leche es un líquido opaco, blanquecino o amarillento segregado
normalmente por las glándulas mamarias de las hembras de todos los
mamíferos. Su finalidad en la naturaleza es la nutrición de las crías del animal
que la produce. (35)
La leche normal no aparece hasta cinco días después del alumbramiento de las
crías, siendo el calostro lo que las mamas segregan durante los primeros días.
La leche es la única sustancia natural que puede servir de alimento único, ya
28
que es un producto completo; por suministrar elementos nutritivos de calidad
apropiada y en cantidad suficiente. Como casi todos los alimentos, la leche
contiene grasa, proteínas, carbohidratos, minerales y factores accesorios, como
vitaminas, fosfolípidos (fosfátidos) y enzimas. (19).
La leche es una emulsión estable (la leche entera está compuesta en un 80 a
90 % de agua) y la interfase grasa-agua está estabilizada por los emulsionantes
naturales adsorbidos presentes en la leche, los principales emulsionantes son
las proteínas que son adsorbidas alrededor de cada glóbulo de grasa, también
están presentes otros emulsionantes como los fosfolípidos (lecitina y vitamina
A). La leche es una importante fuente de calcio y riboflavina (vitamina B2), razón
para considerar a la leche un alimento tan valioso, ya que contribuye con toda
clase de nutrientes.
Sin embargo, la leche fresca es deficiente en algunos nutrientes como: hierro,
acido nicotínico y vitamina D, así como también en ácido ascórbico (vitamina
C).
Las proteínas más importantes de la leche son la caseína (2.6%), que precipita
en condiciones ácidas y las lactoalbúminas (0.12%) y lactoglobulinas (0.3%);
estas últimas son proteínas del suero que permanecen en soluciones después
de la acidificación. Las proteínas de la leche son de excelente calidad nutritiva,
porque la composición de sus aminoácidos es muy completa y porque estos
suplementan otras proteínas que carecen de uno o varios de los aminoácidos
29
esenciales. La caseína existe dispersa en la leche en forma de sal de calcio,
acomplejada con el fosfato de calcio.
La caseína es una fosfoproteína; la lactoalbúmina y lactoglobulina son proteínas
simples. Estas últimas se coagulan en gran parte manteniendo la leche a 85 ºC
durante quince minutos, mientras que para coagular la caseína es necesario
calentar hasta 138ºC. La caseína no es una sola sustancia sino una familia de
proteínas que contienen fósforo y se unen con calcio y otros minerales. Las
partículas coloidales de la caseína son estabilizadas por una capa eléctrica
originada por la presencia de iones enlazados de calcio y magnesio. Las
partículas cargadas son sensibles a los cambios en el pH y en la concentración
de iones circundantes. (17), (19)
3.3 LECHE CRUDA
Según la Norma Salvadoreña 67.01.01:06, la definición de leche es la siguiente:
Producto íntegro, no adulterado, ni alterado, del ordeño higiénico regular,
completo e ininterrumpido de vacas sanas que no contenga calostro y que este
exento de color, sabor, olor y consistencia anormal.
La leche cruda es un producto que no ha sufrido ningún tratamiento de
saneamiento que le permita asegurar una mejor conservación. Su producción y
su comercialización deben ser severamente controladas para evitar los riesgos
que pudiesen ocasionar en la salud de los consumidores. Para ello la leche
debe:
30
-Provenir de animales exentos de brucelosis y tuberculosis (enfermedades
transmisibles del animal al humano) dentro del cuadro de la profilaxis colectiva
obligatoria.
-De explotaciones bien establecidas.
-Manipularse (ordeño, envasado, almacenamiento) en condiciones higiénicas
satisfactorias;
-Cumplir con criterios microbiológicos determinados (testigos de contaminación)
hasta la fecha limite de consumo. (20)
3.4 LECHE PASTEURIZADA
Es la leche fresca y pura natural, entera, desnatada o semidesnatada, sometida
a un proceso tecnológico de temperatura adecuado, por un cierto periodo de
tiempo y posterior enfriamiento con rapidez, para asegurar la destrucción de los
microorganismos patógenos no esporulados y que reduzca significativamente el
contenido microbiano total, sin modificación sensible de su naturaleza físico-
química y características nutritivas y sensoriales.
3.4.1 PROCESAMIENTO DE LA LECHE
1. Ordeño:
El procesamiento de la leche debe considerarse desde su ordeño el cual
debe realizarse bajo las condiciones más higiénicas posibles evitando todo
tipo de contaminación, el cuarto de ordeño debe estar ventilado y protegido
contra la entrada de toda clase de animales insectos y roedores. Las vacas
31
deben estar sanas, libres de enfermedades que puedan transmitir al ser
humano.
2. Filtración:
La leche obtenida del ordeño debe ser filtrada de manera apropiada e
higiénica enfriada a una temperatura no mayor de 10ºC y mantenida fría
hasta su llegada a la planta de procesamiento de la leche. (26)
3. Recepción de la leche en la planta procesadora:
El primer paso en el procesamiento puede consistir en la mezcla adicional de
los diferentes ordeños de leche para lograr un contenido específico de grasa.
Durante este tiempo la leche se mantiene refrigerada a 4ºC. (35)
4. Higienización o Clarificación de la leche:
Es un proceso físico-mecánico que por medio de la fuerza centrífuga se
separan de la leche todas aquellas sustancias que no forman parte
constitutiva de la leche, dejándola completamente libre de impurezas, es
decir sedimentos extraños, por lo cual toda la leche cruda debe tratarse por
este proceso para obtener productos lácteos de alta calidad. La clarificación,
elimina el sedimento, las células de la ubre de la vaca, y partículas extrañas;
con ello la leche está lista para ser sometida a la pasteurización. (26)
5. Homogenización y el desnatado de la leche:
Es el proceso por medio del cual se rompe la columna de crema que se
forma en la superficie de la leche cuando coalescen las partículas de grasa
butírica contenida en la crema, esta es incorporada a toda la leche, de
32
manera que no haya separación de los glóbulos de grasa, su finalidad es
obtener un cuerpo homogéneo. En este proceso se subdividen los glóbulos y
racimos de glóbulos de grasa presentes en la leche, hasta partículas tan
pequeñas que ya no suban a la superficie de la leche formando una segunda
fase, sino manteniéndolos dispersos dentro del seno de la leche. Los
glóbulos de grasa tienen una densidad relativa inferior a la de la fase líquida
y, por lo tanto, ascienden a la superficie para formar nata (crema) cuando se
deja reposar la leche en un recipiente. Impidiendo así que la grasa de la nata
se separe del resto del producto. El proceso puede realizarse previo o
posteriormente al proceso de pasteurización. Este consiste en el paso de la
leche a presión a través de distintas rendijas muy finas a una temperatura
que oscila entre 55 y 65 °C, bajo una presión de 150 a 200 atmósferas. La
leche entera se pulveriza a presión a través de pequeñas boquillas, el
tamaño de los glóbulos de grasa se reduce hasta tal punto que
posteriormente no se separan; a ello se debe que esa leche produce menos
nata en comparación con la que no es procesada por medios mecánicos.
Este producto recibe el nombre de leche homogenizada.
Para el desnatado de la leche es necesaria la utilización de una
centrifugadora, para acelerar la separación de la grasa de la leche entera. El
producto que se obtiene después de retirada la grasa recibe el nombre de
leche desnatada o descremada. La leche con la mitad de grasa es conocida
como semidesnatada o semidescremada. (26), (35)
33
6. Pasteurización u otro tipo de procesamiento térmico:
Proceso de calentamiento de un líquido, en particular de la leche, a una
temperatura que oscila entre 62.8-72°C o a mayores temperaturas (según el
tipo de tratamiento térmico) para destruir las bacterias perjudiciales, sin
producir cambios materiales en la composición, en el sabor, o en el valor
nutritivo del líquido.
Su objetivo es la eliminación de cualquier organismo generador de
enfermedades que la leche pueda contener, además de la reducción
considerable de la cuenta bacteriana total a fin de mejorar su capacidad de
conservación. Prácticamente toda la leche, con el fin de garantizar su aptitud
para el consumo humano, debe ser sometida al proceso de pasteurización y
se mantiene refrigerada a una temperatura baja antes de pasar a los tanques
de almacenamiento, de los que sale fría y pasa directamente al depósito de
las maquinas envasadora para su envasado y su distribución. (19)
7. Envasado y Almacenamiento:
Este proceso ha de llevarse a cabo con máquinas llenadoras y envases
estériles para así impedir que el procesamiento sea infructuoso y mantener la
integridad de la leche sin contaminaciones externas. El almacenamiento de la
leche así tratada se realiza a una temperatura de 4ºC lo cual la conserva por
una semana en refrigeración.
En la actualidad el envasado más explotado de la leche se realiza por dos
procesos:
34
1. Proceso TETRAPAC: En envases constituidos por un empaque los siguientes
materiales unidos entre sí: polietileno-aluminio-polietileno–cartón-polietileno.
Presentados en una caja poliédrica, que permite una duración del producto,
con tratamiento UHT de 4-6 meses a temperatura ambiente, llamado también
empaque de larga vida.
2. Proceso PREPAC: En envases constituidos por capas de polietileno de alta
densidad presentados en forma de bolsa. Lo cual le permite al producto; con
tratamiento UHT, tener una duración de 45 días a temperatura ambiente.
3.5 QUESO
El queso en general, es el producto elaborado a base de la cuajada de la leche
de vaca y de otros animales; la cuajada se obtiene mediante la coagulación de
la caseína presente por la adición de la enzima Renina, con o sin tratamiento
adicional durante el proceso, por calor, presión, sal y maduración (generalmente
por medio de organismos seleccionados). (31)
La enorme variedad de condiciones a que puede someterse la cuajada obtenida
de la leche hace posible producir un número casi infinito de quesos. Esas
condiciones son: el contenido de humedad de la cuajada, el contenido relativo
de proteínas y grasas, las combinaciones de temperatura a que puede
someterse la cuajada al madurar y los microorganismos que persisten en ella
por las condiciones a que se somete la cuajada o los microorganismos
inoculados en ella. (19)
35
La fabricación del queso consiste en la coagulación de la leche y su conversión
en una dispersión coloidal en un gel conocido como cuajada, y la subsiguiente
liberación de agua en forma de suero. El contenido de agua disminuye en un
87% durante el procesamiento de la leche cuando se transforma en queso lo
que determina la dureza y las propiedades de conservación del queso, y esto
depende de varios factores: Temperatura, pH y la manera como se corta la
cuajada, salado, etc. (17)
La formación del queso se da cuando la caseína coagulada reacciona con los
iones de calcio para producir un gel tridimensional que tiene la forma de un
grumo firme llamado: Caseinato de calcio. La caseína existe en la leche en
forma de caseinato de calcio, en forma de partículas extremadamente
pequeñas en suspensión. La coagulación con renina del caseinato de calcio de
la leche tiene lugar en tres fases:
-La primera es la transformación del caseinato de calcio en paracaseinato de
calcio no coagulado, por la acción de la renina.
-La segunda es la producción bacteriana de ácido láctico, en donde el ácido
pone al calcio en forma de iones.
-La tercera fase es la acción física y química de los iones de calcio sobre el
caseinato de calcio para obtener paracaseinato de calcio coagulado (cuajada).
(17), (19)
Por error o desconocimiento algunos procesadores acostumbran destinar la
leche de peor calidad para quesos, como una alternativa para no perderla. (48).
36
Lo cual contribuye a la pérdida de calidad en los productos queseros que se
elaboran de ella, ya que el tratamiento térmico de las leches usadas como
materia prima del queso tiene por objeto la destrucción de los microorganismos
o sistemas enzimáticos que son perjudiciales en el proceso quesero o la
destrucción, en el caso de las bacterias patógenas, las que sean peligrosas
para el consumidor de queso. En el caso de leches destinadas a queso,
generalmente se admite que los estándares mínimos para el tratamiento
térmico de las leches queseras deben de ser los mismos que los de la leche
líquida, con lo que se erradican de todas las leches los microorganismos
patógenos. Aunque algunos técnicos queseros deseosos de conservar la
actividad lipasa de la leche cruda prefieren emplear los tratamientos térmicos
ligeros a baja temperatura, unos 65,5ºC, con o sin tiempos de retención;
aunque estos tratamientos no inactivan a las lipasas permiten que en la leche
de quesería sobrevivan bacterias nocivas o perjudiciales(patógenos y algunos
coliformes). Los quesos de larga maduración y prolongado almacenamiento
permiten que con el transcurso del tiempo mueran las bacterias patógenas,
pero los quesos de vida breve y los quesos blandos pueden contener aún
patógenos viables, si la leche usada para hacer queso contenía patógenos. Los
quesos hechos de leche no pasteurizada deben madurar por lo menos 60 días
a una temperatura no menor de 35ºF = 2ºC. Durante este periodo de
almacenamiento mueren algunas bacterias patógenas que pudieran estar
presentes en la leche. (4), (39)
37
3.6 QUESO MADURO
Se entiende por “queso curado o madurado” al queso que no está listo para el
consumo poco después de la fabricación, sino que deberá mantenerse durante
cierto tiempo a una temperatura y en unas condiciones tales que produzcan los
cambios bioquímicos y físicos necesarios y característicos de un queso maduro.
Durante la maduración aumenta el contenido del nitrógeno soluble en agua, del
nitrógeno amínico; componentes principales del aroma de algunos quesos se
pueden encontrar a concentraciones de 0.5 a 1.1% (nitrógeno soluble) en agua,
y es el producto de la desaminación de los aminoácidos y se encuentra en
forma de sal. También parte del nitrógeno amoniacal, (el cual es producto
intermedio del metabolismo proteico del animal donde se generan amoniaco,
urea, creatina, ácido úrico), y los ácidos volátiles.
La lipasa de la leche está ausente en el queso fresco, y a los 5-20 días después
de su fabricación empiezan a aparecer las lipasas de origen bacteriano. Por
consiguiente, se les atribuye la hidrólisis de la grasa que tiene lugar durante la
maduración del queso. Al igual que la proteinasa activa en la maduración del
queso es en gran parte de origen bacteriano. (19), (42), (43).
La caseína desempeña tres funciones en la preparación del queso:
1. Aprisiona en la cuajada los glóbulos de grasa y las sales en forma de fosfatos
y los retiene firmemente durante el proceso de la preparación del queso.
2. Retiene suero y agua en cantidades suficientes para permitir el desarrollo
correcto y la maduración del queso.
38
3. Es el material que produce los sabores característicos cuando el queso
madura. (19)
Las bacterias del ácido láctico se desarrollan en el queso ácido no madurado y
las enzimas presentes en las mismas efectúan varias reacciones químicas que
son responsables del sabor y el aroma. Una semana después de iniciada la
fabricación ha desaparecido toda la lactosa, ya que ha sido convertida en ácido
láctico. Además de la descomposición de la lactosa, la maduración consiste
principalmente en el desdoblamiento de las proteínas y las grasas. Las
proteínas son descompuestas por la hidrólisis enzimática efectuada por la
renina y otras peptidasas. Las proteínas son desdobladas progresivamente en
moléculas más pequeñas como las peptonas, y finalmente en aminoácidos.
Estos compuestos solubles nitrogenados de un bajo peso molecular contribuyen
de cierto modo al sabor del queso, y, además, producen cambios físicos en el
queso, que lo hacen más blanco y cremoso. Las grasas, al igual que las
proteínas son descompuestas por hidrólisis enzimática y se convierten en
glicerol y ácidos grasos libres. La grasa de la leche es relativamente rica en
ácidos grasos de bajo peso molecular, al ser volátiles y de olor fuerte,
contribuyen al sabor del queso. Los aminoácidos y los ácidos grasos producidos
por la descomposición de las proteínas pueden ser hidrolizados aún más por las
enzimas que producen moléculas de bajo peso molecular, como aminas las
cuales se generan con la descarboxilación de los aminoácidos provocando la
liberación de aminas como la putrescina derivada de la ornitina, la cadaverina a
39
partir de la lisina, el ácido amino butírico del ácido glutámico y la histamina del
triptófano respectivamente. Estas son las responsables de un olor agradable o
desagradable según la concentración a la que se encuentren en el queso así
como los aldehídos y cetonas que son volátiles y de sabor fuerte, contribuyen
también al sabor del queso maduro. (17), (43)
Durante la maduración del queso, las caseínas son hidrolizadas por las enzimas
coagulantes, plasmina y proteasas bacterianas generando diferentes
fosfopéptidos. Sólo tras la acción conjunta de proteasas y fosfatasas puede
obtenerse una degradación completa de las caseínas. Aunque la fosfatasa
ácida se sitúa en la fase acuosa de la leche, perdiéndose gran parte de ella en
el suero de quesería, podemos detectar alguna actividad de esta enzima en el
queso. De esta forma la fosfatasa ácida, que desfosforila las caseínas
hidrolizadas por las enzimas proteolíticas en el queso, podría tener una función
importante en el madurado y desarrollo del flavor del queso.
3.7 QUESO FRESCO
“Queso sin curar, sin madurar o fresco” es el queso que esta listo para el
consumo poco después de fabricado, de corta duración, y conservado a
temperaturas bajas.
Este está listo para consumirse tan pronto como se ha elaborado. Caracterizado
por su alto contenido de humedad y bajo contendido graso y gran valor nutritivo
por su contenido en proteínas. El queso no madurado bajo en humedad se
40
puede almacenar por algún tiempo, en contraste con el queso de alta humedad,
que debe consumirse pronto una vez elaborado (4), (21).
La cantidad de queso fresco producido depende de tres factores:
1. Del porcentaje de grasa más caseína en la leche,
2. De los porcentajes de grasa y caseína perdidos al hacer el queso y
3. Del porcentaje de agua retenida en la cuajada.
El queso fresco suele contener aproximadamente 37% de humedad, esto puede
ser regulado por los técnicos queseros durante su preparación según el cortado
de la cuajada, la temperatura al calentar la cuajada, el grado de acidez, la
cantidad de sal usada y la manipulación de la cuajada. (19)
3.8 FABRICACION GENERAL DEL QUESO
1. Refrigeración o tratamiento térmico de la leche en el momento de su
recepción. En el momento de la recepción en la fábrica, la leche debe
enfriarse hasta una temperatura entre los 2 a 4 ºC con objeto de limitar el
desarrollo de la flora psicrófila. En el fin de semana, su utilización debe
retrasarse varios días, por lo que es mejor someterla primero a una
pasteurización baja o termización: El cual es un tratamiento térmico que se
aplica para prolongar el tiempo de almacenamiento de la leche antes de
someterla a una pasterización o tratamientos más severos, y almacenar
después a baja temperatura en un material totalmente aséptico. La leche se
trata por 15 segundos a temperatura entre los 57- 72 ºC. Este tratamiento se
realiza en las 36 horas siguientes a la obtención, prolongando el tiempo de
41
almacenamiento hasta por 7 días sin pérdidas de calidad si se mantiene
entre 0 y 1ºC y en contenedores estériles. La termización es empleada por
algunos técnicos queseros para calentar la leche de quesería con objeto de
experimentar pocos cambios químicos y proceder luego a la fabricación del
queso. Pero la aplicación de este sistema requiere ineludiblemente que la
leche contenga escaso número de microorganismos y que esté exenta de
bacterias patógenas, ya que el efecto germicida es relativamente bajo. Pero
el calentamiento de la leche para quesería debe realizarse siguiendo el
procedimiento de la pasteurización rápida. (28)
2. Pasteurización y homogenización de la leche: Antes de su utilización, la
leche, conforme a la legislación, debe someterse a un proceso de
pasteurización para obtener una calidad higiénica y prepararla para la flora
láctica.
3. Preparación de los microorganismos lácticos: Los microorganismos mesófilos
que se utilizan en la fabricación del queso, llamados también: “starters” o
“iniciadores”, se cultivan preferentemente en cubas estériles a una
temperatura de unos 18-22ºC en una leche reconstituida con un 10-11% de
leche en polvo exenta de inhibidores para posteriormente agregarlos a la
leche.
4. Siembra de la leche: Se lleva a cabo a una concentración comprendida entre
el 1% y el 3%, en un tanque a una temperatura aproximada a los 20ºC.
42
5. Acidificación: La leche sembrada se reparte en tinas de capacidad variable, y
se agrega el cuajo diluido de 2 a 10 veces su volumen de agua, se incorpora
a razón de 5 a 10 mL de cuajo, en relación 1/10,0008 por cada 100 litros de
leche, en el momento en que comienza a desarrollarse la acidez en la leche.
(21)
6. Coagulación: La coagulación se lleva a cabo generalmente en tanques de
diversas capacidades, en los que se inicia el proceso generalmente cuando
el pH alcanza el valor de 5.8 y continua hasta que esté comprendido entre
4.50 y 4.55 para un suero cuya acidez tiene un valor de 55-60º D (0.16% a
0.2 % de ácido láctico). Para obtener un producto de calidad, con un
rendimiento correcto, el tiempo de coagulación no debe exceder las 18 horas.
Mientras dura esta operación, es conveniente cubrir los tanques para
protegerlos de contaminaciones.
7. Moldeado y desuerado: El suero que sobrenada se elimina por un
procedimiento apropiado y la cuajada se moldea siguiendo diversos
procedimientos por medio de multimoldes, cucharones y herramientas
especiales. Después, se escurre el tiempo necesario para que se obtenga el
extracto seco deseado. Generalmente el escurrido se realiza en una
habitación a temperatura controlada, aproximada a 18-20 º C, aunque
cuando se requiere obtener un producto de alta calidad, se lleva a cabo en
cámaras frías (8-10 º C). El tiempo de desuerado dependerá de la manera
con que se realice la sinéresis; la extracción del suero será de 6-8 horas
43
después del cortado de la cuajada. Sinéresis en tela empleando sacos: 10-
12ºC al final del desuerado 8 horas, 4 vueltas. Empleando filtro, 18-20ºC 8 A
20 horas, movimiento permanente. (21)
8. Empacado: Ha de empacarse con protección local por aire filtrado o con flujo
laminar, en frío a una temperatura de 4ºC, de preferencia el empacado al
vacío.
9. Almacenamiento en frío: En cuartos refrigerados a una temperatura entre 4ºC
a 10ºC. (21)
3.9 PASTEURIZACION.
Proceso que emplea un calor ligero para reducir las poblaciones microbianas en
la leche y otros productos que son excepcionalmente termosensibles. La
pasteurización de la leche, se empleó originalmente para matar las bacterias
patógenas, especialmente aquellas que producen zoonosis. En este sentido la
pasteurización de la leche juega un papel muy importante en la prevención de la
diseminación de enfermedades infecciosas, donde la leche pueda ser el
principal medio de transmisión. (3)
La pasteurización también mejora las características de almacenamiento de la
leche, este es otro objetivo de la pasteurización, el proteger a estos alimentos
frente al deterioro enzimático y al deterioro microbiano durante el
almacenamiento y así pueden conservar su calidad y seguridad higiénica
durante una o dos semanas de almacenamiento en refrigeración. Las formas
vegetativas de los microorganismos son destruidas a temperaturas más bajas
44
que la mayoría de las enzimas, aunque con ellas también la leche pierde
durante el proceso térmico aminoácidos, y otras sustancias vitamínicas que son
sensibles al calor. (31)
El tratamiento térmico requerido no es único, ya que se pueden emplear varias
condiciones de tiempo-temperatura para lograr el objetivo, pero se prefieren los
de altas temperaturas y cortos tiempos. Seguidos de un descenso brusco de
temperatura, para garantizar la eficiencia del procedimiento. La leche
pasteurizada no está estéril, de manera que es preciso enfriarla rápidamente
después de la pasteurización a fin de prevenir la multiplicación de las bacterias
sobrevivientes. (20), (33)
El tratamiento térmico de la leche se compone de dos partes separadas. Una es
la temperatura a la que la leche se calienta y la segunda el tiempo durante el
cual la leche se mantiene a dicha temperatura. A esta última fase se le conoce
como “tiempo de retención”. Este tiempo de retención es una parte esencial del
tratamiento calorífico eficaz, ya que no todos los microorganismos o enzimas
indeseables resultan instantáneamente destruidos a las temperaturas de
tratamiento. Algunas bacterias pueden simplemente sufrir un “choque térmico”
transitorio, del que después pueden recuperarse. Algunos técnicos queseros
prefieren olvidarse del tiempo de retención y basarse únicamente en la
temperatura para efectos de conservar las características de olor y sabor en los
quesos, otros prefieren, en cambio usar temperaturas más bajas que las de
pasteurización al objeto de retener algunas enzimas ya presentes en la leche
45
cruda (principalmente la lipasa), sin embargo la leche de quesería debe de
someterse a temperaturas superiores a la de pasteurización, entre 75ºC-80ºC.
(39)
Paralelamente a la destrucción de organismos patógenos, también se eliminan
los microorganismos más termosensibles, como los coliformes, y se inactiva la
fosfatasa alcalina, pero no así las esporas, las bacterias un poco más
termorresistentes, como las lácticas y tampoco la enzima lactoperoxidasa; es
decir, la leche pasteurizada todavía tiene una determinada cuenta microbiana,
principalmente de bacterias lácticas (no patógenas pero si fermentativas), y
requiere de refrigeración, ya que su vida de anaquel es tan sólo de algunos
días.
Con temperaturas superiores a los 25°C, mueren lo microorganismos
psicrófilos; arriba de los 42°C, mueren los mesófilos aerobios (coliformes); y
superiores a 60°C, mueren los termoresistentes (Salmonella). (20)
Deben tenerse los cuidados pertinentes para llevar a cabo un procesamiento
térmico adecuado.
En los intercambiadores de calor, placas de pasteurización, donde se establece
el equilibrio térmico de la leche pasteurizada caliente y la leche cruda fría, una
ruptura y picadura en las placas puede generar fosfatasa alcalina positiva, es
decir partículas de leche cruda en leche pasteurizada; el mal funcionamiento de
la válvula de diversificación, puede dejar pasar leche a temperatura más baja
que la de pasteurización. Excesiva velocidad de la bomba de tiempo, es decir
46
más flujo en el mismo tiempo y como resultado menos temperatura por libra de
leche, da como resultado leche cruda contaminada.
Las partículas de componentes lácteos, quemadas y adheridas a las superficies
de intercambio calorífico, así como los sedimentos, el aire mezclado y la
velocidad escasa de la corriente de los medios puede reducir
considerablemente el coeficiente de transmisión térmica, disminuyendo así el
efecto germicida. (28)
En cuanto a los pasteurizadores, aunque parezca paradójico, en ciertos casos
la pasteurización en vez de constituir un elemento destructor de los
microorganismos, contribuye a su contaminación, cuando en la maquina
pasteurizadora se anidan gérmenes resistentes a las altas temperaturas. (24)
La leche pasteurizada acondicionada o de alta calidad tiene un tiempo de
conservación entre el envasado y el consumo de 7 días como máximo. (20)
3.9.1 TIPOS DE PASTEURIZACION Y ESTERILIZACION
Existen los procesos térmicos de: Pasteurización lenta, rápida y esterilización a
ultra temperatura.
3.9.1.1 Pasteurización lenta o pasteurización baja, pasteurización
discontinua. Este método también es llamado LTLT (Low Temperature
Long Time)
Se define como un calentamiento de la leche cruda, con agitación continua, a
62.8-65.6ºC (145ºF) durante 30 minutos, con enfriamiento posterior.
47
Es un método lento y discontinuo, pero presenta la ventaja de no modificar las
propiedades de la leche, es ideal para procesar pequeños volúmenes de leche.
No se coagulan las albúminas ni las globulinas y el estado de los glóbulos
grasos permanece inalterado. (34), (41)
Este tipo de pasteurización responde al principio conservador del valor nutritivo
de la leche. El efecto germicida, sin embargo, es inferior al exigido cuando la
leche contiene inicialmente muchos microorganismos. (28)
La leche se calienta por medio de vapor o agua caliente que circula entre las
paredes del tanque de acero inoxidable, a 62.8ºC durante 30 minutos, usando
un agitador para hacer más homogéneo el tratamiento. Una vez calentada la
leche se enfría a una temperatura menor 10ºC (50ºF) por medio de una
corriente de agua fría a través de una camisa de doble fondo por donde pasa el
líquido enfriante que puede ser agua fría o salmuera lo cual hace descender la
temperatura de la leche, esta desciende gradualmente por lo que la leche
permanece un tiempo considerable a las temperaturas de desarrollo de algunos
microorganismos, lo cual provoca una aumento de la cuenta microbiana; o por
medio de una cortina de enfriamiento o enfriador de superficie lo cual no es muy
higiénico pues la leche no está aislada del medio ambiente. (38)
48
3.9.1.2. Pasteurización rápida, alta o “en destello” (3), también conocido
como alta temperatura en corto tiempo (HTST) High Temperature Short
Time.
Este sistema es contínuo, provisto de tres secciones de placas, la primera como
sección de regeneración en la cual la energía calorífica de la leche pasteurizada
se intercambia por energía frigorífica de la leche cruda, razón por la cual en
este sistema debe procesarse leche fría. La leche fría cruda recibe la energía
calorífica de la pasteurizada como precalentamiento, posteriormente pasa a la
sección dos, de calentamiento final y al tubo de sostenimiento, finalmente a la
sección de enfriamiento. Este proceso se basa en mayor temperatura en la
superficie de contacto, en menos tiempo: Entre 71-75ºC por un tiempo de 15
segundos u 88.3ºC por 1 segundo hasta 100ºC por 0.01 segundo. (26)
La pasteurización alta es preferida, por su elevado efecto germicida, cuando la
calidad higiénica de la leche cruda es mala. La mayoría de desnaturalizaciones
se producen por encima de 75ºC. La albúmina y la globulina se coagulan en el
20% aproximadamente. Se inactiva, además de las enzimas inactivadas a bajas
temperaturas; también la lactoperoxidasa. La pasteurización rápida produce la
coagulación de escasas cantidades de albúmina y globulina, pequeña
precipitación de sales cálcicas, índice bajo de grupos sulfhidrilo (-SH) por
liberación de CO2, las vitaminas apenas se modifican pero la fosfatasa alcalina
es inactivada con una reactivación posterior. (28)
49
El proceso es satisfactorio ya que modifica en menor grado el sabor y puede
llevarse a cabo como un flujo continuo permitiendo su adaptación a grandes
operaciones lácteas. Las propiedades de la leche se conservan mejor en la
leche que se somete a la pasteurización rápida. Por eso este proceso es el más
adecuado para la leche destinada a quesería. La pasteurización a estas
temperaturas no produce el sabor desagradable de leche cocida y afecta muy
poco su valor nutritivo, aunque puede ocurrir un pequeño grado de destrucción
vitamínica. (2), (9), (29), (37)
En el método de pasteurización continua HTST, la leche cruda pasa de los
tanques de almacenamiento a 4.5ºC (40ºF) al tanque regulador de donde sale a
través de una bomba hacia el cambiador de calor en donde se calienta por
regeneración o precalentamiento, a 58.3ºC (136.8ºF) luego a través de un filtro
que elimina las impurezas, después a los cambiadores de calor de la sección de
calentamiento, donde su temperatura se eleva a 72.7ºC (163 ºF) mediante agua
caliente. Posteriormente la leche circula por la sección de retención de
temperatura durante 15 segundos, luego pasa a una válvula de diversificación
donde, la leche que no alcanza los 72.7ºC, automáticamente es retornada al
tanque de alimentación o regulador para ser reprocesada. Pero si la leche
alcanza la temperatura mencionada pasa a la sección de regeneración o
precalentamiento donde es enfriada por la leche cruda hasta 17.9ºC (64.2ºF),
luego la leche circula hacia la sección de agua fría, también llamada:
50
Preenfriamiento o directamente a la sección de enfriamiento, en donde su
temperatura disminuye a valores inferiores a 10ºC (50ºF). (42)
3.9.1.3 Sistema Ultra-Temperaturas o Ultra Pasteurización (UHT):
La ultra pasteurización, designada también como ultra esterilización o
procedimiento de temperatura ultra alta (UHT). Posee un efecto germicida muy
elevado gracias a la acción de la alta temperatura durante un tiempo de
retención extremadamente breve. Sin embargo, las modificaciones físico-
químicas son equivalentes a la pasteurización rápida o alta. El sabor a cocido
que se origina desaparece a los pocos días. La ultra pasteurización se emplea
solamente para obtención de leche de consumo como bebida y leches
aromatizadas. (28)
Funciona con temperaturas sobre 212ºF = 100ºC, generalmente entre los 135ºC
y 150ºC por 2 a 4 segundos. La leche UHT o ultra pasteurizada presenta
inmediatamente después de su procesado un fuerte sabor azufrado, debido a la
desnaturalización de β-lactoglobulinas y formación de grupos sulfhidrilo (-SH),
que va disminuyendo con el almacenamiento.
