Clase1_centrifugacion

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Separación Sólido- Líquido Separación y Procesos Biotecnológicos

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Separación Sólido-Líquido

Separación y Procesos Biotecnológicos

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¿Cuáles son las etapas en las cuales hay una Separación

Sólido-Líquido?

Page 3: Clase1_centrifugacion

Rompimiento Células

Precipitación Ácidos Nucleicos, Proteasas

Concentración

Purificación AltaResolución

Refinamiento

Separación MaterialIntracelular (Desechos)

Caldo de Fermentación

Separación de Células

Sin Células•Células inmovilizadas•Células retenidas

Con Células

Células

Sobrenadante

Tratamiento de cuerpos incluidos

Permite•Altos niveles de pureza•Estabilidad del producto

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Rompimiento Células

Precipitación Ácidos Nucleicos, Proteasas

Concentración

Purificación AltaResolución

Refinamiento

Separación MaterialIntracelular (Desechos)

Caldo de Fermentación

Separación de Células

Sin Células•Células inmovilizadas•Células retenidas

Con Células

Células

Sobrenadante

Tratamiento de cuerpos incluidos

Permite•Altos niveles de pureza•Estabilidad del producto

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Procesos de Separaciones Sólido-Líquido

¿ Cuándo se utiliza la separación sólido-líquido?

 

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Procesos de Separaciones Sólido-Líquido

¿ Cuándo se utiliza la separación sólido-líquido?

• Separación de células• Separación de desechos celulares• Recuperación de cuerpos incluidos ¿ Qué son?• Concentración

 

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Procesos de Separaciones Sólido-Líquido

¿ Cuándo se utiliza la separación sólido-líquido?

• Separación de células• Separación de desechos celulares• Recuperación de cuerpos incluidos ¿ Qué son?• Concentración

 

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PProcesos de Separaciones Sólido-Líquido¿ Cuándo se utiliza la separación sólido-

líquido?• Separación de células• Separación de desechos celulares• Recuperación de cuerpos incluidos ¿ Qué son?• Concentración

¿Qué contiene la suspensión proveniente del fermentador?

• m.o intactos•  Fragmentos de m.o ¿Por qué?

Fase sólida   Ingredientes insolubles del medio, i.e glucano.

•  Sustrato insoluble residual 

• Sustrato soluble residualFase líquida Metabolitos  intermedios

• Productos deseados• Otros productos solubles

 

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¿ Cuáles son las operaciones unitarias utilizadas para la separación sólido-líquido? ¿ Cuáles conocen sus

ecuaciones de diseño?

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¿ Cuáles son las operaciones unitarias utilizadas para la separación sólido-líquido?

Sedimentación

• Centrifugación

Filtración

• Operaciones auxiliares

• Coagulación

• Floculación

Operaciones de membrana

• Microfiltración

• Ultrafiltración

• Diálisis

Extracción líquido-líquido

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Centrifugación

Operación unitaria utilizada para la separación:sólido-líquido líquido-líquido

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CENTRIFUGACIÓN

Centrifugación utiliza la diferencia de densidad entre los sólidos y el fluido que lo rodea.

Es una de las principales operaciones utilizadas en la separación de células desde caldos biológicos, especialmente cuando los caldos no son fáciles de filtrar.También se emplea en la remoción de desechos celulares, separación de precipitados proteicos y recuperación de productos insolubles (cuerpos incluidos) 

Escala IndustrialEscala Laboratorio

Diferentes escalas

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Centrifugacíón v/s Sedimentación

Cuando la suspensión se encuentra detenida los sólidos más densos comienzan a decantar bajo:

- La acción de la fuerza de gravedad, proceso llamado sedimentación.

- Un campo centrífugo el proceso se llama centrifugación. Fuerza

Cuando se utiliza la centrifugación la diferencia entre la densidad los sólidos (células o partículas) y el caldo, se incrementa por la acción de la fuerza centrífugas que se generan por las altas velocidades de rotación de los equipos. El proceso de separación es más rápido

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Ejemplos de Centrifugas

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Tipo Tubular

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De Discos

Page 17: Clase1_centrifugacion

Comparación entre los diferentes tipos de centrífuga

Tipo de Tamaño de Contenido Prueba de Prueba de

Centrifuga Partícula Sólidos Sedimentación Consistencia

micras % a 1.000 G (min) de los Sólidos

Tubular 01 - 200 2 - 20 torta firmeCámara Múltiple 0.5 - 5.000 1 - 5 2 - 20 torta firme

