ESTUDIO FITOQUIMICO DE HOJAS DE LA ESPECIE VEGETAL...

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1 ESTUDIO FITOQUIMICO DE HOJAS DE LA ESPECIE VEGETAL Piper catripense (PIPERACEAE) Y EVALUACIÓN DE SU CAPACIDAD ANTIOXIDANTE. ALISON YINETH MONTERO COLLAZOS. UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN QUÍMICA Bogotá D.C, 2017

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ESTUDIO FITOQUIMICO DE HOJAS DE LA ESPECIE VEGETAL Piper catripense

(PIPERACEAE) Y EVALUACIÓN DE SU CAPACIDAD ANTIOXIDANTE.

ALISON YINETH MONTERO COLLAZOS.

UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS

FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN

PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN QUÍMICA

Bogotá D.C, 2017

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ESTUDIO FITOQUIMICO DE HOJAS DE LA ESPECIE VEGETAL Piper catripense

(PIPERACEAE) Y EVALUACIÓN DE SU CAPACIDAD ANTIOXIDANTE.

ALISON YINETH MONTERO COLLAZOS

Proyecto de investigación presentado como requisito parcial para optar al título de:

Licenciado en Química.

Director:

WILLIAM FERNANDO CASTRILLÓN CARDONA.

Químico, Especialista En Edumatica, Magister en Ciencias Ambientales.

Codirector:

JAVIER ANDRÉS MATULEVICH PELÁEZ.

Licenciado En Química, Especialista En Análisis Químico Instrumental, Magister En

Ciencias Biológicas Con Énfasis en Fitoquímica.

UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS

FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN

PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN QUÍMICA

Bogotá D.C, 2017

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AGRADECIMIENTOS

Le agradezco a Dios por haberme acompañado y guiado a lo largo de mi carrera, por ser

mi fortaleza, mi luz y apoyo en los momento de debilidad.

Le doy gracias a mis padres Elizabeth y Jaime por apoyarme en todo momento y por los

valores que me han inculcado.

A mis hermanos por ser parte importante de mi vida, por llenar mi vida de alegría y

apoyarme en los momentos de necesidad

A Dany por ser una parte muy importante de mi vida, por haberme apoyado en las buenas

y en las malas

Le agradezco al profesor Javier Matulevich por la confianza, apoyo, esfuerzo y

dedicación, quien con sus conocimientos, su experiencia y su paciencia ha logrado que

pueda terminar esta tesis

Gracias al profesor Willian Castrillon por todo su apoyo

A la fundación universitaria Juan N. Corpas, por el préstamo de instalaciones y equipos

empleados en la determinación de la capacidad antioxidante.

A los integrantes del Grupo de Investigación Productos naturales vegetales por su apoyo

incondicional

A mis amigos por confiar y apoyarme siempre

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TABLA DE CONTENIDO

RESUMEN ......................................................................................................................13

1. INTRODUCCION ....................................................................................................15

2. JUSTIFICACION........................................................................................................16

2.1. PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN .............................................................................. 17

3. OBJETIVOS ...............................................................................................................18

3.1. OBJETIVO GENERAL................................................................................................... 18

3.2. OBJETIVOS ESPEIFICOS .......................................................................................... 18

4. ESTADO ACTUAL DEL TEMA ..............................................................................19

4.1. FAMILIA PIPERÁCEAE ............................................................................................... 19

4.1.1. Características morfológicas de la familia Piperáceae ........................................ 19

4.1.2. Distribución de la familia Piperácea ...................................................................... 20

4.1.3. Uso de la familia Piperácea ................................................................................... 20

4.1.4. Actividades biológicas de la familia Piperácea .................................................... 21

4.1.5. Estudios químicos de la familia Piperácea ........................................................... 22

4.2 GENERO PIPER ............................................................................................................. 24

4.2.1. Características morfológicas del género Piper .................................................... 24

4.2.2. Distribución del género Piper ................................................................................. 25

4.2.3. Uso del género Piper .............................................................................................. 26

4.2.4. Actividades biológicas del género Piper ............................................................... 26

4.2.5. Estudios Quimicos del género Piper ..................................................................... 28

4.3. ESPECIE Piper catripense........................................................................................... 31

4.3.1. Características morfológicas de la especie Piper catripense ............................. 31

4.3.2. Distribución de la especie Piper Catripense ......................................................... 32

4.3.3. Uso de la especie Piper Catripense ...................................................................... 32

4.3.4. Actividades biológicas y estudios químicos de la especie Piper Catripense..... 32

4.4. CAPACIDAD ANTIOXIDANTE .................................................................................... 33

4.4.1. Antioxidantes ........................................................................................................... 33

4.4.2. Modelos de evaluación de la capacidad antioxidante ......................................... 33

4.4.3. Método 1,1-difenil-pricrilhidrazil (DPPH) .............................................................. 35

5. METODOLOGIA ........................................................................................................36

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5.1. GENERALIDADES ........................................................................................................ 36

5.2. METODOS DE SEPARACIÓN CROMATOGRAFICA .............................................. 36

5.2.1 Técnicas de elucidación estructural y caracterización de los metabolitos

secundarios aislados ......................................................................................................... 37

5.3. RECOLECCION DE LA MUESTRA ............................................................................. 37

5.4. MARCHA FITOQUÍMICA PRELIMINAR ..................................................................... 38

5.5. EXTRACCIÓN CON ETANOL, FRACCIONAMIENTO Y PURIFICACIÓN DE es

METABOLITOS SECUNDARIOS PRESENTES EN HOJAS ............................................ 39

5.6 OBTENCION DE FRACCIONES ................................................................................... 40

5.5.2. Fracción hexano de hojas de Piper catripense (Fx.Hex.Pc.H) ........................... 40

5.5.3. Fracción diclorometano de hojas de Piper catripense (Fx.DCM.PcH) ............... 40

5.5.4. Fracción acetato de etilo de hojas de Piper catripense (Fx.AcOEt.Pc.H) ......... 41

5.6. EXTRACCION Y CARACTERIZACIÓN QUÍMICA DE LOS ACEITES ESENCIALES

................................................................................................................................................ 42

5.6.1 Obtención de aceites esenciales (AE) de hojas de Piper catripense .................. 42

5.6.2 Identificación de los compuestos de AE de Piper catripense .............................. 42

5.8. EVALUACION DE LA CAPACIDAD ANTIOXIDANTE .............................................. 43

5.8.1 Preparación de la solución DPPH .......................................................................... 43

5.8.2 Preparación de la curva de referencia .................................................................. 43

5.8.3. Cuantificación de la capacidad antioxidante ........................................................ 43

6. RESULTADOS Y ANALISIS ....................................................................................45

6.1. MARCHA FITOQUÍMICA PRELIMINAR ...................................................................... 45

6.2 METABOLITOS SECUNDARIOS AISLADOS ............................................................. 47

6.2.1. Elucidación estructural del compuesto PcH.1 ...................................................... 47

6.2.2. Composición de la mezcla PcH.2 .......................................................................... 49

6.2.3. Composición de la mezcla PcH.3 .......................................................................... 53

6.2.4. Composición de la mezcla PcH.4 .......................................................................... 56

6.3 COMPOSICIÓN QUÍMICA DEL ACEITE ESENCIAL DE HOJAS DE Piper

Catripense .............................................................................................................................. 59

6.4. EVALUACIÓN DE LA CAPACIDAD ANTIOXIDANTE DE LAS HOJAS DE Piper

Catripense .............................................................................................................................. 63

6.4.1 Curva de calibración para el ensayo DPPH .......................................................... 63

7. CONCLUSIONES ......................................................................................................68

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8. RECOMENDACIONES .............................................................................................69

9. BIBLIOGRAFIA .........................................................................................................70

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INDICE DE FIGURAS

Figura 4-1 Características morfológicas de la familia Piperácea. (Naturalista, 2009) ....... 19

Figura 4-2 Distribución geográfica de la familia Piperáceae ............................................. 20

Figura 4-3 Características morfológicas de especies del género Piper. (Naturalista, 2009)

........................................................................................................................................ 25

Figura 4-4 Distribución geográfica del género Piper ......................................................... 26

Figura 4-5 Características morfológicas de la especie Piper catripense. .......................... 31

Figura 4-6 Distribución de la especie Piper catripense. .................................................... 32

Figura 4-7 Esquema de reacción DPPH. ........................................................................ 35

Figura 5-1 Mapa de localización del área de recolección de la especie. Colombia,

Departamento Choco ....................................................................................................... 38

Figura 5-2 Diagrama Marcha Fitoquímica Preliminar para las Hojas de la especie Piper

catripense ........................................................................................................................ 39

Figura 5-3 Diagrama Obtención de extractos fracciones de la especie Piper catripense. 40

Figura 5-4 Diagrama Obtención de mezclas PcH.3 y PcH.4 de la fracción Diclorometano

especie Piper catripense .................................................................................................. 41

Figura 6-1 Corriente iónica total (TIC) de la Compuesto PcH.1. ....................................... 47

Figura 6-2 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el compuesto Pc.H1.

........................................................................................................................................ 48

Figura 6-3 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el acetaminofén .................. 49

Figura 6-4 Corriente iónica total (TIC) de la mezcla PcH.2. .............................................. 50

Figura 6-5 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el β- Eudesmol ...... 50

Figura 6-6 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el β- Eudesmol ................... 51

Figura 6-7 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Cedrane-8,13-diol51

Figura 6-8 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Cedrane-8,13-diol ........... 52

Figura 6-9 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Veridiflorol ......... 52

Figura 6-10 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Veridiflorol ..................... 53

Figura 6-11 Corriente iónica total (TIC) de la mezcla PcH.2. ............................................ 54

Figura 6-12 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Piperonal ........ 54

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Figura 6-13 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Piperonal ....................... 55

Figura 6-14 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Tetratetracontane

........................................................................................................................................ 56

Figura 6-15 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Tetratetracontane .......... 56

. Figura 6-16 Corriente iónica total (TIC) de la mezcla PcH.4. ......................................... 57

Figura 6-17 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el 3 –

butilindolizidina ................................................................................................................ 57

Figura 6-18 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el 3 – butilindolizidina ........ 58

Figura 6-19 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Cubebinolide .... 58

Figura 6-20 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Cubebinolide ................. 59

Figura 6-21 Perfil cromatografico de los AE de las hojas de Piper catripense .................. 60

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LISTA DE TABLAS

Tabla 4-1 Actividad biológica de algunas especies de la familia Piperáceae.................... 22

Tabla 4-2 Actividad biológica de algunas especies del género Piper. .............................. 27

Tabla 4-3 Clasificación de la especie vegetal Piper catripense. ....................................... 31

Tabla 4-4 Clasificación de los modelos de ensayo in vitro (Tovar del Rio & Mosquera,

2013) ............................................................................................................................... 34

Tabla 6-1 Marcha fitoquímica preliminar del extracto etanólico de las hojas de la especie

Piper catripense ............................................................................................................... 45

Tabla 6-2 Composición química relativa del aceite esencial de las hojas de la especie

Piper catripense ............................................................................................................... 60

Tabla 6-3 Promedio de absorbancias, % inhibición, IC50 del Ácido Gálico ..................... 64

Tabla 6-4 % inhibición, IC50 del extracto y fracciones de las hojas de la Piper catripense

........................................................................................................................................ 67

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TABLA DE GRAFICAS

Grafica 6-1 % Compuestos AE ........................................................................................ 62

Grafica 6-2 Curva de calibración patrón Acido Gálico ...................................................... 63

Grafica 6-3 curva de IC 50 patrón ácido gálico ................................................................ 65

