PROTOCOLO DE CAPTURA DE INFORMACIÓN ......El Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural agradece...

PROTOCOLO DE CAPTURA DE INFORMACIÓNPESQUERA, BIOLÓGICA Y SOCIO‐ECONÓMICA

EN COLOMBIA

COMITÉ DIRECTIVOCARLOS ALBERTO ROBLES COCUYAME

Director de Pesca y Acuicultura ‐ Ministerio de Agricultura y Desarrollo RuralCARLOS ENRIQUE MOSQUERA ARANGO

Subgerente de Pesca y Acuicultura ‐ INCODERMARÍA CLAUDIA DIAZGRANADOS

Coordinadora programa marino ‐ CONSERVACIÓN INTERNACIONAL COLOMBIA

Bogotá, Noviembre de 2011

EDITORES (Por decisión del comité directivo, se organizaron los editores y colaboradores en orden alfabético por apellido)

EDWIN AGUDELO - Instituto Amazónico de investigaciones científicas ‐ SINCHIROSA ELENA AJIACO - Corporación Colombia Internacional ‐CCILUIS ENRIQUE ÁLVAREZ - Dirección de pesca y acuicultura MADRCARLOS GUILLERMO BARRETO - Subgerencia de pesca y Acuicultura INCODERCARLOS AUGUSTO BORDA - Subgerencia de pesca y Acuicultura ‐ INCODERCHRISTIAN CAMILO BUSTAMANTE - Subgerencia de pesca y Acuicultura INCODERJUAN PABLO CALDAS - Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible - MADSJAVIER DE LA HOZ MAESTRE - Corporación Colombia Internacional – CCIMARÍA CLAUDIA DIAZGRANADOS - Conservación Internacional – ColombiaGIOVANNI MELO - Fundación Mar VivaELSY PERUCHO - Subgerencia de pesca y Acuicultura – INCODERVLADIMIR PUENTES - Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible - MADSANDREA RAMÍREZ - Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible - MADSARGIRO DE JESÚS RAMÍREZ - Subgerencia de pesca y Acuicultura INCODERMARIO RUEDA - Instituto de investigaciones Mrinas y Costeras - INVEMARJUAN CARLOS SALINAS - Asociación Nacional de Profesionales en Acuicultura - ANALPACLUIS ALONSO ZAPATA - WWF

COLABORADORES

JULIÁN ALEJANDRO CAICEDO - WWF ERICK CASTRO - Secretaria de Agricultura y Pesca de San AndrésPEDRO JULIÁN CONTRERAS - Subgerencia de Pesca y Acuicultura – INCODERLUIS ORLANDO DUARTE - Universidad del MagdalenaMARCELA GRIJALBA - Universidad Jorge Tadeo LozanoZORAIDA FAJARDO - Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible - MADSIVONNE VIVIANA GALVIS - Corporación Colombia Internacional –CCIGINNA GONZÁLEZ - Corporación Colombia Internacional ‐CCILIA GUILLOT - Subgerencia de Pesca y Acuicultura – INCODERLUISA FERNANDA MALDONADO - Subgerencia de Pesca y Acuicultura – INCODERLUIS MANJARRES - Universidad del Magdalena PAOLA ANDREA MEJÍA - Fundación SqualusANDRES FELIPE NAVIA - Fundación SqualusSANDRA MILENA NIETO - Corporación Colombia Internacional ‐CCIARMANDO ORTEGA - FUNINDESJORGE ENRIQUE PÁRAMO - Universidad del MagdalenaJHON RAMÍREZ - Fundación EcosferaLUZ HELENA RODRÍGUEZ - Conservación InternacionalCLAUDIA LILIANA SÁNCHEZ - Subgerencia de Pesca y Acuicultura ‐ INCODERGERMÁN SOLER - Fundación MalpeloADRIANA MILENA SUÁREZ - Subgerencia de Pesca y Acuicultura – INCODERJAVIER ZAMORA - Subgerencia de Pesca y Acuicultura – INCODER

Citar este documento como: Agudelo, E.; Ajiaco, R.E.; Alvarez, L.E.; Barreto, C.G.; Borda, C.A.; Bustamante, C.C.; Caldas, J.P.; De la Hoz, J.; Diazgra-nados, M.C.; Melo, Giovanni.; Perucho, E.; Puentes, V.; Ramirez, A.; Ramírez, A.; Rueda, M.; Salinas, J.C. y L.A. Zapata. 2011. Protocolo de captura de información pesquera, biológica y socio-económica en Colombia. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural - Dirección de Pesca y Acuicultura - Subgerencia de Pesca y Acuicultura INCODER - Conservación Internacional. 80 P.

ISBN:

LUISA FERNANDA CUERVO - Diseño y diagramación

UNIÓN GRÁFICA Ltda. - Impresión

PRÓLOGO

INTRODUCCIÓN

OBJETIVO DEL PROTOCOLO

MARCO CONCEPTUAL Y LEGAL

VARIABLES PARA LA TOMA DE INFORMACIÓN BIOLÓGICA,

PESQUERA Y SOCIO-ECONÓMICA

CAPTURA Y ESFUERZO

INFORMACIÓN BIOLÓGICA

Taxonomía

Frecuencia de tallas

Monitoreo biológico y reproductivo

ASPECTOS DE MERCADEO Y SOCIO-ECONÓMICOS

Evaluación de los aspectos de mercadeo

Aspectos socio-económicos

INFORMACIÓN COMPLEMENTARIA

INFORMACIÓN AMBIENTAL

INFORMACIÓN BIOLÓGICA: CONTENIDO ESTOMACAL Y

HÁBITOS ALIMENTICIOS

ECOSISTEMAS Y FLUJOS DE ENERGÍA

CONTAMINACIÓN

BIBLIOGRAFÍA

ANEXOS

5

7

9

11

13

13

19

19

19

23

34

34

34

37

37

39

40

42

43

47

CONTENIDO

1.

2.

3.

4.

4.1.

4.2.4.2.1.4.2.2.4.2.3.

4.3.4.3.1.4.3.2.

5.5.1.5.2.

5.3.5.4.

6.

7.

PROTOCOLO DE CAPTURA DE INFORMACIÓN PESQUERA, BIOLÓGICA Y SOCIO‐ECONÓMICA EN COLOMBIA

PRÓLOGO

Tal como ha ocurrido a nivel mundial, en Colombia la pesca ha tenido un nexo muy importante con la histo-ria cultural y económica del país, convirtiéndose en una actividad comercial y en gran medida, garantizando la subsistencia y la seguridad alimentaria de un número importante de habitantes rurales. De esta manera, los volúmenes de recursos pesqueros aprovechados res-ponden a una demanda interna con potencial de creci-miento, en consecuencia, la pesca se constituye como una importante actividad del sector agropecuario, como generadora de empleo y divisas para el país.

No obstante, se debe tener presente que la presión so-bre los stocks pesqueros en ausencia de un proceso de administración adecuada, genera la disminución de las poblaciones naturales y atenta contra su sostenibilidad, razón por la cual el establecimiento de medidas de ma-nejo oportunas son prioritarias y para su definición se requiere de la evaluación permanente, lo que a su vez, demanda la disponibilidad de información confiable, continua y suficiente para la toma de decisiones en todo los ámbitos, aprovechamiento, ordenación, investiga-ción y fomento de la actividad.

Bajo estos elementos, es clara la necesidad de enfocar esfuerzos hacia el diseño e implementación de un siste-

ma de toma de información pesquera, biológica y socio-económica, como uno de los soportes fundamentales de la administración pesquera en Colombia con enfoque de sostenibilidad. En consecuencia, el presente documento es el resultado del trabajo dedicado y comprometido de diferentes actores y entidades, orientado hacia la defini-ción de directrices e identificación de variables básicas, para la captura de información pesquera.

El “Protocolo de Captura de Información Pesquera, Bio-lógica y Socio-Económica en Colombia” es una valiosa herramienta de administración por parte de la autori-dad pesquera nacional y al mismo tiempo, es un aporte para la comunidad científica, las entidades de Gobierno y demás interesados en los asuntos pesqueros. En con-secuencia, se insta a su uso en los procesos particulares de captura de información e investigación, que permita la construcción de un sistema nacional de información pesquera robusto y amplio, como eje transversal en la definición de lineamientos de política para el aprovecha-miento sostenible de los recursos pesqueros del país.

El Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural agradece a todas las entidades y organizaciones vinculadas en la construcción del presente protocolo.

Juan Camilo Restrepo SalazarMinistro de Agricultura y Desarrollo Rural

5


1. INTRODUCCIÓN

En la actualidad los sistemas de información sobre recur-sos naturales, están direccionados hacia la búsqueda de atributos biológicos que evidencien el comportamiento de las poblaciones que están siendo sometidas a extrac-ción pesquera. Estos son los instrumentos que los cientí-ficos y los tomadores de decisiones deben utilizar como herramienta básica, para evaluar los parámetros pobla-cionales que serán utilizados en la administración de los recursos pesqueros.

Desde el punto de vista de la recopilación de la informa-ción, la búsqueda de los atributos poblacionales como dinámica de la población, tamaño del estock, migracio-nes, distribución geográfica, etc., debe estar orienta-da hacia el entendimiento del problema (cuánto hay y cuánto se puede aprovechar) y del universo del grupo que se está estudiando, de tal manera que se disminu-yan los factores que induzcan hacia errores fundamen-tales. La pregunta básica que se puede hacer en la toma de información de la actividad pesquera es ¿cómo pode-

mos entender la estructura de los recursos pesqueros en su totalidad? Inicialmente parece sencillo obtener una respuesta, ya que lo fundamental es realizar un gran nú-mero de observaciones de tal manera que se cubra casi la totalidad de los elementos. Sin embargo, este simple hecho involucra la utilización de mucho dinero y recur-sos humanos que harían casi imposible desarrollar los sistemas de toma de información.

Bajo estos planteamientos la ciencia ha desarrollado una serie de metodologías estadísticas que permiten, con niveles de inversión económica razonable y utilización del recurso humano adecuado, hacer inferencias sobre el comportamiento de los recursos pesqueros, para po-der tomar decisiones acertadas en cuanto a su manejo. La utilización de estas herramientas permite detectar los patrones de comportamiento de las poblaciones e indi-car cuándo estos patrones se deben al azar (Martínez & Martínez, 1997).

Si hay un recurso natural que se encuentra bajo amenaza es el recurso pesquero. Las presiones sobre los hábitats y sitios de reproducción, la sobreexplotación, el débil compromiso de quienes actúan en función de intereses comerciales de corto plazo y, en especial, la irresponsa-bilidad de quienes transgreden las normas que rigen su manejo, nos ponen en alerta.

Por eso, en el gobierno nacional tenemos como princi-pio fundamental la sostenibilidad de la pesca.

Precisamente, al momento de publicarse este trabajo, nos encontramos realizando un juicioso trabajo inter-sectorial que apunta al fortalecimiento de la institucio-nalidad pesquera y a la articulación de competencias. Contempla la conformación de una nueva entidad ads-crita al Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural en la cual se concentrarán las funciones propias de la autori-dad pesquera. Siguiendo instrucciones del Presidente de la República, esta tarea es impulsada por la Alta Conse-jería Presidencial para la Gestión Ambiental, Biodiversi-dad, Agua y Cambio Climático, en coordinación con el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, el Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible y al Departamento Nacional de Planeación, entre otras entidades.

Igualmente, estamos en el proceso de formulación de una Política de Pesca y Acuicultura que ha de incorpo-rar sólidos criterios de sostenibilidad. Y al mismo tiempo, trabajamos con el Congreso de la República para lograr una Ley consistente con las necesidades de un sector fundamental para el desarrollo sostenible del país.

El asunto es claro, tanto en el ámbito marino como con-tinental, tenemos el desafío de ordenar y orientar de forma efectiva la actividad pesquera. La buena salud del recurso pesquero es un síntoma de buena salud de los

ecosistemas y los recursos hidrobiológicos que lo sus-tentan. Lo contrario, es un indicio de degradación del pa-trimonio natural. Escenario éste muy grave en todas las dimensiones del desarrollo: económica, social y ambien-tal. La crisis de la pesquería en la cuenca del Magdalena es un reflejo del mal manejo de esta importante cuenca. Y de igual forma, la degradación de manglares y arrecifes de coral, pone en serio riesgo las pesquerías marinas.

En este contexto, la disponibilidad de información rigu-rosa y confiable es esencial para una toma de decisiones que apunte de forma efectiva a la sostenibilidad de los recursos biológico-pesqueros.

Por eso, el desarrollo de este protocolo para la captura de información pesquera, biológica y socio-económica constituye una herramienta de enorme utilidad. No solo nos sirve como guía para unificar criterios en la colec-ta de información sino que orienta la investigación y promueve el enriquecimiento de las bases de datos, de modo que cada vez podamos contar con información más completa y relevante.

Así podremos enfocar de mejor manera la gestión del recurso y nuestras acciones tanto desde el ámbito gu-bernamental como del sector privado y las comunidades pesqueras.

Invito a todas aquellas entidades públicas y privadas que como parte de sus tareas recojan información pesquera, para que utilicen este protocolo como base metodológi-ca y la envíen a las autoridades competentes.

Así entre todos construiremos una base de información al servicio de la sostenibilidad de la pesca en nuestro país.

Sandra BessudoAlta Consejera Presidencial para la Gestión Ambiental,Biodiversidad, Agua y Cambio Climático

76


Por otra parte, el análisis estadístico es una herramienta que permite medir a través de bases matemáticas una hipótesis que se tenga sobre un comportamiento dado. Lo ideal de una base de datos pesquera es tener infor-mación que soporte la modelación de los diferentes es-cenarios que permitan establecer medidas de manejo adecuadas.

El primer objetivo del análisis estadístico es inferir cuál es el comportamiento de una población, especie o gru-pos de especies que están sometidas a una determinada pesquería. Por lo tanto, la esencia de la evaluación de los recursos pesqueros está fundamentada en la informa-ción básica que se genera con la realización de la acti-vidad pesquera, esto implica que por lo menos se debe disponer de información puntual, desde el momento en el que los organismos son reclutados en las pesquerías, hasta cuando son comercializados, reduciendo al máxi-mo los errores sistemáticos o sesgos (Sparre & Venema, 1997).

Esta información debe ser recopilada siguiendo un pa-trón de datos, el cual debe estar ajustado a un sistema estándar de acopio de información. Este sistema está soportado sobre las bases de datos de información re-copilada mediante muestreos directamente en los sitios de pesca y censos en los sitios de desembarco. Por esta razón, en el 2008 y parte del 2009 el ICA, por interme-dio de la Dirección de Regulación de Pesca y Acuicultura de la Subgerencia de Pesca y Acuicultura y, a partir del segundo semestre del 2009, la dirección técnica de in-vestigación, ordenamiento y fomento de la Subgeren-cia de Pesca y Acuicultura del Instituto Colombiano de Desarrollo Rural (INCODER), en asocio con el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural a través de la Direc-ción de Pesca y Acuicultura, y el Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible, entidades públicas, privadas y ONG’s interesadas en el manejo del recurso pesquero, desarrollaron conjuntamente el siguiente protocolo de recopilación de información, como una forma de alcan-zar el estándar nacional en la toma de información de estadística pesquera.

Los sistemas de información pesquera en Colombia, em-pezaron a desarrollarse con la inclusión de un programa de información estadística de los recursos naturales, im-plementada por el INDERENA en 1969 y que mediante los registros administrativos (salvoconductos), permitió disponer de las primeras bases de información sobre

el comportamiento de los recursos pesqueros. Con la liquidación del INDERENA y la creación del INPA se dio un sistema de toma de información de transición respal-dado por el Programa VECEP de la Comunidad Económi-ca Europea –CEE y con énfasis para el Pacífico (Zapata, 1992). Posteriormente por la Ley 13 de 1990 se estable-ció, estructuró y, reglamentó el Sistema de Información Estadística Pesquera Colombiana –SEPEC- que funcionó entre los años de 1991 y 2003. A partir de esta fecha y con la creación del INCODER, que reemplazó en las fun-ciones de pesca al INPA, se inició una etapa de toma de información directa a través de la contratación de la Cor-poración Colombia Internacional (CCI). De otra parte y con el apoyo inicial del Proyecto de Desarrollo Pesquero, patrocinado por la CEE Comunidad Económica Europea –PEC/VECEP - y Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras –INVEMAR- se iniciaron los primeros sistemas de toma de información pesquera en la Ciénaga Grande de Santa Marta y complejo de Pajarales (1993 - 1996), de-sarrollando así la base de datos EVAPES y más adelante en 1995, el SIPEIN. De manera similar, el Instituto de In-vestigaciones Amazónicas –SINCHI- desarrolló una base de datos sistematizada para la colecta de información biológica, pesquera y socioeconómica de esta región del país. Adicionalmente actores como la Fundación Malpe-lo, WWF, CI, Fundación Humedales, TROPENBOS, Univer-sidad del Magdalena y Universidad Jorge Tadeo Lozano han desarrollado diversos proyectos que tienen como fi-nalidad tomar información pesquera en diferentes sitios de Colombia.

