MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE -...

CENTRO DE EXCELENCIA MEDICA EN ALTURA AVALADO POR FIFA

MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE LABORATORIO DE ANÁLISIS CLÍNICOS DEL CEMA

Laboratorio de análisis clínicos

Vigente a partir de: Enero 2016 Clave:CEMA-MN-LAC-MPLAC-01

Versión: 1.3 Página 1 de 72

Elaboró

Área de laboratorio de análisis clínicos

Revisó

MCD. Vicente Moreno Calva Director de Calidad

Autorizo

Dr. José María Busto Villarreal Director Quirúrgico CEMA

Libero

Dra. Gabriela Murguia Cánovas Directora General de CEMA

Este documento es propiedad de CEMA

MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE

LABORATORIO DE ANÁLISIS CLÍNICOS

CENTRO DE EXCELENCIA MÉDICA EN ALTURA BY FIFA






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INDICE DE CONTENIDOS Página

1. Objetivo..................................................................................................................................................4

2. Alcance..................................................................................................................................................4

3. Receptor del servicio.............................................................................................................................4

4. Responsables........................................................................................................................................4

5. Áreas involucradas................................................................................................................................5

6. Protocolos de operación en el laboratorio clínico..................................................................................6

6.1 Recepción y registro de pacientes que ingresan al laboratorio de análisis clínicos..............................6 6.2 Restricciones en la realización de los estudios......................................................................................7 6.3 Presentación, corroboración de las condiciones por estudio y explicación del procedimiento a realizar con el paciente.......................................................................................................................................................8 6.4 Consideración de los factores que influyen en los resultados...............................................................9 6.5 Preparación psicológica. .......................................................................................................................9 6.6 Procedimiento específico de toma de muestras sanguíneas a pacientes hospitalizados para procedimiento quirúrgico....................................................................................................................................................10 6.7 Registro de pacientes en bitácora de laboratorio clínico......................................................................11 6.8 Identificación y rotulo de muestras.......................................................................................................12 6.9 Técnica de recolección de especímenes sanguíneos..........................................................................13 a) Técnica de punción cutánea o capilar..................................................................................................13 b) Punción venosa....................................................................................................................................14 c) Punción arterial.....................................................................................................................................15 6.10 Manejo y transporte de las muestras sanguíneas obtenidas..............................................................16 6.11 Protocolo de técnicas de análisis clínicos del laboratorio del CEMA................................................ 17 6.12 Hematología........................................................................................................................................17 A) Composición de la sangre..................................................................................................................17 B) Glóbulos rojos o eritrocitos.................................................................................................................18 C) Glóbulos blancos o leucocitos............................................................................................................19 D) Plaquetas...........................................................................................................................................19 E) Plasma y sus constituyentes..............................................................................................................19 6.13 Procedimiento específico para el análisis del área de hematología................................................19 6.14 Métodos manuales de hematología.................................................................................................20






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A) Hematocrito (Hto), volumen celular compacto (VCC) ó volumen del paquete celular (VPC).........20 B) Micrométodo.....................................................................................................................................20 C) Macrométodo de Wintrobre..............................................................................................................21 D) Conteo de glóbulos rojos..................................................................................................................22 E) Determinación de leucocitos.............................................................................................................28 F) Plaquetas...........................................................................................................................................34 G) Factor de crecimiento plaquetario.....................................................................................................39 H) Grupo sanguíneo...............................................................................................................................41 6.15 Coagulación.......................................................................................................................................43 A) Determinación del tiempo de protrombina.........................................................................................43 B) Determinación del tiempo de tromboplastina parcial activada...........................................................43 6.16 Serología e inmunología....................................................................................................................44 A) Determinación de Proteína C reactiva...............................................................................................44 B) Determinación de HCG (prueba de tira) en suero y orina.................................................................45 C) Prueba presuntiva VIH.......................................................................................................................46 6.17 Parasitología y coproanálisis.............................................................................................................47 A) Determinación de sangre oculta en heces.........................................................................................47 B) Examen Coproparasitoscopico...........................................................................................................48 6.18 Uroanálisis..........................................................................................................................................50 A) Tipos de muestras para análisis de orina...........................................................................................50 B) Indicaciones de recolección de muestras urinarias............................................................................51 C) Manejo y transporte de muestras urinarias........................................................................................51 D) Examen general de orina...................................................................................................................52 6.19 Manejo de derrames en el laboratorio de análisis clínicos................................................................55 6.20 Lavado y desinfección........................................................................................................................56 6.21 Almacenaje de muestras biológicas...................................................................................................56 6.22 Manejo de red de frio.........................................................................................................................57 6.23 Desecho de muestras biológicas.......................................................................................................58 7. Control de calidad en el laboratorio clínico del CEMA...........................................................................59 7.1 Etapas del control de calidad en el laboratorio clínico del CEMA.......................................................60 A) Fase preanalítica................................................................................................................................60 B) Fase analítica.....................................................................................................................................65 C) Fase postanalítica...............................................................................................................................66 7.2 Métodos de control de calidad interno del laboratorio del CEMA........................................................67 8 Resultados...............................................................................................................................................68 8.1 Informe de resultados..........................................................................................................................70 9. Resultado deseado..............................................................................................................................71 10. Diagrama de flujo...............................................................................................................................72






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1. Objetivo Proporcionar al personal del área de laboratorio clínico así como a todos los profesionales de la salud del CEMA,

un instrumento que facilite el desarrollo adecuado, sistematizado y estandarizado de los procedimientos que se

realizan dentro del laboratorio de análisis clínicos.

2. Alcance

El presente manual debe aplicarse dentro de todas las actividades que se desarrollen en el laboratorio de

análisis clínicos, y está al alcance de todo el personal profesional de la salud y/o administrativo ligado al CEMA.

3. Receptor del servicio

El CEMA by FIFA integra el servicio de Laboratorio de análisis clínicos, con la finalidad de proporcionar un

servicio completo e íntegro para los deportistas, alumnos, colaboradores del Grupo Pachuca, otros clubes,

organizaciones deportivas y a la población en general, todo ello sujeto a principios científicos y éticos

enmarcados en las Normas Oficiales Mexicanas (NOM) y los estatus básicos del CEMA by FIFA.

4. Responsables

NOMBRE PUESTO

I.Q Claudia Elena Saavedra Sandoval Responsable sanitario del laboratorio de análisis clínicos

T.L.Q. Noel Osmar Ramos Islas Jefe del laboratorio de análisis clínicos

L. N. Alejandra Chávez Oropeza Laboratorista clínico (turno vespertino)






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5 Áreas Involucradas:

AREA RESPONSABLE FIRMA

ADMINISTRACION Y ADMISIÓN

L.C. SANTA VALENCIA

ENFERMERIA L.E NANCY MONTIEL ESPINOZA

FLEBOTOMIA T.L.Q. NOEL OSMAR RAMOS

ISLAS

L.N. ALEJANDRA CHAVEZ

OROPEZA

HEMATOLOGIA

QUIMICA CLINICA

UROANALISIS

CALIDAD

VALIDACIÓN DE RESULTADOS

I.Q. CLAUDIA SAAVEDRA SANDOVAL






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6 OPERACIONES A REALIZAR DENTRO DEL LABORATORIO DE ANÁLISIS CLÍNICOS

IMPORTANTE: EN CUMPLIMIENTO CON LAS METAS INTERNACIONALES DE SEGURIDAD DEL PACIENTE EN ESPECIFICO LA MISP 5 (CON RESPECTO A LA PREVENCION DE INFECCIONES) QUEDA ESTRICTAMENTE PROHIBIDO TOMAR CUALQUIER TIPO DE MUESTRA SIN LA PRECAUCION DEL USO DE BATA DE LABORATORIO, GUANTES Y EN CASOS NECESARIOS CUBREBOCA Y GAFAS DE PROTECCION. POSTERIOR A LA TOMA DE MUESTRAS SE DEBE DESCARTAR EL MATERIAL DESECHABLE Y REALIZAR UN LAVADO EXAUSTIVO DE MANOS SIGUIENDO LOS 8 PASOS DE LAVADO. ADEMAS DE LO ANTERIOR SE DEBEC ONSIDERAR LO ESTIPULADO EN EL PROGRAMA DE SEGURIDAD E HIGIENE DEL LABORATORIO CLINICO DEL CEMA DE IGUAL MANERA SE DEBE DAR EL CUMPLIMIENTO A LA META MISP 6(PREVENCION DEL RIESGO DE CAIDAS), ESTO ES, QUE EN CASO DE QUE UN PACIENTE NO SE PUEDA TRASLADAR POR SUS PROPIOS MEDIOS SE PEDIRA EL APOYO AL AREA DE CAMILLERRIA O ENFERMERIA PARA EL DEBIDO TRASLADO DEL PACIENTE EN SILLA DE RUEDAS DESDE LA ENTRADA DEL CEMA AL LABORATORIO CLINICO Y VISCEVERSA, EN CASO DE OCURRIR UN ACCIDENTE RELACIONADO CO CAIDAS DEL PACIENTE SE DEBE LLEVAR A CABO UN REGISTRO EN EL FORMATO CORRESPO0NDIENTE Y LAS ACCIONES A TOMAR PARA EVITAR QUE SE REPITA UN SUCESO SIMILAR. 6.1.- RECEPCIÓN Y REGISTRO EN EL SISTEMA DE PACIENTES/MUESTRAS QUE INGRESAN AL

LABORATORIO DE ANÁLISIS CLÍNICOS

PACIENTE EXTERNO ESPONTANEO Personal de admisión

A. El personal de admisión atiende de primera instancia a los pacientes espontáneos del servicio externo que deseen realizar uno o varios estudios de análisis clínicos en nuestro laboratorio, por ello mismo debe tener tacto y diplomacia al momento de dirigirse a nuestros pacientes.

B. El personal de admisión debe preguntar de la manera más amable si el paciente cuenta con una orden médica para realización de estudios de laboratorio, de ser así admisión debe asegurarse que realmente los estudios de la orden sean de laboratorio de análisis clínicos.

C. El personal de admisión debe asegurarse de que el paciente cumpla con las condiciones para la realización de los estudios solicitados, para facilitar dicha operación se buscan en el sistema informático hospitalario HISTOCLIN los estudios solicitados por el médico o el mismo paciente, esto con la finalidad de encontrar las indicaciones por estudio capturadas con anterioridad por el personal de laboratorio.






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6.2 Restricciones en la realización de estudios

El laboratorio se reserva el derecho a realizar análisis clínicos a pacientes que no cumplan con las

condiciones previamente explicadas por el personal de admisión

El laboratorio se reserva el derecho a realizar análisis clínicos en muestras que no cumplan con los

requerimientos necesarios por el laboratorio.

El laboratorio se reserva el derecho a realizar análisis clínicos a pacientes que no permitan el

procedimiento adecuado para la obtención de muestras, mediante consentimiento informado con su

respectiva firma en el apartado rechazo de la intervención así como las razones por las cuales rechazan

de manera parcial o total la toma de muestra.

En caso de tener alguna duda sobre las condiciones para algún estudio, el personal de admisión deberá

realizar un llamado telefónico al laboratorio (extensión 692)

En caso de detectar alguna de las restricciones descritas, de ser posible se deberá reprogramar el

estudio a la brevedad.

D. El personal de admisión captura en el sistema HISTOCLIN de CEMA los datos generales del paciente, corrobora y asegura que los datos y los estudios solicitados coincidan con los datos presentes en la hoja de solicitud (en caso de presentar solicitud). De manera estrictamente protocolizada se deben capturar siempre 2 datos esenciales de los pacientes que deseen ser admitidos en el laboratorio clínico del CEMA los cuales son NOMBRE COMPLETO Y FECHA DE NACIMIENTO.

E. Una vez capturados los datos de identificación del paciente y corroboradas las condiciones por estudio de cada paciente el personal de admisión traslada al paciente hasta el área de toma de muestras del laboratorio de análisis clínicos y se concatena con el personal flebotomista de laboratorio clínico, brindado al, el ticket generado por el sistema informático en el que se incluyen los dos datos básicos de identificación del paciente (NOMBRE COMPLETO Y FECHA DE NACIMIENTO) y los estudios a realizar.






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PACIENTE EXTERNO PROGRAMADO Personal de admisión

A. El personal de admisión o cal centre atiende de manera amable y respetuosa la llamada en la que se solicite algún servicio de laboratorio clínico, el mismo personal de admisión debe brindar los costos y las condiciones por cada estudio solicitado por el paciente, en caso de tener duda en alguna condición por estudio debe canalizar la llamada al personal de laboratorio clínico (extensión 692), en caso de tener alguna duda en cuanto a costo por estudio debe coordinarse con al personal de administración y de laboratorio de ser necesario.

B. El personal de admisión debe capturar los datos generales del paciente siendo estrictamente protocolizado dos principales (NOMBRE COMPLETO Y FECHA DE NACIMIENTO), una vez capturados se le debe indicar al paciente las condiciones en las que debe presentarse para la realización de sus estudios clínicos, así como la fecha y el horario para realizar los análisis.