Grafica 6-4 % capacidad antioxidante extracto y fracciones de las hojas de Piper

catripense ........................................................................................................................ 65

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LISTA DE ABREVIATURAS

AcOEt Acetato de etilo

AE Aceites esenciales

CC Cromatografía en columna

CCD Cromatografía en capa delgada

CF Cromatografía flash

CG-EM Cromatografía de gases acoplada a espectrometría de masas

DCM Diclorometano

DPPH 1,1-difenil-2-2picril-hidrazilo

E.EtOH.Pc.H Extracto etanolico de las hojas de la Piper catripense

EM Espectrometría de masas

EtOH Etanol

Fx.AcOEt.Pc.H Fracción Acetato de etilo de las hojas de la Piper catripense

Fx.DCM.Pc.H Fracción diclorometano de las hojas de la Piper catripense

Fx.Hex.Pc.H Fracción hexano de las hojas de la Piper catripense

Hex Hexano

IE Ionización electrónica

IR Índice de retención

m.s.n.m metros sobre el nivel del mar

Mezcla PcH2 Mezcla 2 hojas Piper catripense

Mezcla PcH24 Mezcla 4 hojas Piper catripense

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Mezcla PcH3 Mezcla 3 hojas Piper catripense

MFP Marcha fitoquimica preliminar

PcH1 Compuesto 1 hojas Piper catripense

Ppm Partes por millón

SD Desviación edtandar

TIC Corriente iónica total

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RESUMEN

Piper catripense es una especie vegetal perteneciente al género Piper de la familia

Piperaceae conocida comúnmente como desvanecedora, siendo el género Piper uno de

los más amplios, el cual tiene una distribución de más de 1200 especies. Teniendo en

cuenta la importancia y la gran cantidad de especies vegetales del género Piper que se

utilizan en la medicina popular para aliviar diferentes dolencias, este trabajo de

investigación presenta los resultados del estudio químico y biológico, haciendo una

contribución importante a la familia Piperaceae y a la especie Piper Catripense ya que no

cuenta con reportes científicos.

Se realizó la colecta del material vegetal en el departamento del Choco municipio Bajo

Baudó, y se extrajo mediante la técnica de maceración en frio con etanol al 96%

obteniéndose 60g de extracto total (E.EtOH.PcH), donde mediante el estudio fitoquímico

preliminar se determinó cualitativamente la presencia de diferentes metabolitos

secundarios, tales como flavonoides, taninos, cardiotonicos, carotenoides, alcaloides,

esteroides y triterpenos.

Mediante el fraccionamiento liquido-liquido continuo al extracto etanólico (E.EtOH.PcH)

con solventes de polaridad creciente, se obtuvieron las diferentes fracciones: fracción de

hexano (Fx.Hex.Pc.H), fracción de diclorometano (Fx.DCM.Pc.H) y fracción de acetato de

etilo (Fx.AcOEt.Pc.H), las cuales fueron sometidas a separación continua utilizando

técnicas de cromatografía, tales como cromatografía en capa delgada (CCD) y

cromatografía en columna (CC). La elucidación estructural de los compuestos aislados se

llevó a cabo mediante las técnicas de cromatografía de gases acoplada a masa (CG-EM)

permitiendo obtener un compuesto identificado como acetaminofén y tres mezclas de

compuestos tipo sesquiterpenos, aldehídos, hidrocarburo alifático, alcaloide y lactona

compuesta por β-Eudesmol, Cedran-8,13-diol, Veridiflorol, Piperonal, Tetratetracontano, 3

– butilindolizidina y Cubebinolide, respectivamente

Se obtuvieron los aceites esenciales por la técnica de arrastre de vapor de hojas frescas,

la identificación de los componentes se hizo mediante CG-EM, comparando los índices de

retención y los espectros de masas de las respectivas señales con los de la librería

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NIST08, permitiendo identificar 29 componentes, en su mayoría sesquiterpenos siendo el

Isolongifolan-8-ol (30,98) el compuesto mayoritario dentro del aceite.

Se evaluó la capacidad antioxidante del extracto etanolico (E.EtOH.PcH) y las fracciones

de hexano (Fx.Hex.Pc.H), diclorometano (Fx.DCM.Pc.H) y acetato de etilo

(Fx.AcOEt.Pc.H) utilizando el método de DPPH, donde se permitió establecer que el

extracto etanolico y la fracción de acetato de etilo presentan un alto potencial de

eliminadores de radicales libres, ya que son capaces de neutralizar el 50% de radicales

libres.

PALABRAS CLAVE: Piper catripense, capacidad antioxidante, metabolitos fijos,

metabolitos volátiles.

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1. INTRODUCCION

Colombia es conocida por su inmensa riqueza en recursos naturales y se le atribuyen una

alta expresión de biodiversidad debido a que el país se encuentra a 1.600 km de la costa

del Caribe, costa del Pacífico y la selva amazónica colombiana. Por otra parte, la variedad

de climas que se pueden experimentar desde los desiertos áridos hasta las montañas

cubiertas con nieve, generando así condiciones apropiadas para el crecimiento de más de

130.000 especies vegetales. (Off2Colombia, 2012). Gracias a la gran variedad de

especies presentes en el país se ha incrementado el estudio de las plantas con el fin de

buscar diferentes tipos de sustancias biológicas como lo son antioxidantes cuyo consumo

nos protegen frente a los radicales libres que pueden llevar a desarrollar enfermedades

cardiovasculares y tumorales (NewYork-Presbyterian, 2009).

Debido al aumento en la utilidad terapéutica de las plantas, la industria farmacéutica y la

investigación química se han propuesto el descubrir los componentes activos de las

diferentes especies vegetales con el fin de combatir la gran variedad de enfermedades

que hoy afectan a la humanidad, generando el aumento del uso de producto para el

control de enfermedades. (Portalfarma.com, 2012)

Actualmente la familia Piperaceae, presenta un gran número de especies que se localizan

en las zonas tropicales y subtropicales del mundo siendo el género Piper el más

estudiado, ya que cuenta con el mayor número de especies con diferentes actividades

biológicas comprobadas, como antimicrobianas, antifungica, antibacteriana,

antinflamatorio, anticarcinogénico, antioxidante entre otras. Químicamente, se han

encontrado alcaloides, amidas, lignanos, neolignanos y Terpenos. ( Parmar, y otros, 1997)

De esta manera, el presente trabajo de investigación realizó un aporte al conocimiento

químico y biológico de la familia Piperáceae en Colombia, por medio del estudio

fitoquímico de metabolitos fijos y la evaluación de la capacidad antioxidante de su extracto

y fracciones, así como el estudio de los componentes volátiles del aceite esencial de las

hojas de la especie vegetal Piper catripense.

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2. JUSTIFICACION

En nuestra cotidianidad, las diferentes actividades que realizamos y sus diversas

condiciones, hacen que día a día nuestro cuerpo sufra daños a las células que pueden

conducir a padecer enfermedades del corazón o cáncer.

Los antioxidantes son capaces de estimular el sistema inmunológico para ayudar a

combatir las infecciones, alteraciones del organismo, previene el daño celular y proteger

la piel del envejecimiento prematuro; los antioxidantes son sustancias naturales que se

encuentran en muchos alimentos, incluyendo frutas y verduras. Debido a estos beneficios,

se ha aumentado el uso de la medicina natural, lo cual nos ha favorecido ya que uno de

los recursos con el que contamos en nuestro país es la gran biodiversidad de flora,

permitiendo el estudio fitoquímico de diferentes especies vegetales. Una de las plantas

conocidas comúnmente en las regiones tropicales de Colombia como ¨desvanecedora¨

Piper catripense es utilizada con fines curativos, principalmente como antiinflamatorio,

ayuda a adelgazar y eliminar los quistes de ovario, a pesar de su uso popular en estas

regiones, no se tiene antecedentes científicos que comprueben su propiedad antioxidante

y su composición; por esta razón se hace meritorio realizar este estudio.

La especie Piper catripense, pertenece a la familia Piperáceae y al género Piper, esta

planta se encuentra distribuida en diferentes partes del mundo especialmente en

Colombia, algunas especies con características similares a esta planta han sido

estudiadas y se han caracterizado por producir una gran variedad de metabolitos

secundarios que han contribuido a diferentes estudios fitoquímicos, para la familia

Piperáceae los estudios científicos han demostrados la presencia de metabolitos

procedentes del ácido mevalónico entre ellos monoterpenos y sesquiterpenos,

metabolitos que provienen del ácido acético como los flavonoides y del ácido shikímico se

han encontrado existencias de metabolitos como lignoides, arilpropanoides, amidas, entre

otros. Los metabolitos más frecuentes aislados en esta familia y género son: amidas tales

como (piperidina y pirrolidina); aristolactamas y otros alcaloides, flavonoides como

flavonas, dihidroflavonas, dihidrochalconas y o-metilflavonoides. Estos metabolitos

anteriormente mencionados, han sido utilizados en la industria y en la medicina como

antifúngicos, analgésicos, antiinflamatorios, anticancerígenos, anti-parasitarios, entre

otros (Aricapa, 2011). De acuerdo con esto el género Piper constituye una fuente

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importante de especies vegetales con actividades biológicas, razón por la cual, resulta

meritorio contribuir al estudio químico y biológico de las hojas de la especie Piper

catripense ya que esta cuenta con escasos reportes científicos a nivel nacional.

2.1. PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN

La propuesta de grado titulada estudio fitoquímico de hojas de la especie vegetal Piper

catripense (Piperáceae) y evaluación de su capacidad antioxidante, plantea la siguiente

pregunta de investigación.

¿Cuál es la composición química de los metabolitos fijos y volátiles de las hojas de la

especie vegetal Piper catripense y presentan capacidad antioxidante sus extractos o

fracciones?

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3. OBJETIVOS

3.1. OBJETIVO GENERAL

Contribuir al estudio fitoquímico de las hojas de la especie vegetal Piper catripense

(Piperáceae) y evaluar su capacidad antioxidante.

3.2. OBJETIVOS ESPEIFICOS

Obtener extractos y fracciones de diferentes polaridades provenientes de hojas de la

especie Piper catripense.

Aislar, purificar y determinar la estructura química de los metabolitos secundarios

mayoritarios presentes en las hojas de la especie vegetal Piper catripense

Determinar la composición química del aceite esencial de hojas de la especie Piper

catripense.

Evaluar la capacidad antioxidante de extractos y fracciones obtenidos de hojas de la

especie Piper catripense.

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4. ESTADO ACTUAL DEL TEMA

4.1. FAMILIA PIPERÁCEAE

4.1.1. Características morfológicas de la familia Piperáceae

La familia Piperáceae comprende un número extenso de especies entre árboles, arbustos,

hierbas, lianas o bejucos que se encuentran en lugares oscuros y frescos de todo el

mundo, algunas especies son trepadoras, pueden presentar hojas simples, alternas,

olorosas en ocasiones salen en parejas o en grupos de más de dos en el mismo punto de

la rama, presentado una gran variación es en su forma y en el tamaño. Su tallo forma una

red de túbulos tendida por el vegetal en todas las direcciones, llamado sistema libero-

leñoso. Su reproducción puede ser bisexual o unisexual, presenta inflorescencia de tipo

espiga con raras excepciones, terminal, axilares o frente a las hojas. Su fruto es carnoso

que contiene varias semillas (Baya) o presenta una sola semilla (Drupa) y sus flores

pueden estar unidas al eje de la inflorescencia (pedúnculo) o pueden estar situadas en la

base de la inflorescencia (bráctea), no presenta pétalo. Tal como se observa en la figura

4-1 Ejemplar típico de la familia Piperáceae (Naturalista, 2009)

Figura 4-1 Características morfológicas de la familia Piperácea. (Naturalista, 2009)

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4.1.2. Distribución de la familia Piperácea

La familia Piperaceae comprende unas 1.300 especies de los trópicos húmedos y cálidos

de todo el mundo, pero con centros de radiación en Sudamérica y Malasia como se

muestra en la figura 4-2. Constituida por 10 a 12 géneros entre los que se incluyen: Piper,

Peperomia, Trianaeopiper, Ottonia, Arctottonia, Macropiper, Manekia, Pothomorphea,

Sarcorhachis, Verhuellia y Zippeli.