Se realiza a través de equipos que calientan el producto a través de agua
caliente provistos de controles permanentes tales como termómetros,
termógrafos y un control de emergencia llamado válvula de diversificación, la
cual se cierra automáticamente cuando la temperatura está por bajo de la
adecuada, impidiendo el paso de producto que no haya sido correctamente
51
calentado; está regulado por una bomba de tiempo que mide el flujo de
producto en función del tiempo de contacto. (27)
La leche esterilizada, al contrario de la pasteurizada, puede conservarse a
temperatura ambiente durante varios meses, siempre que no se abra el
recipiente, sin agriarse, ni descomponerse a causa del desarrollo bacteriano.
Este tipo de pasteurización es considerada de larga vida porque le confiere al
producto un periodo de duración entre 4 a 6 meses a temperatura ambiente.
Una vez abierto el recipiente la leche puede contaminarse con bacterias del
exterior y perder sus propiedades de la misma forma que la leche pasteurizada.
(27), (34)
3.9.2 VENTAJAS EN LA PASTEURIZACION DE LECHE DESTINADA A
QUESERIA.
-Se destruyen todos los microorganismos patógenos que puedan trasmitir una
zoonosis e infecciones a través de la leche.
-Aumento del rendimiento a la desnaturalización de las proteínas solubles, hay
una mayor retención de grasa en la cuajada, además se presenta un ligero
aumento de nitrógeno, cuando la leche es sometida a elevadas temperaturas,
tanto lactoalbúminas como lactoglobulinas precipitan rápidamente
constituyendo una mayor fracción proteica. (14)
52
3.9.3. DESVENTAJAS EN LA PASTEURIZACION DE LECHE DESTINADA A
QUESERIA.
-Disminuye la aptitud para la coagulación del cuajo, es decir aumenta su tiempo
de formación, el calentamiento reduce la cualidad de la leche para coagular, la
cuajada obtenida es menos dura y el desuerado es difícil.
-El aroma y la textura del queso no es tan bueno como el del que se obtiene a
partir de leche cruda. La modificación en la textura se debe probablemente a las
globulinas que se ligan a la caseína y aumentan la retención de agua en la
cuajada.
-Incrementan los costos de producción, ya que el equipo de pasteurización es
de elevado costo. (14).
Cuadro Nº 1: Sistemas de Calentamiento más empleados.
Sistema Temperatura
en ºC Duración del
calentamiento Efecto germicida
en %
Pasteurización baja o lenta (LTLT)
62-65
30 min.
95
Pasteurización rápida o alta (HTST)
71-75 88.3-100
8-15 seg. 0.01-1 seg.
99.9
Ultra pasteurización (UHT)
135-150 2-8 seg. 99.9 a 100
53
3.10 ENFERMEDADES CAUSADAS POR INGESTA DE PRODUCTOS
LACTEOS NO PASTEURIZADOS
La leche tanto como sus derivados son alimentos de alto valor nutritivo,
esenciales en la dieta del ser humano; por consiguiente, muy sensibles a la
contaminación por microorganismos patógenos, que pueden sobrevivir a los
procesos de transformación de la leche y volver así a los productos derivados
un peligro a la salud de los consumidores.
Así, la leche puede ser no solo el vehículo principal de transmisión sino también
el medio de cultivo en el que a condiciones adecuadas de tiempo y temperatura
los microorganismos se multipliquen hasta llegar a ser los suficientes en
número que provoquen graves infecciones al ingresar al organismo humano.
Algunas enfermedades causadas por microorganismos patógenos presentes en
la leche o quesos son:
-Shigelosis (disentería bacilar), causado por: Shígella sonnei, Shígella
flexneri, Shígella disenteriae, Shígella boydii.
-Brucelosis causada por: Brucella melitensis, Brucella abortus.
-Difteria, causada por: Corynebacterium diphteriae.
-Fiebre tifoidea y paratifoidea, causadas por: Salmonella thyphi y Salmonella
paratyphi.
-Infecciones por Estreptococos β-hemolíticos, causadas por: Streptococcus
pyogenes.
-Tuberculosis, causada por: Mycobacterium tuberculosis.
54
-Yersiniosis, causada por: Yersinia pseudotuberculosis, Yersinia
enterocolitica.
-Listeriosis, causada por: Listeria monocytogenes. (2), (14), (36), (40)
El tratamiento normal de pasteurización HTST es suficiente para la inactivación
de la Listeria monocytogenes presente a niveles normales en la leche.
Algunos quesos blandos, y la leche no pasteurizada (así como los productos
derivados de ésta) así como también algunas comidas listas para consumir
(como los fiambres y embutidos envasados) pueden provocar una forma de
infección denominada: Listeriosis. Esta infección suele presentarse como una
enfermedad con síntomas parecidos a los de la gripe, como fiebre, dolores
musculares, escalofríos y, a veces, náuseas o diarrea. Sin embargo, puede
complicarse con una meningitis (infección de las membranas que recubren el
cerebro, con síntomas como dolores de cabeza fuertes y rigidez del cuello)
potencialmente letal e infección sanguínea. Su diagnóstico y tratamiento
temprano puede ayudar a prevenir infecciones fetales que pueden provocar
aborto espontáneo y el nacimiento sin vida del bebé. La listeriosis se vuelve un
riesgo de infección uterina durante el periodo de gestación pudiendo producir:
aborto espontáneo o parto prematuro, nacimiento del niño sin vida (mortinato) o
que el niño enferme gravemente luego de nacer (meningitis) e incluso su
muerte. (31)
Estas complicaciones pueden ocurrir de 2-14 días después de la infección
materna. Por lo cual este grupo de riesgo (Las mujeres embarazadas) deben
55
protegerse a sí mismas y a sus bebés de la listeriosis siguiendo las
recomendaciones de la FDA:
-Evitar ingerir quesos blandos como el Camembert, Roquefort, queso azul,
queso blanco, queso fresco o panela a menos que estén hechos con leche
pasteurizada. Los quesos duros, los quesos procesados, el queso crema y el
“queso cottage” no presentan riesgos.
La listeria se propaga a la temperatura del refrigerador. No consumir leche que
no esté pasteurizada ni alimentos derivados de esta leche. (48)
56
3.11 FOSFATASA ALCALINA
3.11.1 Generalidades
La leche cruda contiene varias enzimas. Una de estas, que desempeña un
papel importante en el trabajo a favor de la salubridad pública, es la fosfatasa
alcalina. Esta enzima tiene un grado de susceptibilidad al calor que equivale
casi exactamente a las condiciones de tiempo y temperatura empleadas en la
pasteurización correcta. Por consiguiente si se descubre en una muestra de
leche pasteurizada que la actividad de la fosfatasa alcalina está presente, esto
comprueba que su procesamiento ha sido inadecuado o que la enzima ha sido
reactivada. (34)
En la leche se distinguen dos tipos de fosfatasa, aunque ambas son
fosfomonoestarasas; la fosfatasa ácida que se localiza en el lactosuero y la
fosfatasa alcalina que se encuentra en la membrana del glóbulo graso. Son
hidrolasas que catalizan la hidrólisis de los ésteres del ácido fosfórico. La
fosfatasa ácida existe en la leche en muy poca proporción con respecto a la
alcalina (2.5% a 7.5%). Las hidrolasas son enzimas que catalizan reacciones en
las que el agua participa en la ruptura de enlaces covalentes de un sustrato con
la adición concomitante de elementos del agua a los elementos de ese enlace.
El nombre sistemático se forma como “sustrato hidrolasa”. El agua no se
escribe como sustrato aunque lo sea, debido a que su concentración no cambia
significativamente durante la reacción. (32)
57
Figura Nº. 1: Sub unidad polipeptídica de la enzima fosfatasa alcalina. (56)
Figura Nº. 2: Molécula de Fosfatasa Alcalina totalmente funcional.
Homomultímera, Constituida por dos cadenas polipeptídicas idénticas; cada una
con un sitio activo capaz de hidrolizar el fosfato. (56)
La fosfatasa alcalina necesita cuatro iones Zn2+ por molécula de enzima. Dos
de los cationes Zn2+ tienen una función estructural. Contribuyen a mantener las
dos subunidades del enzima juntas (manteniendo la estructura cuaternaria).Los
otros dos Zn2+ están localizados en los dos centros activos del enzima; como
58
cofactores in vivo, donde tiene un papel de grupo “super ácido” que activa el
grupo OH implicado en la hidrólisis del sustrato. (27)
La fosfatasa alcalina es un producto metabólico de las células mamarias, el
nivel de ésta en la leche varía ampliamente dependiendo de la temporada, edad
de la vaca, etapa de lactancia y producción de leche. El contenido de fosfatasa
alcalina en la leche aumenta al final de la lactación; también se detecta una
mayor actividad al principio del invierno.
Es una metalo-glico-proteína que contiene zinc y que exige dos tipos de
metales para que se produzca su actividad máxima:
El Zinc, el cual es esencial (pero se puede reemplazar artificialmente con el
cobalto) y El Magnesio, que es un ion estimulante. El magnesio sólo, no puede
regenerar la actividad a partir del apoenzima desmetalizado, pues tiene acceso
al lugar del zinc. Por el contrario, el zinc se puede fijar sobre los sitios del
magnesio pero provocando una inhibición.
La fosfatasa alcalina está ligada a la materia grasa y desaparece en gran parte
en la leche completamente desnatada, concentrándose en la nata. Se
encuentra asociada a un complejo lipoprotéico de la membrana del glóbulo de
grasa. Se la encuentra en el suero de mantequilla tras el batido. Constituye
desde luego una parte importante de la capa absorbida sobre los glóbulos
grasos a nivel de la membrana externa.
Se caracteriza por la ausencia de especificidad de sustrato. Las pruebas
pueden aplicarse a la mantequilla y a los quesos utilizando un derivado nitrado
59
como el para-nitrofenilfosfato, para los quesos debe considerarse que algunos
microorganismos, presentes normalmente en el curso de la maduración,
segregan fosfatos, en especial las levaduras y los mohos, por lo tanto la prueba
al principio podría ser negativa y luego positiva, sobre todo en los quesos
pequeños, por lo cual siempre es necesario verificar si la fosfatasa no es de
origen bacteriano.
El peso molecular es próximo a 170,000 A, es una glicoproteína que contiene
ácido siálico, es sensible al calor pues se inactiva a 62ºC durante 15 a 20
minutos o a 72ºC durante 15 a 20 segundos. Los iones Mg2+, Mn2+ y Ca2+ la
activan y los iones Zn2+, el yodo y la cisteína, la inhiben. (14), (45).
La fosfatasa alcalina u ortofosfórico monoéster fosfohidrolasa (nombre
sistemático), es una Estearasa que cataliza la hidrólisis de fosfatos orgánicos.
La fosfatasa alcalina hidroliza monoésteres de ácido fosfórico a pH alcalino,
siendo el pH óptimo de acción entre 9.8 y 9.9 (para los sustratos de bajo peso
molecular) su pH óptimo depende de la naturaleza del sustrato. Con sustancias
de bajo peso molecular el pH esta comprendido entre 9 y 10, por ejemplo con la
fosfoserina; pero en la desfosforilación de la caseína ésta es más rápida a pH
cercano a 7.0 (44).
Ya que se concentra principalmente en el glóbulo graso de la leche puede
quedar incluida en el queso producido a partir de leche cruda, no así en los
quesos elaborados con leche pasteurizada ya que es inactivada, aunque esta
60
se reactiva con el tiempo. Sin embargo, el pH de la mayoría de las variedades
de queso limita su acción como hidrolasa. (24), (33).
El indicador más usado en la leche, queso y otros productos lácteos es la
fosfatasa alcalina, la cual es de las enzimas más estables a los tratamientos
térmicos no muy severos, que se encuentran en la leche. Sin embargo la
prueba de la fosfatasa alcalina no es aplicable a todo tipo de pasteurización
debido al fenómeno de reactivación, que se caracteriza por la reaparición de la
actividad de la enzima. (31) (38).
Puede conocerse la intensidad de la pasteurización mediante la determinación
de la actividad fosfatasa alcalina en el caso de pasteurización, y la
lactoperoxidasa para los tratamientos más severos como el proceso UHT. (42)
La fosfatasa ácida, por su parte:
-Está asociada a la membrana del glóbulo de grasa.
-Es termo estable (es una de las enzimas más termorresistentes de la leche); se
necesita un calentamiento a 88ºC por 30 minutos o a 96º C por 5 minutos para
inactivarla.
-Tiene un pH óptimo de 4.74. Es una proteína muy básica que es muy activa a
los pH intestinales bajos.
-Muestra una gran actividad sobre la caseína, a la que desfosforila, haciéndola
más reactiva y oxidable y aumenta su punto isoeléctrico lo que es importante en
los procesos de fabricación basados en la coagulación de la caseína. (30)
61
-La fosfatasa ácida hidroliza monoésteres de ácido fosfórico a pH ácido,
mostrando su mayor actividad en torno a pH 5.
-La fosfatasa ácida es muy estable en el intervalo de temperatura de 65 - 80ºC,
manteniendo por completo la actividad enzimática tras un tratamiento de
pasteurización convencional.
La fosfatasa ácida es más exactamente una fosfoproteína fosfatasa. Puede
hidrolizar la serina-fosfórica en la caseína cuando el pH es bajo, con su óptima
actividad a pH 4.5, pero también puede hidrolizar el fenilfosfato, al igual que la
fosfatasa alcalina. No es una metalo proteína y se parece mucho a la
fosfoproteína fosfatasa de la nata. Son proteínas básicas, activadas
fuertemente por el acido ascórbico.
La fosfatasa ácida se encuentra a la vez en la leche desnatada y en la nata. Es
una de las enzimas más termorresistentes de la leche, conserva su actividad
hasta los 95º C. (44)
3.11.2 Características de la Fosfatasa alcalina
La fosfatasa alcalina posee las siguientes propiedades características:
-La capacidad para hidrolizar sustratos de fosfato orgánico en alcohol o fenol (si
se trata de un fenilfosfato) y ácido fosfórico (esta propiedad se utiliza para su
cuantificación).
-Es termolábil; por su termosensibilidad particular se utiliza como un indicador
de tratamiento térmico ya que con la pasteurización baja se inactiva.
62
-Su pH óptimo es de 9.6 (de ahí su nombre de alcalina), y los pH altos
promueven su actividad.
-Los iones Mg²+ y Mn²+ la activan; por el contrario, el Zn²+, el I2 y el Be²+ la
inactivan, y el ácido glutámico, la lisina, los carbonatos y las sales de amonio la
inactivan en un grado variable. Sin embargo, es insensible al fluoruro de sodio
(NaF).
-De un 30 a un 40% se encuentra localizada en la nata, absorbida por los
glóbulos grasos, y el resto se encuentra en las lipoproteínas.
-Una de las características de esta fosfatasa es su tendencia a reactivarse. El
procesado a temperaturas altas o ultra altas y el almacenamiento por largos
períodos a veces a temperatura ambiente favorecen la supervivencia de la
actividad enzimática o reactivación. (32)
3.11.3 Mecanismos de reactivación de la Fosfatasa alcalina
El mecanismo por el cual la fosfatasa alcalina recupera su actividad catalítica
puede explicarse por una de las siguientes razones:
a) Requiere de grupos sulfhídrilos (-SH) para su reactivación; cuanta más alta
sea la temperatura del tratamiento, habrá una mayor cantidad de sulfhídrilos
disponibles de las proteínas de la leche, principalmente de las
inmunoglobulinas, con la consecuencia de que la enzima se regenera más
fácilmente durante el almacenamiento.
b) Las estructuras secundarias y terciarias de la enzima fosfatasa alcalina no
son muy complejas y pueden recuperarse después de la pasteurización.
63
c) Puede disociarse de su cofactor, durante el tratamiento térmico y
posteriormente volverse a unir al metal para recuperar su actividad. La
reactivación de la fosfatasa es más fácil en productos con alto contenido de
grasa, como en las cremas procesadas por métodos de alta temperatura-
corto tiempo, y además requiere de tratamientos que produzcan grupos
sulfhidrilo (-SH) y de almacenamiento a temperaturas mayores de 5ºC.
Existen métodos que permiten distinguir entre la fosfatasa residual y la
reactivada, eliminando así la incertidumbre de una mala pasteurización. (1)
Reactivación: Cuando un determinado producto después de pasteurizado da
una reacción de fosfatasa alcalina negativa puede presentar, después de un
cierto tiempo de almacenamiento, una reacción positiva (sobre todo la
mantequilla). Se dice entonces que ha ocurrido una reactivación de la enzima.
Esta reactivación se acelera cuando la leche se mantiene antes de la
pasteurización en anaerobiosis, en condiciones reductoras con los tratamientos
térmicos UHT o HTST y en presencia de Ca²+ y Mg²+; por el contrario, esta
reacción se retarda con un enfriamiento instantáneo y con temperaturas muy
bajas de almacenamiento 2ºC; puede evitarse añadiendo cobalto, cobre o
níquel, así como con la ausencia de magnesio y de calcio. Por lo tanto, debe
tenerse en cuenta que la prueba de la fosfatasa alcalina puede resultar positiva
de nuevo (reactivación enzimática) en leche tratada térmicamente a través de
dichos procesos y posteriormente a su almacenamiento. Debido a que la mayor
parte de la enzima está en la membrana de los glóbulos grasos, el test de la
64
fosfatasa alcalina residual es menos sensible cuando se realiza sobre leche
desnatada (5), (42).
La prueba de la fosfatasa alcalina no resulta útil como indicador del tratamiento
térmico en procesos de pasteurización a temperaturas altas, que cada vez se
aplican con más frecuencia y es necesario considerar otras enzimas. La
lactoperoxidasa ha sido utilizada para la leche tratada a 78ºC durante 15
segundos como indicador en el comercio internacional. (38)
La prueba de la fosfatasa alcalina ha sido usada satisfactoriamente para
detectar pasteurización inadecuada en leche y productos lácteos procesados
por métodos convencionales a 62.8ºC por 30 minutos, o 71.7ºC por 15
segundos. Los productos sometidos a tratamientos térmicos de mayor
calentamiento que las temperaturas convencionales (71.7ºC) ya sea por
tratamiento a Alta temperatura Corto Tiempo (HTST), Ultra pasteurización (UP),
(UHT) (ver Cuadro Nº 1), pueden dar un resultado negativo a la prueba de
Fosfatasa alcalina residual inmediatamente después del calentamiento y el
enfriamiento, y cuando se refrigeran a (4.4ºC o menores). Sin embargo, se
puede observar una prueba positiva en productos no almacenados
adecuadamente, particularmente aquellos mantenidos a 10ºC o más por
prolongados periodos. El desarrollo de la restauración de la actividad de la
fosfatasa alcalina ha sido definido como: Reactivación.
La ausencia de una alta población bacteriana en estos productos elimina la
posibilidad de fosfatasa bacteriana.
65
La reactivación puede ocurrir en productos procesados a temperaturas
superiores a los 100ºC. La reactivación es mayor en productos procesados a
104.4º, incubados a 34ºC, y ajustados a pH 6.5. Si se adicionan sales de
magnesio a los productos procesados con tratamientos HTST o UP después del
tratamiento calorífico pero antes de la incubación o almacenamiento, ellas
catalizaran la reacción. Los productos con un alto contenido de grasa muestran
un incremento de reactivación debido al alto contenido inicial de fosfatasa, pero
un incremento en el tiempo de retención durante el calentamiento reduce la
reactivación. La homogenización de los productos antes del proceso de
calentamiento disminuye la reactivación. La reactivación de la fosfatasa alcalina
es menor o no se presenta en productos con una acidez titulable de 0.40 a
0.45% (calculado como ácido láctico) o mayor.
La leche de vaca presenta variaciones en la concentración de fosfatasa alcalina
y en su comportamiento de reactivación según la estación del año.
3.11.4 Actividad in vivo de la enzima Fosfatasa alcalina
El papel de la fosfatasa alcalina en la leche dentro de la vaca, es ayudar a
reciclar el fosfato, un compuesto esencial. La fosfatasa alcalina está diseñada
idealmente para esto, ya que solo es específica para el grupo ortofosfato y no
importa cual sea el otro grupo. (1), (49).
Ester Fosfórico + H2O Fenol + H3PO4.
66
OH
O
OH
O POH P OH
OH
OOH
Fosfomonoestearasa
+
Ester fosfórico Acido Fosfórico
+ H2O
Fig. Nº 3: Reacción de hidrólisis producida por la enzima Fosfatasa Alcalina
sobre los esteres fosfóricos. (18)
3.12 LACTOPEROXIDASA
3.12.1 Generalidades
La lactoperoxidasa fue la primera enzima que se descubrió en la leche. Es la
enzima más abundante en la leche, después de la Xantina Oxidasa. Se
encuentra en la leche de vaca en concentraciones aproximadas de 0.07 g/litro,
lo que representa el 0.2% del total de las proteínas. Es una enzima que
contiene un átomo de hierro por molécula, su pH óptimo es de 6.8. Resiste
relativamente bien el calentamiento, para inactivarla es necesario calentar la
leche por 30 segundos a 80 ºC- 85 ºC. (31)
La lactoperoxidasa presenta como grupo prostético un grupo Hem, cuyo átomo
central de hierro forma complejos con diferentes compuestos, como los
cianuros y la hidroxilamina, inhibiéndose su actividad enzimática.
67
Fig. Nº 4. Sub unidad de una molécula de Lactoperoxidasa. (53)
La lactoperoxidasa es una proteína hémica que contiene un átomo de hierro
por molécula. Parece ser diferente de la peroxidasa de los leucocitos. Resiste
relativamente bien el calentamiento, pues es preciso mantener los 70ºC durante
15 minutos o los 80 ºC durante 30 segundos, para conseguir su destrucción. Se
encuentra asociada con las proteínas del suero de la leche.
La concentración de lactoperoxidasa es baja en el calostro, aumenta hasta
alcanzar el máximo a los cinco días después del parto, disminuyendo luego
para permanecer, más o menos constante por todo el periodo de lactación.
La lactoperoxidasa pertenece al grupo de las oxidorreductasas y como tal
cataliza las reacciones de oxidorreducción o de transferencia de electrones de
un sitio de una molécula a otra.
68
Las reacciones oxidativas consisten generalmente en dos procesos sucesivos
pero en presencia de iones halógenos y tiocianatos, los cuales reaccionan con
el donador en una fase única, con transferencia de dos electrones, para obtener
el donador oxidado y regenerar la enzima nativa.
3.12.2 Características de la Lactoperoxidasa
La peroxidasa está presente en la leche en cantidades variables y transfiere el
oxigeno de los peróxidos. La enzima es termo resistente hasta 78ºC y por ello
se ha usado su ensayo, para comprobar si la leche se ha calentado a
temperaturas más altas de las empleadas en la pasteurización normal. No
obstante, algunas leches carecen, o contienen sólo cantidades muy pequeñas,
de lactoperoxidasa. (35)
La lactoperoxidasa es una oxidorreductasa; transfiere oxígeno activo (atómico)
de los peróxidos como el agua oxigenada, y es capaz de catalizar la oxidación
de diversas sustancias con estructuras aromáticas: aminas aromáticas, fenoles,
vitamina C, etc. El oxigeno atómico, es aceptado por una de estas sustancias
presente en el medio. Por este motivo, puede ponerse de manifiesto en la leche
añadiendo un poco de agua oxigenada y un cuerpo aceptador de oxigeno, que
pueda actuar como indicador. Estas reacciones de oxidorreducción se han
utilizado mucho para controlar la pasteurización alta de la leche; la enzima se
destruye cuando la operación se ha realizado con eficacia. (44)
La enzima puede también catalizar la oxidación del tiocianato (NCS-) por el
H2O2 con la formación de un compuesto que inhibe el crecimiento de la mayoría
69
de las bacterias en la leche (por lo que su actividad biológica es la de ser una
enzima antibiótica). Su actividad inhibidora de algunas bacterias lácticas la que
la distingue de las peroxidasas vegetales. Cuando las propias bacterias
producen H2O2, como es el caso de casi todas las bacterias lácticas, resultan
autoinhibidas. Su actividad antibacteriana es debido a la formación de
oxitiocianato (hipotiocianato) (OSCN-), que es un potente antimicrobiano. La
leche contiene entre 0.017 y 0.25 mM de SCN-. El sistema Lactoperoxidasa es
activo contra gran variedad de bacterias Gram Positivas y Gram negativas
incluyendo patógenos alimentarios, como Ps. flourescens y Esch. Coli,
Campylobacter, Escherichia, Listeria, Salmonella. Por el contrario, se
muestra inactiva frente a las esporas de géneros de Bacillus. Las aplicaciones
comerciales de esta enzima se basan en su potente actividad antimicrobiana
para la conservación de distintos alimentos. (44), (45), (42)
La peroxidasa reduce los compuestos oxigenados, sustratos (HA), como se
presenta en la reacción:
H2O2 + 2HA 2H2O + 2A
Como la mayoría de las enzimas, la peroxidasa puede ser inactivada por el
calor, siendo una de las que precisan mayor temperatura y más tiempo para su
inactivación. Posee también, la propiedad de regeneración enzimática. Este
fenómeno consiste en que al inactivarla por medio del calor recupera
parcialmente su actividad después de un cierto tiempo. Esto ha sido explicado,
70
aduciendo que la fracción proteica de la enzima sufre una desnaturalización
sólo parcial, con pérdida de su estructura terciaria, si el calor se aplica un
tiempo muy corto, produciéndose luego una reversión de la proteína a su
estado normal por recombinación de sus grupos hidrógenos o sulfhídrilos(-SH).
La reactivación de la lactoperoxidasa también se asocia a la adición de cisteina
y tiosulfato de sodio y en algunos casos la lactoperoxidasa es regenerada
después de periodos largos de conservación de la leche. El proceso de
reactivación también podría consistir en un proceso químico-coloidal, en el cual
la caseína puede actuar como un coloide protector, siempre que el daño térmico
no sea muy elevado. (47)
Se ha demostrado en el laboratorio que esta actividad enzimática puede
detenerse totalmente, si el calentamiento es suficientemente largo, de manera
que más de 30 segundos la regeneración es muy débil generalmente. A la
temperatura de pasteurización, la lactoperoxidasa se inactiva, pero se regenera;
en cambio, si la leche es sobrecalentada (a más de 80-85ºC) la peroxidasa
pierde su actividad en forma definitiva. (47)
3.12.3 Mecanismos de Inactivación de la Lactoperoxidasa:
La inactivación de la enzima a temperaturas de 87ºC, se debe a la presencia de
grupos –SH, generados durante el tratamiento calórico. (47)
La inactivación de lactoperoxidasa es mayor en leche no muy fresca y sin
embargo la acidez de la leche no es causante de que la inactivación sea más
intensa.
71
3.12.4 Actividad in vivo de la enzima Lactoperoxidasa
La enzima Lactoperoxidasa prácticamente como todas las peroxidasas son
hemoproteínas (excepción notable es la glutatión peroxidasa, que es una
selenoproteína) y tienen como substrato común el H2O2 o peróxido de
hidrógeno. La gran afinidad por este sustrato hace que se pueda unir al hierro
del grupo hemo por los dos planos del centro activo, el superior y el inferior,
dando lugar a una inhibición por exceso de sustrato ya que cuando ambas
posiciones están ocupadas por el peróxido de hidrógeno no es posible la unión
del otro sustrato.
Las peroxidasas son un tipo de enzimas muy extendidas en toda la escala
filogenética. Catalizan reacciones bisustrato de carácter redox, utilizando un
peróxido como oxidante (a lo que deben su nombre) y un segundo sustrato de
características reductoras que es oxidado por el peróxido. En animales, existen
peroxidasas con una función predominantemente defensiva en la saliva, la
leche o los leucocitos, donde se aprovecha el carácter oxidante con fines
germicidas y bactericidas el peróxido que se genera de forma endógena
mediante otras reacciones (glucosa oxidasa, amino ácido oxidasa etc.). No
todas las peroxidasas son defensivas, y por ejemplo una peroxidasa es también
la responsable de la síntesis de las hormonas tiroideas, oxidando en este caso
el yoduro a yodo para que éste se adicione a algunos de los anillos fenólicos de
los residuos de tirosina de la tiroglobulina. Otras peroxidasas, como la glutatión
72
peroxidasa, están ampliamente distribuidas en diversos tejidos con fines
diferentes, pero relacionados con una función antioxidante.
3.13 ESPECTROSCOPIA VISIBLE.
La espectroscopia visible se basa en la absorción y emisión de radiación, de los
electrones en los átomos o moléculas. En el proceso de absorción, la radiación
lleva a los electrones de un átomo o una molécula de un estado fundamental o
basal a un estado de excitación de mayor energía, el proceso de emisión se
lleva a cabo cuando esos electrones excitados regresan a niveles de energía
inferiores y con ello emiten energía radiante proporcional a la frecuencia de la
longitud de onda absorbida.
La espectrofotometría consiste en la medida de la absorción que experimentan
las sustancias químicas, de una radiación electromagnética de longitudes de
onda situadas en una banda definida y estrecha, en la región visible (380 nm-
780 nm). La espectrofotometría en la zona visible (que antes solía llamarse
colorimetría) es muy adecuada para las valoraciones cuantitativas y en el caso
de muchas sustancias, constituye un medio útil adicional de identificación.
La cantidad absorbida por la solución de la muestra se relaciona con la
concentración de sustancias que se desea analizar. Mientras más concentrada
sea la solución de la sustancia analizada, mayor cantidad de luz es absorbida y
se observa un color de tono más intenso, con esta finalidad se adiciona un
reactivo a la muestra o a la sustancia puesta a prueba, para producir un color el
73
cual al ser comparado con la preparación estándar que ha realizado
simultáneamente y que contiene aproximadamente una cantidad igual del
estándar de referencia. (45).
En la región visible las longitudes de onda pueden ser apreciadas por el ojo, es
decir la luz aparece en forma de color. (16), (18)
La medición de la luz en la región visible (colorimetría) puede realizarse
espectrofotométricamente con la ayuda de un colorímetro fotoeléctrico, un
espectrofotómetro o con menor precisión por comparación visual con
estándares de color.
74
3.14 FUNDAMENTOS DE LOS MÉTODOS INVESTIGADOS
3.14.1 METODOS PARA FOSFATASA ALCALINA RESIDUAL.
3.14.1.1 Método de Scharer.
Este ensayo se fundamenta en la acción de la enzima fosfatasa alcalina sobre
el sustrato fenilfosfato disódico, con liberación de fenol y fosfato. La cantidad de
fenol liberada a partir del sustrato es proporcional a la actividad de la enzima. El
fenol es medido colorimétricamente después de su reacción con la 2,6
dicloroquinona clorimida (CQC) para formar: Indofenol, el cual es de color azul.
El color se mide en unidades Scharer (una unidad es equivalente a 1
microgramo de fenol por mL)
P OO
ONa
ONa
OH
OH NClO
Cl
Cl
OHNO
Cl
Cl
Fosfatasa alcalina
37ºC-40ºC/ 2min+ Na2HP4O3
Fenilfosfato disódicoFenol Fosfato disódico
+40ºC
5 min+ HCl
Fenol 2,6 dicloroquinonaclorimida
Indofenol (AZUL)
Fig.Nº 5: Reacción de Scharer para Fosfatasa alcalina.
