UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMICAS
ESCUELA DE QUÍMICA Y FARMACIA
MODALIDAD: INVESTIGACIÓN
TEMA
DETERMINACIÓN DE LOS FACTORES DE RIESGO MEDIANTE PRUEBAS
BIOQUÍMICAS EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA “SECADAL”
POR EL CONTACTO CON PLAGUICIDAS Y FERTILIZANTES, UBICADA EN
LA PARROQUIA JESÚS MARÍA DEL CANTÓN NARANJAL PROVINCIA DEL
GUAYAS
TRABAJO DE TITULACIÓN PRESENTADO COMO REQUISITO PREVIO
PARA OPTAR AL GRADO DE QUÍMICO Y FARMACÉUTICO
Autores:
Víctor Eduardo Cerdán Rivas
Orlando Andrés Guillén Chalco
TUTORA:
DRA.QF. ZOILA BELLA LUNA ESTRELLA Mg.
Guayaquil - Ecuador
2018
I
FACULTAD: CIENCIAS QUÍMICAS
CARRERA: QUÍMICA Y FARMACIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
FICHA DE REGISTRO DE TESIS/TRABAJO DE GRADUACIÓN
TÍTULO Y SUBTÍTULO: “Determinación de los factores de riesgo mediante pruebas bioquímicas en los
trabajadores de la hacienda “secadal” por el contacto con plaguicidas y fertilizantes, ubicada en la parroquia Jesús María cantón de naranjal provincia del Guayas”
AUTOR(ES) Cerdan Rivas Victor Eduardo
Guillen Chalco Orlando Andrés
REVISOR(ES)/TUTOR(ES) Qf. Zoila Bella Luna Estrella. Mg
INSTITUCIÓN: Universidad de Guayaquil
UNIDAD/FACULTAD: Ciencias Químicas
MAESTRÍA/ESPECIALIDAD: Química y Farmacia
GRADO OBTENIDO: Tercer Nivel - Químico y Farmacéutico
FECHA DE PUBLICACIÓN: 2018 No. DE PÁGINAS: 93
ÁREAS TEMÁTICAS: Determinacion de los valores de colinesterasa y pruebas Hepáticas
PALABRAS CLAVES: Colinesterasa, plaguicida, tgo, tgp, carbamatos, organofosforado, espectrofotómetro
RESUMEN/ABSTRACT: El uso de los fertilizantes y los plaguicidas que contienen carbamatos y organofosforados se efectúa
con mucha frecuencia en la Hacienda Secadal ubicada en la parroquia Jesús María del cantón Naranjal provincia del Guayas,
están en constante exposición a estos plaguicidas. En el Ecuador una de las causas de intoxicación por estos plaguicidas
organofosforados es la mala aplicación y la falta de equipos de protección personal, mucha de las veces también se debe a la
no capacitación al personal que va a realizar la aplicación de los plaguicidas. Este trabajo es de vital importancia para la
determinación cuantitativa de los niveles de colinesterasa sérica de cada uno de los trabajadores de la hacienda, junto con
pruebas bioquímicas hepáticas como lo son la TGO Y TGP podremos ayudar a estas personas para que tengan cuidado en
su salud por cualquier enfermedad a futuro debido a estos plaguicidas. Este estudio cubrió un total de 64 pacientes de ambos
sexos entre los cuales tenemos (17 mujeres y 47 hombres) de las cuales 54 muestras de personas son las que están expuestas
a estos plaguicidas y un grupo de 10 personas son parte del personal administrativo que conforman el grupo control. Para la
realización de este estudio se efectuó con la extracción del suero sanguíneo en las muestras de sangre de los agricultores,
para la determinación de colinesterasa sérica y pruebas hepáticas como la TGO y la TGP, se realizará un examen cuantitativo,
aplicando la técnica del espectrofotómetro semiautomático MINDRAY BA-88
ADJUNTO PDF: SI X NO
CONTACTO CON AUTOR/ES: Teléfono: 0983365192
0967686622
E-mail: [email protected]
CONTACTO CON LA INSTITUCIÓN:
Nombre: Secretaría Ciencias Químicas
Teléfono: (04)2-293680
E-mail: www.fcq.ug.edu.ec
II
FACULTAD: CIENCIAS QUÍMICAS
CARRERA: QUÍMICA Y FARMACIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
Guayaquil, 11 de enero del 2018
Sra. MSc, Q.F. Leyla Prias Mogro
DIRECTORA DE LA CARRERA QUÍMICA Y FARMACIA
FACULTAD DE CIENCIAS QUÌMICAS
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
Ciudad. - Guayaquil
De mis consideraciones:
Envío a Ud. el Informe correspondiente a la tutoría realizada al Trabajo de Titulación, DETERMINACION DE LOS FACTORES DE RIESGO MEDIANTE PRUEBAS BIOQUIMICAS EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA “SECADAL” POR EL CONTACTO CON PLAGUICIDAS Y FERTILIZANTES, UBICADA EN LA PARROQUIA JESUS MARIA DEL CANTON NARANJAL PROVINCIA DEL GUAYAS de los estudiantes Cerdán Rivas Víctor Eduardo y Guillen Chalco Orlando Andrés, indicando ha cumplido con todos los parámetros establecidos en la normativa vigente:
• El trabajo es el resultado de una investigación.
• El estudiante demuestra conocimiento profesional integral.
• El trabajo presenta una propuesta en el área de conocimiento.
• El nivel de argumentación es coherente con el campo de conocimiento.
Adicionalmente, se adjunta el certificado de porcentaje de similitud y la valoración
del trabajo de titulación con la respectiva calificación.
Dando por concluida esta tutoría de trabajo de titulación, CERTIFICO, para los
fines pertinentes, que los estudiantes están aptos para continuar con el proceso
de revisión final.
Atentamente,
Dra. Zoila Luna Estrella Mg.
TUTOR DE TRABAJO DE TITULACIÓN
C.I. 0907681795
III
FACULTAD: CIENCIAS QUÍMICAS
CARRERA: QUÍMICA Y FARMACIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
CERTIFICADO PORCENTAJE DE SIMILITUD
Habiendo sido nombrado DRA.QF. ZOILA BELLA LUNA ESTRELLA Mg, tutor del trabajo
de titulación certifico que el presente trabajo de titulación ha sido elaborado por
ORLANDO ANDRES GUILLEN CHALCO, con cedula de ciudadanía 1205679341, y
VICTOR EDUARDO CERDAN RIVAS con cedula de ciudadanía 0921164596, con mi
respectiva supervisión como requerimiento parcial para la obtención del título de Químico
Y Farmacéutico.
Se informa que el trabajo de titulación: “DETERMINACION DE LOS FACTORES DE
RIESGO MEDIANTE PRUEBAS BIOQUIMICAS EN LOS TRABAJADORES DE LA
HACIENDA “SECADAL” POR EL CONTACTO CON PLAGUICIDAS Y
FERTILIZANTES, UBICADA EN LA PARROQUIA JESUS MARIA DEL CANTON
NARANJAL PROVINCIA DEL GUAYAS”, ha sido orientado durante todo el periodo de
ejecución en el programa Antiplagio (URKUND) quedando el 6% de coincidencia.
https://secure.urkund.com/view/34418155-359328-932030#DcYxDsIwDEDRu2T+QrZjO26vgjqgClAGunRE3J2+6X3b52zrXQtLbNCV3nHFiyCEcJI0spNBXi9yYQijU0IpZdR1p4pFNto538d8zf1x7
DRA.Q.F. ZOILA LUNA ESTRELLA, Mg
C.I. _0907681795
IV
U R K U N D
Urkund Analysis Result
Analysed Document: VICTOR-ORLANDO..TESIS FINAL urkun.docx (D34957232)
Submitted: 1/23/2018 4:30:00 PM
Submitted By: [email protected]
Significance: 6 %
Sources included in the report:
TESIS INES .docx (D13869575)
Tesis Colinesterasa y Perfil Hepático Angel Vaca.docx (D15668651) TESIS MIRELLA ADUM (1).docx (D11631731) http://es.hesperian.org/hhg/
A_Community_Guide_to_Environmental_Health:Efectos_a_largo_plazo_de_los_plaguicidas_sobre
_la_salud
https://es.wikipedia.org/wiki/Colinesterasa
http://www.ridsso.com/documentos/muro/4e7574868342b355734035a0c0c18869.pdf http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1561-30032014000300010 http://salud.wikiplus.org/medlineplus/spanish/ency/article/003358.htm http://scielo.isciii.es/pdf/asisna/v26s1/nueve.pdf http://www.ecuadorencifras.gob.ec/wp-content/descargas/Presentaciones/Plaguicidas.pdf http://www.ecuadorencifras.gob.ec/documentos/web-inec/Encuestas_Ambientales/plaguicidas/ Plaguicidas-2013/Documento_Tecnico-Uso_de_Plaguicidas_en_la_Agricultura_2013.pdf http://www.ecuadorencifras.gob.ec/documentos/web-inec/Encuestas_Ambientales/plaguicidas/ Plaguicidas-2014/Modulo_Uso_y_Manejo_de_Agroquimicos.pdf http://www.lineaysalud.com/salud/medicinas-alternativas/transaminasas http://www.linear.es/ficheros/archivos/1109000C%20Rev.%2002.pdf http://www.linear.es/ficheros/archivos/1119005C%20Rev.%2003.pdf http://www.quimica.es/enciclopedia/Espectrofotometr%C3%ADa.html http://www.redalyc.org/pdf/3757/375752386005.pdf http://www.who.int/mediacentre/factsheets/pesticide-residues-food/es/ https://www.natursan.net/que-son-las-transaminasas/
Instances where selected sources appear:
V
FACULTAD: CIENCIAS QUÍMICAS
CARRERA: QUÍMICA Y FARMACIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
LICENCIA GRATUITA INTRANSFERIBLE Y NO EXCLUSIVA
PARA EL USO NO COMERCIAL DE LA OBRA CON FINES
NO ACADÉMICOS
Yo, Victor Eduardo Cerdán Rivas y Orlando Andrés Guillen Chalco con C.I. No.
0921164596 y 1205679341, certifico que los contenidos desarrollados en este trabajo
de titulación, cuyo título es “DETERMINACION DE LOS FACTORES DE RIESGO
MEDIANTE PRUEBAS BIOQUIMICAS EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA
“SECADAL” POR EL CONTACTO CON PLAGUICIDAS Y FERTILIZANTES,
UBICADA EN LA PARROQUIA JESUS MARIA DEL CANTON NARANJAL
PROVINCIA DEL GUAYAS” son de mi absoluta propiedad y responsabilidad Y SEGÚN
EL Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS
CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN*, autorizo el uso de una licencia
gratuita intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la presente obra con
fines no académicos, en favor de la Universidad de Guayaquil, para que haga uso del
mismo, como fuera pertinente
______________________ ________________________
Victor Cerdán Rivas Orlando Guillen Chalco
0921164596 1205679341
*CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN
(Registro Oficial n. 899 - Dic./2016) Artículo 114.- De los titulares de derechos de obras creadas en las instituciones de
educación superior y centros educativos.- En el caso de las obras creadas en centros educativos, universidades,
escuelas politécnicas, institutos superiores técnicos, tecnológicos, pedagógicos, de artes y los conservatorios
superiores, e institutos públicos de investigación como resultado de su actividad académica o de investigación tales
como trabajos de titulación, proyectos de investigación o innovación, artículos académicos, u otros análogos, sin
perjuicio de que pueda existir relación de dependencia, la titularidad de los derechos patrimoniales corresponderá a los
autores. Sin embargo, el establecimiento tendrá una licencia gratuita, intransferible y no exclusiva para el uso no
comercial de la obra con fines académicos.
VI
APROBACIÓN DEL TUTOR
En calidad de tutor /a del Trabajo de Titulación, Certifico: Que he
asesorado, guiado y revisado el trabajo de titulación en la modalidad de
investigación, cuyo título es DETERMINACION DE LOS FACTORES DE
RIESGO MEDIANTE PRUEBAS BIOQUIMICAS EN LOS
TRABAJADORES DE LA HACIENDA “SECADAL” POR EL CONTACTO
CON PLAGUICIDAS Y FERTILIZANTES, UBICADA EN LA PARROQUIA
JESUS MARIA DEL CANTON NARANJAL PROVINCIA DEL GUAYAS,
presentados por Victor Eduardo Cerdán Rivas , con cédula de
ciudadanía N° 0921164596 Y Orlando Andrés Guillen Chalco , con
cédula de ciudadanía N° 1205679341 , previo a la obtención del título de
Químico y Farmacéutico.
Este trabajo ha sido aprobado en su totalidad y se adjunta el informe de
Antiplagio del programa URKUND. Lo Certifico. -
Guayaquil, 15 de enero del 2018
____________________________
DRA.QF. ZOILA BELLA LUNA ESTRELLA Mg.
VII
El plagio encontrado durante la revisión del trabajo denominado "
DETERMINACION DE LOS FACTORES DE RIESGOS MEDIANTE
PRUEBAS BIOQUIMICAS EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA
“SECADAL” POR EL CONTACTO CON PLAGUICIDAS Y
FERTILIZANTES, UBICADA EN LA PARROQUIA JESUS MARIA DEL
CANTON NARANJAL PROVINCIA DEL GUAYAS “llevado a cabo por el
urkund fue del 6%
____________________________
DRA.QF. ZOILA BELLA LUNA ESTRELLA Mg.
VIII
CERTIFICADO DEL TRIBUNAL
El Tribunal de Sustentación del Trabajo de Titulación del Sr Victor Eduardo
Cerdan Rivas y Orlando Andrés Guillen Chalco, después de ser
examinado en su presentación, memoria científica y defensa oral, da por
aprobado el Trabajo de Titulación.
_________________________
Dra. Nilda Cedeño Alban PhD
PRESIDENTE
MIEMBRO DEL TRIBUNAL
_____________________ ____________________
Dra. Dolores Erazo López M.Sc. Dra. Ana Delgado García M.Sc.
DOCENTE DOCENTE
MIEMBRO DEL TRIBUNAL MIEMBRO DEL TRIBUNAL
__________________________________
Ab. Francisco Palomeque Romero Mg.
SECRETARIO GENERAL
IX
CARTA DE AUTORIA DE TITULACIÓN
Guayaquil, 15 de enero del 2018
Nosotros, Víctor Eduardo Cerdán Rivas Y Orlando Andrés Guillen
Chalco, autores de este trabajo declaro ante las autoridades de la Facultad de
Ciencias Químicas de la Universidad de Guayaquil, que la responsabilidad del
contenido de este TRABAJO DE TITULACIÓN, me corresponde a mi
exclusivamente; y el patrimonio intelectual de la misma a la Facultad de Ciencias
Químicas de la Universidad de Guayaquil.
Declaro también es de mi autoría, que todo el material escrito, salvo el que está
debidamente referenciado en el texto. Además, ratifico que este trabajo no ha sido
parcial ni totalmente presentado para la obtención de un título, ni en una
Universidad Nacional, ni una Extranjera.
__________________________ _____________________________
Víctor Eduardo Cerdán Rivas Orlando Andrés Guillen Chalco
C.I. 0921164596 C.I. 1205679341
X
AGRADECIMIENTO
Este proyecto de tesis va dedicado a Dios, a mis padres, que han sido
pilares fundamentales en mi vida, a mi familia por el apoyo incondicional
días tras días, para que hoy esté presente en este término de vida
estudiantil en esta alma mater.
A mi Esposa y a mi hija Geraldine, representando mi inspiración y por estar
a mi lado en todo momento brindándome su apoyo incondicional.
A mi Asesora de tesis Dra. Zoila Luna Estrella Msc. por la oportunidad de
recurrir a su capacidad y conocimiento para el total desarrollo de la tesis.
A mi Hermano, a mi abuela, por el apoyo incondicional.
Gracias a todos.
Victor Eduardo Cerdán Rivas
XI
AGRADECIMIENTO
Agradezco a Dios por haberme guiado y darme la fuerza para continuar con
los estudios y poder terminar la carrera, a mi familia que di su apoyo
incondicional.
A mis padres, en especial a mi madre por su esfuerzo y apoyo en todo
momento, a mi abuelo y a mi abuela que supieron aconsejar para alcanzar
mis objetivos.
A mi esposa y a mi hija Scarlet que me dieron fuerzas todos los días, para
seguir y no desmayar en esta época universitaria.
A mi asesora de tesis Dra. Zoila Luna Estrella Mg. por habernos guiado,
formado y animado en el camino de este proyecto.
Agradezco a todos por su ayuda cada día.