En América del sur se encuentra Ecuador donde este se distribuyen aproximadamente 4

géneros y 400 especies, en Argentina se cuenta con 2 géneros y 30 especies

aproximadamente, en Perú se encuentran 3 géneros y alrededor de 830 especies, en

Brasil hay 5 géneros y cerca de 500 especies y en Colombia existen cerca de cuatro

géneros y 2500 especies. (Jara Beltrán, 2013)

Figura 4-2 Distribución geográfica de la familia Piperáceae

Los puntos verdes hacen referencia a la distribución de la familia Piperáceae (Trópicos, 2014)

4.1.3. Uso de la familia Piperácea

La familia Piperáceae es una fuente importante en el descubrimiento y desarrollo de

nuevos agentes antitumorales, antibacterianos y compuestos bioactivos novedosos,

donde estos tienen gran importancia económica, ecológica y medicinal, podemos

encontrar que esta gran variedad de plantas son utilizadas para enfermedades asociadas

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21

con: las vías respiratorias (asma, bronquitis, y tos), el tracto digestivo (diarrea y dolor

abdominal), también se han diagnosticado que la composición de estas plantas cuenta

con ciertas actividades como: antiinflamatoria (reumatismo), antimicrobiana

(antibacteriana, antifúngica y la cicatrización de heridas) y antileucémica. (Aricapa, 2011)

Una de las especies más representativas de la familia Piperácea es la Piper nigrum más

conocida comúnmente como la Pimienta Negra donde es utilizada como condimento por

sus frutos aromáticos y picantes gracias a la presencia de piperina (Ciccio, 1996).Otras

especies de esta familia han sido motivo de estudio fitoquímico tanto en Colombia como

en otras partes del mundo por contener gran variedad usos entre estas estudios podemos

hablar de la raíz de Piper methysticum la cual es usada como bebida ya que esta posee

una acción sedante, pero hay que tener en cuenta que en altas cantidades es anestésica

e hipnótica esta bebida es utilizada en Asia (Novara, 1998)

En las islas del Pacífico a las raíces de Piper methysticum se les conoce comúnmente

como kava, allí preparan una bebida refrescante, que es consumida habitualmente como

tranquilizante para combatir la ansiedad.

Otra de las especies más conocidas es la Piper auritum kunth de esta especie vegetal sus

hojas son de gran utilidad por ejemplo para las afecciones de la piel; también se emplea

para padecimientos como inflamación vaginal, infección de la matriz y para acelerar el

parto, para este último lo preparan utilizando las hojas remojadas en alcohol. Así mismo

se usa para enfermedades asociadas con el aparato digestivo, como dolor de estómago

falta de apetito, diarrea e inflamación de estómago, se dice además que es un buen

agente para la bronquitis, tos y para bajar fiebre. (Plantas Colombianas, 2010)

4.1.4. Actividades biológicas de la familia Piperácea

Algunos usos explorados y reportados en la literatura para especies de la familia

Piperáceae son: antioxidante, antibacteriano, antifúngico, antiparasitario, anti

cancerígeno, analgésico, antiinflamatorio, antiasma, hipotensor, insecticida.

Adicionalmente, varias especies de la familia Piperáceae han presentado actividad contra

protozoos del género Leishmania. En la tabla 4-1 se presentan algunas actividades

biológicas de especies pertenecientes a la familia Piperaceae. (Cardona Galeano, y otros,

2013)

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22

Tabla 4-1 Actividad biológica de algunas especies de la familia Piperáceae.

Referencias Actividad biológica Órgano de la

planta y/o

extracto

metabolito

evaluado

Especie

(Portet B, 2008)

Actividad contra

Plasmodium

falciparum

Extracto de n-

Hexano de las

hojas

Piper

hostmannianum

var. Berbicense

(Soo, Eun , Sik , Yoon ,

Song, & Yun, 2002)

Actividad insecticida Hojas, tallos y

espigas maduras

(con frutos y

semillas)

Piper

tuberculatum

(Alvaro, Mendoza,

Pachon, Cardona,

Delgado, & Cuca, 2008)

Actividad antifúngica

contra cepas hongos

Cladosporium

sphaerospermun

Hoja,s frutos y

tallos

Piper

Arboreum

(Nakamura, y otros, 2006) Actividad

antimicrobiano,

antileishmaniasis y

antitripanossoma

raíces y hojas Piper regnellii

4.1.5. Estudios químicos de la familia Piperácea

Dentro de la familia Piperáceae, los metabolitos mayoritarios más destacados son

polifenoles como chalconas, flavonas y flavononas, además de alcaloides, amidas,

lignoides, terpenos y esteroides.

De acuerdo con estudios realizados se han aislado metabolitos pertenecientes a

diferentes géneros como lo son: Sarmentosina (1), Chavibetol (2), Asaricina (3),

Sarmentina (4), Decurrenal (5), Eupomatenoide 5 (6), Sakuranetina (7), Galgravin (8),

Ácido crasinervico (9), Hostmaniane (10), piperina (11), aduncamida (12), piplartina (13),

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23

N

O

O

CH3

CH2

OH

O

(1) (2)

O

O CH3

OCH3

NCH3

O

(3) (4)

OH

O

CH3

O

H

CH3

O

OH

CH3

(5) (6)

CH3

O O

O

OH

CH3

CH3

CH3

CH3

O

O

O

O

CH3

CH3

(7) (8)

O OCH3

CH3

CH3CH3OOH

O OCH3

OH

CH3

CH3

OH

(9) (10)

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24

O

ON

O

(11)

OH

OCH3

NH

O

OH

OCH3

CH3

CH3O

OCH3

ON

O O

(12) (13)

4.2 GENERO PIPER

4.2.1. Características morfológicas del género Piper

Estas plantas son comúnmente arbustos, enredaderas, hierbas o árboles, en general

menores de 2 metros distribuidas a lo largo de los trópicos, con cerca de 1000 especies,

caracterizadas por presentar una madera suave, hojas simples, alternas con la base de

los pecíolos (órgano de la hoja que la une a la rama que la sostiene) envolviendo el tallo,

nerviación generalmente ascendente, con o sin indumento e inflorescencias en amentos

(forma de racimo) pedúnculo o erectos de color blanco (UNAD, 2016). Los tallos de la

mayoria de las especies presentan nudos, engrosados y prominentes; su fruto es una

drupa a menudo carnosa, y que contiene una semilla de variada forma y tamaño. La

forma del fruto y la presencia o ausencia de un estilo son también caracteres del genero.

Las flores se organizan en inflorescencias espiciformes (aspecto de espiga),

generalmente opuestas a las hojas y raramente agrupadas en la inflorescencia en la que

todas las flores se insertan en un mismo punto de su eje (Biblioteca Digital rjd, 2016)

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25

Figura 4-3 Características morfológicas de especies del género Piper. (Naturalista, 2009)

4.2.2. Distribución del género Piper

A este género pertenecen alrededor de 800 especies en el neotrópico, principalmente en

5 áreas del continente americano: la Costa Pacífica de Colombia y Ecuador, el oeste de la

Amazonía del Perú y Ecuador, la Costa atlántica del Brasil y los Andes de Venezuela.

(Aricapa, 2011). En Ecuador este género está ampliamente distribuido, pero no se

conoce el número de especies representadas; sobre 2400 m.s.n.m se han registrado 43

especies, (Ulloa & Moller, 1994) Colombia es uno de los países con mayor distribución de

especies pertenecientes a este género como se puede evidenciar en la figura 4-4, pues se

han encontrado en gran parte del territorio Colombiano, en la región Andina,

principalmente en bosques húmedos y tropicales y el norte del Perú, el sur de México y la

península de Yucatán.

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26

Figura 4-4 Distribución geográfica del género Piper

Los puntos verdes hacen referencia a la distribución de la genero Piper (Trópicos, 2014)

4.2.3. Uso del género Piper

las especies del género Piper son utilizadas para el tratamiento de las enfermedades

parasitarias, específicamente en la malaria y la leishmaniasis en la medicina tradicional

bolivariana, también son usadas estas plantas como bebida refrescante y relajante, Las

raíces y frutos son útiles para tratar el asma, la bronquitis, el dolor de abdomen, como

estimulante y para curar afecciones hemorroidales, En América Latina, la especie Piper

amalago es usada para aliviar ciertos dolores de pecho y se usa como agente

antiinflamatorio.

Estudios han demostrado que las raíces y frutos de Piper chaba son útiles para tratar el

asma, la bronquitis, el dolor de abdomen, como estimulante y para curar afecciones

hemorroidales; en China utilizan varias de las especies de este género como la especie

vegetal Piper brachystachyum presenta propiedades insecticidas y los tallos de la Piper

futukadsura, son ampliamente usados para el tratamiento del asma. (Flores Quisbert,

2007)

4.2.4. Actividades biológicas del género Piper

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27

En el chocó y en toda Colombia son muchas las especies del género Piper que son

utilizadas como medicinales con actividad antiinflamatoria o antibiótica y antimicrobiana.

(Pino, 2008). Algunos usos explorados y reportados en la literatura para diversas especies

de Piper son: antimutagenico, antioxidante, antibacteriano, antifúngico, antiparasitario,

anticancerígeno, analgésico, antiinflamatorio, anti-asma, hipotensor, insecticida como se

observa en la Tabla 4-2. Adicionalmente, varias especies del género Piper han presentado

actividad contra protozoos del género Leishmania los cuales son biológicamente activos

contra agentes patógenos que afectan el bienestar del hombre, (Cardona Galeano, y

otros, 2013)

Tabla 4-2 Actividad biológica de algunas especies del género Piper.