3.14.1.2 Método de Cornell.
Este método presenta el mismo fundamento que el método rápido de Scharer
(ver Fig. Nº 5) con la única variante de algunos reactivos.
75
3.14.1.3 Método de Sanders y Sager.
Este método se basa en la acción de la enzima Fosfatasa alcalina sobre el
sustrato fenil fosfato disódico con liberación del fenol y el fosfato. La cantidad de
fenol liberado se determina con la adición de 2,6 dibromoquinona clorimida
(BQC) que produce un color azul en presencia de fenol. Siendo este último
reactivo y las sustancias tamponadoras variantes del método de Scharer.
P OO
ONa
ONa
OH
OH NClO
Br
Br
OH N O
Br
Br
Fosfatasa alcalina
37ºC+ Na2HP4O3
Fenol Fosfato disódico
+40ºC
+ HCl
Fenol 2,6 dibromoquinonaclorimida (BQC)
Indofenol (AZUL)
fenilfosfato disodico
OH-
Fig. Nº 6: Reacción de Sanders y Sager para Fosfatasa alcalina.
3.14.1.4 Método de Rutgers.
En 1970 Kleyn y Yen, recomendaron el uso de monofosfato de fenolftaleina
como sustrato para determinar la presencia de fosfatasa alcalina en leche. (23)
Esta prueba es satisfactoria como una prueba indagatoria para estimar la
actividad de fosfatasa alcalina en leches descremadas, leche y crema ligera. El
fundamento de la prueba es que la fosfatasa alcalina puede hidrolizar el
76
monofosfato de fenolftaleina; la fenolftaleina es liberada y puede ser detectada
por la adición de álcali. El color es comparado visualmente con un estándar
preparado de la misma leche.
La enzima fosfatasa alcalina presente en la leche cruda libera fenolftaleina
desde un sustrato de monofosfato de fenolftaleina cuando la prueba se lleva a
cabo a la temperatura de 37ºC y pH 10.15. La cantidad de fenolftaleina liberada
del sustrato es proporcional a la actividad de la enzima. La fenolftaleina es
detectada por adición de hidróxido de sodio [1N].
La prueba de la fosfatasa alcalina es aplicada a productos lácteos para
determinar si la pasteurización se ha realizado adecuadamente y también para
dictar la posible adición de leche cruda a la leche pasteurizada. La prueba es
sencilla y es muy sensitiva a exposiciones menores que las establecidas para la
pasteurización. El método puede emplearse juntamente con el método para
diferenciar entre fosfatasa alcalina residual y fosfatasa alcalina reactivada. (13)
El método de Rutgers sirve para la determinación de fosfatasa alcalina residual
según (AOAC). (29)
O
OH
O
O
P
OHO
O
HO
OH
OH
O
Fosfatasa alcalina 37ºC/30 min+NaOH
+ H2PO4
monofosfato de fenolftaleina fenolftaleina
Fig. Nº 7: Reacción de Rutgers para Fosfatasa alcalina.
77
3.14.1.5 Método de Aschaffenburg y Mullen.
Esta prueba se basa en la actividad de la fosfatasa alcalina presente en la leche
cruda, sobre el sustrato p-nitrofenilfosfato disódico, en condiciones alcalinas
liberando p-nitofenol como producto, evidenciándose por su color amarillo.
PO
ONO
2OH NO
2Na
OONa
Fosfatasa alcalina
37ºC/ 2 horaspH 10.2
+ Na2HPO4
p-nitrofenol fosfato disódicop-nitrofenilfosfato disódico
Fig. Nº 8: Reacción de Aschaffenburg y Mullen.
3.14.1.6 Prueba para Fosfatasa con 4-Aminoantipirina
La determinación de la actividad fosfatasa alcalina se basa en la hidrólisis
enzimática, en medio alcalino, del fenilfosfato disódico a fenol y posterior
determinación colorimétrica del fenol liberado con 4-aminoantipirina y
ferrocianuro como agente oxidante. Este puede ser medido a 490 nm.
78
P OO
ONa
ONa
OH
OH
NH
NNCH
3
CH3
O
OCH
3NH2
NN CH
3O
Fosfatasa alcalina
37ºC-40ºC/ 2min+ Na2HP4O3
Fenilfosfato disódicoFenol Fosfato disódico
+
Fenol
[Fe(CN)6]3 -
OH-
4-Aminoantipirina
color marrón- rojizo
Fig. Nº 9: Reacción de Fosfatasa alcalina con 4-aminoantipirina.
3.14.1.7 Método Fluorimétrico
La actividad de la fosfatasa alcalina de la muestra se mide por un ensayo
fluorimétrico cinético directo, continuo. Un sustrato de ester aromático, no
fluorescente, monofosfórico, 2’-[2-benzotiazolil]-6´-fosfato hidroxibenzotiazole,
en presencia de cualquier fosfatasa alcalina proveniente de la muestra, sufre
una hidrólisis de su radical fosfato, produciendo un resultado de alta
fluorescencia.
HS
NO
O
P
OHOS
N S
N OHS
N
Fosfatasa alcalina OH-
+ H2PO4
(2'-[2-Benzotiazolil]-6'- fosfato hidroxibenzotiazol) (2'-[2-Benzotiazolil]-6'- hidroxibenzotiazol) COLOR AMARILLO
Fig. Nº 10: Reacción de Método Fluorimétrico para
determinar fosfatasa alcalina.
79
3.14.1.8 METODO PARA FOSFATASA ALCALINA REACTIVADA.
Método para diferenciar Fosfatasa alcalina residual de Fosfatasa alcalina
reactivada.
La diferencia entre fosfatasa alcalina reactivada y fosfatasa alcalina residual se
basa en el hecho que la enzima puede ser residual en aquellos productos como
la leche cruda o productos subpasteurizados y reactivada cuando la leche
pasteurizada es tratada a temperaturas mayores que una pasteurización
convencional.
Al almacenar una leche para el análisis con sales de magnesio a 34ºC, esta
presentará un incremento de 4 a 10 veces más su actividad fosfatasa en
comparación con leche almacenada sin adicionar sales de magnesio. Para
diferenciar entre fosfatasa residual y la reactivada, se debe comparar los
resultados obtenidos al ensayar una dilución 1+5 de leche o producto lácteo
conteniendo acetato de magnesio con los resultados del ensayo de porciones
no diluidas de la misma muestra sin adicionar Mg(C2H3O2)2 después de
almacenar a 34 ºC por una hora.
Esta prueba es para descartar la presencia de fosfatasa alcalina debida a una
reactivación o residual a un inefectivo tratamiento térmico, por lo que luego de
este tratamiento es necesario llevar a cabo nuevamente la prueba de fosfatasa
alcalina ya sea por el método de Rutgers, Cornell o cualquier otro método
espectrofotométrico que pueda ser empleado.
80
3.14.2 METODOS PARA DETERMINAR LACTOPEROXIDASA
La lactoperoxidasa es una enzima que cataliza la oxidación de ciertos
compuestos dadores de hidrógeno, como fenoles (guayacol, pirogalol) y aminas
aromáticas (o-fenilendiamina) por medio de peróxidos (H2O2).
3.14.2.1 Reacción de Dupoy
El substrato oxidable más usado es el guayacol, que es oxidado a un complejo
coloreado de tetraguayacol en presencia de lactoperoxidasa. Como fuente de
peroxidasa la leche fresca de vaca (lactoperoxidasa, LPO) y como substrato
oxidable, el guayacol un metoxi-fenol cuyo producto de oxidación,
tetraguayacol, es rojo salmón (anaranjado) y con suficiente estabilidad como
para poder visualizarlo rápidamente. La estructura del tetraguayacol es
compleja, y otras especies coloreadas derivadas del guayacol pueden también
formarse en la reacción por mecanismos complejos donde participan radicales
libres. La estequiometría de la reacción es:
OCH
3
OH
OCH
3
O
O
O
O
O
O
OCH
3
CH3
CH3
+4
Guayacol
4 H2O2
Peróxido de hidrógeno
Lactoperoxidasa
Tetraguayacol
+ 8H2O
Fig. Nº 11: Reacción de Dupoy para Lactoperoxidasa.
81
3.14.2.2 Método de Storch.
Con este método basado también en la oxidorreducción del sustrato
parafenilendiamina por acción de la enzima Lactoperoxidasa en presencia del
peroxido de hidrogeno produciendo una coloración azul oscuro como indicador
de la oxidorreducción.
NH2
NH2
NH2
NH
NH
NH2H2O2
Lactoperoxidasa
H2SO4
parafenilendiamina
coloración azul
+ + 2H2O2
difenilhidrazina
Fig. Nº 12: Reacción de Storch para Lactoperoxidasa.
3.14.2.3 Método de Rothenfusser
Los métodos para determinar la concentración de lactoperoxidasa en la leche,
se basan en la propiedad oxidante de la enzima en presencia de peróxido de
hidrógeno; la reacción se manifiesta colorimétricamente con la oxidación de los
donadores de electrones: el guayacol y la para-fenilendiamina, en una mezcla
de ellos, lo que constituye el reactivo de Rothenffuser.
3.14.2.4 Método ABTS
Este método es empleado para cuantificar lactoperoxidasa, como
oxidorreductasa que cataliza la deshidrogenación de muchos compuestos
orgánicos como fenol y aminas aromáticas, hidroquinonas, o-cresol, o-toluidina,
82
guayacol, pirogalol, p-fenilendiamina. Muchas de estas sustancias no son
estables en solución y son consideradas como cancerígenas o peligrosas para
la salud y el medio ambiente, por lo que recientemente se ha empleado un
nuevo donador de electrones, el ABTS [Acido 2,2’ –azino-di (3-etil-
benzotiazolin-6-sulfónico)].
El 2,2'- Azino -bis- (3- etil-benzotiazolina-6- ácido sulfónico) o ABTS es un
compuesto que presenta gran estabilidad química, alta solubilidad en agua y un
máximo de absorción en la banda del UVA a 342 nm. Este compuesto en
presencia de H2O2 y enzimas peroxidasas deriva a un radical metaestable
(ABTS+) con un espectro de absorción característico y diferente al ABTS,
presentando máximos de absorción en la región espectral del UV y visible a
413, 645, 727 y 811 nm.
El ABTS es un producto que presenta gran estabilidad en un amplio rango de
pH, mostrando el mismo espectro de absorbancia a pH 4 y pH 8.5. Así mismo,
la formación del radical ABTS+ también se lleva a cabo en ese rango de pH
pero la actividad enzimática de la lactoperoxidasa sí que es dependiente del pH
del medio de reacción de manera que al alcalinizarse éste la actividad
disminuye, aumentando así el periodo de retardo o "lag time". La actividad de la
enzima se puede ajustar a una curva exponencial de manera que es máxima a
pH 4.5 y deja de ser activa a pH superiores a 10.
La cuantificación de la capacidad de secuestro de radicales libres de una
muestra se llevan a cabo mediante ensayos de decoloración en los cuales la
83
formación de ABTS+ da lugar a una coloración característica que disminuirá de
manera proporcional a la cantidad de sustancias con capacidad de atrapar
estos radicales que se le añadan al volumen de reacción. Esta pérdida de color
puede medirse mediante seguimientos cinéticos de pérdida de absorbancia a
413 nm (longitud de onda que no interfiere con otras moléculas) a lo largo de un
minuto. (28)
H2O2 + ABTS Reducido Lactoperoxidasa 2H2O + ABTS Oxidado
25ºC / pH 5.5
S
N S
O
O
O+
NS
O
O
N
S
N
OH
S
N S
O
O
OH
NS
O
O
N
S
N
OH+H2O2
+
A B T S =[ACIDO 2,2' AZINO-BIS(3 ETIL-BENZOTIAZOLIN)
-6-SULFONICO]
CATION ABTS+ OXIDADO
Lactoperoxidasa
25ºC / pH 5.5
2
2H2O2
Fig. Nº 13: Reacción ABTS para Lactoperoxidasa.
3.14.2.5 Reacción de Trinder.
El peróxido de hidrógeno reacciona con un cromógeno (fenol/4-aminoantipirina)
por la reacción de Trinder, para dar una quinona que absorbe entre 492 y 550
nm. La intensidad de color producida es directamente proporcional a la
concentración de lactoperoxidasa. (Ver anexo Nº 17).
84
Este método, propuesto por Trinder en 1972. Emplea como algunas sustancias
reductoras (que ganan oxígeno) como la benzidina, o-toluidina, o-dianisidina.
Sin embargo, la naturaleza carcinogénica de estos compuestos ha impulsado la
búsqueda y a emplear otras sustancias reductoras alternativas. Uno de estos
sistemas es la 4-aminoantipirina, que reacciona con el p-hidroxibencensulfonato
y el peróxido de hidrógeno en presencia de lactoperoxidasa para formar un
colorante quinonaimina con un máximo de absorción a 505 nm, de acuerdo al
siguiente esquema de reacción.
NNO
CH3
NH2
CH3
OH
SO3Na
CH3
O
N
NN
CH3
O
4- Aminoantipirina
+
p-hidroxibencensulfonato
+ H2O2
Lactoperoxidasa
Quinonamida
+ H2O
Fig. Nº 14: Reacción de Trinder para Lactoperoxidasa.
85
3.15 PROCEDIMIENTOS DE LOS METODOS DE ANALISIS PARA
DETERMINAR FOSFATASA ALCALINA RESIDUAL, FOSFATASA
ALCALINA REACTIVADA Y LACTOPEROXIDASA EN LACTEOS.
3.15.1 METODOS MAS CONOCIDOS PARA DETERMINAR FOSFATASA
ALCALINA RESIDUAL EN LACTEOS.
3.15.1.1 Prueba rápida para Fosfatasa alcalina por método de Scharer.
(Método Cualitativo), AOAC. (13), (28), (29)
Aplicable a: Leche pasteurizada, crema agria, queso cottage, queso o
mantequilla, leche condensada y leche en polvo.
A. Cristalería:
-Tubos de ensayo: deben tener una composición uniforme, paredes delgadas y
de boro silicato. Un tamaño conveniente para los tubos es 12×144 mm
calibrados a 5.0 mL - 5.5 mL y 8.5 mL hasta arriba del menisco; para la
preparación de muestras de queso, usar tubos de ensayo de tamaño18×150
mm.
-Pipetas morh de 1.0 mL y 5.0 mL, graduadas en divisiones de 0.1 mL.
-Pipetas volumétricas de 5.0 mL y 10.0 mL.
-Frascos volumétricos de 250.0, 500.0 y 1000.0 mL.
-Probeta de 25.0 y 100.0 mL
-Bureta de 50.0 mL
-Erlenmeyer de 150.0 mL
-Agitadores de vidrio
86
B. Equipo:
-Termómetro: graduado de 0 a 110ºC.
-Balanza analítica y semianalítica.
-Fuente de luz y filtro: tal como una lámpara para observar rayos X dentales
compuestas por una lámpara fluorescente de 14 a 22 watts tipo luz de día y un
filtro de vidrio o plástico de aproximadamente 10 cm. de alto y 30 cm. de
ancho; o un equipo adecuado y equivalente.
C. Materiales:
-Tapones para tubos de ensayo: libres de fenol.
-Frasco lavador.
-Gradilla para tubos de ensayo
-Baño de agua: con un control de termostato a 40 ±1 ºC.
-Baño de hielo.
-Parafilm.
-Frascos goteros: vidrio ámbar, tamaño ¼ oz. (7.5 mL), con gotero calibrado
para dar aproximadamente 50 gotas de solución CQC por mililitro.
-Homogenizador manual o licuadora.
D. Reactivos:
1. Buffer: Disolver 100.0 g de sesquicarbonato de sodio dihidratado
(NaHCO3·NaHCO3·2H2O) o 46.86 g de carbonato de sodio más 37.17 g de
bicarbonato de sodio en agua y llevar hasta un litro.
87
2. Buffer control: Diluir 25.0 mL del buffer anterior hasta 500.0 mL.
Alternativamente, disolver una tableta de Buff-Fax en 50.0 mL de agua. Para
la determinación en queso, crema agria, y mantequilla preparar un buffer
control con una doble fuerza, diluir 25.0 mL de buffer hasta 250.0 mL;
alternativamente, disolver una tableta de Buff-Fax en 25.0 mL de agua.
3. Buffer sustrato: Preferiblemente disolver 0.5 g de cristales de disodio fenil
fosfato libre de fenol en agua, agregar 25.0 mL de buffer, y llevar hasta 500.0
mL con agua destilada. Opcionalmente preparar la solución disolviendo una
tableta de Phos-Phax en 50.0 mL de agua. Para la determinación en queso,
mantequilla, y crema agria, preparar un buffer sustrato con doble fuerza y
preparar una solución para 250.0 mL; si se usa Phos-Phax para preparar el
buffer sustrato de doble fuerza disolver una tableta Phos-Phax en 25.0 mL de
agua.
4. Reactivo CQC: Disolver 30.0 mg de CQC cristalino en 10.0 mL de metanol o
etanol. Opcionalmente preparar la solución disolviendo una tableta de Indo-
Phax en 5.0 mL de metanol. Almacenar la solución bajo refrigeración y
descartar después de una semana, o si se torna color café.
5. Catalizador: Disolver 200.0 mg de sulfato de cobre (CuSO4·5H2O) en 100.0
mL de agua. Al usar la tableta Indo-Phax, el catalizador puede ser omitido ya
que las tabletas contienen la sal de cobre al igual que el CQC.
6. Alcohol n-butílico (neutralizado): Neutralizar el acido libre en el alcohol de la
siguiente manera: Adicionar 0.1 N NaOH al alcohol hasta que al ensayar una
88
pequeña cantidad con bromotimol azul hasta un viraje de color a verde o
ligeramente azul. Para ensayar, mezclar una muestra del alcohol con una
cantidad igual de agua destilada neutra, dejar que se separen las capas, y
agregar unas cuantas gotas de solución indicador a la capa de agua.
Alternativamente, adicionar 50.0 mL de buffer diluido (10.0 mL de buffer más
40.0 mL de agua destilada) por cada galón de alcohol (3.785 litros), mezclar
bien, y almacenar en refrigeración.
7. n-Butanol, 7.5%: Adicionar 7.5 mL de butanol neutralizado a 92.5 mL de agua
destilada.
E. Estándares:
1. Solución Madre Fenol: Pesar 1.000 g de fenol anhidro grado reactivo,
transferir a un frasco volumétrico de un litro, aforar con solución de HCl 0.1N,
y mezclar (1.0 mL contiene 1.0 mg de fenol). Esta solución madre se
mantiene estable por varios meses en el refrigerador.
2. Soluciones diluidas de fenol:
a) Diluir 10.0 mL de la solución madre fenol hasta un litro con agua; cada
mililitro contiene 10.0 µg de fenol.
b) Diluir 10.0 mL de la solución hasta 50.0 mL con agua. Preparar estas
diluciones a diario; cada mililitro contiene 2.0 µg de fenol.
3. Estándares de Fenol:
Para una serie de tubos de ensayo similar a los que se usarán en el
procedimiento de prueba de muestras, adicionar dilución de fenol y agua en
89
las cantidades especificadas (ver cuadro Nº 2), las cuales deben ser
preparadas recientemente.
Para el método rápido de Scharer, preparar solo las soluciones estándar de
fenol que contienen 1.0, 2.0, y 5.0 µg de fenol por 5.0 mL de solución.
Adicionar 0.5 mL de buffer, mezclar, y adicionar 6 gotas de reactivo CQC
conteniendo el catalizador de cobre, o 2 gotas de solución catalizadora y 6
gotas de CQC para cada tubo. Mezclar inmediatamente e incubar por 5 min.
a 40 ºC en baño de agua.
4. Butanol- estándares extraídos: Extraer cada uno de los estándares con 3.0
mL de alcohol butílico. Después de separar el butanol, tomar una porción del
alcohol butílico extraído y diluir con un volumen igual de butanol.
Las muestras en análisis, que han sido extraídas pero no diluidas, deberán
ser comparadas directamente con estos extractos y estándares diluidos.
F. Controles:
1. Leche con chocolate, queso, helado, u otros productos saborizados: Realizar
un control de sustancias interferentes en cada producto saborizado.
2. Crema mantequilla y queso: realizar un control de fosfatasa microbiana en
cada muestra positiva.
3. Se realizará un control positivo para cada serie de muestras y un control
negativo para cada clase de producto.
90
Cuadro Nº 2: Preparación de Estándares de fenol para el método de Scharer.
Solución de Fenol (mL)
Agua (mL) (µg de Fenol /mL)
- 5.0 0.0 µg/mL
0.5 4.5 0.2 µg/mL
1.0 4.0 0.4 µg/mL
2.5 2.5 1.0 µg/mL
5.0 0.0 2.0 µg/mL
1.5 3.5 3.0 µg/mL
2.0 3.0 4.0 µg/mL
2.5 2.5 5.0 µg/mL
G. Procedimiento:
1. Pipetear 0.5 mL o porciones de la muestra y controles en un tubo de ensayo
adecuado.
a. Mantequilla, crema agria, y queso cremado cottage estarán mejor preparados
para ser muestreados luego de ser homogenizados en una licuadora.
b. Queso o queso cottage seco: para ser muestreados, transferir 5.0 g a un
tubo de ensayo (18×150 mm) conteniendo 2.0 mL de alcohol n- butílico 7.5%
neutralizado y triturar con el agitador de vidrio. Agregar un exceso de 18.0
mL de alcohol n- butílico 7.5% neutralizado. Agitar bien, dejar macerar si es
necesario por 30 minutos. A una porción de 0.5 mL de la muestra debe ser
retirada de la parte más clara.
c. Mantequilla: para prepara las muestras, fundir la mantequilla a 40ºC, mezclar,
y pipetear una porción de 0.5 mL en el tubo de ensayo.
91
d. Leche en polvo o concentrada: reconstituir el producto con agua hasta la
concentración original de sólidos de leche y muestrear de la misma manera
especificada para el producto original.
2. Cuando se ensaye leche, crema, helado, mantequilla, leche con chocolate o
productos lácteos reconstituidos, agregar 5.0 mL de buffer sustrato. Cuando
se ensaye mantequilla, crema agria, queso o queso cottage, agregar 5.0 mL
de buffer sustrato preparado con doble fuerza buffer. Para resultados fiables,
el pH de la mezcla deberá ser probado y ajustado, si es necesario, a pH 9.5 a
10 con buffer carbonato. Mantener las muestras frías antes de la prueba.
3. Tapar los tubos y mezclar invirtiendo varias veces.
4. Colocar los tubos en el baño de agua, calentado a 40 ºC ± 1 ºC, y luego
incubar los tubos a 40º C ± 1 ºC por 15 minutos.
5. Remover los tubos del baño de agua, agregar a cada tubo 6 gotas de
reactivo CQC conteniendo catalizador (agregar 2 gotas de catalizador si el
CQC no contiene sulfato de cobre. Tapar, mezclar, y reincubar por 5 minutos.
6. Remover los tubos del baño de agua, enfriar en un baño de agua con hielo,
agregar a cada tubo 3.0 mL de alcohol n- butílico neutralizado frío, y extraer
el indofenol azul invirtiendo los tubos suavemente cuatro veces haciendo un
medio circulo al agitarlos (tomar cerca de 2 segundos para invertir los tubos,
detenerse por 2 segundos y, tomar otros 2 segundos para regresar el tubo a
la posición recta, detenerse por 2 segundos y luego repetir). Poner los tubos
92
de lado sobre una superficie recta por 2 minutos para permitir la separación
del butanol, luego repetir los pasos de mezclado y separación.
7. Si todo el butanol ha sido emulsificado y no se observan restos de la capa de
butanol, enfriar los tubos por 5 minutos en baño de agua con hielo y luego
centrifugar por 5 minutos.
8. Mantener los tubos erectos y comparar los colores de las capas de butanol
con los estándares. La comparación de colores debe hacerse usando una luz
estándar. (Ver anexo Nº 5)
Cuadro Nº 3: Adición de Reactivos en el método de Scharer.
Reactivos Tubo Muestra
Muestra 0.5 mL
Buffer sustrato 5.0 mL
CQC 6 gotas (0.3 mL)
Catalizador 2 gotas (0.1 mL)
Alcohol n- butílico 3.0 mL
H. Interpretación:
Únicamente 0.5 mL de leche o producto lácteo se ensaya, pero la dilución de
los estándares 1:1 es equivalente a multiplicar por 2 o convertir para 1.0 mL; por
lo que el valor corresponde a microgramos de fenol por mililitro de producto. Un
valor de 1.0 µg o más de fenol por mililitro de leche, producto lácteo, producto
lácteo reconstituido o extracto de queso indica una pasteurización inadecuada o
una contaminación con producto sin pasteurizar.
93
3.15.1.2 Método Espectrofotométrico modificado para Fosfatasa Alcalina.
(Método Cuantitativo), AOAC (28), (29).
Aplicable a: Leche pasteurizada, crema, leche saborizada con chocolate,
helado, crema agria, queso cottage, queso, mantequilla, leche condensada y
leche en polvo.
Este es una modificación del método rápido de Scharer, y las muestras de
varios productos deben ser preparadas para la prueba como se describe en el
método de Scharer.
A. Cristalería:
-Tubos de ensayo: vidrio boro silicato, 16×125 mm o 16×150 mm con tapones
de vidrio.
-Pipetas morh de 1.0 mL y 5.0 mL, graduadas en divisiones de 0.1 mL.
-Pipetas volumétricas de 5.0 mL y 10.0 mL.
-Frascos volumétricos de 250.0, 500.0 y 1000.0 mL.
-Probeta de 25.0 y 100.0 mL
-Bureta de 50.0 mL
-Erlenmeyer 150.0 mL
-Agitadores de vidrio.
-Celdas adecuadas, redondas, 12×75 mm.
B. Equipo:
-Termómetro: graduado de 0 a 100ºC.
-Balanza analítica y semianalítica
94
-Centrifuga: que pueda sostener seis tubos de 15.0 mL en un ángulo fijo, o
alguna centrifuga donde se coloquen para centrifugar tubos cerrados de 16×150
mm.
-Espectrofotómetro o colorímetro.
C. Materiales:
-Tapones de goma, libres de fenol o tapones de vidrio.
-Gradilla para tubos de ensayo
-Baño de agua con un control de termostato a 40 ±1 ºC.
-Baño de hielo.
-Frasco lavador.
-Parafilm.
-Baño de agua con un control de termostato a 40 ±1 ºC.
-Frascos goteros: vidrio ámbar, tamaño ¼ oz. (7.5 mL), con gotero calibrado
para dar aproximadamente 50 gotas de solución CQC por mililitro.
D. Reactivos:
1. Buffer: Disolver 100.0 g de sesquicarbonato de sodio dihidratado
(NaHCO3·NaHCO3·2H2O) ó 46.86 g de carbonato de sodio más 37.17 g de
bicarbonato de sodio en agua y llevar hasta un litro.
2. Buffer control: Diluir 25.0 mL del buffer anterior hasta 500.0 mL.
Alternativamente, disolver una tableta de Buff-Fax en 50.0 mL de agua. Para
la determinación en queso, crema agria, y mantequilla preparar un buffer
95
control con una doble fuerza, diluir 25.0 mL de buffer hasta 250.0 mL;
alternativamente, disolver una tableta de Buff-Fax en 25.0 mL de agua.
3. Buffer sustrato: Preferiblemente disolver 0.5 g de cristales de disodiofenil
fosfato libre de fenol en agua, agregar 25.0 mL de buffer, y llevar hasta 500.0
mL con agua destilada. Opcionalmente preparar la solución disolviendo una
tableta de Phos-Phax en 50.0 mL de agua. Para la determinación en queso,
mantequilla, y crema agria, preparar un buffer sustrato con doble fuerza y
preparar una solución para 250.0 mL; si se usa Phos-Phax para preparar el
buffer sustrato de doble fuerza disolver una tableta Phos-Phax en 25.0 mL de
agua.
4. Reactivo CQC: Disolver 30.0 mg de CQC cristalino en 10.0 mL de metanol o
etanol. Opcionalmente preparar la solución disolviendo una tableta de Indo-
Phax en 5.0 mL de metanol. Almacenar la solución bajo refrigeración y
descartar después de una semana, o si se torna color café.
5. Catalizador: Disolver 200.0 mg de sulfato de cobre (CuSO4·5H2O) en 100.0
mL de agua. Al usar la tableta Indo-Phax, el catalizador puede ser omitido ya
que las tabletas contienen la sal de cobre al igual que el CQC.
6. Alcohol n-butílico (neutralizado): Neutralizar el acido libre en el alcohol de la
siguiente manera: Adicionar 0.1N NaOH al alcohol hasta que al ensayar una
pequeña cantidad con bromotimol azul hasta un viraje de color a verde o
ligeramente azul. Para ensayar, mezclar una muestra del alcohol con una
cantidad igual de agua destilada neutra, dejar que se separen las capas, y
96
agregar unas cuantas gotas de solución indicador a la capa de agua.
Alternativamente, adicionar 50.0 mL de buffer diluido (10.0 mL de buffer más
40.0 mL de agua destilada) por cada galón de alcohol (3.785 litros), mezclar
bien, y almacenar en refrigeración.
7. n-Butanol, 7.5%: Adicionar 7.5 mL de butanol neutralizado a 92.5 mL de agua
destilada.
E. Estándares:
1. Solución Madre Fenol: Preparar de la misma manera que para el método
rápido de Scharer. (Ver Pág. 88)
2. Soluciones diluidas de fenol: Preparar de la misma manera que para el
método rápido de Scharer. (Ver Pág. 88)
3. Estándares de Fenol: Prepara de la misma manera que para el método
rápido de Scharer. (Ver Pág. 88-89)
Para la construcción de la curva de Estándar, prepare solo estándares
conteniendo 0.0, 2.0, 5.0, 10.0, 15.0, 20.0 y 25.0 µg de fenol por 5.0 mL de
solución (Ver cuadro Nº 2). Adicionar 0.5 mL de Buffer, mezclar, y agregar 6
gotas de reactivo CQC que contenga catalizador de cobre o 2 gotas de
catalizador y 6 gotas de reactivo CQC para cada estándar. Mezclar
inmediatamente e incubar por 5 minutos a 40 ºC en baño de agua.
4. Extracción con alcohol n- butílico: Adicionar 5.0 mL de alcohol n- butílico para
cada uno de los estándares preparados. Extraer el azul de indofenol
97
siguiendo el procedimiento dado para el método rápido de Scharer, y
centrifugar por 5 minutos.
5. Construcción de la curva estándar:
a. Retirar 2.0 mL de la capa de alcohol butílico de cada estándar extractado y
diluir con un volumen igual de butanol en una beaker adecuado, mezclar y
llenar la celda.
b. Para calibrar el espectrofotómetro se lleva a cero absorbancia (100% T) con
el blanco a una longitud de onda de 650 nm posteriormente se lee el valor de
la absorbancia de cada estándar.
c. Plotear las lecturas de absorbancia versus los microgramos de fenol en los
estándares. Y trazar la mejor línea entre los puntos de 2.0, 5.0, 10.0, 15.0,
20.0 y 25.0 µg de fenol por 5.0 mL de estándar preparado.
F. Controles: Realizar los mismos controles que para el método rápido de
Scharer. (Ver Pág. 89)
G. Procedimiento:
Las muestras para ensayar varios productos deben prepararse como se indica
para el método rápido de Scharer. (Ver Pág. 90)
1. Pipetear 0.5 mL de muestra bien mezclada en un tubo de ensayo de 16×125
mm conteniendo 5.0 mL de buffer sustrato. Tapar con un tapón de goma libre
de fenol y mezclar por inmersión.
98
2. Incubar la mezcla en análisis, juntamente con un control negativo preparado
similarmente del mismo tipo de muestra, a 40±1 ºC por una hora, en baño de
agua.