Orlando Andrés Guillen Chalco
XII
RESUMEN
El uso de los fertilizantes y los plaguicidas que contienen carbamatos y
organofosforados se efectúa con mucha frecuencia en la Hacienda Secadal
ubicada en la parroquia Jesús María del cantón Naranjal provincia del Guayas,
están en constante exposición a estos plaguicidas. En el Ecuador una de las
causas de intoxicación por estos plaguicidas organofosforados es la mala
aplicación y la falta de equipos de protección personal, mucha de las veces
también se debe a la no capacitación al personal que va a realizar la aplicación de
los plaguicidas. Este trabajo es de vital importancia para la determinación
cuantitativa de los niveles de colinesterasa sérica de cada uno de los trabajadores
de la hacienda, junto con pruebas bioquímicas hepáticas como lo son la TGO Y
TGP podremos ayudar a estas personas para que tengan cuidado en su salud por
cualquier enfermedad a futuro debido a estos plaguicidas. Este estudio cubrió un
total de 64 pacientes de ambos sexos entre los cuales tenemos (17 mujeres y 47
hombres) de las cuales 54 muestras de personas son las que están expuestas a
estos plaguicidas y un grupo de 10 personas son parte del personal administrativo
que conforman el grupo control. Para la realización de este estudio se efectuó con
la extracción del suero sanguíneo en las muestras de sangre de los agricultores,
para la determinación de colinesterasa sérica y pruebas hepáticas como la TGO y
la TGP, se realizará un examen cuantitativo, aplicando la técnica del
espectrofotómetro semiautomático MINDRAY BA-88 Los niveles de colinesterasa
sérica se encuentran dentro del rango de 81.25%, y de 18.75% que se encuentran
fuera de los rangos. En el análisis de TGO tenemos un 51.13% que se encuentran
dentro del rango, y un 46,87 % están fuera del rango, En el análisis de TGP nos
da como resultado un porcentaje de 50% que están dentro de los rangos y un
porcentaje de 50% que están fuera de los rangos.
PALABRAS CLAVE: Colinesterasa, Plaguicida, TGO, TGP, Carbamatos,
Organofosforado, Espectrofotómetro
XIII
ABSTRACT
The use of fertilizers and pesticides containing carbamates and
organophosphates is very frequently carried out at the Hacienda Secadal located
in the Jesús María parish of the Naranjal cantón of the province of Guayas, and
they are constantly exposed to these pesticides. In Ecuador, one of the causes of
poisoning by these organophosphorus pesticides is the poor application and the
lack of personal protective equipment, much of the time it is also due to the lack of
training for the personnel who will carry out the pesticide application. This work is
of vital importance for the quantitative determination of serum cholinesterase levels
of each of the workers of the hacienda, along with liver biochemical tests such as
the TGO and TGP we can help these people to take care of their health for any
future illness due to these pesticides. This study covered a total of 64 patients of
both sexes among which we have (17 women and 47 men) of which 54 samples
of people are those who are exposed to these pesticides and a group of 10 people
are part of the administrative staff that make up the control group For the realization
of this study was performed with the extraction of blood serum in the blood samples
of farmers, for the determination of serum cholinesterase and liver tests such as
TGO and TGP, a quantitative examination will be performed, applying the
spectrophotometer technique MINDRAY BA-88 semiautomatic serum levels of
cholinesterase are within the range of 81.25%, and 18.75% that are outside the
ranges. In the analysis of TGO we have 51.13% that are within the range, and
46.87% are out of range, In the TGP analysis we find a percentage of 50% that are
within the ranges and a percentage of 50% that are outside the ranges.
KEY WORDS: Cholinesterase, Pesticide, TGO, TGP, Carbamates,
Organophosphate, Spectrophotometer
INDICE
INTRODUCCION ................................................................................................. 1
Antecedentes ................................................................................................... 1
Planteamiento del Problema ............................................................................ 2
Objetivo General .............................................................................................. 3
Objetivos Específicos ................................................................................... 3
Hipótesis General ............................................................................................. 3
CAPITULO I REVISIÓN BIBLIOGRAFICA ........................................................... 4
1.1. Plaguicidas ............................................................................................ 4
1.1.1. Generalidades ................................................................................ 4
1.1.1. Definición........................................................................................ 4
1.1.2. Clasificación de los plaguicidas ...................................................... 5
1.1.3. Plaguicidas en el Ecuador .............................................................. 9
1.1.4. Efectos de los plaguicidas sobre la salud ..................................... 12
1.2. Insecticidas Organofosforados ............................................................ 13
1.2.1. Definición...................................................................................... 13
1.2.2. Metabolismo ................................................................................. 15
1.3. Carbamatos ......................................................................................... 16
1.3.1. Definición...................................................................................... 16
1.3.2. Característica de los carbamatos ................................................. 17
1.2. Fertilizantes ......................................................................................... 18
1.2.1. Definición...................................................................................... 18
1.2.2. Clasificación de los fertilizantes .................................................... 19
1.3. Colinesterasa ...................................................................................... 21
1.3.1. Definición...................................................................................... 21
1.3.2. Tipos de Colinesterasa ................................................................. 22
1.3.3. Valores de Colinesterasa .............................................................. 23
1.4. Plaguicidas Inhibidores de la Colinesterasa ......................................... 23
1.5. Transaminasa ...................................................................................... 24
1.5.1. Generalidades .............................................................................. 24
1.5.2. Definición...................................................................................... 24
1.5.3. Tipos de transaminasas ................................................................ 25
1.5.4. Aspartato Amino Transferasa (TGO) ............................................ 26
1.5.5. Alanina Amino Transferasa (TGP) ................................................ 27
1.5.6. Patología clínica de la TGO y TGP .............................................. 28
1.5.7. Enfermedades con niveles séricos anormales de transaminasa ... 28
1.6. Factores que Modifican La Actividad De La Colinesterasa .................. 28
1.6.1. Sexo ............................................................................................. 28
1.6.2. Edad ............................................................................................. 29
1.6.3. Etnia ............................................................................................. 29
1.6.4. Nutrición ....................................................................................... 29
1.6.5. Embarazo ..................................................................................... 29
1.6.6. Uso de Fármacos Inhibidores ....................................................... 29
CAPITULO II MATERIALES Y MÉTODOS ........................................................ 30
2.1 Materiales ............................................................................................ 30
2.1.1. Lugar de la Investigación .............................................................. 30
2.1.2. Periodo de Investigación .............................................................. 30
2.1.3. Recursos Empleados.................................................................... 30
2.1.4. Universo ....................................................................................... 31
2.1.5. Muestra y Tamaño de Muestra ..................................................... 31
2.2 Métodos............................................................................................... 34
2.2.1. Tipo de Investigación .................................................................... 34
2.2.2. Diseño de Investigación ................................................................ 34
2.2.3. Determinación de Colinesterasa: Método Cinético. ...................... 35
2.2.4. Procedimiento para la determinación de Colinesterasa Sérica
(Anexo 6) .................................................................................................... 35
2.2.5. Fundamento del Método ............................................................... 36
2.2.6. Procedimiento para la determinación de la TGP. (Anexo 7). ........ 37
2.2.7. Fundamento del Método ............................................................... 37
2.2.8. Procedimiento para la determinación de la TGO (Anexo 8) .......... 38
2.2.9. Fundamento del Método ............................................................... 38
2.2.10. El equipo utilizado espectrofotómetro semiautomático Mindray ba-
88 con gran pantalla táctil y software de funcionamiento intuitivo. (Anexo 9)
39
2.2.10.1. Esquema de la configuración del equipo Mindray ba-88. .......... 40
2.2.11. Esquema de la determinación de Colinesterasa Sérica. ........... 41
2.2.12. Esquema de la determinación de AST / TGO............................ 42
2.2.13. Esquema de la determinación de ALT/ TGP. ............................ 43
CAPITULO III RESULTADOS Y DISCUSIÓN .................................................... 44
3.1 Discusión ............................................................................................. 44
3.2 Interpretación de los Resultados ......................................................... 45
CONLCUSIONES .............................................................................................. 69
RECOMENDACIONES ...................................................................................... 70
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS ................................................................... 71
ANEXOS ........................................................................................................... 75
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura I CRONOLOGÍA DE LOS INSTRUMENTOS DE CONTROL DEL USO DE
PLAGUICIDAS. 1950 – 2005 .............................................................................. 9
Figura II FÓRMULA DEL ÁCIDO FOSFÓRICO ................................................ 14
Figura III FÓRMULA DE INSECTICIDAS ORGANOSFOSFORADOS ............. 14
Figura IV ESTRUTURA QUÍMICA DE CARBAMATOS .................................... 16
Figura V FÓRMULA DE ACETILCOLINA ........................................................ 22
Figura VI MINDRAY BA-88............................................................................... 39
Figura VII ENJUAGUE...................................................................................... 94
Figura VIII EQUIPO DE PROTECCIÓN PERSONAL........................................ 96
INDICE DE GRAFICOS
Gráfico I HECTÁREAS CON USO DE AGROQUÍMICOS (PROCENTAJES) .. 11
Gráfico II SÍNTOMAS SUFRIDOS U OBSERVADORES MÁS COMUNES
DESPUÉ DE LA APLICACIÓN DE PLAGUICIDAS EN EL CULTIVO ZONA DE
PLANIFICACIÓN I. ............................................................................................ 12
Gráfico III REPRESENTACION GRAFICA DEL GRUPO CONTROL DE
COLINESTERASA SERICA .............................................................................. 46
Gráfico IV REPRESENTACION GRAFICA DEL GRUPO CONTROL DE AST
(TGO) Y ALT (TGP) . ........................................................................................ 48
Gráfico V REPRESENTACION GRAFICA DE LOS VALORES DE
COLINESTRERASA SERICA OBTENIDOS DE LOS TRABAJADORES DE LA
HACIENDA SECADAL. ..................................................................................... 52
Gráfico VI REPRESENTACION GRAFICA DE LOS VALORES DE AST (GOT)
OBTENIDOS DE LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL ........ 59
Gráfico VII REPRESENTACION GRAFICA DE LOS VALORES DE ALP (GPT)
OBTENIDOS DE LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL ........ 60
Gráfico VIII PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE COLINESTERASA
SERICA EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL. .............. 62
Gráfico IX PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE AST (GOT) EN LOS
TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL. ........................................... 63
Gráfico X PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE ALT (GPT) EN LOS
TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL. ........................................... 64
Gráfico XI DISTRIBUCION POR SEXO DE LOS 64 TRABAJADORES DE LA
HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON NARANJAL. ................... 65
Gráfico XII DISTRIBUCION DELOS 64 TRABAJADORES SEGÚN LA
EXPOSICIÓN DEL TRABAJO EN LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL
CANTON NARANJAL. ...................................................................................... 66
Gráfico XIII COMPARACIÓN DE MUESTRA CONTROL Y MUESTRA A
INVESTIGAR ..................................................................................................... 67
INDICE DE TABLAS
Tabla I CLASIFICACIÓN DE LOS PLAGUICIDAS SEGÚN EL ORGANISMO
QUE INTERESA CONTROLAR. ......................................................................... 6
Tabla III CLASIFICACIÓN DE LOS PLAGUICIDAS SEGÚN EL GRUPO
QUÍMICO ............................................................................................................. 7
Tabla IIIII CLASIFICACIÓN DE LOS PLAGUICIDAS SEGÚN PELIGROSIDAD.
............................................................................................................................ 8
Tabla IVSUPERFICIE AGROPECUARIA.......................................................... 10
Tabla V PROCEDIMIENTO PARA DETERMINACIÓN DE COLINESTERAS ... 36
Tabla VI PROCEDIMIENTO PARA DETERMINACIÓN DE ALT / TGP ............ 37
Tabla VII PROCEDIMIENTO PARA DETERMINACIÓN DE AST / TGO ........... 39
Tabla VIII DETERMINACION DE COLINESTERASA EN EL GRUPO CONTROL
DEL PERSONAL ADMINISTRATIVO DE LA HACIENDA SECADAL .............. 45
Tabla IX DETERMINACION DE AST (TGO) Y ALT (TGP) EN EL GRUPO
CONTROL DEL PERSONAL ADMINISTRATIVO DE LA HACIENDA SECADAL
.......................................................................................................................... 47
Tabla X DATOS DE LOS PACIENTES Y RESULTADO DEL ANALISIS DE
COLINESTERASA OBTENIDOS MEDIANTE LA TECNICA DE
ESPECTROFOTOMETRIA, EN LOS TRABAJADORES Y PERSONAL
ADMINISTRATIVO EN LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON
NARANJAL. ...................................................................................................... 49
Tabla XI DATOS DE LOS PACIENTES Y RESULTADO DEL ANALISIS DE
PRUEBAS HEPATICAS AST (GOT) OBTENIDOS MEDIANTE LA TECNICA DE
ESPECTROFOTOMETRIA, EN LOS TRABAJADORES Y PERSONAL
ADMINISTRATIVO EN LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON
NARANJAL. ...................................................................................................... 53
Tabla XII DATOS DE LOS PACIENTES Y RESULTADO DEL ANALISIS DE
PRUEBAS HEPATICAS ALP (GPT) OBTENIDOS MEDIANTE LA TECNICA DE
ESPECTROFOTOMETRIA, EN LOS TRABAJADORES Y PERSONAL
ADMINISTRATIVO EN LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON
NARANJAL. ...................................................................................................... 56
Tabla XIII PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE COLINESTERASA
SERICA EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL. .............. 61
Tabla XIV PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE AST (GOT) EN LOS
TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL. ........................................... 62
Tabla XV PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE ALT (GPT) EN LOS
TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL. ........................................... 63
Tabla XVI DISTRIBUCION POR SEXO DE LOS 64 TRABAJADORES DE LA
HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON NARANJAL. ................... 65
Tabla XVII DISTRIBUCION DE LOS 64 TRABAJADORES SEGÚN LA
ACTIVIDAD QUE DESENPEÑAN EN LA HACIENDA SECADAL UBICADA EN
EL CANTON NARANJAL. ................................................................................ 66
Tabla XVIII COMPARACION DE LA MUESTRA CONTROL, CON LA MUESTRA
QUE CONTIENE VALORES FUERA DEL RANGO NORMAL DE REFERENCIA.
.......................................................................................................................... 67
ANEXOS
Anexo 1 CARTA DE PRESENTACION DIRIGIDA AL ADMINISTRADOR DE LA
HACIENDA SECADAL. ..................................................................................... 75
Anexo 2 ORDEN PARA LA TOMA DE MUESTRAS ....................................... 76
Anexo 3 REGISTRO DE LOS PACIENTES. RESULTADOS DE
COLINESTERASA SERICA. ............................................................................. 77
Anexo 4 REGISTRO DE LOS PACIENTES. RESULTADOS DE TGO Y TGP . 78
Anexo 5 FORMULARIO DE CONSENTIMIENTO INFORMADO. .................... 79
Anexo 6 DETERMINACION DE LA COLINESTERASA. ................................. 80
Anexo 7 DETERMINACION DE TGP/ALT ....................................................... 82
Anexo 8 DETERMINACION DE TGO/AST ...................................................... 84
Anexo 9 CARACTERISTICA DEL ESPECTROFOTOMETRO MINDRAY BA-88
.......................................................................................................................... 86
Anexo 10 TOMA DE MUESTRA: DISPENSARIO MEDICO DE LA HACIENDA
SECADAL ......................................................................................................... 87
Anexo 11 CON LA LCDA ROSA PACHECO RODAS EN EL DISPENSARIO DE
LA HACIENDA SECADAL ................................................................................ 88
Anexo 12 ENTRADA DE LA HACIENDA SECADAL ...................................... 88
Anexo 13 EXTRACCION DEL SUERO SANGUINEO ..................................... 89
Anexo 14 PREPARACION DE LAS MUESTRAS PARA EL ANALISIS .......... 89
Anexo 15 REACTIVOS DE COLINESTERASA. .............................................. 90
Anexo 16 REACTIVOS DE TGO Y TGP .......................................................... 90
Anexo 17 REALIZANDO LAS LECTURAS DE LAS MUESTRAS ................... 91
Anexo 18 ESPECTROFOTOMETRO SEMIAUTOMATICO MINDRAY BA-88 92
Anexo 19 GUIA DE USO DE EQUIPO DE PROTECCION (EPP), ELABORADO
POR: Victor Cerdán Rivas y Orlando Guillen Chalco. ................................... 93
1
INTRODUCCION
Antecedentes
Según reporte de la Organización Mundial de la Salud existen más de 1000
plaguicidas, con el propósito de impedir que las plagas destruyan los cultivos, en
la cual cada plaguicida tiene propiedades y efectos toxicológicos según su función.
A nivel mundial se demuestran que los plaguicidas son los responsables de
intoxicación y aproximadamente unas 200.000 muertes al año, donde el 99% de
estas muertes proviene de los países en desarrollo donde la salud y las
regulaciones ambientales son muy escasas.
La OMS en conjunta colaboración con la FAO, “se encargan de evaluar los
riesgos de plaguicidas para el ser humano” (OMS, 2017). Donde son expuestos
de forma directa o indirectamente en la aplicación de este producto.