C. Una vez que el paciente ingresa a CEMA para la realización de sus estudios clínicos (previa cita) se deben de seguir los pasos indicados del punto 6.1.1 al 6.1.4.

6.3 PRESENTACIÓN,CORROBORACION DE LAS CONDICIONES POR ESTUDIO Y EXPLICACIÓN DEL

PROCEDIMIENTO A REALIZAR CON EL PACIENTE

Flebotomista

A. El flebotomista deberá presentarse con el paciente, mencionando su nombre y cargo dentro del

laboratorio

B. Deberá llamar al paciente por su nombre completo, corroborar los datos del paciente, con los presentes

en la hoja de solicitud (de ser el caso), de manera verbal y escrita.

C. Cuestionar gentilmente al paciente sobre el cumplimiento de las condiciones de ayuno y/o condiciones

especiales con las que se presenta a la toma.

D. Explicar al paciente de las posibles implicaciones que tendría el realizar el estudio en condiciones

inadecuadas

E. En caso de detectar condiciones inadecuadas para la realización de los estudios se deberá reprogramar

el estudio a la brevedad posible. De lo contrario;






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F. Explicar brevemente el procedimiento a realizar. Respondiendo a las posibles dudas que el paciente

presente, esto con ética y profesionalismo.

G. El flebotomista pide de la manera más atenta firme de consentimiento informado para toma y proceso de

muestras para análisis clínicos , el cual se encuentra en el sistema SIMART con clave CEMA-RG-LAC-

APCI-09 / V.1.0

6.4 CONSIDERACIÓN DE LOS FACTORES QUE INFLUYEN EN LOS RESULTADOS DE ANÁLISIS

CLÍNICOS

Flebotomista

Es de importancia tomar en cuenta los factores que afectan algunas magnitudes biológicas humanas con interés

clínico:

A. VARIACIONES FISIOLÓGICAS

B. VARIACIONES IATROGÉNICAS

C. VARIACIONES PATOLÓGICAS

D. DEPORTISTA DE ALTO RENDIMIENTO

E. EMBARAZO

F. RITMO CIRCADIANO

G. DIETAS

H. INTERFERENCIAS POR MEDICAMENTOS.

TIPOS DE AYUNO:

TOTAL: Se considerara después de pasadas 12 horas de la última comida.

PARCIAL: Se considera pasada de 8 horas después de la última comida

MINIMO: se considera pasado de 3 horas después de la última comida.






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6.5 PREPARACIÓN PSICOLÓGICA DEL PACIENTE

A. La preparación psicológica deberá ser la que se brinda para cualquier examen o procedimiento

dependiendo de la edad, intereses, cultura y experiencias previas, con el objetivo de disminuir la tensión

y angustia.

B. Preparar a la madre en caso de pacientes pediátricos, que la toma de muestra se hará en una zona

confortable, con los instrumentos necesarios de laboratorio para la toma de muestra y con el cuidado

pertinente para su paciente.

6..6 PACIENTE PROGRAMADO PARA HOSPITALIZACION O URGENCIAS

Personal de administración

A. A través del sistema informático HISTOCLIN el personal administrativo genera un evento en el cual se

capturan los datos generales del paciente siendo 2 de estos estrictamente protocolarios (NOMBRE

COMPLETO Y FECHA DE NACIMIENTO), además en el evento se describe el procedimiento a realizar

con el paciente su diagnostico y la fecha a realizar la intervención quirúrgica

Personal de laboratorio

B. Una vez que el área administrativa ha generado el evento, el personal de laboratorio se encarga de

solicitar a través del sistema informático HISTOCLIN los insumos necesarios para la realización de los

estudios al paciente que generalmente un cirujano solicita antes de la intervención en quirófano (estudios

pre-quirúrgicos)

Medico de hospitalización/urgencias en turno

C. Ya ingresado el paciente al área de hospitalización o urgencias, el médico responsable en turno deberá

generar una solicitud interna de estudios de laboratorio a través del sistema informático hospitalario

HISTOCLIN.

Flebotomista/enfermera de hospitalización






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D. El profesional de laboratorio hará mención al enfermero(a) de hospitalización en turno, sobre los estudios

solicitados por el médico en turno y de ser posible se tomaran las muestras necesarias en conjunto con el

proceso de colocación de equipo de venoclisis del paciente

E. El profesional de laboratorio junto con el enfermero(a) de hospitalización en turno harán presencia en la

habitación del paciente presentándose por su nombre completo y el puesto que ocupan en el hospital,

posteriormente le darán una breve explicación al paciente sobre el procedimiento de canalización y toma

de muestras para estudios pre quirúrgicos.

F. El enfermero(a) de hospitalización en turno realizara las labores pertinentes para la inserción de catéter

intravenoso periférico para canalización, con la observación de tomar la muestra de sangre en los tubos

proporcionados por el laboratorio, esto antes de conectar al paciente al equipo de venoclisis

G. Una vez obtenida la muestra sanguínea se debe conectar al paciente al equipo de venoclicis y el

profesional de laboratorio debe homogenizar las muestras de sangre con el anticoagulante del tubo (si

fuera el caso)

H. Se rotularan las muestras con los dos datos estrictamente protocolizados los cuales son NOMBRE

COMPLETO Y FECHA DE NACIMIENTO

6.7 REGISTRO DE PACIENTES EN BITÁCORA DEL LABORATORIO CLINICO

Flebotomista

Serán debidamente registrados en la bitácora del laboratorio de análisis clínicos con los siguientes datos:

Nombre completo del paciente: nombre(s) y apellidos completos del paciente, se hará una corroboración

de la ortografía del mismo

Fecha de nacimiento completa en el orden, día, mes y año

Número de folio: correspondiente en orden progresivo.

Fecha: correspondiente al día de la toma de muestra.

Edad.






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6.8 IDENTIFICACION Y ROTULO DE MUESTRAS OBTENIDAS

Flebotomista Se rotularán con tinta indeleble en los tubos, laminillas, y/o frascos;

a) Nombre completo del paciente

b) Fecha de nacimiento completa en el orden dia, mes y año






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6.9 TECNICAS DE RECOLECCIÓN DE ESPECÍMENES SANGUÍNEOS

Fundamentos La sangre es el fluido corporal más utilizado con fines analíticos. Los tres procedimientos habituales para obtener la sangre son:

Punción cutánea

Punción venosa

Punción arterial La técnica utilizada para la obtención de muestras de sangre es fundamental para realizar correctamente el estudio clínico que se desea realizar. En cualquier caso; la sangre arterial y la sangre venosa se diferencían en algunos aspectos que deben ser tenidos en cuenta. La sangre que ha sido oxigenada por el pulmón, es bombeada por el corazón hacia los órganos y tejidos para cubrir las necesidades metabólicas. Esta sangre arterial tiene una composición prácticamente uniforme en todo el organismo. Por el contrario; la composición de la sangre venosa varía según la actividad de metabólica del órgano o tejido per fundido por lo que la composición de la sangre venosa es diferente según el punto en que se extrae. La sangre venosa tiene mucho menos oxígeno que la arterial, además varía en ésta el factor pH, su concentración de CO2 y su hematocrito (concentración de eritrocitos en relación con el plasma). Varía también en ocasiones la concentración de glucosa, ácido láctico, cloro y amonio. La sangre obtenida por punción de la piel, que a veces se denomina incorrectamente sangre capilar, es una mezcla de sangre procedente de arteriolas, vénulas y capilares, por lo tanto, es en parte arterial y en parte venosa. El aumento de presión en las arteriolas hace que la muestra sea más rica en sangre arterial, La sangre de punción cutánea también contiene sangre intersticial y líquido intracelular. NOTA: EN CUMPLIMIENTO CON LA MISP 5 COLOCAR GUANTES ANTES DE LA TOMA DE MUESTRA Y LAVARSE LAS MANOS DESPUES

A. Punción cutánea o capilar Es el método más utilizado en los pacientes pediátricos especialmente en los lactantes. La excesiva cantidad de sangre extraída mediante venopunción puede provocar anemia especialmente en niños prematuros. Por otra parte la punción de venas profundas en pacientes pediátricos también puede condicionar, ocasionalmente: paro cardiaco, hemorragia, trombosis, gangrena por constricción venosa, lesión de tejidos e infección. La punción cutánea resulta útil en adultos aquejados de obesidad extrema, quemaduras graves, y tendencia trombótica, también ese tipo de punción suele utilizarse en pacientes geriátricos.






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TECNICA DE PUNCION CUTANEA O CAPILAR Flebotomista

1. Seleccionar un punto adecuado para la punción. En lactantes se elige por lo general la superficie plantar externa del talón. En niños de mayor edad puede utilizarse la superficie palmar de la última falange del segundo, tercero o cuarto dedo de la mano. Otro punto es el lóbulo de la oreja. La zona de punción no debe presentar edema ni haberse puncionado previamente.

2. Calentar la zona de la punción con una compresa húmeda a temperatura no superior a los 42 C° Con ello se aumenta el flujo de sangre a través de arteriolas y capilares.

3. Limpiar la zona de punción con una solución acuosa de isopropanol al 70 % Realizar la punción únicamente con la lanceta con cuchilla de menos de 2.4 mm de longitud para no lesionar el calcáneo.

4. Desechar la primera gota de sangre enjuagándola con una gasa estéril, regular el flujo de sangre con el pulgar. No hay que realizar maniobras de “ordeñador” ya que se puede hemolizar la muestra e inducir un exceso de tejido hístico.

5. Recoger la muestra en un recipiente adecuado para volúmenes comprendidos entre 1-200 microlitros. Suelen utilizarse micropipetas desechables de vidrio y de extremo abierto. Existen pipetas heparinizadas.

6. Sellar el recipiente de una muestra introduciendo un fragmento de arcilla en cada uno de los extremos de la micropipeta.

7. Etiquetar el recipiente con la fecha, hora de extracción y datos del paciente.

B. Punción venosa Es el principal método de extracción sanguínea para realizar análisis clínicos. A partir de sangre sin anticoagulante se obtiene SUERO, si la sangre contiene anticoagulante se obtiene PLASMA, del plasma forma parte el fibrinógeno, sustancia de la que carece el suero. Por otra parte la separación inmediata del plasma o suero de las células es importante para obtener resultados óptimos en el análisis clínico. TECNICA DE PUNCION VENOSA Flebotomista

1. Selección de la vena para punción. Se solicita al paciente cierre el puño para que las venas resulten más palpables, seleccionando la vena más adecuada. Se prefieren las venas de la fosa antecubital y en particular la vena cubital interna y cefálica. También pueden utilizarse las venas del tobillo, de la muñeca y de la mano, si existiera un catéter intravenoso en un brazo se utilizará el brazo contrario para la extracción.






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2. Hacer asepsia en el lugar de la punción con una torunda embebida de una solución de alcohol

3. Se coloca torniquete el cual debe aplicarse varios centímetros por encima de la zona de punción, no más de 2 minutos.

4. Se realiza la venopunción se penetra a través de la piel con la aguja vacutainer, jeringa o mariposa según

sea el caso, formando un ángulo de 15 grados con el brazo del paciente y con el bizel de la aguja hacia arriba. Hay que introducir la aguja con suavidad pero con la suficiente rapidez para evitar molestias al paciente. Si se utiliza jeringa, hay que tirar el émbolo hacia atrás en la medida de la sangre va fluyendo. No deben realizarse movimientos con rapidez excesiva ya que la sangre puede hemolizarse o colapsarse la vena.

5. Cuando la sangre comienza a fluir se puede retirar el torniquete. 6. Una vez que se ha extraído la muestra hay que indicar al paciente que relaje su puño, colocando

suavemente sobre el punto de punción una torunda embebida en alcohol y retirar la aguja. Es de suma importancia retirar la aguja de la jeringa antes de vaciar la sangre a los tubos para evitar hemólisis.

C. Punción arterial

La sangre arterial se utiliza para medir la tensión del oxígeno y dióxido de carbono, así como para establecer el pH. Las determinaciones de gases en la sangre (gasometría) son fundamentales para el estudio de los problemas de oxigenación que se producen en las enfermedades como la neumonía, la neumonitis, la insuficiencia respiratoria y la embolia pulmonar. Las punciones arteriales son técnicamente más difíciles y de mayor riesgo clínico que las punciones venosas, en este manual no se menciona el procedimiento ya que el servicio de laboratorio clínico no lleva a cabo dicho proceso. TECNICA DE PUNCION ARTERIAL Flebotomista

1. Lavado de manos y colocación de guantes. 2. Palpar el sitio elegido con la punta de los dedos, y fijar la arteria mediante una ligera hiperextensión de la

muñeca. 3. Limpiar el área a puncionar con la torunda realizando un movimiento circular. 4. Mantener la punta del dedo sobre la arteria, justo por encima del sitio elegido para la punción. 5. Con el bisel de la aguja hacia arriba, introducirla en la arteria formando un ángulo de 45º. 6. Detener el avance de la aguja cuando se observe el retorno de la sangre hacia la jeringa y dejar que el






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mismo pulso arterial envíe 2-3ml de sangre. 7. Cuando se tenga toda la muestra, se ha de mantener una torunda de algodón sobre el sitio de punción y

retirar la aguja. 8. Aplicar presión sobre el punto de punción y sobre el área proximal con la torunda. Mantener la presión

durante al menos 5 minutos y luego dejar gasa estéril con cinta adhesiva en el sitio de punción. 9. Expulsar las burbujas de aire de la jeringa.