3. Remover las muestras del baño de agua, y agregar 6 gotas de reactivo CQC
(conteniendo catalizador) para cada uno de los tubos, mezclar y reincubar
por 5 minutos.
4. Remover las muestras del baño de agua, enfriar en baño de agua con hielo
por 5 minutos, agregar 5.0 mL de butanol frío, y mezclar por inmersión.
5. Centrifugar las muestras por 5 minutos y pipetear 3.0 mL de la capa de
alcohol butílico de cada muestra en un vaso de precipitado de 5.0 mL.
6. Llevar a cero el espectrofotómetro con el control negativo y leer el valor de la
absorbancia de cada muestra a una longitud de onda de 650 nm.
(Ver Anexo Nº 6)
H. Interpretación:
Identificar la concentración de fenol en la muestra por comparación de la
absorbancia leída de la muestra en la curva estándar. Los resultados así
obtenidos muestran los microgramos de fenol por mililitro directamente. Sólo 0.5
mL de la muestra se usan en la prueba pero los estándares fueron diluidos 1:1 y
el resultado neto es equivalente a multiplicar por 2 o convertir a un mililitro de
muestra. Cualquier valor mayor que 2.3 µg de fenol por mililitro es indicativo de
pasteurización impropia.
99
3.15.1.3 Método de Cornell para Fosfatasa alcalina.
(Método Cuantitativo) (12).
Aplicable a: Leche pasteurizada, crema, leches saborizadas, queso cottage,
queso, queso crema o mantequilla, leche condensada y leche en polvo.
A. Cristaleria:
-Tubos de ensayo: Vidrio de borosilicato, 16×150 mm.
-Pipetas morh de 1.0 mL y 5.0 mL (o 10.0 mL).
-Frascos volumétricos 1000.0 mL
-Probeta 100.0 mL
-Pipeta volumétrica de 1.0 mL
-Beaker 50.0 mL y 100.0 mL
-Embudo: Tamaño adecuado para papel filtro de 11 cm.
B. Equipo:
-Termómetro: 0 a 110ºC.
-Espectrofotómetro o colorímetro.
-Balanza analítica: precisión 5.0 mg.
C. Materiales:
-Baño de agua: a temperatura termostáticamente controlada de 37±1 ºC.
-Papel filtro: Whatman Nº 42, 11 cm.
-Frascos goteros ámbar: con capacidad para 25.0 a 50.0 mL.
-Fuente de luz.
-Parafilm.
100
D. Reactivos:
1. Buffer Sustrato Carbonato: Disolver 11.5 g de carbonato de sodio anhidro
(Na2CO3), 10.2 g de bicarbonato de sodio anhidro (NaHCO3), y 1.1 g de fenil
fosfato disódico, en agua destilada y llevar hasta un litro.
2. Precipitante Acido clorhídrico-Tricloroacético: Disolver 25.0 g de cristales de
ácido tricloroacético en 50.0 mL de agua, agregar 50.0 mL de acido
clorhídrico concentrado (36 % aproximadamente), y mezclar completamente.
3. Solución de carbonato de sodio, 8%: Disolver 80.0 g de carbonato de sodio
anhidro en agua destilada y llevar a 1 litro.
4. Solución de sulfato de cobre- hexametafosfato de sodio: Disolver 0.5 g de
sulfato de cobre (CuSO4·5H2O) y 50.0 g de cristales de hexametafosfato de
sodio, en agua destilada y llevar a un litro.
5. Solución CQC: disolver 0.2 g de 2,6 dicloroquinona clorimida (CQC) cristalino
en 25.0 mL de metanol o etanol absoluto. (Ver Anexo Nº 3)
6. Alcohol n- butílico: punto de ebullición 117.5 ºC, no neutralizado.
E. Estándares de fenol coloreados:
1. Solución madre de fenol: disolver 1.0 g de cristales de fenol en agua y llevar
a 1 L. Mantener en refrigeración antes y después de usar, sino es de
preparación recientemente.
2. Solución buffer: disolver 11.5 g de carbonato de sodio anhidro (NaCO3), 10.2
g de bicarbonato de sodio anhidro (NaHCO3), y 0.1 g de sulfato de cobre
(CuSO4·5H2O) en agua destilada y llevar hasta un litro.
101
3. Solución fenólica diluida: adicionar para 2.0 mL de solución madre de fenol
suficiente solución buffer para hacer 500.0 mL. Esta solución contiene 4.0 µg
de fenol por mililitro de solución. Preparar a diario.
4. Soluciones estándar y desarrollo final: pipetear en cada tubo de ensayo
(16×150 mm) alícuotas en las proporciones indicadas en las primeras dos
columnas del cuadro Nº 4, a uno de los cuales se realiza un ajuste posterior
para que antes del desarrollo del color, todos los tubos tengan 10.0 mL de
volumen.
Adicionar a cada una de los tubos con 10.0 mL de volumen, exactamente 2
gotas de CQC con una rápida agitación e invierta el tubo una vez. Incubar a
37 ºC por 5 minutos para desarrollo del color. Adicionar 5.0 mL de alcohol n-
butílico a cada uno de los tubos. Invertir el tubo cinco veces para extraer el
color. Sellar los tapones con un cierre adecuado y guardar en el refrigerador
o en baño de agua con hielo.
5. Construcción de la curva estándar:
Remover aproximadamente 3.0 mL de alcohol de los estándares extractados
con una pipeta en celdas limpias y pequeñas o en los tubos del colorímetro.
Leer contra los extractos de butanol desde la solución estándar de fenol 0.0
µg/mL usando un colorímetro o un espectrofotómetro fijado a una
absorbancia 0 (100% tramitancía) y a una longitud de onda de 650 nm.
Plotear en papel milimetrado los valores de absorbancia o de densidad óptica
102
versus las concentraciones de fenol empleadas. Trazar la línea a través de
los puntos y usar la curva de estándares.
Cuadro Nº 4: Estándares de fenol coloreados para el método de Cornell.
Solución Buffer (mL)
Solución diluida de fenol (mL)
µg de Fenol por tubo
10.0 0.0 0.0 µg/mL
15.6 0.4** 0.16 µg/mL
9.5 0.5 0.2 µg/mL
9.0 1.0 0.4 µg/mL
8.0 2.0 0.8 µg/mL
7.0 3.0 1.2 µg/mL
6.0 4.0 1.6 µg/mL
5.0 5.0 2.0 µg/mL
0.0 10.0 4.0 µg/mL
*Mezclar los primeras dos columnas para obtener la concentración respectiva
de fenol.
** Remover 6.0 mL de la mezcla y descartar. El desarrollo del color se hará en
los restantes 10.0 mL de solución.
F. Controles:
Los controles en leche saborizada con chocolate, helado, y leches saborizadas
positivos y negativos, al proporcionar altos valores en los controles negativos,
indica presencia de sustancias interferentes. Por lo cual dichos valores deben
restarse como se plasma en la interpretación de resultados (ver pág.104)
G. Procedimiento
1. Preparación de la muestra: Para leche, crema, leche saborizada con
chocolate, mantequilla, suero, mezcla de helado, leche condensada. Pipetear
103
1.0 mL de producto en un tubo de ensayo, adicionar 10.0 mL de buffer
sustrato carbonato calentado a 37ºC, y agitar. Para queso maduro, cottage o
queso crema, mantequilla o leche en polvo: Transferir 0.5 g de producto a un
tubo de ensayo. Adicionar 1.0 mL de buffer sustrato carbonato calentado a
37ºC y macerar el sólido en forma de pasta o en pequeños partículas con el
agitador de vidrio. Luego adicionar 9.0 mL adicionales de buffer sustrato
carbonatado y agitar.
2. Incubación: Colocar los tubos de ensayo en el baño de agua a 37ºC de
temperatura. Dejar los tubos por 5 minutos en el baño de agua hasta que
alcancen los 37ºC y entonces incubar por una hora.
3. Precipitación: Después de incubar, remover los tubos de ensayo y adicionar
con la pipeta cuidadosamente por las paredes del tubo 1.0 mL de
precipitante acido clorhídrico-tricloroacético.
Filtrar después de algunos segundos sobre un tubo de ensayo limpio
(16×150 mm), previamente calibrado a intervalos de 5.0 mL.
4. Desarrollo y medición del color: A 5.0 mL del filtrado claro adicionar 1.0 mL
de solución de sulfato de cobre- hexametafosfato de sodio. Pipetear dentro
del tubo 5.0 mL de Solución calentada de carbonato de sodio (8%) y mezclar.
Adicionar exactamente 2 gotas de solución CQC y rápidamente invertir el
tubo una vez. Permitir que se desarrolle el color a 37ºC por exactamente 5
minutos. Adicionar 5.0 mL de alcohol n-butílico, invertir el tubo cinco veces, y
104
dejar reposar por un minuto. Comparar los colores azules visualmente contra
los estándares de alcohol, leer en espectrofotómetro.
Opcionalmente, en lugar de una lectura visual, remover aproximadamente
3.0 mL de solución de alcohol butílico extractado de cada tubo de ensayo
con una pipeta limpia transferir a una celda limpia o a un tubo del colorímetro
con un diámetro de 12 mm, colocar en el colorímetro, y medir la absorbancia
o la densidad óptica a 650 nm contra un filtrado de alcohol extractado de un
control negativo, ajustar a 100% tramitancía. Determinar la concentración de
fenol por referencia a la curva de estándares preparada. (Ver Anexo Nº 7)
Cuadro Nº 5: Adición de Reactivos en el Método de Cornell.
Reactivo Tubo Muestra
Muestra 1.0 mL
Buffer Sustrato Carbonato 10.0 mL
HCl/ ácido tricloroacético 1.0 mL
Cu2SO4/ Hexametafosfato 1.0 mL
Carbonato de Sodio 8% 5.0 mL
Solución CQC 2 gotas
Alcohol n- butílico 5.0 mL
H. Interpretación: Expresar los valores directamente, sin usar factor de
multiplicación de ningún tipo. Cualquier valor mayor de 1.0 µg de fenol por mL
de leche u otro producto lácteo fluido, o por 0.25 g de queso u otro producto
lácteo sólido indica una subpasteurización, o recontaminación con leche cruda,
o ambos. Las cantidades de leche y queso, mencionadas en esta interpretación
se derivan del volumen de filtrado analizado, el cual representa
aproximadamente la mitad de volumen o peso original de la muestra.
105
3.15.1.4 Método de Rutgers para Fosfatasa alcalina residual.
(Método Cualitativo), AOAC (12), (28), (29).
Aplicable a: Leche pasteurizada, crema ligera (Light), leche semidescremada,
queso, helado, mantequilla, leche condensada y leche en polvo.
Ensayo para estimar fosfatasa en leche descremada, leche y crema ligera.
A. Cristalería:
-Tubos de ensayo: composición uniforme, paredes delgadas, y de boro. Tubos
con dimensiones 15×100 mm.
-Pipetas: graduadas o volumétricas, 1.0 mL.
-Frascos volumétricos 100.0 mL, 1000.0 mL
-Pipeta volumétrica de 1.0 mL
-Probeta de 25.0 mL
-Beaker 50.0 mL, 100.0 mL
B. Equipo:
-Balanza analítica y semianalítica
-pHmetro
C. Materiales:
-Baño de Agua con termostato, ajustado hasta 37º± 1º C.
-Papel Parafilm.
106
D. Reactivos:
1. Sustrato concentrado: Disolver 3.9 g de diciclohexilamina sal de monofosfato
de fenolftaleina y 73.2 g de 2-amino-2-metil-1-propanol en 21.9 mL de acido
clorhídrico. El pH es de 10.15 a 25 ºC.
2. Estándar Concentrado: Disolver 10.0 mg de fenolftaleina, 40.0 mg de
tartrazina y 73.2 g de 2-amino-2-metil-1-propanol en 21.9 mL de acido
clorhídrico. El pH es de 10.15 a 25 ºC.
3. Desarrollador del color: Disolver 10.0 g de Hidróxido de sodio en agua libre
de CO2 y diluir a 100.0 mL.
4. Alcohol n-butílico, 7.5%: Ajustar 75.0 mL de alcohol n-butílico a pH 7
adicionando NaOH 1 N y llevar hasta 1 litro.
Todos los reactivos son estables indefinidamente en refrigeración.
E. Procedimiento:
El procedimiento actualmente se limita a leche descremada, leche y crema
ligera por la AOAC. Aunque no oficialmente, el método es aplicable a leche baja
en grasa, crema espesa, queso, mantequilla, leche concentrada y en polvo.
También, el método puede ser usado juntamente con el método para diferenciar
entre fosfatasa alcalina residual y reactivada.
1. Pipetear porciones de1.0 mL de muestra en dos tubos de ensayo.
a. Queso: Colocar 5.0 g de queso en un tubo de ensayo (18×150 mm) y agregar
20.0 mL de alcohol n-butílico 7.5 % neutralizado. Triturar la muestra con un
107
agitador de vidrio por 2 minutos y filtrar inmediatamente a través de papel
filtro Whatman Nº 4. Usar 1.0 mL de filtrado para realizar la prueba.
b. Mantequilla: Fundir la muestra a 40 ºC, mezclar, y usar una porción de 1.0
mL para la prueba.
c. Leche concentrada y en polvo: Reconstituir con agua a la concentración
original de sólidos. Mezclar y usar porciones de 1.0 mL para la prueba.
2. Colocar los tubos en el baño de agua y calentar hasta 37º±1º C.
3. Agregar 1 gota (0.05 mL) de sustrato concentrado a un tubo y agregar a otro
tubo una gota (0.05 mL) de estándar concentrado.
4. Agitar e incubar a 37º ±1º C por 30 minutos.
5. Agregar 1 gota (0.05 mL) de revelador de color a cada tubo, agitar y
comparar visualmente. (Ver anexo Nº 8)
Cuadro Nº 6: Adición de Reactivos en el Método de Rutgers.
Reactivo Tubo Muestra Tubo Estándar
Muestra 1.0 mL 1.0 mL
Sustrato concentrado 1 gota (0.05 mL) -----------------
Estándar concentrado ---------------- 1 gota (0.05 mL)
Solución reveladora del color 1 gota (0.05 mL) 1 gota (0.05 mL)
F. Interpretación:
Si el tubo conteniendo sustrato concentrado muestra una coloración rosada
menor que la del tubo conteniendo estándar concentrado, la muestra puede ser
considerada adecuadamente pasteurizada. El estándar debe contener 4.0 µg
de fenolftaleina por tubo lo cual es igual a la cantidad de fenolftaleina liberada
108
en 30 minutos por 1.0 mL de leche pasteurizada contaminada con 0.1 % de
leche cruda. La preparación de un estándar de la misma leche muestreada,
resulta muy importante en la comparación visual, para conocer si las
coloraciones tienen la misma tonalidad.
109
3.15.1.5 Método de Aschaffenburg y Mullen.
(Método Cualitativo) (24).
Aplicable a: Leche entera, extracremosa, semidescremada o descremada
pasteurizadas fluidas o en polvo, crema; mantequilla.
A. Cristalería:
-Celdas de 25 mm cada una.
B. Equipo:
-Balanza analítica.
-Comparador colorimétrico con disco especial, conteniendo cristales de color
patrones calibrados en microgramos de p-nitrofenol por mL de leche.
C. Materiales:
-Baño de agua a 37 ºC ± 1º C, controlado por termostato.
D. Reactivos.
-Solución tampón de carbonato de sodio y de bicarbonato de sodio: Para
preparar esta solución tampón disolver 3.5 g de carbonato de sodio anhidro y
1.5 g de bicarbonato de sodio en agua y diluir hasta 1000.0 mL en un frasco
volumétrico.
-Sustrato en solución tampón: Para prepara esta solución tampón disolver 1.5 g
de p-nitrofenilfosfato disódico con solución tampón de carbonato de sodio -
bicarbonato de sodio y diluir hasta 1000.0 mL en un frasco volumétrico.
110
Esta solución se mantiene estable durante un mes en el refrigerador a ± 4ºC
pero habrá que efectuar antes de usarlas un test de control del color en las
soluciones almacenadas de esta forma.
-Precipitantes:
-Sulfato de zinc.
Disolver 30.0 g de sulfato de zinc (ZnSO4) en agua y completar hasta 100.0 mL
en frasco volumétrico.
-Hexacianoferrato (II) de potasio en solución.
Disolver 17.2 g de hexacianoferrato (II) de potasio trihidrato [K4Fe (CN)6·3H2O]
en agua y aforar a 100.0 mL en un frasco volumétrico.
E. Procedimiento.
-Preparación de la muestra.
Disolver 10.0 g de polvo en 90.0 mL de agua. La temperatura de disolución no
ha de exceder los 35 ºC.
-Determinación:
Pipetear 15.0 mL de sustrato en solución tampón en un tubo de ensayo limpio y
seco, luego 2.0 mL de la muestra de leche a analizar. Cerrar el tubo con un
tapón, mezclar dando vueltas al tubo y colocar en baño de agua a 37 ºC.
Colocar simultáneamente en el baño de agua un tubo de control conteniendo
15.0 mL de sustrato en solución tampón y 2.0 mL de muestra de leche hervida
del mismo tipo que la del análisis.
111
Sacar los tubos del baño de agua al cabo de dos horas, añadir 0.5 mL de
precipitante de sulfato de zinc, colocar de nuevo el tapón y agitar
vigorosamente. Dejar reposar durante tres minutos.
Añadir 0.5 mL de precipitante de hexacianoferrato (II) de potasio; mezclar por
completo y filtrar en papel filtro plegado; recoger el liquido filtrado en un tubo de
análisis limpio.
Trasladar el líquido filtrado a una celda de 25 mm y comparar con respecto al
líquido filtrado de la muestra de control hervida en el colorímetro, utilizando el
disco especial. Y contra una celda conteniendo agua destilada que será el
blanco, y realizar las lecturas de la densidad óptica. (Ver Anexo Nº 9)
Cuadro Nº 7: Adición de Reactivos en el Método de Aschaffenburg y Mullen.
Reactivo Tubo Muestra Tubo Control Negativo
Sustrato tamponado 15.0 mL 15.0 mL
Muestra 2.0 mL 2.0 mL (muestra hervida)
Precipitante Zn SO4 0.5 mL 0.5 mL
Precipitante [K4Fe (CN)6·3H2O] 0.5 mL 0.5 mL
F. Cálculos.
La lectura directa obtenida del colorímetro se expresa en microgramos de p-
nitrofenol por mL de muestra.
La diferencia entre los resultados de determinaciones efectuadas en duplicado
simultáneamente o inmediatamente una después de la otra, (por el mismo
analista, con la misma muestra y en iguales condiciones) ha de ser inferior a 2.0
microgramos de p-nitrofenol liberado por mL de leche.
112
3.15.1.6 Método de Sanders y Sager modificado.
(Método Cuantitativo), AOAC (24), (27), (28), (29).
Aplicable a: Leche pasteurizada extragrasa, entera, semidesnatada,
descremada fluidas o en polvo, mantequilla.
A. Cristalería:
-Embudo
-Frascos volumétricos 100.0 mL, 500.0 mL, 1000.0 mL
-Beakers 100.0 mL, 50.00 mL
-Ampolla de separación
-Agitadores de vidrio.
-Celdas de cuarzo.
B. Equipo:
-pHmetro
-Balanza analítica.
-Espectrofotómetro que permita la lectura a una longitud de onda de 610 nm.
-Termómetros
C. Materiales
-Baño de agua con termostato a 37ºC.
-Papel filtro, Whatman 42 o similar.
-Cocina eléctrica
-Papel aluminio.
-Frasco lavador
113
-Goteros.
-Parafilm.
D. Reactivos:
1. Solución Tampón de borato y de hidróxido de bario: pH 10.6 ± 0.1 a 20ºC.
Disolver 25.0 g de hidróxido de bario (Ba (OH)2·8H2O) en agua y diluir hasta
500.0 mL.
Disolver 11.0 g de acido bórico (H3BO3) en agua y diluir hasta 500.0 mL.
Calentar las dos soluciones a una temperatura de 50ºC y mezclar. Agitar y
enfriar la mezcla a temperatura ambiente.
Ajustar el pH a 10.6 ±0.1, con la solución de hidróxido de bario y filtrar.
Conservar la solución en recipiente bien cerrado. Antes de su uso, diluir la
solución tampón con la misma cantidad de agua.
2. Solución Tampón para el desarrollo del color.
Disolver 6.0 g de metaborato de sodio (NaBO2) ó (12.6 g de NaBO2·4H2O) y
20.0 g de cloruro de sodio (NaCl) en agua y diluir hasta 1000.0 mL.
3. Solución Sustrato tamponado.
Disolver 0.5 g de fenilfosfato disódico (Na2C6H3PO4·H20) en 4.5 mL de
solución tampón desarrollador del color. Añadir dos gotas de solución
reactivo de Gibbs y dejar reposar durante 30 minutos. Extraer el color
formado con 2.5 mL de alcohol butílico. Si fuese necesario, repetir la
extracción del color. Luego de separar, descartar el alcohol butílico. Esta
114
solución puede conservarse algunos días en refrigeración. Desarrollar y
extraer el color, una vez más, antes de emplear.
Pipetear 1.0 mL de esta solución en un matraz aforado de 100.0 mL y añadir
la Solución Tampón de borato y de hidróxido de bario hasta aforar. Preparar
el sustrato tamponado inmediatamente antes de su uso.
4. Solución Precipitante.
Disolver 3.0 g de sulfato de zinc (ZnSO4·7H2O) y 0.6 g de sulfato de cobre II
(CuSO4·5H2O) en agua y llevar a 100.0 mL.
5. Solución Reactivo de Gibbs.
Disolver 0.040 g de dibromo-2,6 quinona-1,4 imida (O.C6H2Br2·NCl) en 10.0
mL de etanol de 96%. Conservar la solución en frasco ámbar en
refrigeración. Desechar el reactivo cuando cambie de color.
6. Tampón de dilución de la coloración.
Diluir 10.0 mL de solución tampón para el desarrollo del color con agua y
completar hasta 100.0 mL.
7. Solución de sulfato de cobre.
Disolver 0.05 g de sulfato de cobre II (CuSO4·5H2O) en agua y llevar a 100.0
mL.
8. Solución Madre de fenol.
Disolver 0.200 ± 0.001 g de fenol puro en agua y llevar a 100.0 mL en matraz
aforado. Esta solución puede conservarse durante algunos meses en
refrigeración. Diluir 10.0 mL de esta solución hasta 100.0 mL con agua. Esta
115
solución presenta una concentración de 200.0 µg de fenol por mL y puede
utilizarse para preparar soluciones más diluidas.
9. Agua destilada.
10. Alcohol n-butílico.
E. Procedimiento:
- Precauciones a tomar.
1. Evitar la exposición directa a la luz del sol.
2. Limpiar perfectamente todo el material de vidrio, tapones y, material de
trasvase. Se recomienda enjuagarlos y hervirlos con agua o tratarlos por
vapor.
Evitar el empleo de material plástico (tapones que pudieran contener fenol).
3. Evitar cuidadosamente todo indicio de saliva, puesto que ésta contiene
fosfatasa.
- Preparación de la muestra.
Según el tipo de muestra se deben preparar de la siguiente manera:
1. Leche en polvo: Disolver 10.0 g de la muestra, pesados con precisión de 0.1
g en 90.0 mL de agua. La temperatura de disolución del polvo no debe
exceder los 35 ºC. Introducir 1.0 mL de leche reconstituida dentro de cada
tubo de ensayo
2. Mantequilla: Pesar 1.0 g de muestra (por duplicado) sobre un pedazo de
papel kraft. Introducir la muestra dentro del tubo de ensayo.
3. Leche fluida: Colocar 1.0 mL de la leche fluida dentro del tubo de ensayo.
116
4. Queso: Pesar 1.0 g de muestra (por duplicado) sobre un pedazo de papel
kraft. Introducir la muestra dentro del tubo de ensayo.
- Determinación:
1. Cubrir el tubo que servirá como control de cada tipo de muestra con papel
aluminio para un calentamiento uniforme (85º- 90ºC). Calentar el tubo en un
baño de agua a ebullición por dos minutos. Enfriar en agua fría a temperatura
ambiente. Desde este punto tratar el tubo muestra y el control de manera
igual.
2. Añadir 10.0 mL de la solución sustrato tamponado. Mezclar y colocar los
tubos en baño de agua a 37º- 38ºC. Incubar ahí por una hora. Agitando el
contenido de vez en cuando.
3. Introducir los dos tubos con la muestra en el baño de agua hirviendo y
calentar a 85º- 90ºC durante dos minutos, y enfriar con agua a temperatura
ambiente.
4. Añadir 1.0 mL de la solución precipitante, mezclar. EL pH de la mezcla debe
ser de 9.0 - 9.1.
5. Filtrar con papel filtro seco Whatman Nº 42 y embudo de 5 cm.; recoger 5.0
mL de filtrado en tubos graduados a 5.0 mL y 10.0 mL. Descartar los
primeros filtrados hasta obtener un líquido nítido.
6. Agregar a cada tubo 5.0 mL de solución tampón desarrollador de color y 0.1
mL de solución reactivo de Gibbs. Mezclar. Dejar que se desarrolle el color a
117
temperatura ambiente y proteger de la luz solar, durante 30 minutos. El pH
de la mezcla ha de ser 9.3 - 9.4.
7. Leer la intensidad del color azul midiendo en el espectrofotómetro la
absorbancia de la muestra por referencia a la prueba en blanco a 610 nm y a
los estándares preparados. (Ver Anexo N º 10)
Cuadro Nº 8: Adición de Reactivos en el Método de Sanders y Sager.
Reactivo Tubo Muestra Tubo Control Negativo
Sustrato Tamponado 10.0 mL 10.0 mL
Muestra 1.0 mL 1.0 mL (Llevar a ebullición)
Solución Precipitante 1.0 mL 1.0 mL
Tampón desarrollador de color 5.0 mL 5.0 mL
Reactivo Gibbs 0.1 mL 0.1 mL
- Preparación de la curva patrón.
1. Preparación de Soluciones patrón para estándares: Pipetear en cuatro
frascos volumétricos de 100.0 mL. 1.0, 3.0, 5.0 y 10.0 mL de la solución
madre 200.0 µg/ mL (Ver pág. 114). Adicionar agua destilada y agitar y
aforar. Estas soluciones contienen respectivamente: 2.0, 6.0, 10.0, 20.0 µg
de fenol por mL. (Soluciones patrón)
2. Pipetear 1.0 mL de cada solución patrón en tubos de ensayo para obtener
una serie de muestras conteniendo 0.0, 2.0, 6.0, 10.0, 20.0 µg de fenol, como
118
se indica en el cuadro Nº 9. El blanco se obtiene pipeteando 1.0 mL de agua
destilada.
3. Pipetear sucesivamente en cada tubo de ensayo 1.0 mL de la solución de
sulfato de cobre, y 5.0 mL de la solución tampón coloreada, 3.0 mL de agua y
0.1 mL de solución reactivo de Gibbs. Mezclar.
4. Dejar reposar los tubos de ensayo a temperatura ambiente y protegidos de la
luz solar directa durante 30 minutos.
5. Medir la absorbancia del contenido de cada uno de los tubos por referencia al
valor cero, a 610 nm.
6. Establecer la curva patrón tomando nota de los valores de absorbancia en
función de las cantidades de fenol en microgramos.
Cuadro Nº 9: Preparación de Estándares de fenol para Curva patrón del método de Sanders y Sager.
Reactivo Estándar 0 µg de fenol/mL
Estándar 2 µg de fenol/mL
Estándar 6 µg de fenol/mL
Estándar 10 µg de fenol/mL
Estándar 20 µg de fenol/mL
Solución Patrón respectiva (2,6,10, 20 µg de fenol/ mL)
------- 1.0 mL 1.0 mL 1.0 mL 1.0 mL
Agua 4.0 mL 3.0 mL 3.0 mL 3.0 mL 3.0 mL
Sustrato tampón 5.0 mL 5.0 mL 5.0 mL 5.0 mL 5.0 mL
Sulfato de Cobre 1.0 mL 1.0 mL 1.0 mL 1.0 mL 1.0 mL
Reactivo de Gibbs 0.1 mL 0.1 mL 0.1 mL 0.1 mL 0.1 mL
119
F. Cálculos.
Para calcular la actividad de la fosfatasa expresada en microgramos de fenol
por mL o de muestra, empleando la formula siguiente:
Actividad de la fosfatasa= 2.4 x P
Donde:
(P): Es la cifra convertida en microgramos de fenol obtenida con
referencia a la curva patrón.
2.4: Es factor de multiplicación.
La diferencia entre los resultados de dos determinaciones efectuadas
simultáneamente una después de la otra, por el mismo analista y sobre la
misma muestra, y en las mismas condiciones, no debe exceder de 2.0 µg de
fenol por mL de muestra.
120
3.15.1.7 Prueba con 4-aminoantipirina para determinar Fosfatasa alcalina.
(Método Cuantitativo). (55)
Aplicable a: Leche fluida, mantequilla, leche en polvo y crema.
A. Cristalería:
-Tubos de ensayo.
-Probetas morh graduada de 1.0 mL, 5.0 mL.
-Agitadores.
-Micropipeta con capacidad para 50.0 µL.
B. Equipo:
-Espectrofotómetro
-Termómetro
C. Materiales:
-Agitador de Vórtice.
-Baño de agua con termostato.
-Gradilla para tubos de ensayo.
D. Preparación de la muestra:
- Leche en polvo: reconstituir aproximadamente 1.0 g en 10.0 mL de agua.
(Mantener la temperatura por debajo de 35 ºC).
- Leche fluida: tal cual.
- Manteca: pesar aproximadamente 1.0 g de muestra, extraerla por debajo de la
superficie con una espátula o cuchillo limpio.
- Crema de leche: tal cual.
121
Si las muestras quedaran turbias, filtrar por papel filtro. La centrifugación no
da buenos resultados.
E. Reactivos:
-Solución sustrato de Fenilfosfato disódico (0.0014 M), en buffer de pH 10
conteniendo una solución de Aminometilpropanol (3 M) y solución 4-
aminoantipirina (0.029 M). Conservar en refrigeradora no más de 5 meses.
-Reactivo de color: Ferrocianuro de potasio (0.01 M). Estable durante 5
meses a temperatura ambiente y al abrigo de la luz.
-Estándar: Solución de fenol (2.0 µg/mL)
Pesar 0.002 g de fenol, disolver con agua libre de CO2 y llevar al aforo en
un frasco volumétrico de 1L.
F. Procedimiento:
Preincubar 0.5 mL de solución de sustrato unos 4 minutos a 37ºC.
Agregar luego, 50.0 µL de muestra, mezclar de ser posible en vortex e
incubar exactamente 10 min exactos (El tiempo y la temperatura de reacción
son críticos. Un minuto o 1 ºC en exceso o defecto pueden producir un error
de ±10 %). Realizar paralelamente el estándar y un blanco de reactivos.
Agregar 2.5 mL de reactivo de color y retirar los tubos del baño. Mezclar
inmediatamente de ser posible en vortex.
Medir la Absorbancia a (520 nm), dentro de los 30 min. Ajustar el cero del
espectrofotómetro con agua destilada. (Ver Anexo N º11)
122
Cuadro Nº 10: Adición de Reactivos en el Método de
4-aminoantipirina para Fosfatasa alcalina.
Reactivo Tubo blanco Tubo estándar Tubo muestra
Sustrato (mL) 0.5 mL 0.5 mL 0.5 mL
Muestra (µL) -------- ----------- 50.0 µL
Estándar de Fenol (µL) -------- 50.0 µL ----------
Agua destilada (µL) 50.0 µL ----------- ----------
Reactivo de color (mL) 2.5 mL 2.5 mL 2.5 mL
123
3.15.1.8 Método Fluorimétrico para Fosfatasa alcalina.
(Método Cuantitativo), (51)
Aplicable a: Leche y bebidas en base a leche.
El método fluorimétrico para la determinación de actividad de fosfatasa alcalina
en leche entera pasteurizada, leche semidescremada, leche descremada y
leches saborizadas. El método es aplicable a leche de vaca, oveja, cabra y a
bebidas en base a leche.