Discos y boquillas 0.5 - 200 2 - 20 1 - 10 lodoDiscos Tazón abierto 0.5 - 200 < 10 1 - 10 lodo

Discos y boquillas 0.5 - 200 < 10 1 - 10 lodoDiscos Intermitentes 0.15 - 200 < 1 1 - 10 torta firme

Tazón Sólido 2 - 5.000 1 - 5 torta firme

Comparación entre los diferentes tipos de centrifuga

Características manejables de la Alimentación

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Comparación entre los diferentes tipos de centrífuga

Tipo de Método de Capacidad Flujo de la Fuerza g

Centrifuga descarga de lavado de Alimentación Máxima

sólidos torta L/ min

Tubular Intermitente Ninguna 8 - 100 12,000 - 16,000Cámara Múltiple Intermitente Ninguna 1.5 - 335 5,000 - 9,000

Discos y boquillas Continuo Moderada 3,8 - 3,780 5,000 - 8,500Discos Tazón abierto Intermitente Ninguna 3,8 - 1,500 5,000 - 7,000

Discos y boquillas Intermitente Ninguna 3,8 - 570 14,000 - 16,000Discos Intermitentes Intermitente Ninguna 0,38 - 1,500 5,000 - 8,000

Tazón Sólido Intermitente Ninguna 1,5 - 250 500 - 800Decantadora Continuo Moderada 3, 8 - 1,800 2,000 - 3,200

Características de Procesamiento

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Características de la materia celularTipo de Células Tamaño Densidad Reistencia Proceso Tipico de

m (g/ m3) al esfuerzo de SeparaciónCorte

Bacteria 0.5 - 3 1050-1080 Alta Centrifugacion;1050- 1090 Micro-filtracion

Levaduras 5 - 10 1050 - 1090 FiltraciónCentrifugacion

Hongos 1 x 100's 1050 - 1090 Media Filtración al vacíoFilamentosos

Plantas 1 - 100 1050 - 1090 Baja Microfiltracion;

Células Animales 10 - 40 Muy Baja Centrifugacion a baja velocidadFotación

Floculos de Células 10 - 100's 1010 - 1080 Variable Centrifugracion;

SedimentaciónDesechos celulares 0.4 1010-1200 Baja Centrifugracion;

Microfiltracion; Partición en dos fases

Proteínas Precipitadas 0.1 - 100's 1010-1200 Media Centrifugacion;Microfiltracion;Ultrafiltracion

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SEDIMENTACION DE SOLIDOS

 Una partícula al moverse en un medio continuo e infinito se ve afectada por 2 fuerzas. Fuerza de Flotación

La partícula es acelerada por la fuerza de flotación, FB, que es la resultante de la diferencia de densidades entre la partícula y el fluido (FB). Según Newton (suponiendo partículas esféricas):

Empuje

G

Donde d: diámetro de la partícula s,: densidad de la partícula y del fluidoa: aceleración del campo al cual está sometido la partícula

ad

FsB

)(6

3

(1)

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 Por otra parte, la partícula al moverse se ve retardada por la fuerza de roce, FD, que se opone al movimiento. Según la Ley de Stoke

E

G

vdFD 3 (2)

Fuerza de Roce

Donde = viscosidad del mediov = velocidad de la partícula

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 Debido a estas 2 fuerzas, cuando el sistema alcance el equilibrio, la partícula se moverá a una velocidad constante, igual a la velocidad terminal cuando:

FB = FD (3)

Estas condiciones se cumplen cuando: Casi siempre se cumple en sistemas biológicos

1Re

vd

ad

F sB )(6

3

vdFD 3

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 A partir de (3) se puede determinar la velocidad terminal.

depende del campo al cual se encuentre sometida

ad

vs

)(18

2

(4)

Si es campo gravitacional (sedimentación)

gd

vg s ).(18

2

(5)

sedimentarendemoraquetiemporecorrerdebequedistancia

tsds

vg

(5a)

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Ejemplo 1 Sedimentación de células inmovilizadas

Muchas células animales son cultivadas en la superficie de micro-esferas Esas esferas (microcarrier) tienen una densidad de 1.02 g/cm3 y un diámetro de 150 m. Un fermentador 50 litros es usado para el crecimiento de estas células en los microcarrier para producir una vacuna. Después que las células han crecido, la agitación es detenida y los microcarrier comienzan a sedimentar. El estanque tiene una razón entre altura y diámetro de 1,5.