6.10 MANEJO Y TRANSPORTE DE LAS MUESTRAS SANGUINEAS OBTENIDAS

Flebotomista

A. Toda muestra de sangre debe manipularse con guantes y transportarse en contenedores rigidos con

tapa, especialmente diseñados y destinados sólo para ese propósito. Jamás debe transportarse una

muestra dentro de un bolsillo o en la mano.

B. Los frascos (tubos) de sangre, para Hemograma, pruebas Bioquímicas, Inmunológicas y otras deben

venir correctamente tapados con su tapón de goma o plástico, y dispuestas en gradilla, de modo de

mantenerse vertical.

C. En el caso de muestras de origen cutáneo (capilares) deberán ser depositadas en el recipiente adecuado

(micro placas), para su inmediato procesamiento.

D. Una vez obtenidas las muestras que se han considerado dentro de los parámetros correspondientes, se

efectuará el proceso de las mismas.

E. Según el análisis a practicar,considerar las condiciones de temperatura de conservación y transporte de

las muestras






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6.11 PROTOCOLO DE TECNICAS DE ANALISIS CLINCOS DEL LABORATORIO DEL CEMA

FUNDAMENTOS Para el adecuado tratamiento de cualquier padecimiento o enfermedad es imprescindible contar con un diagnóstico clínico acertado. Actualmente, las pruebas de laboratorio, mediante el análisis de los componentes de los fluidos o excreciones corporales (sangre, orina, heces), los profesionales de la salud pueden obtener una idea muy acertada sobre el estado de salud del sujeto, y también puede orientarnos a determinar qué región u órgano del cuerpo es el afectado o causante del padecimiento o enfermedad. La utilidad de los análisis clínicos no está restringida únicamente para las personas enfermas que deben ser diagnosticadas, ya que una revisión periódica, en las personas sanas (cada 6 meses a 1 año) a manera de check-up, ayuda a detectar varios padecimientos, sobre todo los del tipo crónico como la diabetes, la hipertensión y el cáncer entre muchos otros, de manera temprana, permitiendo prevenir su evolución manteniendo el buen estado de salud. En el CEMA el laboratorio clínico cuenta con equipos automatizados que nos permiten realizar análisis clínicos cumpliendo siempre con los más altos estándares internacionales de calidad, así mismo cuenta con profesionales en la rama de análisis clínicos altamente capacitados para la operación de los equipos y análisis de muestras de los componentes, fluidos o excreciones corporales. NOTA: PARA EL LABORATORIO CLINICO DEL CEMA ES DE SUMA IMPORTANCIA CUMPLIR CON LAS METAS INTERNACIONALES DE SEGURIDAD DEL PACIENTE POR ELLO NO OLVIDE COLOCAR EL EQUIPO DE SEGURIDAD CORRESPONDIENTE PARA LOS PROCEDIMIENTOS DE ANALISIS CLINCOS PRIMORDIALMENTE BATA,GUANTES,CUBREBOCA Y GAFAS DE PROTECCION SI FUERA NECESARIO. NO OLVIDE LAVAR CORRECTAMENTE SUS MANOS ANTES DE SALIR DEL LABORATORIO CLINICO

6.12 HEMATOLOGÍA

La Hematología se dedica al estudio de las células sanguíneas y de la coagulación. Comprendidos en su campo se encuentran los análisis de concentración, la estructura y función de las células de la sangre, los precursores de la médula ósea, los componentes químicos del plasma o suero íntimamente unidos con la estructura y función de la célula sanguínea y la función de las plaquetas y proteínas que intervienen en la coagulación de la sangre. Las técnicas de biología molecular, de uso cada vez más generalizado, facilitan la detección de las mutaciones genéticas subyacentes a la alteración de la estructura y función de las células y proteínas que producen trastornos hematológicos.

A. COMPOSICIÓN DE LA SANGRE






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Células:

Glóbulos rojos o eritrocitos

Glóbulos blancos o leucocitos

Plaquetas o trombocitos

Plasma:

Agua (91 -92 %)

Elementos (8-9%)

Proteínas (7%), seroalbúminas, seroglobulinas y fibrinógeno

Sustancias inorgánicas (0.9 %): sodio, potasio, calcio, fósforo, etc.

Sustancias orgánicas que no son proteínas. Urea, ácido úrico, xantina, hipoxantina, creatina, creatinina,

amoniaco y aminoácidos, además grasas neutras, fosfolípidos, colesterol y glucosa.

Secreciones internas de las glándulas y varias enzimas como amilasa, proteasa y lipasa.

El plasma, al cual se le ha extraído el fibrinógeno después de haberse formado el coágulo, se conoce con el nombre de suero.

B) GLOBULOS ROJOS O ERITROCITOS Son producidos principalmente en la médula ósea roja de los huesos, en el bazo y en el hígado. Tienen forma discoidal, son anucleados, miden de 7.2 micras de diámetro 2.2 micras de espesor. Tienen alrededor una membrana compuesta de proteínas, lípidos simples y colesterol. El cuerpo del eritrocito tiene una malla de tejido de igual constitución en el que se encuentra el pigmento rojo llamado hemoglobina. La hemoglobina es una proteína conjugada formada por el grupo prostético HEM y la proteína GLOBINA que se encuentra dentro del eritrocito dando el color rojo característico al eritrocito. La característica más importante de la hemoglobina es su capacidad de combinarse con el oxígeno de las células; en los tejidos, la hemoglobina se combina con CO2, formando la carboaminohemoglobina, que a nivel de los pulmones libera CO2 que sale al exterior. Número de eritrocitos.- En la especie humana la cantidad normal es de 5-6 millones en la mujer. Su disminución






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es causa de anemia. C) GLOBULOS BLANCOS O LEUCOCITOS Tienen mayor tamaño que los eritrocitos y sí contienen núcleo. La cantidad normal de leucos es de 5,000 a 10,000 por milímetro cúbico. Hay varios tipos de leucos: Basófilos, eosinófilos, monocitos, linfocitos, neutrófilos y todos ellos tienen la función de combatir las infecciones bacterianas. D) PLAQUETAS O TROMBOCITOS Son de menor tamaño que los eritrocitos y no tienen núcleo. La cantidad normal de las plaquetas es de 150,000 a 450,000 por milímetro cúbico de sangre. Tienen una función muy importante en la coagulación sanguínea. En resumen: las células de la sangre tienen las siguientes funciones: B) Respiración, C) Defensa del organismo y D) Coagulación. E) PLASMA Y SUS CONSTITUYENTES:

Agua: es el medio principal en el cual se llevan a cabo todas las reacciones químicas de la célula. Las

funciones de este líquido son: hidratante, regulación de la temperatura corporal y balance hídrico.

Elementos sólidos:

Proteínas; las seroalbúminas, las seroglobulinas y el fibrinógeno mantienen la presión oncótica. Esas

mismas proteínas (en especial las primeras) confieren la viscosidad a la sangre y, por lo tanto,

intervienen en el equilibrio ácido-básico. Las seroglobulinas tienen actividad como anticuerpos

(mecanismo de defensa). El fibrinógeno participa en la coagulación de la sangre.

Sustancias inorgánicas: Las sales (sodio, potasio, calcio, etc.) son llevadas a las células por el

plasma para mantener el equilibrio del medio interno.

Sustancias orgánicas que no son proteínas: son producto del metabolismo celular, substancias con

poder alimenticio. El plasma recoge los desechos metabólicos y los lleva a los riñones, la piel, y al

intestino para su eliminación.

Secreciones internas de las glándulas: El plasma se encarga de transportar las hormonas secretadas

por las glándulas.

6.13 PROCEDIMIENTO ESPECÍFICO PARA ANALISIS DEL AREA DE HEMATOLOGIA






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



Técnico laboratorista

A. Se utilizará el método de centrifugación para la obtención de suero o plasma.

B. Separar el suero o plasma en alícuotas previamente identificadas con los datos correspondientes.

C. Las técnicas a seguir para el procesamiento y obtención de resultados de hematologia se establece en

los MANUALES DE OPERATIVOS proporcionados por el proveedor de equipos con clave:

TZS5+1-MO-SKX-21N. (manual de operaciones equipo de hematología SYSMEX KX-21N)

6.14 METODOS MANUALES DE HEMATOLGIA

A. HEMATOCRITO (Hto) O VOLUMEN CELULAR COMPACTO (VCC) O VOLUMEN DEL PAQUETE CELULAR (VPC)

Fundamento: Se basa en la centrifugación de la sangre total para medir el espacio que los eritrocitos ocupan con el de sangre total para medir el espacio que los eritrocitos ocupan, es decir que el hematocrito de una muestra de sangre es la relación del volumen de eritrocitos con el de sangre total. Indica la masa total de rojos. MUESTRA: Sangre total con (EDTA) o sangre capilar.

B. MICROMÉTODO Técnico laboratorista MATERIALES:

Sangre con anticoagulante

Capilares

Encendedor o mechero

Centrífuga para capilares

Regla o equipo para lectura de micro hematocrito. PROCEDIMIENTO:






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



1. Homogeneizar la muestra

2. Llenar el capilar (3/4 partes de la capacidad del capilar).Se sella el extremo vacío. Los tubos llenos se

colocan en los canales o surcos radiales del aparato de centrifugación con el extremo cerrado dirigido

hacia afuera.

3. Limpiar con gasa o papel

4. Centrifugar a 12,000 r.p.m. durante 5 min, a menos que el hematocrito exceda del 50%, en este caso se

centrifuga durante 5 min adicionales, con el objeto de asegurar que se ha reducido al mínimo la cantidad

de plasma atrapado

5. Leer inmediatamente. Los tubos capilares no están graduados. La longitud de toda la columna de

eritrocitos solo debe medirse en cada caso con una regla milimetrada

6. El resultado se expresa en %

NOTA: para hacer la medición se coloca con el extremo inferior de la columna de sangre en la línea correspondiente al 100 y el plasma a 0.

C. MACROMÉTODO DE WINTROBE Técnico laboratorista MATERIALES:

Sangre con anticoagulante

Tubo de Wintrobe

Pipeta Pasteur

Centrífuga PROCEDIMIENTO

1. Se homogeneiza la muestra

2. Se llena el tubo de wintrobe. A medida que se va llenando el tubo, eleve la punta de la pipeta, pero

manténgala por debajo del menisco de sangre con el objeto de evitar la formación de burbujas.

3. Se centrifuga 30 min a 3000 r.p.m.

4. Se mide la escala de la derecha

5. Se multiplica por 12

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



AUMENTADO: anemia que puede ser originada por destrucción celular, pérdidas directas, cirrosis, insuficiencias

cardiacas.

DISMINUIDO: Policitemia o poliglobulia. Puede estar causada por un aumento de la producción medular en

forma primaria (policitemia vera) o secundaria a enfermedades sistémicas (altura, enfermedades pulmonares,

enfermedades cardiovasculares), deshidratación, quemaduras, insuficiencia respiratoria crónica.

CAUSAS DE ERROR

Tiempo y velocidad alteran los resultados

Fugas al no tapar bien

Hemoconcentración de muestra por extracción dificultosa, compresión excesiva, deshidratación y/o

pérdida de líquidos

Hemolisis de la muestra

No homogeneización de la muestra

Inclusión en la lectura de la capa de blancos

D. CONTEO DE GLÓBULOS ROJOS

Fundamento

Para el conteo de eritrocitos, se usan métodos sistemáticos que son más rápidos y precisos, y los métodos

manuales.

Todo método manual de recuento celular incluye 3 fases:

Dilución de la sangre

Muestreo de la sangre diluida en un volumen

Recuento de células en ese volumen

Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un

fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el

porcentaje de éstas que son viables.

Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple

cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que utiliza la cámara de

Neubauer

Para el conteo de eritrocitos, es necesario diluir la sangre con el líquido de Hayem, en una proporción exacta.

Luego se examina en el microscopio con una cantidad pequeña colocada en la cámara de Neubauer, contando






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



el número de elementos que se encuentran en el retículo de la cámara y mediante una operación se obtiene el

número total.

Para la realización del conteo manual se necesita un líquido de dilución, una cámara de recuento, una pipeta

diluidora y un microscopio.