En el Ecuador, el uso de plaguicidas surge a raíz de los años 50 en la
agroexportacion del auge cacaotero y bananero y otros cultivos susceptibles a
diversas plagas, desde entonces se ha incrementado el uso de este químico que
contiene compuestos organofosforados hasta la actualidad, donde los
trabajadores del sector agrícola utilizan este producto para el uso de la eliminación
de las plagas que atraviesan durante el periodo de cosecha.
La Unidad de Registro de Plaguicidas de AGROCALIDAD en el Ecuador
registra y controla los productos de uso agrícola, con el objetivo de garantizar la
calidad, eficacia y prevención del control de plagas a nivel de las Unidades de
Producción Agrícola.
2
Planteamiento del Problema
Unas de las grandes problemáticas de los trabajadores agrícolas de la
Hacienda SECADAL, es la exposición constante mediante la ingestión, la
inhalación o el contacto directo con la piel de los químicos organofosforados y
organoclorados y carbamatos, los cuales están presentes en los pesticidas usados
para la eliminación o reducción de plagas. El escaso uso de la adecuada
protección y la repercusión de los químicos, es la causa más frecuente de
intoxicación y este hecho repercute a la salud.
Lo antes expuesto, nos ha motivado a determinar los niveles de transaminasas
y de colinesterasa sérica en los trabajadores agrícolas de la Hacienda SECADAL
por el manejo y exposición de plaguicidas y fertilizantes.
Las consideraciones expuestas nos llevan a plantear la siguiente interrogante:
¿Qué factores de riesgos existen en los trabajadores de la Hacienda
SECADAL por el contacto de plaguicidas y fertilizantes?
3
Objetivo General
Determinar los factores de riesgos mediante pruebas hepáticas y de
colinesterasa sérica en los trabajadores de la Hacienda Secadal por el contacto
de plaguicidas y fertilizantes, ubicada en la parroquia Jesús María del cantón
Naranjal provincia del Guayas.
Objetivos Específicos
Comparar los niveles de actividad de la enzima colinesterasa sérica en
muestras de sangres tomadas a un grupo de agricultores que trabajan con
plaguicidas y fertilizantes que contienen compuestos que inhiben esta
enzima y a un grupo de control no expuesto a estos plaguicidas.
Identificar los factores de riesgos en los trabajadores de la Hacienda
Secadal.
Elaborar cuadros comparativos de los niveles de colinesterasa sérica entre
los trabajadores de la hacienda el Secadal y personal administrativo de la
hacienda el Secadal.
Proponer un manual sobre el uso de equipos de protección personal para
los trabajadores de la hacienda el Secadal
Hipótesis General
Mediante pruebas bioquímicas realizadas a los trabajadores de la hacienda
Secadal, se determinarán factores de riesgos para su salud, por el contacto con
plaguicidas y fertilizantes.
4
CAPITULO I REVISIÓN BIBLIOGRAFICA
1.1. Plaguicidas
1.1.1. Generalidades
Para la elaboración de los plaguicidas se requiere de un ingrediente activo, esta
puede ser una sustancia orgánica o inorgánica, natural, sintética o biológica que
posee la acción plaguicida, el efecto se va regulando con la potencia de la mezcla
con otros componentes como lo son los aditivos. Estos tienen la capacidad de
cambiar las propiedades físicas y químicas de los ingredientes activos para dicho
procedimiento los aditivos no tienen la capacidad de transformarse, solo se utilizan
para cumplir prescripciones reglamentarias de los productos químicos, como por
ejemplo los colorantes. El producto final puede ser concentrada emulsionable,
liquido, polvo granulado, etc. La aplicación puede darse por vía aérea y por vía
terrestre. (Centro de Información de Sustancias Químicas, 2014)
1.1.1. Definición
Los plaguicidas constituyen el mayor grupo de sustancias tóxicas que están
siendo dispersadas por el hombre en nuestro medio ambiente (Anguiano, inédito).
(Fernández , Pujol , & Maher , 2012)
La FAO (en inglés Food and Agriculture Organisation: Organización de las
Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura) define a los plaguicidas
como una sustancia o conjunto de sustancia para prevenir, destruir y controlar una
plaga, entre ello comprende cualquier vector de enfermedades humanas o de
otros animales, especies no deseadas de animales ni de plantas que causen daño
con la producción: Procesamiento, almacenamiento, transporte y comercialización
5
de dichos alimentos o productos agrícolas. (Código Internacional de Conducta
para la Distribución y Utilización de Plaguicidas, 2006)
Los plaguicidas pueden ser de naturaleza química y biológica. Entre los
primeros existen alrededor de 1000 principios activos con los cuales se producen
30 000 formulados. Los plaguicidas biológicos tienen 195 principios activos y con
ellos se fabrican hasta 780 productos diferentes. Esta gran diversidad de mezclas
elaboradas a partir de diferentes principios activos a los que se asocian
excipientes y diluyentes denominados ingredientes inertes, que constituyen una
gran proporción del producto en cuanto a los efectos nocivos estos superan
frecuentemente los del propio ingrediente activo, hace que sea difícil su manejo,
de ahí que existan diferentes clasificaciones, que favorecen el trabajo de las
personas que interactúan con ellos, además de tener cierto control sobre los
efectos adversos sobre el ambiente y la salud. (Del Puerto Rodríguez, Suárez
Tamayo , & Palacio Estrada , 2014)
Varios de los plaguicidas han sido identificados como un peligro a largo plazo
para el medio ambiente y están prohibidos, rigurosamente restringidos por
convenios internacionales, como el Convenio de Estocolmo sobre los
Contaminantes Orgánicos Persistentes (COP), que entró en vigor en mayo de
2004 y abarca 12 productos químicos, que incluye ocho plaguicidas y otros
contaminados con dioxina. Las clasificaciones incluidas en ese documento tienen
una utilidad para ayudar a las autoridades de los países en desarrollo a adoptar
decisiones prácticas destinadas a disminuir el riesgo de los plaguicidas y a dar
prioridad, en sus procedimientos reguladores, a la revisión de plaguicidas
problemáticos específicos. (Del Puerto Rodríguez, Suárez Tamayo , & Palacio
Estrada , 2014)
1.1.2. Clasificación de los plaguicidas
Dada la gran cantidad de familias químicas implicadas, la clasificación de los
plaguicidas resulta difícil. Un recurso útil es clasificarlos en función de las plagas
sobre las que se usan. Otra posibilidad es hacer una clasificación en relación con
6
la familia química, que suministra mayor información sobre su toxicidad. En
general, se tiende a hacer una clasificación mixta por ambos criterios. (Dr Henao
& Dr Nieto , s.f.)
Existen tres formas de clasificar los plaguicidas:
Según el tipo de organismo que se desee controlar.
Según el grupo químico.
Según la toxicidad aguda.
1.1.2.1. Clasificación de los plaguicidas según el organismo que interesa
controlar
Tabla I CLASIFICACIÓN DE LOS PLAGUICIDAS SEGÚN EL ORGANISMO QUE INTERESA CONTROLAR.
Tipo de Plaguicida Organismo que interesa controlar
Insecticida: Larvicida Formicida Pulguicida
Piojicida Aficida
Larvas de insectos Hormigas Pulgas Piojos
Pulgones
Acaricida: Garrapaticida Garrapatas
Nematicida Nemátodos
Molusquicida Moluscos
Rodenticida Roedores
Avicida: Columbicida Aves (palomas)
Bacteriostático y Bactericida Bacterias
Fungicida Hongos
Herbicida Plantas indeseadas
Fuente: (Dr Henao & Dr Nieto , s.f.)
7
1.1.2.2. Clasificación de los plaguicidas según el grupo químico
Tabla III CLASIFICACIÓN DE LOS PLAGUICIDAS SEGÚN EL GRUPO QUÍMICO
Bipiridilos
Bipiridilos
Carbamatos
Compuestos organo-estánicos
Compuestos organoclorados
Compuestos organofosforados
Compuestos organomercuriales
Triazinas
Derivados del ácido fenoxiacético
Derivados del cloronitrofenol
Piretroides y piretrinas
Tiocarbamatos
Derivados cumarínicos, otros
Fuente: (Dr Henao & Dr Nieto , s.f.)
1.1.2.3. Clasificación según la toxicidad aguda
La Organización Mundial de la Salud (OMS) ha recomendado - sujeta a
actualizaciones periódicas - una clasificación de plaguicidas según el grado de
peligrosidad, entendiendo ésta como su capacidad de producir daño agudo a la
salud cuando se dan una o múltiples exposiciones en un tiempo relativamente
corto. (Dr Henao & Dr Nieto , s.f.)
8
La (DL50) es la cantidad de una sustancia que es necesario ingerir de una sola
vez para producir la muerte del 50% de los animales en ensayo. Esta dosis se
expresa generalmente en mg/kg del peso del animal ensayado. Es un valor
estadístico que normalmente se expresa con un número, pero en algunos casos
puede ser un rango. La DL50 en el caso de los plaguicidas, debe determinarse
para las diferentes rutas de exposición (oral, dérmica y respiratoria) y en diferentes
especies de animales. Normalmente la DL50 se expresa por vía oral y para ratas.
(Dr Henao & Dr Nieto , s.f.)
La DL50 está relacionada exclusivamente con la toxicidad aguda de los
plaguicidas. No mide su toxicidad crónica, es decir aquella que surge de pequeñas
exposiciones diarias al plaguicida a través de un largo período. Es decir que un
producto con una baja DL50 puede tener graves efectos crónicos por exposición
prolongada, como por ejemplo provocar cáncer. Clasificación de los plaguicidas
según peligrosidad recomendada por la Organización Mundial de la Salud (Dr
Henao & Dr Nieto , s.f.)
Tabla IIIII CLASIFICACIÓN DE LOS PLAGUICIDAS SEGÚN PELIGROSIDAD.
Fuente: International Programme of Chemical Safety. The WHO recommended
classification of pesticides by hazard and guidelines to classification 1996-1997.
9
1.1.3. Plaguicidas en el Ecuador
(OPS, OMS, & MSP , 2007) expone “En el ecuador el uso de plaguicidas
presenta algunos desafíos la salud pública. a continuación, ofrezco una apretada
síntesis histórica sobre las disposiciones legales nacionales e internacionales
orientadas a normar el uso de plaguicidas”. (pág. 166)
Figura I CRONOLOGÍA DE LOS INSTRUMENTOS DE CONTROL DEL USO DE PLAGUICIDAS. 1950 – 2005
Fuente: (OPS, OMS, & MSP , 2007)
10
Debido a la vital importancia del país, el sector agropecuario es uno de los
principales generadores de empleos esto genera un impacto en el ámbito físico,
ambiental, económico y social para el país, ya que por medio de este sector se
generan divisas mediante exportaciones de nuestros productos. (INEC, Módulo
Ambiental Uso de Plaguicidas en la Agricultura , 2013)
El “Módulo de Uso y Aplicación de Plaguicidas en la Agricultura del Ecuador”,
tiene como objetivo principal solicitar información de los plaguicidas más utilizados
en el país, hábitos para utilización de los mismos, el destino final de los envases
y recipientes de los plaguicidas, así como su incidencia en el ambiente en términos
toxicológico en el ecosistema y su impacto en los agricultores que estén de una u
otra manera expuestos. (INEC, Módulo Ambiental Uso de Plaguicidas en la
Agricultura , 2013)
Al analizar los resultados y según la opinión de (INEC, Uso y Manejo de
Agroquímicos en la Agriultura , 2014 ) : La superficie agropecuaria del Ecuador en
el 2014 fue de 5’132.066* hectáreas.
Tabla IVSUPERFICIE AGROPECUARIA
Fuente: (INEC, Módulo Ambiental Uso de Plaguicidas en la Agricultura , 2013)
El uso de Agroquímicos en el ecuador para los cultivos Permanentes y
Transitorio al analizar los resultados de los estudios previos encontramos que:”
11
Del total de agroquímicos utilizados, los cultivos transitorios utilizan una mayor
cantidad de fertilizantes.”
Gráfico I HECTÁREAS CON USO DE AGROQUÍMICOS (PROCENTAJES)
Fuente: (INEC, Encuesta sobre el uso de Agroquímicos y su destino final en la
agricultura , 2012)
El uso de plaguicidas en el Ecuador data de los años 1950 y se ha duplicado
durante los últimos 20 años. La ayuda de los plaguicidas ha generado muchos
beneficios en la producción agrícola en todo el mundo, pero el uso y el empleo
inadecuado de estos plaguicidas han producido contaminación ambiental y
afecciones en la salud de los agricultores.
12
Signos y síntomas de intoxicación por plaguicida según la opinión de (INEC,
Encuesta sobre el uso de Agroquímicos y su destino final en la agricultura , 2012):”
El dolor de cabeza es el síntoma más recurrente dentro de las personas que
aplican plaguicidas con un 56,4%, seguido por el ardor de ojos con el 55,1%”.
Gráfico II SÍNTOMAS SUFRIDOS U OBSERVADORES MÁS COMUNES DESPUÉ DE LA APLICACIÓN DE PLAGUICIDAS EN EL CULTIVO ZONA DE PLANIFICACIÓN I.
Fuente: (INEC, Encuesta sobre el uso de Agroquímicos y su destino final en la
agricultura , 2012)
1.1.4. Efectos de los plaguicidas sobre la salud
La gran parte de las intoxicaciones o envenenamientos por plaguicidas se
deben a la exposición durante varias semanas, meses o hasta años, no por una
sola exposición. Los trabajadores pueden no enfermarse hasta muchos años
después de entrar en contacto con los plaguicidas. En los adultos podrían pasar
5, 10, 20, 30 años o más antes de enfermarse debido a la exposición continua.
(Conant & Fadem, 2011)
13
El tiempo que la enfermedad tarda en manifestarse depende de muchos
factores:
Del tipo de producto químico.
De la cantidad a la que se expuso la persona.
Del tiempo que duró la exposición.
De la edad, peso, altura y sexo de la persona expuesta.
Del estado general de salud en el momento de la exposición.
Las enfermedades causadas por plaguicidas pueden comenzar antes del
nacimiento del bebé si la madre embarazada entra en contacto con plaguicidas.