En tal sentido y luego de una serie de reuniones con di-ferentes actores nacionales, la Dirección de Pesca y Acui-cultura del Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, impulsó un convenio con la autoridad pesquera, Conser-vación Internacional (CI) y la Asociación Nacional de Pro-fesionales en Acuicultura (ANALPAC) con el fin de estan-darizar un protocolo base para la toma de información en las pesquerías artesanal e industrial en nuestro país.

Con este documento se busca que tanto la autoridad pesquera como las diferentes entidades y organizacio-nes relacionadas con el registro de información para el manejo de recursos biológico pesqueros, cuenten con una guía base que direccione la colecta de información y que se disponga así de los requerimientos necesarios para la toma de decisiones en torno de la sostenibilidad y ordenamiento de los recursos biológicos-pesqueros.

2. OBJETIVO DEL PROTOCOLO

El objetivo de este protocolo es establecer a nivel nacio-nal un sistema estándar de colecta de información bio-lógica, pesquera y socio-económica, que permita contar con insumos comparables y necesarios para la toma de decisiones de manejo por parte de las autoridades pes-quera y ambiental.

Este documento presenta los insumos básicos necesa-rios para que el país cuente con la información mínima suficiente y comparable en el tiempo, que pueda ser utilizada para desarrollar análisis, seguimiento y toma de decisiones de manejo. Se espera que todo proyecto,

programa o acción en campo que se relacione con in-formación pesquera, tanto de institutos, organizaciones de base y no gubernamentales, academia, entre otros, utilicen este protocolo como base metodológica y bus-quen aumentar la información biológica pesquera y so-cio-económica en las diferentes regiones del país. Por tal razón el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural a tra-vés de la Dirección de Pesca y Acuicultura, recomienda que una vez colectada dicha información sea enviada a la Autoridad Pesquera competente, que conjuntamente con el sector ambiental, la analizarán con el fin de forta-lecer la toma de decisiones.

98


3. MARCO CONCEPTUAL Y LEGAL

Gran parte de la literatura disponible sobre los sistemas de información pesquero y sobre la forma de recopilar los datos para estos sistemas, proponen que los objeti-vos de las políticas y la ordenación pesquera deban ba-sarse en análisis de datos fiables (Agüero 2007, Caddy & Bazigos, 1988; Cochrane, 2005; FAO, 1998; FAO, 2001) que permitan tomar decisiones sobre seguridad alimen-taria, aspectos socio-económicos y medio ambientales. Por lo tanto, se requiere recopilar esta información en forma técnica y adecuada, a partir de fuentes biológicas, económicas y socioculturales (Cochrane, 2005), pues los encargados de la ordenación necesitan entender la di-námica de las poblaciones de peces, las actividades de pesca, la infraestructura, las comunidades y las personas que participan en el sector pesquero para elaborar polí-ticas y administrar adecuadamente las pesquerías (FAO, 1999). Es así como la colecta de datos se convierte en un asunto fundamental en la toma de decisiones para un país, pues “Si bien la recopilación de datos e información

no constituyen un fin en sí mismo, es esencial para adop-tar decisiones fundamentadas” (FAO, 2001).

Legalmente el Código de Conducta para la Pesca Res-ponsable (FAO, 1999), pone en relieve la obligación de los Estados de conservar las poblaciones y evitar la so-breexplotación y para lograrlo, se les pide que las deci-siones sobre conservación y ordenación en materia de pesquerías deban basarse en los datos científicos más fidedignos posibles, teniendo en cuenta también los conocimientos tradicionales acerca de los recursos y su hábitat, así como los factores ambientales, económicos y sociales.

A nivel Nacional, la Constitución Política de Colombia de 1991, le impone al Estado planificar el manejo y aprove-chamiento de los recursos naturales y así garantizar su desarrollo sostenible (Gutiérrez et al., 2008). La ley 13 de 1990, mediante su decreto reglamentario 2256 del 4 de octubre de 1991, tiene por objeto la regulación integral

1110


y explotación racional de los recursos pesqueros en pro de un aprovechamiento sostenible.

A su vez la Ley 99 de 1993 por la cual se creó el Minis-terio del Medio Ambiente (actualmente Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible), se reordenó el sec-tor público encargado de la gestión y conservación del medio ambiente y los recursos naturales, y se organizó el Sistema Nacional Ambiental – SINA, en sus principios generalesambientales (Articulo 1), cita el desarrollo eco-nómico y social bajo principios de sostenibilidad según la declaración de Río de Janeiro de junio de 1992, la cual fue aprobada a nivel nacional mediante la Ley 165 de

1994. Esta Ley reconoce la importancia de la conserva-ción de la diversidad biológica bajo un marco sostenible de dichos recursos mediante el fortalecimiento institu-cional y la conformación de herramientas que permitan un análisis, planificación y toma de medidas acordes a la situación particular de los recursos biológicos (hidrobio-lógicos y pesqueros).

El alcance del presente documento es el de homologar la toma de información biológica, pesquera y socioeco-nómica en pro de generar procesos confiables a nivel na-cional y desarrollar comparaciones coherentes a escalas departamentales, regionales o nacionales.

4. VARIABLES PARA LA TOMA DE INFORMACIÓN BIOLÓGICA, PESQUERA Y SOCIO-ECONÓMICA

4.1 CAPTURA Y ESFUERZO La captura en número o peso total, representa la extrac-ción de biomasa o individuos de un nicho, ensamblaje o ecosistema; su importancia asociada a variables de es-fuerzo y biológicas permite la medición de los efectos di-rectos de explotación pesquera. Por su parte el esfuerzo se emplea para evidenciar un impacto sobre los recursos

asociados a diferentes tipos de pesquería y establece re-laciones asociadas a la actividad pesquera, rentabilidad de embarcaciones y eficiencia económica mediante aná-lisis económicos y socioculturales.

De acuerdo a los formatos que relacionan la captura y esfuerzo (anexo 2, 3 y 4) se deberán registrar las variables citadas en la tabla 1 y 2.

1312


Tabla 1. Variables a tener en cuenta en la toma de información de captura y esfuerzo pesquero.

VARIABLE ASPECTOS A TENER EN CUENTA

Tipo de recurso • Continental• Marino

Lugar de pesca

• Escribir el área lo más específico que sea posibleEjm: Nombre de caladero, zona de pesca, o coordenadas por GPS siguiendo el sistema global WGS84, con coordenadas geográficas o planas (proyección UTM).Citar el municipio al que hace parte (si aplica a monitoreos costeros o continentales).

Especies • Reportar nombre común y científico

Peso capturado (Kilogramos)

• Reportar en Kilogramos (kg)• Reportar pesca incidental (Aplica en monitoreo a bordo o al

momento del desembarco)• Calibrar previamente sus equipos de pesaje

Número de individuos• Aplica a pesca ornamental en el anexo 3 y a todos los recurso,

exceptuando a los camarones en el anexo 4 (Formato desem-barco y esfuerzo)

Presentación del Producto

• Fresco entero• Fresco eviscerado• Congelado• Descabezado• Tronco (tiburones)• Ciento, docenas o pincho (pianguas)• Otros

Valor del Producto• Peso por Kilogramo ($/kg)• Número de unidades ($/unidad) Ornamentales

Arte empleado

• Especificar características del arteConstrucciónDimensiones (redes, anzuelos, jaulas, etc)Ojo de malla (si aplica)Distribución

Utilizar anexo 13 para identificar el tipo de arte y especificar el nombre local de dicho arte en el área de toma de información.

Número de lances • Anotar según el tipo de arte (Ver tabla 2)

Inicio y termino de faena • Fecha y hora según el tipo de arte (Ver tabla 2)

Fechas de Zarpe y Arribo • Formato: dd-mm-aaaa

Lugar de desembarco • Escribir el área lo más específico que sea posible

Nombre de la embarcación • Número de matrícula en capitanía (si aplica)

Las entidades a cargo deben reportar la metodología empleada (frecuencia y lugares de toma de información, diseño experimental, etc.), estimando el error que pueden tener los datos reportados.

Se recomienda en las variables que relacionan el esfuer-zo, obtener la información de Primera prioridad (Tabla 2) o de lo contrario, ubicar otra categoría que se ajuste a la toma de dicha información (Tabla 2). Los artes de pesca

mencionados en la tabla 2 están ilustrados en el anexo 13, con el fin de ayudar al colector en su identificación ya que un arte particular puede recibir diferentes nombres según el área.

Tabla 2. Medidas del esfuerzo de pesca por categoría de artes. Modificado de FAO 2001.

ARTES DE PESCA MEDIDA DEL ESFUERZO DEFINICIÓN

PRIMERA PRIORIDAD

Redes de cerco (por ejemplo, redes con jareta)

Número de caladas• Número de veces que el arte se ha calado o lanzado,

independientemente de que se haya realizado o no la captura.

Tiempo de búsqueda (caladas)

• Representa el tiempo en el fondo menos el tiempo dedi-cado a lanzar la red y recuperar las capturas así como el tiempo para izarla.

Número de viajes/día• Número de veces que la embarcación ingresó y regresó

a puerto en un día. Aplica a embarcaciones de pequeños pelágicos.

Redes de cerco (por ejemplo, redes con jareta, si se está pescando con un dispositivo de agregación de peces (DAP)

Número de horas desde la última vez que se pescó con este DAP

• Tiempo durante el cual el DAP permanece en el agua desde que se pescó con él por última vez (Vale la pena resaltar que en Colombia no está permitido el uso de DAP).

Redes de tiro desde embarcacio-nes. (Changa)

Número de horas de pesca

• Número de horas durante las cuales la red de tiro ha estado en el fondo pescando.

Artes de playa (Chinchorro) Número de caladas y / o lances

• Número de veces en la que esta arte se ha calado o lanzado, independientemente de que se haya realizado o no capturas.

Redes de ahorque de arrastre (chinchorros, chinchorras) (Pesca continental)

Tiempo efectivo de arrastre

• Tiempo en el cual el arte ha estado en al agua realizando el arrastre

Red de arrastre (redes camarone-ras, changuas, etc.)


• Número de horas durante las cuales la red ha estado en el agua.

Redes de enmalle (de deriva o agallera)

Número de unidades de esfuerzo

• Longitud de las redes expresada en unidades de 100 metros multiplicada por el número de caladas realizadas

• Longitudtotalacumuladaenmetrosdelasredes utilizadas en un periodo de tiempo dado dividido por 100).

Red de ahorque a la deriva o rodada (pesca continental)

Tiempo efectivo de pesca por lance • Tiempo en que la malla ha sido rodada

Redes de enmalle (fija) Número de unidades de esfuerzo

• Longitud de la red expresada en unidades de 100 metros multiplicada por el número de veces en que se ha vacia-do la red.

1514



Red de ahorque estacionaria (pesca continental) Número de horas de

pesca

• Número total de horas (hora de salida y de llegada).

Red de izada, • Número de horas durante las cuales la red ha estado en

el agua, independientemente de que se hayan realizado o no capturas.

Nasas (alambrada fija descubier-ta) Número de unidades

capturadas

• Días de pesca multiplicada por el número de unidades recogidas.

Nasas cubiertas y Garlitos • Número de izadas multiplicado por el número de unida-des.

Trampas (cacure, nasas) (pesca continental)

Tiempo efectivo de pesca

• Tiempo en cual la trampa ha estado en el agua.

Chinchorro de Anjeo (pesca ornamental) • Tiempo en cual la trampa ha estado en el agua.

Nasa ornamental (pesca conti-nental)

• Tiempo en que la nasa ha entrado al agua y vuelto a salir.

Anzuelos y calandrios (pesca continental)

• Tiempo en que el anzuelo con carnada ha estado efecti-vamente en el agua.

Palangres fijo o de deriva y de fondo o superficial Número de anzuelos • Número de anzuelos utilizados durante un lance.

Linea de mano Número de horas de pesca • Número total de horas (hora de salida y de llegada).

Caña y carrete (deportiva)Número de horas – línea

• Número de horas durante las cuales las líneas han estado en el agua multiplicando por el número de líneas utiliza-das.

Curricán • Número total de días – línea durante el periodo dado.

Poteras (manuales y mecánicas) • Número total de días – línea durante el periodo dado.

Otros artes de red de pequeña escala

Número de activi-dades

• Artes de pequeña escala incluidos los rastrillos para gambas, salabardos, redes de batir, etc. Número de acti-vidades de pesca, independientemente de que se hayan realizado o no capturas.

Otros artes estacionarios de pequeña escala


• Estas artes incluyen las barreras de guía, redes de copo butirones, redes portátiles, etc.

• Número de horas durante las cuales las artes han estado en el agua pescando, independientemente de que se hayan realizado o no capturas.

Arpones, tridentes, maruchas, etc.

Número de días de pesca – Faena.

• Número de días (periodos de 24 horas, de medianoche a medianoche) durante los cuales ha tenido lugar cual-quier tipo de pesca, incluidos los días durante los cuales ha realizado la búsqueda sin pescar.

Arpón (pesca continental) Lanzada • Lanzamiento del arpón al agua

Tabla 2. Continuación.


Flechas (pesca continental) Lanzada • Lanzamiento de la flecha

Buceo a pulmón (pesca conti-nental)

Tiempo de inmersión • Tiempo en que el pescador ha estado bajo el aguaNasa de captura de rayas por Buceo a Pulmón libre

SEGUNDA PRIORIDAD

Redes de tiro desde embarcacio-nes (red de tiro danesa, etc) Número de caladas

• Número de veces en que la red se ha tirado o calado, independientemente de que se hayan realizado o no capturas.

Redes de arrastre (redes camaro-neras, changuas, etc.) Número de caladas

• Número de veces en las que la red se ha tirado o calado (a media agua o en el fondo), independientemente de que se hayan realizado o no capturas.

Red de izada Número de horas de pesca

• Número de veces en las que la red se ha tirado o calado al agua, independientemente de que se hayan realizado o no capturas.


Número de lances

• Número de veces que se ha dejado correr la red en una jornada de pesca

Redes de ahorque de arrastre (chinchorros, chinchorras) (pesca continental)

• Número de veces que se ha arrastrado el arte en una jornada de pesca

Trampas (cacure, nasas) (Pesca continental)

Número de caladas

• Cantidad de veces que se ha introducido la trampa al agua en una jornada de pesca


• Número de veces que ha ingresado el arte al agua en una jornada de pesca


Número de inmer-siones

• Cantidad de inmersiones realizadas por el pescador en una jornada de pesca

TERCERA PRIORIDAD

Red de ahorque estacionaria (pesca continental)

Faena • Tiempo medido desde el momento en el que el pescador inicia la actividad de pesca hasta que la da por finalizada.




Arpón (pesca continental)

Flechas (pesca continental)


1716




Faena • Tiempo medido desde el momento en el que el pescador inicia la actividad de pesca hasta que la da por finalizada.




CUARTA PRIORIDAD

Red de ahorque estacionaria (pesca continental)

Días de ausencia del puerto • Espacio de tiempo en días desde que la embarcación sale

del puerto hasta el momento del desembarque.




Arpón (pesca continental)

Flechas (pesca continental)





Ver anexo 13 para identificar los artes de pesca relacionados a su área de toma de información

Tabla 2. Continuación. Con el fin de ver el grado de actividad en la flota arte-sanal (Eficiencia de la pesquería), se tomará la siguiente información (frecuencia según dinámica particular) en los puntos de desembarco (anexo 1):

• Nombre del área: Ciudad, Municipio y el nombre de la comunidad (citar nombre de agremiación pesca-dora o asociación).

• Fecha de la toma de la información: día, mes y año.• Especificar, en número, las flotas activas, inactivas y

no operantes (averiadas).• Finalmente citar las observaciones pertinentes para

el área monitoreada.

4.2 INFORMACIÓN BIOLÓGICAPara poder implementar adecuadas medidas de manejo de los stocks pesqueros en el país, utilizando modelos analíticos confiables, es importante poder colectar in-formación biológica de manera frecuente, como tallas, peso, sexo, madurez gonadal, entre otros, teniendo en cuenta la dinámica de la pesca en las diferentes zonas y según los diferentes grupos taxonómicos (Sparre & Ve-nema, 1997; Tresierra & Culquichicón, 1993).

4.2.1 Taxonomía

El uso de la nomenclarura científica partiendo de un in-ventario de especies actualizado, resulta de gran impor-tancia, para evitar confusiones y malas interpretaciones al momento de establecer planes de ordenamiento y comercialización de los recursos biológico pesqueros, desarrollar proyectos de acuicultura, entre otros. En el presente protocolo se sugiere siempre que sea posible identificar a las especies usando el nombre científico y el nombre común con el cual se le conoce localmente.

4.2.2 Frecuencia de tallas

En la toma de tallas es necesario tener en cuenta lo si-guiente:

• Las medidas se deben tomar con ictiómetros ca-librados (con precisión mínima de 0,5 cm), cintas métricas o calibradores especiales, en función del tamaño del ejemplar. Se recomienda que ini-cialmente el ictiómetro y cintra métrica se coloquen sobre una base plana y después se tomen las medi-ciones. Nunca se deben hacer las mediciones sobre el contorno de los individuos.

• Se debe emplear el sistema métrico decimal para todas las medidas relacionadas con la evaluación de las poblaciones (Holden & Raitt, 1975).