Técnico laboratorista MATERIALES

Pipeta de Thoma para glóbulos rojos (perla roja)

Equipo para venopunción (Tubo lila)

Boquilla roja

Tubo de plástico

Tubos de ensayo

Papel parafilm

Cámara de Neubauer

Cubrehematimetro

Microscopio

Gasas

SUSTANCIAS

Alcohol al 70%

Sangre venosa

Liquido de Hayem

PROCEDIMIENTO

1. Una vez seleccionada, se desinfecta la zona con alcohol al 70%, y se practica punción venosa. La sangre es recogida en un tubo lila con EDTA

2. Colocar el tubo de plástico y la boquilla para aspirar en la pipeta






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



3. Llenar la pipeta de glóbulos rojos con sangre hasta la marca 0.5 para realizar una dilución de 1/200, y si se carga hasta 1, la dilución será 1/100. Limpiar la punta con gasa o papel absorbente. Si la sangre se pasa de la marca, se puede absorber con gasa el excedente

4. Introducir la pipeta en el tubo o frasquito que contiene el diluyente (Hayem) y llenar de líquido de dilución

hasta la marca de 101






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



5. Se tapa la punta con papel parafilm y se coloca en un rotador automático o se hace rotar manualmente de 2-3 minutos

6. Destapar la pipeta y descartar 3 a 4 gotas del tallo, luego colocar una gota pequeña cerca de un extremo de

la cámara para que por capilaridad se llene exactamente. Dejar 2 minutos que los eritrocitos se sedimenten

7. Colocar en la platina del microscopio y enfocar la cuadricula a 10x. Luego con el objetivo de 40x contar sobre el cuadro grande central de la cámara solo en 5 cuadrados pequeños: uno central y cuatro angulares (80 cuadritos del total)

8. En el recuento se incluyen las células que cubren o tocan por dentro o por fuera las líneas limitantes superior e izquierda en el cuadro pequeño de recuento y no se consideran los que estén en los límites inferior y derecho.






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Autorizo


Libero



Cámara de Neubauer, 10x

El rayado de la cámara de Neubauer cubierta de miles de eritrocitos, que destacan por su forma redonda y gran cantidad.

Cámara de Neubauer, 40x

8. Enfocando el cuadro central de los cuadros pequeños, se aprecian claramente los 16 cuadritos pequeños donde se tienen que contar los eritrocitos que hay en ellos.

RESULTADOS

Los recuentos de eritrocitos se expresan como concentraciones, que en este caso serían número de células por unidad de volumen de sangre, que es 1mm3 Después de contar los hematíes de los 5 cuadrados pequeños, se suman y con dicha cantidad de hace el siguiente cálculo: N° de hematíes x mm3 = altura x dilución x área N° de hematíes x mm3 = 1/10 x 1/200 x 1/5 = 1/10 000 N° de hematíes x mm3 = hematíes contados x 10 000 En el análisis hecho, el número de eritrocitos fue de 491, que al multiplicarse por 10 000 daba como resultado 4 910 000/mm3, lo que indica un índice normal pues el paciente era una mujer de 11 años de edad.






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



El líquido de dilución no solamente debe de diluir los eritrocitos hasta cifras legibles, sino que también permita identificarlos y que destruya otros elementos celulares que no son de interés en este momento. En general se puede usar cualquier solución isotónica como diluyente y pueden ser:

Soluciones de Gower Soluciones de Dace Solución salina de NaCl al 0.9%

Liquido de Hayem, el cual está formado de 5g de NaCl, 2.5g de Na2SO4, 2.5g de MgCl2 y agua destilada para un litro. Este último es el más usado.Es muy importante observar que en la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul.

Para realizar el conteo se enfoca con el objetivo 40x, y se localiza el cuadro central con el condensador bajo y luz débil. Para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadrados pequeños del retículo marcado en color rojo, contando las células en cada cuadro, en barrido o fila.

E. DETERMINACIÓN DE LEUCOCITOS Fundamento Para el conteo de leucocitos, se usan métodos sistemáticos que son más rápidos y precisos, y los métodos

manuales.

Todo método manual de recuento celular incluye 3 fases:

Dilución de la sangre






Elaboró


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Autorizo


Libero



Muestreo de la sangre diluida en un volumen

Recuento de células en ese volumen

Para el recuento de leucos se cuentan los 4 cuadrados de las esquinas, que corresponden a los campos 1, 3,7

y 9.

Para su dilución, se hace lo mismo que para los hematíes pero empleando la pipeta de blancos, de modo que la

solución que obtenemos es de 1/20. Se utiliza como diluyente el líquido de Turk. El líquido de Turk es hipotónico

de modo que se destruyen los hematíes y así no entorpecen en el recuento.

El líquido de Turk consta de ácido acético glaciar 2ml, violeta de genciana disolución de 1% 1ml y agua destilada

en cantidad suficiente para 1000ml. Deberá filtrarse a menudo para evitar levaduras y hongos.

En un principio es un poco difícil distinguir los leucocitos de los restos de membranas de los hematíes

hemolizados. Se debe tener en cuenta que los leucocitos son más refringentes (más brillantes) al moverlo con el

microscopio que los restos de hematíes. Se debe observar la presencia de la membrana citoplasmática y de la

membrana nuclear (a veces más) como líneas finas y brillantes. Esto se observa fácilmente moviendo el

microscopio hacia delante y hacia atrás

Técnico laboratorista MATERIAL

Pipeta de Thoma para glóbulos blancos (perla blanca)

Equipo para venopunción (Tubo lila)

Boquilla blanca

Tubo de goma

Tubos de ensayo

Papel parafilm

Cámara de Neubauer

Cubrehematimetro

Microscopio

Gasas






Elaboró


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Autorizo


Libero



SUSTANCIAS

Alcohol al 70%

Sangre venosa

Liquido de Turk PROCEDIMIENTO 1.Una vez seleccionada, se desinfecta la zona con alcohol al 70%, y se practica punción venosa. La sangre es recogida en un tubo lila con EDTA

2. Colocar el tubo de plástico y la boquilla para aspirar en la pipeta

2.Llenar la pipeta de glóbulos blancos con sangre hasta la marca 0.5 para realizar una dilución de 1/20. Limpiar la punta con gasa o papel absorbente. Si la sangre se pasa de la marca, se puede absorber con gasa el excedente

3 Introducir la pipeta en el tubo o frasquito que contiene el diluyente (liquido de Turk) y absorber hasta la marca 11, no deben quedar burbujas.






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



4. Se tapan ambos extremos de la pipeta con papel parafilm y se coloca en un rotador automático o se hace rotar manualmente de 2-3 minutos

5. Montar la laminilla de vidrio en la cámara para recuento. Debe estar limpia y seca.

7. Destapar la pipeta y descartar 3 a 4 gotas del tallo, luego colocar una gota pequeña cerca de un extremo de la cámara para que por capilaridad se llene exactamente.

6.Dejar 3 minutos que los leucocitos se sedimenten






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



7. Colocar en la platina del microscopio y enfocar la cuadricula a 10x. Y contar en los 4 cuadrados angulares.

10. En el recuento se incluyen las células que cubren o tocan por dentro o por fuera las líneas limitantes superior e izquierda en el cuadro pequeño de recuento y no se consideran los que estén en los límites inferior y derecho.

RESULTADOS

Los recuentos de leucocitos, al igual que los eritrocitos, se expresan como concentraciones, que en este caso

serían número de células por unidad de volumen de sangre, que es 1mm3

Después de contar los glóbulos blancos de los 4 cuadrados angulares, se suman el total de ellos y con dicha

cantidad de hace el siguiente cálculo:

N° de leucocitos x mm3 = altura x dilución x área

N° de leucocitos x mm3 = 1/10 x 1/20 x 4 = 1/10 000

N° de leucocitos x mm3 = 4/200 = 1/50

N° de leucocitos x mm3 = N° de leucocitos contados x 50

En el análisis hecho, los resultados de la cuenta de células quedaron así por casilla:






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



El número de leucocitos fue de 111, que al multiplicarse por 50 daba como resultado 5 550/mm3, lo que indica

un índice normal, sin embargo apenas y supera el mínimo, pues el paciente era un hombre, de 41 años de edad.

Existen dos grandes tipos de estos glóbulos:

Polimorfonucleares:

· Basófilos

· Eosinófilos

· Neutrófilos

Mononucleares:

· Linfocitos (células T y células B)

· Monocitos

El recuento leucocitario representa el número de leucocitos en un litro de sangre completa. La cuantificación o

recuento de leucocitos es muy importante para el diagnóstico de enfermedades.

Un bajo número de glóbulos blancos se denomina leucopenia y puede deberse a:

· Insuficiencia de la médula ósea (por ejemplo: debido a infección, tumor o cicatrización anormal).

· Enfermedades vasculares del colágeno (como el lupus eritematoso sistémico).

· Enfermedad del hígado o el bazo.

· Radioterapia o exposición a la radiación.

Un alto número de glóbulos blancos se denomina leucocitosis y puede deberse a:

Anemia.

Tumores de la médula ósea.

Enfermedades infecciosas.

Enfermedad inflamatoria (como artritis reumatoide o alergia).

Leucemia.

Estrés emocional o físico intensos.

Daño tisular (por ejemplo, quemaduras).

Es muy importante comentarle al médico acerca de cualquier medicamento que se esté tomando, incluyendo

productos de venta libre. Ciertos fármacos pueden interferir con los resultados del examen, como Sulfonamidas,

Alopurinol, Ácido acetilsalicílico (aspirina), cloroformo, corticosteroides, epinefrina, heparina, quinina o

triamtereno






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Libero



La cámara de Neubauer o hemocitómetro es una lámina portaobjeto gruesa, en cuyo centro se hayan dos

superficies cuadriculadas iguales, separadas del resto de la lámina por surcos y dos barras transversales algo

más elevadas.

Una laminilla cubreobjetos ópticamente plan, que al colocarse sobre las barras elevadas de la lámina forma una

cámara entre el cubreobjetos y la superficie cuadriculada, teniendo una altura de 0.1mm

En la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y leucocitos son diferentes, como se muestra en

la imagen.

.






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F. PLAQUETAS

Fundamento Los trombocitos o plaquetas constituyen una parte esencial del organismo hemostático del cuerpo. Son

cuerpecillos hialinos incoloros que miden de 2-4 μ, de bordes irregulares, pero pueden tener forma esférica u

ovalada, carecen de núcleo y son muy frágiles. Provienen de una célula gigante que mide de entre 50-100 μ de

diámetro llamada megacariocito.

Una de las principales funciones de las plaquetas es participar en los mecanismos de la hemostasia

(Hemos=sangre, stasis=detención) adhiriéndose entre ellas y a las paredes de los vasos sanguíneos lesionados,

para formar así el trombo plaquetario o tapón hemostático.

El líquido diluyente puede ser una solución estéril de p-aminobenzoato de dietilaminoetilo (85 milimolar) y cloruro

de sodio (31 milimolar). Este líquido se provee listo para usar y su conservación es indefinida en refrigerador (2 -

10° C) o puede ser también oxalato de amonio al 1%. El fundamento del método consiste en la producción de

hemólisis por la utilización de un líquido hipotónico, y el mantenimiento de las plaquetas intactas y sin agrumar

por la presencia de p-aminobenzoato de dietilaminoetilo.

Técnico laboratorista MATERIAL

Pipeta de Thoma para glóbulos rojos (perla roja)

Equipo para venopuncion (Tubo lila)

Boquilla roja

Tubo de goma

Tubos de ensayo

Papel parafilm

Cámara de Neubauer

Cubrehematimetro

Microscopio

Gasas

Caja de Petri

Papel filtro






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SUSTANCIAS

Alcohol al 70%

Sangre venosa

Diluyente de plaquetas

PROCEDIMIENTO 1. Obtener 10 ml de sangre venosa, en un tubo con anticoagulante EDTA

2. Agitar la sangre de manera suave en el tubo para mezclarla con el anticoagulante

3. Llevar la sangre hasta la marca 1.0 de la pipeta de Thoma. Limpiar la punta con una gasa

4. Aforar con liquido diluyente de plaquetas hasta la marca 101 de la pipeta (Dilución 1:100)

5. Tapar los extremos con papel parafilm y mezclar durante 1 minuto

6. Colocar la Cámara de Neubauer sobre una superficie horizontal y poner el cubrehematímetro sobre las

mesetas

7. Descartar las primeras 4 gotas de la pipeta. Con la quinta gota cargar la cámara, depositándola entre la

meseta y el cubrehematímetro y dejarla difundir por capilaridad, teniendo cuidado de que no se formen

burbujas o se derrame el líquido hacia los surcos






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Autorizo


Libero



8. Colocar la cámara de Neubauer ya cargada en el interior de una caja de Petri, con papel filtro humedecido

en agua para evitar la evaporación, dejar en reposo de 10 a 15 minutos

9. Observar al microscopio contando en la cuadricula central (para glóbulos rojos) las plaquetas que aparecen

mucho más pequeñas que los hematíes, redondas, alargadas u ovales, altamente refringentes

10. El cuadro central de la cuadricula mide 1.0 mm por lado y está dividido en 16 cuadritos más pequeños, de tal

manera que el número total de estos últimos es de 400, mismos en los que se lleva a cabo el recuento de

plaquetas.

RESULTADOS

Los recuentos de plaquetas, al igual que los eritrocitos y leucocitos, se expresan como concentraciones, que en

este caso serían número de células por unidad de volumen de sangre, que es 1mm3

Después de contar las plaquetas presentes en los 400 cuadritos centrales, el número obtenido se multiplica por

el factor de dilución de la siguiente manera:

N° de plaquetas x mm3 = No. De plaquetas contadas X dilución X 10

Dilución: 1:100

Este factor corresponde, para obtener los resultados por mm3 ya que el volumen de la cámara es de 0.1 mm3

El número de plaquetas fue de 535, por lo que al realizar los cálculos quedaron así:

No. de plaquetas = 535 X 100 X 10= 535 000 plaquetas por mm3, lo que indica un índice elevado de plaquetas.