Cuando se usa el sustrato, la medición fluorimétrica de la actividad de la
fosfatasa alcalina, se realiza a 38ºC, durante un periodo de 3 min. Esto incluye
preincubación de sustrato y muestra, seguido de múltiples lecturas cinéticas de
la tasa de reacción. Este está disponible como un sistema de ensayo
Fluorophos® (kit) de Advanced Instruments Inc.
Este Sistema de ensayo contiene los reactivos necesarios para realizar las
pruebas, los reactivos y los instrumentos necesarios para el Sistema
Fluorophos®.
A. Cristalería:
-Celdas: De vidrio no fluorescente de 12 mm de diámetro y 75 mm de largo.
-Dispensador de volumen fijo: Capaz de suministrar 2.0 mL.
-Pipeta de desplazamiento positivo o desplazamiento de aire, de 0.075 mL de
capacidad.
-Pipeta 2.0 mL de capacidad.
-Frascos volumétricos de 100.0 mL de capacidad.
124
B. Equipo:
-Filtro Flourimétrico: Con porta celda termostáticamente controlado, capaz de
operar a 38ºC ± 1ºC y ópticas en ángulo recto, permitiendo un estimulo a una
longitud de onda de 440 nm y emisión entre 520 nm y 560 nm (por ejemplo,
instrumento Fluorophos®). Las mediciones debieran ser optimizadas de acuerdo
con las instrucciones de los fabricantes.
C. Materiales:
-Cubo incubador: Capaz de mantener una temperatura de 38ºC ± 1ºC,
apropiado para sostener las celdas.
-Mezclador de vórtice (vortex).
-Baño de agua, capaz de mantener una temperatura de 63 ºC ± 1ºC y 95ºC ±
1ºC.
-Parafilm u otra película adecuada de grado laboratorio.
D. Reactivos.
-Sustrato Fluorophos®: Este es un sustrato aromático de ester monofosfórico, no
fluorescente, 2’-[2 benzotiazolil]-6’-fosfato hidroxibenzotiazol (Fluorophos®).
Este está disponible en frascos que contienen 144.0 mg de sustrato
Fluorophos® en polvo.
-Solución sustrato tampón, solución tampón de dietanolamina (DEA): En frasco
de 240.0 mL con una concentración de 204.0 mol/L y un pH 10.0.
La solución sustrato tampón permanece estable durante dos años si se le
almacena en frasco cerrado, entre los 2ºC y 8ºC.
125
-Sustrato de trabajo: Consiste en la mezcla del contenido del frasco de solución
sustrato tamponado al contenido del frasco de sustrato Fluorophos®
previamente llevadas a la temperatura ambiente. Mezclar bien por inversión,
durante 3 minutos, empleando un frasco de vidrio ámbar para proteger la
solución de la luz.
Dejar que la solución formada permanezca a temperatura ambiente durante al
menos 30 minutos antes de usar.
Utilizar el ensayo análogo digital: A/D (ver pág.125) para probar la idoneidad del
sustrato de trabajo listo para usar.
El sustrato de trabajo permanece estable durante 60 días cuando se protege
de la luz y se almacena entre 2ºC y 8ºC; o durante 8 horas cuando se almacena
a 38ºC. No usar el sustrato de trabajo si se obtiene una lectura de 1200.
El volumen obtenido de sustrato de trabajo (240.0 mL) es suficiente para
aproximadamente, 115 ensayos.
- Soluciones de trabajo calibradoras, Fluoroyellow® [2’-(2-benzotiazolil]-6’-
hidroxibenzotiazol] en tampón DEA: Estas cuatro soluciones contiene una
concentración diferente de Fluoroyellow®, y permanecen estables durante 18
meses cuando se almacenan entre 2ºC y 8ºC.
Solución calibradora A: Contiene 0.0 µmol/L de Fluoroyellow®
Solución calibradora B: Contiene 0.01724 µmol/L de Fluoroyellow®.
Solución calibradora C: Contiene 0.03448 µmol/L de Fluoroyellow®.
126
Solución de control diaria de instrumento: Contiene 0.03448 µmol/L de
Fluoroyellow®.
E. Preparaciones.
Leche libre de fosfatasa alcalina.
Preparar leche libre de fosfatasa, colocando cuidadosamente la porción de
leche dentro de un tubo de ensayo o contenedor adecuado, asegurándose que
la leche no toque el borde o los costados del contenedor.
Colocar el tubo con la porción de leche en baño de agua a 95 ºC. Precalentar la
porción de leche a 95 ºC antes de iniciar el periodo de calentamiento de 5
minutos a esa temperatura. Controlar la temperatura utilizando un termómetro o
un sensor de sonda colocado en el centro del tubo o del contenedor. Cuando la
porción de leche alcance los 95 ºC, inmediatamente iniciar el periodo de
calentamiento de 5 min. Luego del periodo de calentamiento, enfriar
rápidamente el conjunto.
Ensayar la porción de leche así tratada para asegurarse que su actividad
fosfatasa alcalina es menor que 10.0 mU/L.
Preparación de la muestra de ensayo.
Mezclar cuidadosamente todas las muestras de ensayo antes de analizar.
Generalmente no es necesario precalentar las muestras de ensayo.
Muestras de ensayo pasteurizadas.
Usar muestras de ensayo pasteurizadas.
127
Diluciones de las muestras libres de Fosfatasa alcalina.
Preparar diluciones de las leches utilizando leche libre de fosfatasa alcalina, con
el propósito de llevar sus niveles de fosfatasa alcalina dentro de los rangos
analíticos del ensayo (< 2000 mU/L). Mezclar bien las soluciones diluidas.
F. Procedimiento.
Verificación de funcionamiento de los instrumentos.
Es importante verificar el funcionamiento de los instrumentos para derivar,
pérdidas de luz y estabilidad, antes de analizar muestras de ensayo. Al operar
el filtro Flourimétrico seguir los siguientes controles:
-Ensayo diario A/D (análogo-digital): utilizado para verificar el funcionamiento
apropiado del equipo, mediante medición de la exactitud del canal de
conversión A/D y monitoreado del canal A/D para deriva, sobre exposición o
temperatura.
-Ensayo diario de control de instrumento, utilizando la solución de control
diario del instrumento para monitorear cualquier deriva electrónica u óptica en el
fluorímetro.
Para el monitoreo diario de los parámetros del instrumento de precisión se
recomienda el uso de los controles externos positivos, negativos y normales.
G. Calibración.
Las curvas de calibración son generalmente estables. Sin embargo, se debe
recalibrar el instrumento que ha sido ya calibrado, cuando se instale
inicialmente el fluorímetro, cada vez que se realicen servicios de mantenimiento
128
que puedan afectar la calibración graduada, cuando los valores de ensayos de
control muestren resultados inaceptables o cada tres meses.
Si hay cambios en la curva de calibración, recalibrar el instrumento utilizando un
nuevo conjunto de soluciones calibradoras A, B y C. Establecer una curva de
calibración por cada tipo de producto a ser ensayado.
Mezcle las soluciones calibradas, A, B y C, mediante inversión cuidadosa antes
de usar. Transferir a seis celdas; previamente rotuladas utilizando la pipeta, 2.0
mL de solución calibradora A, solución calibradora B y solución calibradora C,
respectivamente, cada una en duplicado (6 celdas en total). Colocar las celdas
en el cubo incubador. Completar la calibración dentro de los 10 minutos
siguientes a la adición de la muestra de ensayo al calibrador.
Empezando con la solución calibradora A, realizar la siguiente rutina de
calibración: Limpiar la parte externa de cada celda con papel suave antes de
colocarla en el filtro fluorímetro. Cuando se use el instrumento Fluorophos®,
oprimir CALIB y seleccionar el menú ALP Dairy. Entrar en Menú y oprimir
ENTER cuando el producto a ser calibrado se muestre. Empezando con la
solución calibradora A, insertar esa solución en el fluorímetro y presionar
START. Cuando la medición esté terminada, medir la segunda solución
calibradora A, para establecer la relación de calibración en el instrumento.
Una vez que la calibración se complete, proceder a analizar las muestras de
ensayo.
129
H. Determinación.
Utilizando el dispensador fijo de volumen colocar 2.0 mL de sustrato de trabajo
dentro de una celda previamente rotulada. Colocar la celda en el cubo
incubador, regular a 38ºC y calentar durante 15 minutos.
Utilizando la pipeta agregar al sustrato 0.075 mL de la porción de ensayo bien
mezclada. Cubrir la celda con parafilm. Inmediatamente, mezclar durante 5
segundos los contenidos, utilizando el mezclador de vórtice, o por inversión
cuidadosa de la celda. Limpiar la parte exterior de la celda con papel suave y
colocarla en el filtro flourimétrico.
Oprimir el comando TEST, aparece ALP Dairy, luego oprimir ENTER. Buscar en
el menú y oprimir ENTER cuando se muestra el producto a ser analizado.
Luego oprimir el comando START para iniciar en el modo descendente,
mientras el sustrato y la muestra están siendo calentadas a 38ºC. Después de
los 60 segundos, el fluorímetro inicia la medición, mostrando la fluorescencia de
la muestra en unidades de fluorescencia (FLU). El conteo se inicia alrededor de
200 FLU y lentamente se incrementa por 2 minutos siguientes. Al final del
periodo de 3 minutos, el instrumento Fluorophos® realiza otra determinación.
Generalmente se obtiene entonces un resultado valido. Si aún así se obtiene
nuevamente una lectura inestable de error, se debe repetir la determinación
completa con una nueva muestra de ensayo.
130
I. Ensayos de Control.
Controles del sistema y del reactivo.
Ensayo de A/D.
Cuando se utilice el instrumento Fluorophos® realizar diariamente el ensayo
A/D, antes de iniciar los ensayos.
Colocar 2.0 mL de la solución de control diario del instrumento en una celda
rotulada. Colocar la celda en el cubo incubador a 38ºC, durante 10 minutos.
Acceder al ensayo A/D a través del menú SETUP. Oprimir el comando SETUP,
seleccionar el ítem ensayo A/D en el menú, oprimiendo < o >. Con el porta
celdas vacío, oprimir START. Permitir que la configuración aparezca en la
pantalla para estabilizar.
En la pantalla se debería leer 302 ± 4. Si la lectura está fuera de ese rango,
limpiar los filtros de estimulo y de emisión y repetir el ensayo de A/D.
Insertar una celda precalentada con la solución control en el porta celda. Cerrar
la tapa. Cuando la pantalla esté estable, registrar el valor mostrado, el que
debería ser 602 ± 12. Si está fuera de este rango, usar el destornillador
pequeño suministrado, para girar lentamente el tornillo del potenciómetro, en el
costado izquierdo del instrumento en sentido de las agujas del reloj o en sentido
inverso a las agujas del reloj, cuando sea necesario hasta leer 602 en la
pantalla.
El ensayo A/D se puede utilizar también para probar la condición de listo para
usar, del sustrato de trabajo. Un sustrato, recién hecho, sólo en la modalidad
131
A/D, generalmente da una lectura en pantalla de aproximadamente 650 FLU, la
cual se incrementa en el tiempo.
No utilizar el sustrato de trabajo cuando se obtenga una lectura en la pantalla
de mas de 1200 FLU.
Controles Positivo, Negativo y de PhosphaCheck-NTM.
Después de la calibración del canal usado para leche de vaca, analizar las tres
soluciones control (es decir, positivo, negativo y PhosphaCheck-NTM),
agregando 75.0 µL de cada solución de control a 2.0 mL de sustrato
precalentado. Realizar el ensayo ALP.
La lectura para el control negativo debe ser < 10 y para el control de
PhosphaCheck-NTM debe ser < 40.
Muestra de ensayo y controles instrumentales relacionados.
Ensayos de control negativo.
Incluir un ensayo de control negativo para cada grupo de muestras a analizar.
Calentar una muestra de ensayo para dejarla libre de fosfatasa alcalina. La
lectura del instrumento debe ser menor que 10.0 mU/L, indicando que no se ha
detectado actividad de fluorescencia. Si el valor excede de 10.0 mU/L repetir
los Controles Positivo, Negativo y de PhosphaCheck-NTM anteriormente
presentados.
132
Ensayo de control positivo.
Incluir uno o más ensayos de control positivo para cada grupo de muestras a
analizar. Preparar muestras en o cerca de los niveles de decisión utilizando
muestras de leche cruda diluida con leche libre de fosfatasa alcalina.
Ensayo de sustancias que interfieren.
Cuando se obtienen valores de ALP superiores a los esperados, agregar con
una pipeta, 0.075 mL de la porción de ensayo, a una celda con 2.0 mL de
solución calibradora A, La cual ha sido previamente calentada durante 10
minutos en el cubo incubador, regulado a 38ºC, y mezclar.
Colocar la celda conteniendo esta mezcla en el Instrumento Fluorophos® y
ensayar como en la Calibración. Si el valor obtenido excede 20.0 mU/L, se está
mostrando la presencia de una sustancia que interfiere. En este caso, repetir el
ensayo utilizando una muestra fresca.
Ensayo de control de fosfatasa alcalina microbiana estable al calor.
Agregar otra porción de ensayo a un tubo (2.0 mL). Colocar un termómetro o
una sonda termo sensora dentro del tubo y colocar el conjunto en el baño de
agua regulado a 63 ºC. Cuando la porción de ensayo alcance los 63ºC,
mantener a esa temperatura durante 30 minutos, luego enfriar rápidamente.
Determinar la actividad fosfatásica residual de acuerdo al método de
determinación mencionado. Cualquier actividad residual es debida a la
presencia de fosfatasa alcalina microbiana estable al calor.
133
J. Cálculos y expresión de resultados.
Relación de calibración.
Los resultados son calculados automáticamente por el Instrumento
Fluorophos®, mediante la construcción de algoritmo al interior del filtro
fluorímetro. Si los resultados se deben calcular manualmente proceder como
sigue:
Leer los valores de fluorescencia de la solución calibradora B y solución
calibradora C, leídas contra la solución calibradora A regulada a cero
Fluorescencia en el filtro fluorímetro.
Calcular la relación de calibración, K, utilizando la ecuación (1):
4
2 BC FFK
En que:
K = valor numérico de la relación de calibración de la curva de
calibración establecida;
FC = valor numérico de la fluorescencia obtenida por la medición de la
solución calibradora C, contrastada con la solución calibradora A,
regulada a cero fluorescencia;
FB = valor numérico de la fluorescencia obtenida por la medición de la
solución calibradora B, contrastada con la solución calibradora A,
regulada a cero fluorescencia.
134
Cálculo.
Calcular la actividad de la fosfatasa alcalina, AP, utilizando la ecuación (2):
fVK
CFA Bav
P
En que:
AP = valor numérico de la actividad de la fosfatasa alcalina de la
muestra de ensayo en miliunidades de actividad de enzima por litro;
Fav = valor numérico de la cantidad promedio de fluorescencia
producida por minuto, por la porción de ensayo, medida en contraste con
la solución calibradora A, ocurrida desde el inicio del segundo minuto
hasta el final del tercer minuto;
CB = concentración de Fluoroyellow® en la solución calibradora B, en
micromoles por 2.0 mL de calibrador;
f = factor de dilución (1× 106) en el caso de muestras pasteurizadas;
en el caso de muestras de ensayo de leche cruda f es igual a 1× 106 por
el factor de dilución ft de la muestra de ensayo (f = ft x 106);
V = valor numérico del volumen de muestra en mililitros.
Expresión de los resultados del ensayo.
Expresar los resultados del ensayo en la unidad entera más cercana de una
miliunidad.
135
Actividad de la fosfatasa alcalina, ALP: actividad de la fosfatasa alcalina
presente en el producto, determinado por el procedimiento.
La actividad de la fosfatasa alcalina se expresa como milésimos de unidad de
actividad de enzima por Litro (mU/L).
Esta unidad de actividad fosfatasa alcalina, es la cantidad de enzima fosfatasa
alcalina que cataliza la transformación de 1.0 µmol de sustrato, por minuto.
136
3.15.1.9 METODO PARA DETERMINAR REACTIVACION DE FOSFATASA
ALCALINA DEBIDO A TRATAMIENTOS (HTST) Y (UHT).
Método diferenciador para determinar fosfatasa alcalina reactivada en lácteos
tratados térmicamente con los métodos alta temperatura corto tiempo (HTST),
ultra pasteurización (UP) y temperatura ultra alta. Diferenciación entre fosfatasa
reactivada y fosfatasa residual.
(Método Cualitativo), AOAC, (12), (28), (29).
Aplicable a: Leche fluida y a queso.
A. Cristalería:
-Tubos de ensayo.
-Pipeta volumétrica de 1.0 mL y 5.0 mL.
-Agitadores de vidrio.
B. Equipo:
-Termómetro.
C. Materiales:
-Cocina eléctrica.
-Baño de agua con termostato.
-Baño de hielo.
D. Reactivos
1. Solución de Acetato de Magnesio: disolver 35.4 g de Mg (C2H3O2)2·4 H2O en
25.0 mL de agua. Calentar ligeramente para facilitar la disolución. Transferir
la solución a un frasco volumétrico de 100.0 mL, enjuagar varias veces al
137
recipiente desde donde se transfiere la solución con porciones de 5.0 mL de
agua y agregar los enjuagues al frasco volumétrico. Dejar enfriar la solución y
luego llevar a 100.0 mL. Esta solución contiene 40.1 mg de magnesio por
mililitro.
2. Control y diluyente: Colocar 10.0 mL de cada muestra a ensayar en baño de
agua a ebullición por un minuto después que la muestra alcance 95ºC.
Enfriar la muestra y usar una porción para las diluciones como se requiera,
para el control llevado a ebullición.
E. Procedimiento:
1. Colocar una alícuota de 5.0 mL de la muestra a analizar en un tubo de
ensayo con tapón de rosca (libre de fenol) y adicionar 0.1 mL de agua. A un
segundo tubo idéntico adicionar una alícuota de 5 ml de la misma muestra, y
agregar 0.1 mL de solución de acetato de magnesio con ayuda de una pipeta
Morh 0.1 mL, y agitar bien.
2. Incubar ambas alícuotas por 1 hora en baño de agua a 34 ºC, agitar las
muestras ocasionalmente mientras estén en el baño de agua.
3. Remover las muestras del baño de agua y enfriar en agua con hielo. Diluir
1.0 mL de la muestra conteniendo magnesio con 5.0 mL de la
correspondiente leche llevada a ebullición o el producto lácteo control
(dilución 1+5). (Ver Anexo Nº 12)
4. Usando el procedimiento para determinar Fosfatasa alcalina residual, seguir
cualquiera de los métodos anteriores desde su inicio (ya sea el método
138
espectrofotométrico modificado, el método de Cornell o el método de
Rutgers, método flourométrico), ensayar la actividad fosfatasa en la muestra
no diluida y sin magnesio y también la muestra diluida 1+5 adicionada con
magnesio.
Cuadro Nº 11: Adición de Reactivos en el tratamiento para
determinar fosfatasa reactivada.
Reactivo Tubo Negativo Tubo Positivo
Muestra 5.0 mL 5.0 mL
Agua 0.1 mL -------
Solución Acetato de Mg --------- 0.1 mL
Leche hervida --------- 5.0 mL
F. Interpretación: Si la dilución de la muestra conteniendo magnesio tiene una
igual o mayor actividad que la de la muestra sin diluir y sin magnesio, la
muestra se considerara que es negativa para fosfatasa residual e indicará que
hay reactivación de la enzima. Si la muestra diluida presenta menos actividad
que la muestra diluida, y si los resultados de la prueba para fosfatasa
convencional son positivos, la muestra es positiva para fosfatasa residual.
G. Precauciones:
Mantener los tubos con la muestra fríos hasta realizar el análisis de fosfatasa
alcalina residual posterior a este tratamiento.
Un resultado falso-positivo en la prueba de fosfatasa puede obtenerse cuando
la muestra contiene fosfatasa reactivada y se ha mantenido por periodos
mayores a 4 horas aproximadamente a 16 ºC o 2 horas a aproximadamente a
139
20 ºC. La reactivación de la fosfatasa en un producto sin refrigerar será
ensayada como fosfatasa residual.
Un resultado positivo puede ser obtenido con productos lácteos esterilizados
debido a la fosfatasa reactivada. Sin embargo, si el producto esterilizado se
mantiene a temperatura ambiente por periodos prolongados (2 horas a 20ºC) el
ensayo diferencial podría no ser aplicable. Para confirmar la presencia o
ausencia de fosfatasa alcalina, seguir el procedimiento para fosfatasa
microbiana (ver anexo Nº 4) y emplear controles apropiados. Si la prueba de
fosfatasa resulta positiva, esto podría indicar presencia de fosfatasa microbiana.
Entonces podría ser necesaria como último recurso una prueba microbiológica
para evaluar la calidad del producto.
H. Interpretación:
Si la muestra que fue diluida y adicionada con magnesio presenta una actividad
igual o mayor que la muestra no diluida y sin magnesio, la muestra se debe
considerar negativa para Fosfatasa alcalina residual e indica que la Fosfatasa
detectada originalmente es de origen reactivado.
Si la muestra diluida presenta menor actividad que la muestra sin diluir, se debe
considerar positiva para Fosfatasa alcalina residual siempre que en la prueba
original hubiese sido positiva.
Resultados falso positivos podrían obtenerse para fosfatasa alcalina residual si
las muestras reactivables se encontrasen a temperaturas mayores (-4ºC a -6ºC;
21ºC a 24ºC) por tiempo ≥ a 2 horas.
140
3.15.2 MÉTODOS PARA DETERMINAR LACTOPEROXIDASA EN LACTEOS.
3.15.2.1 Reacción de Dupoy. (Método Cualitativo).
Aplicable a: Leches Ultra pasteurizadas.
A. Cristalería:
-Tubos de ensayo
-Pipeta morh de 5.0 mL.
-Beaker 250.0 mL
-Agitadores de vidrio
B. Materiales:
-Gradilla de tubos de ensayo
-Goteros
C. Reactivos
-Tampón fosfato 0.05 M pH=7
-H2O2 0.04 M preparada recientemente.
-Guayacol 0.04 M
-Leche fresca (cruda) conteniendo lactoperoxidasa.
D. Procedimiento.
1. Adicionar 2.0 mL de leche en un tubo de ensayo y llevar a 100 ºC en baño
de agua durante al menos 10 min. Este servirá para control negativo.
2. Enumerar 3 tubos de ensayo y adicionar los reactivos en el orden y cantidad
(expresada en mL) indicada en el Cuadro Nº 12 (ya que el H2O2 y el
141
Guayacol deben ser mezclados en tampón fosfato 0.05 M, pH 7 previamente
a la adición de la muestra). Agitar todos los tubos antes y después de poner
la leche y observar el color desarrollado en cada tubo durante 10 minutos.
(Ver Anexo Nº 13)
Cuadro Nº 12: Adición de Reactivos en la Prueba de Dupoy.
Nº Tubo 1 Blanco
2 Muestra
3 Control negativo
Tampón Fosfato 3.0 mL 2.0 mL 2.0 mL
H2O2 0.04 M 1.0 mL 1.0 mL 1.0 mL
Guayacol 0.04 M 1.0 mL 1.0 mL 1.0 mL
Leche fresca --- 1.0 mL ---
Leche hervida --- ---- 1.0 mL
142
3.15.2.2 Método de Storch. (Método Cualitativo).
Aplicable a: Leches Ultra pasteurizadas.
A. Cristalería:
-Pipeta de morh 10.0 mL
-Tubos de ensayo
-Agitadores de vidrio
-Frascos volumétricos 100.0 mL
-Beaker 50.0 mL, 100.0 mL, 250.0 mL
B. Materiales:
-Goteros
-Cocina eléctrica
C. Reactivos:
-Solución ácida de peróxido de hidrógeno al 2% (diluida con agua destilada) y
agregar 0.1% de ácido sulfúrico concentrado.
-Solución de p-fenilendiamina al 2%: Pesar 2.0 g de p-fenilendiamina y preparar
la solución con 100.0 mL de agua destilada.
Muestra y Controles:
-Leche cruda: como control positivo de la prueba y rotular como: (Lc).
-Leche muestra a analizar: ultra pasteurizada o pasteurizada comercial y rotular
como: (Pr).
-Leche sobrecalentada: preparar en el laboratorio sobrecalentando la leche
arriba de los 77.8 ºC y rotular como:( Sc).
143
D. Determinación:
1. Colocar 10.0 mL de cada una de las muestras preparadas (homogénea) con
una pipeta en los respectivos tubos de ensayo rotulados Lc, Pr y Sc.
2. Adicionar a cada tubo, 2 gotas de la solución acida de peroxido de hidrógeno
al 0.2 % y mezclar.
3. Adicionara cada tubo, 2 gotas de la solución de p-fenilendiamina al 2 % y
mezclar.
4. La formación de un intenso color azul es indicativo de que la muestra
contiene lactoperoxidasa y por ende no ha sido calentada por encima de los
77.8ºC, mientras que si la muestra permanece blanca, ha sido
sobrecalentada. La validez de los resultados en los controles debe estar
acompañada por la coloración azul (positiva) en la leche cruda (Lc) y por la
ausencia de la coloración en la leche sobre calentada (Sc) preparada en el
laboratorio. (Ver Anexo Nº 14)
Cuadro Nº 13: Adición de Reactivos en la Prueba de Storch.
Reactivo Tubo Control Positivo Lc
Tubo Muestra Pr
Tubo Control Negativo
Sc
Muestra 10.0 mL 10.0 mL 10.0 mL
H2O2 0.2% 2 gotas (0.1 mL) 2 gotas (0.1 mL) 2 gotas (0.1 mL)
P-fenilendiamina 2 gotas (0.1 mL) 2 gotas (0.1 mL) 2 gotas (0.1 mL)
3.15.2.3 Método de Rothenfusser. (Método Cuantitativo) (48).
Aplicable a: Suero de leche ultra pasteurizada o pasteurizada.
A. Cristalería:
-Celdas de cuarzo.
-Micropipetas con capacidad para 50.0 µL, 250.0 µL.
-Pipetas morh graduada 5.0 mL.
B. Equipo:
-Espectrofotómetro.
-Agitador o mezclador de vórtice.
C. Materiales:
-Parafilm.
D. Reactivos
-Tampón Fosfato pH: 6.8
Disolver 35.61 g de Na2HPO4·2H2O y llevar con agua destilada en frasco
volumétrico de 1000.0 mL. Rotular como solución (a). Pesar 27.60 g de
NaH2PO4·H2O y llevar a un frasco volumétrico de 1000.0 mL con agua
destilada. Rotular como solución (b). Tomar 49.0 mL de la solución (a) y llevar a
un frasco volumétrico de 200 mL y adicionar 51 mL de la solución (b), luego
aforar con agua destilada.
-Reactivo de Rothenfusser: Se prepara mezclando las soluciones de
Parafenilendiamina y la solución de Guayacol, las cuales se preparan por
individual de la siguiente forma.
145
-Solución de Parafenilendiamina: Pesar 19.0 g de clorhidrato de
parafenilendiamina y disolver en 15.0 mL de agua destilada.
-Solución de Guayacol: Pesar 2.0 g de guayacol diluir en 135.0 mL de alcohol
etílico al 96 %. Conservar en frasco bien cerrado.
Mezclar ambas soluciones y conservar en refrigeración y en frasco ámbar.
-Solución de H2O2 al 1 %.
En un frasco volumétrico de 100 mL colocar 3 mL de H2O2 al 35% y aforar con
agua.
E. Procedimiento.
Colocar directamente en una celda adecuada 3.0 mL de tampón fosfato; 30.0
µL de suero; 250.0 µL de reactivo Rothenfusser y 50.0 µL de H2O2 al 1%. Agitar
dejar reposar durante 2 min.
Leer en el espectrofotómetro en términos de absorbancia a 540 nm contra un
blanco en el cual no se adiciona la muestra. (Ver Anexo Nº 15)
Cuadro Nº 14: Adición de Reactivos en el método de Rothenfusser.
Reactivo Celda Muestra Celda Blanco
Muestra suero 30.0 µL ------------
Tampón fosfato 3.0 mL 3.0 mL
Reactivo Rothenffuser 250.0 µL 250.0 µL
H2O2 1% 50.0 µL 50.0 µL
146
3.15.2.4 Método ABTS [Ácido 2,2- Azino-di (3-etil-benzotiazolin-6-
sulfónico)]. (Método Cuantitativo) (48).
Aplicable a: Suero de leche pasteurizada o ultra pasteurizada.
A. Cristalería:
-Tubos de ensayo.
-Micro pipetas con capacidad para 25.0 µL.
-Celdas de cuarzo.
B. Equipo:
-pHmetro.
-Agitador de vórtice.
C. Materiales:
-Papel parafilm.
D. Reactivos:
-Tampón acetato pH 4.4
Disolver 8.2 g de acetato de sodio en agua destilada, llevar a pH 4.4 con acido
acético al 10 % y aforar a 1000.0 mL en frasco volumétrico.
-Tampón fosfato pH 5.5
Disolver 13.61 g de KH2PO4 y llevar en frasco volumétrico a 1000.0 mL con
agua destilada. Rotular como solución (a). Luego pesar 22.82 g de
K2HPO4·3H2O y llevar en frasco volumétrico a 1000.0 mL con agua destilada.
Rotular como solución (b). Mezclar a 50.0 mL de la solución (a) agregar la
solución (b) hasta obtener pH 5.5.
147
-Soluciones ABTS 1M.
Disolver 55.0 mg de ABTS en tampón acetato pH 4.4 aforar a 100.0 mL disolver
55.0 mg de ABTS en tampón fosfato pH 5.5 y llevar a 100.0 mL.
-Solución H2O2 0.005 M.
En un frasco volumétrico de 100.0 mL adicionar 45.0 µL de peroxido de
hidrogeno al 35 % y aforar con agua destilada. La concentración de esta
solución es controlada a 240 nm contra agua destilada. La absorbancia debe
ser 0.22±0.01.
E. Procedimiento.
Colocar en un tubo de ensayo 5.0 mL de la solución sustrato de ABTS, agregar
25.0 µL de suero acido y agitar. Dividir en dos porciones de 2.5 mL cada una y
colocarlas en dos celdas, una de ellas se constituirá en el blanco. En la otra
adicionar 50.0 µL de H2O2 0.005 M, se mezcla y se mide la absorbancia a 413
nm cada minuto durante 5 minutos. (Ver Anexo Nº 16)
Cuadro Nº 15: Preparación de Reactivo ABTS /Muestra en el método ABTS.
Reactivo ABTS +Suero muestra
Sustrato ABTS 5.0 mL
Suero ácido 25.0 µL
Cuadro Nº 16: Adición de Reactivos en el método ABTS
Reactivo Celda Muestra Celda Blanco
Suero +ABTS 2.5 mL 2.5 mL
H2O2 0.005 M 50.0 µL -------------
148
F. Cálculos e Interpretación.
La actividad de la enzima se calcula por la fórmula:
025.04.32
0.5min// 413
DAmLUnidades
Donde:
DA413 : incremento de la absorbancia/ min.
5.0: volumen del sustrato (mL)
32.4: Coeficiente de extinción a las condiciones descritas
0.025: cantidad de muestra (mL)
CAPITULO IV
DISEÑO METODOLOGICO
150
4.0. DISEÑO METODOLOGICO
4.1. Tipo de estudio
El tipo de estudio que se realizó es de carácter Bibliográfico, enfocado a la
recopilación de Metodologías oficiales y no oficiales para la determinación de
Fosfatasa alcalina residual y para determinar Fosfatasa alcalina reactivada, así
como también para la determinación de Lactoperoxidasa en leches y quesos.
4.2. Investigación Bibliográfica.
Se visitaron diferentes bibliotecas educativas privadas y gubernamentales:
-Biblioteca “Dr. Benjamín Orozco” de la facultad de Química y Farmacia de La
Universidad de El Salvador.