(Conant & Fadem, 2011)
1.2. Insecticidas Organofosforados
1.2.1. Definición
Los compuestos organofosforados son pesticidas constituidos por ésteres
químicos derivados del ácido fosfórico, que inhiben de forma irreversible las
colinesterasas. Estos productos son utilizados en el mundo como insecticidas
agrícolas y domésticos1,2. En países en vía de desarrollo, se consideran como
uno de los tipos de agentes más involucrados en intoxicaciones voluntarias,
ocupacionales y accidentales por su alta toxicidad, amplia disponibilidad y por las
malas prácticas en su uso y almacenamiento. (Barguil-Díaz, Lozano Mosquera,
Pinto Maquilón, & Aristizábal Hernández, 2012)
Los agentes causales usualmente descritos en la literatura médica son: fentión,
dimetoato, monocrotofos, metamidofos y malatión, y la mayoría de los contactos
tóxicos en seres humanos están asociados con intentos de suicidio. Según la
Organización Mundial de la Salud (OMS) las exposiciones tóxicas en el mundo
(por año) se dividen en un millón de casos accidentales y dos millones debidos a
contactos voluntarios, principalmente por intentos de suicidio, de los cuales
doscientos mil individuos fallecen, la mayoría, en países en desarrollo. (Barguil-
Díaz, Lozano Mosquera, Pinto Maquilón, & Aristizábal Hernández, 2012)
14
Figura II FÓRMULA DEL ÁCIDO FOSFÓRICO
Fuente: qumicainorgan.blogspot.com
Y la formula básica de los insecticidas organofosforados se puede considerar así;”
Figura III FÓRMULA DE INSECTICIDAS ORGANOSFOSFORADOS
Fuente: drmarmolejo318/ slideshare.net
Los principales plaguicidas utilizados hoy día en los países desarrollados
pertenecen al grupo de los carbamatos, organofosforados (OF), tiocarbamatos y
piretroides. A estos se unen nuevos compuestos desarrollados en la industria
química de síntesis, la cual, se encuentra comprometida con el desarrollo
15
sostenible en la producción agrícola. Los OF y carbamatos causan una inhibición
de la acetilcolinesterasa (enzima encargada de degradar la acetilcolina en el
espacio sináptico), lo que conduce a una acumulación del neurotransmisor
acetilcolina en los receptores muscarínicos y nicotínicos, con la consiguiente
hiperestimulación del sistema parasimpático, dando como resultado un síndrome
colinérgico. Los OF y los carbamatos presentan diferencias; los primeros inhiben
la enzima irreversiblemente, mientras que los segundos lo hacen de forma
reversible, reactivándose espontáneamente a las 24-48 horas. Esta puede ser la
razón por la cual los carbamatos no alcanzan a producir algunas manifestaciones
clínicas que se presentan con relativa frecuencia en la intoxicación por
organofosforados. (Marrero, González, Guevara, & Eblen, 2017)
El mecanismo de las intoxicaciones por organofosforados se produce mediante
la inhibición de la enzima acetilcolinesterasa y en consecuencia la acumulación
de acetilcolina. La muerte ocurre por falla respiratoria, como consecuencia del
bloqueo de centro respiratorio, broncoespasmo y parálisis de músculos
respiratorios. (INSHT, 2009)
1.2.2. Metabolismo
En general los Compuestos Organofosforados son sustancias muy
liposolubles. Su volatilidad es variable, aunque se suelen utilizar como IOF los
compuestos menos volátiles. Una vez que entran en un organismo vivo, poseen
una corta vida media en el plasma y un elevado volumen de distribución en los
tejidos. (Martín Rubí , Yélamos Rodriguez , Laynez Bretones , & Córdoba Escámez
, 2016)
Los Compuestos Organofosforados son atacados por una serie de enzimas
(esterasas, enzimas microsomiales, transferasas), fundamentalmente en el
hígado, sufriendo una serie de transformaciones químicas. Estas
transformaciones tienden a aumentar la hidrosolubilidad del plaguicida, y por
consiguiente facilitan su excreción. Pero a veces el metabolismo aumenta su
16
toxicidad, como sucede con las formas oxón en que son transformadas el paratión
y el malatión. (Martín Rubí , Yélamos Rodriguez , Laynez Bretones , & Córdoba
Escámez , 2016)
La alta liposolubilidad los Compuestos Organofosforados, son acumulados en
tejidos ricos en grasas, como el panículo adiposo o el tejido nervioso, desde donde
pueden ser liberados nuevamente al torrente sanguíneo. Estos se eliminan por vía
urinaria y heces, en su forma activa o previa metabolización hepática. (Martín
Rubí , Yélamos Rodriguez , Laynez Bretones , & Córdoba Escámez , 2016)
1.3. Carbamatos
1.3.1. Definición
Los carbamatos son derivados del ácido Carbanico CH3NO2, los carbamatos
simples en los que los radicales R1 y R2 son grupos metilos que inhiben las
colinesterasas y son los más utilizados como insecticidas, algunas veces estos no
tienen su acción de insecticida, pero actúan como herbicidas o fungicidas. Suelen
pasar por reacciones de degradaciones como la N-demitelacion, hidroxilación,
sulfaoxidacion, estas reacciones en su mayoría de los casos fracasan siendo
como producto final el CO2 que puede integrarse a los tejidos o eliminarse por la
transpiración, leche y orina. (Ferrer , 2006)
Figura IV ESTRUTURA QUÍMICA DE CARBAMATOS
Fuente: Wikipedia.org
17
1.3.2. Característica de los carbamatos
Según Córdoba Palacio (2006); La función ácida se esterifica y se sustituye
los H en el radical amino por diferentes grupos alquilo, arilo, etc.
Tienen en común las siguientes características:
Son biodegradables. Se hidrolizan fácilmente, aunque la fotodegradación
por medio de los rayos solares es el principal mecanismo para desaparecer
del ecosistema.
No bioacumulables. Algunos carbamatos que tienen radicales aromáticos
como grupo sustituyente en la molécula tienen coeficientes de partición
altos, y por lo tanto son liposolubles.
Son de mediana a baja toxicidad. Con excepción del aldicarb (temik) y
carbofurán (furadán) que son de toxicidad alta.
Son inhibidores transitorios de la enzima colinesterasa, ya que la
carbamilesterasa formada por la unión del carbamato y el polo esterásico
de la enzima es sumamente lábil, hidrolizándose con suma rapidez y
regenerándose la enzima inhibida, y por lo tanto el cuadro clínico es más
leve que el presentado por los insecticidas organofosforados.
Los carbamatos más utilizados en nuestro medio son:
Aldicarb (temik)
Carbofurán (furadán)
Metomil (landrín)
Propoxur (baygón)
Carbaryl (sevín) (pág. 125 )
18
1.2. Fertilizantes
1.2.1. Definición
Se entiende por fertilizante (o abono) todo material, orgánico o inorgánico, cuya
función principal es proporcionar elementos a las plantas, capaces de mejorar su
crecimiento en un momento dado, bien porque no existen o porque se han agotado
con el tiempo. Junto a este aporte de nutrientes el fertilizante tiene como misión
un aumento de la producción y una mejora de su calidad. (Navarro García &
Navarro García , 2014, pág. 46 )
Los fertilizantes se aplican para subsanar las deficiencias de los nutrientes.
Pueden estar constituidos por uno o varios elementos, o nutrientes, esenciales, y
tienen como misión devolver al suelo la fertilidad perdida, es decir son
responsables de la fertilidad adquirida del suelo. No influyen, en principio, en los
aspectos físicos de los suelos, sino solo en los químicos. Son las enmiendas y
coadyuvantes de los suelos los compuestos que influyen de forma positiva sobre
los aspectos físicos que actúan sobre distintos componentes de la fertilidad.
(Navarro García & Navarro García , 2014, pág. 47 )
Los considerados fertilizantes son, en principios, los elementos esenciales para
el desarrollo vegetal. En general, pueden clasificarse como:
Nutrientes principales: N, P y K.
Nutrientes secundarios: S, Na, Ca y Mg.
Micronutrientes: B, Co, Cu, Fe, Mn, Mo y Zn. (Navarro García & Navarro
García , 2014)
Navarro, G. y Navarro, S. (2014) . Fertilizantes: Química y Acción. Los
nutrientes pueden encontrarse en forma quelada (ligado a una de las moléculas
orgánicas reconocidas como agente quelante) o complejada (nutriente ligado a
una o varias de las moléculas reconocidas como agente complejante).
19
Sólo podrá ser considerado como producto fertilizante el que reúna los
siguientes requisitos:
Que aporte nutriente a las plantas de manera eficaz o mejore las
propiedades del suelo.
Que se disponga, para el producto, de métodos adecuados de toma de
muestra, de análisis y de ensayo para poder comprobar sus riquezas y
cualidades.
Que, en condiciones normales de uso, no produzca efectos perjudiciales
para la salud y el medio ambiente. (Navarro García & Navarro García ,
2014, pág. 47 )
En general, la eficiencia de un fertilizante depende de las características del
suelo, del manejo del cultivo y de las condiciones climáticas. Por ello, la selección,
momento y forma de aplicación adecuados del fertilizante ayudará a lograr una
mayor eficiencia agronómica y una mejor recuperación de la inversión por el
fertilizante. (Navarro García & Navarro García , 2014, pág. 47 )
1.2.2. Clasificación de los fertilizantes
La clasificación de fertilizantes que establecen el Instituto Ecuatoriano de
Normalización. (Normas Tecnica Ecuatoriana 1998, 2017) Clasifica los
fertilizantes en:
1. Fertilizantes orgánicos:
1.1. Origen vegetal: humus, abono verde, residuos de cultivos, etc.
1.2. Origen animal: estiércol (gallinaza, guano, bovino, equino, ovino,
porcino), harina de hueso, sangre seca, etc.
1.3. Origen diverso: Compost, etc.
20
2. Fertilizantes químicos, minerales o Inorgánicos.
2.1 Simples:
2.1.1 Nitrogenados:
a) Nitritos: Nitrato de Sodio, Nitrato de Potasio, Nitrato de calcio,
Nitrato de amonio, etc.
b) Amoniacales: Sulfato de Amonio, Amoniaco libre, fosfato de
amonio, amonio anhidro, etc.
c) Amidicos: Urea, Clanamida Calcica, etc.
d) Proteínicos: Procedente de materia orgánica vegetal o animal.
e) otros.
2.1.2 Fosforados:
a) Solubles aguas: Superfosfatos, Ácidos Fosfóricos, etc.
b) Solubles al citrato de amonio: Fosfato bicalcico, fosfato
calcinado, etc.
c) Insolubles a los dos medios: Metafosfatos, escorias, fosfatos
natural, etc.
d) otros
2.1.3 Potásicos: Cloruro de potasio, Sulfato de potasio, etc.
2.2 Compuestos (mezclas)
2.2.1 Binarios:
a) Solidos:
Nitrogenados- fosfóricos (fosfato monoamoniaco, etc.)
Nitrogenados -potásicos (fosfato biamoniaco, etc.)
Fosforados- potásicos (nitrato de potasio, etc.)
b) Líquidos:
Fosfatos- Potásicos
2.2.2 Temarios
a) Solidos:
Con los 3 elementos Nitrógenos, Fosforo y Potasio.
b) Liquido.
2.2.3 Otros.
2.3 Complejos
2.3.1 Simples
2.3.2 Binarios
21
2.3.3 Temarios
2.3.4 Otros
2.4 Macronutrientes Secundarios (elementos secundarios): fertilizantes
con la base de: calcio (Ca), Azufre (S), Magnesio (Mg).
2.5 Micronutrientes (elementos menores): fertilizantes con la base de cloro
(Cl), Boro (Bo), Zinc ( Zn), Manganeso (Mn), Cobre (Cu), Molibdeno
(Mo), Hierro (Fe), Sodio (Na).
2.6 Fertilizante grado técnico. Ejemplo: Soluciones Nutritivas para riego por
goteo (Nitrato Potásico, Fosfato amónico, Nitrato amónico, etc.)
2.7 Enmiendas
2.8 Acondicionadores
2.9 Inoculantes
2.10 Aditivos
1.3. Colinesterasa
1.3.1. Definición
La colinesterasa es una enzima que ayuda al sistema nervioso a funcionar de
una manera normal debido a ciertas sustancias químicas tóxicas presentes en el
ambiente esta pueden interferir en el funcionamiento de esta enzima y afectar su
sistema nervioso. Es evidente de ciertas sustancias químicas incluyen los
organofosfatos y los carbamatos. En la mayoría de los casos, suelen encontrarse
en los insecticidas que se usan en los campos. Además, estas sustancias
químicas pueden encontrarse en espráis domésticos comunes para insectos,
como Raid y Black Flag, insecticidas que se han usado de forma domestico
durante más de 50 años. (The StayWell Company, 2012)
Si estas sustancias químicas ingresan en su cuerpo, pueden afectar su
respiración y pueden causar debilidad muscular generalizada. Se denominan
inhibidores de la colinesterasa. Una sobredosis de estas sustancias químicas
puede ser mortal. (The StayWell Company, 2012)
22
Figura V FÓRMULA DE ACETILCOLINA
Fuente: Biopsicología. Net
1.3.2. Tipos de Colinesterasa
La colinesterasa es un término que se refiere a una de las dos siguientes
enzimas:
1. La acetilcolinesterasa, también llamada Colinesterasa de glóbulo rojo
(CGR), colinesterasa eritrocítica, o (más formalmente) acetilcolina
acetilhidrolasa, se encuentra principalmente en sangre y sinapsis
nerviosas.
2. La pseudocolinesterasa, también conocida como colinesterasa sérica,
butirilcolinesterasa, o (más formalmente) acilcolina acilhidrolasa, se
encuentra principalmente en el hígado.
Los 2 tipos de colinesterasa catalizan la hidrólisis del neurotransmisor
acetilcolina sobrante en el espacio sináptico en colina y ácido acético, reacción
necesaria para permitir que la neurona colinérgica retorne a su estado de reposo
después de la activación, evitando así una activación excesiva causada por la
acetilcolina, esta sobre activación producirá una sobreestimulación del efector y,
como consecuencia, daño en la neurona o músculo. ( Fundación Wikimedia, Inc.,
2016)
23
La diferencia entre los dos tipos de colinesterasa está en sus respectivas
preferencias por sustratos: la primera hidroliza acetilcolina más rápido; la segunda
hidroliza butirilcolina más rápido. ( Fundación Wikimedia, Inc., 2016)
1.3.3. Valores de Colinesterasa
Usualmente, los valores normales de la seudocolinesterasa fluctúan entre 8 y
18 unidades por mililitro (U/mL). (DR. Tango , 2015) expone;
La disminución de los niveles de seudocolinesterasa puede deberse a:
Infección aguda, Desnutrición crónica, Ataque cardíaco, Daño hepático,
Metástasis, Ictericia obstructiva, Intoxicación con organofosfatos (químicos que se
encuentran en algunos pesticidas), Inflamación que acompaña a algunas
enfermedades.
Las disminuciones más pequeñas pueden deberse a:
Embarazo, Uso de anticonceptivos orales.
Los niveles aumentados de colinesterasa pueden ser por:
Diabetes, hiperlipemia, nefrosis y reticulosis
1.4. Plaguicidas Inhibidores de la Colinesterasa
Los plaguicidas inhibidores de la colinesterasa dentro se encuentran los
organofosforados y carbamatos, que ocasionan el 80 % de las intoxicaciones por
plaguicida a nivel del mundo. Se pueden absorber por diferentes tipos de vías:
oral, inhalatoria, dérmica, conjuntival, vaginal y rectal. (Frederick M, 2012)
24
La toxicidad aguda en estos plaguicidas es muy alta; además, los
organofosforados también tienen efectos nocivos para la salud a largo plazo.
Estos casos, a pesar de las fallas de registro en países en desarrollo, se informan
con gran frecuencia. (Frederick M, 2012)
1.5. Transaminasa
1.5.1. Generalidades
Estas enzimas catalizan la transferencia de un grupo amino de un aminoácido
a un hidrato de carbono para formar un aminoácido diferente. Las actividades
aspartato-aminotransferasa (ASAT, GOT) y alanín-aminotransferasa (ALAT, GPT)
han sido utilizadas como indicadores de lesión hepatocelular desde 1955. La
primera transfiere el grupo amino del ácido aspártico al ácido a-cetoglutárico para
formar ácido oxalacético y glutámico. La última transfiere el grupo amino de la
alanina con el resto del ácido pirúvico. Las enzimas tienen vidas medias en sangre
de 17 y 47 horas, respectivamente. El margen normal de estos resultados difiere
entre los diversos laboratorios, y estos márgenes deben ser conocidos para
evaluar o comparar los resultados. La ASAT está presente en muchos órganos,
aparte el hígado, incluyendo el corazón y el músculo, mientras que la ALAT se
encuentra primordialmente en el hígado. El 80% de las ASAT de los hepatocitos
está en las mitocondrias, mientras que la ALAT se localiza en otro lugar del
citoplasma. Las diferentes localizaciones intracelulares de estas enzimas han
conducido a observaciones y especulaciones acerca de su papel en el diagnóstico
y pronóstico de la hepatopatía. (Bernard Henry , 1993)
1.5.2. Definición
Son un tipo de enzimas que están presentes en el hígado. Pertenecen al grupo
de enzimas llamado «transferasas». Se encargan de la transformación bioquímica
de ciertas sustancias y también de la síntesis de los aminoácidos no esenciales.
25
Su papel es básicamente metabólico dentro de las células. Ese es el motivo por
el que se encuentran presentes en los tejidos de muchos órganos. (Linea y salud
, 2017)
Precisamente por estar en muchas de las células, estas enzimas son
determinantes para saber si la densidad presente en la sangre denota que hay, o
por el contrario, se descartan ciertas patologías en las funciones hepáticas y otros
órganos dónde pueden están presentes. Un simple análisis de sangre ayuda al
médico a conocer cuáles son los niveles de estas transaminasas en el momento
de realizar la extracción. Hay algunas de ellas que en una analítica, son
especialmente indicadoras del estado de salud. (Linea y salud , 2017)
1.5.3. Tipos de transaminasas
GOT O AST (transaminasa glutamicooxalacética): Está presente en la
mayoría de los órganos del cuerpo. Sobre todo en el hígado, en los
glóbulos rojos y también en los músculos estriados. Unos niveles elevados
pueden indicar destrucción celular.
GPT o ALT (transaminasa glutamicopirúvica). Esta enzima está presente
en el hígado y en los riñones. Puede haber alguna cantidad también en los
músculos estriados y glóbulos rojos. Tiene la función de fabricar la glucosa.
GGT (gamma glutamil transpeptidasa). Está presente en los tejidos de
muchos de los órganos del cuerpo. Corazón, cerebro, riñones, bazo,
páncreas, conducto biliar, etc. Principalmente se encuentra en los
hepatocitos o células hepáticas. Su nivel elevado podría estar indicando
la existencia de alguna enfermedad de hígado, páncreas o de la vesícula
biliar. (Linea y salud , 2017)
26
En relación a los valores normales de las transaminasas, aunque estos niveles
pueden variar de un laboratorio a otro, básicamente son los siguientes: (Peréz ,
2017)
Valores normales GOT-ALT: entre 0 y 37 U/L
Valores normales GPT-AST: entre 0 y 41 U/L
Valores normales GGT: entre 11 y 50 U/L
1.5.4. Aspartato Amino Transferasa (TGO)
Es un enzima de localización intracelular que existe en dos formas una
mitocondrial que es la más abundante y la otra citoplasmáticas, su actividad sérica
en condiciones normales es baja o nula. Los glóbulos rojos contienen diez veces
más TGO. Se distribuye ampliamente en los tejidos corporales y su concentración
es bastante elevada en tejidos con actividad metabólica alta. (Cordero & Alvarez
, 2004, pág. 133)
La concentración de la enzima se encuentra en orden descendente en los
siguientes tejidos: Cardiaco, hepático, renal musculo esquelético y eritrocitos. La
enzima existe en las células de pulmón, cerebro y páncreas, pero en
concentraciones menores que en el suero sanguíneo. (Cordero & Alvarez , 2004,
pág. 133)
Su función a nivel celular es catalizar la transferencia reversible de un grupo
alfa amino del amino ácido (aspartato) a un alfacetoácido (alfa cetoglutárico) como
una de las más importantes reacciones del metabolismo proteico.