• La muestra deberá ser mínimo de 120 individuos por especie, al mes y por lugar de desembarco de manera aleatoria sobre la captura total (Gulland & Rosemberg, 1992). En los lugares donde no se logre alcanzar el número de individuos propuesto, se me-dirá el número máximo posible de ejemplares por especie.

Dependiendo del grupo de recursos capturados se de-ben registrar en el anexo cinco (5) las siguientes medi-ciones:

4.2.2.1 Peces óseos

• Enderezar el cuerpo del pez, cerrar su boca y ajustar la cabeza de la especie hacia la parte izquierda de la base del ictiómetro.

• El pescado debe medirse mientras está fresco y hú-medo. Si está seco debe flexionarse ligeramente an-tes de medirlo.

• La elección de la clase de intervalo para registrar la medida de las tallas se hará con aproximación al medio centímetro inferior, es decir si se toma un ejemplar de 17,8 cm y 17,2 cm, estarán dentro del intervalo de 17,5 cm y 17,0 cm respectivamente (Fi-gura 1).

Figura 1. Aproximación de tallas en peces (Sparre & Ve-nema, 1997).

Emplear la Longitud Total (LT) para peces marinos (ex-ceptuando los peces escombridos), la cual se medirá de la punta del hocico al extremo del lóbulo superior de

201918 21

“a la unidad inferior más

cercana”

22 23

1918


la aleta caudal (Figura 2). En escombridos se tomará la longitud de horquilla (LH), la cual va desde la punta del hocico hasta la división sobre los lóbulos de la aleta caudal (Figura 3).

Emplear la Longitud estándar (LS) en peces de aguas continentales la cual se medirá desde la punta del ho-cico hasta la base de la aleta caudal, teniendo como referencia las tallas mínimas legales vigentes reglamen-tadas por la autoridad pesquera. Adicionalmente en la Amazonía se meditá también la Longitud de Horquilla o furcal (LH, Figura 3).

4.2.2.2. Peces cartilaginosos

En las frecuencias de tallas se utilizará el mismo método descrito para los teleósteos o peces óseos (instrumentos y elección de clase de intervalo).

Figura 2. Longitud total (LT)para peces óseos marinos exceptuando Escómbridos.

Figura 3. Longitud estándar (LS) para peces continentales y Longitud de horquilla (LH) para Escómbridos y peces en la Amazonia.

LT

LS LH

A los tiburones que lleguen completos a puerto se les tomará la LT (Figura 4); y para aquellos individuos que ya estén procesados (sin cabeza y sin cola) se tomará la longitud del tronco (Ltr) la cual va desde la última hen-didura branquial a la base de la aleta caudal (Figura 4).

En rayas de la familia Rajidae y las del orden Myliobati-formes (familias Dasyatidae, Mobulidae, Rhinopteridae, Potamotrygonidae, Myliobatidae) se medirá el ancho (AD) y largo del disco (LD), mientras que en las Rhino-batidae se tomará LT (figura 5). Tanto para peces óseos como para elasmobranquios, los registros de frecuencias de tallas deben ir complementa-dos siempre por la siguiente información (Anexo 5):

• Nombre de la especie (científico y común)• Estrato si aplica a un monitoreo de tipo estratificado

• Lugar de pesca • Lugar de desembarco• Nombre y características del arte empleado

4.2.2.3. Crustáceos

Se tomarán las medidas utilizando calibradores (Pie de rey) y se registrarán las longitudes con precisión al milímetro. De acuerdo con la Tabla 3 (Figuras 6 y 7) se tomarán diferentes medidas según la especie.

4.2.2.4. MoluscosSe tomarán las medidas utilizando calibradores (Pies de rey) y se registrarán las longitudes con precisión al milí-metro. Se tomarán diferentes medidas según los diferen-tes grupos taxonómicos (Tabla 4, Figuras 8 y 9).

Para el caso de la Piangua, se recomienda el uso del Pianguimetro, el cual fue desarrollado por Delgado et al., (2010), durante el trabajo del potencial productivo de las poblaciones de la Piangua, Anadara tuberculosa y A. similis en la costa pacífica colombiana. A partir de los rangos de tallas citados, discrimina el potencial produc-tivo, considerado viable a partir de los 5 cm (Figura 10).

Al igual que lo citado para peces y elasmobranquios, se debe citar en los registros de frecuencias de tallas, la si-guiente información (Anexo 5):

• Nombre de la especie (científico y común)• Estrato si aplica a un monitoreo de tipo estratificado• Lugar de pesca • Lugar de desembarco• Nombre y características del arte empleado

Figura 4. Longitud del Tronco (LTr) y Longitud total (LT) en tiburones.

Figura 5. Ancho del disco (Ad), Longitud del disco (Ld) y Longitud total (LT) en rayas.

© Bustamante/ INCODER

© Bustamante/ INCODER

© Fundación Squalus

© Fundación Squalus

Ld

Ad

2120


Tabla 4. Medidas que se deben tomar para análisis de frecuencias de tallas en moluscos.

BIVALVOS GASTERÓPODOS

• La longitud de la concha se tomará en la dirección antero posterior, la cual es aproximadamente para-

lela al eje de la bisagra (figura 8)

• La longitud del cuerpo (Lcp), es la máxima distancia desde el extremo de la espira (ápice) hasta el borde

de la concha (última vuelta).

Figura 8. Longitud de la concha (Lcl) en bivalvos. Figura 9. Longitud del cuerpo (Lcp) en caracol.

Tabla 3. Medidas que se deben tomar para análisis de frecuencias de tallas en langosta y camarón.

LANGOSTA CAMARÓN

• Registrar longitud de la cola (Lcl) la cual va del primer segmento abdominal hasta el extremo del

telson (Figura 6)

• Registrará la longitud de cola (Lc) o abdominal, medida desde el primer segmento abdominal hasta

el extremo del telson (Figura 7).

Figura 6. Longitud de la cola (Lcl) en langosta. Figura 7. Longitud de la cola (Lcl) en camarones.

Lcl

Lc

© Salinas/ANALPAC

© Salinas/ANALPAC

LcpLongitud concha

© Suárez

© Suárez

4.2.3. Monitoreo biológico y reproductivo

• La medida de tallas se debe tomar con los elemen-tos apropiados, utilizando la metodología descrita en la toma de frecuencia de tallas según el grupo taxonómico.

• La muestra deberá ser mínimo de 50 individuos mensuales por especie, sitio de desembarco y mes.

• Se tomará al azar y deberán representar el ran-go de tallas de la captura sobre dicho mes.

• En los lugares donde el volumen de pesca no permite alcanzar este tamaño de muestra, se re-gistrará el número total desembarcado.

Figura 10. Pianguimetro e indicadores del potencial productivo de la piangua - Anadara tuberculosa y A. similis (Delgado et al., 2010).

• Para el desarrollo de las medidas que en estos registros se solicitan, se sugiere usar individuos enteros y que se puedan manipular, sin embar-go, si el recurso no llega entero, se propone re-copilar la información gonadal del recurso con alguna estrategia y convenio con la comunidad pescadora.

Junto a dicha información es necesario tomar las varia-bles (Anexos 6 al 10) de la tabla 5, teniendo en cuenta las particularidades en las tallas (Tabla 6), sexo y madurez gonadal (Tabla 7) según el grupo taxonómico.

2322


Tabla 5. Variables para la toma de información biológica.

VARIABLE ASPECTOS A TENER EN CUENTA

Fecha • dd-mm-aaaa

Lugar de desembarco • Municipio, ciudad, puerto, etc.

Nombre de la cuenca o litoral • Continental y marino

Lugar de pesca

• Nombre de caladero, zona de pesca, o coordenadas por GPS siguiendo el sistema global WGS84, con coordenadas geográficas o planas (proyección UTM). A su vez reportar el municipio al que hace parte (si aplica a monitoreos costeros o continentales).

Nombre y características del arte • Dependiendo del tipo de arte anotar (Longitud, ojo de ma-lla, números de anzuelos, tipo de anzuelo, etc.)

Nombre de la especie • Común y científico

Tallas • Según el grupo taxonómico se especifican mediciones (Ver tabla 6)

Pesos

Tener en cuenta:

Es indispensable calibrar por lo menos dos veces en cada sesión de toma de pesos el tipo de gramera o balanza (tenga en cuenta el tipo de precisión) para evitar sesgos en la toma de información utilizando un objeto patrón de masa conocida. La calibración puede variar según al manual o protocolo de cada equipo.

• PECES: Peso entero y/o eviscerado de cada indivíduo en gramos ya que en algunos lugares no es posible la toma de las dos mediciones.

• CAMARONES: Peso total y peso de la cola en décimas de gramo.

• LANGOSTA: Peso total en gramos.

• JAIBAS: Peso total en gramos.

• PIANGUAS: Peso total y peso de la carne en décimas de gramo.

BALANZAS O GRAMERAS RECOMENDADAS:

• Balanza con precisión de una decima (0,1) de gramo: in-dividuos de hasta 100 gr.

• Balanza con precisión a un (1) gramo: Individuos de hasta un (1) Kg.

• Balanza con precisión a 5 gramos: individuos de 2 a 10 Kg.

• Balanza con precisión a 10 gramos: individuos superiores a 10 Kg.

Sexo • Hembra (H), Macho (M) y/o Indeterminado (ind)

Maduración gonadal (MACROSCOPICA) • Según grupo taxonómico (Ver anexo específico) (Ver tabla 7)

Tabla 6. Mediciones prioritarias y secundarias en las muestras de biológicos según el grupo taxonómico.

GRUPO TAXONÓMICO MEDICIONES FIGURAS POR GRUPOS TAXONÓMICOS

Peces óseos(Figura 11)

Prioritarias• Longitud total (Lt): medida desde

la punta del hocico hasta el extremo posterior del lóbulo superior de la aleta caudal.

• Longitud estándar (Ls): medida des-de la punta del hocico hasta el hueso hipural.

• Longitud de horquilla (Lh): medida desde la punta del hocico hasta el centro de la horquilla de la aleta cau-dal o hasta el extremo cartilaginoso del radio más corto de la aleta caudal. Esta medida es importante para las especies con aleta caudal horquillada.

Secundarias• Perímetro Circular Máximo (PCM)

medida del contorno máximo del pez, con las aletas retraídas, se toma desde el extremo craneal de la inserción de la aleta dorsal alrededor del cuerpo del pescado, el cual deberá estar entero.

Figura 11. Medidas prioritarias y secundarias en peces óseos.

Peces cartilaginosos

TIBURONES:

Prioritarias (Figura 4)

• LT: Longitud total• Ltr: Longitud del Tronco• L-Clas: Longitud del clasper

(en machos). (Figura 12 y13)

Secundarias (Figura 12)

• Longitud precaudal (LP) se medirá desde la punta del hocico, hasta el inicio del lóbulo inferior de la aleta caudal.

• Longitud o espacio interdorsal (LID) se medirá desde la base de la primera aleta dorsal, hasta el origen de la segunda aleta dorsal.

Figura 12. Medidas prioritarias y secundarias en tiburones.

© Bustamante/INCODER


LT

LT

LS

LH

LP

LTR

LID

PCM

2524



Crustáceos

JAIBAS

Prioritarias • Lca: Longitud caparazón se mide

desde la parte media de los dientes frontales hasta la parte posterior me-dia del caparazón (Figura 16).

• ABEL: Ancho a la base de las espinas laterales del caparazón (Figura 16).

Figura 16. Medidas en jaibas.

Moluscos

BIVALVOSPrioritarias (Figura 17)• L: El largo se medirá desde el borde

posterior al borde anterior.

Secundarias (Figura 17)• AL: El alto se medirá desde el extremo

del borde ventral hasta el extremo del borde dorsal.

• An: El ancho será medido desde la partes superior de la valva izquierda, hasta la parte inferior de la valva derecha

Figura 17. Medidas en Bivalvos (Fischer et al., 1995)


Peces cartilaginosos

RAYASPrioritarias (Figura 5)• Ancho disco (Ad)

• Longitud disco (Ld)

• L-Clasp: Longitud Clasper (en ma-chos).

Nota: La medición y estado de los claspers estarán relacionados con el estado de madurez de este grupo taxonómico, lo cual será explicito en la escala de madurez de la tabla 7. Figura 13. Medición de los claspers.

Crustáceos

MUDA• Premuda: presenta una consistencia

dura en el exoesqueleto

• Post-muda: el exoesqueleto tiene la consistencia de una delgada mem-brana y al tacto es como si fuese de goma elástica)(Garcia y Le Reste, 1986).

CAMARONES

Prioritarias (Figura 14)• Lc: Longitud cola• Lt: Longitud total

Secundarias (Figura 14)• Lct: Longitud cefalotorax

LANGOSTA

Prioritarias • Lcl: Longitud cola (Figura 6)• Lct: Longitud cefalotórax (Figura 15)

Secundarias • Ab: Ancho abdomen

(Figura 15)

La frecuencia de la muda permite poner en eviden-cia los ritmos de las mudas, que son fenómenos de primera importancia en el estudio del crecimiento, determinado como discontinuo (Garcia & Le Restre 1986).

Figura 14. Medidas en camarones.

Figura 15. Medidas en langosta.


© Salinas/ANALPAC

L-Clasp

LCLct

LT


© Salinas/ANALPAC

ABEL

Lca


Línea media de la valva

Alto

Ancho

Largo© Thomas Mathews

Lct

2726



Moluscos

GASTERÓPODOS

Prioritarias (Figura 18)Lcp: Longitud del cuerpo será la máxima distancia desde el extremo de la espira (ápice) hasta el borde de la concha (última vuelta).

Secundarias (Figura 18)• Gl: grosor de labio e caracol pala será

la anchura máxima del labio externo de la concha.

• Av: Altura de la última vuelta será tomada desde el extremo superior de la última vuelta hasta el extremo del canal sifonal.

• Ae: Altura espiral será medida desde el extremo de ápice hasta la sutura de la espira.

CEFALOPODOS

CALAMARES

Prioritarias (Figura 19)• Lm: Longitud del manto se medirá

desde el borde externo del manto hasta el borde interno.

• Lca: Longitud de la cabeza será desde el borde del manto hasta inicios de los brazos

PULPOS

Prioritarias (Figura 20)• Lt: Longitud total se mide desde el ex-

tremo de la cabeza hasta el extremo del brazo del sifón

• Lm: Longitud del manto será desde el extremo de la cabeza hasta el extre-mo inferior del ojo

Figura 18. Medidas en Gasterópodos.

Figura 19. Medidas en calamares

Figura 20. Medidas en pulpos (www.pearlfisheries.com)

LM Lca

Tabla 6. Continuación. Sobre la determinación sexual y la escala de madurez de los diferentes grupos taxonómicos se sugiere la medi-ción y observación de las características más relevantes y binarias para una toma de información práctica, rápi-da y sencilla. Sin embargo, si el investigador o colector quiere profundizar sobre un recurso particular, se aclara

que hay trabajos específicos de escala de madurez como sucede con corvinas, pargos, lenguados, tiburones tria-kidos, meros, algunos peces ornamentales, etc. Se reco-mienda, si se opta por dicha opción, el validar con el tipo de formato asignado al grupo taxonómico, aclarando en el campo de observaciones.

Tabla 7. Determinación sexual y Madurez gonadal según grupo taxonómico.

GRUPO TAXONÓMICO DETERMINACIÓN SEXUAL ESTADOS MACROSCÓPICOS DE

MADUREZ GONADAL

Peces óseos Determinación Interna• HEMBRAS (H): Ovarios son tu-

bulares, rosados y granulares.

• MACHOS (M): Los testículos generalmente son planos o en forma de bolsa (digitiformes en los Pimelodidae), blancos y sus bordes ventrales presentan con frecuencia una línea ondulada.

• En algunas especies, los anima-les vírgenes se distinguen por el color de las gónadas: los ovarios son rojos y los testículos blan-cos, gris-pardo (FAO, 2001).

• INDETERMINADO: (I)

Se utilizará la escala propuesta por Vazzoler (1996) y las sugerencias de Nuñez y Duponchelle (2009).

• Estado I: Virgen o inmaduro. Los ovarios son delgados, pequeños, translúcidos y sin vascu-larización. No es posible observar oocitos. Los testículos son delgados y traslúcidos.

• Estado II: Madurando.Ovarios cerca de 2/3 de la longitud de la cavi-dad abdominal, ovarios de color amarillento con óvulos visibles, fuertemente vascularizado. Testículos blanco-cremosos.

• Estado III: Maduro.Ovarios y testículos ocupan 2/3 de toda la lon-gitud de la cavidad abdominal, su color en los ovarios varía según el grupo taxonómico (puede varía entre naranja, rosado, rosáceo ó verde) con vasos sanguíneos superficiales visibles y gran-des huevos maduros. Testículos blancuzcos, cre-ma o blancos. Cuando se presionan los testículos sale líquido seminal.

• Estado IV: Desovado.Ovarios y testículos contraídos o cerca de ½ de la longitud de la cavidad abdominal. Paredes flo-jas, los ovarios pueden contener restos de hue-vos opacos maduros, en desintegración, oscure-cidos o translúcidos. Testículos sanguinolentos y flácidos.

Lcp

Av Ac

GI

Manto

Cabeza

2928



MADUREZ GONADAL

Peces cartilaginosos Determinación Externa

• HEMBRAS (H): Ausencia de clas-pers o pterigopodios.