Especie

Órgano de la planta

y/o extracto

metabolito evaluado

Actividad biológica Referencias

Piper hispidum extracto etanolico de

las inflorescencias

Anti-fúngico contra

ciadosporium

sphaerospernum

(Navickiene HM,

2000)

Piper

tuberculaturn

Extractos acuoso,

DCM:MeOH, y EtOH de

hojas, tallos y espigas

maduras (con frutos y

semillas)

Anti-fúngico contra

ciadosporium

sphaerospernum

(Navickiene HM,

2000)

Piper

sarmentosum

Extracto acuoso de

hojas

Analgésico,

antiinflamatorio

anticarcinogeno

(Zakaira,

Patahuddin,

Mohamad, Israf,

& Sulaiman,

2009)

Piper cápense Hojas y tallos Antiparasitario (Mohamed, y

otros, 2009)

Piper dilatatum Hojas Anti-fúngico contra

ciadosporium

(Terreaux,

Gupta, &

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28

Especie

Órgano de la planta

y/o extracto

metabolito evaluado

Actividad biológica Referencias

sphaerospernum Hostettmann,

1998)

Piper longum Frutos secos Insecticida-acaricida (Soo, Eun , Sik ,

Yoon , Song, &

Yun, 2002)

Piper Holtonii Extracto etanolico de

hojas

Antiplasmodica (Rojas , Garavito

, & Rincón, 2013)

4.2.5. Estudios Quimicos del género Piper

La química de las especies de este género ha sido ampliamente investigada a nivel

mundial. Los resultados encontrados han permitido reconocer al género Piper como el

más bioactivo de la familia Piperáceae, se han identificado cerca 667 compuestos

diferentes, distribuidos en 49 ligninas, 79 neoligninas, 97 terpenos, 39 propenilfenoles, 15

esteroides, 18 kawapirones, 17 chalconas/dihidrochalconas, 16 flavonas, 6 flavononas, 4

piperolidas, y 146 miscelaneos (Dyer Lee et al., 2004) y recientemente en 2012 se

reportaron 277 alcaloides/amidas; (Nascimento, Paula, David, & David, 2012)

De acuerdo con estudios realizados se han aislado gran diversidad de metabolitos

pertenecientes a diferentes géneros Piper como los son pelitorina (15) y guineensina (16),

isobutilamidas como Piperovatina (17) y Piperlonguminina (18) Piperina (19), kawaina

(20), dihidrokawaina (21), yangonina (22), demetoxiyangonina (23), metisticina (24), y

dihidrometisticina (25), (Parmar, y otros, 1997)

CH3

O

NH

CH3

CH3

CH3

OO

NH

CH3

CH3

(15) (17)

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29

O

O

O

NH

CH3

CH3

(16)

O

ONH

O

CH3

CH3

O

ON

O

(18) (19)

O

OCH3

O

O

OCH3

O

(20) (21)

CH3

O

OCH3

O

O

O

OCH3

O

(22) (23)

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30

O

OCH3

OO

O

O

OCH3

OO

O

(24) (25)

La mayoría de las especies del género Piper pueden presentar algunos terpenos en sus

aceites esenciales, principalmente del tipo monoterpenos y sesquiterpenos que varía en

sus núcleos. Se pueden encontrar en estos aceites los siguientes metabolitos como el

dilapiol (26), Miristicina (27), Peperitona (28), Apiol (29), germacreno D (30), fenaldreno

(31), linalol (32). (Parmar, y otros, 1997)

O

OCH2

O

O

CH3

CH3

O

OCH2

OCH3

CH3 CH3

CH3

O

(26) (27) (28)

O

O

OCH3

CH3

CH2

CH2

CH3

CH3

CH3

CH3 CH3

CH2

(29) (30) (31)

CH3

CH3 CH2

CH3

OH

(32)

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31

4.3. ESPECIE Piper catripense

4.3.1. Características morfológicas de la especie Piper catripense

Esta especie se encuentra comúnmente como hierba o arbusto, sus hojas son

compuestas, opuestas (dos hojas por nudo); presenta un tallo leñoso, con protuberancias

de donde salen las ramas o las hojas (nudos), tiene haces vasculares, Las flores se

organizan en inflorescencias espiciformes (aspecto de espiga), caracterizadas por el

crecimiento indefinido o indeterminado, no presenta frutos como se observa en la figura 4-

5.

Figura 4-5 Características morfológicas de la especie Piper catripense.

Su clasificación taxonómica se muestra en la tabla 4-3.

Tabla 4-3 Clasificación de la especie vegetal Piper catripense.

REINO PLANTAE

División Angiospermae

Clase Magnoliopsida

Orden Piperales

Familia Piperáceae

Género Piper

Especie Piper catripense

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32

4.3.2. Distribución de la especie Piper Catripense

La especie vegetal Piper catripense se encuentra distribuida en Colombia en los

departamentos de Antioquia, Caldas y Choco como se ilustra en la figura 4-6.

Figura 4-6 Distribución de la especie Piper catripense.

Los puntos negros hacen referencia a la localización de la especie Piper catripense.

4.3.3. Uso de la especie Piper Catripense

La planta desvanecedora Piper catripense es ampliamente usada en el tratamiento de

procesos inflamatorios, contusiones, tumores generales y cáncer. (Ochoa A. M., 1998)

sus hojas son usados tradicionalmente en el tratamiento de procesos inflamatorios,

contusiones, varices, reumatismo y heridas. Además, es un excelente descongestionante

y activador del sistema circulatorio, muscular y articular (Ecojardin, 1999)

4.3.4. Actividades biológicas y estudios químicos de la especie Piper Catripense

Esta especie no cuenta con estudios químicos ni biológicos excepto por los usos descritos

anteriormente; razón por la cual se hace meritoria para realizar este estudio fitoquímico y

biológico.

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33

4.4. CAPACIDAD ANTIOXIDANTE

4.4.1. Antioxidantes

Las moléculas oxidadas y fragmentos moleculares más corrientes son los radicales libres.

Todos los radicales libres llevan una innumerable cantidad de electrones que les hacen

inestables y altamente reactivos. Para estabilizarse, les quitan electrones a otras

moléculas. Esto hace que haya más moléculas inestables, provocando una reacción

dañina en cadena de radicales libres, oxidando muchas estructuras biológicas,

dañándolas. Es lo que llamamos el daño oxidativo, importante causa del envejecimiento,

el cáncer, la ateroesclerosis, los procesos inflamatorios crónicos y las cataratas, que son

las más características. (Casa Piá, 2016).

Un antioxidante es una molécula que es capaz de retrasar o prevenir el deterioro, daño o

destrucción provocados por una oxidación (Youngson, 2003). Se encuentran naturalmente

en el organismo y en ciertos alimentos pueden bloquear parte de este daño debido a que

estabilizan los radicales libres, actuando algunos a nivel intracelular y otros en la

membrana de las células, siempre en conjunto para proteger a los diferentes órganos y

sistemas. Existen diferentes tipos de oxidantes:

Antioxidantes endógenos: mecanismos enzimáticos del organismo (superóxido dismutasa,

catalasa, glutatión peroxidasa, glutatión y la coenzima Q-). Algunas enzimas necesitan

cofactores metálicos como selenio, cobre, zinz y magnesio para poder realizar el

mecanismo de protección celular.

Antioxidantes exógenos: son introducidos por la dieta y se depositan en las membranas

celulares impidiendo la lipoperoxidación (vitaminas E y C y del caroteno) (Federación

Española del Café, 2012)

4.4.2. Modelos de evaluación de la capacidad antioxidante

La capacidad antioxidante de un compuesto puede evaluarse in vitro por medio de

experimentos sencillos que examinan directamente dicha habilidad y que a la vez evalúan

el posible efecto prooxidante sobre diferentes moléculas. (Martinez Vasquez, Salas

Coronado, & Cardador Martinez, 2007)

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34

En la práctica se realizan muchos modelos de test in vitro, para evaluar la actividad

antioxidante de la muestra de interés; sin embargo, es necesario considerar que los

modelos presenten diferentes variaciones que puede dificultar un poco la comparación de

los resultados entre un método y otro.

Con base a las reacciones químicas, la gran mayoría de los ensayos para determinar de

capacidad antioxidante pueden ser divididos en dos categorías:

Ensayos basados en la reacción por transferencia de átomos de hidrógeno

Ensayos basados en la reacción por transferencia de electrones

Tabla 4-4 Clasificación de los modelos de ensayo in vitro (Tovar del Rio & Mosquera, 2013)

ENSAYO CATEGORIA

Acido 2,2′-azino-bis-3-etilbenzotiazolin-6-sulfonico ( ABTS)

Ensayos basados en la transferencia de electrones

1,1-difenil-2-picril-hidrazilo (DPPH)

Poder de reducción antioxidante del hierro (FRAP)

N,N- dimetil-p-fenilendiamina (DMPD)

Capacidad de reducción antioxidante del cobre (CUPRAC)

Capacidad de absorción del radical oxígeno (ORAC)

Ensayos basados en la transferencia de átomos de hidrógeno

Parámetro antioxidante de captura de radicales (TRAP)

Inhibicón de la oxidación del ácido linoleico

Inhibición de la oxidación de los lipido de baja densidad (LDL)

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35

4.4.3. Método 1,1-difenil-pricrilhidrazil (DPPH)

El ensayo DPPH permite evaluar la capacidad de sustancias frente al radical libre estable

2,2-difenil-1- picrilhidracilo (DPPH) en una solución metanólica que tiene un color violeta

intenso que se pierde progresivamente cuando se añade la muestra que contiene

antioxidantes. Así, el grado de decoloración de la solución indica la eficiencia de la

capacidad secuestrante de la sustancia agregada. La decoloración del radical se

determina a 517 nm y la cuantificación se realiza empleando soluciones patrón de ácido

gálico o ácido ascórbico. En la Figura 4-7 se observa la reacción del DPPH con un agente

antioxidante.

Figura 4-7 Esquema de reacción DPPH.

El DPPH no reacciona con flavonoides que no contengan grupos –OH en el anillo B al

igual que con los ácidos aromáticos que solo contiene un grupo –OH. Pese a sus

limitaciones, es un método adecuado para medir la capacidad antioxidante en alimentos y

extractos vegetales, mientras que no es adecuado para la determinación de la capacidad

antioxidante del plasma o suero, ya que las proteínas precipitan con el metanol del medio

de reacción. (Giraldo Vasquez, 2011)

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36

5. METODOLOGIA

El presente trabajo de investigación se basó en tres etapas extracción, aislamiento e

identificación de los metabolitos secundarios mayoritarios de hojas de Piper catripense, la

determinación de la composición química del aceite esencial de las hojas y se evaluó la

capacidad antioxidante de algunas fracciones obtenidas.

5.1. GENERALIDADES

En el estudio fitoquímico de las hojas de la especie Piper catripense se emplearon

métodos cromatográficos, espectroscópicos y espectrométricos convencionales utilizados

en el aislamiento, purificación y elucidación estructural de metabolitos secundarios.

5.2. METODOS DE SEPARACIÓN CROMATOGRAFICA

Las fracciones obtenidas fueron separadas empleando las técnicas de cromatografía en

columna (CC), cromatografía en columna flash (CF) y cromatografía en capa delgada

(CCD) desarrolladas con diferentes sistemas de fase móvil; para cada una de las

subfracciones obtenidas se monitorearon por CCD utilizando cromatoplacas de aluminio

en sílica gel 60G F-254 Merck, empleando como reveladores luz ultravioleta y vainillina en

ácido sulfúrico y para la CC se utilizó sílica gel 60 Merck (60-200 Mesh).

Para la determinación de las mezclas se utilizó un cromatógrafo con detector selectivo de

masas SHIMADZU QP2010 plus, ubicado en el laboratorio de química de la Universidad

Distrital Francisco José de Caldas. Las mezclas fueron diluidas en cloroformo y se

insertaron en el sistema; empleando una columna capilar SHRXi – 5MS de 30 metros con

una longitud x 0,25 mm x 0,25 µm y una inyección en modo Split (10:1), el gas de arrastre

utilizado fue helio (grado 5.0) con flujo constante de 1,2mL/min. La temperatura inicial de

la columna fue de 50 °C por 2 minutos, luego se incrementó 15°C por minuto hasta llegar

a 200°C manteniéndose por 2 minutos, incrementando 10°C por minuto hasta llegar

finalmente a 300°C manteniéndose por 10 minutos para un tiempo total de análisis de 34

minutos, la temperatura de la línea de transferencia fue de 275°C y de la cámara de

ionización de 230°C.