GOT
I- aspartato + α –cetoglutarato glutamato + oxalacetato. (Morrison,
2008)
27
1.5.5. Alanina Amino Transferasa (TGP)
Es una enzima de origen hepático, la forma mitocondrial constituye el 81% de
la enzima total presente en el hígado humano.
Se eleva en la hepatitis acompañada de necrosis, cirrosis, ictericia obstructiva,
cáncer de hígado y congestión hepáticos secundaria a fallo cardíaco. La TGP se
encuentra con mayor frecuencia, pero no de manera exclusiva en el hígado. Se
requieren lesiones del hígado más graves o extensas para causar valores
anormales, en el caso de la TGO. Puede decirse que la prueba de TGP es menos
sensible pero mucho más específica que la TGO. (Morrison, 2008)
Los tejidos del riñón, corazón y musculo esquelético tienen cantidades
significativas de TGP en orden descendente al indicado. Las concentraciones de
TGP suelen retornar a lo normal antes que la TGO, probablemente debido a que
la mayoría de los tejidos que contienen ambas enzimas tienes, en proporción, más
TGO que TGP. (Morrison, 2008)
Su función es catalizar la transferencia reversible de un grupo amino de la
alanina al ácido alfa cetoglutárico dando como resultado ácido pirúvico y ácido
glutámico en presencia del activador que es la vitamina B6.
GTP
I-alanina + α –cetoglutarato glutamato + piruvato (Morrison, 2008)
28
1.5.6. Patología clínica de la TGO y TGP
La TGO y la TGP son importantes en la clínica y su aumento se debe a un
proceso necrótico en órganos con alta funcionalidad como lo es el hígado y el
miocardio, las dos enzimas pueden mostrar aumentos considerables (más de 50
veces las cifras normales) en las lesiones hepatocelulares agudas y extensas
(hepatitis por virus). (Salve Martínez, Amich Oliveras, & Prieto Menchero, 1994)
1.5.7. Enfermedades con niveles séricos anormales de transaminasa
La elevación anormal viene definida por valores superiores al rango de
normalidad, que habitualmente se considera de 30-40 U/L, donde puede ser
causante a enfermedades tales como:
1. Hemocromatosis
2. Hepatitis Virales
3. Beri Beri
4. Cirrosis Alcohólicas
5. Enfermedades de Wilson
6. Absceso Hepático
7. Mononucleosis infecciosa
8. Insuficiencia cardiaca congestiva
9. Cirrosis hepática
1.6. Factores que Modifican La Actividad De La Colinesterasa
1.6.1. Sexo
Los promedios de la actividad de colinesterasa en individuos masculinos son
estadísticamente superiores a los femeninos, esta se puede invertir según el tipo
de trabajo agrícola de la mujer.
29
1.6.2. Edad
Es confusa no se ha encontrado variaciones significativas entre la colinesterasa
eritrocitaria y la plasmática, en los recién nacidos puede ser hasta de un 50%
menor que la de un adulto sano, estos van a ir aumentando a medida de su
crecimiento y estos se detienen en valores normales de un adulto cuando se llega
a la pubertad.
1.6.3. Etnia
Tras investigaciones se ha demostrado que personas negras tienen niveles
bajo de pseudocolinesterasa relación de las personas blancas del mismo sexo.
1.6.4. Nutrición
Una dieta equilibrada, ayuda de una u otra forma sobre los efectos de una
intoxicación oral de plaguicidas, dietas ricas en proteína y grasas existe mayor
protección contra la acción de los plaguicidas y que la actividad colinesterasa va
ser mayor en el hígado.
1.6.5. Embarazo
Se ha demostrado que los niveles de colinesterasa plasmática muestran una
caída brusca en el primer trimestre con una magnitud del 20% de la actividad con
recuperación leve en el tercer trimestre. La recuperación total ocurre de 3 a 6
semanas después del parto.
1.6.6. Uso de Fármacos Inhibidores
Entre ellos tenemos la exposición a compuestos orgánicos de mercurio, sales
de benzalconio, fármacos como los anticonceptivos orales, drogas, esteroides,
drogas, estrógenos, etc.
30
CAPITULO II MATERIALES Y MÉTODOS
2.1 Materiales
2.1.1. Lugar de la Investigación
Laboratorio Clínico "ANDRES´S" ubicado en el cantón naranjal provincia del
Guayas.
2.1.2. Periodo de Investigación
El tiempo de desarrollo de esta investigación fue desde octubre hasta diciembre
del 2017.
2.1.3. Recursos Empleados
2.1.3.1. Talento Humano
Autores de la investigación
Tutor
Agricultores de la Hacienda Secadal
31
2.1.3.2. Recursos Físicos
Laboratorio de análisis clínico "ANDRES´S", equipada con material
necesario para realizar los análisis previstos
Equipo: Analizador Químico MINDRAY BA-88
Kit de Reactivos para determinación de colinesterasa.
kit de Reactivos para determinación de TGO.
Kit de Reactivos para determinación de TGP.
Tubos vacutainer
tubos de ensayos
Pipetas automáticas
2.1.4. Universo
Este trabajo de titulación se realiza en las personas que trabajan en la Hacienda
Secadal, ubicada en la parroquia Jesús María del cantón Naranjal provincia del
Guayas, nuestro universo está constituido 115 trabajadores entre ellos tenemos
agricultores y personal administrativo.
2.1.5. Muestra y Tamaño de Muestra
En el siguiente trabajo se toma un tamaño de muestra de 64 trabajadores de la
Hacienda “Secadal”, ubicada en la parroquia Jesús María del cantón Naranjal
provincia del Guayas, utilizando la fórmula para el diseño de la muestra dándonos
un total de 64 pacientes; entre ellos tenemos 17 mujeres y 47 hombres.de ambos
sexos, teniendo en consideración un muestreo aleatorio.
Fórmula para el diseño de la muestra
𝒏 =𝑵 × 𝒁𝟐 × 𝑷 × 𝑸
𝒅𝟐 × (𝑵 − 𝟏) + 𝒁𝟐 × 𝑷 × 𝑸
32
Donde
N= tamaño de la población
Z= nivel de confianza dado en desviación estándar
P= probabilidad de Éxito o proporción esperada
Q= probabilidad de Fracaso
D= error máximo admisible (Pickers , 2015)
𝒏 =𝟏𝟏𝟓 × 𝟎. 𝟗𝟓𝟐 × 𝟎𝟓𝟎 × 𝟎. 𝟓𝟎
𝟎. 𝟎𝟒𝟐 × (𝟏𝟏𝟓 − 𝟏) + 𝟎. 𝟗𝟓𝟐 × 𝟎. 𝟓𝟎 × 𝟎. 𝟓𝟎= 𝟔𝟒 𝒐𝒃𝒔𝒆𝒓𝒗𝒂𝒄𝒊𝒐𝒏𝒆𝒔
2.1.5.1. Datos de los Pacientes
Para la realización de esta investigación, se dispone de un documento de
aprobación por parte del administrador de la Hacienda “Secadal” ubicada en la
parroquia Jesús María del cantón Naranjal Provincia del Guayas. (Anexo 1)
Los datos adquiridos de los trabajadores (nombre, edad, sexo y tiempo de
trabajo, etc.) que forman parte de este estudio fueron obtenidos de cada uno de
los trabajadores de la hacienda “Secadal”. (Anexo 2)
Al momento de conseguir los resultados del análisis de cada uno de los
pacientes que nos otorga el equipo se recopilan en un formato en el cual se
colocara el número de muestra, actividad laboral, tiempo de trabajo, edad, sexo y
el resultado del nivel de colinesterasa sérica. (Anexo 3), y en otro formato se
colocarán los resultados de las pruebas hepáticas TGO Y TGP. (Anexo 4).
33
2.1.5.2. Toma de Muestras
Antes de realizar la toma de muestras, se conversó con los trabajadores sobre
el proyecto de cual formaran parte y se les explico el procedimiento y
posteriormente firmaron un consentimiento informado para la realización de la
toma de muestra. (Anexo 5)
Para la toma de muestra se utilizó tubos Vacutainer (tubo de tapón rojo) y
jeringuillas desechables de 5 ml respectivamente.
Se obtiene alrededor de 5 ml de sangre por paciente en los tubos vacutainer
previamente rotulados, los cuales fueron trasladados en un tiempo de 25 minutos
hasta el laboratorio clínico “S’ANDRES” ubicado en el cantón de Naranjal.
Una vez en el laboratorio se procede a la centrifugación de las muestras a 2500
rpm durante 5 minutos, luego el suero es colocado en 3 tubos rotulados
respectivamente.
El grupo 1 de tubos se utilizó para la determinación de la colinesterasa sérica,
el grupo 2 de tubos se realizó la determinación de transaminasa glutámico
oxalacetica (TGO) o Aspartato aminotransferasa (AST), el grupo 3 de tubos se
utilizó para la determinación de Glutamato piruvato transaminasa (TGP) o alanina
aminotransferasa (ALT), de cada grupo de muestras se realizó por duplicado.
Debemos de tomar ciertas recomendaciones antes de procesar una muestra.
Muestras hemolizadas pueden dar un indicio de mala manipulación y los
resultados pueden ser erróneos, tener mucha precaución con estas
muestras si fuera posible descartarlas y volverlas a tomar
Tomar en cuenta que se debe centrifugar la muestras antes de que se
forme el coagulo debido a que puede ocasionar presencia de fibrina.
34
2.2 Métodos
2.2.1. Tipo de Investigación
Este trabajo es un estudio cuantitativo, observacional, transversal y descriptivo,
con la visión de la determinación de los factores de riesgos que presentan los
agricultores de la Hacienda Secadal frente al contacto directo e indirecto de los
plaguicidas y fertilizantes.
2.2.2. Diseño de Investigación
El diseño de la investigación es no Experimental:
Se procede de la siguiente manera:
TOMA DE MUESTRAS: extracción de 5 mL sangre en tubo vacutainer de
tapón rojo, jeringuillas desechables de 5 mL.
TRANSPORTACION: en un tiempo de 25 minutos al laboratorio clínico
“ANDRE´S”
CENTRIFUGACION: A 2500 rpm por un tiempo de 5 minutos.
SEPARACION DEL SUERO SANGUINEO.
Dividimos en 3 tubos el suero sanguíneo para las pruebas
bioquímicas
PRUEBA DE
COLINESTERASA SERICA
PRUEBA DE ALANINA
AMINOTRANSFERASA
(ALT/TGP)
PRUEBA DE ASPARTATO AMINO
TRANSFERASA (AST/ TGO)
35
2.2.3. Determinación de Colinesterasa: Método Cinético.
La espectrofotometría es el método de análisis óptico más utilizado en las
investigaciones biológicas, esta técnica permite comparar la radiación absorbida
por una solución que contiene una cantidad desconocida el soluto y otra cantidad
conocida de la misma sustancia. (Lumitos Gmbh, 2017)
La impregnación de las radiaciones ultravioletas visibles e infrarrojas van a
depender de cómo está estructurada las moléculas y las características químicas
de cada sustancia, la coloración que presentan algunas sustancias es debido a
que absorben ciertas longitudes de onda de la luz blanca que caen sobre ellas y
dejan pasar a nuestra visión longitudes de ondas que no fueron absorbidas por
las sustancias a estudiar.
2.2.4. Procedimiento para la determinación de Colinesterasa Sérica
(Anexo 6)
El set de colinesterasa sérica de cromatest de Linear Chemicals, S.L.
contiene:
R1: Tampón /Cromógeno. Tampón fosfatos 50 mmol/L pH 7,7, DMNB
0.25 mmol/L. Polvo.
R2: Sustrato. Yoduro de butiriltiocolina 7 mmol/L. Liofilizado.
R3: Dibucaina. Clorhidrato de Dibucaina 2,6 mmol/ L.
Muestra: Suero Sanguíneo
36
2.2.5. Fundamento del Método
La colinesterasa se hidroliza a butiriltiocolina luego forma butirato y tiocolina.
Esta luego reduce el ácido 5,5´-mercaptobis-2 nitrobenzoico (DMNB) a 5-
mercapto-2-nitrobenzoico (5-MNBA) un compuesto coloreado.
𝐵𝑢𝑡𝑖𝑟𝑖𝑙𝑡𝑖𝑜𝑐𝑜𝑙𝑖𝑛𝑎 + 𝐻2𝑂𝐶𝐻𝐸
𝑝𝐻 7,7 𝑏𝑢𝑡𝑖𝑟𝑎𝑡𝑜 + 𝑡𝑖𝑜𝑐𝑜𝑙𝑖𝑛𝑎
𝑡𝑖𝑜𝑐𝑜𝑙𝑖𝑛𝑎 + 𝐷𝑀𝑁𝐵 → 𝑇𝑖𝑜𝑐𝑜𝑙𝑖𝑛𝑎 𝑜𝑥𝑖𝑑𝑎𝑑𝑎 + 5 −𝑀𝑁𝐵𝐴 + 𝐻+
Las muestras de las observaciones se trabajaron a una longitud de onda de
405 nm con una temperatura constante de 37°C, se encera el espectrofotómetro
MINDRAY BA-88A (equipo semiautomático) con agua destilada. Y se realiza el
siguiente procedimiento:
Tabla V PROCEDIMIENTO PARA DETERMINACIÓN DE COLINESTERAS
R1 mL 1,5
R2 µL 50
Muestra diluida con
ClNa 9% µL
10
Nota: Temperatura del equipo 37°C constante. (LINEAR CHEMICALS, S.L.U.,
CHOLINESTERASE - COLINESTERASA, 2003)
Mezclar y realizar las lecturas en el espectrofotómetro MINDRAY BA-88A, se
espera por unos 45 segundos que nos dé el resultado de la lectura, y luego de 1
minuto volvemos a realizar otra lectura de la misma muestra. Obtenemos por
triplicado los resultados de cada muestra.
37
2.2.6. Procedimiento para la determinación de la TGP. (Anexo 7).
El kit de la alanina aminotransferasa (ALT/ TGP) de cromatest de Linear
Chemicals, S.L. contiene:
R1: Sustrato ALT. Tampón TRIS 150mmol/L Ph 7.3, L-alanina 750
mmol/L, lactato de deshidrogenasa > 1350 U/L.
R2: Coenzima ALT. NADH 1.3 mmol/L, 2-cetoglutarato 75 mmol/L.
Biocidas.
2.2.7. Fundamento del Método
La alanina aminotransferasa (ALT/TGP) ayuda al traspaso del grupo amino de
la alanina al cetoglutarato y esta forma glutamato y piruvato, este a su vez es
reducido en presencia del lactato deshidrogenasa (LDH) a nicotin adenin
dinucleotido reducido (NADH)
𝐿 − 𝐴𝑙𝑎𝑛𝑖𝑛𝑎 + 2 − 𝑐𝑒𝑡𝑜𝑔𝑙𝑢𝑡𝑎𝑟𝑎𝑡𝑜
𝐴𝐿𝑇
𝐺𝑃𝑇→ 𝐿 − 𝐺𝑙𝑢𝑡𝑎𝑚𝑎𝑡𝑜 + 𝑃𝑖𝑟𝑢𝑣𝑎𝑡𝑜
𝑃𝑖𝑟𝑢𝑣𝑎𝑡𝑜 + 𝑁𝐴𝐷𝐻 + 𝐻+𝐿𝐷𝐻→ 𝐿𝑎𝑐𝑡𝑎𝑡𝑜 + 𝑁𝐴𝐷+
La muestra se trabajó en el equipo MINDRAY BA-88, a una longitud de onda
de 340 nm, encerando el equipo con agua destilada. Realizamos el siguiente
procedimiento:
Tabla VI PROCEDIMIENTO PARA DETERMINACIÓN DE ALT / TGP
Reactivo de Trabajo 1.0 mL
Muestra o Control 50 µL
Nota: El reactivo de trabajo se lo prepara mezclando 4 mL del R1 + 1 mL de R2 y
este es estable durante 4 semanas a una temperatura de 2-8° C.