 El flujo libre de microcarrier tiene una densidad de 1.00 g/cm3 y una viscosidad de 1,1 cP. ( 0.011 [g/cm sec] )

 a) Calcule el tiempo de sedimentación de estos microcarrier suponiendo

que sedimentan a su velocidad terminal.

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)(60

2sradn

Donder : radio desde el centro de la centrífuga a la posición donde se encuentra la partícula: velocidad angular de rotaciónn: revoluciones por minuto 

Si es un campo centrífugo

rd

v sgr 22

)(18

(6)

recorrerlaen demora que Tiemporecorrer debe se que Distancia

dtdr

g(6a)

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Se pueden correlacionar las 2 velocidades

dtdr

gr

vgg

..

2

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Factor “G”

(Distinto a la eficiencia granulométrica) Se define el factor “G” para caracterización y escalamiento de centrífugas es una medida relativa de la velocidad de sedimentación de una partícula en un campo centrífugo con respecto a su gravitacional.  

Generalmente las condiciones de operación de definen en función de los “G” que se deben aplicar.

g

r

vG

g

g .2

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ECUACION DE DISEÑO

 Existe un movimiento en la dirección r

CENTRIFUGA DE BOTELLAS (laboratorio)

)()(18

22

2

g

rvr

d

dt

drv gsgr

t

o

g

R

R

dtg

vr

dr)(

23

1

tg

vR

Rg

)(ln

2

1

3

Integrando

(10)

(11)

(12)

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Ejemplo 2 Centrifugación discontinua de Células de levadura

Una centrífuga, que utiliza botellas, es usada para colectar las células de levadura luego de una fermentación. Durante la centrifugación la distancia entre la superficie del líquido y el eje de rotación (eje axial) es 3 cm y la distancia entre el fondo del cilindro al eje axial es 10 cm.

  Las células de levadura se pueden asumir como partículas esféricas con un diámetro de 8.0 m y una densidad de 1.05 g/cm3. El fluido tiene propiedades similares al agua pura.

( Densidad 1.00 g/cm3 y una viscosidad de 0.01 g/cm sec)

 La centrifuga está operando a 500 rpm

1. Determine el tiempo que tomará una separación completa de las levaduras.

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ECUACIONES DE DISEÑO

Existe un movimiento en la dirección z y r Movimiento en Dirección “z”

(7)

Q: Flujo de alimentación

R1,R3 : Radio del nivel del líquido, Radio de la centrífuga

CENTRIFUGA TUBULAR

)( 2

1

2

3RR

QAQ

dtdz

vz

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 Movimiento en Dirección radial “r”

(8)

Q: Flujo de alimentación

R1,R3 : Radio del nivel del líquido, Radio de la centrífuga

El movimiento combinado

)()(18

22

2

gr

vrd

dtdr

v gsgr

Q

RR

gr

vv

dtdzdtdr

dzdr o

gz

g )()(

21

22 (9)

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 Dependiendo de los valores de vg y Q dependerá la posición de la partícula en la centrífuga. Se puede calcular un flujo óptimo para que una partícula que ingresa por el centro, sólo se pegue a la pared al final. Tal que:

z = Lr = R3

Así se determina la ecuación de diseño de una centrífuga tubular:

(10)1

3

21

23

2

ln

)(

RR

RRLg

vQ g

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 Simplificando

Así se determina la ecuación de diseño de una centrífuga tubular.

(17)

2 R donde 2

ln

)( 13

1

3

21

23 RR

R

RRRR

TubuLargg vg

RLvQ

222

Característica de la centrífuga y condiciones de operación

Parámetro de diseño Flujo Función de la partícula

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ECUACION DE DISEÑO

 En un análisis análogo para centrífugas de disco se tiene como ecuación de diseño:  

ND : Número de discos.

Más detalles ver desarrollo:

CENTRIFUGA DE DISCOS

Discos

31

33

2

*3

cot)(2

g

Dg v

g

RRNvQ

(18)

Belter P., Cussler E.L. and Hu Wei Shou "Bioseparations : Dowstream Processing forBiotechnology":, John Wiley and Sons , 1988.