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37

La determinación de la composición química relativa del aceite esencial se realizó por

cromatografía de gases acoplada a masas (CG-EM), el aceite fue diluido en cloroformo,

empleando una columna capilar SHRXi-5MS de 30 metros de longitud x 0,25 mm x 0,25

μm con una inyección en modo Split (10:1), el gas de arrastre utilizado fue helio (grado

5.0) con flujo constante de 1,2mL/min. La temperatura inicial de la columna fue de 40 ºC

manteniéndose por 5 minutos, luego incremento 4 ºC por minuto, hasta llegar a 160 ºC,

aumentado 2,50 ºC por minuto, hasta llegar a 220 ºC aumentando 8 ºC por minuto, hasta

llegar finalmente a 280 ºC manteniéndose por 4 minutos para un tiempo total de análisis

de 70.5 minutos. Los espectros de masas se obtuvieron por ionización electrónica (IE) de

energía de 70 eV. Las temperaturas de la cámara de ionización y de la línea de

transferencia fueron de 230 y 275 ºC, respectivamente. El gas de arrastre utilizado fue

helio (grado 5.0), con flujo constante de 1,2 mL/min.

5.2.1 Técnicas de elucidación estructural y caracterización de los metabolitos

secundarios aislados

La elucidación estructural y caracterización de los compuestos aislados se llevó a cabo

mediante el uso de la técnica de espectrometría de masas (EM) con el fin de poder

identificar el tipo de metabolito secundario presente en la especie vegetal Piper

catripense, Los espectros de masas de los compuestos aislados, se tomaron en el equipo

SHIMADZU MS QP2010 plus, ubicado en el laboratorio de Universidad Distrital Francisco

José de Caldas, el cual se encuentra dotado con una sonda de inserción directa y un

analizador de masas cuadrupolar. Utilizando un modo de ionización electrónica (IE) a 70

eV y una temperatura de la cámara de ionización de 230 ºC mediante la comparación de

sus espectros con los existentes en la base de datos de la librería NIST 08 y los datos

reportados en la literatura.

5.3. RECOLECCION DE LA MUESTRA

Como se muestra en la Figura 5-1, la especie vegetal Piper catripense se encuentra

distribuida en el departamento del Chocó (04º00’50’’ y 08º41’32’’ de latitud norte y los

76º02’57’’ y 77º53’38’’ de longitud oeste), Lugar en donde se realizó la recolección del

material vegetal para la investigación. Se recolectaron 3 kilogramos de hojas de la

especie Piper catripense, se secaron a temperatura ambiente y fueron reducidas de

tamaño para su posterior extracción.

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38

Figura 5-1 Mapa de localización del área de recolección de la especie. Colombia, Departamento Choco

Tomado de. https://prezi.com/7kexec7s7zvm/copy-of-el-choco/

5.4. MARCHA FITOQUÍMICA PRELIMINAR

Para el estudio y caracterización de los principales metabolitos secundarios presentes en

las hojas de las especies Piper catripense, se preparó un extracto etanólico por

maceración en frío con 50 ml de etanol al 96% y 10 g de hojas secas pulverizadas de la

especie vegetal Piper catripense. A partir de este extracto se efectuaron las diferentes

pruebas de identificación utilizando controles positivos para cada grupo de metabolitos

presentes en la especie vegetal. El análisis se basó en el Manual de prácticas de

laboratorio de farmacognosia de la Universidad de Antioquia y la guía de pruebas

preliminares cualitativas de acuerdo al protocolo modificado de Antonio Sanabria

(Sanabria, Lopez, & Gualdrón, 1997). Como lo muestra la Figura 5-2

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39

Figura 5-2 Diagrama Marcha Fitoquímica Preliminar para las Hojas de la especie Piper catripense

5.5. EXTRACCIÓN CON ETANOL, FRACCIONAMIENTO Y PURIFICACIÓN DE es

METABOLITOS SECUNDARIOS PRESENTES EN HOJAS

Para extraer los diferentes metabolitos secundarios presentes en las hojas de la Piper

Catripense, se realizó la preparación del extracto con 400 g de hojas secas y trituradas en

molino empleando 700 ml de EtOH al 96% durante varios días y agitación en tiempos

parciales utilizando la técnica de maceración en frio. En la preparación de este extracto se

obtuvieron 0.0167 g de un sólido color blanco el cual se denominó compuesto PcH.1.

El extracto etanolico obtenido (E.EtOH.Pc.H) fue floculado con H2O en una relación 1:1

(H2O: E.EtOH.Pc.H) por un tiempo de 24 horas con el fin de eliminar interferencias e

impurezas, se filtró y concentro a presión reducida a 40°C, posteriormente se realizó el

fraccionamiento continuo liquido-liquido. El porcentaje de rendimiento neto que presento

la extracción por maceración en frio con EtOH fue del 12 % a partir del material vegetal

seco.

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40

5.6 OBTENCION DE FRACCIONES

El extracto etanólico (E.EtOH.Pc.H) fue empleado para el fraccionamiento continuo

liquido-liquido, utilizando solventes de polaridad creciente; a partir de esto se obtuvieron la

fraccion de hexano (Fx.Hex.Pc.H 0,5672g 0,94%), diclorometano (Fx.DCM.Pc.H 1,1601g

1.93%), acetato de etilo (Fx.AcOEt Pc.H 1,5327g 2.61%) y un residuo hidroalcoholico

(94,52%).El proceso de fraccionamiento y los porcentajes de rendimiento para cada

fracción se observan en la Figura 5-3

Figura 5-3 Diagrama Obtención de extractos fracciones de la especie Piper catripense

5.5.2. Fracción hexano de hojas de Piper catripense (Fx.Hex.Pc.H)

A partir del extracto etanolico (E.EtOH.Pc.H) se realizó el fraccionamiento continuo

liquido-liquido con hexano, del cual se obtuvo 0,3 g de un sólido de color amarillo claro de

la Fx.Hex.Pc.H el cual fue monitoreado por CCD, empleando cromatoplacas de aluminio

en sílica gel 60G F-254 Merck, como fase móvil se utilizó Hex:AcOEt 9:1 y se empleó

como revelador vainillina en H2SO4 y Luz ultravioleta, debido a su baja complejidad se

analizó la fracción por (CG-EM), la cual fue denominada Mezcla PcH.2.

5.5.3. Fracción diclorometano de hojas de Piper catripense (Fx.DCM.PcH)

0,7 g de la Fx.DCM.Pc.H fueron separados empleando el método de CC, como fase móvil

se utilizó DCM:AcOEt 8:2 obteniendo 9 fracciones. De la fracción numero 1

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(Fx1.DCM.Pc.H) se obtuvieron 0,566 g de un sólido el cual fue denominado Mezcla PcH.3

y de la fracción 3 (Fx3.DCM.Pc.H), se obtuvieron 0,289 g de un sólido el cual se

denominó Mezcla PcH.4. El procedimiento se ilustra en la figura 5-4

Figura 5-4 Diagrama Obtención de mezclas PcH.3 y PcH.4 de la fracción Diclorometano especie Piper catripense

5.5.4. Fracción acetato de etilo de hojas de Piper catripense (Fx.AcOEt.Pc.H)

0,3 g de la Fx.AcOEt.Pc.H, fueron separados utilizando el método de CC, como fase

móvil se empleó AcOEt:DCM 9:1, obteniendo 7 fracciones. Las sub-fracciones número 2 y

número 5 se separaron cada una por el método CC, empleando diferentes fases móviles,

sin embargo a través de este método no se logró purificar la fracción.

Se tomaron 0,2 g de la Fx.AcOEt.Pc.H fueron separados por el método CF utilizando el

equipo isolera ubicado en el laboratorio de química de la Universidad Distrital Francisco

José de Caldas. Empleando como eluyente AcOEt:DCM 7:3 y cartucho de sílica RP18,

obteniendo 35 fracciones las cuales fueron monitoreadas por CCD, se empleó

cromatoplacas de aluminio en sílica gel RP18 Merck como fase móvil se utilizó

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42

AcOEt:DCM 7:3 y empleando como revelador Luz ultravioleta, debido a su complejidad no

se continuo con el estudio de esta fracción.

5.6. EXTRACCION Y CARACTERIZACIÓN QUÍMICA DE LOS ACEITES ESENCIALES

5.6.1 Obtención de aceites esenciales (AE) de hojas de Piper catripense

El aceite esencial fue obtenido a partir de hojas frescas de la especie vegetal Piper

catripense (232 g) por extracción por arrastre de vapor, obteniéndose finalmente 7 mL de

aceite con un porcentaje de rendimiento total del 3,0%. La composición química de los AE

se determinó a partir de CG-EM y la identificación se hizo mediante el cálculo de los

índices de retención (IR) y comparación con los espectros de masas de la base de datos

de la librería NIST 08.

5.6.2 Identificación de los compuestos de AE de Piper catripense

La identificación de los AE se realizó por medio del calculó de los IR experimentalmente,

los IR se calcularon teniendo en cuenta los tiempos de retención de una serie homologa

de patrones de hidrocarburos desde C7 hasta C24, analizados por CG-EM bajo las

mismas condiciones que los AE.

Los valores se calcularon aplicando la Ecuación 1:

Ecuación 1. Cálculo de IR

(Goodner, 2008)

Dónde:

IR: Índice de retención del compuesto de interés X.

n: Número de átomos de carbono del n-alcano que eluye antes del compuesto de interés

X.

N: Número de átomos de carbono del n-alcano que eluye después del compuesto de

interés X.

tRX: Tiempo de retención del compuesto de interés X.

tRN: Tiempo de retención del n-alcano que eluye después del compuesto de interés X.

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43

tRn: Tiempo de retención del n-alcano que eluye antes del compuesto de interés X.

5.8. EVALUACION DE LA CAPACIDAD ANTIOXIDANTE

5.8.1 Preparación de la solución DPPH

Para el ensayo se preparó la solución del radical libre 1,1-difenil-2-picrilhidrazilo (DPPH•)

a una concentración de 10 mM en metanol grado analítico. La solución fue protegida

totalmente de la luz para evitar su degradación.

5.8.2 Preparación de la curva de referencia

A partir de un stock de 100 mM, se tomó un volumen 16 ml de solución DPPH y se diluyó

con metanol hasta alcanzar una concentración de 10mM y una absorbancia cerca a 1,00.

Posteriormente se tomaron alícuotas de 2.5 µL, 5 µL, 10 µL, 15 µL, 20 µL, 25 µL, 30 µL,

35 µL del extracto etanolico y de las fracciones respectivamente, despues se llevó a un

volumen de 50 µL el cual fue completado con metanol, finalmente se tomaron 170 µL de

DPPH y se colocó en cada uno de los pozos, las medidas se realizaron por triplicado a

una longitud de onda de 520 nm, y el porcentaje de inhibición se calculó con base en la

ecuación 2. Las absorbancias se registraron a los 30 minutos respectivamente, después

de agregar el compuesto antioxidante DPPH.

5.8.3. Cuantificación de la capacidad antioxidante

Se evaluó de forma cuantitativa la capacidad de los antioxidantes para neutralizar los

radicales libres que tiene el extracto etanólico y las fracciones de las hojas de la Piper

catripense, en este caso el compuesto DPPH presenta una intensa coloración violeta, el

cual absorbe radiación a 520 nm, permitiendo determinar las concentraciones optimas de

la inhibición mediante métodos espectrofotométricos. Se utilizaron microplacas con un

total de 96 pozos de 300 μL c/u. Se prepararon soluciones del extracto y fracciones secos

a una concentración 25 mg/mL., para cada ensayo se realizaron diluciones en serie a (3,

6, 11, 17, 23, 28, 34 y 40 ppm respectivamente), posteriormente se leyó la absorbancia a

520 nm en un equipo Accu Reader 2000 ubicado en el laboratorio de química de la

Fundación Universitaria Juan N. Corpas, después de un periodo de incubación de 30

minutos y en la oscuridad. Se utilizó como control de ácido gálico en solución metanólica a

las mismas condiciones de lectura, protocolo modificado y estandarizado en el laboratorio

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44

de química de la Fundación Universitaria Juan N. Corpas (Sharma et al, 2010; Martínez,

2014). El porcentaje de inhibición del radical DPPH, se calculó utilizando la siguiente

ecuación:

100*%BlancoA

MuestraABlancoADPPHdelinhibiciónde

Ecuación 2. Cálculo % de inhibición DPPH

Dónde:

A: corresponde a la absorbancia.