• MACHOS (M): Presencia de clas-pers sobre el borde interior de las aletas pélvicas.

Escala a partir de Fundación Squalus (com. Pers.), Conde-Moreno y Galván-Magaña (2006) y Busta-mante (2007).

• HEMBRAS

I INMADURAS: Gónadas muy delgadas, poco de-sarrolladas, algunas especies pueden presentar huevos pequeños dispersos y en ocasiones de color rojizo.

II MADURAS: Gónadas desarrolladas, útero clara-mente visible, laxo y desarrollado (amplio). Pue-de haber desde óvulos pasando por las glándulas oviducales hasta presencia de crías y/o de huevos (amarillentos, desarrollados y agrupados) en las ca-vidades uterinas.

III: POST-PARTO: Útero y cloaca distendidas, sin presencia de crías y puede contener huevos en el ovario o restos de placenta.

• MACHOS

I INMADURO: Claspers pequeños, flácidos y no so-brepasan el borde posterior de las aletas pélvicas. Gónadas muy delgadas, poco desarrolladas, testícu-los pequeños, generalmente de color rojizo.

II MADURO: Claspers rígidos y calcificados, exten-diéndose más allá del borde posterior de las pélvi-cas. Gónadas desarrolladas, testículos generalmen-te de color crema o blancuzco. Conducto deferente visible y de color crema pálido. Pueden expulsar semen al presionar el vientre, claspers o porción ter-minal del conducto deferente.

Crustáceos CAMARONESEn los machos se realiza una iden-tificación externa, debido a que las coxas del quinto par de pereiópo-dos presentan una fuerte coloración verde, debido a la presencia de los espermatóforos maduros. También pueden observarse en aquellos ejemplares ya desprovistos de sus espermatóforos, el petasma deterio-rado.

Se deben registrar los estados de maduración gona-dal para las hembras según la clasificación de Rueda et al., (2010).

• HEMBRAS

I INMADURO VIRGINAL: Gónadas estructuras del-gadas, tubulares y translúcidas que se confunden con la membrana blanquecina que está al interior de la cavidad que se encuentra entre el cefalotórax y el abdomen.



MADUREZ GONADAL

Crustáceos

Figura 21. Masa ovígera de Litope-naeus occidentalis (Ramirez, 1997).

Son invisibles a través del exoesqueleto y están con-finadas al abdomen por que no tienen desarrollado las regiones anterior y media (Figura 21).

II INMADURO: Las gónadas han cambiado su color y apariencia, se tornan blancas o amarillas pálidas, alcanzan una parte de la región cefalotoráxica y son más gruesas. Se ve conformada la región media y hay un esbozo de la anterior. La gónada no es visible a través del exoesqueleto, ni entre la articulación del cefalotórax y el abdomen (Figura 21).

III MADURO: Gónada llega a su máximo tamaño y se diferencian las tres regiones. Los lóbulos anterio-res se encuentran doblados dorsalmente en forma de ganchos que llegan al extremo anterior del ce-falotórax. Ocupan toda la parte dorsal del animal, desde la parte anterior del cefalotórax hasta el tel-son. Es muy gruesa y granulosa. Es visible a través del exoesqueleto, en la articulación del cefalotórax y el abdomen. Para Farfantepenaeus brevirostris y F. californiensis (camarón chocolate) su coloración es verde oscuro y para Solenocerca agassizii (camarón coliflor) café oscuro

IV MADURO DESOVANTE: La gónada llega a su máximo tamaño y ya están bien diferenciadas las tres regiones las cuales se encuentran dobladas dor-salmente en forma de ganchos que llegan al extre-mo anterior del cefalotórax.

Ocupan toda la parte dorsal del animal, desde la parte anterior del cefalotórax hasta el telson. Es muy gruesa y granulosa. Es visible a través del exoesque-leto y en la articulación del cefalotórax y el abdo-men. Para F. brevirostris y F. californiensis su colora-ción es verde oscuro y para S. agassizii café oscuro (Figura 21).

V MADURO – DESOVADO Y RECUPERACIÓN: Las gónadas cambian su color, pasan a ser transparen-tes. Son cremosas y flácidas y su grosor disminuye por la expulsión de huevos, aunque las partes exter-nas sigan siendo las mismas que la gónada en esta-dio IV (diferenciación de las tres regiones, anterior media y posterior y conserva su misma extensión)

La coloración de la masa ovígera varía según la es-pecie a medida que avanza la madurez, en amarillo


3130



MADUREZ GONADAL

Crustáceos pálido hasta un amarillo intenso pasando finalmen-te a verde oliva; en Xiphopenaeus riveti (camarón tití) y Trachypenaeus byrdi (camarón tigre) varía dentro de una gama del verde, terminando en un tono muy oscuro; y en Protrachipene precipua (Camarón Pomadilla) entre amarillo verdoso y amarillo rojizo (Fenucci, 1988).

LANGOSTAS

Determinación Externa• HEMBRAS (H): Los pleópodos

son dobles, esta pinza posee una serie de cerdas largas don-de se fijarán los huevos fecunda-dos; mientras en los machos son sencillos.

El cefalotórax es robusto, ancho y abdomen estrecho en machos, mientras que en las hembras el abdomen es ancho para poder soportar los huevos.

El segundo par de periópodos no es desarrollado.

• En el quinto par de patas el dac-tilopodio posee una pequeña chela o “uña” en su extremo dis-tal, la cual le sirve para romper la masa espermatófora.

• MACHOS (M): El quinto par de patas termina en un dactilopo-dio sencillo, con una uña afilada y única, con setas.

En machos el segundo par de pereiopodos es largo y robusto y le sirve para sostener a la hem-bra durante el apareamiento.

Se tomarán estados reproductivos citados por Cruz (2002):

• SHCM: Hembra sin huevos con masa esperma-tófora.

• CHSM: Hembra con huevos sin masa esperma-tófora.

• CHCM: Hembra con huevos y con masa esper-matófora.

• SHSM: Hembra sin huevos y sin masa esperma-tófora.

Figura 22. Estado macroscópico SHSM.

Figura 23. Estado macroscópico CHCM.

© Salinas/ANALPAC

© Salinas/ANALPAC



MADUREZ GONADAL

Crustáceos JAIBAS

• Hembras Juveniles: abdomen triangular y adherido al tórax.

• Hembras adultas: abdomen semicircular y despegado del tórax.

• Machos juveniles: abdomen en forma de “T” invertida y pegado al tórax.

• Machos adultos: abdomen en forma de T y libre del tórax.

Tomado de Williams, 1974; Costa y Negreiros-Fransozo, 1998; Pinheiro y Fransozo, 1998.

Los estados de madurez gonadal en hembras de jai-bas (Velasco, et al., 1998; Loran, et al., 1993; Gaitan, 2003), son:

• I INMADURA: Abdomen de forma triangular y adherido fuertemente al cefalotórax.

• II MADURANDO: El abdomen es más redon-deado pero continúa adherido fuertemente.

• III MADURA: El abdomen es móvil con forma de cúpula y los pleópodos están bien desarro-llados.

• IV OVADA: Presencia de la “esponja” o masa de huevos de color naranja a café.

Moluscos BIVALVOS: (Piangua)

Figura 24. Estado I de maduración gonadal en pianguas.

Los estados de madurez gonadal para piangua Ana-dara tuberculosa, (Borda & Cruz, 2004), son:

• 0 INDETERMINADO: No es visible la gónada.

• I INMADURO: El contenido gonadal limita con el endodermo, la gónada para las hembras es naranja pálido y para machos crema claro y el contenido gonadal está entre el 1 – 20%.

• II MADURO: La gónada se localiza entre el estó-mago y el hepatopáncreas, extendiéndose por casi toda la superficie ventral. Dorsalmente va hasta el saco pericarial, anteriomente hasta el músculo aductor y posteriormente llega hasta el músculo del pie. El color en hembras es na-ranja a naranja intenso y en machos de crema a crema amarillo. El contenido gonadal está entre el 20 – 100%.

© Salinas/ANALPAC


3332


4.3 ASPECTOS DE MERCADEO Y SOCIO-ECONÓMICOS4.3.1. Evaluación de los aspectos de mercadeo

Teniendo en cuenta que la pesca es la actividad mas liga-da a la pobreza, es necesario conocer la evolución de las condiciones económicas de las comunidades de pesca-dores, colectando la información descrita en la Tabla 8 , que cambia según la dinámica pesquera en cada región, de manera mensual en lo posible (Anexo 11).

4.3.2. Aspectos socio-económicos

Se aconseja realizar estudios con periodicidad mínima de 2 años o máxima de 4 años, con el fin de determinar los aspectos básicos de cada una de las zonas y las con-diciones generales de cada comunidad pesquera (Anexo 11 y tabla 9). La periodicidad de colecta no debería su-perar el punto máximo ya que podría enmascarar las posibles variaciones socio-económicas; como por ejem-plo, la pesquería Wayuu del departamento de la Guajira (Fundación Ecosfera, com. pers)

Tabla 8. Aspectos de mercadeo referentes a la actividad pesquera.

ASPECTOS OBSERVACIONES

Distribución de ganancias por faena

• Estimar la manera de distribución del dinero logrado por la venta de los pro-ductos de la jornada de pesca (pescador, acompañantes, propietarios de embar-cación, propietario arte de pesca).

Datos de comercialización promedio

• Presentación del recurso (especificar unidad de venta, tal como tamaño, peso, mano, etc.)

• Precio (Según la unidad de venta)• Destino del recruso (Venta inicial en la cadena de comercializacion)• Recurso utilizado para consumo familiar: Nunca, rara vez, algunas veces o siem-

pre.

Valor de Captura pon-derada por faena • Valor promedio de captura ponderada mensual

Costos por faena

• Costos fijo y variables tales como combustible, hielo, sal, comida del pescador.• Aplica para todo el tipo de pesqueria.• Forma de pago por cada ítem involucrado en la actividad pesquera (citar en ob-

servaciones).

Renta por faena • Renta o ganancia promedio mensual

Tabla 9. Aspectos socio-económicos referentes a las características de la pesca.

ASPECTOS OBSERVACIONES

Información general

• Fecha de realización de la encuesta.• Lugar toma de información.• Comunidad a la que pertenece el pescador.• Sitio/s y/o caladero de pesca (cuenca o litoral) frecuente, si es factible con refe-

rencia geográfica.

Datos pescador

• Nombre/s• Lugar de nacimiento• Grupo étnico (si aplica).• Edad.• Género.• Estado civil.• Tiempo de permanencia en la comunidad.• Nivel educativo.• Número de personas a cargo.• Edad de los miembros del grupo familiar.• Número de familiares vinculados a la actividad pesquera.• Características de la vivienda• Tipo y características de los centros educativos• Salud del entorno donde vive• Distancia a las instalaciones de infraestructura de apoyo a la pesca.• Posee seguridad social

Tradición pesquera

• Desde que año ejerce la actividad• Temporalidad de su actividad (permanente u ocasional)• Motivo del porque ejerció esta actividad• Hace parte de una organización y su cargo• Actividades económicas alternas a la pesca• Temporada y tiempo que invierte.

Datos de pesca

• Tipo y características de las embarcaciones (material del casco, dimensiones, pro-pulsión, capacidad de carga, elementos de conservación del producto y propie-dad).

• Sitios de pesca que frecuenta.• Temporadas de pesca • Artes de pesca (prioridad en el uso, cantidad, tenencia y principales característi-

cas) utilizados en las faenas.

3534


5. INFORMACIÓN COMPLEMETARIA

Para estudios o investigaciones que requieran una pro-fundización con percepción holística sobre el ecosiste-ma explotado (entendimiento integral), se sugiere tener en cuenta las siguientes variables:

5.1. INFORMACIÓN AMBIENTALLas historias de vida de los recursos biológicos o los rendimientos en biomasa de los mismos, pueden ser comprendidos a partir del conocimiento de los ciclos ambientales en el ecosistema estudiado (continental, estuarino o marino). Por ello, es importante poder regis-trar variables que permitan su comparación (Tabla 10).

3736


Tabla 10. Variables ambientales relacionadas a la pesca marina y continental .

ÁREA VARIABLE OBSERVACIÓN

Cont

inen

tal

Nivel del río y Pluviosidad

Reportar de manera mensual, según lo to-mado por el observador del IDEAM, quien tiene dispuestas una serie de estaciones a lo largo del cauce.Los niveles de río se medirán en centíme-tros, mientras que la precipitación se repor-tará en milímetros.

Pará

met

ros

fisic

o-qu

ímic

os

Temperatura ambiente (°C). Se registra de manera bimensual sobre pun-tos previamente definidos de acuerdo a las condiciones de cada localidad examinada. Donde se ha designado tomar los paráme-tros físico - químicos, se debe dar su ubica-ción geográfica con ayuda de GPS siguiendo el sistema global WGS84, con coordenadas geográficas o planas (poyección UTM).Las variables prioritarias van sujetas a la par-ticularidad del estudio, sin embargo las más relevantes son la temperatura, profundidad, velocidad de la corriente y oxígeno.

Temperatura superficial (°C)

Transparencia (cm con disco Secchi)

Profundidad (m, con ecosonda o cordel graduado y lastrado).

Velocidad de la Corriente (m/s mediante boya según distancia pre – establecida o con ayuda de flujómetro)

Oxígeno disuelto (mg/l, tomado con Oxímetro digital)

Conductividad (µS/cm registrada con ayuda de conductimetro digital)

pH (tomado con potenciómetro digital)

Dióxido de carbono (CO2) (mg/l tomado con sonda)

Dureza total (mg/l tomado con sonda o colorimetría)

Alcalinidad Total (mg/l tomado con sonda)

Acidez Total (mg/l tomado con sonda)

Amonio (mg/l tomado con sonda o colorimetría)

Nitrito (mg/l tomado con sonda o colorimetría)

Cloruros (mg/l)

Mar

ino

Pará

met

ros

fisic

o-qu

ímic

os

Temperatura subsuperficial del mar - TSM Dependiendo el tipo de recurso (demersal, bentónico o superficial, se tomarán medi-ciones complementarias de los parámetros de salinidad y temperatura de acuerdo a la profundidadLas variables complementarias pueden to-marse de las citadas en la parte continental y estarán sujetas a la particularidad del es-tudio. .

Salinidad superficial del mar - SSM con un refractómetro

Transparencia (cm con disco Secchi)

Profundidad (m, con ecosonda o cordel graduado y lastrado).

Fase lunarCitar Luna nueva, Cuarto creciente, Luna lle-na o Cuarto menguante

ÁREA VARIABLE OBSERVACIÓN

Mar

ino

Esta

do d

el m

ar

Mar llano: altura de olas de 0 metros

Se reportará según las características del oleaje producidas por el efecto del viento, según la escala de Douglas En: www.ema-resme.com.

Mar rizada: altura de olas < 0,1 metros

Marejadilla: altura de olas entre 0,1 y 0,5 metros

Marejada: altura de olas entre 0,5 y 1,25 metros

Marejada fuerte: altura de olas entre 1,25 y 2,5 metros.

Mar grueso: altura de olas entre 2,5 y 4 metros.

Mar muy grueso: altura de olas entre 4 y 6 metros.

Mar arbolada: altura de olas entre 6 y 9 metros

Mar montañosa: altura de olas entre 9 y 14 metros

Mar enorme: altura de olas mayores a 14 metros

• En laboratorio se puede detallar con mayor veracidad el contenido estomacal, pudiendo analizarse por método gravimétrico para con-tenidos totales y por método numérico y de frecuencia para los organismos que aparecen completos o parcialmente digeridos. El mate-rial o los organismos se identifican hasta la ca-tegoría taxonómica posible, cuando el grado de digestión así lo permita.

• Se aconseja aplicar análisis referidos a: i) coeficiente de vacuidad determina en qué período se alimen-tan los organismos, ii) frecuencia de una presa o alimento, señala la periodicidad o aparición de una presa, iii) porcentaje en número, expresa el núme-ro de individuos de cada categoría taxonómica, iv) porcentaje en peso, brinda el peso de los individuos por categoría taxonómica; v) coeficiente alimenta-rio, determina la importancia de una presa; vi) índi-ce gravimétrico, corresponde al porcentaje en peso de cada ítem y el peso total del contenido estoma-cal, vii) índice de importancia relativa, relaciona la frecuencia con el peso y número de individuos que constituyen el alimento siendo estos los parámetros más importantes en la alimentación.

5.2. INFORMACIÓN BIOLÓGICA: CONTENIDO ESTOMACAL Y HÁBITOS ALIMENTICIOS • Los contenidos estomacales son evaluados por ob-

servación directa durante el proceso de eviscera-ción de los ejemplares o por análisis en laboratorio.

• Se realiza una primera calificación del contenido de la siguiente manera:

• Porcentaje de llenado: evaluación cualitativa que considera el siguiente criterio: 0% (estóma-go vacío), 25% de llenado, 50% de llenado, ¾ partes lleno o 100% lleno.

• Grado de digestión: se clasifica como fresco, semidigerido y digerido. El material fresco es aquel donde el alimento no presenta evidencia de digestión, o está limitada solamente a las membranas de las aletas en una presa; semidi-gerido cuando la parte exterior del cuerpo está digerida, pero todavía se mantiene su integri-dad; y digerido cuando el cuerpo está bastante alterado por la digestión.