38
Homogenizamos y realizamos las lecturas por triplicado en el
espectrofotómetro MINDRAY BA-88. (LINEAR CHEMICALS, S.L.U. , ALT/GPT BR
, 2002)
2.2.8. Procedimiento para la determinación de la TGO (Anexo 8)
El kit del aspartato aminotransferasa (TGO / AST) de cromatest de Linear
Chemicals, S.L. contiene:
R1: Sustrato AST: Tampón TRIS 121 mmol/L pH 7.8, L-aspartato 362
mmol/L, lactato deshidrogenasa >600 U/L.
R2: Coenzima AST: NADH 1,3 mmol/L, 2-cetogutarato 75 mmol/L.
Biocidas
2.2.9. Fundamento del Método
El aspartato aminotransferasa (AST/GOT) ayuda a la transferencia del grupo
amino del aspartato al cetoglutarato formando glutamato y oxalacetato, este último
es reducido a malato por la malato deshidrogenasa con ayuda del nicotinamido
adenin dinucleotido reducido (NADH).
𝐿 − 𝐴𝑠𝑝𝑎𝑟𝑡𝑎𝑡𝑜 + 2 − 𝑐𝑒𝑡𝑜𝑔𝑙𝑢𝑡𝑎𝑟𝑎𝑡𝑜
𝐴𝑆𝑇
𝑇𝐺𝑂→ 𝐿 − 𝐺𝑙𝑢𝑡𝑎𝑚𝑎𝑡𝑜 + 𝑂𝑥𝑎𝑙𝑎𝑐𝑒𝑡𝑎𝑡𝑜
𝑂𝑥𝑎𝑙𝑐𝑒𝑡𝑎𝑡𝑜 + 𝑁𝐴𝐷𝐻 + 𝐻+ 𝑀𝐷𝐻→ 𝐿 − 𝑀𝑎𝑙𝑎𝑡𝑜 + 𝑁𝐴𝐷+
Se trabajó las muestras a una longitud de onda de 340 nm en el equipo
MINDRAY BA-88, encerando el espectrofotómetro con agua destilada.
Realizamos el siguiente procedimiento:
39
Tabla VII PROCEDIMIENTO PARA DETERMINACIÓN DE AST / TGO
Reactivo de trabajo 1.0 mL
Muestra o Control 50 µL
Nota: El Reactivo de trabajo se lo prepara mezclando 4mL el R1 + 1 mL del R2,
este es estable durante 4 semanas a una temperatura de 2 a 8°C, resguardar de
la luz.
Homogenizamos y realizamos las lecturas por triplicado en el espectro
MINDRAY BA-88. (LINEAR CHEMICALS, S.L.U, 2002)
2.2.10. El equipo utilizado espectrofotómetro semiautomático
Mindray ba-88 con gran pantalla táctil y software de
funcionamiento intuitivo. (Anexo 9)
Figura VI MINDRAY BA-88
FUENTE: LAB. CLINICO ANDRES
40
2.2.10.1. Esquema de la configuración del equipo Mindray ba-88.
Equipo
Espectrofotométrico
MINDRAY BA-88A
1. Encender el
equipo
MINDRAY BA-
88A, esperar 2
min. Y agregar
agua destilada
2. Buscamos la
opción
parámetros y
elegimos la
prueba a realizar
3. Verificamos con
el inserto de la
prueba que los
parámetros que
están guardados
son los correctos
4. Si la prueba que
se encuentra en
el equipo no es
la correcta,
buscamos la
opción añadir
5. Ingresamos la
longitud de onda,
el factor,
unidades, tiempo
de retraso, tiempo
de lectura,
temperatura y vol.
De aspiración.
6. Verificamos que
los datos
ingresados estén
correctos
7. Designamos el
nombre o un
numero al
programa
8. Buscamos la
opción
guardamos y
presionamos
41
2.2.11. Esquema de la determinación de Colinesterasa Sérica.
4.Seleccionamos la
opción blanco de
agua, y realizamos
la lectura.
8. Anotamos los
resultados con la
respectiva
identificación de la
muestra.
5. Luego
seleccionamos la
opción blanco de
reactivo, y
realizamos la
lectura.
6.Seleccionamo
s la opción
muestra,
realizamos la
lectura de las
muestras.
7.Luego de
cada lectura
buscamos la
opción lavar y
procedemos a
lavar 1 vez y
continuamos
con las lecturas.
Equipo
Espectrofotométri
co MINDRAY
BA-88A
Encender el
equipo
MINDRAY
BA-88A,
1.Seleccionamo
s la opción test.
2.Buscamos en
el listado de
pruebas
(colinesterasa) y
seleccionamos.
3.Al entrar
aparecen las
opciones para
calibrar la
prueba.
42
2.2.12. Esquema de la determinación de AST / TGO.
Equipo
Espectrofotométrico
MINDRAY BA-88A
1. Encender el
equipo
MINDRAY BA-
88A, esperar 2
min. Y agregar
agua destilada
2. Seleccionamos
la opción test
3. Buscamos en el
listado de
pruebas AST
(TGO) y
seleccionamos.
4. Al entrar
aparecen las
opciones, para
calibrar la
prueba
5. Seleccionamo
s la opción
blanco de
agua, y
realizamos la
lectura.
6. Seleccionamos
la opción
muestra,
realizamos la
lectura de las
muestras.
7. Luego de cada
lectura buscamos
la opción lavar y
procedemos a
lavar 1 vez y
continuamos con
las lecturas.
8. Anotamos los
resultados con la
respectiva
identificación de
la muestra.
43
2.2.13. Esquema de la determinación de ALT/ TGP.
Equipo
Espectrofotométrico
MINDRAY BA-88A
2. Encender el
equipo
MINDRAY BA-
88A, esperar 2
min. Y agregar
agua destilada
3. Seleccionamos
la opción test
4. Buscamos en el
listado de
pruebas ALT
(TGP) y
seleccionamos.
5. Al entrar
aparecen las
opciones, para
calibrar la
prueba
6. Seleccionamo
s la opción
blanco de
agua, y
realizamos la
lectura.
7. Seleccionamos
la opción
muestra,
realizamos la
lectura de las
muestras.
8. Luego de cada
lectura buscamos
la opción lavar y
procedemos a
lavar 1 vez y
continuamos con
las lecturas.
9. Anotamos los
resultados con la
respectiva
identificación de
la muestra.
44
CAPITULO III RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 Discusión
El proyecto de investigación tiene como finalidad de determinar los factores de
riesgos que tienen los trabajadores de la Hacienda Secadal por el contacto con
los plaguicidas y fertilizantes, lo consiguiente realizamos pruebas bioquímicas
para medir los niveles de colinesterasa sérica y pruebas hepáticas como la TGO
y la TGP.
La determinación de la colinesterasa nos dio como resultado que un 19% de la
población presenta una anormalidad en los parámetros de referencia. Mientras
que la TGO y la TGP nos da como resultado que un 49% de la población podría
estar presentando alguna enfermedad hepática.
Dentro de los factores de Riesgos tenemos la edad, el sexo, el tiempo de trabajo,
la actividad laboral, la nutrición, el alcohol y el consumo de fármacos o drogas que
inhiben esta enzima.
45
3.2 Interpretación de los Resultados
A continuación, se presentan los datos y los cuadros obtenidos durante el
trabajo los mismos que nos darán los niveles de colinesterasa y pruebas hepáticas
(TGO – TGP) que presentan los trabajadores y el personal administrativo de la
hacienda SECADAL ubicada en el cantón NARANJAL parroquia JESUS MARIA.
Se obtuvo los siguientes resultados:
Tabla VIII DETERMINACION DE COLINESTERASA EN EL GRUPO CONTROL DEL PERSONAL ADMINISTRATIVO DE LA HACIENDA SECADAL
Para realizar la selección del grupo control, se tomó en cuenta al personal
administrativo que no tienen contacto directo con plaguicidas y fertilizantes que se
utilizan la producción, este grupo control consta de 2 varones y 8 mujeres a las
que se les pregunto si se encontraban en estado de gestación ya que esto podría
interferir con el análisis.
N° MUESTRA RESULTADO
Valores de referencia (3500 – 8500) UI/L
1 5.145 UI/L
2 5.337 UI/L
3 5.669 UI/L
4 5.155 UI/L
5 6.338 UI/L
6 7.257 UI/L
7 3.739 UI/L
8 5.281 UI/L
9 6.720 UI/L
10 6.947 UI/L
46
INTERPRETACION: Los valores que se obtuvo del grupo control, el cual está
comprendido entre 30 y 60 años de edad, presenta un valor de colinesterasa
sérica dentro de los valores de referencia.
Gráfico III REPRESENTACION GRAFICA DEL GRUPO CONTROL DE COLINESTERASA SERICA
INTERPRETACION: El grupo control conformado por 10 pacientes, 2 varones
y 8 mujeres, a los cuales se les realizo un análisis de colinesterasa sérica,
presentan valores que están dentro de rango normal de referencia 3500 – 8500
UI/L.
Esto resulta idóneo para la comparación con los pacientes a estudiar y que se
encuentran en un ambiente donde están expuestos a diversas sustancias que les
perjudican la salud, por tal motivo se van a comparar los resultados con este
control que seleccionamos y al personal administrativo de la hacienda Secadal.
0
1000
2000
3000
4000
5000
6000
7000
8000
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
VA
LO
RE
S D
E C
OL
INE
ST
ER
AS
A
SE
RIC
A
PACIENTES
RESULTADOS DEL GRUPO CONTROLvalores de referencia: 3500 - 8500 UI/L
47
Tabla IX DETERMINACION DE AST (TGO) Y ALT (TGP) EN EL GRUPO CONTROL DEL PERSONAL ADMINISTRATIVO DE LA HACIENDA SECADAL
N° MUESTRA
RESULTADO TGO
VALOR DE REFERENCIA (hasta
40 U/L)
RESULTADO TGP
VALOR DE REFERENCIA (hasta
40 U/L)
1 31.23 36.14
2 31.31 29.81
3 39.72 32.50
4 34.64 36.50
5 37.95 36.05
6 22.91 33.60
7 30.85 35.40
8 24.78 29.30
9 21.26 27.61
10 28.43 33.92
INTERPRETACIÓN: Los valores obtenidos de TGO y TGP de las muestras
control, correspondiente a los 10 pacientes seleccionados previamente, nos
indican que están dentro de los valores normales de referencia y a su vez tiene
relación con los valores obtenidos de colinesterasa sérica que resultaron
normales, con estos valores se puede tomar como una buena muestra control,
para los siguientes análisis de transaminasas (AST) – (ALT) de las muestras a
estudiar.
48
Gráfico IV REPRESENTACION GRAFICA DEL GRUPO CONTROL DE AST (TGO) Y ALT (TGP) .
INTERPRETACION: En la presente grafica se puede observar que los valores
obtenidos del grupo control conformado por 10 pacientes, a los cuales se les
realizo un análisis de transaminasas AST (GOT) y ALT (GPT), presentan valores
muy cercanos entre si y a su vez dichos resultados están dentro de rango normal
de referencia que es hasta 40 U/L.
Estos resultados que muestra el grafico nos resulta idóneo para la comparación
y análisis posteriores con los pacientes a estudiar en la hacienda Secadal.
15,00
20,00
25,00
30,00
35,00
40,00
45,00
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
VA
LO
RE
S D
E T
GO
Y T
GP
U/L
PACIENTES
GRUPO CONTROL AST (GOT) - ALT (GPT)VALORES REFERENCIALES: HASTA 40 U/L
TGO
TGP
49
Tabla X DATOS DE LOS PACIENTES Y RESULTADO DEL ANALISIS DE COLINESTERASA OBTENIDOS MEDIANTE LA TECNICA DE ESPECTROFOTOMETRIA, EN LOS TRABAJADORES Y PERSONAL ADMINISTRATIVO EN LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON NARANJAL.
N° DE MUESTRA
EDAD SEXO ACTIVIDAD LABORAL
RESULTADOS
COLINESTERASA (3500 - 8500) UI/L
MUESTRA 1
MUESTRA 2
MUESTRA 3 PROMEDIO
M-001 64 M COSECHA 5115,25 5245,19 5098,87 5153,10
M-002 38 M BIODIGESTOR 8523,03 10251,63 8679,58 9151,41
M-003 40 M FUMIGADOR 9288,75 10242,58 9874,17 9801,83
M-004 48 M BIODIGESTOR 7893,34 8469,72 8269,51 8210,86
M-005 31 M SEGURIDAD 7518,38 7245,18 7482,36 7415,31
M-006 53 M FUMIGADOR 7009,51 6859,70 7215,64 7028,28
M-007 41 F TENDAL 7225,94 7425,63 7051,14 7234,24
M-008 36 F TENDAL 8525,09 8647,01 8487,64 8553,25
M-009 38 F VIVERO 6184,15 6245,31 6247,82 6225,76
M-010 31 F TENDAL 4294,46 4173,26 4298,37 4255,36
M-011 63 F TENDAL 7220,40 7549,15 7450,16 7406,57
M-012 37 F VIVERO 8129,43 8243,09 8098,67 8157,06
M-013 33 M COSECHA 6750,20 6745,82 6815,49 6770,50
M-014 47 F VIVERO 7450,89 7348,46 7501,20 7433,52
M-015 60 M MAYORDOMO 7920,05 7843,15 7917,28 7893,49
M-016 24 M SEGURIDAD 8720,70 8656,34 8698,79 8691,94
M-017 44 M FERTILIZADOR 9830,60 9756,16 9721,19 9769,32
M-018 41 M FERTILIZADOR 3907,54 3785,39 3894,75 3862,56
M-019 35 M FUMIGADOR 9406,19 9397,59 9427,38 9410,39
M-020 36 M FERTILIZADOR 8120,19 8095,39 8179,48 8131,69
M-021 30 M FUMIGADOR 7829,14 7801,35 7884,08 7838,19
M-022 37 M COSECHA 8811,61 8769,90 8809,78 8797,10
50
M-023 33 F VIVERO 7651,40 7608,45 7685,23 7648,36
M-024 42 M COSECHA 8025,07 7958,36 8087,16 8023,53
M-025 42 M BODEGA 10840,90 10258,14 10564,01 10554,35
M-026 44 M BIODIGESTOR 7054,57 7036,49 7116,05 7069,04
M-027 54 M REGADOR 4035,84 3894,54 3948,29 3959,56
M-028 48 M COSECHA 7569,35 7489,48 7524,98 7527,94
M-029 60 M FUMIGADOR 3739,23 4041,84 3890,30 3890,46
M-030 31 M COSECHA 8289,52 8309,10 8283,80 8294,14
M-031 35 M REGADOR 6980,22 6879,21 6942,14 6933,86
M-032 28 M COSECHA 9030,31 9251,50 9015,16 9098,99
M-033 57 M MAYORDOMO 6696,21 6562,80 6688,40 6649,14
M-034 34 M FUMIGADOR 3911,82 3781,20 3610,80 3767,94
M-035 55 M COSECHA 7401,02 7210,10 7410,50 7340,54
M-036 30 M COSECHA 6753,94 6684,65 6745,86 6728,15
M-037 49 M TENDAL 6089,41 6120,74 6077,63 6095,93
M-038 60 M REGADOR 7190,74 7281,55 7168,32 7213,54
M-039 40 M COSECHA 7421,06 7521,09 7411,20 7451,12
M-040 30 M COSECHA 7643,49 7524,77 7614,89 7594,38
M-041 48 F VIVERO 3767,51 3321,76 3559,89 3549,72
M-042 46 M FUMIGADOR 9994,69 9855,01 9989,00 9946,23
M-043 71 M REGADOR 8138,08 8041,10 8111,08 8096,75
M-044 58 F VIVERO 9071,45 9142,98 9042,55 9085,66
M-045 42 M TENDAL 7850,07 7640,23 7830,03 7773,44
M-046 56 M MAYORDOMO 8113,43 8022,55 8124,64 8086,87
M-047 27 M PODADOR 5685,28 5604,58 5724,36 5671,41
M-048 29 M GANADERIA 3816,65 3785,19 3821,40 3807,75
M-049 41 M GANADERIA 4170,98 4187,62 4094,71 4151,10
M-050 64 M COSECHA 3767,51 3812,54 3840,13 3806,73
51
M-051 48 M PODADOR 5213,43 5287,46 5294,05 5264,98
M-052 68 M PODADOR 7368,20 7296,28 7325,14 7329,87
M-053 20 M COSECHA 6393,67 6315,69 6358,71 6356,02
M-054 24 M REGADOR 5755,16 5711,24 5790,01 5752,14
M-055 29 M COSECHA 6804,52 6779,35 6799,10 6794,32
M-056 25 M COSECHA 4841,12 4897,12 4905,98 4881,41
M-057 24 M FUMIGADOR 7192,64 7216,84 7203,41 7204,30
M-058 34 F COSECHA 4961,60 4985,23 4869,58 4938,80
M-059 28 M MECANICA 6879,24 6812,57 6901,30 6864,37
M-060 25 M COSECHA 4125,64 4183,95 4098,99 4136,19
M-061 28 M FUMIGADOR 7086,52 7120,10 7090,84 7099,15
M-062 42 M PODADOR 6005,40 6080,71 6103,52 6063,21
M-063 42 M PODADOR 6672,08 6603,76 6710,51 6662,12
M-064 35 M FUMIGADOR 7552,96 7630,12 7589,07 7590,72
INTERPRETACION: Luego de la toma de muestra a 64 pacientes tanto
hombres como mujeres, que laboran en diferentes áreas expuestas de manera
directa o indirecta a los fertilizantes y plaguicidas, cabe indicar que en el caso de
las mujeres ninguna estaba en estado de gestación ni de lactancia.