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CONCLUSIÓN

El recuento de plaquetas es de suma importancia y es parte del recuento celular de la sangre como prueba de

rutina.

El paciente con un trastorno hemorrágico, clínicamente significativo, acude al médico con algunos tipos de

síntomas hemorrágicos, con lo que se puede indicar la parte defectuosa del mecanismo de coagulación, y dentro

de estas causas pueden estar la cantidad inadecuada de plaquetas.

La hemorragia de vasos sanguíneos subcutáneos en piel intacta se puede ver como petequias o equimosis.

Cuando se encuentran equimosis en gran cantidad y sin traumatismo aparente, el trastorno se conoce como

Diátesis Hemorrágica y puede ser producida por anormalidades en los vasos sanguíneos, por la disminución en

el número de plaquetas o por el mal funcionamiento.

La disminución de plaquetas se denomina Trombopenia o púrpura trombocitopénica y se debe a lo siguiente:

· Enfermedades autoinmunitarias (el organismo produce anticuerpos contra sus propias plaquetas)

· Aplasia medular

· Radioterapia y quimioterapia por cáncer

· Leucemia aguda

· Coagulación intravascular diseminada

· Anemia hemolítica microangiopática

· Hiperesplenismo

· Púrpura trombocitopénica idiopática

· Prótesis de válvula coronaria

· Transfusión de sangre

· Choque anafiláctico

· Algunas infecciones víricas

· Algunos fármacos

Y el aumento se denomina trombocitosis:

· Anemia por déficit de hierro

· Traumatismos

· Tumores

· Trombocitosis esencial

· Policitemia vera






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· Leucemia mieloide crónica

· Tras esplenectomía

· Enfermedad de Kawasaki

G. FACTOR DE CRECIMIENTO PLAQUETARIO

Fundamento

Los F.C.P. actúan como señales celulares que se unen a receptores de membrana para activar las funciones

celulares; son mediadores biológicos que regulan funciones esenciales en la regeneración y reparación tisular

tisular: quimiotaxis, mitosis.

El objetivo de la técnica que presentamos es acelerar la cicatrización y reducir el tiempo de recuperación de la

regeneración ósea y tisular, la síntesis de hueso nuevo y la reparación de otros tejidos blandos, en las áreas en

las que se lleva a cabo la cirugía; mediante la infiltración de factor de crecimiento plaquetario activado.

Técnico laboratorista MATERIAL Y EQUIPO

Tubos de vacío estériles de 4.5 cc que contengan anticoagulante (citrato de sodio al 3.2%)

Tubo seco estéril

Jeringa estéril

Jeringa de 1 mL

Jeringa de 10 mL

Cloruro de calcio al 10%

Centrifuga

PROCEDIMIENTO






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1. Se realiza la extracción de sangre, preferentemente con el método de vacutainer o palomita y tubos de

vacío con citrato de sodio al 3.2%. La cantidad de sangre necesaria dependerá de las áreas a tratar;

generalmente ésta cantidad oscila entre 6 y 8 tubos.

Estos tubos con la sangre extraída se agitan ligeramente para formar una buena mezcla con el citrato sódico y

evitar la coagulación sanguínea.

2. Posteriormente se colocan los tubos en número par y simétricamente en la centrífuga durante 10 min. A

1200 rpm a temperatura ambiente.

3. Una vez finalizada la centrifugación, podemos observar en estos tubos, una separación de porciones que

quedan organizadas de la siguiente manera:

Una porción clara superior, que corresponde a las plaquetas. Su cantidad es variable de unos individuos a otros

y suele ser la mitad del contenido aproximadamente.

Una porción estrecha intermedia que corresponda a la serie blanca, de 1 mm de grosor aproximadamente.

Una porción roja, inferior, que corresponde a la serie roja y que corresponde a un 45% del total

aproximadamente.

Es importante destacar que todos aquellos tubos que después de centrifugados presentan un aspecto turbio

deben ser desechados, ya que en ellos se ha producido una hemólisis debido a una extracción defectuosa de la

sangre por lesión del vaso sanguíneo, lo que produce una liberación excesiva de tromboplastina tisular.

4. Utilizaremos la porción superior, correspondiente a la serie plaquetaria, la cual dividiremos en 3

fracciones iguales que numeramos de 1 a 3 comenzando por la parte superior, es decir por lo más lejana

a la serie roja. Cada una de estas fracciones suele suponer un total de 0.5 a 1 cc.

Fracción 1: fracción superior: Es las más pobre en plaquetas y por consiguiente también pobre en factores de

crecimiento; los definimos como P.P.G.F.(plasma pobre en plaquetas)

Fracción 2: tercio intermedio: Presenta una porción de plaquetas muy similar a la que existe en la sangre

periférica y la definimos como P.G.F.(plasma con factores de crecimiento)

Fracción 3: tercio inferior: Se encuentra intermediamente por encima de la serie blanca. Corresponde la porción






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más rica en plaquetas y por tanto en factores de crecimiento plaquetario, y lo definimos como P.R.G.F (plasma

rico en factores de crecimiento).

5. A continuación separaremos el plasma obtenido en estas tres fracciones; con una jeringa estéril

extraemos la primera fracción o tercio superior (fracción 1), de aproximadamente cc. Esta porción es rica

en plaquetas y factores de crecimiento, por lo cual, no la utilizaremos.

6. Posteriormente tomaremos la fracción 2 y con la pipeta la pasamos a un tubo estéril y a continuación la

fracción 3, que es la parte más rica en plaquetas y factores de crecimiento que pasamos también al tubo

estéril.

7. Una vez obtenidas las fracciones 2 y 3 (P.G.F. Y P.R.G.F) se produce a la activación de fibrinógeno. Por

ello se añaden en la jeringa de 1 mL 0.05cc de Cloruro de Calcio al 10% por cada 1 cc de plasma rico en

plaquetas y factores de crecimiento.

8. Se procede a juntar ambos componentes en la jeringa de 10 mL.

9. El médico realiza la infiltración, con una asepsia previa a la zona afectada

H. GRUPO SANGUÍNEO

Fundamento

El sistema de grupo sanguíneo ABO, descubierto y descrito por primera vez por Landsteiner, von De Castello y

Esturli en 1901, consta de cuatro grupos principales: A, B, AB Y O. El grupo ABO de un individuo esta en gran

parte determinado por la herencia de los genes.

Un individuo adulto normal cuyos glóbulos rojos carezcan de antígenos A, B, tiene los anticuerpos

correspondientes en el suero.

Estos anticuerpos pueden ocasionar reacciones hemolíticas postransfusionales grave, por lo que se requiere

que tanto los glóbulos rojos del receptor de la transfusión como del donante sean debidamente analizadas en lo

que se refiere a la presencia de antígenos A y B.







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MATERIALES

Porta objetos limpio

Aplicadores de madera

Muestra: suspensión de hematíes en suero, plasma o sangre capilar, en este caso se utilizará lanceta

estéril para su obtención

Reactivos de grupo sanguíneo a temperatura ambiente: Anti-A, Anti_B, Anti_AB y Anti_D (RH)

TÉCNICA

Laboratorista

1. Preparar la suspensión de hematíes (muestra con anticoagulante EDTA) u obtenerla por punción

cutánea con lanceta estéril.

2. Depositar la muestra en un portaobjetos identificado 4 gotas separadas

3. Depositar el reactivo a un lado de la gota de muestra: Anti-A, Anti_B, Anti_AB y Anti_D (RH)

respectivamente

4. Mezclar con el aplicador la muestra y el reactivo cuidando no mezclar entre gota y gota.

5. Dejar agitar y leer macroscópicamente después de 4 min sobre una luz difusa y no confundir las

fibras de fibrina con aglutinación.

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Positivo: La aglutinación constituye un resultado positivo y dentro de las limitaciones aceptadas para el

procedimiento de la técnica, indica la presencia apropiada de antígeno ABO en los hematíes.

Negativo: La ausencia de aglutinación de hematíes constituye un resultado negativo y dentro de las limitaciones

aceptadas para el procedimiento de la técnica, indica la ausencia del antígeno apropiado en los hematíes.

GRUPO DIRECTO FENOTIPO

A B AB ABO

+ 0 + A






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Libero



0 + + B + + + AB 0 0 0 O

6.15 COAGULACION

A. DETERMINACION DEL TIEMPO DE PROTROMBINA

Fundamento

El proceso de coagulación se desencadena mediante la incubación del plasma con cantidades óptimas de

tromboplastina y calcio; se mide el tiempo trascurrido hasta la formación del coágulo de fibrina. TriniCLOT PT

Excel es un reactivo de tromboplastina tisular (cerebro de conejo), que se utiliza en el análisis de tiempo de

protrombina modificado de una fase

Procedimiento:


1. Calentar previamente un volumen suficiente de TriniCLOT PT Excel reconstituido a 37° C (O.2 mL por

análisis). Tomar las precauciones necesarias para imperdir la evaporación y no mantener a 37° C sin

tapon durante mas de 60 minutos antes del uso

2. Etiquetar un tubo de ensayo para cada muestra (paciente y control del análisis)

3. Agregar 0.1 mL de muestra control al tubo apropiado

4. Incubar cada muestra y control a 37° C de 3 a 10 minutos

5. Agregar rápidamente 0.2 Ml de Triniclot PT Excel precalentado y al mismo tiempo iniciar la medición del

tiempo para

B. DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE TROMBOPLASTINA PARCIAL ACTIVADA

Fundamento






Elaboró


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Autorizo


Libero



La determinación del tiempo de tromboplastina parcial activada (TPT) es una prueba que se utiliza básicamente

para la evaluación del sistema endógeno de la coagulación. La incubación del plasma con una cantidad óptima

de fosfolípidos y un activador de superficie conduce a la activación de los factores del sistema endógeno de la

coagulación. Al añadir los iones de calcio se desencadena el proceso de coagulación. A continuación se mide el

tiempo trascurrido hasta la formación del coágulo.


Procedimiento:

1. Calentar previamente a 37º C un volumen suficiente de reactivo TriniCLOT Aptt s y CaCl2 TriniCLOT

2. Etiquetar un tubo de ensayo para cada muestra (paciente y control) a analizar

3. Pipetear 0.1 mL de muestra o control al tubo adecuado; a continuación, pipetear 0.1 mL de Reactivo

TriniCLOT aPTT S a cada tubo. Activar ada muestra y control a 37º C por 5 minutos.

4. Despues de la activación, pipetear inmediatamente a cada tubo 0.1 Ml de CaCl2 TriniCLOT aPTT S

previamente calentado e inicar simultáneamente el cronometraje para la detección de la coagulación

mediante un método de detección conveniente (sistema óptico.

Anotar el tiempo en segundos, transcurrido hasta que se detecta la coagulación.

6.16 SEROLOGIA E INMUNOLOGIA

A. DETERMINACIÓN DE PROTEÍNA C REACTIVA (PCR)

Fundamento

La proteína C reactiva fue descrita por Tillet y Francis en 1930. Concluyeron que el suero de los pacientes que

sufrían de alguna infección aguda precipita con un extracto no protéico de pneumococo llamado polisacárido C

en presencia de iones calcio.


Material:

Cronómetro






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



Agitador

Tubos de prueba y agitador de tubos (opcional)

Suero

Pipetas serológicas

Placas de plástico con 6 celdas

Procedimiento:

1. Llevar las muestras y reactivos a temperatura ambiente.

2. Agite suavemente el frasco del reactivo de látex para dispersar y resuspender las partículas de látex.

3. Añada una gota de la muestra del paciente utilizando una de las pipetas desechables, en un círculo de la

placa. También coloque una gota de los controles negativo y positivo.

4. Mezcle suavemente el contenido del frasco de látex incluyendo el contenido del gotero de vidrio.

5. Mezcle ambas gotas con pipetas mezcladoras desechables incluidas, cubriendo por completo la

superficie del círculo.

6. Agite manualmente la placa por 2 min

7. Después de 2 min, examine cada círculo para observar la ausencia o presencia de aglutinación.

B. DETERMINACIÓN DE HCG (prueba en tira) SUERO/ORINA

Fundamento

La gonadotropina Coriónica humana es una hormona glucoprotéica secretada para desarrollar la placenta casi

inmediatamente después de la fertilización. La aparición y el rápido incremento de la concentración de hCG en la

orina y suero de la mujer lo hace un excelente detector del embarazo

El dispositivo de ensayo cromatográfico contiene un único set de oro conjugado y anticuerpos inmovilizados

monocionales y policionales que son usados para distinguir visiblemente las concentraciones ≥ 25 mlU/mL en la

prueba en aproximadamente en 5 min. La muestra corre a través de la membrana absorbente. Si la hCG está

presente la membrana producirá una línea rosa en la zona de muestra y otra línea rosa en la zona de control.