3938


5.3. ECOSISTEMAS Y FLUJOS DE ENERGÍA

El creciente interés en entender el funcionamiento de la pesquería basado en la aproximación al ecosistema, ha conducido a la modelación de ecosistemas marinos, dulceacuícolas y de sus recursos pesqueros, para lo cual se hace necesario identificar los componentes bióticos y abióticos que juegan roles importantes en términos de la estructura y dinámica comunitaria. Al ser los ecosis-temas increíblemente complejos, se ha dado lugar a un sin número de esfuerzos en la búsqueda de la modela-ción ecológica y del análisis de los ecosistemas, lo que ha producido una gran variedad de técnicas, herramientas y software que mediante representaciones matemáticas investiga la estructura, propiedades y características del ecosistema.

En tal sentido, el interés de los investigadores y adminis-tradores no debe desconocer el identificar y entender las interacciones depredador-presa que regulan la distri-bución y abundancia de los organismos vivos, más allá de la simple evaluación de la biomasa de los recursos de importancia comercial. Actualmente, el paradigma del enfoque ecosistémico aplicado a pesquerías impone la necesidad de comprender los efectos de la pesquería en

el ecosistema y los efectos del ecosistema en las pesque-rías (Medina et al., 2007).

Para poder tener ese enfoque se debe integrar la infor-mación disponible de la pesquería con información del ecosistema y así entender cuál es el papel de la especie, morfoespecie, grupo funcional o grupo trófico objeto, en el ciclo de energía del sistema y que ocurriría si se extrajese uno u otro componente del ecosistema. Esa descripción coherente del medio natural que enfatice los aspectos para comprender su funcionamiento en un contexto multiespecifico, requiere de un modelaje (Ca-margo et al., 2009 En: Camargo, 2009). En ecosistemas tropicales, una de las principales relaciones ecológicas entre organismos es la de carácter trófico, donde la mor-talidad por depredación constituye una de las principa-les causas de mortalidad natural (Pauly, 1989).

En esa vía, se pueden construir modelos de flujos de energía en los que se definen compartimientos que intercambian biomasa mediante el consumo alimenti-cio. Un compartimiento se forma por una o por un grupo de especies con afinidad alimentaria, proximidad taxo-nómica y/o estrategias de crecimiento parecidas (Ca-margo et al., 2009 En: Camargo, 2009). Para representar la estructura trófica deben considerarse los siguientes elementos:

• Área y periodo de estudio: delimitar el área de es-tudio en coordenadas geográficas y km2, utilizando como criterio la afinidad hidrológica, geológica o geográfica, área de operación de la pesquería y dis-ponibilidad de información primaria y secundaria. El periodo de estudio debe manejarse en términos anuales.

• Productores primarios: bosque inundable o man-glares; macrófitas o pastos marinos; fitoplancton.

• Consumidores no peces: zooplancton, fauna ben-tónica, aves, quelonios, cocodrilianos, mamíferos acuáticos.

• Peces: estos pueden clasificarse por especie o por hábitos alimentarios (detritívoros, omnívoros, fru-gívoros, piscívoros, grandes depredadores, etc.), a partir de los estudios cuantitativos y cualitativos de los contenidos estomacales llevados a cabo sobre los peces.

La información requerida para cada uno de los compo-nentes detallados tiene que ver con conocer su biomasa, producción y tasa de consumo que se determinan si-guiendo metodología específica para cada componente. Estas variables se definen de la siguiente manera:

• Biomasa (B): corresponde a la masa total de un gru-po expresada en g o kg por área. Existen métodos para estimar la biomasa en cada componente. Para el caso de los peces, los parámetros biológicos esti-mados en las evaluaciones pesqueras y los desem-barcos permiten calcular las biomasas, aunque para algunos casos, puede también hacerse mediante pesca experimental.

• Producción (P): corresponde a la generación de te-jido por cierto grupo de organismos en un período de tiempo. Es común manejar una relación produc-ción/biomasa (P/B) por año. Para el caso de los pe-ces, es posible calcular la relación P/B atendiendo la propuesta de Allen (1971), para la cual las pobla-ciones en equilibrio con crecimiento tipo von Berta-lanffy tiene una relación P/B del mismo valor que la mortalidad total (Z).

• Consumo (Q): corresponde al alimento ingerido por un grupo funcional del ecosistema durante un período de tiempo. Generalmente se maneja bajo la relación entre consumo y biomasa (Q/B). Para los peces, la relación Q/B puede calcularse mediante la

ecuación empírica propuesta por Palomares y Pauly (1998).

• Dieta de los depredadores: definida como la frac-ción en volumen del alimento (presa) ingerido por el depredador. Información que se obtiene de los análisis estomacales del producto pescado o por registros secundarios.

• Captura: corresponde a la cantidad de biomasa de un grupo removida del sistema por la pesca. Tiene las mismas unidades de medida que la biomasa. En recursos pesqueros, este valor se obtiene con base en el monitoreo de los desembarques.

En la actualidad es común que el análisis de las relacio-nes tróficas y la estructura comunitaria del ecosistema se incorporen en el programa Ecopath con Ecosim (EwE, www.ecopath.org). Ecopath puede analizar el modelo ecosistemico con especial atención sobre el uso de ade-cuado y sostenible de las pesquerías, de tal suerte que sirve como base para realizar simulaciones dinámicas de cambios en el esfuerzo pesquero y evaluar el impacto relativo de la pesca en un tiempo dado. Igualmente, per-mite investigar aspectos de la distribución espacial de los grupos o de las operaciones pesqueras y permite ex-plorar la aplicación de políticas, mientras da cuenta de los efectos espaciales de la dispersión y de la migración (Christensen & Walters, 2004; Christensen et al., 2005).

El modelo obtenido con Ecopath permite tener una idea aproximada del ecosistema en función de los principales flujos, como respiración, consumo y producción total en-tre otra serie de índices ecológicos y puede determinar propiedades holísticas e índices de flujos del ecosistema basados en conceptos teóricos (Odum, 1969 y Ulanowi-cz, 1986. En: Medina et al., 2007). El programa puede es-timar los siguientes flujos tróficos (tomado de Medina et al., 2007):

• La suma de los flujos que se producen en el sistema (FT) que es una medida del tamaño del ecosistema (Jarre-Teichmann et al., 1998).

• La producción primaria total que es calculada como la suma de la producciones de todos los grupos que pueden ser atribuibles a la producción primaria (Christensen et al., 2005).

• La producción primaria requerida para sostener las capturas que es calculada siguiendo la metodología propuesta por Christensen & Pauly (1993).

4140


• El índice de reciclaje de Finn (FI), que corresponde a la fracción de FT que es dirigida al reciclaje de mate-ria (Finn, 1976 en Christensen et al.,2000).

• La longitud promedio de las rutas tróficas.

• El nivel trófico fraccional de cada grupo, lo que per-mite representar en un gráfico, el diagrama de flujo del modelo ecotrófico balanceado, todos los flujos y biomasas que ocurren en el sistema.

• El nivel trófico promedio de las pesquerías (Pauly et al., 1998).

• Atributos o indicadores del ecosistema propuestos por la teoría de Odum (1969) para caracterizar el grado de madurez y resiliencia de un ecosistema.

• Relaciones de biomasa final según el esfuerzo relati-vo de pesca aplicado sobre el ecosistema

5.4. CONTAMINACIÓN Uno de los grandes impactos de las actividades antrópi-cas (ejercidas por el hombre) es la contaminación de los ambientes acuáticos que se ve reflejada en el agua, los sedimentos y la biota, especialmente referida al mercu-rio, organoclorados y organofosforados.

El mercurio, este metal se transforma en el agua en metíl mercurio y es rápidamente absorbido en la cadena ali-menticia, desde detritívoros hasta los animales carnívo-ros que bioacumulan el metal, lo que afectará la salud de las personas que consumen estos productos. En los cuerpos de agua continentales existe una minería arte-sanal que libera mercurio al ecosistema, lo que implica una amenaza para la población ribereña y los demás co-lombianos que son asiduos consumidores de productos pesqueros.

En la medida que los productos pesqueros hacen parte de las dinámicas de comercialización del país y se iden-tifican como ejes de productividad en varios lugares de Colombia, es importante considerar dentro del protoco-lo el monitoreo (corto y largo plazo) sobre los ambientes acuáticos y la biota pescada, para determinar la presen-cia y grado de acumulación de contaminantes, no solo para mitigar los impactos por contaminación si no para

cumplir con los aspectos sanitarios de productos pes-quero libres de contaminantes. Por esta razón es reco-mendable hacer un seguimiento continuo de los niveles de este metal pesado acumulado en el músculo de los peces de mayor importancia comercial, así como tam-bién en el sedimento y en el agua.

La metodología en campo para la toma de muestras re-lacionadas a bioacumulación se dan de la siguiente ma-nera, según lo citado por Marquez et al., (2008) y Lasso et al. (2010).

Muestra de tejido muscular

• Toma de individuos frescos (preferiblemente in situ) capturados tanto en el día como en la noche por área de muestreo. Se sugiere en cada monitoreo, por zona, un mínimo de 10 individuos por especie.

• Extraer tejido muscular de la parte posterior de la aleta dorsal en bloques de aproximadamente 3x4 cm y 40 g.

• Empacar las muestras en papel de aluminio y bol-sas herméticas debidamente rotuladas y finalmente congelar para generar la determinación de dichos compuestos (mercurio, pesticidas organoclorados y organofosforados) .

Muestra de sedimento y agua

• En cada área donde se capturó el recurso, se colec-tarán dos (2) muestras de sedimento y dos (2) de agua.

• El sedimento se tomará alejado de los asentamien-tos humanos y se almacenaran en bolsas herméti-cas, las cuales deben mantenerse frías hasta la lle-gada al laboratorio.

• Las muestras de agua se colectarán en botellas de vidrio oscuro de un (1) litro, adicionándoles un (1) ml de ácido ascórbico, sellándolas y manteniéndo-las frías en cavas llenas de hielo hasta su fase de análisis.

Paralelo a la toma de dichos parámetros es importante generar una exploración y encuestas a la comunidad en las áreas de interés con el fin de localizar las principales actividades y orígenes en la contaminación.

6. BIBLIOGRAFÍA

• ACOSTA, L.E. 2003. Formatos componente socio-económi-co. Toma de información, variables y atributos. Proyecto binacional Manejo Integral de la Pesca. Instituto Amazó-nico de Investigaciones Científicas SINCHI. Inédito. Leticia, 17p.

• AGUDELO, E. 2003. Formatos para la toma de información en campo: variables y atributos de orden biológico, físico – químico y pesquero. Proyecto binacional Manejo Inte-gral de la Pesca. Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas SINCHI. Inédito. Leticia, 23p.

• AGÜERO, M (ed) 2007. Capacidad de pesca y manejo pes-quero en América Latina y el Caribe. FAO Documento téc-nico de pesca No. 461. Roma, 403 p.

• ALLEN, K.R. 1971. Relation betwen production and bio-mass. Journal of the fisheries research board of Canada, 28: 1573 - 1581

• ALLESINA, S. 2004. Ecological flow networks: Topological and functional features. Tesis doctorado en Ecología. Uni-versidad de Parma. Italia. 204p.

• ARIAS ARIAS, P. (compilado), 1988. Artes y métodos de pesca en aguas continentales en América Latina. COPES-CAL Documento ocasional No. 4. Roma. 178 p.

• BJARNASON, B. A. 2002. Pesca con línea de mano y con calamarera. Colección FAO: Capacitación No. 23. 62 p.

• BORDA, C A., & CRUZ, R. 2004. Reproducción y recluta-miento del molusco Anadara tuberculosa (Sowerby, 1833) en el Pacífico Colombiano. En. Rev. Invest. Mar. 25 (3): 185-195.

• BUSTAMANTE, C. 2007. Análisis histórico del recurso ti-burón y bases biológico-pesqueras del tollo vieja (Chon-drichthyes Triakidae) Mustelus henlei (Gill, 1863) captu-rado en la pesca camaronera y artesanal en el puerto de Buenaventura, Pacífico colombiano. Santa Marta: Tesis de Grado para optar al título de Biólogo Marino. Universidad Jorge Tadeo Lozano. 185 pp.

• CADDY, J. F., & BAZIGOS, G. P. 1988. Orientaciones Prácticas para el Seguimiento Estadístico de la Pesca en Situaciones de Escasez de Personal. Roma: FAO Doc. Téc. pesca (257): 85 p.

• CAMARGO, M. 2009. Teias alimentares e fluxos de energía. En: Camargo, M. & R. Ghilardi Jr. (eds). 2009. Entre a terra, as águas e os pescadores do médio rio Xingu - uma abor-dagem ecológica. Brasil. Pp: 297 - 329

4342


• CASTRO L, M. 2007. Informe final del estudio de diagnós-tico relativo a las estadísticas agropecuarias de los países Andinos. 1173 p.

• CHRISTENSEN, v. & D. PAULY. 1993. A guide to the ECOPATH II software system (vers 2.1). ICLARM Software 6, 72 p.

• CHRISTENSEN, V. & C. WALTERS. 2004. ECOPATH with Eco-sim: methods, capabilities and limitations. Ecological mo-delling 172: 109-139.

• CHRISTENSEN, V. , C.J. Walters & D. Pauly. 2000. Ecopath with Ecosim: A user’s guide. Fisheries Centre, University of British Columbia Vancouver, Canada and ICLARM, Penang, Malaysia, 131 pp.

• CHRISTENSEN V., WALTERS C.J. & D. PAULY. 2005. ECOPATH with Ecosim: A user’s guide. Fisheries Centre, University of British Columbia, Canada, 154 pp.

• COCHRANE, K. L. (ed). 2005. Guía del administrador pes-quero. Medidas de ordenación y su aplicación. FAO. Docu-mento técnico de pesca No. 424. Roma, FAO. 231 p.

• CONDE-MORENO, M & F. GALVAN-MAGAÑA. 2006. Repro-ductive biology of the mako shark Isurus Oxyrinchus on the south-western coast of Baja California, Mexico. En: Cy-bium 30 (4). 75-83 pp

• COSTA, T. M. & NEGREIROS-FRANSOZO, M. L. 1998. The re-productive cycle of Callinectes danae Smith, 1869 (Deca-pada: Portunidae) in the Ubatuba region, Brazil. En: Crus-taceana. Vol. 71, No. 6: 615-627.

• CRUZ, R. 2002. Manual de métodos de muestreo para la evaluación de las poblaciones de langosta espinosa. Roma: FAO. Documento técnico de pesca 399. 43p.

• CSIRKE, J., 1980 Introducción a la dinámica de poblaciones de peces. FAO. Documento técnico de pesca No. 192. 82 p.

• CERVIGÓN, F. 1992. Fichas FAO de identificación de es-pecies para los fines de pesca, Guía de Campo. Especies comerciales marinas y de aguas salobres de la costa sep-tentrional de Sur América, FAO. 513 p.

• DELGADO, M.F., GUALTEROS, W., ESPINOSA, S., LUCERO, C., CORTES, N., ROLDAN, A.M., ZAPATA, L.A., CANTERA, J.R., CANDELO, C., PALACIO, C., MUÑOZ, O., MAYOR G., GIL-AGUDELO, D.L. 2010. “Pianguando – Estrategias para el manejo de la Piangua” (Cartilla). INVEMAR; ASCONAR, WWF Colombia, Universidad del Valle, UAESPNN – PNN Sanquianga; Co-financiado por el Ministerio de Agricultu-ra. Serie de publicaciones generales INVEMAR No. 45. Cali, Colombia. 20p.

• DALSGAARD, J, JARRE-TEICHMANN A, WALTERS C, PAULY D. 1998. An approach to the modelling of persistent pollu-tants in marine ecosystems.

• FAO, 1998. La pesca continental. FAO Orientaciones técni-cas para la pesca responsable. No. 6. Roma 49 p.

• FAO, 1999. La ordenación pesquera. FAO. Orientaciones técnicas para la pesca responsable. No. 4. Roma 81 p.

• FAO, 2000. Indicadores para el desarrollo sostenible de la pesca de captura marina. FAO Orientaciones técnicas para la pesca responsable No. 8. Roma. 68 p.

• FAO, 2001. Directrices para la recopilación sistemática de datos relativos a la pesca de captura, Documento técnico de pesca No. 382, Roma, FAO. 132 p.

• FAO, 2003. Estrategia para mejorar la información sobre la situación y las tendencias de la pesca de captura. Roma, 34 p.

• FAO; OSPESCA., 2010. Taller Regional FAO/OSPESCA sobre el mejoramiento de los sistemas de información y recopi-lación de datos pesqueros para América Central y el Ca-ribe. San Salvador, El Salvador, 23 – 26 de enero de 2006. FAO, Informe de pesca y acuicultura No. 919, Supl. Roma, FAO, 2010. 137 p.

• FENUCCI, JORGE L., 1988. Manual para la cría de camaro-nes penaeidos. Documento de capo 8 (es). FAO, Brasil. En: http://www.fao.org/docrep/field/003/AB466S/ AB466S00.htm#TOC.