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45

6. RESULTADOS Y ANALISIS

A continuación se presenta los resultados obtenidos del trabajo de investigación

denominado “ESTUDIO FITOQUIMICO DE HOJAS DE LA ESPECIE VEGETAL Piper

catripense (PIPERACEAE) Y EVALUACIÓN DE SU CAPACIDAD ANTIOXIDANTE” de

acuerdo al estudio químico y biológico realizado.

6.1. MARCHA FITOQUÍMICA PRELIMINAR

La MFP se realizó teniendo en cuenta patrones de comparación de diferentes tipos de

metabolitos secundarios para este estudio. Los resultados se encuentran consignados en

la Tabla 6-1.

Tabla 6-1 Marcha fitoquímica preliminar del extracto etanólico de las hojas de la especie Piper catripense

METABOLITOS SECUNDARIOS

ANÁLISIS PATRÓN DE CONTROL

RESULTADO

FLAVONIODES

Shinoda

Quercetina

+

Rosenhein +

Leucoantocianidinas -

TANINOS

Cloruro férrico Digitalis purpurea

+

Acetato de plomo -

Gelatina – sal +

QUINONAS

Borträger-Kraus

Antrona

-

Comportamiento ante ácido y donador de

electrones -

Rodamina y amoniaco -

Hidrosulfito de sodio +

CUMARINAS

Hidroxamato férrico

7-Hidroxicumarina

-

Erlich -

Fluoresencia +

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METABOLITOS SECUNDARIOS

ANÁLISIS PATRÓN DE CONTROL

RESULTADO

SESQUITERPENLACTONAS

Hidroxamato férrico Manzanilla -

SAPONINAS Espuma

Quinua -

Rosenthaler -

CARDIOTONICOS

Balijet

Diente de león

+

Tollens -

Antrona +

Molish +

CAROTENOIDES Salkowski Zanahoria +

ALCALOIDES

Valser

Cinconina

+

Mayer -

Dragendorrf +

Schleiber +

Wagner +

ESTERIODES Y TRITERPENOS

Liebermann – Burchard

Colesterol

+

Dienos homoanulares +

*(-) resultado negativo (+) resultado positivo

Como se observan en la tabla 6-1, el extracto etanolico de las hojas de la especie Piper

catripense, presento prueba positiva para los metabolitos secuandarios de tipo

flavonoides, taninos, cardiotonicos, carotenoides, alcaloides, esteroides y triterpenos. Por

el contrario y presento prueba negativa a los siguientes metabolitos secundarios:

quinonas, cumarinas, sesquiterpenlactonas y saponinas.

Los resultados obtenidos están de acuerdo con reportes para las especies que ha

mostrado que la P.crassinervium, P. pesaresanum (Aricapa, 2011), P. tenuistylum, P.

lagenaebaccum (Orbe Saavedra & Tuesta Pinedo, 2013), P. aequaleii ( Garcia Paz ,

2011) P. bogotensis, P.tuberculatum jacq, P. rediculata, P. mariquitense L. y P. aduncum

L (Calle, 2017) presentan los resultados obtenidos en la identificacion de los metabolitos

secuandarios de las hojas de la especie Piper catripense

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47

El genero piper se caracteriza por la presencia de diferentes tipos de metabolitos

secundarios, entre los que se destacan las amidas, flavonoides, kavapirona, lignanos,

neolignanos, piperolidos, propenilfenoles y terpenos. Algunos metabolitos aislados como

isobutilamidas pelitorina y guineensina fueron aisladas de la especie Piper nigrum que

presento actividad insecticida contra Culex pipiens, Aedes aegypti y A. togoi (Samuel,

Oliver, coetzee, & Brooke, 2016). De la especie P. hostmannianum var. Berbicense, se

han aislado flavonas como Metillinderina que presentaron actividad antimalarica (Portet et

al., 2007).

6.2 METABOLITOS SECUNDARIOS AISLADOS

La purificación por cromatografía en columna CC del extracto etanolico y las fracciones de

hexano, diclorometano y acetato de etilo, obtenidas a partir del extracto etanolico total de

las hojas de la Piper catripense condujeron al aislamiento e identificación de un

compuesto amino fenólico (Compuesto PcH.1) el cual fue identificado como

acetaminofén y tres mezclas, la primera conformada por 3 sesquiterpenos (Mezcla

PcH.2). β-Eudesmol, Cedran-8,13-diol y Veridiflorol La segunda mezcla está conformada

por un aldehído y un hidrocarburo (Mezcla PcH.3) Piperonal y Tetratetracontano La

tercera mezcla compuesta por 3 – butilindolizidina y Cubebinolide (Mezcla PcH.4) un

alcaloide y un lignano.

6.2.1. Elucidación estructural del compuesto PcH.1

Se obtuvo 0,167 g de un compuesto (PcH.1) sólido de color blanco, soluble en acetato de

etilo y cloroformo. La correspondiente comparación de los espectros de masas con la

librería NITS08, permitió la identificación del compuesto acetaminofén con un porcentaje

de coincidencia de 95%, la corriente iónica total (TIC) del compuesto muestra un señal

con un tiempo de retención de 17.723 minutos, como se observa en la figura 6-1

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Figura 6-1 Corriente iónica total (TIC) de la Compuesto PcH.1.

El espectro de masas y las posibles rutas de fragmentación del acetaminofén, se ilustran

en la figura 6-2 y 6-3 respectivamente. El ion molecular 151 m/z presenta una intensidad

relativa del 45%, un pico base de 109 m/z, y formula molecular C8H9NO2

35.0 40.0 45.0 50.0 55.0 60.0 65.0 70.0 75.0 80.0 85.0 90.0 95.0 100.0 105.0 110.0 115.0 120.0 125.0 130.0 135.0 140.0 145.0 150.00.00

0.25

0.50

0.75

1.00(x10,000)

109

151

43 8053

51 65 7968 135107 120 122949137

HO NH

O

Figura 6-2 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el compuesto Pc.H1.

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49

Figura 6-3 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el acetaminofén

El pico base m/z 109 del espectro del acetaminofén es generado por la pérdida del grupo

carbonilo que en este caso es una cetona, de igual manera se genera la pérdida del grupo

amino y agua característico en los alcoholes

El acetaminofén ha sido reportado en el género Lycoperdon, específicamente en la

especie L. lividum, el cual se encontró presente en el extracto etanolico a partir del

análisis del GC-MS. (Kerem , Ergin Mura, Ilgaz , Yavuz , & Ugur , 2016). No cuenta con

reportes en otras familias

6.2.2. Composición de la mezcla PcH.2

Se obtuvo 0,4672 g de un sólido amarillo. La comparación de los espectros de masas de

las respectivas señales con los de la librería NIST08, permitió la identificación de los tres

compuestos presentes en la mezcla PcH.2: β- Eudesmol (33) Cedrane-8,13-diol (34) y

Veridiflorol (35) con porcentajes de coincidencia de 97, 95 y 98 %, respectivamente, la

corriente iónica total (TIC) del análisis por CG-EM de la mezcla se observa en la figura 6-

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50

4, la cual muestra tres señales con tiempos de retención de 17.377, 19.178 y 19.542

minutos respectivamente.

Figura 6-4 Corriente iónica total (TIC) de la mezcla PcH.2.

CH3

CH2CH3

CH3

OH

OH

CH3

CH3 OH

CH3

CH3CH3

CH3OH

CH3

(33) (34) (35)

El espectro de masas y las posibles rutas de fragmentación del compuesto identificado

como β- Eudesmol (33), se ilustran en la figura 6-5 y 6-6 respectivamente, el ion

molecular a m/z 222, un pico base de 59 m/z con una intensidad relativa del 100% y

formula molecular C15H26O

40 50 60 70 80 90 100 110 120 130 140 150 160 170 180 190 200 210 2200.00

0.25

0.50

0.75

1.00(x10,000)

59

149

1081649379 81 12241 67

13511939 189 204

HO

Figura 6-5 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el β- Eudesmol

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Figura 6-6 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el β- Eudesmol

Inicialmente este metabolito presenta una ruptura heterolitica del obteniendo dos

productos el primero que es el pico base m/z 59 y el segundo con una m/z 164, posterior

se realiza una pérdida de un metil por medio de una ruptura homolitica, quedando un

compuesto con un m/z 149

El sesquiterpeno β- Eudesmol fue identificado en los aceites esenciales de varias

especies del genero Piper como la Piper patulum, (Álvarez, Rosales de Zea, & Cáceres,

2014), Piper hispidum Kunth, (Delgado Avila & Cuca Suárez, 2007) y Piper Sw Hispidum

(Pino, Marbot, Bello, & Urquiola, 2002).

El espectro de masas y las posibles rutas de fragmentación de Cedrane-8,13-diol (34), se

ilustran en la figura 6-7 y 6-8 respectivamente, con un ion molecular m/z 238, un pico

base en 43 m/z con una intensidad relativa del 100% y formula molecular C15H26O2

40 50 60 70 80 90 100 110 120 130 140 150 160 170 180 190 200 210 2200.00

0.25

0.50

0.75

1.00(x10,000)

43

189

93107 14955 81

79 11920767 133

161177

OH

OH

Figura 6-7 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Cedrane-8,13-diol

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Figura 6-8 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Cedrane-8,13-diol

el ion molecular del espectro del Cedrane-8,13-diol sufre la pérdida de un CH2O, que

conduce a la formación del ion con m/z 207, el cual pierde de H2O característico de los

alcoholes, sucesivamente se conduce a la eliminación de radicales metilo, CH y el

reordenamiento de hidrógeno.

El compuesto Cedrane-8,13-diol fue identificado en las hojas de la especie Ipomea pes-

caprae como aceite esencial, no se encontró reporte en la familia Piperaceae (Dejanb,

Marie, & Quetin Leclercq, 2007)

El espectro de masas de Veridiflorol (35), se ilustran en la figura 6-9 y 6-10 con un ion

molecular m/z 222, un pico base en 43 m/z con una intensidad relativa del 100% y formula

molecular C15H26O.

40 50 60 70 80 90 100 110 120 130 140 150 160 170 180 190 200 210 220 230 240 2500.00

0.25

0.50

0.75

1.00(x10,000)

43

4169

109

8155 16193

121204189135 147

164

OH

Figura 6-9 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Veridiflorol

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Figura 6-10 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Veridiflorol

El ion molecular del espectro del Veridiflorol sufre la pérdida de H2O característico de los

alcoholes que conduce a la formación del ion con m/z 207, sufre ruptura, obteniendo

C12H17 con un m/z 161 y C3H7 con m/z 43 correspondiente al pico base.