Procedimiento de la prueba:

1. Lleve la bolsa de prueba a temperatura ambiente. Para comenzar la prueba, abra la bolsa sellada.

2. Sumerja la tira en la orina o suero con la flecha apuntando hacia la muestra, hasta que se impregne bien,






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



C T C T

3. Coloque la tira en una superficie no absorbente

4. Espere a que las bandas de color aparezcan.Dependiendo de la concentración de hCG en la muestra de

ensayo, resultados positivos pueden observarse en tan solo 40 seg. Sin embargo para confirmar los

resultados negativos, es necesario leer después de un tiempo de reacción de 5 min.

Interpretación de resultados:

Negativo: Sólo una banda de color aparece en la región de control

Positivo: dos bandas distintas de color aparecen en la zona de control y en la zona de prueba.

Invalido: ninguna banda visible.

C. PRUEBA PRESUNTIVA DE VIH

Fundamento

El síndrome de inmunodeficiencia adquirida (SIDA) es una enfermedad infecciosa de origen viral que se

manifiesta mediante un déficit profundo de la inmunidad celular.

Dos tipos de virus relacionados con el grupo de los lentivirus se han aislado de los linfocitos de pacientes

afectados de sida o de sus pródromos. El primero, denominado VIH-1, se aisló en Francia y después en Estados

unidos. El segundo, denominado VIH-2, se aisló en dos enfermos de origen africano y resulto ser responsable

del nuevo foco de SIDA en África Occidental

Procedimiento

1. Abrir la bolsa y sacar el cartucho(la muestra debe depositarse 20 minutos siguientes a la apertura de la

bolsa)

2. Colocar el cartucho sobre una superficie plana y horizontal, con la zona circular de depósito de la muestra

orientada hacia el operador

3. Deposito de la muestra.

Protocolo Plasma/Suero: Depositar en la zona circular destinada a la muestra 3 horas de la muestra con la

ayuda de la pipeta de plástico suministrada con el kit, o bien 80µl con la ayuda de una pipeta automática

C T C T

POSITIVO NEGATIVO INVALIDO






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Revisó


Autorizo


Libero



C T C T

Protocolo Sangre venosa: Depositar en la zona circular destinada a la muestra 2 gotas de sangre con la ayuda

de la pipeta de plástico suministrada con el kit o bien 80 µl de sangre con la ayuda de una pipeta automática y

después de añadir 2 gotas de diluyente con la ayuda del frasco cuentagotas suministrado con el kit (80µl).

Protocolo para la sangre capilaria: Según las practicas del laboratorio del CEMA utilizar una lanceta y una pipeta

sin anticoagulante para extraer una muestra de sangre capilar al nivel del dedo. Depositar 80 µl de sangre en la

zona de depósito del dispositivo y añadir 2 gotas del diluyente gracias al uso del cuentagotas del kit. Evitar todo

desbordamiento en la zona circular del depósito de la muestra o del diluyente.

4. Lectura: La lectura visual se realiza entre 10 y 30 minutos después del último deposito(muestra o

diluyente)

5. Interpretación y análisis de los resultados

6.17 PARASITOLOGIA Y COPROANALISIS

A. DETERMINACION DE SANGRE OCULTA EN HECES

Fundamento

La detección de sangre oculta en heces es crítica para muchas enfermedades gastrointestinales. La presencia

de sangre en materia fecal puede indicar patologías gastrointestinales tales como hemorroides, diverticulitis,

fisuras, colitis o cáncer colorectal. Afortunadamente estas condiciones pueden ser detectadas con varias

metodologías diagnosticas disponibles las cuales incluyen pruebas en heces para sangre oculta, examinaciones

físicas completas con examinación digital y proctosigmoidoscopÍa.

LICON Hemascreen está compuesto de un papel impregnado de guayaco encerrado en una tarjeta, con lo que

se permite la aplicación de la muestra de un lado y el desarrollo e interpretación al reverso. El proceso involucra

la colocación de 2 muestras colectadas a partir de 3 evacuaciones sucesivas, dentro del papel de guayaco.

Material

Placas Hemascreen con una placa para monitoreo

Revelador Hemascreen

C T C T

POSITIVO NEGATIVO INVALIDO






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Libero



Aplicadores de muestra

Procedimiento

1. Colocar la información requerida en la tapa frontal de la placa Hemascreen

2. Abra la tapa frontal

3. Utilizando un extremo del aplicador, colecte una pequeña cantidad de muestra. Aplique una capa muy

delgada en la ventana 1

4. Utilice el otro extremo del aplicador para obtener una segunda muestra a partir de una porción diferente

de la muestra de heces. Aplicar una capa muy delgada enla ventana 2

5. Permitir que las muestras se sequen al aire, después cierre la cubierta

6. Abra la ventana perforada en la parte trasera de la placa

7. Aplicar 2 gotas de revelador Hemascreen en la parte trasera de las ventanas 1 y 2

8. Lea el resultado después de 30 segundos y durante 2 minutos

9. Registre los resultados, cualquier traza de color azul, dentro o fuera del margen de la muestra, indica un

resultado positivo para sangre oculta.

B. EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO

Fundamento

El método coproparasitóscopico directo es el mas antiguo que se conoce y fue el primero. Utilizado por

Antonio Van Lewenhooke en el siglo XVIII observando trofosoitos de Giardia Lambía.

Un examen coproparasitoscopico es el estudio de material fecal para la búsqueda e identificación de formas

parasitarias. Puede ser cualitativa o cuantitativa.

En este estudio, el material fecal mas utilizado es el recién obtenido por expulsión natural del paciente, ya

sean bien formadas o ecuaciones diminutas en consistencia con moco o sangre. Este método es de gran

utilidad para la detección en fresco de trofozoitos de Entamoeba histolitica, Giardia lamblia y Balantidium coli.






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En la suspensión teñida con lugol se puede identificar con facilidad quistes de protozoos.

Material

Portaobjetos

Cubreobjetos

Pipeta Pasteur

Vaso de precipitado

Microscópico

Sustancias

Sol. fisiológica al 0.95

Sol.de yodo.

Muestra biologica

Heces fecales frescas.

Procedimiento

1. Sobre un portaobjetos se coloca una pequeña porción de material fecal.

2. Se coloca un gota de solución fisiológica.

3. Se coloca el cubreobjetos.

4. Observamos sin teñir.

5. En otro portaobjetos limpio se repite el mismo procedimiento pero ahora se tiñen con la tinción de yodo.

6. La observación se hace siempre con el objetivo seco débil 10x y con poca luz, al encontrarse con

estructuras sospechosas, se observa con el objetivo seco fuerte 40x.






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Libero



Nota

Es importante que los frotis no sean densos, si no transparentes. Y que se haga la observación con diferentes

muestras.

Tras la observación de los trofozoitos se utiliza la tinción de yodo que tiñe quistes y destaca sus de talles. Los

trofozoitos mueren y se hacen identificables

6.18 UROANALISIS

A. TIPOS DE MUESTRAS PARA ANALISIS DE ORINA

Estas dependerán del propósito del estudio.

Al azar: con propósito cribado.

La primera de la mañana: con propósito cribado, pruebas de embarazo y determinación de proteínas.

En ayunas (segunda de la mañana): detección y control de diabetes.

Prueba postprandial a las 2 horas: control de diabetes.

24 horas o en tiempo establecido: pruebas químicas cuantitativas.

Por cateterismo: para cultivo bacterial.

Muestra limpia de chorro medio: cribado o cultivo de bacterias.

Aspiración supra púbica: citología o cultivo bacteriano.

Recolección en tres frascos: para infección prostática.

B. INDICACIONES EN LA RECOLECCIÓN DE MUESTRAS URINARIAS.






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Flebotomista, personal de recepción

El personal de recepción debe indicar al paciente las condiciones adecuadas y la asepsia previa (de ser

necesario) para la recolección de muestras urinarias. En caso de existir alguna duda en cuanto a la recolección

de las muestras el personal de recepción deberá consultar al profesional de laboratorio para aclarar ciertas

dudas.

Indicar al paciente que la muestra se debe depositar en un recipiente limpio y seco, de preferencia estéril,

desechable proporcionado por el laboratorio.

Explicar brevemente al paciente el método correcto de recolección de muestras urinarias dependiendo

del tipo de estudio a realizar o en su defecto a la patología presentada por el paciente.

Los frascos deberán ser identificados por el paciente, ya sea con etiqueta o con marcador indeleble y el

profesional de laboratorio debe corroborar estos datos con el paciente. Si el paciente olvido rotular las

muestras, estas deberán ser rotuladas por el personal de laboratorio al momento de ser recibidas.

C. MANEJO Y TRANPORTE MUESTRAS URINARIAS


Los frascos deberán haber sido llenados con precaución evitando derrames por sus costados y

contaminación.

Toda muestra de orina debe manipularse con guantes y transportarse en contenedores con tapa rosca,

dentro de cajas o hieleras especiales en posición vertical jamás debe transportarse una muestra dentro

de un bolsillo o en la mano.

Una vez obtenidas las muestras que se han considerado dentro de los parámetros correspondientes, se

efectuará el proceso de las mismas.






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D. EXAMEN GENERAL DE ORINA

Fundamento

El examen general de orina (EGO) es una prueba de gran importancia para el clínico y para el paciente

mismo, sin embargo esta área, al igual que la del coprologico, son vistas con cierto recelo, esto se debe al

tipo de muestra que en ellas se analizan. Para algunos químicos, no pasa de ser una simple rutina

engorrosa, donde lo único que se puede realizar es la lectura de tiras y la vista al microscopio, pero el

uroanálisis es algo más que la simple impregnación de la tira y la observación del sedimento, es la aplicación

de todos nuestros conocimientos y el empleo de todos nuestros recursos dentro del laboratorio para

proporcionar al médico y al paciente resultados de y con calidad.

El análisis de orina realizado en el laboratorio clínico, puede proporcionar una información amplia, variada y

útil del riñón de un individuo y de las enfermedades sistémicas que pueden afectar este órgano excretor. Por

medio de este análisis, es posible elucidar tanto desórdenes estructurales (anatómicos) como desórdenes

funcionales (fisiológicos) del riñón y del tracto urinario inferior, sus causas, y su pronóstico. La realización

cuidadosa del examen de orina, por parte del laboratorio, ayuda al diagnóstico diferencial de numerosas

enfermedades del sistema urinario. Usualmente, los datos de laboratorio obtenidos por medio de este

análisis, se logran sin dolor, daño o tensión para el paciente

Explicación de las tiras reactivas.

Las tiras reactivas para uroanálisis son bases plásticas en las que hay adheridas diversas áreas reactivas

para determinar Glucosa, Bilirrubina, Acetona, Densidad, Sangre, pH, Proteínas, Urobilinógeno, Nitritos y

Leucocitos.

Los resultados obtenidos por las tiras reactivas proporcionan información referente al metabolismo de

carbohidratos, función hepática y renal, balance ácido-base e infecciones del tracto urinario.

Las tiras reactivas están listas para utilizarse y son desechables. Estas pueden ser leídas visualmente

aunque existen presentaciones que pueden ser leídas instrumentalmente empleando autoanalizadores .

Las instrucciones deben seguirse correctamente, considerando los tiempos de espera para cada parámetro

así como los procedimientos de almacenaje y utilización.

Los valores mínimos detectables para la mayoría de las tiras se resume en la tabla correspondiente.

Valores mínimos detectables de las tiras reactivas.

Es posible no encontrar una concordancia exacta entre el resultado determinado de manera visual sobre las

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http://www.monografias.com/trabajos14/nuevmicro/nuevmicro.shtml






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Libero



tiras y el resultado obtenido por algún método instrumental, esto puede deberse a las diferencias inherentes

entre la percepción del ojo humano y el sistema óptico del instrumento.

El análisis de orina húmedo o rutinario, proporciona, a costos razonables, un tamizaje adecuado para la

detección de anormalidades químicas y morfológicas presentes en la orina. Este procedimiento se compone

de dos partes:

1. Un análisis macroscópico, en el cual se determinan las características fisicoquímicas (apariencia,

gravedad específica y la medición de los constituyentes químicos por medio de la tira), y

2. Un examen microscópico del sedimento, en campo claro o contraste de fases, para verificar hematuria,

piuria, cilindruria, cristaluria, y otros signos. Por medio de este simple examen de orina, un uromicroscopista

experimentado puede detectar y monitorear muchas entidades que afectan al riñón y al tracto urinario inferior

Los colores de la orina

Amarillo ámbar: Es el color normal. Está producido por la eliminación de sustancias llamadas urocromos (que

colorean la orina) normalmente presentes en la orina (vitaminas, colorantes vegetales, etc.) Cuando la orina

está concentrada (el riñón normal está ahorrando agua), la tonalidad se oscurece. Si la orina está muy diluida

(el riñón normal está eliminando un exceso de agua), la tonalidad se aclara hasta hacerse practicamente

incolora.