• FISCHER, W,; KRUPP, F.; SCHNEIDER, W.; SOMEER, C.; CAR-PENTER, K.E.; NIEM, V.H. 1995. Guía FAO para la identifica-ción de especies para los fines de pesca. Pacífico centro – oriental. Volumen I. Plantas e invertebrados. Roma. 646 p.

• GAITAN, A. 2003. Composición y abundancia de jaibas (PORTUNIDAE) y caracterización de algunos aspectos bio-lógicos de Callinectes sapidus y Callinectes bocourti en el sistema estuaríno Navío Quebrado (Guajira: Caribe colom-biano). Tesis de grado. Universidad Jorge Tadeo Lozano. Facultad de Biología Marina. Bogotá. 143 p.

• GARCIA, S. & L. LE RESTE, 1986. Ciclos vitales, dinámica, ex-plotación y ordenación de las poblaciones de camarones peneidos costeros. FAO Doc. Téc. Pesca, (203):180 p.

• GARZÁS, J. Los sistemas de información: importancia, fun-damentos, calidad y gestión estratégica de las tecnologías de la información. En: GTRT – OSPESCA, 2008. Protocolo de colecta de datos de los desembarques y muestreo bio-lógico en la pesca artesanal e industrial de tiburones y ra-yas en América Central. 36 p,

• GULLAND, J. A. & ROSEMBERG A. A. 1992. Examen de los metodos que se basan en tallas para evaluar las poblacio-nes de peces. Roma: FAO Documento técnico de pesca No, 232. 122 p.

• GUTIÉRREZ, F., LLINÁS C., NAVARRETE F., Y SANCLEMENTE G. (Editores). 2008. Compendio de legislación ambiental aplicable al territorio marino costero de Colombia. Cor-poración ECOVERSA- Conservación Internacional. Bogotá D.C.

• HILBORN, R. y C. J. WALTERS. 1992. Quantitative Fisheries Stock Assessment: Choice, Dynamics and Uncertainty. Chapman and Hall, New York. 570 p.

• HOLDEN, M. J., & RAITT, D. F. S. 1975. Manual de ciencia pesquera parte 2. Métodos para investigar los recursos y su aplicación. FAO, Roma. 279 p.

• HURTADO, J. 1998. Aspectos biológico-pesqueros del Arapaima gigas (CUVIER 1817) (Pisces: Arapaimidae) en el sistema de várzea (lagos de Tarapoto, el correo y zonas aledañas)en el municipio de Puerto Nariño – Amazonas. Tesis biología marina. Universidad del Valle. Cali. 95p.

• INP, 2007; Análisis de la pesquería de peces pelágicos pe-queños en el Ecuador (1981-2007).

• LASSO, C. A., J.S. USMA, F. TRUJILLO y A. RIAL 2010 (Edi-tores). Biodiversidad de la cuenca del Orinoco: bases científicas para la identificación de áreas prioritarias para la conservación y uso sostenible de la biodiversidad. Ins-tituto de investigaciones de recursos biológicos Alexan-der Von Humboldt, WWF Colombia, Fundación Omacha, Fundación La Salle e Instituto de Estudios de la Orinoquia

(Universidad Nacional de Colombia). Bogota D.C., Colom-bia. 609 pp.

• JARRE-TEICHMANN, A., L.J. SHANNON, C.L. MOLONEY & P.A. WICKENS. 1998. Comparing trophic flows in the southern Benguela to those in other upwelling ecosys-tems. S.C. Pillar, C.L. Moloney, A.I.L. Payne & F.A. Shillington (eds.). S. Afr. J. Mar. Sci., 19: 391-414.

• LORAN, N. R. M.; VALDEZ, G. A. J. & ESCUDERO, G. F. 1993. Algunos aspectos poblacionales de las jaibas Callinectes spp en la laguna de Alvarado, Veracruz. En Ciencia Pesque-ra. Vol. 10 (1993); p. 15-31.

• MARQUEZ, A., W. SENIOR, I. FERMIN, G. MARTINEZ, J. CASTAÑEDA y A. GONZALEZ. 2008. Cuantificación de las concentraciones de metales pesados en tejidos de peces y crustáceos de la Laguna de Unare, estado Anzoategui, Venezuela. Revista Científica de la Facultad de Ciencias Veterinarias. Jan-Feb 2008.

• MARTÍNEZ, R., & MARTÍNEZ, N. 1997. Diseño de Experi-mentos. Santafé de Bogotá: Fondo Nacional Universitario.

• MARTÍNEZ, C., & MARTÍNEZ C. (2009). Trabajo de grado para optar el título de profesional en acuicultura: CORRE-LACIÓN ENTRE LA RESISTENCIA GENÉTICA AL VIRUS DE LA MANCHA BLANCA Y EL DESEMPEÑO REPRODUCTIVO DEL CAMARÓN MARINO Penaeus vannamei . Montería, Univer-sidad de Córdoba.

• MEDINA, M., ARANCIBIA, H. & S. NEIRA. 2007. Un modelo trófico preliminar del ecosistema pelágico del norte de Chile (18°20’S-24°00’S). Investigaciones Marinas, Vol. 35 (1): 25-38.

• NÉDÉLEC, C & PRADO, J. 1990 Definition and classification of fishing gear categories. Définition et classification des categories d’engins de péche. Definición y clasificación de las diversas categorías de artes de pesca. FAO Fisheries Technical Paper. No. 222. Revision 1. Rome, FAO. 92p.

• NUÑEZ J. AND DUPONCHELLE F. (2009). Towards a univer-sal scale to assess sexual maturation and related life his-tory traits in oviparous teleost fishes. Fish Physiology and Biochemistry 35: 167-180.

• PALOMARES, D.M.L. & M. PAULY. 1998. Predicting food consumption of fish populations as functions of mortality, food type, morphometrics, temperature and salinity. Mari-ne Freshwater Research, 49: 1-7.

• PAULY, D. 1989. Food consumption by tropical and tempe-rate fish populations: some generalizations. J. Fish. Biol., 35(Suppl. A): 11-20.

• PAULY, D., A.W. TRITES, E. CAPULI & V. CHRISTENSEN. 1998. Diet composition and trophic levels of marine mammals. ICES J. Mar. Sci., 55: 467-481.

• PINHEIRO, M. A. & FRANSOZO A. 1998. Sexual maturity of the speckled swimming crab Arenaeus cribarius (Lamarck,

1818) (Crustacea, Brachyura, Portunidae), in the Ubatuba littoral, Sao Paulo State, Brazil. En: Crustaceana. Vol. 71, No. 4: 434-452.

• RAMÍREZ R. M., CRUZ A. G. Y LÓPEZ F. C., Caracterización socioeconómica del ordenamiento ecológico marino: re-presentación de los impactos de las actividades socioeco-nómicas en el ambiente marino. En: http://www2.ine.gob.mx/publicaciones/libros/607/caract2.pdf

• RUEDA, M., F. RICO, W. ANGULO, A. GIRÓN, A.L RODRÍGUEZ, L.M GARCÍA Y L.N. ARENAS. 2010. Evaluación biológico pesquera del estado de las poblaciones de camarón de aguas profundas, mediante la aplicación de métodos di-rectos (prospección pesquera) e indirectos (estadísticas de captura y esfuerzo) en el Pacífico colombiano. Informe Final de Proyecto código 031 2007T6650-909-07. MADR. INVEMAR. Santa Marta, Colombia. 76p + Anexos.

• SEIJO, J., O. DEFEO Y S. SALAS. 1997. Bioeconomía pesque-ra: Teoría, modelación y manejo. FAO, Roma (368):176 p.

• SUBSECRETARÍA DE RECURSOS PESQUEROS, MINISTERIO DE AGRICULTURA-GANADERÍA-ACUACULTURA Y PESCA, NATIONAL OCEANIC AND ATMOSPHERIC ADMINISTRA-TION & UNITED STATES DEPARMENT OF STATE. 2010. III Taller Interregional para la Ordenación y Conservación de Tiburones en el Océano Pacífico Oriental (OPO). 6-9 julio 2010. Manta, Manabí, Ecuador, América del Sur. 37 p.

• SPARRE, P., & VENEMA, S. 1997. Introducción a la Evalua-ción de Recursos Pesqueros Tropicales. Parte 1. Documen-to técnico de pesca Np. 306/1 Roma: FAO. 652 p.

• TRESIERRA, A. & CULQUICHICÓN, Z. 1993. Biología pesque-ra. Primera edición. Editorial Libertad. Trujillo – Perú. 432 p.

• VAZZOLER, A.E.A. de M. 1996 Biologia e reproducao de peixe teleósteos: teoria e prática. Maringá, Eduem, 169 p.

• VELASCO, C. M., D. O. JAVIER, A. RAMÍREZ. 1998. Evaluación biológico pesquera de la jaiba Callinectes toxotes, para el área comprendida entre Buenaventura y la desemboca-dura del Río Naya, durante abril de 1996 y septiembre de 1997. En Memorias del XI seminario nacional de política, ciencias y tecnologías del mar; UJTL, Bogotá. 10 p.

• VEGAS, M. 1977. Ictiología. texto experimental Universi-dad del Valle, Cali.2n47 p.

• WILLIAMS, A. B. 1974. The swimming crabs of the genus-Callinectes (Decapoda: Portunidae). En: Fishery Bulletin. Vol. 72, No. 3: 1-798.

• ZAPATA, L. A. 1992. Implementación del sistema de es-tadística de captura y esfuerzo de la pesquería artesanal e industrial en el Pacífico colombiano. Memorias VIII Semi-nario Nacional de las Ciencias y las Tecnologías del Mar y Congreso Centroamericano y del Caribe en Ciencias del Mar. Santa Marta, 178-195 pp.

4544


7. ANEXOS

9. Con motor: Si se ha definido que se va a estratifi-car el universo de la flota pesquera de la población en embarcaciones con motor, escribir el número de embarcaciones que en ese día se emplearon en fae-nas de pesca con motor.

10. Sin motor: Escribir el número de embarcaciones que en ese día se emplearon en faenas de pesca sin motor.

11. Con motor: Escriba el número de embarcaciones con motor que en ese día NO se emplearon en fae-nas de pesca.

12. Sin motor: Escriba en número de embarcaciones sin motor que en ese día NO se emplearon en faenas de pesca.

13. Observaciones: Escriba las observaciones corres-pondientes y que ayuden a entender el porqué si hay o no actividad pesquera.

14. Encuestador: Coloque el nombre del encuestador que registra la información.

15. Fecha: Registre la fecha en que se diligenció este formato en: Día, mes y año.

Instructivo formulario de estadísticas control de la flota pesquera artesanal (Anexo 1)

1. Formulario: El programa para la digitación deberá dar el número del formulario, para hacerle segui-miento fácilmente. El digitador deberá anotar en las casillas correspondientes dicho número.

2. Continental: Señale con una X si se está haciendo el control de la flota pesquera artesanal en aguas con-tinentales.

3. Marino: Señale con una X si se está haciendo el con-trol de la flota pesquera artesanal en aguas marinas.

4. Municipio: Escriba el nombre del municipio donde está haciendo el control de la flota pesquera artesa-nal.

5. Comunidad: Precise el nombre de la comunidad donde se está haciendo el control de la flota pes-quera artesanal.

6. Día: Escriba el día en el cual está haciendo el control de la flota pesquera artesanal.

7. Mes: escriba el mes en el cual está haciendo el con-trol de la flota pesquera artesanal.

8. Año: escriba el año completo en el cual está hacien-do el control de la flota pesquera artesanal.

Anex

o 1.

4746


Instructivo formulario de estadísticas control del esfuerzo pesquera artesanal (Anexo2)

• Artepesca:Registreelvalortotaldelosgastosco-rrespondientes a las artes de pesca que se utilizaron en la faena de pesca.

• Embarcación:Escribaelvalortotaldelosgastosquecorresponden a la embarcación que se utilizó en la faena de pesca.

• Hielo:Registreelvalortotaldelhieloquesecomprópara la realización de la faena de pesca.

• Caba:Anoteelvalortotalcorrespondientealacom-pra o reparación de la caba donde almacenarán los animales capturados.

• Otro:Registresihayotrogasto,registreelvalorco-rrespondiente.

10. Inicia: Se refiere a la fecha y hora de inicio de la faena de pesca. Utilizar hora militar, es decir en formato de 24 horas.

• Fecha:escribalafechadeiniciodelafaenadepescaasí: Día/Mes/Año

• Hora:escribalahoradeiniciodelafaenadepesca.

En la fila a) coloque lo correspondiente al primer arte de pesca, en la b) al segundo y así sucesivamente hasta la fila d), si fueron utilizados varios artes de pesca en la faena.

11. Termina: Corresponde a la fecha y hora de finaliza-ción de la faena de pesca.

• Fecha:Escribalafechadefinalizacióndelafaenadepesca así: Día/Mes/Año

• Hora:escribalahoradefinalizacióndelafaenadepesca.

En la fila a) coloque lo correspondiente al primer arte de pesca, en la b) al segundo y c) al tercero, si fueron utiliza-dos varios artes de pesca en la faena.Características del arte de pesca: Escriba las principales características de cada arte de pesca en las filas a, b y c, empleados en la faena de pesca. Es importante destacar que las características a ser indagadas se pueden modifi-car según corresponda a las diferentes pesquerías.

• Nombredelarte:Escribaelnombredelartedepes-ca empleado.

• Construcción:






6. Estrato: Si el diseño estadístico del sistema de in-formación es estratificado, anote en este aparte el estrato que le corresponda a la información regis-trada.

7. Lugar de pesca: Escriba lo más detallado posible el lugar de pesca donde se efectuó la faena. Si es po-sible use GPS, siguiendo el sistema global WGS84, con coordenadas geográficas o planas (proyección UTM).

8. Nombre del Pescador: Registre el nombre del pesca-dor al que le está haciendo la encuesta.

9. Costos faena: Determine los costos que se incurrie-ron para la realización de la faena.

• Carnada:Registreelvalortotalgastadoencarnadapara la realización de la faena de pesca.

• Sueldos:Escribaelvalortotaldelossueldosquesepagaron para la realización de la faena de pesca.

• Alimentación:Anoteelvalortotaldelacomidaquese utilizó para la alimentación de los pescadores du-rante la realización de la faena de pesca.

• Combustible:Escribaelvalor totaldecombustibleque se utilizó para la realización de la faena de pes-ca.

• Material:Detalleelmaterialdeconstruccióndelarte de pesca.

• Anzuelos: Escriba elmaterial y tamaño de losanzuelos empleados.

• Dimensiones• Long: Escriba la longitud total en metros del

arte de pesca empleado• Prof:Registreenmetros laprofundidadoalto

del arte• Línea:Detallelalongitudtotalenmetrosdela

línea de anzuelos.• Omalla:Escribaelojodemallaencentímetros.

• Distribución:• Fond:SeñaleconunaXsielarteesutilizadoen

el fondo• Sup:SeñaleconunaXsielarteesutilizadoenla

superficie• Derv:SeñaleconunaXsielarteesutilizadoala

deriva.

12. Número de lances: Anote en la fila correspondiente el número de lances que realizó el pescador en la faena de pesca con cada uno de los artes de pesca empleados.

13. Nombre especies: Escriba el nombre común y el nombre científico (que debe estar correlacionado con el nombre científico en las respectivas bases de datos), de las especies capturadas por cada uno de los artes de pesca empleados, en las filas correspon-dientes. Hay dos opciones por arte de pesca.

14. Peso (kg): Escriba el peso en Kilogramos de cada una de las especies capturadas por arte de pesca empleado. Este peso corresponde al peso del pro-ducto fresco y entero.

15. Número de individuos: Escriba el número de indi-viduos de cada una de las especies capturadas por arte de pesca empleado. Este ítem es especialmente importante en la pesca de peces ornamentales.

16. Observaciones: Escriba las observaciones pertinen-tes al esfuerzo.



4948


Anex

o 2.

Instructivo formulario de desembarco pesquera artesanal de consumo y ornamental (Anexo 3)

9. Fecha: Escriba la fecha de la recepción del producto, así: Día/Mes/Año.

10. Lugar de acopio: Escriba el nombre del lugar de aco-pio donde está tomando la información.

11. Procedencia: Escriba la procedencia del producto que está registrando.

12. Especie: Escriba el nombre común y el nombre cien-tífico de la especie que está registrando.

En las casillas 13, 14, 15 y 16 coloque el nombre de las presentaciones del producto.• Pes: registre el peso en Kg., de cada una de las pre-

sentaciones de las especies. • Ind(*): Aplica para Ornamentales y se coloca el nú-

mero de individuos en el espacio gris• $: Coloque el valor en $/Kg., de cada una de las pre-

sentaciones de las especies.• Des: Escriba el destino de cada una de las presenta-

ciones de las especies.

13. Observaciones: Escriba las observaciones pertinen-tes.









7. Lugar de pesca: Escriba lo más detallado posible el lugar de pesca donde se efectuó la faena de pesca. Si es posible use GPS, siguiendo el sistema global WGS84, con coordenadas geográficas o planas (pro-yección UTM).

8. Lugar de desembarco: Registre el nombre del lugar donde se efectuó el desembarco, lo más detallada-mente posible.

5150


Anex

o 3.