-Biblioteca de la facultad de Ingeniería de La Universidad de El Salvador.
-Biblioteca de la facultad de Agronomía de La Universidad de El Salvador.
-Biblioteca Central de La Universidad de El Salvador.
-Centro de Documentación e Información en Salud de la OPS/OMS.
-Biblioteca de la Universidad Salvadoreña Alberto Masferrer. (USAM)
-Biblioteca de la Universidad Nueva San Salvador (UNSSA).
-Biblioteca de la Universidad Dr. José Matías Delgado.
-Biblioteca “B.P. Florentino Idoate. S. J.” de la Universidad Centroamericana
“José Simeón Cañas” (UCA).
-Ministerio de Salud Pública y Asistencia Social.
-Escuela Nacional de Agricultura.
-Ministerio de Agricultura y Ganadería.
151
-Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT).
4.3. Investigación de Campo
Se entrevistaron a diferentes profesionales cuyo trabajo está enfocado al control
de la calidad en productos alimenticios con el fin de conocer que metodologías
para determinar Fosfatasa alcalina residual, reactivada y Lactoperoxidasa, se
aplican en la actualidad en el país, en la verificación del tratamiento calorífico de
las leches procesadas y quesos. Esto se realizó a través de una encuesta
dirigida a los profesionales encargados de cada laboratorio, y posteriormente se
investigaron en las diferentes fuentes bibliografías los métodos que se pueden
implementar. Así también se hizo una encuesta a diferentes industrias
procesadoras de lácteos para conocer que análisis fisicoquímicos y
microbiológicos se realizan a los productos que elaboran.
Se visitaron los siguientes laboratorios:
-Laboratorio de Análisis del Ministerio de Salud Pública y Asistencia Social.
-Laboratorio de Diagnostico Veterinario y Control de Calidad del Ministerio de
Agricultura y Ganadería.
-Laboratorios de Fundación Salvadoreña para investigaciones del café.
(PROCAFE)
-Laboratorios del Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria (CENTA).
-Laboratorios Especializados en Control de Calidad (LECC).
-Laboratorios de Calidad Integral, de la Fundación Salvadoreña para el
Desarrollo Económico y Social. (FUSADES).
152
-Instituto de Investigaciones y Desarrollo Químico Biológico (IQB)
-Centro de Control de Calidad Industrial (CCCI).
-Laboratorios de Control de Calidad de Lactosa S.A. de CV.
-Laboratorios de Control de Calidad de Foremost S.A. de CV.
-Laboratorios de Control de Calidad de La Salud S.A. de CV.
-Laboratorios de Control de Calidad de las Industrias Lácteas EL Jobo S.A de
C.V.
153
4.3.1. Recolección de datos
Universidad de El Salvador
Facultad de Química y Farmacia
Departamento de Bromatología y Toxicología
Encuestas realizadas a Laboratorios de Control de Calidad de Alimentos
- 1. Nombre del Laboratorio: Laboratorio de Análisis del Ministerio de
Salud Pública y Asistencia Social.
- Profesional entrevistado: LIC. REINA JOVEL COSME DE RODRÍGUEZ.
- Cargo que desempeña: COORDINADORA DE ANÁLISIS DE
ALIMENTOS Y TOXICOLOGÍA.
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Fosfatasa en leche y quesos?:
- SI
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Lactoperoxidasa en leche y quesos?
- NO
- ¿Qué metodología se emplea para el análisis de Fosfatasa Alcalina en el
laboratorio? METODO DE SCHARER
- ¿Es el análisis de Fosfatasa alcalina solicitado con frecuencia en este
laboratorio? Si lo es, ¿Con cuánta frecuencia se realiza?
- NO
ESTA DEBE SER UNA PRUEBA DE LA QUE SE ENCARGUE
AGRICULTURA, YA QUE EN EL MSPAS, ESTAMOS DESIGNADOS
POR EL CÓDIGO DE SALUD PARA LA VIGILANCIA DE LA
154
INOCUIDAD DE LOS ALIMENTOS. PERO SON EL FABRICANTE, EL
CONACYT Y EL MINISTERIO DE ECONOMÍA QUIENES DEBEN
VELAR POR QUE LA CALIDAD DE FABRICACIÓN DEL PRODUCTO
SEA INOCUA. Y ESTA PRUEBA DEBE REALIZARSE EN PRODUCTO
AUN EN PROCESAMIENTO NO EN PRODUCTO TERMINADO.
- ¿Es el análisis de Lactoperoxidasa solicitado con frecuencia en este
laboratorio? Si lo es, ¿Con cuánta frecuencia se realiza?
- NO, Y NO SE REALIZA.
- ¿Qué ventajas presenta el método utilizado para el análisis químico de
Fosfatasa?
- NO TIENE SENTIDO REALIZARLO EN PRODUCTO TERMINADO Y
PUESTO EN ESTANTERÍA PARA SU EXPENDIO.
2. Nombre del Laboratorio: Laboratorio de Diagnostico Veterinario y
Control de Calidad del Ministerio de Agricultura y Ganadería.
- Profesional entrevistado: INGENIERO PARADA.
- Cargo que desempeña: JEFE DIRECTOR DE LA DIVISIÓN INOCUIDAD
DE ALIMENTOS
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Fosfatasa en leche y quesos?:
- SI
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Lactoperoxidasa en leche y quesos?
- NO
155
- ¿Qué metodología se emplea para el análisis de Fosfatasa Alcalina en el
laboratorio? METODO FLOURIMETRICO
- ¿Es el análisis de Fosfatasa alcalina solicitado con frecuencia en este
laboratorio? Si lo es, ¿Con cuánta frecuencia se realiza?
- SE REALIZA LA PRUEBA CUANDO LA NSO ASÍ LO INDICAN Y ESTO
DEPENDE DEL TIPO DE PRODUCTO A ANALIZAR, SE LE REALIZA O
NO SEGÚN LOS REQUERIMIENTOS DE CADA NORMA
SALVADOREÑA OBLIGATORIA. ESTE ANÁLISIS ES LLEVADO A
CABO MENSUALMENTE.
- LAS MUESTRAS TOMADAS DE LAS EMPRESAS LÁCTEAS POR
MEDIO DE LOS INSPECTORES DEL MINISTERIO DE MANERA
ALEATORIA, SON LLEVADAS A CABO MEDIANTE UN MUESTREO
PROGRAMADO ANUALMENTE PARA DARLE COBERTURA AL
NÚMERO DE EMPRESAS LÁCTEAS DEL PAÍS. LAS PRUEBAS QUE
GENERALMENTE SE LE REALIZAN A LOS PRODUCTOS LÁCTEOS
EN ESTE LABORATORIO SON:
- PRUEBA DEL ANILLO DE VAN (BRUCELOSIS), PORCENTAJE DE
GRASA, AGUADO, PUNTO CRIOSCÓPICO, ANÁLISIS
MICROBIOLÓGICOS: COLIFORMES FECALES, ESTAFILOCOCO E.
COLI, RECUENTO TOTAL.
- LOS LÁCTEOS QUE SE ELABORAN ARTESANALMENTE Y SE
EXPENDE EN LOS MERCADOS NO SON MUESTREADOS POR ESTE
156
LABORATORIO DEL MINISTERIO DE AGRICULTURA Y GANADERÍA
SINO QUE DE ESTO SE ENCARGA EL LABORATORIO DEL
MINISTERIO DE SALUD PUBLICA Y ASISTENCIA SOCIAL.
- EL MAG BRINDA A ESTOS PRODUCTORES ARTESANALES EL
ACOMPAÑAMIENTO EN ASESORÍA Y ASISTENCIA TÉCNICA EN
BUENAS PRACTICAS DE PRODUCCIÓN.
- ¿Es el análisis de Lactoperoxidasa solicitado con frecuencia en este
laboratorio? Si lo es, ¿con cuánta frecuencia se realiza?
- NO, Y NO SE REALIZA.
- ¿Qué ventajas presenta el método utilizado para el análisis químico de
Fosfatasa? EL MÉTODO FLOURIMÉTRICO CON EL CUAL CUENTA EL
LABORATORIO DEL MAG CONSISTE EN UN KIT DE REACTIVOS Y
EQUIPO COMPLEMENTARIO CON EL CUAL SE ANALIZA LA
EFICIENCIA DE PASTEURIZACIÓN, A LAS MUESTRAS QUE
REQUIERAN LA PRUEBA.
3. Nombre del Laboratorio: Laboratorios de Calidad Integral FUSADES
- Profesional entrevistado: LIC. ANA MIRIAN UMAÑA.
- Cargo que desempeña: TÉCNICO ANALISTA.
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Fosfatasa en leche y quesos?:
- Si
157
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Lactoperoxidasa en leche y quesos?
- No
- ¿Qué metodología se emplea para el análisis de Fosfatasa Alcalina en el
laboratorio? MÉTODO DE SCHARER.
- ¿Es el análisis de Fosfatasa Alcalina solicitado con frecuencia en este
laboratorio? Si lo es, ¿Con cuánta frecuencia se realiza?
- NO SE SOLICITA CON FRECUENCIA.
- ¿Es el análisis de Lactoperoxidasa solicitado con frecuencia en este
laboratorio? Si lo es, ¿Con cuánta frecuencia se realiza?
- NO SE REALIZA
¿Qué ventajas presenta el método utilizado para el análisis químico de
Fosfatasa? LA PRUEBA PUEDE REALIZARSE EL MISMO DÍA Y ES
BASTANTE CONFIABLE.
4. Nombre del Laboratorio: Laboratorios Especializados en Control de
Calidad (LECC).
- Profesional entrevistado: DRA. ELIZABETH VANEGAS DE SALAZAR.
- Cargo que desempeña: DIRECTORA GENERAL.
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Fosfatasa en leche y quesos?:
- SI
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Lactoperoxidasa en leche y quesos?
- NO
158
- ¿Qué metodología se emplea para el análisis de Fosfatasa Alcalina en el
laboratorio? METODO DE SCHARER
- ¿Es el análisis de Fosfatasa alcalina solicitado con frecuencia en este
laboratorio? Si lo es, ¿Con cuánta frecuencia se realiza?
- NO
- NO ES MUY SOLICITADO.
- ¿Es el análisis de Lactoperoxidasa solicitado con frecuencia en este
laboratorio? Si lo es, ¿Con cuánta frecuencia se realiza?
- NO
5. Nombre del Laboratorio: Instituto de Investigaciones y Desarrollo
Químico Biológico (IQB)
- Profesional entrevistado: LIC. MARIO GONZÁLEZ
- Cargo que desempeña: DIRECTOR TÉCNICO DEL LABORATORIO.
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Fosfatasa en leche y quesos?:
- NO
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Lactoperoxidasa en leche y quesos?
- NO
- NO SE REALIZAN ESTOS ANÁLISIS PUES NO SE CUENTA CON
LABORATORIO DE ANÁLISIS BROMATOLÓGICO Y SE ESPECIALIZAN
MÁS EN EL ÁREA MICROBIOLÓGICA.
159
6. Nombre del Laboratorio: Centro de Control de Calidad Industrial
(CCCI).
- Profesional entrevistado: LIC. LETICIA GIRÓN
- Cargo que desempeña: DIRECTORA DE CALIDAD.
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Fosfatasa en leche y quesos?:
- NO
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Lactoperoxidasa en leche y quesos?
- NO.
- EL LABORATORIO SE ESPECIALIZA EN EL ÁREA DE
MICROBIOLOGÍA.
7. Nombre del Laboratorio: Laboratorios de Centro Nacional de
Tecnología Agropecuaria (CENTA).
- Profesional entrevistado: LIC. LUIS REYES VALIENTE.
- Cargo que desempeña: ANÁLISIS FÍSICO QUÍMICO
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Fosfatasa en leche y quesos?:
- NO
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Lactoperoxidasa en leche y quesos?
- NO. SOLO SE REALIZAN ANÁLISIS DE MATERIAS INORGÁNICAS EN
SUELOS.
160
8. Nombre del Laboratorio: Laboratorios de Fundación Salvadoreña para
investigaciones del café (PROCAFE).
- Profesional entrevistado: LIC. REYNA FUNES DE CRUZ.
- Cargo que desempeña: ENCARGADA DE ANÁLISIS FÍSICO QUÍMICO.
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Fosfatasa en leche y quesos?:
- NO
- ¿Realiza el Laboratorio análisis de Lactoperoxidasa en leche y quesos?
- NO
- SOLO SE REALIZAN ANÁLISIS DE MATERIA ORGÁNICA EN
VEGETALES.
161
Universidad de El Salvador
Facultad de Química y Farmacia
Departamento de Bromatología y Toxicología
Encuestas realizadas a Industrias Productoras de Lácteos
1. Nombre de la Empresa Láctea: LACTOSA S.A. DE CV.
- Nombre del Profesional entrevistado: LICDA. HERMINIA DE LUNA.
- Cargo que desempeña: JEFE DE CONTROL DE CALIDAD DE
LACTOSA.
- ¿Qué pruebas y análisis químicos biológicos se le realizan a la leche en
procesamiento y como producto, como parte del aseguramiento de la
calidad? REDUCTASA, ACIDEZ, PUNTO CRIOSCOPICO, PH,
SÓLIDOS TOTALES, PORCENTAJE DE GRASA; DEPENDIENDO SI
ES LECHE FLUIDA O PROCESADA, SE REALIZAN DIFERENTES
PRUEBAS FÍSICO QUÍMICAS.
- ¿Se realizan a las leches algún análisis para determinar Fosfatasa
alcalina o Lactoperoxidasa? ¿Por que? NO, PORQUE LO REALIZA EL
MAG.
- ¿Con que frecuencia se realizan controles de calidad al proceso de
pasteurización o de esterilización de la leche? CADA MES, POR EL
MAG.
162
- ¿Qué metodología de análisis químico emplean para garantizar la
eficacia del proceso térmico en las leches? PRUEBAS
MICROBIOLÓGICAS.
2. Nombre de la Empresa Láctea: INDUSTRIAS LÁCTEAS EL JOBO
- Nombre del Profesional entrevistado: ING. MORENA GUEVARA
- Cargo que desempeña: TÉCNICO DE CONTROL DE CALIDAD.
- ¿Qué pruebas y análisis químicos biológicos se le realizan a la leche en
procesamiento y como producto, como parte del aseguramiento de la
calidad? ACIDEZ TITULABLE, PORCENTAJE DE GRASA,
REDUCTASA, Y PRUEBAS MICROBIOLÓGICAS, DEPENDIENDO DEL
PRODUCTO.
- ¿Se realizan a las leches algún análisis para determinar Fosfatasa
alcalina o Lactoperoxidasa? ¿Por que? NO. LAS PRUEBAS DE
PASTEURIZACIÓN LAS REALIZA EL MAG.
- ¿Con que frecuencia se realizan controles de calidad al proceso de
pasteurización o de esterilización de la leche? MES A MES.
- ¿Qué metodología de análisis químico emplean para garantizar la
eficacia del proceso térmico en las leches? EN PLANTA: PRUEBAS
MICROBIOLÓGICAS.
163
3. Nombre de la Empresa Láctea: LA SALUD S.A. DE CV.
- Nombre del Profesional entrevistado: ING. GUILLERMO BARAHONA.
- Cargo que desempeña: JEFE DE CONTROL DE CALIDAD DE LA
SALUD.
- ¿Qué pruebas y análisis químicos biológicos se le realizan a la leche en
procesamiento y como producto, como parte del aseguramiento de la
calidad?
ACIDEZ, AGUADO (PUNTO CRIOSCÓPICO), PH, SÓLIDOS TOTALES,
PORCENTAJE DE GRASA; REDUCTASA.
- ¿Se realizan a las leches algún análisis para determinar Fosfatasa
alcalina o Lactoperoxidasa? ¿Por que?
NO EN LA PLANTA, PERO SI SE LE REALIZA A TRAVÉS DEL MAG.
- ¿Con que frecuencia se realizan controles de calidad al proceso de
pasteurización o de esterilización de la leche?
CADA MES, MUESTREADO POR LOS INSPECTORES DEL MAG.
- ¿Qué metodología de análisis químico emplean para garantizar la
eficacia del proceso térmico en las leches?
PRUEBAS MICROBIOLÓGICAS.
164
4. Nombre de la Empresa Láctea: FOREMOST S.A. DE CV.
- Nombre del Profesional entrevistado: ING. GUTIÉRREZ.
- Cargo que desempeña: JEFE DE CONTROL DE CALIDAD DE
FOREMOST.
- ¿Qué pruebas y análisis químicos biológicos se le realizan a la leche en
procesamiento y como producto, como parte del aseguramiento de la
calidad? PH, SÓLIDOS TOTALES, PORCENTAJE DE GRASA; ACIDEZ,
REDUCTASA, ACIDEZ, PUNTO CRIOSCOPICO.
- ¿Se realizan a las leches algún análisis para determinar Fosfatasa
alcalina o Lactoperoxidasa? ¿Por que?
- SI EL MAG, LO REALIZA.
- ¿Con que frecuencia se realizan controles de calidad al proceso de
pasteurización o de esterilización de la leche? CADA MES, EL
MINISTERIO MUESTREA LOS PRODUCTOS PARA ANALIZARLOS.
- ¿Qué metodología de análisis químico emplean para garantizar la
eficacia del proceso térmico en las leches?
- ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO.
165
4.3.2. Análisis de Datos.
En el país, la entidad encargada de verificar la pasteurización en leches
industrializadas es el MAG a través del Laboratorio de Diagnostico
Veterinario y Control de Calidad empleando el Método Fluorimétrico para
Fosfatasa Alcalina Residual. Dicho método es aplicable a muestras de la
planta procesadora, y no para muestras de producto en el mercado como
lo menciona la responsable del Laboratorio de Análisis del MSPAS. No se
realizan pruebas para Lactoperoxidasa para Leches UHT, ya que la
Norma Obligatoria Salvadoreña no lo contempla.
Las leches crudas y los productos lácteos elaborados artesanalmente, no
son analizados por estas entidades, sin embargo, el MAG brinda asesoría
de acompañamiento a estos productores y el MSPAS es designado,
según el Código de Salud a la vigilancia de la inocuidad de los alimentos.
Los productores industrializados no realizan pruebas internas en planta
para verificar los procesos de pasteurización o ultra pasteurización sea
eficiente, dejándolo a los Inspectores Sanitarios del MSPAS.
CAPITULO V
RESULTADOS
167
5.0 RESULTADOS
- En el país los métodos para la comprobación del procesamiento térmico
efectivo en la leche y queso, son únicamente aquellos en el que se determina la
presencia de la enzima fosfatasa alcalina residual sin diferenciar la fosfatasa
alcalina reactivada. Esto a través de dos métodos: el método rápido de Scharer
y el método flourimétrico.
- En el país se comprueba la efectividad de los procesos térmicos en los lácteos
a temperaturas ultra altas a través de los análisis microbiológicos y no se
realizan análisis para determinar lactoperoxidasa ni se verifica el
sobrecalentamiento.
- Se presentan nueve métodos de análisis químicos más empleados según la
bibliografía, para determinar Fosfatasa alcalina láctea tanto residual como
reactivada y cuatro métodos para determinar Lactoperoxidasa en lácteos.
Métodos para determinar Fosfatasa alcalina:
1. Prueba rápida para Fosfatasa por Método de Scharer.
2. Método Espectrofotométrico modificado
3. Método de Cornell
4. Método de Rutgers
168
5. Método de Aschaffenburg y Mullen
6. Método de Sanders y Sager Modificado
7. Prueba con 4-aminofenazona
8. Método Fluorimétrico
9. Método para determinar Fosfatasa alcalina reactivada
Métodos para Determinar Lactoperoxidasa:
1. Reacción de Dupoy
2. Método de Storch
3. Método de Rothenfusser
4. Método ABTS [Acido 2,2’-azino- bis(3-etil-benzotiazolin) 6-sulfónico]
- El actual método de análisis para Fosfatasa alcalina empleado por el
Laboratorio del Ministerio de Agricultura y Ganadería, es el Método
Flourimétrico, que únicamente se aplica para leches pasteurizadas y cabe
mencionar que es para Fosfatasa alcalina residual.
- Las metodologías de análisis para fosfatasa alcalina residual y reactivada se
basan en la actividad de la enzima que hidroliza al grupo hidroxilo de los
esteres (sustratos).
169
- Las metodologías para la determinación de Lactoperoxidasa se fundamentan
en la transferencia de oxigeno del peróxido de hidrógeno y así oxidar
compuestos con estructuras aromáticas.
- En los métodos tanto para la determinación de Fosfatasa alcalina láctea
residual y reactivada como para Lactoperoxidasa, se presenta metodología
cualitativa y cuantitativa. Algunas de dichas reacciones pueden evidenciarse
espectroscópicamente.
- Algunos de los reactivos que se emplean para determinar Fosfatasa alcalina
residual, reactivada y Lactoperoxidasa como: la p-fenilendiamina,
dietanolamina, butanol, metanol, p- nitrofenol, fenol e hidróxido de sodio son
sustancias nocivas, tóxicas a la salud o son poco amigables con el medio
ambiente.
CAPITULO VI
DISCUSION DE RESULTADOS
171
6.0 DISCUSIÓN DE RESULTADOS
- La necesidad de tener la certeza y seguridad de que los procesos de
elaboración de un producto alimenticio se lleven a cabo con eficiencia e
inocuidad, es vital no sólo para el consumidor sino también para los
productores que deben competir cada vez más en mercados
internacionales con altos estándares de calidad. Debido a lo anterior, los
estudios de enzimas como la Fosfatasa alcalina residual, reactivada y la
Lactoperoxidasa deberían ser implementados en el país a través de
análisis para verificar la efectividad de los procesamientos caloríficos en
las leches pasteurizadas que están en estantería y las sometidas a
procesamiento UHT, las cuales últimamente han aumentado su
presencia en el mercado nacional.
- Las metodologías que a nivel nacional emplean los laboratorios
especializados en el control de calidad de alimentos para determinar la
efectividad de los procesos térmicos a los que se someten las leches se
basan en la determinación de la enzima Fosfatasa alcalina residual
llevada a cabo en planta, no para producto terminado.
172
- El método flourimétrico que en la actualidad el laboratorio del MAG
emplea, es para verificar la pasteurización de lácteos muestreados en la
planta procesadora y determinar Fosfatasa alcalina residual.
- Este método es para verificar pasteurización y no para verificar la
efectividad de tratamientos como los procesos HTST y UHT que cada
vez más se emplean en las industrias lácteas del país, y los métodos de
análisis para Fosfatasa alcalina que se emplean en el país no funcionan
para leches en anaquel dentro del mercado que han sido pasteurizadas
con dichos procesos, debido a que la enzima tiende a reactivarse.
- Las metodologías presentadas tanto para el análisis de Fosfatasa
alcalina residual, reactivada y lactoperoxidasa presentan algunas
ventajas al implementarlas, por su procedimiento sencillo y rápido si se
dispone de todos los reactivos y sustratos que se requieren en estas
metodologías, pero debe considerarse que algunos de los reactivos que
se emplean pueden representar peligro a la salud y resultar no muy
amigables con el ambiente.
- Es necesario considerar la siguiente tabla de aplicación de métodos en
todo estudio de mercado, solo en ese caso y no para muestreos en
planta procesadora pues resultaría innecesario.
173
APLICACIÓN DE METODOS
Muestra Prueba Fosfatasa alcalina Residual
Prueba Fosfatasa alcalina
reactivada
Interpretación Acción a tomar por el MSPAS
Leche con pasteurización
deficiente obtenida en
anaquel
+ - Presencia de
fosfatasa residual
Llamar la atención y
amerita sanción
Leche con pasteurización
eficiente obtenida en
anaquel
+ + Presencia de
fosfatasa reactivada
Ninguna. Producto no de
baja calidad pero
sobrecalentada
Leche con pasteurización
deficiente obtenida en
planta procesadora
+ - Presencia de
fosfatasa residual
Llamar la atención y
amerita sanción
- La toma de Muestras es llevada a cabo por los Inspectores sanitarios del
IPOA los cuales toman las muestras de la planta procesadora de
manera aleatoria, y entregan las muestras en el Laboratorio de
Diagnóstico Veterinario y Control de Calidad del Ministerio de Agricultura
y Ganadería.
- La entidad encargada de regular y normar los procesos de producción de
alimentos es el CONACYT y La Cámara de Comercio e Industria de El
Salvador.
174
- El ente facultado para hacer cumplir las normativas y sancionar aquellos
casos en los que se incumplen las normas establecidas por el CONACYT
es el MSPAS, designado así por el Código de Salud.
- Las pruebas de Fosfatasa alcalina residual son aplicables para conocer
si un productor procesa la leche a una temperatura menor a la de una
pasteurización normal. Su producto resultará positivo a la prueba de
Fosfatasa alcalina residual si ha existido un mal procesamiento térmico.
- La prueba para determinar Fosfatasa alcalina reactivada puede aplicarse
para conocer si el productor procesa la leche a una temperatura mayor a
la de una pasteurización normal. Si este emplea un tipo de
pasteurización HTST su producto resulta positivo a la prueba de
Fosfatasa alcalina residual debido a una reactivación de la enzima. El
método para Fosfatasa alcalina reactivada, nos asegura que la leche no
ha sido mal pasteurizada y nos permite aclarar malas interpretaciones.
- En el caso que un productor procesó la leche a una temperatura Ultra
alta (proceso UHT), no resulta útil aplicar la prueba de Fosfatasa alcalina
residual debido a que la enzima se reactiva ante dicho procesamiento.
175
- Si se aplican estas metodologías para Fosfatasa alcalina residual y
reactivada a nivel de planta procesadora únicamente se encontrará
presente la Fosfatasa alcalina residual.
- La verificación de la eficiencia de las pasteurizaciones HTST y Ultra
pasteurizaciones, no está siendo determinada a través de una prueba
específica como las pruebas para determinar Lactoperoxidasa.
- En la actualidad los procesos UHT son respaldados con los resultados
de análisis microbiológicos realizados a las leches. Por lo que es
necesario implementar este tipo de pruebas específicas.
- Las pruebas de Lactoperoxidasa, son determinantes para verificar que
los procesos térmicos a más de 82ºC son efectivos, así como también
son importantes para conocer si la leche ha sido sobrecalentada.
- El método de Trinder para Lactoperoxidasa (Ver Anexo Nº 17) esta dado
para glucosa y sacarosa en alimentos como los jugos de frutas, así
también el método se presenta para la determinación de glucosa en
fluidos biológicos, y no específicamente para leche. Este método podría
ser estandarizado en futuros estudios para lácteos.
CAPITULO VII
CONCLUSIONES
177
7.0 CONCLUSIONES
1. En el país no se realizan análisis de verificación para Fosfatasa alcalina
reactivada y tampoco se estudia la Lactoperoxidasa en leches UHT, la cual
a nivel internacional es considerada para el análisis de ese tipo de leches.
2. En el país se determinar la eficacia del calentamiento UHT en leches, a
través de pruebas microbiológicas donde no se considera el emplear la
enzima específica Lactoperoxidasa.
3. Las leches con procesos de pasteurización HTST o UHT, presentan el
inconveniente de la reactivación de la enzima Fosfatasa, lo cual siempre
puede generar incertidumbre al interpretar los resultados obtenidos en los
análisis para Fosfatasa alcalina residual.
4. Los métodos de análisis empleados actualmente en el país para verificar la
existencia de Fosfatasa alcalina láctea, no especifican la derivación de la
enzima, si ésta es residual o reactivada.
5. La enzima Lactoperoxidasa no está considerada como parte de los análisis
requeridos en la Norma Obligatoria Salvadoreña NSO 67.01.15:07
Productos Lácteos. Leches pasteurizadas y ultrapasteurizadas con sabor.
Especificaciones.
178
6. El método Flourimétrico actualmente empleado en los laboratorios
gubernamentales es un método muy adecuado, así también la prueba de
4- Aminoantipirina para determinar la enzima Fosfatasa alcalina residual.
7. Para estudios en mercado el emplear cualquiera de estos dos métodos
Flourimétrico o 4- Aminoantipirina con el método de determinación con
Fosfatasa alcalina reactivada permitiría descartar toda posibilidad de
reactivación de la enzima y verificar el proceso térmico de las leches
pasteurizadas con procesos HTST y UHT.
8. El método de Trinder, y el método con la 4- Aminoantipirina emplean en
común la 4- Aminoantipirina y el fenol, lo cual podría ser ventajoso, ya que
con un mismo reactivo podrían determinarse ambas enzimas.
9. Pese a los peligros que algunos métodos conllevan, la implementación de
un método apropiado sigue siendo de gran importancia, y un requerimiento
dentro de los estándares de calidad para el comercio nacional e
internacional y sugerido en los libros oficiales.
179
CAPITULO VIII
RECOMENDACIONES
180
8.0 RECOMENDACIONES
1. Que en los métodos que se empleen para verificar procesos de
pasteurización y ultra pasteurización se considere el emplear metodologías
para Fosfatasa alcalina reactivada y Lactoperoxidasa, presentadas en esta
investigación.
2. Que el Ministerio de Agricultura y Ganadería y el Ministerio de Salud
Pública y Asistencia Social, encargados de la vigilancia sanitaria de
productos alimenticios como los lácteos, implementen metodologías de
análisis químico-instrumental que permitan para muestras en estantería la
comprobación de un procesamiento de pasteurización o de ultra
pasteurización eficiente.
3. Que se implemente la prueba cualitativa de Dupoy para la identificar la
enzima Lactoperoxidasa en leches con pasteurización HTST y las leches
UHT, que permita verificar la efectividad del proceso y garantice que la
leche no ha sido expuesta a sobrecalentamiento.
4. Que en los laboratorios gubernamentales pueda emplearse el método
cuantitativo y espectrofotométrico: ABTS para la determinación de la
enzima Lactoperoxidasa en leches con procesamiento UHT, que permita
181
verificar la efectividad del proceso y garantice que la leche no ha sido
expuesta a sobrecalentamiento.
5. Que la Norma Obligatoria Salvadoreña NSO 67.01.15:07 Productos
Lácteos. Leches pasteurizadas y ultrapasteurizadas con sabor.
Especificaciones; considere el incluir las pruebas para determinar
Lactoperoxidasa en leches UHT.
6. Que la Norma Obligatoria Salvadoreña NSO 67.01.15:07 Productos
Lácteos. Leches pasteurizadas y ultrapasteurizadas con sabor.
Especificaciones; considere el incluir la prueba para determinar Fosfatasa
alcalina láctea reactivada, para estudios en el comercio.
7. Que en futuras investigaciones se retome el método de 4- Aminoantipirina
para determinar Fosfatasa alcalina y se verifique si este puede ser
empleado también con ciertas variantes a la determinación de la enzima
Lactoperoxidasa, ya que la 4- Aminoantipirina no está catalogada como
sustancia peligrosa a la salud, reduciendo así el manejo de sustancias con
alta toxicidad y cancerígenos.
8. Dar a conocer este trabajo de graduación a las Instituciones relacionadas.
182
9. Aplicar métodos para fosfatasa alcalina residual y reactivada en todo
estudio de mercado que se realice para evitar falsos- positivos en los
resultados.
10. Que la Norma Obligatoria Salvadoreña NSO 67.01.15:07 Productos
Lácteos. Leches pasteurizadas y ultrapasteurizadas con sabor.
Especificaciones; sea retomada para una revisión, enfocada a la
implementación de algunos de los métodos para Lactoperoxidasa.
11. Que los métodos amigables con el ambiente y no cancerígenos,
cuantitativos y cualitativos recomendados para Fosfatasa alcalina son: el
Método Flourimétrico, el método con 4- Aminoantipirina y el Método de
Rutgers.
12. Que los métodos amigables con el ambiente y no cancerígenos,
cuantitativos y cualitativos recomendados para Lactoperoxidasa: el Método
ABTS, el Método de Trinder y la Prueba de Dupoy.
13. A los proveedores de reactivos se recomienda realizar esfuerzos en la
importación de reactivos para las determinaciones de Fosfatasa alcalina y
Lactoperoxidasa que sean amigables con el ambiente, como los
empleados en los métodos antes recomendados.