A estos 64 trabajadores que conforman la población a investigar, se realizó la
respectiva preparación de la muestra para el análisis, el cual se les realizo por
triplicado a cada una de las muestras la prueba de colinesterasa sérica, para luego
sacar un promedio el cual nos da una mayor confiabilidad de los resultados, y
obtener el resultado final.
52
Gráfico V REPRESENTACION GRAFICA DE LOS VALORES DE COLINESTRERASA SERICA OBTENIDOS DE LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL.
INTERPRETACION: Luego del análisis de colinesterasa sérica, a los 64
trabajadores de la hacienda Secadal, conformado por 11 mujeres y 53 hombres,
podemos constatar que, en el gráfico presentado, existen un total de 11 valores
que están elevados, o a su vez podemos decir que se encuentran fuera del rango
normal de referencia con relación a las demás muestras que si entran en el rango
de 3500 a 8500 UI/L.
Al revisar estos datos nos damos cuentan, que existen alrededor de 7 personas
que sus valores de colinesterasa se encuentran cerca de los valores mínimos de
referencia, lo que nos indica que pueden estar sufriendo una intoxicación por
compuestos organofosforados, el cual inhibe la actividad colinesterásica, y a su
vez poniendo en riesgo su salud sin darse cuenta de la intoxicación que está
sufriendo su cuerpo, sin usar la protección adecuada para la manipulación de los
fertilizantes y plaguicidas respectivamente.
3000,00
4000,00
5000,00
6000,00
7000,00
8000,00
9000,00
10000,00
11000,00
0 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 33 36 39 42 45 48 51 54 57 60 63 66VA
LOR
ES D
E C
OLI
NES
TER
ASA
SER
ICA
UI/
L
PACIENTES
RESULTADOS DE COLINESTERASA SERICA EN TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL VALORES DE REFERENCIA: (3500 - 8500) UI/L
53
Tabla XI DATOS DE LOS PACIENTES Y RESULTADO DEL ANALISIS DE PRUEBAS HEPATICAS AST (GOT) OBTENIDOS MEDIANTE LA TECNICA DE ESPECTROFOTOMETRIA, EN LOS TRABAJADORES Y PERSONAL ADMINISTRATIVO EN LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON NARANJAL.
N° DE MUESTRA
EDAD SEXO ACTIVIDAD LABORAL
RESULTADOS
AST (GOT) VALOR DE REFRERENCIA HASTA 40 U/L
MUESTRA 1
MUESTRA 2
MUESTRA 3 PROMEDIO
M-001 64 M COSECHA 57,12 52,45 55,87 55,15
M-002 38 M BIODIGESTOR 47,53 45,63 47,58 46,91
M-003 40 M FUMIGADOR 37,09 39,65 39,23 38,66
M-004 48 M BIODIGESTOR 31,65 35,23 34,89 33,92
M-005 31 M SEGURIDAD 35,64 35,18 36,08 35,63
M-006 53 M FUMIGADOR 41,77 42,65 41,18 41,87
M-007 41 F TENDAL 39,01 38,26 39,24 38,84
M-008 36 F TENDAL 86,15 85,45 85,76 85,79
M-009 38 F VIVERO 40,13 38,56 39,20 39,30
M-010 31 F TENDAL 38,66 37,56 38,30 38,17
M-011 63 F TENDAL 35,68 36,25 36,80 36,24
M-012 37 F VIVERO 26,27 26,41 26,83 26,50
M-013 33 M COSECHA 76,31 74,23 74,05 74,86
M-014 47 F VIVERO 26,36 29,42 28,93 28,24
M-015 60 M MAYORDOMO 34,64 36,75 36,28 35,89
M-016 24 M SEGURIDAD 41,11 42,69 42,36 42,05
M-017 44 M FERTILIZADOR 46,36 47,13 47,58 47,02
M-018 41 M FERTILIZADOR 36,53 37,85 37,64 37,34
M-019 35 M FUMIGADOR 45,57 46,21 45,75 45,84
M-020 36 M FERTILIZADOR 43,58 42,25 43,30 43,04
M-021 30 M FUMIGADOR 85,59 82,96 82,10 83,55
M-022 37 M COSECHA 39,85 40,65 40,91 40,47
54
M-023 33 F VIVERO 54,60 52,89 52,12 53,20
M-024 42 M COSECHA 53,80 53,08 52,88 53,25
M-025 42 M BODEGA 47,47 48,66 48,97 48,37
M-026 44 M BIODIGESTOR 55,84 55,01 54,72 55,19
M-027 54 M REGADOR 35,26 35,12 35,48 35,29
M-028 48 M COSECHA 49,19 48,21 48,63 48,68
M-029 60 M FUMIGADOR 34,83 35,15 34,96 34,98
M-030 31 M COSECHA 56,58 56,30 55,82 56,23
M-031 35 M REGADOR 38,50 37,49 38,01 38,00
M-032 28 M COSECHA 45,06 44,97 45,12 45,05
M-033 57 M MAYORDOMO 32,32 33,25 32,74 32,77
M-034 34 M FUMIGADOR 38,56 38,11 37,39 38,02
M-035 55 M COSECHA 39,44 38,26 38,70 38,80
M-036 30 M COSECHA 54,24 54,12 53,95 54,10
M-037 49 M TENDAL 31,17 32,45 32,05 31,89
M-038 60 M REGADOR 40,06 40,84 41,24 40,71
M-039 40 M COSECHA 38,48 38,76 38,06 38,43
M-040 30 M COSECHA 61,65 60,13 60,55 60,78
M-041 48 F VIVERO 59,71 58,49 58,21 58,80
M-042 46 M FUMIGADOR 59,68 59,12 59,75 59,52
M-043 71 M REGADOR 44,04 45,28 45,64 44,99
M-044 58 F VIVERO 39,21 39,00 38,42 38,88
M-045 42 M TENDAL 55,72 55,01 56,36 55,70
M-046 56 M MAYORDOMO 39,87 40,52 40,13 40,17
M-047 27 M PODADOR 34,27 33,89 34,65 34,27
M-048 29 M GANADERIA 39,87 38,41 38,76 39,01
M-049 41 M GANADERIA 29,29 30,57 30,47 30,11
M-050 64 M COSECHA 18,80 19,38 19,74 19,31
55
M-051 48 M PODADOR 14,20 16,54 15,29 15,34
M-052 68 M PODADOR 69,35 68,45 68,85 68,88
M-053 20 M COSECHA 28,20 29,84 29,68 29,24
M-054 24 M REGADOR 23,18 24,15 24,84 24,06
M-055 29 M COSECHA 47,20 47,97 47,05 47,41
M-056 25 M COSECHA 40,33 39,95 39,54 39,94
M-057 24 M FUMIGADOR 45,61 45,65 44,48 45,25
M-058 34 F COSECHA 19,36 20,99 20,54 20,30
M-059 28 M MECANICA 39,58 39,90 40,98 40,15
M-060 25 M COSECHA 36,96 37,98 37,16 37,37
M-061 28 M FUMIGADOR 34,69 34,48 34,20 34,46
M-062 42 M PODADOR 38,48 37,58 35,87 37,31
M-063 42 M PODADOR 33,45 32,88 33,78 33,37
M-064 35 M FUMIGADOR 39,20 38,90 38,84 38,98
56
Tabla XII DATOS DE LOS PACIENTES Y RESULTADO DEL ANALISIS DE PRUEBAS HEPATICAS ALP (GPT) OBTENIDOS MEDIANTE LA TECNICA DE ESPECTROFOTOMETRIA, EN LOS TRABAJADORES Y PERSONAL ADMINISTRATIVO EN LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON NARANJAL.
N° DE MUESTRA
EDAD SEXO ACTIVIDAD LABORAL
RESULTADOS
ALT (GPT) VALOR DE REFRERENCIA HASTA 40 U/L
MUESTRA 1
MUESTRA 2
MUESTRA 3 PROMEDIO
M-001 64 M COSECHA 43,55 43,12 42,14 42,94
M-002 38 M BIODIGESTOR 39,54 38,98 38,46 38,99
M-003 40 M FUMIGADOR 41,23 42,15 41,10 41,49
M-004 48 M BIODIGESTOR 43,80 42,59 42,55 42,98
M-005 31 M SEGURIDAD 36,58 36,59 36,46 36,54
M-006 53 M FUMIGADOR 47,57 46,26 46,46 46,76
M-007 41 F TENDAL 33,04 35,11 35,42 34,52
M-008 36 F TENDAL 92,52 90,12 91,49 91,38
M-009 38 F VIVERO 31,01 30,12 31,16 30,76
M-010 31 F TENDAL 45,56 44,85 45,84 45,42
M-011 63 F TENDAL 43,54 43,42 44,48 43,81
M-012 37 F VIVERO 22,36 23,17 22,19 22,57
M-013 33 M COSECHA 70,57 71,00 70,98 70,85
M-014 47 F VIVERO 23,37 24,60 23,57 23,85
M-015 60 M MAYORDOMO 32,82 32,46 32,49 32,59
M-016 24 M SEGURIDAD 48,78 47,51 48,94 48,41
M-017 44 M FERTILIZADOR 38,86 38,85 33,49 37,07
M-018 41 M FERTILIZADOR 38,97 37,84 38,00 38,27
M-019 35 M FUMIGADOR 50,70 51,20 50,46 50,79
M-020 36 M FERTILIZADOR 51,26 50,49 50,42 50,72
M-021 30 M FUMIGADOR 91,82 90,48 90,49 90,93
57
M-022 37 M COSECHA 45,30 44,94 45,60 45,28
M-023 33 F VIVERO 39,88 39,99 38,99 39,62
M-024 42 M COSECHA 47,81 48,17 48,49 48,15
M-025 42 M BODEGA 50,95 50,16 50,46 50,52
M-026 44 M BIODIGESTOR 44,21 45,14 44,98 44,78
M-027 54 M REGADOR 37,59 38,49 37,49 37,86
M-028 48 M COSECHA 39,88 38,59 38,50 38,99
M-029 60 M FUMIGADOR 37,36 38,96 38,00 38,11
M-030 31 M COSECHA 45,82 46,12 45,44 45,79
M-031 35 M REGADOR 35,22 35,79 34,98 35,33
M-032 28 M COSECHA 44,72 45,16 45,84 45,24
M-033 57 M MAYORDOMO 35,57 36,42 36,45 36,15
M-034 34 M FUMIGADOR 30,59 31,02 31,66 31,09
M-035 55 M COSECHA 33,61 34,84 34,85 34,43
M-036 30 M COSECHA 59,97 58,94 58,55 59,15
M-037 49 M TENDAL 35,26 36,57 36,66 36,16
M-038 60 M REGADOR 42,91 41,16 41,16 41,74
M-039 40 M COSECHA 32,07 32,00 33,45 32,51
M-040 30 M COSECHA 66,69 66,10 67,46 66,75
M-041 48 F VIVERO 63,29 60,06 62,65 62,00
M-042 46 M FUMIGADOR 64,27 64,05 63,55 63,96
M-043 71 M REGADOR 39,03 40,40 41,00 40,14
M-044 58 F VIVERO 45,73 44,99 41,47 44,06
M-045 42 M TENDAL 40,48 41,17 40,56 40,74
M-046 56 M MAYORDOMO 44,05 45,50 44,55 44,70
M-047 27 M PODADOR 31,46 32,55 32,52 32,18
M-048 29 M GANADERIA 35,80 36,49 36,62 36,30
M-049 41 M GANADERIA 23,55 24,55 23,60 23,90
58
M-050 64 M COSECHA 30,03 31,14 30,09 30,42
M-051 48 M PODADOR 28,33 28,44 28,46 28,41
M-052 68 M PODADOR 58,45 56,45 57,55 57,48
M-053 20 M COSECHA 26,21 28,49 28,56 27,75
M-054 24 M REGADOR 28,46 29,98 28,57 29,00
M-055 29 M COSECHA 49,11 49,49 48,95 49,18
M-056 25 M COSECHA 37,97 37,15 39,96 38,36
M-057 24 M FUMIGADOR 48,18 47,49 48,56 48,08
M-058 34 F COSECHA 15,97 16,59 15,47 16,01
M-059 28 M MECANICA 47,13 47,19 46,99 47,10
M-060 25 M COSECHA 41,12 42,45 42,26 41,94
M-061 28 M FUMIGADOR 38,12 38,48 37,15 37,92
M-062 42 M PODADOR 35,19 36,48 36,57 36,08
M-063 42 M PODADOR 37,19 36,59 34,56 36,11
M-064 35 M FUMIGADOR 39,14 39,44 35,00 37,86
59
Gráfico VI REPRESENTACION GRAFICA DE LOS VALORES DE AST (GOT) OBTENIDOS DE LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL
INTERPRETACION: Luego respectivo análisis de TGO, a los 64 trabajadores
de la hacienda Secadal, esta prueba se la realizo por triplicado al igual que la
colinesterasa sérica para obtener una mayor confiabilidad de los resultados y
poder analizar bien los valores.
Se puede verificar en el gráfico la dispersión de algunos resultados que están
fuera del valor de referencia que es hasta 40 U/L, existen un total de 30 valores
que están elevados, lo que refleja adicional a las 11 personas que están con el
valor de colinesterasa elevado, un aumento que de 19 valores que pueden ser por
diferentes motivos como la mala alimentación el alcohol y las drogas, que están
afectando al hígado y perjudicando su salud.
10,0015,0020,0025,0030,0035,0040,0045,0050,0055,0060,0065,0070,0075,0080,0085,0090,00
0 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 33 36 39 42 45 48 51 54 57 60 63 66
VA
LO
RE
S D
E T
GO
U/L
PACIENTES
RESULTADOS DE AST (GOT) EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL.
VALORES REFERENCIALES: HASTA 40 U/L
60
Gráfico VII REPRESENTACION GRAFICA DE LOS VALORES DE ALP (GPT) OBTENIDOS DE LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL
INTERPRETACION: Luego respectivo análisis de TGP, a los 64 trabajadores
de la hacienda Secadal, esta prueba se la realizo por triplicado al igual que la
colinesterasa sérica para obtener una mayor confiabilidad de los resultados y
poder analizar bien los valores.
Se puede constatar en el gráfico que al igual que en la TGO la dispersión de
algunos resultados que están fuera del valor de referencia que es hasta 40 U/L,
existen un total de 32 valores que están elevados, lo que refleja adicional a las 11
personas que están con el valor de colinesterasa elevado, un aumento que de 21
valores que pueden ser por diferentes motivos como la mala alimentación el
alcohol y las drogas, que están afectando al hígado y perjudicando su salud.
10,00
20,00
30,00
40,00
50,00
60,00
70,00
80,00
90,00
100,00
0 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 33 36 39 42 45 48 51 54 57 60 63 66
VA
LO
RE
S D
E T
GP
U/L
PACIENTES
RESULTADOS DE ALT (GPT) EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL.
VALORES REFERENCIALES: HASTA 40 U/L
61
Tabla XIII PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE COLINESTERASA SERICA EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL.
INTERPRETACION: Después de realizar los respectivos análisis de
colinesterasa sérica a las 64 personas, tomamos en cuenta las tres replicas para
obtener un promedio el cual nos ayuda a obtener un porcentaje de los valores que
están dentro o fuera de los valores normales de referencia.
Este porcentaje presenta un 82.81% de resultados que están dentro de rango
normal (3500 – 8500 UI/L) y un 17.19% de resultados que se encuentran por fuera
del límite normal. Cabe mencionar que existe alrededor del 10.94 % de valores,
que estando dentro de los valores normales nos indican una intoxicación por
compuestos organofosforados que inhiben la actividad colinesterásica, y aún
están expuestos de manera directa a diferentes tipos de fertilizantes y plaguicidas
sin protección alguna o cambiar de área para que disminuyan estos niveles de
toxicidad en la sangre y no perjudique su salud
# DE MUESTRAS
PORCENTAJE
NORMAL 53 82.81%
ANORMAL 11 17,19%
TOTAL 64 100,00%
62
Gráfico VIII PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE COLINESTERASA SERICA EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL.