Este compuesto fue identificado en la familia piperaceae en las hojas de la especie Piper

aduncum (Rodríguez, y otros, 2013) Piper retrofactum, Piper maclueri leaf (Hieu, Thang,

Hoi, & Ogunwande, 2014) y en las hojas, frutos y raíces de la especie Ottonia

martiana Miq como aceites esenciales (Cunico, y otros, 2007)

Sin embargo el Veridiflorol está presente en Las hojas de Allophylus edulis, mostro

actividad anti-micobacteriana, anti-inflamatoria y antioxidante. (Trevizan , y otros, 2016)

6.2.3. Composición de la mezcla PcH.3

Se obtuvo 0,4672 g de un sólido verde, el cual presentó manchas de color violeta en

CCD al ser revelado con Vainillina /H2SO4. La correspondiente comparación de los

espectros de masas con la librería NITS08, permitió la identificación de los dos

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compuestos presentes en la mezcla PcH.3: Piperonal, (36) y tetratetracontano (37) con

porcentajes de coincidencia de 93 y 96% respectivamente, la corriente iónica total (TIC)

de la mezcla muestra un dos señales con tiempos de retención de 13.883 y 23.659

minutos, como se observa en la Figura 6-11

13.0 14.0 15.0 16.0 17.0 18.0 19.0 20.0 21.0 22.0 23.0 24.0

0.25

0.50

0.75

1.00

1.25

1.50

1.75

2.00

2.25

2.50

2.75

3.00

3.25

(x1,000,000)TIC

13

.88

3

23

.65

9

Figura 6-11 Corriente iónica total (TIC) de la mezcla PcH.2.

O

O

O

(36)

CH3

CH3

(37)

El espectro de masas y las posibles rutas de fragmentación del Piperonal (36), se ilustran

en la figura 6-12 y 6-13 respectivamente, con un ion molecular a m/z 150 y una

intensidad relativa de 10%, un pico base en 149 m/z con una intensidad relativa del 100%

y formula molecular C8H6O3

50.0 75.0 100.0 125.0 150.0 175.0 200.0 225.0 250.0 275.0 300.0 325.00.00

0.25

0.50

0.75

1.00(x10,000)

149

12163

916239105

OO

O

Figura 6-12 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Piperonal

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55

Figura 6-13 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Piperonal

Partiendo del ion molecular del Piperonal presenta la perdida y trasposición de hidrogeno,

formado el ion pico base m/z 149, sucesivamente se realizó la pérdida del CO

característico de los alcoholes.

El piperonal, es un compuesto el cual existe en varios aceites de flores y tipos de vainilla,

se puede preparar sintéticamente y, debido a su olor dulzaceo, se utiliza en perfumería,

en particular, para perfumar el jabón. El piperonal, se utiliza también como repelente

contra los piojos del cabello. El piperonal, se puede no obstante utilizar como el único

ingrediente activo, en medicamentos previstos para inhibir la inflamación. Ejemplos que

pueden ser mencionados, son medicamentos para tratar inflamaciones, debidas por

ejemplo a dermatitis solares o erupciones cutáneas debidas a panales, para la curación

de heridas y para el tratamiento de enfermedades inflamatorias crónicas, tales como la

psoriasis y el eczema constitucional. (España Patente nº 2 177 188, 2002)

Se encuentra como un compuesto bioactivo de las semillas, hojas y aceites de la especie

Piper nigrum L, (Subba Rao, y otros, 2010)

El espectro de masas y las posibles rutas de fragmentación del tetratetracontano (37), se

ilustran en la figura 6-14 y 6-15 respectivamente, con un ion molecular a m/z 618, un

pico base en 57 m/z con una intensidad relativa del 100% y formula molecular C44H90

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56

50.0 75.0 100.0 125.0 150.0 175.0 200.0 225.0 250.0 275.0 300.0 325.00.00

0.25

0.50

0.75

1.00(x10,000)

57

7143

85

97113 127

155 169 197183 211 239225 267

Figura 6-14 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Tetratetracontano

Figura 6-15 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Tetratetracontano

El espectro del Tetratetracontano presenta una ruptura homolitica de los enlaces

carbono-carbono y el reordenamiento de hidrogeno originando los m/z 267 y 57 siendo el

ultimo correspondiente al pico base.

El Tetratetracontano es un oligoetileno presente en algunas plantas medicinales, se

encuentra presente en la esponja marina Callyspongia aerizusa y en las hojas de la

especie del genero chromolaena, no se encontró reportes de la presencia de este

compuesto en la familia piperaceae (Głowacki & Irimia-Vladu, 2012)

6.2.4. Composición de la mezcla PcH.4

Se obtuvo 0,4672 g de un sólido verde, el cual presentó manchas de color violeta en CCD

al ser revelado con Vainillina /H2SO4. La correspondiente comparación de los espectros

de masas con la librería NITS08, permitió la identificación de dos compuesto presentes en

la mezcla PcH.4: 3-butilindolizidina (38) Cubebinolido (39) β- Eudesmol (33) con un

porcentaje de coincidencia de 71, 74 y 91% respectivamente, la corriente iónica total

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57

(TIC) del compuesto muestra dos señales con tiempos de retención de 19.029, 19.624 y

23,666 minutos, como se observa en la figura 6-16

18.5 19.0 19.5 20.0 20.5 21.0 21.5 22.0 22.5 23.0 23.5 24.0 24.5

0.5

1.0

1.5

2.0

2.5

3.0

3.5

4.0

4.5

5.0

5.5(x100,000)

TIC

19

.02

9

19

.62

4

23

.68

6

. Figura 6-16 Corriente iónica total (TIC) de la mezcla PcH.4.

N

CH3

OO

O

O

O

O

(38) (39)

El espectro de masas y las posibles rutas de fragmentación del 3 - butilindolizidina (38),

se ilustran en la figura 6-17 y 6-18 respectivamente, el ion molecular a m/z 181 presenta

una intensidad relativa del 5%, un pico base en 124 m/z con una intensidad relativa del

100% y formula molecular C12H23N

40.0 45.0 50.0 55.0 60.0 65.0 70.0 75.0 80.0 85.0 90.0 95.0 100.0 105.0 110.0 115.0 120.0 125.0 130.0 135.0 140.0 145.0 150.0 155.0 160.0 165.0 170.00.00

0.25

0.50

0.75

1.00(x10,000)

124

4455 12268 81 1109694 152138136108 15051 65

N

Figura 6-17 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el 3 – butilindolizidina

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58

Figura 6-18 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el 3 – butilindolizidina

El espectro del 3–butilindolizidina presenta una ruptura de los grupos etilo y el

reordenamiento de hidrogeno originando los m/z 152 y 124 siendo el ultimo

correspondiente al pico base

Este compuesto fue identificado en Fracciones de extracto metanólico de Prosopis

spicigera, identificado a través del espectro de masas, no se encontró reportes de la

presencia del 3–butilindolizidina en la familia piperaceae (Annela, Dey, & De, 2014)

El espectro de masas y las posibles rutas de fragmentación del Cubebinolide (39), se

ilustran en la figura 6-19 y 6-20 respectivamente, el ion molecular a m/z 354, un pico

base en 135 m/z con una intensidad relativa del 100% y formula molecular C20H18O6

50.0 75.0 100.0 125.0 150.0 175.0 200.0 225.0 250.0 275.0 300.0 325.0 350.00.00

0.25

0.50

0.75

1.00(x10,000)

135

7750 354

10543 162131 19291 173 219206

OO

O

O

O

O

Figura 6-19 Espectro de masas en modo ionización electrónica para el Cubebinolide

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59

Figura 6-20 Posibles rutas de fragmentación propuesta para el Cubebinolide

A partir del ion molecular del Cubebinolide se observa una ruptura homolitica obteniendo

dos moléculas la primera con un m/z 219 y la segunda un m/z 135 correspondiente al

pico base.

Este compuesto fue aislado por primera vez por Yoshiki e Ishiguro en 1933 a partir del

extracto etéreo de madera de hinoki (Chamecyparis obtusa Sieb. Y Zucc.) Como un

compuesto cristalino incoloro, (Marcotullio , Pelosi , & Curini, 2014) fue identificado en las

especie Piper cubeba y Piper trichostachyon (Usia, Watabe, Kadota, & Tezuka, 2005)

El espectro de masas y las posibles rutas de fragmentación del β-eudesmol se puede

observar en la figura figura 6-5 y 6-6

6.3 COMPOSICIÓN QUÍMICA DEL ACEITE ESENCIAL DE HOJAS DE Piper

Catripense

El aceite esencial de las hojas de Piper catripense se obtuvo con un rendimiento del 3,0%.

La identificación de la composición química del aceite esencial se realizó mediante CG-

EM y comparando los índices de retención y los espectros de la librería NITS08. El perfil

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60

cromatógrafo se observa en la figura 6-21. Se determinó la presencia de 29

compuestos

Figura 6-21 Perfil cromatografico de los AE de las hojas de Piper catripense

En la tabla 6-2 se presentan los compuestos identificados, se reportaron los compuestos

que por comparación presentaban más de un 80% de coincidencia con el espectro de la

librería, también se presentan las cantidades relativas que corresponden al porcentaje de

abundancia de cada componente dentro del aceite esencial.

Tabla 6-2 Composición química relativa del aceite esencial de las hojas de la especie Piper catripense

Señal Nombre *** %

coincidencia tR

(min) %

área IR

Teorico IR

Cal

1 α –pineno M 98 14,487 0,8 939 941

2 β-pineno M 97 16,333 0,44 980 991

3 δ-Elemene S 95 30,073 0,28 1339 1340

4 β-elemene S 96 31,987 13,79 1391 1401

5 Hexadecanal AL 95 32,26 0,12 1800 1806

6 Cariofileno S 94 32,9 3,97 1404 1406

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61

Señal Nombre *** %

coincidencia tR

(min) %

área IR

Teorico IR

Cal

7 α-Cubebeno S 90 33,153 0,47 1351 1360

8 β-farneseno S 89 33,833 0,12 1443 1442

9 α-cariofileno S 95 33,947 1,2 1454 1453

10 β-Chamigrene S 90 34,613 0,33 1475 1484

11 Germacreno D S 95 34,82 2,35 1480 1488

12 β-Selineno S 93 35,007 1,23 1485 1491

13 Isolongifolan-8-ol S 82 35,593 30,98 1618 1611

14 Epiglobulol S 84 35,833 1,23 1530 1534

15 δ-Cadineno S 88 36,02 0,33 1524 1527

16 L-perillyl alcohol M 82 36,613 2,38 1261 1267

17 Elemol S 95 36,847 1,54 1549 1551

18 Nerolidol S 95 37,167 1,01 1564 1566

19 Germacreno D-4-ol S 90 37,753 0,7 1574 1575

20 1,11-Hexadecadieno

HA 86 38,107 1,76 1627 1631

21 α-copaeno-11-ol S 92 38,447 0,3 1584 1586

22 Guai-1 (10) -en-11-ol

S 91 39,533 0,74 1614 1623

23 δ–Cadinol SO 94 40,087 1,42 1580 1582

24 β-eudesmol SO 95 40,34 10,72 1593 1596

25 α-panasinseno S 87 40,54 1,12 1416 1429

26 ϒ-Gurjunenepoxide-(2)

S 89 41,173 0,31 1558 1559

27 (Z,E) Farnesol S 82 41,64 2,05 1697 1697

28 β- Cariofileno S 88 42,1 0,63 1494 1504

29 Farnesal S 95 43,073 0,34 1656 1658

MONOTERPENOS(M) 3,62%

SESQUITERPENO (S) 65,02%

SESQUITERPENOIDE (SO) 12,14%

HIDROCARBURO ALIFATICO (HA) 1,76%

ALDEHIDO (AL) 0,12%

En el aceite esencial fueron identificados 29 compuestos que corresponde 83% de la

composición relativa del aceite esencial, los cuales se identificaron por la comparación

con los índices de retención y con la librería NIST 08. Se determinó la presencia 3

monoterpenos (M), 22 sesquiterpenos (S); 2 sesquiterpenoides (SO), 1 hidrocarburo

alinfatico (HA) y 1 aldehido (AL).