Rojo: Puede ser normal luego de la ingesta de remolacha, o la eliminación de ciertos medicamentos como la

rifocina (es un antibiótico, ver siempre el prospecto de los medicamentos que se toman, ya que allí se notifica

cuando pueden producir cambios en el color de la orina). Finalmente el color rojo puede ser por la presencia

de sangre. Una sola gota de sangre puede colorear un litro de orina.

Verde: La bacteria pseudomona, cuando infecta las vías urinarias agrega azul al color normal de la orina, y la

vemos verde.

Marrón caoba: La eliminación de bilirrubina en exceso produce esta coloración. Se observa en la obstrucción

de las vías biliares, en la hepatitis, en intoxicaciones hepáticas.

Transparente: Se produce cuando se bebe una gran cantidad de agua y no se suele comer nada más en

cualquier hora del día. Si se ha comido algo, el color es transparente algo enturbiado.

Sedimento urinario

Elementos formes del sedimento urinario

http://www.monografias.com/trabajos7/sepe/sepe.shtml

http://www.monografias.com/trabajos4/costos/costos.shtml

http://www.monografias.com/trabajos13/mapro/mapro.shtml

http://www.monografias.com/trabajos15/la-estadistica/la-estadistica.shtml

http://es.wikipedia.org/wiki/Hematuria

http://piuria.blogspot.com/

http://salud.doctissimo.es/diccionario-medico/cilindruria.html

http://www.enciclopedia-medicina.com21x.com/info/medicina-familiar/CRISTALURIA-Enciclopedia-basica-de-medicina-familiar_310271921_p.html






Elaboró


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Autorizo


Libero



El sedimento normal se halla prácticamente vacío, aunque en ocasiones pueden observarse células de la vía

urinaria e incluso de los genitales externos, así como eritrocitos o leucocitos aislados, cristales, sales

amorfas o filamentos de moco, resultando el resto de los elementos de probable origen patológico. Los

componentes patológicos que se observan más a menudo son bastante inespecíficos y se evidencian en

diversas enfermedades de la vía urinaria.

Eritrocitos - Leucocitos - Epitelio - Cilindros - Cristales – Otros

Procedimiento

EXAMEN QUIMICO:

TECNICA: EMPLEO DE TIRAS REACTIVAS.

1-bilirribina: -

2-urobilinogeno: -

3-glucosa: -

4- proteinas: -

5-sangre: -

6- nitritos: -

7-ph: 5

8-densidad: 1030

9-leucocitos: +

ESTUDIO DEL SEDIMENTO:

TECNICA:

1- la muestra de orina debe examinarse de inmediato, ya que las células y cilindros comienzan a

desintegrarse en el termino de 1 a 3 horas.

2- Mezclar bien la orina

3- Colocar 10ml de orina en el tubo de centrifuga graduado

4- Centrifugar a 1800 rpm

5- Descartar el sobrenadante dejando solo el sedimento

6- Colocar una gota del sedimento en una lámina porta objeto y cubrirla con una lamina cubre objeto

evitando la formación de burbujas.

7- Observar al microscopio.






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



RESULTADOS

Oxalato de calcio: escasos x campo de 40X

Urato amorfo: escasos x campo de 40X

Bacterias: moderadas x campo de 40X

Leucocitos: 2 x campo de 40X

6.19 MANEJO DE DERRAMES EN EL LABORATORIO DE ANALISIS CLINICOS

Técnico laboratorista El derrame de cualquier sustancia dentro del laboratorio de análisis clínicos debe ser tratada en calidad de

sustancias altamente toxicas e infecciosas.

Preparar una solución de Hipoclorito de sodio al 0.5 % de acuerdo a las proporciones que deban

usarse para esta.

Limpiar el derrame con material absorbente y eliminar, luego desinfectar con una solución de

cloro al 0.5%.

Todos los procedimientos de preparación de soluciones y de limpieza de derrames deberán ser realizados con

guantes.






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Autorizo


Libero



6.20 LAVADO Y DESINFECCION

LIMPIEZA: Acción y efecto de limpiar, quitar imperfecciones, suciedad o los defectos de algo.

DESINFECCIÓN: Proceso mediante el cual por medio de sustancias químicas desinfectantes, se limpia y

acondiciona un espacio o superficie para su apropiado uso.

ESTERILIZACIÓN: Completa eliminación de toda forma de vida microbiana de objetos inanimados

Nunca debe de haber libros, carpetas o prendas de ropa en las mesas de trabajo. El cuaderno de

laboratorio o calculadora son los únicos elementos ajenos al material de laboratorio que se permite tener

en ella.

Mantener en todo momento la MESA de trabajo LIMPIA y en ORDEN: deben retirarse de ella todo el

material que no se esté utilizando o se vaya a utilizar inmediatamente; así mismo debe limpiarse

rápidamente cualquier resto de sustancias químicas o agua que por salpicaduras o derrames hayan

podido caer sobre de ella.

Manténganse igualmente LIMPIAS y en ORDEN las ÁREAS de uso COMÚN, como son balanza, mesas

de reactivos, campanas extractoras de gases, fregaderos, estanterías, etc.

Una vez utilizado, el material, se lleva un proceso de desinfección con cloro a 5000 p.p.m y se elimina.

Tener especial cuidado en el manejo de productos químicos.

6.21 ALMACENAJE DE MUESTRAS BIOLOGICAS

Técnico laboratorista Se consideraran activas todas las muestras sanguíneas que no presenten características fuera de los patrones

estándar de calidad y que sean útiles para el estudio solicitado dentro de un periodo de 7 a 30 días hábiles; se

conservaran en tubos cerrados en posición vertical, a una temperatura de 2 a 8°C refrigeradas, o hasta 12

horas a temperatura ambiente de 25°C.






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Revisó


Autorizo


Libero



En caso de muestras urinarias se consideraran activas cuando no presenten características fuera de los

patrones estándar de calidad, en un periodo no mayor a 3hrs. después de emitida, a temperatura ambiente de

25°C y no más de 24hrs. en refrigeración de 2 a 8°C.

Todas las muestras que se consideren activas y que se almacenaran deberán estar debidamente registradas.

6.22 MANEJO DE RED DE FRIO:

L a c adena de f r ío en e l l abo ra t o r i o de aná l i s i s c l ín i c os e s e l c on j un t o d e p r oc ed im ien tos nec es ar ios pa r a la conservación, distribución y manejo de los reactivos, plasmas y substancias dentro de las temperaturas apropiadas que garanticen su funcionalidad para las determinaciones correspondientes para el apoyo al diagnostico. El correcto funcionamiento de la cadena de frío marca la diferencia entre tratar al paciente con productos efectivos o con productos inútiles , esta diferencia puede significar la vida o salud de nuestros pacientes. PRODUCTOS QUE REQUIEREN LA CADENA DE FRIO:

Todos los reactivos de química clínica, serología, inmunología y demás productos que el fabricante exijan cierto rango de temperatura

Todos los insumos que en su envase indican como temperatura de almacenamiento el rango de 2 a 8°C o inferior.

Reactivos de laboratorio clínico que indican como temperatura de almacenamiento el rango de 2 a 8°C Unidades refrigerantes: Son depósitos de plásticos rellenos de un líquido especial y que se mantiene en el congelador de los refrigeradores. Hoja de control de temperatura: Es una hoja que se utiliza para llevar el control diario de la temperatura interna de cada refrigerador. Esta hoja se debe colgar en la parte externa de la puerta de cada refrigerador. El formato de control de temperatura que utilizamos para el registro de temperaturas en el laboratorio de análisis clínicos se encuentra en el sistema SIMART, y el procedimiento a seguir para su llenado es el siguiente

Se pondrá la fecha en el espacio correspondiente al formato Se realiza la lectura del termómetro calibrado y certificado y se registra la temperatura en el espacio

correspondiente al turno, fecha y grados c° observados en el termómetro Se verifica adecuadamente que la temperatura no rebase los limites indicados en las hojas de control y

de ser así se da aviso inmediato al personal de almacén para tomar las medidas correctivas necesarias. Se firma la hoja de registro de temperatura en el espacio correspondiente






Elaboró


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Autorizo


Libero



Para los días festivos o fines de semana en los que el laboratorio de análisis clínicos no tiene labores se acordó de manera oficial y por escrito con el personal de enfermería de guardias festivas el registro de temperatura de la red de frío del laboratorio clínico, el personal designado se describe a continuación;

L.E. Hernán Franco Escamilla (turno matutino y vespertino) L.E Evelia Soto Delgadillo (turno nocturno)

6.23 DESECHO DE MUESTRAS BIOLOGICAS

Técnico laboratorista La sangre como tejido hemático con todos sus elementos, solo en su forma líquida, así como sus derivados no

comerciales, incluyendo las células progenitoras, hematopoyéticas y las fracciones celulares o celulares de la

sangre resultante (hemoderivados), se considera dentro de los residuos peligrosos biológico-infecciosos. Las

muestras sanguíneas que se consideren inactivas deberán marcarse en la bitácora de registro con color rojo,

para indicar la baja de las mismas.

Se depositaran en los recipientes herméticos etiquetados en color rojo con el logotipo universal de

riesgo biológico (R.P.B.I), estos recipientes deberán ser llenados hasta el 80% de su capacidad.

El profesional de laboratorio hará el transporte de los contenedores de cierre hermético, hacia el almacén

general de residuos peligrosos biológico-infecciosos, siguiendo la ruta marcada para la recolección de los

mismos.

La orina no se encuentra dentro de la clasificación de residuos peligrosos biológico-infecciosos por lo cual

su desecho será a través del desagüe apropiado para este fin, posteriormente se vaciara en el mismo

una solución de cloro al 10%, los recipientes se sumergen en la misma solución para su posterior

desecho.






Elaboró


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Autorizo


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7.- CONTROL DE CALIDAD EN EL LABORATORIO CLINICO DEL CEMA

CALIDAD:

Se utiliza para señalar si un objeto, persona o servicio es bueno o malo.

CONTROL DE CALIDAD:

Se refiere a un método de control en la cual la calidad ocupa el primer lugar de importancia en la dirección de las

actividades y tomas de decisiones.

OBJETIVO DE LA CALIDAD:

Conduce a mejorar la productividad, eliminando la repetición de los trabajos, esto es, la necesidad de trabajar

más por qué se hizo mal la primera vez y la calidad no resulta satisfactoria.

CONTROL DE CALIDAD EN EL LABORATORIO CLINICO

El propósito del control de calidad es asegurar la confianza de la medición que se ha llevado a cabo en la

muestra del paciente, a su vez el control de calidad se divide en:

a) Control de calidad interno (intralaboral): Es el procedimiento que utiliza los resultados de un solo

laboratorio, con el proceso de controlar la calidad.

b) Control de calidad externo (interlaboral): Es el procedimiento que utiliza los resultados de varios

laboratorios que analizan la misma muestra con el propósito de controlar la calidad.

c) El control en calidad en Química clínica: Estudia los errores que son responsabilidad del laboratorio del

CEMA y los procedimientos utilizados para reconocerlos, minimizarlos y evitarlos. (Actualmente no aplica

internamente ya que no se cuenta con el equipo de química clínica)

d) El control en calidad en hematología: Procedimiento llevado a cabo con controles patológicos (alto y bajo)

y control normal.

e) El control en calidad en coagulometría: Procedimiento que realiza la medición de los controles de manera

repetitiva (10 mediciones) para obtener el valor del control normal y patológicos.






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



La función del laboratorio clínico es proporcionar datos cualitativos y cuantitativos del espécimen biológico para

ayudar a la prevención del diagnóstico y tratamiento de las enfermedades.

Los laboratorios deben tener un sistema para valorar la calidad de su trabajo, esta recomendación ha elegido

métodos de ensayos de la varianza de los resultados que persiguen, así como la satisfacción y seguridad de la

información veraz y completa sobre su calidad.

7.1 ETAPAS DE CONTROL DE CALIDAD EN EL LABORATORIO CLÍNICO DEL CEMA

Se refiere a los procedimientos que han diseñado para realizarse dentro del laboratorio, con el objetivo de

evaluar la funcionalidad de un laboratorio.

FASES DEL CONTROL DE CALIDAD:

FASE PREANALÍTICA

FASE ANALÍTICA

FASE POSTANALÍTICA

A) FASE PREANALÍTICA

Solicitud de exámenes

Indicaciones previas al paciente,

El estrés afecta muchos constituyentes, ejemplo: hormonas como la prolactina, cortisol y también se

altera la concentración de la glucosa.

El alcohol induce la composición de líquidos corporales y enzimas hepáticas.

Fumar afecta la amilasa, lipasa, colesterol y prueba de tolerancia a la glucosa.

Postura.

Ingesta de medicamentos.

La identificación completa del paciente debe incluir:






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



NOMBRE COMPLETO

FECHA DE NACIMIENTO

Datos para la localización (nombre o número de cama)

El médico solicitante debe identificarse con:

Nombre completo, dirección, cédula profesional

El tipo de material biológico, por ejemplo orina, y el uso de cualquier conservador o medio de transporte se debe

especificar junto con la fecha en que se colectó la muestra. El carácter infeccioso conocido o sospechoso de la

muestra debe estar claramente indicado.