Tabla XIV PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE AST (GOT) EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL.
# DE MUESTRAS
PORCENTAJE
NORMAL 34 53.13%
ANORMAL 30 46,87%
TOTAL 64 100,00%
INTERPRETACION: Según el promedio de resultados que se obtuvo de TGO
en las 64 personas que se analizó, tomando en cuenta las 3 réplicas, presentan
un 53.13% de resultados que están dentro de rango normal (hasta 40 U/L) y un
46.87% de resultados que se encuentran por fuera del límite normal.
Lo que es alarmante al notar que estas personas tienen posible problema
hepático, por diferentes motivos como alcohol, drogas mala alimentación, y
exposición a diferentes sustancias toxicas, muchas veces el paciente solo se
realiza la prueba de colinesterasa, mientras que las pruebas hepáticas como la
83%
17%
PORCENTAJE DE COLINESTERASA
NORMAL
ANORMAL
63
TGO no la hacen, porque les sale normal la colinesterasa y a su vez desconocen
que esta prueba puede estar elevada por los motivos citados anteriormente.
Gráfico IX PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE AST (GOT) EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL.
Tabla XV PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE ALT (GPT) EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL.
# DE MUESTRAS
PORCENTAJE
NORMAL 32 50.00%
ANORMAL 32 50,00%
TOTAL 64 100,00%
INTERPRETACION: Según el promedio de resultados que se obtuvo de TGP
en las 64 personas que se analizó, tomando en cuenta las 3 réplicas, presentan
un 50.00% de resultados que están dentro de rango normal (hasta 40 U/L) y un
50.00% de resultados que se encuentran por fuera del límite normal.
53%47%
PORCENTAJE DE AST (GOT)
NORMAL
ANORMAL
64
Esto nos indica en comparación con la TGO que existe un mayor número de
personas tienen este valor elevado.
Lo que es alarmante al notar que estas personas tienen posible problema
hepático, por diferentes motivos como alcohol, drogas mala alimentación, y
exposición a diferentes sustancias toxicas, muchas veces el paciente solo se
realiza la prueba de colinesterasa, mientras que las pruebas hepáticas como la
TGP o la TGO no la hacen, porque les sale normal la colinesterasa y a su vez
desconocen que esta prueba puede estar elevada por los motivo citados
anteriormente así como se puede observar que la mayor parte tiene elevado las
pruebas hepáticas por causas ajenas a la investigada.
Gráfico X PORCENTAJE DE VALORES OBTENIDOS DE ALT (GPT) EN LOS TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL.
50%50%
PORCENTAJE DE ALT(GPT)
NORMAL
ANORMAL
65
Tabla XVI DISTRIBUCION POR SEXO DE LOS 64 TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON NARANJAL.
# DE MUESTRA
PORCENTAJE
PROMEDIO DE COLINESTERASA
SERICA UI/L
PROMEDIO DE AST
(GOT) U/L
PROMEDIO DE ALT
(GPT) U/L
MASCULINO 53 82.81% 7343,12 42,66 42,74
FEMENINO 11 17,19% 7220,88 45,74 41,27
TOTAL 64 100%
Gráfico XI DISTRIBUCION POR SEXO DE LOS 64 TRABAJADORES DE LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON NARANJAL.
INTERPRETACION: Según el porcentaje que se obtuvo de la distribución por
sexo nos da a conocer que la mayoría de los trabajadores son de sexo masculino
con 83% y de sexo femenino con un 17%, esto se debe a que la mayor parte de
los trabajos a realizarse son de mayor esfuerzo y existen más áreas en el campo
para hombres y para mujeres dos áreas destinadas a la siembra y selección de
semilla.
83%
17%
DISTRIBUCION POR SEXO
MASCULINO
FEMENINO
66
Tabla XVII DISTRIBUCION DE LOS 64 TRABAJADORES SEGÚN LA ACTIVIDAD QUE DESENPEÑAN EN LA HACIENDA SECADAL UBICADA EN EL CANTON NARANJAL.
Gráfico XII DISTRIBUCION DELOS 64 TRABAJADORES SEGÚN LA EXPOSICIÓN DEL TRABAJO EN LA HACIENDA SECADAL UBICADO EN EL CANTON NARANJAL.
INTERPRETACION: Al analizar esta grafica según la exposición del área
donde labora, podemos constatar que 42 personas (66%) están expuestas
directamente a la contaminación por los diferentes productos que utiliza o su
distribución.
Mientras que 20 personas (31%) no están expuestas a un contacto directo, pero
que aún están en peligro de un ligero contagio por residuos que quedan en el
0
10
20
30
40
50
60
70
TRABAJO DE CAMPOEXPUESTO
TRABAJO DE CAMPO NOEXPUESTO
ADMINISTRATIVO
Serie 1
TIPO DE ACTIVIDAD SEGÚN SU EXPOSICIÓN
FRECUENCIA PORCENTAJE
TRABAJO DE CAMPO EXPUESTO
42 66%
TRABAJO DE CAMPO NO EXPUESTO
20 31%
ADMINISTRATIVO 2 3%
TOTAL 64 100%
67
suelo y el ambiente en donde se encuentran laborando, y 2 personas (3%) están
fuera de esta área de contacto como mayordomos que en su momento también
estaban expuestos y cambiaron de área para cuidar su salud.
Tabla XVIII COMPARACION DE LA MUESTRA CONTROL, CON LA MUESTRA QUE CONTIENE VALORES FUERA DEL RANGO NORMAL DE REFERENCIA.
N° DE MUESTRA
MUESTRA CONTROL
MUESTRA DE CAMPO
1 5145,00 4255,36
2 5337,00 9801,83
3 5669,00 8553,25
4 5155,00 3862,56
5 6338,00 3767,94
6 7257,00 10279,12
7 3739,00 9410,39
8 5281,00 10554,35
9 6720,00 3549,72
10 6947,00 9946,23
Gráfico XIII COMPARACIÓN DE MUESTRA CONTROL Y MUESTRA A INVESTIGAR
0,00
2000,00
4000,00
6000,00
8000,00
10000,00
12000,00
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
COMPARACION DE MUESTRA CONTROL Y MUESTRA A INVESTIGAR
MUESTRA CONTROL MUESTRA DE CAMPO
68
INTERPRETACION: Al analizar esta grafica se puede observar la diferencia
notable que existe del personal que no tiene contacto directo con los plaguicidas
y fertilizantes, por laborar en el área administrativa , y el personal que está
constantemente en contacto con estas sustancias, que les provoca un daño en su
salud, están sobre el valor máximo de referencia y otras cerca del valor mínimo
de referencia, lo que nos lleva a una clara definición que si influye el área en donde
se encuentra la persona trabajando y la exposición, ya sea con fertilizantes y
plaguicidas organofosforados.
.
69
CONLCUSIONES
Al realizar la determinación de colinesterasa sérica de 64 trabajadores
de la Hacienda Secadal, se obtuvo que 11 personas se encuentran
fuera de los parámetros normales, y 7 personas se encuentran por
debajo de los valores normales con la cual se evidencia la inhibición de
la enzima colinesterasa sérica estos ya pueden presentar algún cuadro
clínico de intoxicación aguda por pesticidas y organofosforados.
Mediante pruebas hepáticas se logró constatar que el 49% de la
población se encuentran fuera de los rangos normales, estos podrían
ser pacientes asintomáticos de alguna enfermedad hepática, estos van
a depender del cuadro clínico en general de cada uno de los pacientes.
De acuerdo a la actividad en la que se desempeñan obtuvimos que 12
pacientes tenían los niveles de colinesterasa altos; entre ellos tenemos
1 seguridad, 3 fertilizadores, 2 fumigadores, 3 cosechadores, 1 de
bodega, 1 vivero y 1 mayordomo. A variación en la determinación de
TGO y TGP se encontraron mayordomos, fertilizadores, cosechadores,
fumigadores, personal administrativo, regador, podador, con valores
fuera de los rangos normales y esto es debido a la mala nutrición, al
alcoholismo, y al consumo de ciertos fármacos.
La actividad de la colinesterasa se refleja en su mayoría en el sexo
masculino con un 82.81% y a un 17.19% al sexo femenino. En cambio,
en las transaminasas se van a ver afectados tantos hombres, como
mujeres. En la gráfica comparativa de los niveles de colinesterasa
sérica entre el grupo control y el grupo que tienen valores elevados por
el contacto directo con los plaguicidas, estas a su vez van relacionado
directamente al tiempo de trabajo que tiene cada persona
provocándoles un daño constante a su salud a largo plazo.
70
RECOMENDACIONES
Es importante educar a los trabajadores que se encuentran expuestos ya
sea de manera directa o indirecta, sobre el daño que va a causan a su
salud, por una mala manipulación de estos fertilizantes y plaguicidas, por
lo que es indispensable darles un conocimiento previo y equipo de
protección.
En los trabajadores que se encuentran expuestos, se recomienda que se
realicen como una prueba rutinaria el análisis de colinesterasa sérica, de
esta manera si el valor esta fuera del rango referencial podrá informarle al
administrador un cambio labores debido a la intoxicación que está
teniendo.
Se debe evitar ingerir alimentos y bebidas en el área que se encuentre
cercana, cuando se está manipulando y estos productos para no causar
una intoxicación por ingesta de algún residuo.
Es recomendable en el caso de las mujeres que si está en estado de
gestación solicitar un traslado a un área en la que no corra peligro su
embarazo.
Se recomienda alternar el área en que labora para no estar continuamente
en riesgo de intoxicación.
Tener una vestimenta destinada para el trabajo para evitar que los residuos
que están en las prendas de vestir puedan perjudicar a niños y personas
mayores en el hogar en caso de tenerlos.
71
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Peréz , C. (12 de Julio de 2017). Transaminasa . Obtenido de
https://www.natursan.net/que-son-las-transaminasas/
Pickers , S. (4 de Noviembre de 2015). Pysma Passionate People Creative
Solution. Obtenido de
http://www.psyma.com/company/news/message/como-determinar-el-
tamano-de-una-muestra
Salve Martínez, M., Amich Oliveras, S., & Prieto Menchero, S. (1994). Laboratorio
de Bioquímica . Interamericana de España : McGrawhill.
The StayWell Company. (18 de Junio de 2012). CareFirst, Colinesterasa. Obtenido
de
http://carefirst.staywellsolutionsonline.com/RelatedItems/167,cholinestera
se_blood_ES
76
Anexo 2 ORDEN PARA LA TOMA DE MUESTRAS
Nombre del Pcte.
Edad
Sexo
Actividad laboral
Tiempo de Trabajo
Nombre del Pcte.
Edad
Sexo
Actividad laboral
Tiempo de Trabajo
Nombre del Pcte.
Edad
Sexo
Actividad laboral
Tiempo de Trabajo
77
Anexo 3 REGISTRO DE LOS PACIENTES. RESULTADOS DE COLINESTERASA SERICA.
MUESTRA N°
EDAD SEXO TIEMPO DE
TRABAJO
TIPO DE TRABAJO
RESULTADO DE COLINESTERASA
SERICA
M-01
M-02
M-03
M-04
M-05
M-06
M-07
M-08
M-09
M-10
M-11
M-12
M-13
M-14
M-15
M-16
M-17
M-18
M-19
M-.
M-.
M-.64
78
Anexo 4 REGISTRO DE LOS PACIENTES. RESULTADOS DE TGO Y TGP
MUESTRA N°
EDAD SEXO TIEMPO DE
TRABAJO
TIPO DE TRABAJO
RESULTADO DE TGO
RESULTADO DE TGP
M-01
M-02
M-03
M-04
M-05
M-06
M-07
M-08
M-09
M-10
M-11
M-12
M-13
M-14
M-15
M-16
M-17
M-18
M-19
M-.
M-.
M-.63
M-.64
79
Anexo 5 FORMULARIO DE CONSENTIMIENTO INFORMADO.
Expreso mi consentimiento para participar de este estudio, he recibido toda
la información necesaria para que me anime hacer partícipe de este
proyecto, además se me explico que el análisis no va a tener ningún tipo
de costo y no tendrá valor alguno.
Dejo en constancia que mi participación de este estudio es voluntaria y que
puedo dejar de participar en cualquier momento que yo lo decida.
APELLIDOS Y NOMBRES DEL
PARTICIPANTE:_____________________________________________
____CI:_____________________________________________________
________FIRMA:_____________________________________________
____________
APELLIDOS Y NOMBRES DE LOS INVESTIGADORES:
___________________________________________________________
___________________________________________________________
________CI:_________________________________________________
____________FIRMAS DE LOS
INVESTIGADORES:__________________________________________
___________________________________________________________
__________
86
Anexo 9 CARACTERISTICA DEL ESPECTROFOTOMETRO MINDRAY BA-88
Analizador químico semiautomático con gran pantalla táctil y software de
funcionamiento intuitivo
Características
Pantalla táctil TFT de 7,0” y teclado emergente
Dos modos de prueba: cubeta de flujo o cubeta
Admite tests bicromáticos para métodos de punto final, de tiempo
fijo y de cinética
Teclado externo o ratón por USB
Interfaz intuitiva y software de funcionamiento en varios idiomas
Impresora térmica incorporada
88
Anexo 11 CON LA LCDA ROSA PACHECO RODAS EN EL DISPENSARIO DE LA HACIENDA SECADAL
Anexo 12 ENTRADA DE LA HACIENDA SECADAL
93
Anexo 19 GUIA DE USO DE EQUIPO DE PROTECCION (EPP), ELABORADO POR: Victor Cerdán Rivas y Orlando Guillen Chalco.
NORMAS DE PRECAUCION ANTES DE LA APLICACIÓN DE LOS
PLAGUICIDAS Y FERTILIZANTES.
1. No adquirir los plaguicidas de un proceder dudoso, comprar en almacenes
autorizados.
2. Almacenar en un lugar fresco y seguro, ventilado y que no esté al alcance
de los niños.
3. Leer detenidamente las indicaciones de la etiqueta, esta nos ayuda para
el uso seguro y eficaz del producto.
4. Revisar cuidadosamente los equipos, corregir fugas en las mangueras,
conexiones, etc.
NORMAS PARA LA PREPARACION DE LOS PLAGUICIDAS.
1. Usar en lo posible agua limpia sin partículas que puedan interferir en la
disolución.
2. Medir o pesar cuidadosamente los plaguicidas, si hay equipos como
balanzas, estas deben ser calibradas.
3. Los elementos utilizados para la preparación de los plaguicidas no
deben ser utilizados para algún otro fin doméstico,
4. Los envases, que ya estén vacíos, deben descontaminarse por medio
de un triple enjuague, este se lo realiza de la siguiente manera:
94
A. Colorar en el envase ¼ del volumen total de agua limpia, agitar con
la tapa hacia arriba durante unos 45 segundos, vaciar el agua del
lavado en el tanque o mochila donde se está preparando el
plaguicida.
B. Se vuelve a colocar un ¼ de agua limpia, agitar con la tapa hacia
abajo, durante unos 45 segundos y vaciar al tanque de preparación.
C. En el último enjuague colocar ¼ de agua limpia, agitar hacia los
lados, por 45 segundos y vaciar al tanque de preparación de los
plaguicidas.
PROCEDIMIENTO DEL TRIPLE ENJUAGUE.
Figura VII ENJUAGUE
Fuente: (Intagri S, 2017)
1. Tanquear con mucho cuidado el equipo ya sea este tanque o mochila
evitando derrame y posibles contaminaciones.
95
2. Capacitar al personal que va a realizar la fumigación de los plaguicidas y
proveerle el equipo de protección personal, así evitamos posibles
intoxicaciones.
3. Lavarse las manos o parte del cuerpo afectado por un derrame accidental,
cambiarse la ropa contaminada, no beber ni fumar cuando se esté
trabajando con los plaguicidas.
4. Lavarse manos antes y después de la aplicación de los plaguicidas.
EQUIPO DE PROTECCION PERSONAL.
1. Uso de prendas de vestir como pantalón, abrigos o en muchos casos
monos o mamelucos.
2. Usar delantales desechables para evitar posibles derrames accidentales y
contaminación de las prendas.
3. Se debe usar protección para la cabeza, la cual puede ser parte de los
monos o de un gorro impermeable con capucha.
4. Debemos utilizar protección para el rostro, en este caso debemos de usar
gafas protectoras dependiendo del trabajo a realizar, para protegernos de
alguna intoxicación por vía respiratoria, se utilizará una mascarilla con
filtros de aire, el personal a cargo debe de asegurarse que la mascarilla
este bien ajustada, así evitamos una posible intoxicación.
5. Usar guantes protectores de por lo menos 0,4 mm de espesor para evitar
quemaduras con plaguicidas altamente concentrados.
6. Usar botas impermeables de suela gruesa, para evitar algún contacto de
plaguicidas por medio de los pies.
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