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GLOSARIO
Ácido glutámico: Es uno de los veinte aminoácidos esenciales que forman
parte de las proteínas. Desempeña un papel central en relación con los
procesos de transaminación y en la síntesis de distintos aminoácidos que
necesitan la formación previa de este ácido, como es el caso de la prolina,
hidroxiprolina, ornitina y arginina.(55)
Ácido siálico: o ácido N-acetilneuramínico es un monosacárido ácido derivado
del ácido neuramínico (un compuesto base de 9 átomos de carbono) mediante
acetilación. Es un componente importante de las glucoproteínas. (55)
Actividad lipasa: la actividad de la enzima lipasa de catalizar la hidrólisis de
triacilglicerol a glicerol. (55)
Apoenzima: Es la parte proteica de una enzima, desprovista de los cofactores
o coenzimas que puedan ser necesarios para que la enzima sea
funcionalmente activa. La apoenzima es catalíticamente inactiva; cuando se le
une la coenzima o cofactor adecuados, constituye la holoenzima. (10)
Brucelosis: Enfermedad infecciosa producida por bacterias del género Brucella
y transmitida al hombre por los animales domésticos. (10)
Cadaverina: (C5H14N2), también conocida como 1,5-diaminopentano,
pentametilenodiamina, pentano-1,5-diamina es una diamina biogénica que se
obtiene por la descomposición del aminoácido lisina. Se encuentra
principalmente en la materia orgánica muerta, y es responsable en parte del
fuerte olor a putrefacción. (55)
Calostro: Primera leche que da la hembra después de parida. Esta leche es de
color amarillo rojizo y tiene olor fuerte y sabor amargo. (11)
Camembert: Queso de origen francés, de pasta blanda, untuosa y suave. (11)
Caseína: Proteína de la leche, rica en fósforo, que, junto con otros
componentes de ella, forma la cuajada que se emplea para fabricar queso. (10)
Catálisis: Transformación química motivada por sustancias que no se alteran
en el curso de la reacción. (10)
Centro activo: o sitio activo es el área de su estructura terciaria de una enzima
y en ella ocurren las actividades o reacciones específicas con las moléculas de
sustrato. (55)
Cisteína: La cisteína es un aminoácido no esencial, sulfurado, que puede
oxidarse dando el dímero cistina. Se sintetiza a partir de la metionina. Su
nombre sistemático es: Ácido 2-amino-3-mercaptopropiónico. (55)
Choque térmico: proceso que se genera en organismos unicelulares como
pluricelulares, cuando se encuentran en un medio ambiente o en condiciones
que le provoca cualquier tipo de estrés. (55)
Cofactor: Son partes no proteicas de una enzima y ayudan a regular la
actividad enzimática y según su naturaleza química pueden ser cationes
metálicos o coenzimas; moléculas orgánicas complejas. (10)
Coliformes: grupo de especies bacterianas entéricas que tienen ciertas
características bioquímicas en común e importancia relevante como indicadores
de contaminación del agua y los alimentos. (10)
Coloide: Dispersión de partículas o macromoléculas en un medio continúo. (11)
Corrosivo: sustancia gaseosa, líquida o sólida que causa daño irreversible en
el tejido humano o en el recipiente que la contiene. (53)
Cuajo: Fermento de la mucosa del estómago de los mamíferos en el período de
lactancia, que coagula la caseína de la leche. (55)
Emulsión: Dispersión de un líquido en otro no miscible con él. La emulsión de
aceite en agua. (11)
Enzima: Proteína que cataliza específicamente cada una de las reacciones
bioquímicas del metabolismo. (10)
Fiambres: Se dice de la carne o del pescado que, después de asados o
cocidos, se comen fríos, y también de la carne curada. (11)
Flavor: o sabor es la impresión sensorial de un alimento u otra sustancia, y esta
determinada principalmente por las sensaciones químicas del gusto y el
olfato.(55)
Filogenético: Perteneciente o relativo a la filogenia. Parte de la biología que se
ocupa de las relaciones de parentesco entre los distintos grupos de seres
vivos.(11)
Flora psicrófila: o psicrótrofos son microorganismos que prefieren el frío y se
multiplican bien a temperaturas relativamente bajas (10-15 ºC). (55)
Fosfolípidos: Sustancias grasas que contienen nitrógeno, acido fosfórico y
una base nitrogenada. (55)
Glicoproteína: O Glucoproteína. Proteína conjugada cuyos componentes no
proteicos son hidratos de carbono; p. ej., las inmunoglobulinas. (55)
Grupo prostético: Fracción no proteica de una enzima. (10)
Glutation Peroxidasa: Enzima especifica que cataliza al: glutatión, que es un
tripéptido constituido por tres aminoácidos: glicina, cisteína y ácido glutámico.(55)
Glutation: Es el 2-amino-5-{[2-[(carboximetil)amino]-1-(mercaptometil)-2-
oxoetil]amino}-5-ácido oxopentanoico, una γ-glutamilcisteinilglicina. Actúa
reduciendo especies reactivas del oxígeno como peróxido de hidrogeno a
través de la enzima glutatión peroxidasa. (55)
Hemo: El grupo hemo contiene hierro y un anillo de porfirina, es un tetrapirrol
cíclico, el tetrapirrol está compuesto por 4 cadenas de pirrol enlazadas a un
anillo, en el centro de este anillo se encuentra el átomo de hierro. Su función
principal es la de almacenar y transportar oxígeno molecular. (55)
Hemoproteina: Proteína enzimática que tiene como cofactor un grupo hemo B
(hierro-protoporfirina IX) unido covalentemente a través de enlaces tipo éster a
grupos metilo hidroxilados. (55)
Holoenzima: Enzima que además de aminoácidos, presentan otra molécula no
proteica en su composición. Un holoenzima está compuesto por una apoenzima
(parte proteica) y un cofactor (parte no proteica). (55)
Inflamable: sustancia sólida, líquida, vapor o gas que puede ignitir fácilmente y
quemarse rápidamente.(53)
Lactoalbúmina: proteína que junto con la caseína y la lactoglobulina
constituye el contenido proteico más importante de la leche. (55)
Leche bronca: o leche cruda aquella que no ha recibido ningún tipo de
tratamiento sanitario. (55)
Metastable: Sistema químico que posee estabilidad aparente por su pequeña
velocidad de transformación. (10)
Microorganismos mesófilos: o termófilos microorganismos generalmente
esporulados aeróbios prefieren temperaturas elevadas para su multiplicación
entre 40-45 ºC. (10)
Mutágeno: sustancia que causa mutaciones, cambios en el material genético
de las células del cuerpo. Puede conllevar a defectos en nacimientos, pérdidas
o cáncer. (53)
Ornitina: La ornitina es un aminoácido dibásico, sintetizado en las mitocondrias
como producto del glutamato. Se forma por la acetilación de su grupo amino,
fosforilación y reducción del derivado acetilado a N-acetilglutamico-γ-
semialdehído. (55)
Oxidación: Cuando un compuesto reacciona con otra sustancia química
perdiendo electrones o ganando oxigeno.(11)
Oxidorreducción: Reacción en la que intervienen un oxidante y un reductor, y
en la cual se produce una reducción del primero y una oxidación del
segundo.(11)
Pasteurizar: Elevar la temperatura de un alimento líquido a un nivel inferior al
de su punto de ebullición durante un corto tiempo, enfriándolo después
rápidamente, con el fin de destruir los microorganismos sin alterar la
composición y cualidades del líquido. (11)
Patógeno: Que origina y desarrolla una enfermedad. (10)
Polipéptido: Molécula polímera formada por la unión, mediante enlaces
peptídicos, de varias moléculas de aminoácidos. Su peso molecular es menor a
10000 A. (55)
Proteasas: enzima del grupo de las hidrolasas, generalmente con misiones
digestivas, que es específica para las proteínas y de los pépticos. (55)
Proteido: Heteroproteína constituida por una
proteína típica y un grupo prostético de naturaleza no proteínica. (10)
Pulverización: Reducir a polvo un sólido o a partículas muy tenues un cuerpo
liquido. (11)
Roquefort: Queso de origen francés, fabricado con leche de oveja, de olor y
sabor fuertes y color verdoso producido por un moho.(11)
Reactivo: sustancia sólida, liquida o gaseosa que libera energía bajo ciertas
condiciones.(53)
Reactivación: Acción y efecto de reactivar. (10)
Reducción: Hacer que un compuesto gane electrones, como sucede en la
eliminación parcial o total del oxígeno contenido.(11)
Salmuera: Agua cargada de sal. Agua que sueltan las cosas saladas. (11)
Selenoproteina: Proteína que posee como cofactor al Selenio. (55)
Sinéresis: Fenómeno físico consistente en la contracción espontánea de un gel
con separación de parte del liquido que se encuentra en este. (11)
Standard Methods for the Examination of Dairy Products: Métodos
Estandarizados para el Análisis de Productos Lácteos. (12)
Sustrato: Sustancia sobre la que actúa una enzima. (10)
Térmico: Perteneciente o relativo al calor o la temperatura. Que conserva la
temperatura. Material térmico.(10)
Teratógeno: sustancia que causa malformaciones de nacimiento por daño al
feto. (53)
Triptófano: El triptófano es un aminoácido esencial, presente en los alimentos
tales como los huevos y la leche. (55)
Tuberculosis: Enfermedad del hombre y de muchas especies animales
producida por el bacilo de Koch. Adopta formas muy diferentes según el órgano
atacado, la intensidad de la afección, etc. Su lesión habitual es un pequeño
nódulo, de estructura especial, llamado tubérculo. (11)
Zoonosis: Enfermedad o infección que se da en los animales y que es
transmisible al hombre en condiciones naturales. (11)
ANEXOS
ANEXO Nº 1. CUIDADOS QUE SE DEBEN TOMAR DURANTE EL
TRASLADO DE LAS MUESTRAS DE LECHE Y QUESO.
-El producto procesado se tomará en su envase original, cerrado y etiquetado.
-El producto artesanal o sin procesar se colocará dentro de una bolsa con
cierre hermético.
-Los envases deberán ser cerrados inmediatamente después de haber
depositado el producto para evitar la contaminación. Luego se colocaran en
termos o hieleras limpias o provistas de hielo y se llevaran al laboratorio lo más
pronto posible. (22)
-Evitar la contaminación durante el traslado por una ruptura de envase.
-Rotulación correcta y legible del producto.
-Identificación del producto.
-Mantener la temperatura de refrigeración durante el transporte del producto
entre 0 y 4º C. El análisis debe iniciar en el menor tiempo posible desde la
llegada al laboratorio, pero si no es posible realizarlo dentro de las seis horas, el
mantenimiento entre 2 y 6ºC permite la ampliación del plazo a las 24 horas
desde la toma de muestra. La FAO permite el retraso de un análisis hasta un
máximo de treinta y seis horas cuando las muestras han sido refrigeradas entre
0-4ºC.
ANEXO Nº 2. INFORMACION QUE DEBE ACOMPAÑAR A LAS MUESTRAS
Y CONTROLES.
La toma de muestra
-Lugar, fecha y hora del muestreo.
-Número de muestras tomadas.
-Análisis programado.
-Observaciones adicionales.
ANEXO Nº 3. PRECAUCIONES Y CUIDADOS A TOMAR PARA REALIZAR
ANALISIS DE FOSFATASA ALCALINA PARA EVITAR
RESULTADOS FALSOS POSITIVOS EN LOS ENSAYOS.
-Realizar el análisis en una atmósfera libre de fenol, todo el material de vidrio,
tapaderas y todo el material utilizado en el muestreo debe estar completamente
limpio. El lavado debe hacerse cuidadosamente con agua tibia y se debe utilizar
un detergente que no contenga compuestos fenólicos, luego se debe enjuagar
con agua destilada, se recomienda usar desinfectantes del tipo de amonio
cuaternario.
-Los reactivos deberán mantenerse en frascos herméticamente cerrados para
evitar su deterioro o contaminación.
-Los cierres plásticos de los frascos de los reactivos pueden causar
contaminación fenólica por lo que su uso debe ser evitado, por el contrario se
recomienda el uso de tapones de vidrio o de goma de primera calidad, los
cuales se ha comprobado están libres de compuestos fenólicos.
-Para cada muestra de queso debe emplearse espátulas y agitadores distintos y
limpios.
-Usar un volumen de agua suficiente, en el baño de maría, para que el
contenido de las muestras alcance una temperatura de 37ºC a los 10 minutos
de colocados y que el nivel del agua quede ligeramente por encima del nivel del
contenido de los tubos.
-Precauciones generales a tomar en los métodos para determinar fosfatasa
alcalina.
Debido a la extremada sensibilidad de la prueba de la fosfatasa empleando fenil
fosfato disódico como sustrato para disminuir la cantidad de fenol y compuestos
fenólicos, es esencial que todas las pipetas, frascos y tapones, etc., y todos los
reactivos estén libres de fenol para evitar un resultado en la prueba falso
positivo.
A. Cristalería:
Toda la cristalería deberá ser enjuagada con agua tibia, y lavada con un
detergente que no contenga compuestos fenólicos, enjuagar con agua de grifo y
luego con agua destilada u otra agua tratada adecuadamente con un grado
reactivo, airear o dejar secar, y proteger de la contaminación durante el
almacenaje. Este procedimiento es recomendable seguirlo inmediatamente
después del uso.
Piezas representativas pueden ser probadas para determinar si la cristalería
esta libre de fenol.
B. Tapaderas:
El uso de tapaderas plásticas deberá ser evitado desde que contaminación
fenólica procedente de ellos ha sido encontrada. Los tapones de goma
generalmente están libres de compuestos fenólicos, pero ellos no deben
emplearse en frascos con alcohol butílico.
C. Reactivos:
Mantenga todos los frascos con reactivos muy bien cerrados para prevenir
deterioro y contaminación de los mismos.
La presencia de fenol libre en los buffer sustrato que contienen fenil fosfato
disódico, frecuentemente es una causa de color azul en las pruebas de control.
Este color es causado por el deterioro del buffer sustrato o por el fenil fosfato
disódico que no está libre de fenol. El deterioro del fenil fosfato disódico puede
ser retrasado por calentamiento a 85ºC por 2 minutos. Debe usarse, de ser
posible Fenil fosfato disódico libre de fenol. Para la prueba de fenol en el Buffer
sustrato, agregue 2 gotas de CQC a 10 mL de buffer sustrato e incube por 5
minutos a temperatura ambiente. Si se desarrolla algún color, el sustrato buffer
debe ser descartado y preparase una nueva solución buffer.
Si el fenil fosfato disódico no está libre de fenol, una solución satisfactoria de
buffer sustrato podrá prepararse empleando un frasco separador, disolver 1.1 g
de di sodio fenil fosfato en 50mL de buffer, usando el método de Cornell; o 0.5 g
de disodio fenilfosfato en 25 mL de buffer, usando el método de Scharer.
Adicionar 2 gotas de CQC, agitar, y dejar que se desarrolle color por 10
minutos. Extraer el color azul indofenol por agitación vigorosa con 10 mL de n-
butil alcohol. Dejar reposar hasta que la capa de alcohol se separe
completamente. Remueva la capa de alcohol y diluya la solución acuosa hasta
1 litro con solución buffer, usando el método de Cornell; o diluya hasta 500mL
con agua, usando el método de Scharer.
Si se usan las tabletas Phos- Phax en la prueba rápida de Scharer, disolver una
tableta de Phos-Phax en 5 mL de agua. Agregar 2 gotas de CQC, mezclar bien,
y deje por 5 minutos para que desarrolle color. Extraer el color con 2 mL de n-
butil alcohol. Dejar reposar hasta que el alcohol se separe, remover el alcohol
con una pipeta, y descartar. Diluir la solución acuosa hasta 50 mL con agua.
Estas soluciones deben ser preparadas recientemente antes de usar, ya que se
descomponen con el transcurso del tiempo. No deben almacenarse en
refrigeración más de una semana.
El CQC en polvo debe guardarse en frascos herméticamente cerrados y en
refrigeración. Cuando se prepara la solución de CQC, se debe dejar que el
polvo tenga la temperatura ambiente antes de abrir el frasco para evitar la
condensación de humedad en el reactivo. Refrigerar la solución de CQC y
descartarla cuando se deteriore (se vuelva color café).
ANEXO Nº 4. CONTROLES APLICABLES A TODOS LOS
PROCEDIMIENTOS PARA FOSFATASA ALCALINA.
Los controles son para determinar deterioro o contaminación de los reactivos;
para determinar sustancias interferentes como lo son los materiales
saborizantes que posean una estructura fenólica; para describir variaciones en
el color del azul de indofenol que resulte de la interferencia de grasa y
materiales colorantes, particularmente si se ha hecho una extracción directa con
butanol, y para comprobar la posible presencia de fosfatasa microbiana.
A. Control Negativo:
Un control negativo debe ser usado con cada tipo de los productos lácteos que
serán muestreados. Coloque aproximadamente 5 mL o 5 g de producto en cada
tubo de ensayo conteniendo un termómetro y calentar a 90 ºC por un minuto
seguido de un enfriamiento rápido. Agite el contenido del tubo durante el
calentamiento para asegurar la completa inactivación de la fosfatasa alcalina.
Prueba el calentamiento de la muestra para fosfatasa. Cualquier desarrollo de
color en el control negativo no es indicio de fosfatasa residual, pero indica la
contaminación de reactivos o la presencia de interferencia de materiales
colorantes o ambos. Idealmente, el control negativo no debe mostrar coloración
alguna.
B. Control Positivo:
Como una prueba del funcionamiento correcto de los reactivos, un único control
positivo será suficiente para cada serie de muestras a ensayar. Agregue 0.1 mL
de leche cruda fresca proveniente de mezclar varios ordeños a 1000 mL de
leche cruda que ha sido calentada a 90ºC por un minuto, seguido por un rápido
enfriamiento hasta temperatura ambiente. Cuando la prueba de fosfatasa se
realice en la muestra, un resultado positivo debe obtenerse.
C. Control de Sustancias Interferentes:
Desde la vainillina, hasta otros compuestos con estructuras fenólicas pueden
estar presente en leches con sabor a chocolate, cremas presurizadas,
coberturas y helado, puede obtenerse un resultado falso positivo cuando el
sustrato es el disodio fenil fosfato. Los productos lácteos esterilizados
procesados con el método HTST pueden contener sustancias que reaccionen
en la prueba de la fosfatasa y produzcan resultados falsos positivos. Cuando un
resultado falso positivo se obtiene en las muestras, las pruebas deben ser
repetidas usando la misma cantidad de muestra pero sustituyendo la solución
buffer por la misma cantidad de buffer sustrato.
En la ausencia de disodio fenil fosfato o monofosfato de fenolftaleina cualquier
color es causado por sustancias interferentes y por fosfatasa residual. Sin
embargo, si el color de los pruebas usando el buffer sustrato es mayor que el
color obtenido en el control de s sustancias interferentes, indica que el producto
ha sufrido una baja pasteurización y/o una contaminación con leche cruda.
D. Fosfatasa microbiana:
La posibilidad de la producción de fosfatasa por microorganismos en los
productos lácteos, particularmente en crema. Las fosfatasas microbianas son
considerablemente más termoresistentes que la fosfatasa alcalina de la leche,
por lo que la su diferenciación es posible con la siguiente técnica:
Si la prueba de la fosfatasa original es positiva, pasteurizar una porción de 5 mL
de porción de la muestra y calentar a 62.8ºC por 30 minutos en un tubo de
ensayo. Sumergir completamente el tubo o sumergir hasta que hasta que la
línea de agua cubra 4.0 cm. arriba del nivel de la leche en el tubo. La
temperatura de la leche debe alcanzar al menos 62.3ºC en menos de 5
minutos. Mantener el termómetro inmerso en la muestra o colocado
adecuadamente para su control. Enfriar y realizar la prueba de fosfatasa en la
muestra repasteurizada, la muestra original y el control negativo. Si la muestra
repasteurizada no muestra una reducción significativa en el color, el resultado
original fue debido a fosfatasa microbiana. Deberá ser clasificada como falso
positivo y reportada como negativo.
ANEXO Nº 5 ESQUEMA DEL METODO RAPIDO DE SCHARER
METODO RÁPIDO DE SCHARER PARA FOSFATASA ALCALINA RESIDUAL. (12), (13)
Muestra Agregar 0.5 mL de muestra (Ver procedimiento para diferentes tipos de muestras lácteas)
Luego agregar: + 5 mL de Sustrato Buffer. (Ver procedimiento para diferentes tipos de muestras lácteas) Tapar el tubo y agitar por inversión repetidas veces
Incubar el tubo a 40ºC durante 15 minutos
Remover el tubo del Baño de agua
Adicionar 6 gotas de reactivo CQC (con catalizador) De no contener catalizador entonces también agregar 2 gotas de Cu(SO4)2.
Tapar y agitar por inversión. Luego reincubar a 40ºC por 5 minutos
Remover del Baño de agua y Enfriar en Baño de agua helada.
Adicionar en frío 3 mL de n- butanol neutralizado y enfriado. Tapar el tubo.
Invertir suave y lentamente los tubos 4 veces haciendo medios círculos. Extraer el color: Dejar reposar el tubo tapado en posición horizontal sobre una superficie plana por 2 minutos.
Repetir la agitación y la extracción
Luego comparar el color de la capa alcohólica con la de los estándares
preparados. Utilizando una luz estándar. (Color azul indica Fosfatasa alcalina +)
ANEXO Nº 6 ESQUEMA DEL METODO DE SCHARER MODIFICADO
METODO DE SCHARER MODIFICADO PARA FOSFATASA ALCALINA RESIDUAL. (12)
Tubo Muestra Adicionar 0.5 mL de Muestra +5 mL de Buffer Sustrato Tapar el tubo e incubar por 1 hora y 5 minutos a 40 ºC.
Remover el tubo del Baño de agua
Adicionar 6 gotas de reactivo CQC (con catalizador) de no contenerlo adicionar 2 gotas de Cu(SO4)2
Tubo Control Adicionar 0.5 mL de Muestra calentada a 90ºC y enfriada. +5 mL de Buffer Sustrato Tapar el tubo e incubar por 1 hora y 5 minutos a 40 ºC.
Remover el tubo del Baño de agua
Adicionar 6 gotas de reactivo CQC (con catalizador) de no contenerlo adicionar 2 gotas de Cu(SO4)2
Tapar el tubo y agitar por inversión
Reincubar a 40 ºC por 5 minutos
Remover el tubo del Baño y enfriar en Baño de agua helada.
Y agregar en frío 5 mL de alcohol n- butílico enfriado. Tapar el tubo y Agitar por inversión nuevamente
Tapar el tubo y agitar por inversión
Reincubar a 40 ºC por 5 minutos
Remover el tubo del Baño y enfriar en Baño de agua helada.
Y agregar en frío 5 mL de alcohol n- butílico enfriado. Tapar el tubo y Agitar por inversión nuevamente
Centrifugar por 5 minutos. Luego
Pipetear 3 mL de la capa alcohólica y transferir a una celda espectrofotométrica. Leer la Absorbancia a 650 nm. Llevar a 0 Tramitancía con el control negativo
Centrifugar por 5 minutos Luego
Pipetear 3 mL de la capa alcohólica y transferir a una celda espectrofotométrica.
ANEXO Nº 7 ESQUEMA DEL METODO DE CORNELL
METODO DE CORNELL PARA FOSFATASA ALCALINA RESIDUAL. (12),
Pipetear 1 mL de la muestra
Transferir a un tubo de ensayo
Calentar el Buffer Carbonato a 37ºC
+ 10 mL de Sustrato Buffer Carbonato
Agitar Incubar a 37ºC en Baño de agua con termostato durante 1 hora y 5 minutos.
Remover el tubo del Baño de agua.
Agregar por las paredes del tubo inclinado 1 mL de Precipitante tricloroacetico/HCl
Luego Filtrar hacia un tubo limpio y calibrado a intervalos de 5 mL
A 5 mL del filtrado claro obtenido
Adicionar 1 ml de Solución Cu(SO4)2 / Hexametafosfato de sodio. + 5 mL de Solución de carbonato de sodio 8%
Agitar el contenido
Agregar 2 gotas de solución CQC
Tapar el tubo Inmediatamente Invertir el tubo varias veces
Incubar a 37ºC durante 5 minutos exactos para desarrollo del color.
Adicionar 5 mL de alcohol n-butílico
Tapar el tubo Inmediatamente invertir el tubo varias veces
Comparar el color que se produce en la capa alcohólica con los estándares de fenol preparados.
Remover 3 mL de la capa alcohólica de cada tubo y transferir a una celda espectrofotométrica o al tubo del colorímetro.
Leer la Absorbancia o la densidad óptica a 650 nm contra los estándares de fenol.
(Color azul indica Fosfatasa alcalina +)
ANEXO Nº 8 ESQUEMA DEL METODO DE RUTGERS
METODO DE RUTGERS PARA FOSFATASA ALCALINA RESIDUAL. (12)
Muestra Agregar 1.0 mL de muestra
Incubar en Baño de agua a 37ºC. Cuando el contenido del tubo alcance la temperatura de 37 ºC, agregar:
1 gota (0.04 mL) de Sustrato concentrado.
Estándar Agregar 1.0 mL de muestra
Incubar en Baño de agua a 37ºC. Cuando el contenido del tubo alcance la temperatura de 37 ºC, agregar:
1 gota (0.04 mL) de Sustrato concentrado.
Agitar Incubar en Baño de agua a 37ºC durante 30 minutos
Agregar 1 gota de solución reveladora del color.
Comparar visualmente la muestra con el estándar (color rosado intenso indica Fosfatasa alcalina + y rosado tenue indica una pasteurización adecuada)
Agitar Incubar en Baño de agua a 37ºC durante 30 minutos
Agregar 1 gota de solución reveladora del color.
Comparar el estándar visualmente con la muestra.
ANEXO Nº 9 ESQUEMA DEL METODO DE ASCHAFFENBURG Y MULLEN
METODO DE ASCHAFFENBURG Y MULLEN PARA FOSFATASA ALCALINA RESIDUAL. (24), (27)
Muestra Adicionar al tubo 15 mL de Sustrato tamponado + 2 mL de Muestra. Tapar el tubo. Agitar por inversión haciendo medios círculos
Incubar a 37ºC durante 2 horas.
Control Negativo Adicionar al tubo 15 mL de Sustrato tamponado + 2 mL de Muestra previamente llevada a ebullición. Tapar el tubo. Agitar por inversión haciendo medios círculos
Incubar a 37ºC durante 2 horas.
Sacar el tubo del baño de agua.
Agregar 0.5 mL de Precipitante Sulfato de Zinc. Tapar el tubo Agitar vigorosamente el tubo
Luego dejar reposar por 3 minutos
Agregar 0.5 mL de precipitante Hexaferrocianuro
Sacar el tubo del baño de agua.
Agregar 0.5 mL de Precipitante Sulfato de Zinc. Tapar el tubo Agitar vigorosamente el tubo
Luego dejar reposar por 3 minutos
Agregar 0.5 mL de precipitante Hexaferrocianuro
Agitar
Filtrar en papel plegado y recoger el filtrado en un tubo limpio.
Transferir el filtrado obtenido al tubo del colorímetro para medir su densidad óptica. (El color del filtrado, amarillo indica actividad Fosfatasa alcalina y deberá ser menos intenso que el observado en las placas patrones de p-nitrofenol del colorímetro)
Muestra
Agitar
Filtrar en papel plegado y recoger el filtrado en un tubo limpio.
Transferir el filtrado obtenido al tubo del colorímetro para medir su densidad óptica.
Control Negativo Blanco
Llenar otra célda con agua destilada el cual será el blanco.
ANEXO Nº 10 ESQUEMA DEL METODO DE SANDERS Y SAGER MODIFICADO
METODO DE SANDERS Y SAGER PARA FOSFATASA ALCALINA RESIDUAL. (24), (27)
Muestra Colocar 1 mL de la muestra + 10 mL de Sustrato tamponado. Agitar
Incubar a 37ºC durante 1 hora agitando de vez en cuando.
Retirar del Baño de agua y de inmediato introducir en Baño de agua a 100ºC y calentar por 2minutos
Control Negativo Colocar 1 mL de la muestra previamente calentada a 100ºC durante 2 minutos y enfriada. + 10 mL de Sustrato tamponado. Agitar
Incubar a 37ºC durante 1 hora agitando de vez en cuando.
Retirar del Baño de agua y de inmediato introducir en Baño de agua a 100ºC y calentar por 2 minutos.
Luego enfriar en Baño de agua a temperatura ambiente.
Luego agregar 1 mL de solución precipitante
Agitar
Filtrar
Luego enfriar en Baño de agua a temperatura ambiente.
Luego agregar 1 mL de solución precipitante
Agitar
Filtrar
Tomar 5 mL del filtrado y transferirlo a un tubo de ensayo
Agregar 5 mL de solución tampón para desarrollar el color
Dejar reposar durante 30 minutos a temperatura ambiente PROTEGER DE LA LUZ SOLAR. (Coloracion amarilla) Medir la Absorbancia de la muestra a 610 nm.
Tomar 5 mL del filtrado y transferirlo a un tubo de ensayo
Agregar 5 mL de solución tampón desarrollador de color
Dejar reposar durante 30 minutos a temperatura ambiente PROTEGER DE LA LUZ SOLAR. (No hay color) Medir la Absorbancia del Blanco y los estandares de fenol a 610 nm.
ANEXO Nº 11 ESQUEMA DE LA PRUEBA CON 4- AMINOANTIPIRINA
REACCION CON 4-AMINOANTIPIRINA PARA FOSFATASA ALCALINA RESIDUAL. (55)
Muestra
Agregar a un tubo de ensayo 0.5 mL de Solución sustrato. Incubar en Baño de Agua a 37ºC por 4 min.
Retirar del Baño de Agua.
Agregar con micropipeta 50µL de Muestra.
Estándar
Agregar a un tubo de ensayo 0.5 mL de Solución sustrato. Incubar en Baño de Agua a 37ºC por 4 min.
Retirar del Baño de Agua.
Agregar con micropipeta 50µL de Solución de Fenol.
Blanco
Agregar a un tubo de ensayo 0.5 mL de Solución sustrato. Incubar en Baño de Agua a 37ºC por 4 min.
Retirar del Baño de Agua.
Agregar con micropipeta 50µL de Agua destilada.
Agitar de preferencia con
agitador de vórtice.
Reincubar
exactamente por 10 minutos a 37 ºC
Sacar el tubo con muestra de la
incubadora
Agregar 2.5 mL de solución de
Ferrocianuro de potasio y Agitar de
ser posible con vórtice.
Leer la Absorbancia de cada tubo a (520
nm), en los siguientes 30 min. Ajustar a cero el espectrofotómetro con agua destilada.
Agitar de preferencia con
agitador de vórtice.
Reincubar
exactamente por 10 minutos a 37 ºC
Sacar el tubo con muestra de la
incubadora
Agregar 2.5 mL de solución de
Ferrocianuro de potasio y Agitar de
ser posible con vórtice
Agitar de preferencia con
agitador de vórtice.
Reincubar
exactamente por 10 minutos a 37 ºC
Sacar el tubo con muestra de la
incubadora
Agregar 2.5 mL de solución de
Ferrocianuro de potasio y Agitar de
ser posible con vórtice
ANEXO Nº 12 ESQUEMA DE METODO PARA DETERMINAR FOSFATASA
ALCALINA REACTIVADA
METODO DIFERENCIADOR ENTRE FOSFATASA RESIDUAL Y REACTIVADA. (12), (28), (29)
Control Negativo Muestra sin adicionar Acetato de Mg.
Agregar 5 mL de muestra +0.1 mL de agua destilada. Incubar por 1 hora a 34 ºC, agitando el tubo ocasionalmente.