Instructivo formulario de desembarco y esfuerzo de pesca industrial (Anexo 4)

13. Camarón Café: Registre el peso en kilogramos de este producto.

14. Camarón Tití: Registre el peso en kilogramos de este producto.

15. Camarón Pomadilla: Registre el peso en kilogramos de este producto.

16. Camarón Tigre: Registre el peso en kilogramos de este producto.

17. Camarón Coliflor: Registre el peso en kilogramos de este producto.

18. Peces: Registre el peso en kilogramos de este pro-ducto.

19. Especies someras: Registre el peso en kilogramos del camarón blanco por cada una de las clasificacio-nes comerciales establecidas.

20. Especies profundas: Anote el peso en kilogramos del camarón rojo o del camarón coliflor por cada una de las clasificaciones comerciales establecidas.

21. Peces: Escriba el nombre común y científico de la especie, el peso de su captura en kilogramos y el número de individuos (si es posible).

22. Moluscos: Registre el nombre científico y común de la especie de molusco el peso de su captura en kilo-gramos y el número de individuos (Si es posible)

23. Observaciones: Registre las observaciones perti-nentes para la mayor comprensión de los datos es-critos en el formato.




2. Embarcación: Escriba el nombre y/o el número de registro de la embarcación.

3. Permisionario: Escriba el nombre de la empresa o persona que posee el permiso de pesca.

4. Municipio: Escriba el nombre del municipio donde está haciendo el registro de desembarco y esfuerzo de pesca industrial.

5. Desembarco-muelle: Registre el nombre del lugar donde se efectuó el desembarco, lo más detallada-mente posible.

6. Comprador: Escriba el nombre de la empresa que compra el producto de la embarcación industrial.

7. Zarpe: Escriba el día, el mes y el año en el que efec-tuó el zarpe la embarcación industrial que está re-gistrando.

8. Arribo: Escriba el día, mes y año en el que la embarca-ción industrial que está registrando llegó a puerto.

9. Días efectivos: Registre el número de días efectivos de pesca que realizó la embarcación durante la faena.

10. Zona de pesca: Escriba lo más detallado posible el lugar de pesca donde se efectuó la faena de pesca. Si es posible use GPS, siguiendo el sistema global WGS84, con coordenadas geográficas o planas (pro-yección UTM).

11. Camarón Blanco: Registre el peso en kilogramos de este producto

12. Camarón Rojo: Registre el peso en kilogramos de este producto.

5352


Anex

o 4.

Instructivo formulario de muestreo biológico de tallas (Anexo 5)


2. Continental: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de tallas en aguas continenta-les.

3. Marino: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de tallas en aguas marinas.

4. Municipio: Escriba el nombre del municipio donde está haciendo el muestreo biológico de tallas.

5. Comunidad: Precise el nombre de la comunidad donde se está haciendo el muestreo biológico de tallas.


7. Lugar de pesca: Escriba lo más detallado posible el lugar de pesca donde se efectuó la faena de pesca.

8. Lugar de desembarco: Escriba el lugar donde fue desembarcado la captura (aplica si se toma la infor-mación de tallas en puerto).

9. Especie: Escriba el nombre común y científico de la especie que va a medir.

10. Talla: Registre la talla en centímetros, con aproxi-mación al medio centímetro inferior en especies de

menos de 30 cm y en especies de mayor talla a los 30 cm con aproximación al centímetro inferior.

• Las especies marinas se les debe registrar la longi-tud total (LT), las especies continentales la longitud estándar (LS)

• Si no son rayas guitarra (Rhinobatidae) medir el an-cho del disco (Ad) y el largo del disco (Ld), de los contrario medir su LT.

• Si son tiburones y viene tan solo el tronco, reportar dicha medida (LTr).

• Para langostas y camarón reportar longitud cola (Lcl) y (Lc) respectivamente.

• En Bivalvos y Gasterópodos se medirá Longitud de concha (Lcl) y del cuerpo (Lcp) respectivamente

Peso: Peso del individuo monitoreado (gramos o kilo-gramos según grupo taxonómico – Aclarar en Obser-vaciones). Para peces y/o elasmobranquios eviscerados, tomar el peso Eviscerado y colocarlo en el campo gris (Pev).

11. Observaciones: Registre las observaciones pertinen-tes para la mayor comprensión de los datos escritos en el formato. Ejemplo: tipo de medición reportada según grupo taxonómico, si hay varias especies en el formato y fueron capturadas en diferentes luga-res, etc.



5554


Anex

o 5.

Instructivo formulario de muestreo biológico en peces óseos y cartilaginosos (Anexo 6)

de especies con aleta caudal horquillada (Peces es-combridos). Si son rayas reportar en el espacio gris el largo de disco (Ld) en centímetros.

13. PCM: Registre el perímetro corporal máximo en centímetros, con aproximación al milímetro del in-dividuo que está examinando.

14. Pe: Registre el peso entero de cada pez óseo o carti-laginoso, con aproximación al gramo.

15. Pev: Registre el peso eviscerado (con branquias) de cada individuo, con aproximación al gramo.

16. Género:• H: Señale con una X si el individuo es Hembra• M: Señale con una X si el individuo es Macho. Si es

un elasmobranquio, medir la longitud de los CLAS-PERS (L-clasp) en centímetros

17. Maduración gonadal:

PECES ÓSEOS

I: Señale con una X si el individuo es inmaduro

II: Señale con una X si el individuo está madurando

III: Señale con una X si el individuo está maduro

IV: Señale con una X si el individuo está desovado

Ind: Señale con una X si el individuo no se le ha deter-minado ni el sexo ni su estado de maduración gonadal.

PECES CARTILAGINOSOS (TIBURONES Y RAYAS)

I: Señale con una X si el individuo es inmaduro

II: Señale con una X si el individuo está maduro

III: Señale con una X si el individuo hembra esta en postparto.

18. Observaciones:

19. Encuestador: Escriba el nombre de la persona que realizó las mediciones y las registró en este formato.



2. Continental: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de peces en aguas continenta-les.

3. Marino: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de peces en aguas marinas.

4. Municipio: Escriba el nombre del municipio donde está haciendo el muestreo biológico de peces.

5. Comunidad: Precise el nombre de la comunidad donde se está haciendo el muestreo biológico de peces.


7. Lugar de pesca: Escriba lo más detallado posible el lugar de pesca donde se efectuó la faena de pesca.

8. Arte de pesca: Coloque el arte de pesca empleado para la captura de los individuos que está mues-treando.

9. Especie: Escriba el nombre común y científico de la especie que va a muestrear.

10. Lt: Registre la talla de la longitud total en centí-metros, con aproximación al milímetro para peces óseos o cartilaginosos. (*) Si son cartilaginosos y viene tan solo el tronco, reportar (Ltr) en centíme-tros en el espacio gris.

11. Ls: Registre la talla de la longitud estándar en cen-tímetros, con aproximación al milímetro. (**)Si son rayas reportar en la casilla gris el ancho de disco (Ad) en centímetros.

12. Lh: Registre la longitud de horquilla en centímetros con aproximación al milímetro para los individuos

5756


Anex

o 6.

Instructivo formulario de muestreo biológico langosta (Anexo 7)

• Muda:• Pre:SeñaleconunaXsielindividuoestáenla

fase de premuda.• Post:SeñaleconunaXsielindividuoestáenla

fase de postmuda.

10. Hembra:• Lc: Escriba la longitud de la cola en centímetros con

aproximación al milímetro.• Lct: Escriba la longitud del cefalotórax en centíme-

tros con aproximación al milímetro.• AB: Escriba la longitud del ancho del abdomen en

centímetros con aproximación al milímetro.• Peso:Registreelpesodelindividuo,conaproxima-

ción al gramo.• Muda:

• Pre:SeñaleconunaXsielindividuoestáenlafase de premuda.

• Post:SeñaleconunaXsielindividuoestáenlafase de postmuda.

• Estadoreproductivo:• CHCM: Señale con una X si el individuo tiene

huevos con masa espermatófora• CHSM: Señale con una X si el individuo tiene

huevos sin masa espermatófora.• SHCM: Señale con una X si el individuo no tiene

huevos con masa espermatófora.• SHSM: Señale con una X si el individuo no tiene

huevos sin masa espermatófora.





2. Caribe: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de langostas en el litoral Caribe.

3. Pacífico: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de langostas en el litoral Pacífi-co.

4. Municipio: Escriba el nombre del municipio donde está haciendo el muestreo biológico de langosta

5. Comunidad: Precise el nombre de la comunidad donde se está haciendo el muestreo biológico de langosta.


7. Lugar de pesca: Escriba lo más detallado posible el lugar donde se capturaron los individuos a estudiar.


9. Macho:• Lcl: Escriba la longitud de la cola en centímetros con


tros con aproximación al milímetro.• AB: Escriba la longitud del ancho del abdomen en

centímetros con aproximación al milímetro.• Peso:Registreelpesodelindividuo,conaproxima-

ción al gramo.

5958


Anex

o 7.

Instructivo formulario de muestreo biológico camarón (Anexo 8)

• CT: Registre el peso del cefalotórax del indivi-duo, con aproximación al gramo.



fase de postmuda.

11. Hembra:• Especie:Escribaelnombrecomúndelaespecie.• Lt: Escriba la longitud total en centímetros con


tros con aproximación al milímetro.• Lc: Escriba la longitud de la cola en centímetros con

aproximación al milímetro.• Peso:

• Tot: Registre el peso total del individuo, con aproximación al gramo.

• Cola: Registre el peso de la cola del individuo, con aproximación al gramo.

• CT: Registre el peso del cefalotórax del indivi-duo, con aproximación al gramo.



fase de postmuda.• Madurezsexual:

• I:SeñaleconunaXsielindividuoesinmaduro-virginal

• II:SeñaleconunaXsielindividuoesinmaduro• III:SeñaleconunaXsielindividuoesmaduro• IV:SeñaleconunaXsielindividuoesmaduro-

desovante• V:SeñaleconunaXsiel individuoesmaduro-

desovado.12. Observaciones: Registre las observaciones perti-

nentes para la mayor comprensión de los datos es-critos en el formato.




2. Caribe: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de camarón en el litoral Caribe.

3. Pacífico: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de camarón en el litoral Pacífico.

4. Municipio: Escriba el nombre del municipio donde está haciendo el muestreo biológico de camarón

5. Comunidad: Precise el nombre de la comunidad donde se está haciendo el muestreo biológico de camarón.

6. Artesanal: Señale con una X si el ejemplar muestrea-do fue capturado por pescadores artesanales

7. Industrial: Señale con una X si el ejemplar muestrea-do fue capturado por pescadores industriales.



10. Macho:• Especie:Escribaelnombrecomúnycientíficodela

especie.• Lt: Escriba la longitud total en centímetros con


tros con aproximación al milímetro.• Lc: Escriba la longitud de la cola en centímetros con

aproximación al milímetro.• Peso:

• Tot: Registre el peso total del individuo, con aproximación al gramo.

• Cola:Registreelpesode lacoladel individuo,con aproximación al gramo.

6160


Anex

o 8.

Instructivo formulario de muestreo biológico jaiba (Anexo 9)


2. Caribe: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de jaiba en el litoral Caribe.

3. Pacífico: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de jaiba en el litoral Pacífico.

4. Municipio: Escriba el nombre del municipio donde está haciendo el muestreo biológico de jaiba

5. Comunidad: Precise el nombre de la comunidad donde se está haciendo el muestreo biológico de jaiba.





Si es posible use GPS, siguiendo el sistema global WGS84, con coordenadas geográficas o planas (pro-yección UTM).

10. Macho:• Especie:Escribaelnombrecomúnycientíficodela

especie.

• Lca: Escriba la longitud del caparazón en centíme-tros con aproximación al milímetro.

• ABEL: Escriba la longitud del ancho a la base de las espinas laterales centímetros con aproximación al milímetro.

• Peso: Registre el peso total del individuo, conaproximación al gramo.

• Madurez:• .I:Juvenil:Abdomenenformade“T”invertiday

pegado al cefalotórax. 2: Adulto: Abdomen en forma de T y libre de tórax

11. Hembra:• Especie:Escribaelnombrecomúndelaespecie.• Lca:Escriba la longituddelcaparazónencentíme-

tros con aproximación al milímetro.• ABEL:Escribalalongituddelanchoalabasedelas

espinas laterales centímetros con aproximación al milímetro.

• Peso: Registre el peso total del individuo, conaproximación al gramo.

• Madurez:• I:SeñaleconunaXsielindividuoesinmaduro• II:SeñaleconunaXsiel individuoestámadu-

rando• III:SeñaleconunaXsielindividuoesmaduro• IV:SeñaleconunaXsielindividuoestáovado.

12. Observaciones: Registre las observaciones perti-nentes para la mayor comprensión de los datos es-critos en el formato



6362


Anex

o 9.

Instructivo formulario de muestreo biológico piangua (Anexo 10)

Para este muestreo en lo posible utilice el Pianguimetro sugerido en el presente documento.


2. Caribe: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de piangua en el litoral Caribe.

3. Pacífico: Señale con una X si se está haciendo el muestreo biológico de piangua en el litoral Pacífico.

4. Municipio: Escriba el nombre del municipio donde está haciendo el muestreo biológico de piangua.

5. Comunidad: Precise el nombre de la comunidad donde se está haciendo el muestreo biológico de piangua.




9. Lugar de pesca: Escriba lo más detallado posible el lugar donde se capturaron los individuos a estudiar. Si es posible use GPS, siguiendo el sistema global WGS84, con coordenadas geográficas o planas (pro-yección UTM).

10. Macho:• Especie:Escribaelnombrecomúndelaespecie.• Largo(Lcl):Escribalalongituddelcaparazóndesde

el borde posterior hasta el borde anterior en centí-metros con aproximación al milímetro.

• Alto(Al):Escribalalongituddelalongituddesdeelborde ventral hasta el extremo borde dorsal en cen-tímetros con aproximación al milímetro.

• Ancho (An): Escriba la longitud medida desde laparte superior de la valva izquierda, hasta la par-te inferior de la valva derecha, en centímetros con aproximación al milímetro.

• Peso:• Total: Registre el peso total del individuo, con

aproximación al gramo.• Carne:Registreelpesodelacarnedelindividuo

(sin la concha), con aproximación al gramo.• Madurez:

• 0:MarqueconunaXsielgradodemadurezdelindividuo es indeterminado.

• 1:MarqueconunaXsielgradodemadurezdelindividuo es inmaduro.

• 2:MarqueconunaXsielgradodemadurezdelindividuo es maduro.

11. Hembra:• Especie: Escriba el nombre común y científico de la

especie.• Largo: Escriba la longitud del caparazón desde el

borde posterior hasta el borde anterior en centíme-tros con aproximación al milímetro.

• Alto: Escriba la longitud de la longitud desde el bor-de ventral hasta el extremo borde dorsal en centí-metros con aproximación al milímetro.

• Ancho: Escriba la longitud medida desde la parte superior de la valva izquierda, hasta la parte inferior de la valva derecha, en centímetros con aproxima-ción al milímetro.

• Peso: • Total: Registre el peso total del individuo, con

aproximación al gramo.• Carne:Registreelpesodelacarnedelindividuo

(sin la concha), con aproximación al gramo.• Madurez:

• 0:MarqueconunaXsielgradodemadurezdelindividuo es indeterminado.

• 1:MarqueconunaXsielgradodemadurezdelindividuo es inmaduro.

• 2:MarqueconunaXsielgradodemadurezdelindividuo es maduro.




6564


Formulario de aspectos de mercadeo (Anexo 11)

12. Cite tripulantes extras como el cocinero, motorista o demás según el tipo de pesquería

13. Recurso: cite el nombre común y especie si es posi-ble.

14. Cite la unidad de venta en la que dicho recurso es comercializado, sea por kilogramo, unidad, mano, etc. Especifique en número o peso a cuanto puede equivaler una unidad de uso local

15. Colocar el precio promedio de venta del recurso por unidad de venta.

16. Colocar la ciudad o el lugar específico donde dicho recurso será comercializado o enviado.

17. Colocar la frecuencia del uso de dicho recurso para su consumo a nivel familiar: Nunca, rara vez, algu-nas veces o siempre.

18. Cite el valor de la captura por faena realizada.

19. Cite la ganancia promedio adquirida por faena.

20. Observaciones: coloque lo que crea pertinente se-gún lo escuchado o visto durante la encuesta.

21. Encuestador: Escriba el nombre de la persona que llenó esta encuesta.

1. Fecha: Escriba la fecha de realización de la encuesta en el siguiente orden: Día, Mes, Año.

2. Departamento: Escriba el departamento correspon-diente al lugar de ubicación donde está diligencian-do la encuesta.

3. Municipio: Escriba el municipio donde está realizan-do la encuesta.

4. Comunidad: Escriba el corregimiento y/o la vereda donde está realizando la encuesta.

5. Sitio de pesca: Identifique el lugar donde el pesca-dor realiza su actividad por ejemplo, en el Río Mag-dalena desde El Caño La Caimanera hasta San Rafael de Chucurí.