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62

Los monoterperos encontrados representan un 3,62% de la composición del aceite

esencial de los cuales el componente mayoritario fue L-perillyl alcohol (2,38%), en los

sesquiterpenos se encuentra el primer y segundo compuesto mayoritario que

corresponde al Isolongifolan-8-ol (30,98%) y el β-elemeno (13,79%), en los

sesquiterpenoide se encuentra el tercer compuesto mayoritario β-eudesmol (10,72%), el

hidrocarburo 1,11-hexadecadieno (1,76%) y el aldehído hexadecanal (0,12%).

En la Figura 6-1 se representa el porcentaje de los compuestos identificado los cuales en

primer lugar fueron sesquiterpenos (76%), seguidos de los monoterpenos (10%), en tercer

luagar están los sesquiterpenoides (7%) y finalmente con menor cantidad están los

hidrocarburos alifáticos y aldehídos (3%)

Grafica 6-1 % Compuestos AE

Teniendo en cuenta que el rendimiento fue alto de 3,0%, se puede considerar que las

hojas de la especie Piper catripense, es un espeice vegetal rica en aceites esenciales, ya

que se caracterizan por producir gran cantidad de monoterpenos y fenilpropanoides, lo

cual está de acuerdo con los componentes volátiles determinados, como se puede

observar en la gráfica anterior.

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63

Reportes en la literatura demuestran que los compuestos volátiles determinados en los

aceites esenciales analizados ya habían sido previamente reportados para varias

especies del género Piper ( Parmar, y otros, 1997). Como las especies P. auritum, donde

se identificaron como constituyentes principales monoterpénos, sesquiterpénos y

compuestos oxigenados (Sánchez, Pino, Correa, Naranjo, & Iglesia, 2009), en la especie

P. marginatum fueron identificados β-cubebeno, β-elemeno, Germacreno D y Germacren-

D-4-ol. (Jaramillo-Colorado, Julio-Torres, Duarte-Restrepo, Gonzalez-Coloma, & Julio-

Torres, 2015) en la especie Piper aduncum, donde fueron identificados sesquiterpenos

como el β-cariofileno, α –pineno, β-elemene, δ-Elemene, α-Cubebeno, β- Cariofileno,

Germacreno D y Germacren-D-4-ol (Scalvenzi, Yaguache-Camacho, Cabrera- Martínez, &

Guerrini, 2016)

También se tiene reporte que el compuesto L-perillyl alcohol se estudio con fines de

quimioprevencion dentificado como agente potencial quimiopreventivo (Division of Cancer

Prevention, National Cancer Institute, National Institutes of Health, 2002)

.

6.4. EVALUACIÓN DE LA CAPACIDAD ANTIOXIDANTE DE LAS HOJAS DE Piper

Catripense

6.4.1 Curva de calibración para el ensayo DPPH

Para la interpretación de los valores obtenidos durante el ensayo DPPH como estándar de

comparación de la capacidad antioxidante del extracto etanólico y las fracciones de las

hojas de la especie Piper catripense. Como se observa en la grafica 6-2 curva de

calibración del Ácido Gálico, se estimó que los datos de la regresión lineal establecen

que la función matemática que relaciona las variables del porcentaje de inhibición y

concentración (ppm) con un coeficiente de correlación de 0,99134454, el cual nos indica

que existe una buena relación lineal, en el grado de asociación entre las dos variables

cuantitativas, generando una relación directamente proporcional.

Grafica 6-2 Curva de calibración patrón Acido Gálico

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64

Como se observa en la tabla 6-3, se muestran el promedio de las absorbancias, el % de

inhibición y el IC50 del control positivo (Ácido Gálico + MeOH), se realizo un stock de 500

ppm de ácido gálico y ocho (8) diluciones en serie (3, 6, 11, 17, 23, 28, 34, 40 ppm),

finalmente se midieron a una absorbancias a 520 nm, en tiempos de 0 y finalizando a los

30 minutos.

Tabla 6-3 Promedio de absorbancias, % inhibición, IC50 del Ácido Gálico

POZOS PROMEDIO ABSORBANCIAS % INHIBICIÓN IC50

3 ppm 0,573 45,38

3,661

6 ppm 0,332 68,35

11 ppm 0,259 75,36

17 ppm 0,164 84,41

23 ppm 0,108 89,70

28 ppm 0,092 91,28

34 ppm 0,084 92,04

40 ppm 0,075 92,90

Posterior al cálculo de los porcentaje de inhibición antioxidante de la muestra patrón, se

determinó la concentración máxima de la media inhibitoria (IC50) mediante una regresión

en el programa estadístico GraphPad Prism. Como se observa en la grafica 6-3 su IC50

es considerando de alto potencial ya que se presenta un valor de más de 90 de %

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65

inhibicion y un IC50 de 3,661 µg/mL presentando un buen grado en la respuesta biologíca

y química de la capacidad antioxidante, para disminuir en un 50% la concentración inicial

del radical DPPH

Grafica 6-3 curva de IC 50 patrón ácido gálico

0 .5 1 .0 1 .5

0

2 0

4 0

6 0

8 0

1 0 0

L o g C o n c e n tra c ió n

AG

IC 5 0 A G

En la figura 6-4 se evidencia que en el extracto etanolico (E. EtOH. Pc.H) las

concentraciones de 28, 34 y 40 ppm, presentan un % de capacidad antioxidante mayor a

50%, de la fracción de hexano (Fx. Hex. Pc.H) la concentración 40 ppm, presentan un %

de capacidad antioxidante mayor a 50%, la fracción de diclorometano (Fx.DCM.Pc.H) no

registra un % de capacidad antioxidante significativo ya que están por debajo del 40 % y

la fracción de acetato de etilo (Fx. AcOEt.Pc.H), presento un % de capacidad antioxidante

mayor a 50% en las concentraciones de 17,23, 28, 34 y 40 ppm, esto debido a que esta

fracción debe presentar compuestos fenólicos ya que estos compuestos son susceptibles

a la oxidación, por lo tanto, actúan como antioxidantes

Grafica 6-4 % capacidad antioxidante extracto y fracciones de las hojas de Piper catripense

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66

E tO H H e x D C M Ac O E t

0

1 0

2 0

3 0

4 0

5 0

6 0

7 0

8 0

9 0

1 0 0

M u e s tra s

% C

ap

ac

ida

d a

nti

ox

ida

nte

C a p a c id a d

E tO H

Hex

D C M

A c O E t

En la tabla 6-4 se observa los porcentaje de inhibición y el IC50 del extracto etanolico (E.

EtOH. Pc.H), la fracción de hexano (Fx. Hex. Pc.H), la fracción de diclorometano

(Fx.DCM.Pc.H) y la fracción de acetato de etilo (Fx. AcOEt.Pc.H), se consideraron como

extractos activos, aquellos que presentaron un porcentaje de actividad antioxidante

superior al 50%; valor que se usó como referencia considerando que equivale a la mitad

de la actividad antioxidante presentada por el Ácido Gálico, utilizado como control

positivo.

Tambien se muestra que el E. EtOH. Pc.H presento un IC50 de 22,57 µg/mL y la Fx.

AcOEt.Pc.H presento un IC50 21,03 µg/mL lo cual indica que tiene un alto potencial de

eliminadores de radicales libres, ya que es capaz de neutralizar el 50% de radicales libres.

La fracción de Fx. Hex. Pc.H presento un IC50 36,92 µg/mL y la Fx. DCM. Pc.H presento

un IC50 92,79 µg/mL, lo cual indica que tiene potencial moderado para neutralizar los

radicales libres.

Se reportaron criterios de selección para extractos vegetales con base en el IC;

considerando de alto potencial antioxidante aquellos con valores menores a 30 µg/mL,

con moderado potencial ubicados en un rango entre 30 µg/mL y 100 µg/mL y de bajo

potencial antioxidante aquellos con un IC por encima de 100 µg/mL (Ramos, y otros,

2002) (Tovar del rio, 2013)

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67

Los valores de la deviacion estandar (sd), ns indican que los datos menos dispersos son

los de la fraccion de diclorometano Fx.DCM.Pc.H y los datos más dispersos son los de la

fracción de hexano Fx. Hex. Pc.H

Tabla 6-4 % inhibición, SD, IC50 del extracto y fracciones de las hojas de la Piper catripense

POZOS E. EtOH. Pc.H Fx. Hex. Pc.H Fx.DCM.Pc.H Fx. AcOEt.Pc.H

3 ppm 14,76 1,289 7,821 14,118

6 ppm 34,07 1,904 9,11 12,097

11 ppm 38,64 3,251 22,144 35,149

17 ppm 40,39 15,173 21,09 53,779

23 ppm 40,6 27,739 25,454 52,197

28 ppm 57,09 34,417 33,656 61,863

34 ppm 60,72 38,928 34,534 54,892

40 ppm 63,44 58,817 31,898 63,415

IC50 22,57 36,92 92,79 21,03

reportes en la literatura demuestran que el genero Piper presentan un alto potencial

antioxidante con IC50 por debajo de 30 µg/mL, como se evidencia las hojas y tallos de la

especie Piper pseudochurumayo con IC50 de 10 µg/mL (Cuenca Alvarado, 2015) y las

hojas de la especie Piper imperiale con un IC50 de 27,3 µg/mL (Diaz, y otros, 2012)

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68

7. CONCLUSIONES

Se realizó el aislamiento e identificación de las hojas de la especie Piper catripense,

mediante diferentes técnicas cromatográficas y espectroscópicas, obteniendo un

compuesto identificado como acetaminofén el cual no tiene reportes presentes en el

género Piper y tres mezclas, la primera mezcla compuesta por 3 sesquiterpenos β-

Eudesmol, Cedran-8,13-diol y Veridiflorol encontrados en aceites esenciales, la segunda

muestra compuesta por un aldehído Piperonal y un hidrocarburo Tetratetracontano y la

tercera mezcla compuesta por un alcaloides y una lignano 3 – butilindolizidina y

Cubebinolide. En las pruebas fitoquímicas preliminares se obtuvieron pruebas positivas

para la presencia de compuestos flavonoides, taninos, cardiotonicos, carotenoides,

alcaloides, esteroides y triterpenos.

Se permitió identificar por primera vez la composición química de los aceites esenciales

de las hojas de la especie Piper catripense. Un total de 29 compuestos fueron

identificados, los cuales representan un 83% de la muestra total, constituidos

principalmente por sesquiterpenos, encontrando que el compuesto mayoritario es un

sesquiterpeno identificado como Isolongifolan-8-ol, también se encontraron compuestos

como el β-elemene y sesquiterpenoides como β-eudesmol

Los resultados de actividad biológica indican que el extracto etanolico y la fracción de

acetato de etilo de las hojas presentan un un alto potencial de eliminadores de radicales

libres, ya que son capaz de neutralizar el 50% de radicales libres.

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8. RECOMENDACIONES

Dentro de este proyecto se desea que haya una mejora continua, se recomienda

continuar con el estudio fitoquímico de la especie Piper catripense

Estudiar la fracción de acetato de etilo ya que se observó una complejidad metabólica

importante

Utilizar otros modelos para determinar la capacidad antioxidante

Realizar el estudio de otras actividades biológicas en la especie

Estudiar otros órganos de la especie vegetal

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