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Ejemplo 3 Centrifuga continua de Disco para Chlorella

  Células de Chlorella han sido cultivadas en un estanque abierto, las células serán cosechadas haciéndolas pasar a través de una centrífuga de discos.

  La velocidad de sedimentación de estas células ha sido medida y es de 1.07 x 10-4 cm/seg.

  La centrífuga tiene 80 discos con un ángulo de 40°, el radio externo es 15,7 cm y el diámetro interno de 6 cm.

 

Se planea operar la centrífuga a 6000 r/min.

1.  Estime la cantidad de flujo que puede ser procesado en esta centrífuga.

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Escalamiento de Centrifugación

 El diseño de centrífugas a gran escala involucra el uso de información de laboratorio para predecir el comportamiento de las centrífugas comerciales.

Métodos que se pueden utilizar para tratar de adaptar los procesos de laboratorio a gran escala.

 a) Métodos Cualitativosb) Métodos Cuantitativos

 

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a) Métodos cualitativo (Estimación Gruesa) 

Se establece un coeficiente de dificultad que tiene una separación dada para lo cual se calcula un coeficiente entre “G” y el tiempo aplicado, ie, “G t”

tgR

tG o

2

Ro: radio característico o máximo de la centrífuga.

(19)

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Existen valores característico para cada variedad de biomasa 

Sólido G t [sec]

Células eucariontes 0.3 10-6

Cloroplastos 0.3 10-6

Desechos células eucariotes 2.0 10-6

Núcleo de célula 2.0 10-6

Proteínas precipitadas 9.0 10-6

Bacterias 18 10-6

Mitocondrias 18 10-6

Desechos bacterias 54 10-6

Lisosomas 1100 10-6

Ribosomas 1100 10-6

Polisomas 1100 10-6

A gran escala se debe mantener el mismo valor de “G t”, para ello se determina “G” o “t” y se selecciona que equipo puede ser

útil

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b) Método Cuantitativo 

Para cada tipo de centrífuga se define según una ecuación del tipo:

  

Para comparar 2 centrífugas de diferente tipo se deben considerar factores de eficiencia y se debe cumplir:

 

Eficiencia, , para cada tipo de centrífuga, es:

Tipo Eficiencia [%]Botellas (lab) 100Tubular 80Discos 55

  

1 Tipo 1 Tipo gvQ

21 TipoTipo

QQ

(20)

(21)

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Ejemplo 4 Escalamiento

   Se han realizado pruebas de laboratorio para definir el parámetro de escalamiento para el procesamiento de una suspensión con material celular. En el experimento se procesaron 3.3 [lt/min] de una suspensión de células de E.coli , en una centrifuga tubular de 12.7 [cm] de radio interno y 73 [cm] de largo. Se utilizó una velocidad de rotación de 16000 r.p.m.

  Se requiere seleccionar una centrífuga para procesar 800 [lt/hr] de la misma suspensión antes mencionada. Para ello se cuenta con las siguientes alternativas de centrífugas de discos.

Nº de discos 33 50 66

Radio externo [cm] 35 35 35

Radio interno [cm] 15 15 15

Ángulo [º] 51 51 51

Velocidad máximaRotación [r.p.m.]

5000 6500 5000

Propiedad Opción 1 Opción 2 Opción 3

       

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Potencia

La potencia consumida por una centrifuga dependerá del caudal al tratar Q, de la velocidad angular y del radio R.

Así su consumo energético está dado por:

   Potencia *Q* (R)2

Donde es una constante que depende del tipo de centrifuga.

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Costo de CentrifugasEl valor depende generalmente del de la centrifuga, así

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• Variaciones en el tiempo de compra

Ct2 = Ct1 It2/It1

C: precio compra I: indice de costost1: base de costeo a tiempo t1 t2: tiempo

INDICES Chemical Eng Plant Cost IndexMarshall & Swift EquipmentCost Index

Actualización de los costos con el tiempo

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Referencias:1. Belter P., Cussler E.L. and Hu Wei Shou "Bioseparations :

Dowstream Processing for Biotechnology":, John Wiley and Sons , 1988.

2. Doran M." Bioprocess Engineering Principles", Academic Press, 1995.

3. Tejeda, R.M.Montesinos, R.Guzmán "Bioseparaciones", Editorial Unison, 1995.