Remover el tubo control negativo del baño de agua y Enfriar en baño de agua helada
Al estar frío sacar del baño y realizar cualquiera de las pruebas para fosfatasa ya sea por el método de Rutgers, Cornell o cualquier otro método espectrofotométrico. (Actividad fosfatasa mayor que la muestra diluida indica fosfatasa alcalina residual en la muestra)
Control Positivo Muestra adicionada con Acetato de Mg.
Agregar 0.1mL de solución acetato de Magnesio. Mg (C2H3O2)2 Incubar por 1 hora a 34 ºC, agitando el tubo ocasionalmente.
Remover el tubo del baño de agua y Enfriar en baño de agua helada
Luego de enfriar el tubo proceder de la siguiente manera:
Control Positivo Muestra adicionada con Acetato de Mg.
Tubo Control Positivo Agregar 5 mL de muestra y llevar a ebullición.
Sacar el tubo y enfriar . Tomar 1 mL de Acetato Magnésico y transferirlo al tubo control.
Solución de Acetato Mg.
Tubo control positivo. A este realizar cualquiera de las pruebas para fosfatasa ya sea por el método de Rutgers, Cornell o cualquier otro método espectrofotométrico. (Actividad fosfatasa igual o aumentada a la muestra sin diluir indica fosfatasa alcalina reactivada en la muestra)
ANEXO Nº 13 ESQUEMA DE REACCION DE DUPOY
REACCION DE DUPOY PARA LACTOPEROXIDASA Control negativo
Agregar a un tubo 2 mL de leche
Calentar en baño de agua caliente a 100ºC por 10 min. (Leche hervida) Blanco Muestra Control negativo
Agregar 3 mL de Agregar 3 mL de Agregar 3 mL de Tampón Fosfato Tampón Fosfato Tampón Fosfato + 1 mL de H2O2 + 1 mL de H2O2 + 1 mL de H2O2 + 1 mL de solución de + 1 mL de solución de +1 mL de solución de Guayacol 0.04M Guayacol 0.04M Guayacol 0.04M
Compararla coloración de los tres tubos visualmente,
(Color anaranjado indica presencia de Lactoperoxidasa +)
ANEXO Nº 14 ESQUEMA DE METODO DE STORCH
PRUEBA DE STORCH PARA LACTOPEROXIDASA
Control Positivo Agregar 10 mL de
muestra(Lc)
Agregar 2 gotas de solución acida
de H2O2 al 2 %
+ 2 gotas de solución sustrato
p- fenilendiamina
Mezclar y Comparar
Muestra Agregar 10 mL
de muestra (Pr)
Agregar 2 gotas de solución acida
de H2O2 al 2 %
+ 2 gotas de solución
sustrato p-fenilendiamina
Mezclar y Comparar
Control Negativo Agregar 10 mL
de muestra (Sc)
Agregar 2 gotas de solución acida
de H2O2 al 2 %
+ 2 gotas de solución
sustrato p-fenilendiamina
Mezclar y Comparar
(Color azul intenso indica presencia de Lactoperoxidasa +)
ANEXO Nº 15 ESQUEMA DE METODO DE ROTHENFUSSER
METODO DE ROTHENFUSSER PARA LACTOPEROXIDASA. (48)
Agregar 3 mL de Tampón fosfato Agregar 3 mL de Tampón fosfato +30 µL de suero o leche +250µL de reactivo de Rothenfusser +250µL de reactivo de Rothenfusser +50µL de H2O2 al 1% +50µL de H2O2 al 1%
Agitar por inversión y Agitar por inversión y esperar 2 min. esperar 2 min. Leer la muestra y el blanco en Espectrofotómetro a 540 nm
ANEXO Nº 16 ESQUEMA DE METODO DE ABTS
METODO ABTS PARA LACTOPEROXIDASA. (48)
Agregar 25 µL de Suero de leche acido
+ 5mL de Solución Sustrato ABTS Homogenizar.
Transferir 2.5 mL a una Transferir 2.5 mL a una celda espectrofotométrica celda espectrofotométrica (Blanco)
Leer ambas a 413 nm cada minuto durante 5 minutos
Agregar 50 µL de Solución H2O2 0.005 M
ANEXO Nº 17 METODO POR REACCION DE TRINDER.
ANEXO Nº. 17. METODO POR REACCION DE TRINDER.
Aunque el método de Trinder, esta basado en la determinación de Azucares
específicos como la glucosa y la Sacarosa, dentro de su reacción fundamental
de manera indirecta se emplea la enzima Lactoperoxidasa para poder
cuantificar peroxido de hidrogeno de azucares en la muestra. Esta prueba es
empleada tanto en la industria de alimentos como en el área clínica, pues
también es empleada para determinar glucosa en fluidos corporales como:
suero libre de hemólisis, plasma, líquido cefalorraquídeo, orina, e hidrolizado de
muestras de hígado para valorar glucógeno.
Está basado en el esquema indicado a continuación. La glucosa oxidasa oxida
a la glucosa originando ácido glucónico y H2O2. El peróxido de hidrógeno
liberado reacciona con un cromógeno (fenol/4-aminoantipirina) por la reacción
de Trinder, para dar una quinona que absorbe entre 492 y 550 nm. La
intensidad de color producida es directamente proporcional a la concentración
de glucosa. Como se muestra en las reacciones siguientes que se llevan a
cabo en el método.
β-D-glucosa + O2 + 2H2O ——Glucosa oxidasa——→ Acido D-glucónico + H2O2
4-aminoantipirina + H2O2 + hidroxibenzoato ——Peroxidasa→ Colorante quinoneimina + H2O
Aunque el método esta dado para Glucosa y Sacarosa este podría ser
ensayado y normalizado en estudios futuros específicamente para leche y
queso.
DETERMINACION ENZIMATICA DE GLUCOSA Y SACAROSA EN
ALIMENTOS. (Reacción de Trinder)
Cuantificación de glucosa y sacarosa en una muestra de zumo comercial. La
cantidad de colorante generada en la reacción con la peroxidasa, y por tanto la
absorbancia medida a 505 nm, será directamente proporcional a la cantidad de
glucosa presente.
A. Cristalería:
- Frascos volumétricos de 100 mL
- Frasco volumétrico de 25 mL
- Beakers de 250 mL, 100 mL
B.Equipo:
Espectrofotómetro monohaz Spectronic 20 con celdas de 1 cm de paso de luz.
C. Materiales:
-Embudo
-papel filtro
-Vidrio de reloj
D. Reactivos:
-Reactivo Trinder: Disolución que contiene todos los reactivos necesarios para
la determinación de glucosa en las concentraciones que se indican a
continuación: 4-aminoantipirina 0,3 mmol/L y p-hidroxibencensulfonato 8.5
mmol/L, Glucosa oxidasa (GOD) obtenida de Aspergillus Niger 10 U/mL,
Peroxidasa de rábano silvestre (Horseradish peroxidase, HRP) 0,3 U/mL
Estos reactivos, en las cantidades adecuadas, se suministran en una disolución
reguladora de pH 6,6 lista para su uso. Esta disolución debe almacenarse en
frasco color ámbar y en el refrigerador. Si se mantiene entre 2 –8 ºC la
disolución estable durante 2 meses.
Disolución de invertasa 100 U/ml en tampón de citrato 0,1 M de pH 4,6.
Preparar 50 mL.
Disolución patrón de glucosa 0,01 M
Disolución Carrez I: Disolver en agua 3,6 g de ferrocianuro potásico y llevar a
100 mL.
Disolución Carrez II: Disolver en agua 7,2 g de acetato de zinc y llevar a 100 mL
D. Procedimiento.
Preparar las soluciones de los reactivos indicados y disolver en una disolución
reguladora de Tris 0,02 M de pH 6.6. Llevar a volumen en un frasco volumétrico
de 100 mL. Esta disolución debe almacenarse en frascos color ámbar y en el
refrigerador.
Para la construcción de la línea de calibrado deben prepararse cinco
disoluciones de glucosa de concentraciones comprendidas entre 5.10-5 M y
5.10-4 M por dilución del patrón de glucosa. Añadir a la celda del
espectrofotómetro 1 mL de reactivo Trinder y 250 µL de patrón, mezclar e
incubar exactamente 5 minutos a temperatura ambiente. Medir a continuación la
absorbancia de la mezcla de reacción a 505 nm frente a un blanco de reactivos.
Para la determinación de glucosa y sacarosa en la muestra, esta se diluirá con
agua en la proporción adecuada según el contenido de glucosa y sacarosa
esperado. Las muestras turbias deben tratarse con los reactivos Carrez y
filtrarse. Para ello pipetear 2 mL de muestra en un vaso que contenga unos 30
mL de agua, añadir 2,5 mL de disolución Carrez I y 2,5 mL de disolución Carrez
II. Filtrar, recoger cuantitativamente en un frasco volumétrico de 100 mL y llevar
a volumen.
Para la determinación del contenido de glucosa, se procederá con la disolución
diluida de la misma manera que con los patrones de glucosa.
Para determinar el contenido de sacarosa se llevará a cabo en primer lugar su
hidrólisis enzimática a glucosa y fructosa (inversión) con invertasa. Para ello se
toman 2 mL de la disolución de muestra (con un contenido máximo de sacarosa
de 1 g/L) y se mezclan con 8 mL de la disolución de invertasa. Se incuban 15
minutos a 55 ºC. La suspensión fría se filtra, se lava el filtro y se recoge
cuantitativamente en un frasco volumétrico y luego enrasando con agua hasta
la marca, realizando a continuación la determinación del contenido total de
glucosa según el procedimiento anteriormente descrito. El contenido de
sacarosa se obtiene por diferencia entre las concentraciones de glucosa
obtenidas antes y después de la inversión enzimática. Expresar el contenido de
glucosa y sacarosa en la muestra en g/L.
-DETERMINACION DE GLUCOSA (METODO GLUCOSA - OXIDASA) EN
FLUIDOS BIOLOGICOS. (Reacción de Trinder)
1. Pipetear en tubos marcados como: blanco, estándar y muestras, los reactivos
indicados en el cuadro. Incluir tantos tubos de muestras como se considere
conveniente. Añadir en último lugar el reactivo de Trinder para comenzar la
reacción.
Reactivos Blanco Estándar Problema
Estándar (glucosa, 100 mg/dL) ----- 20 µL -----
Muestra ------ -------- 20 µL
Reactivo de Trinder 2.0 mL 2.0 mL 2.0 mL
Reactivo De Trinder
Glucosa oxidasa 12.000 UI/L
Peroxidasa (POD) 660 UI/L
4-amino-antipirina (4AP) 0,4 mmol/L
Fenol 0,63 mmol/L
Tampón fosfato pH 7,4 100 mmol/L
2. Incubar, 15 min. a 37 ºC ó 30 min. a temperatura ambiente.
3. Ajustar el espectrofotómetro a cero de absorbancia a la longitud de onda de
500 nm y utilizando el tubo blanco, y leer los tubos restantes.
Con los valores de absorbancia del estándar y de los tubos problema se puede
calcular la concentración de glucosa en la muestra.
estándardelaAbsorbanci
estándariónconcentracproblemadelaAbsorbanciproblemaiónConcentrac
Valores normales:
Suero o plasma: 70 - 110 mg/ dL
L.C.R.: 50 - 70 mg/ dL
Orina: No contiene, en condiciones fisiológicas normales.
ANEXO Nº 18
TOXICIDAD DE SUSTANCIAS QUIMICAS PELIGROSAS EMPLEADAS EN LOS ANALISIS Y HOJAS DE DATOS DE SEGURIDAD. (53)
ALCOHOL N-BUTILICO
Número CAS: 71-36-3
Razones para citarlo:
- El Alcohol n- Butílico esta enlistada entre las sustancias peligrosas por ser
citada por las siguientes instituciones: OSHA, ACGIH, DOT, NIOSH, DEP, IRIS,
NFPA y EPA.
Información de Peligros a la Salud.
Efectos agudos a la salud.
Los siguientes efectos agudos (a corto plazo) en la salud pueden ocurrir
inmediatamente o poco después de la exposición al Alcohol n- Butílico.
- Al contacto puede irritar y quemar la piel.
- Alcohol n- Butílico puede irritar y quemar los ojos, con lagrimeo y posible
daño ocular.
- Inhalar los vapores de Alcohol n- Butílico puede causar irritación de la nariz,
garganta y pulmones causando tos, estornudos y disminución de la respiración.
– Exposición al Alcohol n- Butílico puede causar dolor de cabeza, mareos,
nauseas y vomito. Altos niveles pueden causar mareos, desmayos, y puede
producir palpitaciones irregulares.
Efectos Crónicos a la Salud
Los siguientes efectos (a largo plazo) en la salud pueden ocurrir algún tiempo
después de la exposición al Alcohol n- Butílico y pueden durar por meses o
años:
Peligro de Cáncer
- De acuerdo a la información actualmente disponible en el Departamento de
Salud y Servicios Superiores del Estado de New Yersey, Alcohol n- Butílico ha
sido estudiado y no se han demostrado que tenga capacidad de producir
cáncer.
Peligros a la Reproducción
Existe limitada evidencia de que el Alcohol n- Butílico es teratogéno en
animales. Hasta que futuras pruebas se realicen debe ser considerado como un
posible teratógeno en humanos.
Otros Efectos a largo plazo
Exposiciones prolongadas o repetidas pueden causar resequedad y
agrietamientos en la piel con enrojecimiento.
Alcohol n- Butílico puede causar daño en el hígado y en los riñones.
La exposición al Alcohol n- Butílico puede dañar el oído y el sentido de
balance.
DIETANOLAMINA
Número CAS:111-42-2
Resumen de Peligros:
Dietanolamina puede afectar la respiración.
- Al contacto puede irritar y quemar la piel y los ojos.
- Respirar Dietanolamina puede irritar la nariz y la garganta causando tos y
estornudo.
- Respirar Dietanolamina puede causar dolor de cabeza, nausea y vomito.
- Dietanolamina puede causar alergia en la piel. Si la alergia se desarrolla,
exposiciones futuras muy leves pueden causar picazón y sarpullido.
Razones para citarla:
Dietanolamina esta enlistada entre las sustancias peligrosas por ser citada por
las siguientes instituciones: ACGIH, NIOSH, DEP, NFPA y EPA.
Información de Peligros a la Salud.
Efectos agudos a la salud.
Los siguientes efectos agudos (a corto plazo) en la salud pueden ocurrir
inmediatamente o poco después de la exposición a la Dietanolamina:
- Al contacto puede irritar y quemar la piel y los ojos.
- Respirar Dietanolamina puede irritar la nariz y la garganta causando tos y
estornudo.
- Respirar Dietanolamina puede causar dolor de cabeza, nausea y vomito.
- Dietanolamina puede causar alergia en la piel. Si la alergia se desarrolla,
exposiciones futuras muy leves pueden causar picazón y sarpullido.
Efectos Crónicos a la Salud
Los siguientes efectos (a largo plazo) en la salud pueden ocurrir algún tiempo
después de la exposición a la Dietanolamina y pueden durar por meses o
años:
Peligro de Cáncer
-Existe limitada evidencia de que la Dietanolamina cause cáncer en animales.
Puede causar cáncer de hígado en animales.
Peligros a la Reproducción
- Lo que se ha estudiado al respecto con la Dietanolamina, se requiere un
mayor número de pruebas para valorar que es potencialmente causa de daños
reproductivos.
Otros Efectos a largo plazo.
- Dietanolamina puede causar alergia en la piel. Si la alergia se desarrolla,
exposiciones futuras muy leves pueden causar picazón y sarpullido.
FENOL
Numero CAS: 108-95-2
Resumen de Peligros:
- Fenol puede afectar la respiración y por su paso a través de la piel.
-Por ser un MUTAGENO –MANEJAR CON EXTREMO CUIDADO.
- Al contacto puede irritar severamente y causar quemaduras de la piel y ojos
con posible daño ocular.
- Respirar los vapores de Fenol puede causar irritación de nariz y garganta.
- Respirar los vapores de Fenol puede irritar los pulmones y causar tos y
disminuir la respiración. Las altas exposiciones pueden causar acumulación de
líquido en los pulmones (edema pulmonar), una emergencia médica, con severa
disminución en la respiración.
- Altos niveles pueden interferir con la capacidad de la sangre para acarrear
oxigeno causando dolor de cabeza, fatiga, mareos, y color azul en la piel y
labios (metahemoglobinemia)
- Altos niveles pueden causar problemas respiratorios, colapso y hasta la
muerte.
- Altas exposiciones pueden causar dolor de cabeza, mareos, fatiga, desmayos,
debilidad, nausea, vómitos y falta de apetito.
- Exposiciones elevadas o repetidas pueden causar daño al hígado, riñones y
sistema nervioso.
- Fenol puede causar palpitaciones irregulares (arritmia).
Razones para citarla:
- Fenol esta enlistado entre las sustancias peligrosas por estar regulado por
OSHA y ser citado por las siguientes instituciones: ACGIH, DOT, NIOSH,
DEP, HHAG, NFPA y EPA.
- Este químico esta en la lista de sustancias especialmente peligrosas a la
salud.
En listado por ser un MUTAGENO.
Información de Peligros a la Salud.
Efectos agudos a la salud.
Los siguientes efectos agudos (a corto plazo) en la salud pueden ocurrir
inmediatamente o poco después de la exposición al Fenol:
- Al contacto puede irritar severamente y causar quemaduras de la piel y ojos
con posible daño ocular.
- Respirar los vapores de Fenol puede causar irritación de nariz y garganta.
- Respirar los vapores de Fenol puede irritar los pulmones y causar tos y /o
disminuir la respiración. Las altas exposiciones pueden causar acumulación de
líquido en los pulmones (edema pulmonar), una emergencia médica, con severa
disminución en la respiración.
- Altos niveles pueden interferir con la capacidad de la sangre para acarrear
oxígeno causando dolor de cabeza, fatiga, mareos, y color azul en la piel y
labios (metahemoglobinemia)
- Altos niveles pueden causar problemas respiratorios, colapso y hasta la
muerte.
- Altas exposiciones pueden causar dolor de cabeza, mareos, fatiga, desmayos,
debilidad, nausea, vómitos y falta de apetito.
Efectos Crónicos a la Salud
Los siguientes efectos (a largo plazo) en la salud pueden ocurrir algún tiempo
después de la exposición al Fenol y pueden durar por meses o años:
Peligro de Cáncer
- Fenol causa MUTACIONES (cambios genéticos).
- No hay evidencia de que el Fenol cause cáncer en animales.
Esto esta basado en los resultados de estudios publicados y disponibles
presentemente en el Departamento de Salud y Servicios Superiores del Estado
de New Yersey.
Peligros a la Reproducción
- De acuerdo a la información actualmente disponible en el Departamento de
Salud y Servicios Superiores del Estado de New Yersey, Fenol ha sido
estudiado y no se han demostrado efectos sobre la reproducción.
Otros Efectos a largo plazo
- Fenol puede irritar los pulmones. Exposiciones repetidas pueden causar
bronquitis que se desarrolla con tos, flema y/o dificultades respiratorias.
HIDROXIDO DE SODIO
Número CAS: 1310-73-2
Resumen de Peligros:
- Hidróxido de Sodio puede afectar al ser respirado y por pasar a través de la
piel.
- Hidróxido de Sodio es una sustancia química CORROSIVA y al contacto con
piel y ojos puede causar irritación severa y quemaduras con posible daño
ocular.
- Respirar los vapores del Hidróxido de Sodio puede irritar la boca, nariz y
garganta.
- Respirar los vapores del Hidróxido de Sodio puede irritar los pulmones
causando tos y disminución de la capacidad respiratoria. Exposiciones
elevadas pueden causar acumulación de líquido en los pulmones (edema
pulmonar), emergencia medica, con severos disminución de la respiración.
Razones para citarlo:
-Hidróxido de Sodio esta enlistado entre las sustancias peligrosas por estar
regulada por OSHA y ser citada por las siguientes instituciones: ACGIH,
DOT, NIOSH, NFPA y EPA.
- Este químico esta en la lista de sustancias especialmente peligrosas a la
salud.
En listado por ser CORROSIVO.
Información de Peligros a la Salud.
Efectos agudos a la salud.
Los siguientes efectos agudos (a corto plazo) en la salud pueden ocurrir
inmediatamente o poco después de la exposición al Hidróxido de Sodio
-El contacto puede causar irritación severa y quemaduras en la piel y ojos con
posible daño ocular o nubosidad del ojo con perdida de la visión.
- Respirar los vapores del Hidróxido de Sodio pueden irritar la boca, nariz y
garganta.
- Respirar los vapores del Hidróxido de Sodio puede irritar los pulmones
causando tos y disminución de la capacidad respiratoria. Exposiciones
elevadas pueden causar acumulación de líquido en los pulmones (edema
pulmonar), emergencia medica, con severos disminución de la respiración.
Efectos Crónicos a la Salud
Los siguientes efectos (a largo plazo) en la salud pueden ocurrir algún tiempo
después de la exposición al Hidróxido de Sodio y pueden durar por meses o
años:
Peligro de Cáncer
-De acuerdo a la información disponible actualmente en el Departamento de
Salud y Servicios Superiores del Estado de New Yersey, el Hidróxido de Sodio
aún no ha sido estudiado su capacidad de causar cáncer en animales.
Peligros a la Reproducción
- No hay evidencia de que el Hidróxido de Sodio afecte la reproducción. Esto
en base a los resultados de estudios publicados actualmente disponibles en el
Departamento de Salud y Servicios Superiores del Estado de New Yersey.
Otros Efectos a largo plazo.
- Exposiciones a muy altas al Hidróxido de Sodio pueden causar daño
pulmonar.
METANOL
Número CAS: 67-56-1
Resumen de Peligros:
Metanol puede afectar cuando es inhalada y al pasar a través de la piel.
Debe ser manejado CON EXTREMA PRECAUCION como un TERATOGENO
Puede causar irritación de la piel.
Razones para citarla:
Metanol esta en la lista de sustancias peligrosas por estar regulada por OSHA
y ser citada por las siguientes instituciones: ACGIH, DOT, NIOSH, DEP,
HHAG, NFPA y EPA.
Este químico esta entre las sustancias especialmente peligrosas. Enlistada por
ser un TERATOGENO y es INFLAMABLE.
Información de Peligros a la Salud.
Efectos agudos a la salud.
Los siguientes efectos agudos (a corto plazo) en la salud pueden ocurrir
inmediatamente o poco después de la exposición al Metanol.
Efectos Crónicos a la Salud
Los siguientes efectos (a largo plazo) en la salud pueden ocurrir algún tiempo
después de la exposición al Metanol y pueden durar por meses o años:
Peligro de Cáncer
No existe evidencia de que el Metanol cause cáncer en animales. Esta basado
en los resultados de las pruebas de estudios publicados disponibles
actualmente por el Departamento de Salud y Servicios Superiores del Estado
de New Yersey.
Peligros a la Reproducción
Metanol puede ser un TERATOGENO en humanos desde que se ha observado
que es teratógeno en animales.
Otros Efectos a largo plazo
El contacto repetido y prolongado puede causar resequedad y agrietamiento de
la piel. Metanol puede causar daño en el hígado y en el sistema nervioso.
P- FENILENDIAMINA
Número CAS: 106-50-3
Resumen de Peligros:
- p-Fenilendiamina puede afectar cuando es inhalada y al pasar a través de la
piel.
- Contacto puede irritar severamente y producir quemaduras en la piel y ojos
con posible daño ocular. Repetidas exposiciones altas concentraciones pueden
causar nubosidad en el lente del ojo (cataratas).
- Inhalar los vapores de p-Fenilendiamina pueden irritar la nariz, la garganta y
los pulmones causando tos, estornudo y/o disminución de la respiración.
- Exposiciones a p-Fenilendiamina pueden causar dolor abdominal, nausea,
elevar la presión sanguínea, mareos, ataques y hasta el coma.
- Altos niveles pueden interferir con la capacidad de la sangre para acarrear
oxigeno causando dolor de cabeza, fatiga, mareos, y color azul en la piel y
labios (metahemoglobinemia)
- Altos problemas pueden causar problemas respiratorios, colapso y hasta la
muerte.
- Exposiciones a la p-Fenilendiamina pueden dañar los glóbulos rojos de la
sangre causando anemia.
- p-Fenilendiamina pueden causar alergia en la piel. Si la alergia se desarrolla,
futuras exposiciones leves pueden causar picazón y sarpullido.
-p-Fenilendiamina pueden causar un asma como alergia. Futuras exposiciones
pueden causar ataques de asma con disminución de la respiración, estornudos,
tos y/o cierre de la traquea.
- p-Fenilendiamina puede dañar el hígado y riñones.
Razones para citarla:
- p-Fenilendiamina esta enlistada entre las sustancias peligrosas por estar
regulada por OSHA y ser citada por las siguientes instituciones: ACGIH, DOT,
NIOSH, DEP y EPA.
Información de Peligros a la Salud.
Efectos agudos a la salud.
Los siguientes efectos agudos (a corto plazo) en la salud pueden ocurrir
inmediatamente o poco después de la exposición a la p-Fenilendiamina:
- Contacto puede irritar severamente y producir quemaduras en la piel y ojos
con posible daño ocular. Repetidas exposiciones altas concentraciones pueden
causar nubosidad en el lente del ojo (cataratas).
- Inhalar los vapores de p-Fenilendiamina pueden irritar la nariz, la garganta y
los pulmones causando tos, estornudo y/o disminución de la respiración.
- Exposiciones a p-Fenilendiamina pueden causar dolor abdominal, nausea,
elevar la presión sanguínea, mareos, ataques y hasta el coma.
- Altos niveles pueden interferir con la capacidad de la sangre para acarrear
oxigeno causando dolor de cabeza, fatiga, mareos, y color azul en la piel y
labios (metahemoglobinemia).
- Altos problemas pueden causar problemas respiratorios, colapso y hasta la
muerte.
Efectos Crónicos a la Salud
Los siguientes efectos (a largo plazo) en la salud pueden ocurrir algún tiempo
después de la exposición al p-Fenilendiamina y pueden durar por meses o
años:
Peligro de Cáncer
- No existe evidencia de que la p-Fenilendiamina causa cáncer en animales.
Esto esta basado en los resultados de los estudios publicados y disponibles
actualmente en el Departamento de Salud y Servicios Superiores del Estado de
New Yersey.
Peligros a la Reproducción
- No existe evidencia de que la p-Fenilendiamina tenga efectos sobre la
reproducción. Esto esta basado en los resultados de los estudios publicados y
disponibles actualmente en el Departamento de Salud y Servicios Superiores
del Estado de New Yersey.
Otros Efectos a largo plazo
- Repetidas exposiciones altas concentraciones pueden causar nubosidad en el
lente del ojo (cataratas).
- Exposiciones a la p-Fenilendiamina pueden dañar los glóbulos rojos de la
sangre causando anemia.
- p-Fenilendiamina pueden causar alergia en la piel. Si la alergia se desarrolla,
futuras exposiciones leves pueden causar picazón y sarpullido.
-p-Fenilendiamina pueden causar un asma como alergia. Futuras
exposiciones pueden causar ataques de asma con disminución de la
respiración, estornudos, tos y/o cierre de la traquea.
- p-Fenilendiamina puede dañar el hígado y riñones.
4-NITROFENOL
Número CAS: 100-02-7
Resumen de Peligros:
- 4- Nitrofenol puede afectar cuando es inhalada y al pasar a través de la piel.
- Contacto puede irritar severamente y producir quemaduras en la piel y ojos
con posible daño ocular.
- Inhalar los vapores de 4-Nitrofenol pueden irritar la nariz, la garganta y los
pulmones causando tos, estornudo y disminución de la respiración.
- Altos niveles pueden interferir con la capacidad de la sangre para acarrear
oxigeno causando dolor de cabeza, fatiga, mareos, y color azul en la piel y
labios (metahemoglobinemia). Altos problemas pueden causar problemas
respiratorios, colapso y hasta la muerte.
- Exposiciones al 4-Nitrofenol pueden causar dolor estomacal, debilidad,
confusión, palpitaciones rápidas y/o fiebre.
- Altas y repetidas exposiciones pueden afectar el sistema nervioso.
- 4-Nitrofenol es un QUIMICO REACTIVO y con PELIGRO DE EXPLOSION.
Razones para citarla:
- 4- Nitrofenol esta enlistada entre las sustancias peligrosas por estar regulada
por OSHA y ser citada por las siguientes instituciones: DOT, NFPA, DEP, IRIS
y EPA.
- Este químico esta en la lista de sustancias especialmente peligrosas a la
salud. Enlistada por ser REACTIVO.
Información de Peligros a la Salud.
Efectos agudos a la salud.
Los siguientes efectos agudos (a corto plazo) en la salud pueden ocurrir
inmediatamente o poco después de la exposición al 4- Nitrofenol.
- Contacto puede irritar severamente y producir quemaduras en la piel y ojos
con posible daño ocular.
- Inhalar los vapores de 4-Nitrofenol pueden irritar la nariz, la garganta y los
pulmones causando tos, estornudo y/o disminución de la respiración. Altos
niveles pueden interferir con la capacidad de la sangre para acarrear oxigeno
causando dolor de cabeza, fatiga, mareos, y color azul en la piel y labios
(metahemoglobinemia). Altos problemas pueden causar problemas
respiratorios, colapso y hasta la muerte.
Exposiciones al 4-Nitrofenol pueden causar dolor estomacal, debilidad,
confusión, palpitaciones rápidas y/o fiebre.
Efectos Crónicos a la Salud
Los siguientes efectos (a largo plazo) en la salud pueden ocurrir algún tiempo
después de la exposición al 4-Nitrofenol y pueden durar por meses o años:
Peligro de Cáncer
-De acuerdo a la información actualmente disponible en el Departamento de
Salud y Servicios Superiores del Estado de New Yersey, 4-Nitrofenol ha sido
estudiado y no se han demostrado su capacidad de producir cáncer.
Peligros a la Reproducción
-De acuerdo a la información actualmente disponible en el Departamento de
Salud y Servicios Superiores del Estado de New Yersey, 4-Nitrofenol ha sido
estudiado y no se han demostrado tenga efectos sobre la reproducción.
Otros Efectos a largo plazo
4-Nitrofenol puede irritar los pulmones. Repetidas exposiciones pueden causar
bronquitis que se desarrolla con tos, flema y/o disminución de la respiración.
Altas o repetidas exposiciones pueden afectar el Sistema nervioso.
SULFATO DE ZINC
Número CAS: 7733-02-0
Razones para citarla:
- El Sulfato de Zinc esta en la lista de sustancias peligrosas por ser citada por
las siguientes instituciones: DOT, DEP y EPA.
Información de Peligros a la Salud.
Efectos agudos a la salud.
Los siguientes efectos agudos (a corto plazo) en la salud pueden ocurrir
inmediatamente o poco después de la exposición al Sulfato de Zinc.
- Al contacto puede irritar y quemar la piel.
- El Contacto con Sulfato de Zinc puede irritar severamente y quemar los ojos
con posible daño ocular.
- Inhalar los vapores de Sulfato de Zinc puede causar irritación de la nariz,
garganta causando tos, estornudos.
– Exposición al Sulfato de Zinc puede causar dolor de cabeza, mareos,
nauseas y vomito.
Efectos Crónicos a la Salud
Los siguientes efectos (a largo plazo) en la salud pueden ocurrir algún tiempo
después de la exposición al Sulfato de Zinc y pueden durar por meses o años:
Peligro de Cáncer
- No existe evidencia de que el Sulfato de Zinc cause cáncer en animales. Esta
basado en los resultados de las pruebas de estudios publicados disponibles
actualmente por el Departamento de Salud y Servicios Superiores del Estado
de New Yersey.
Peligros a la Reproducción
De acuerdo a la información actualmente disponible en el Departamento de
Salud y Servicios Superiores del Estado de New Yersey, Sulfato de Zinc no ha
sido estudiado para demostrar que tenga efectos sobre la reproducción.
Otros Efectos a largo plazo
Contacto prolongado o repetido puede causar sarpullido, resequedad en la piel
y enrojecimiento.
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