Los nombres de las características observables deben anotarse en forma aprobada, estableciendo si es un

procedimiento de rutina o urgente.

La solicitud debe de contener demasiada información clínica para que permita al laboratorio omitir su opinión de

resultados. Los requisitos son distintos para cada característica y pueden incluir:

Diagnóstico y situación clínica del paciente.

Ingestión de drogas.

Restricciones especiales o procedimientos efectuados previamente o durante la medición de resultados.

Calidad en la toma de muestra; dependerá de su origen

Sangre

Saliva

Sudor

Orina

Heces






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



Esputo

Líquido seminal

Líquido cefalorraquídeo

Líquido amniótico

Gases arteriales

La muestra debe tomarse correctamente y bajo las condiciones más favorables, para evitar errores de

interpretación.

La identificación correcta del paciente es esencial, sin embrago, no es raro que se cometan errores, es

importante etiquetar cada una de las muestras en presencia del paciente con información suficiente para evitar

confusión con otras muestras, en el CEMA se identifica a los pacientes esencialmente con 2 datos generales

que son el nombre completo y su fecha de nacimiento.

El rotulo debe incluir:

Nombre del paciente o número de folio y fecha de nacimiento

Estudio que se le realizará al paciente

Criterios de aceptación o rechazo de muestras, para eso debemos tener mucho en cuenta lo siguiente:

Identificarla correctamente (nombre completo y fecha de nacimiento)

El volumen debe ser adecuado

El número de folio asignado

El recipiente de recolección es el adecuado

Muestras con hemólisis o coagulo cuando son recolectadas con anticoagulantes






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



Interferencias por algún fármaco (ejemplo: orina naranja por presencia de medicamento)

Interferencias

Las interferencias se pueden presentar de la siguiente manera

Turbidez

Hemólisis

Lipemia

Exposición a la luz (algunos analitos se ven afectados por la exposición a la luz)

Evaporación en muestras microbiológicas

Transporte y conservación de las muestras

Manejar adecuadamente y trasportar las muestras inmediatamente al laboratorio para llevar a cabo su análisis.

Cuando se maneja cualquier muestra de cualquier origen, hay que llevar guantes y los tubos de centrifugación

deben estar tapados o sellados para evitar la transformación de gases.

-La muestra de pacientes de orina con SIDA, hepatitis y otras enfermedades contagiosas, requerirán

consideración especial.

El recipiente de la muestra deberá ser colocado en una bolsa de plástico sellada y etiquetada de forma visible

con rótulo que contiene los 2 datos generales del paciente antes mencionados

Las muestras de orina y heces son potencialmente infecciosas y se deben tomar precauciones para asegurarla

integridad del personal del laboratorio u otro personal y a los pacientes, aún cuando no sean obvios los riesgos

de infección.

Se deberán tomar precauciones para no contaminar el exterior de los recipientes ni el medio ambiente con la

muestra.

Si se derrama orina o muestra fecal, deberá limpiarse inmediatamente con un desinfectante adecuado.






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



Cuando se detecta un riesgo de infección se debe de aislar el recipiente, con etiqueta de ALTO RIESGO.

Almacenamiento.

Uso de conservadores, refrigeración y congelación.

CRITERIOS PARA LA ACEPTACIÓN O EL RECHAZO DE MUESTRAS

Se deberán seguir los lineamientos establecidos en el manual de procedimientos del laboratorio clínico en su

apartado número 6.4 con respecto a la corrobación del cumplimiento de las condiciones para los estudios y

recepción de muestras o especímenes biológicos

Las muestras que son inadecuadas por falta de información, procedimiento de toma incorrecto, preparación

impropia del paciente, que no se haya preservado correctamente o que se hayan almacenado o transportado de

manera inadecuada, deben rechazarse y tomar medidas para la toma de nuevas muestras bajo condiciones

apropiadas.

B) FASE ANALÍTICA

Consiste cuando la muestra está preparada para su proceso, hay que tener en cuenta los siguientes factores:

Reactivos

Material de vidrio

Equipo

Soluciones de control

Métodos de confiabilidad






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



METODOS DE REFERENCIA:

Aquellos que utilizan cualquier tipo de laboratorio con fines de calidad interno y que actualmente se utilizan en

CEMA

Los criterios que se deben tener para seleccionar un método son:

Necesidades de la población a la cual se presta el servicio y las demandas del personal de laboratorio.

Recursos disponibles tanto físicos, como de equipo y personal.

Lograr un nivel de calidad mejor, que el que nos proporcionan los métodos anteriores.

La validación de un método es un proceso mediante el cual se evalúan los atributos o méritos

Es importante valorar un método porque se utilizan estándares primarios de concentración conocido o

materiales de control que son similares a la composición de la muestra:

-Solución estándar

-Solución control (usados actualmente en CEMA)

7.2 METODOS DE CONTROL DE CALIDAD INTERNO DEL LABORATORIO DEL CEMA

HEMATOLOGIA

Los insumos, materiales y procedimiento en general para realizar un control de calidad en el equipo de

hematología se especifican en el manual de operador con clave institucional: MO-SKX-21N en la pagina 9-1 a la

pagina 9-11.

Para el procedimiento de calibración en el equipo de hematología se hace referencia al manual : MO-SKX-21N

en la pagina 10 a la pagina 10-7

COAGULACION

Para realizar el control de calidad en el equipo COATRON M1, se hacen corridas de mediciones de controles






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



con cada prueba que se realiza. D e esta manera se asegura que el analizador continúa funcionando

exitosamente. Como lo indica el manual de operador, se deben usar plasmas controles junto con las muestras

de los pacientes. Es recomendable que al menos un control normal y uno anormal se corran una vez cada 20

muestras de pacientes. Se debe establecer un rango de control para determinar la variación permisible en el

funcionamiento diario de cada Plasma Control

Para el procedimiento de calibración de INR de PT dos parámetros son requeridos.

El valor normal (determinar el valor normal de PT con el plasma normal.- rango esperado 11 - 14 s)

El valor ISI

Introducir ambos valores en el COATRON M1

SEROLOGIA

Para realizar pruebas de control de calidad en serología, son utilizados los insertos (materiales, métodos y

procedimientos) que cada una de las pruebas menciona de manera específica como realizarlos. CARPETA DE

INSERTOS.

C) FASE POSTANALÍTICA

Obtención de los valores de referencia

En CEMA se trabaja actualmente con los valores de referencia determinados internamente para las areas de

hematología y coagulación.

Para obtenerlos en CEMA se eligió el tamaño de la muestra a procesar y un porcentaje de la mitad de la

población total de los pacientes atendidos en CEMA y que cumplan con los criterios de inclusión

CRITERIOS DE INCLUSIÓN:

-De 8 a 17 años en niños

-De 18 a 60 años en adultos

-Sexo






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



-Aparentemente sanos

-Total de 50 muestras

-Proceso de la muestra

-Media de resultados

-Medidas de dispersión(Desviación estándar)

CRITERIOS DE EXCLUSIÓN

-Sedentarismo

-Obesidad

-Antecedentes hereditarios

-Embarazadas

-Periodos de lactancia

-Diabetes

-Enfermedad cardiovascular

-HIV, hepatitis, VPH, etc.

-Tratamiento por fármacos

-Alcohólicos

-Fumadores

-Drogadictos

El método más comúnmente utilizado por los laboratorios para la determinación de los valores de referencia es

el de medidas de dispersión en el cual se toman los resultados de un cierto porcentaje de la población






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



aparentemente sana a la que se atiende y se determinan los valores de referencia a partir de los resultados de

sus exámenes a partir de la desviación estándar. Así se trabaja actualmente en el laboratorio del CEMA

arrojando los siguientes:

8. RESULTADOS

VALORES DE REFERENCIA EN NIÑOS DE 8 A 17 AÑOS






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



ANALITO 1416 1417 1418 1419 1420 1421 1422 1423 1424

Leucocitos 4.2 5.5 4.3 6.8 5.8 5.7 4.6 5.9 5.3

Eritrocitos 5.15 5.59 5.52 5.59 5.1 5.04 5.84 5.46 5.67

Hemoglobina 15.4 16 15.8 16.2 15.2 14.5 16.2 16.8 15

Hematocrito 48.4 49.4 48.6 51.1 46 44.1 51.1 50.1 49

Volumen

Corpuscular

Medio 94 88.4 88 91.4 90.2 87.5 87.5 91.8 86.4

Hemoglobin

a

Corpuscular

media 29.9 28.6 28.6 29 29.8 28.8 27.7 30.8 26.5

Concentracio

n de

hemoglobina

corpuscular

media 31.8 32.4 32.5 31.7 33 32.9 31.7 33.5 30.6

Plaquetas 316 242 239 277 282 246 245 275 144

Linfocitos 28.6 44.4 30.3 31.5 55 45.6 50.1 24.1 37.3

Monocitos 15.3 12.1 9.2 6.8 10.3 10.3 9.5 14.4 14.8






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



VALORES DE REFERENCIA EN ADULTOS DE 18 A 60 AÑOS

ERITROCITOSHEMOGLOBINAHEMATOCRITOVOLUMEN

CORPUSCULAR

MEDIO

HEMOGLOBINA

CORPUSCULAR

MEDIA

CONCENTRACIO

N DE

HEMOGLOBINA

CORPUSCULAR

MEDIA

PLAQUETAS LEUCOCITOS

4.88 14.2 46.6 95.5 29.1 30.5 272 5.7

4.64 14 44.9 96.8 30.2 31.2 266 7.8

4.74 14.7 45.7 96.4 31 32.2 328 4.9

4.78 14.4 45.8 95.8 30.1 31.4 225 5

5.32 15.5 47.2 88.7 29.1 32.8 287 6.5

5.05 15.3 47.4 93.9 30.3 32.3 192 4.1

5.17 15.9 48.8 94.4 30.8 32.6 206 4.3

4.74 15.2 46.2 97.5 32.1 32.9 220 8

5.01 15.8 46.9 93.6 31.5 33.7 264 7.6

4.66 14.4 44.3 95.1 30.9 32.5 318 7.7

5.19 14.9 47.5 91.5 28.7 31.4 376 8.1

5.06 15.7 47.7 94.3 31 32.9 193 8.6

5.35 14.8 46.7 87.3 27.7 31.7 302 5.2

5.25 15.6 47.9 91.2 29.7 32.6 269 7.5

4.83 14.8 45.3 93.8 30.6 32.7 300 6.7

5.18 16.4 49.5 95.6 31.7 33.1 249 8.4

5.38 16.4 50.1 93.1 30.5 32.7 271 6.8

5.04 15.3 45.7 90.7 30.4 33.5 281 6.2

4.92 15.7 47.7 97 31.9 32.9 218 7.1

4.9 16.1 48.2 98.4 32.9 33.4 328 6.8

5.51 15 47.4 86 27.2 31.6 217 6.4

5.02 14.1 44.4 88.4 28.1 31.8 255 7.4






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



8.1 INFORME DE RESULTADOS

-Identificación completa del laboratorio

-Nombre del paciente

-Fecha de nacimiento

-Numero de folio

-Sexo

-Nombre del médico solicitante

-Nombre de la prueba solicitada

-Valor numérico

-Unidades de la prueba medible

-Valores de referencia

-Firma de persona responsable

-Entrega de resultado






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



9. RESULTADO DESEADO Al respetar los lineamientos establecidos y llevar a cabo los procedimientos del presente manual se espera que la calidad del servicio del laboratorio de análisis clínicos del CEMA sea de excelencia, principalmente para la atención de calidad a los pacientes de los diferentes grupos de edad y estado fisiológico, tanto de pacientes externos, de seguros y pacientes que se encuentren hospitalizados; así mismo deben seguirse estrictamente los procedimientos de operaciones dentro del laboratorio clínico para obtener resultados precisos y exactos, verdaderamente confiables que ayuden al (los) médicos a determinar un diagnostico y/o tratamiento para los pacientes de manera oportuna. Al mismo tiempo cumplir con las técnicas al pie de la letra, asegura tener la protección de la salud para el personal que se encarga del proceso de los diferentes especímenes que se manejan en el área.






Elaboró


Revisó


Autorizo


Libero



10. DIAGRAMA DE FLUJO DE CONTROL DE CALIDAD

PROCESO QUÍMICO DE LA PRUEBA

INICIO

PRE-PREANALITICA

Información del paciente.

Generar la solicitud interna de

estudios de laboratorio para

HISTOCLIN

Selección de la prueba.

POST-POSTANALITICA

Revisar informes de la

prueba

Reporte de resultados

PREANALITICA

Ingreso de la solicitud

Identificación del paciente

Recolección de la muestra

Trasporte de la muestra

Preparación de la muestra

ANALÍTICA

Recepción e inspección de

muestras

Preparar equipo

Verificar operación de equipos

Preparar reactivos y controles

Realizar control de calidad

Verificar control de calidad

Proceso de la muestra

Análisis de las muestras

Reproceso

Liberación de los resultados

POSTANALITICA Revisar resultados

Monitorizar la calidad

Seguridad de información

Ingresar resultados en

bitácora

PROCESO DE LA PRUEBA EN

LABORATORIO

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