6. Escriba una X en el recuadro si aplica a pesca artesa-nal.

7. Escriba una X en el recuadro si aplica a pesca indus-trial.

8. Escriba el arte principal que utilizan para las faenas.

9. Escriba el o los artes secundarios (si aplica) y cite en observaciones a que recursos está relacionado.

10. Nombre del pescador, capitán o líder de un grupo de pescadores.

11. Número de pescadores en unidad económica de pesca (artesanal) o embarcación de tipo industrial.

Anex

o 10.

6766


Formulario de caracterización socio-económica (Anexo 12)

14. En los últimos años ha asistido a alguna capacita-ción relacionada con la pesca: Marque con una X la opción y escriba por qué entidad fue dictada.

15. Personas a su cargo: Escriba el número de personas que dependen del pescador encuestado.

16. Escolaridad del grupo familiar: Escriba en las casillas correspondientes el nombre del familiar, el paren-tesco con el pescador, la edad en años y el nivel aca-démico alcanzado.

17. Escriba el número de personas del grupo familiar que también realizan la actividad pesquera.

18. Tenencia de la vivienda: Señale con una X si la vi-vienda que habita el pescador es propia, arrendada o familiar. En el caso que la respuesta no se ajuste a ninguna de las opciones, marque la casilla otro y explique el tipo de tenencia en la pregunta Cuál?

19. Características de la vivienda: Señale con una X el material del techo y su estado, el material del piso y su estado y el material de las paredes y su estado. Si el material del techo, piso y paredes no corresponde a ninguna de las opciones mencionadas, coloque la X en la casilla Otro y escriba en el espacio corres-pondiente el material de cada uno de ellos.

20. Servicios que posee en la casa: Señale con una X los servicios públicos domiciliarios que posee en su casa de habitación el pescador encuestado. El servicio de gas se refiere al gas natural o al gas por cilindros.

21. Establecimiento educativo: Escriba el(los) nombre(s) del (los) establecimiento(s) educativos que queden más cerca de la vivienda del pescador y especifique hasta que año tiene en la columna correspondien-te. También escriba la distancia en Km o m que hay desde la vivienda hasta el colegio o escuela en men-ción.

22. Establecimiento de salud: Escriba el(los) nombre(s) del (los) establecimiento(s) de salud que queden mas cerca de la vivienda del pescador y especifique que clase de establecimiento es (Ho: Hospital, Cl: Clínica, Cs: Centro de Salud, Ps: Puesto de salud), el personal profesional que tiene dicho establecimien-

1. Fecha: Escriba la fecha de realización de la encuesta en el siguiente orden: Día, Mes, Año.

2. Departamento: Escriba el departamento correspon-diente al lugar de ubicación donde está diligencian-do la encuesta.

3. Municipio: Escriba el municipio donde está realizan-do la encuesta.

4. Comunidad: Escriba el corregimiento y/o la vereda donde está realizando la encuesta.

5. Sitio de pesca: Identifique el lugar donde el pesca-dor realiza su actividad por ejemplo, en el Río Mag-dalena desde El Caño La Caimanera hasta San Rafael de Chucurí.

6. Nombre: Escriba el nombre completo del pescador encuestado.

7. Lugar de Nacimiento: Identifique el lugar donde el pescador es oriundo.

8. Grupo étnico: Marque con una X la respuesta co-rrespondiente. En caso de que el pescador no per-tenezca a las opciones enunciadas, coloque una X en la casilla Otro, e identifique su grupo étnico, por ejemplo, Oriental.

9. Edad: Escriba la edad en años del encuestado.

10. Sexo: marque con una X si el genero del pescador encuestado es Masculino M y Femenino F.

11. Estado civil: Marque con una X si el estado civil al que corresponde el pescador encuestado es Solte-ro, Casado, Unión Libre, Separado y Divorciado.

12. Hace cuanto vive en esa comunidad (Años): Escriba hace cuantos años el pescador habita en la comuni-dad donde le está desarrollando la encuesta.

13. Nivel educativo del pescador: Marque con una X el nivel de escolaridad del pescador. En el caso de que el nivel del educativo sea de un nivel incompleto, coloque en la casilla último grado logrado.

Anexo 11.

6968


to de salud (G: médico general, En: Enfermera, O: Odontólogo, B: Bacteriólogo, P: Pediatra), los servi-cios (Sc: Sala de cirugía, Rx: Rayos x, La: Laboratorio) y la distancia que está dicho centro a la vivienda de habitación del pescador encuestado.

23. Distancia de instituciones de apoyo a la pesca: En la casilla correspondiente escriba la distancia en Kiló-metros desde su lugar de vivienda hasta cada una de las opciones.

24. Tienen SISBEN: Señale con una X si el pescador tiene SISBEN o no.

25. Desde que año pesca: Escriba la edad en años en la que el pescador comenzó a desarrollar su actividad pesquera.

26. Dedicación a la pesca: Señale con una X si la dedi-cación del pescador es permanente (dedica más del 80% de su tiempo) u ocasional.

27. Por qué es pescador: Señale con una X si el encues-tado escogió ser pescador por tradición, remunera-ción, propia elección o desempleo. Si la respuesta que le da el pescador no corresponde a ninguna de estas opciones, marque con una X en Otros y escri-ba el motivo por el cual el pescador se dedica a esta actividad.

28. Pertenece o ha pertenecido a alguna organización pesquera: Señale con una X si el pescador hace par-te de alguna organización relacionada con su activi-dad.

29. Tipo de organización pesquera: Señale con una X en el cuadro correspondiente si el pescador hace par-te o perteneció a alguna asociación, cooperativa o sindicato. Si la respuesta que le da el pescador no corresponde a ninguna de estas opciones, marque con una X en Otro y escriba a que otro tipo de orga-nización pertenece o perteneció.

30. Cargo: Señale con una X el cargo que ocupó el pes-cador dentro de la organización de pescadores que hace referencia en el punto anterior.

31. Otras actividades alternas a la pesca: Escriba el nom-bre de la segunda actividad principal (después de la pesca) debajo de la columna 1, su temporada o me-ses del año en el cual se dedica a esta y su dedicación en horas o en días. De igual manera si hay otras ac-tividades, escríbalas en las columnas 2 y 3 según la importancia en cuanto a tiempo de dedicación.

32. Embarcación: Señale con una X si la embarcación que posee el pescador es una canoa, motor canoa, motor interno, vela, otro. En cada caso señale con una X en qué tipo de material fue construida dicha embarcación (M: madera, Fb: fibra de vidrio y O: otros). Escriba en frente la medida del largo, hondo y acho de la embarcación y señale la unidad en la que fueron tomadas dichas medidas. En la colum-na correspondiente a la propulsión escriba si es en canalete o vara, vela o si es por motor, señalando el caballaje. Escriba la capacidad de carga en kilogra-mos de pescado que tiene dicho del bote. Señale con una X si la embarcación tiene para la conserva-ción del producto cavas de icopor (i), fibra de vidrio (fv) u otro (o). Finalmente señale con una X si el bote es propiedad del encuestado (Pp), es prestado (Pt), A (Alquilado) o por Comodato (C).

33. Sitios de pesca: De acuerdo al tipo de pesca (con-tinental o marino), reportar las áreas que visitan los pescadores y la frecuencia a dicho lugares. En el nombre del lugar, para el área oceánica, se reco-mienda las coordenadas, junto al nombre común.

34. Temporada de pesca: Según el tipo de pesca, repor-tar las temporadas de pesca que dicha comunidad de pescadores aprovecha, especificando meses de duración de la época o el periodo, meses de pesca, hora de pesca (Ma: Madrugada, Mn: Mañana, Ta: Tarde, No: Noche)

35. Artes de pesca: En el cuadro señale con números consecutivos la importancia de cada arte de pesca utilizado por el encuestado (1 mayor importancia) y la cantidad de cada arte, la tenencia (Pp: propio, A: Arriendo, Pt: prestado y O: otros) y sus característi-cas (para atarraya, chinchorro, mallas estacionarias, mallas móviles y mallas rastreras, el Om: ojo de ma-lla, Lg: Longitud, Al: alto y Mat: material de construc-ción; para Espinel y Línea de anzuelos el tamaño de cada anzuelo y la cantidad).

36. Distribución de ganancia por faena: Señale con una X si las ganancias por faena se reparten en partes iguales entre el pescador, acompañante, propieta-rio de la embarcación, propietario del arte de pesca u otro.

37. Observaciones: Citar particularidades de importan-cia sobre la comunidad.

38. Encuestador: Escriba el nombre de la persona que llenó esta encuesta.

Anexo 12.

7170


Anexo 12. Continuación Anexo 12. Continuación

7372


Anexo 12. Continuación

Red de arrastre

Redes de cerco con jareta

Redes de cerco sin jareta

Redes de tiro desde embarcaciones

Anexo 13. Artes de pesca (Tomado de Nedelec, 1990; Arias, 1998; Bjarnason 2002 y Cochrane 2005)

Chinchorro

Redes de tiro (artes de playa)

Rastras para embarcación

Redes de enmalle o mallador

7574


Caña y carrete (deportiva)

Poteras

Pesca con poteras con luces

Línea de mano desde la costa

Línea de mano desde embarcación

Redes de enmalle de deriva o agallera

Red de enmalle de superficie

Red de enmalle de media agua

Red de enmalle de fondo

Red de izada

Nasas y Garlitos

Palangres

Palangres horizontales fijos

Palangre vertical fijo

Palangres a la deriva

Atarraya

Nasas

Nasa para captura de rayas de agua dulce

Chinchorro de Anjeo

7776


Anexo 14. Glosario

Aleta anal: Apéndice ubicado en posición ventral y de-trás del ano en ciertos peces óseos y elasmobranquios

Aleta caudal: Apéndice de locomoción situado en la parte terminal de los peces, tiburones y algunas rayas

Aleta caudal horquillada: Es simétrica y en forma luna-da o estocada (Aletas típicas de atunes y bonitos).

Alto (en bivalvos): En bivalvos es la longitud desde el extremo del borde ventral hasta el extremo del borde dorsal.

Ancho del abdomen: Medición tomada al segmento más ancho de la cola en langostas.

Ancho (en bivalvos): En bivalvos es la medida tomada desde la parte superior de la valva izquierda hasta la par-te inferior de la valva derecha.

Ancho del disco: Medición tomada en rayas de la fami-lia Rajidae y del Orden Myliobatiformes (familias Das-yatidae, Mobulidae, Rhinopteridae, Potamotrygonidae, Myliobatidae), que abarca los límite laterales máximos del disco.

Arte de pesca: Elemento conformado por redes, líneas, trampas o anzuelos, el cual varia su estructura, dimen-sión y complejidad dependiendo al recurso objetivo.

Cefalotórax: En crustáceos es la parte del cuerpo con-formada por la cabeza y el tórax de manera fusionada.

Cloaca: En condrictios es una cavidad abierta a la parte exterior, la cual se ubica al final del tracto digestivo; di-cha cavidad recibe los conductos terminales del aparato endocrino y reproductor.

Claspers: Estructura típica en tiburones y rayas machos, la cual es usada para los proceso de apareamiento. En su parte terminal presenta unos orificios llamados rifiodón, por donde sale el esperma en el momento de la cópula. Dicha estructura según el grado de calcificación, longi-tud respecto a las aletas pélvicas y abertura del rifiodón define en gran parte la madurez en machos.

Conductividad: Es el número de sales presentes en medio liquido, cuya disociación genera iones positivos

Hendidura Branquial: Orificios donde se ubican las branquias en los tiburones y rayas

Hepatopáncreas: Órgano digestivo típico de moluscos (Bivalvos y Gasteropodos), el cual asimila y bioacumula diferentes componentes.

Longitud del cefalotórax: Medida en camarones y lan-gostas a lo largo de la línea media, la cual va desde el borde posterior de la órbita hasta el límite con los seg-mentos de la cola.

Longitud del cuerpo: En gasterópodos (caracoles), es la máxima distancia desde el extremo de la espira (ápice) hasta el borde de la concha.

Largo del disco: Medición tomada en rayas de la fami-lia Rajidae y del Orden Myliobatiformes (familias Das-yatidae, Mobulidae, Rhinopteridae, Potamotrygonidae, Myliobatidae), desde el límite anterior hasta el posterior del disco.

Longitud del manto: Medida en cefalópodos, en cala-mares será desde el borde externo del manto hasta el borde interno, mientras que en pulpos se toma desde el extremo de la cabeza hasta el límite inferior del ojo.

Longitud del tronco: Medición tomada en tiburones, la cual va desde la última hendidura branquial a la base de la aleta caudal.

Longitud de la cabeza: Medición en calamares, la cual va desde el borde del manto hasta el inicios de los bra-zos.

Longitud de la cola: Medida para langostas y camaro-nes, la cual va desde el primer segmento abdominal has-ta el extremo del telson.

Longitud de la concha: Medición en bivalvos, la cual será tomada en la dirección antero posterior, paralela al eje de la bisagra o centro de unión de las valvas.

Largo (en bivalvos): Medido desde el extremo del bor-de ventral hasta el extremo del borde dorsal.

Longitud estándar: En peces y elasmobranquios, es la medición desde límite del margen anterior hasta la base de la aleta caudal.

y negativos capaces de transportar energía eléctrica. Su unidad de medida está en µS/cm.

Conducto deferente: Estructura pareada que hace par-te del aparto reproductivo en tiburones y rayas machos. Dichos ductos están conectados, por un lado, hacia la gónada masculina y por el otro a una vesícula seminal (estructura de almacenaje de esperma), la cual se ubica en la pared dorsal posterior de la cavidad abdominal.

Dureza total: Es la presencia de metales alcalinotérreos en un cuerpo de agua, siendo el calcio y el magnesio los más relevantes en aguas continentales y el Bario y es-troncio en aguas estuarinas y marinas.

Endodermo: Es la capa más interna de las tres capas ger-minales en los animales.

Escombridos: Nombre que hace referencia a la familia Scombridae, la cual abarca a los bonitos y atunes, carac-terizados por una aleta caudal horquillada o en forma de luna.

Esfuerzo: A nivel pesquero se define como la capacidad de pesca realizada durante una unidad de tiempo en un área específica.

Espermatóforo: En crustáceos, Cápsula de material al-buminoideo donde se encuentran los espermatozoides.

Eviscerado: Termino utilizado en peces o tiburones a los cuales se les han removido los órganos internos de la ca-vidad dorsoventral.

Faena: Es el proceso relacionado con la búsqueda de un lugar de pesca, el empleo del arte y colecta del recurso en un lugar y tiempo determinado.

Grosor de labio: En gasterópodos, será la anchura máxi-ma del labio externo de la concha.

Glándulas oviducales: Estructura par del aparto repro-ductor femenino en elasmobranquios, en forma de co-razón u ovalo ubicado en la parte superior; su función es básicamente la de almacenar esperma, fertilizar el ovocito (gameto femenino) y brindar la cubierta (tercera membrana) al huevo.

Longitud horquilla o fúrcal: En peces, comprende la longitud desde límite del margen anterior hasta la divi-sión de los lóbulos de la aleta caudal. Típica para le medi-ción en peces marinos de la familia escombridae (atunes y bonitos) y en algunos peces de del Río Amazonas.

Longitud total: En peces y elasmobranquios es la medi-ción desde límite del margen anterior al extremo del ló-bulo superior de la aleta caudal; en pulpos se mide el ex-tremo de la cabeza hasta el extremo del brazo del sifón.

Muda: En los crustáceos citados representa el cambio de su exoesqueleto o coraza protectora con el fin de permi-tir su proceso de crecimiento.

Nivel del río: Corresponde a la sumatoria de los niveles diarios registrados, divididos por el número de días en que se tuvieron registros.

Ovario: Gónada en hembras donde se lleva a cabo la producción de gametos; su presencia, estructura y com-posición depende del grupo taxonómico.

Oocitos: Gameto en hembras.

Ojo de malla: Área de malla formado por dos (2) o varios nudos, los cuales generan un espacio potencial de cap-tura a un recurso hidrobiológico y/o pesquero.

Oxígeno disuelto: Es la cantidad de dicho elemento di-luido en un cuerpo de agua, el cual se reporta por mg/L.

Peces óseos: Hace referencia a todos los peces que pre-sentan como estructura de soporte un esqueleto óseo.

Peces cartilaginosos: Son grupo de peces que presen-tan como principal estructura de soporte un esqueleto cartilaginoso.

Pereiópodos: Apéndices de la región del tórax en ca-marones y langostas. Están presentes en el conjunto de segmentos no fusionados con la cabeza, los cuales en conjunto reciben el nombre de pereion.

Petasma: En machos es una estructura que se forma por modificación de los endopoditos en forma de gancho, de los pleopodos 1 y 2 en machos de camarones. Su fun-

7978


ción es ayudar a la transferencia del espermatóforo a la hembra.

PH: Es la medición de acidez o alcalinidad de un cuerpo de agua, la cual va en una escala de 0 a 14, siendo las menores a siete (7) acidas, alcalinas las superiores a (7) y neutras las que mantienen un pH igual a siete (7).

Pluviosidad: Cantidad de lluvia que cae en un lugar en un tiempo determinado.

Teleósteos: Nivel taxonómico catalogado como infra-clase, la cual abarca a los peces óseos.

Testículos: Gónadas en machos que puede variar en su estructura y composición según el grado evolutivo de cada grupo taxonómico.

Temperatura ambiente: Es la temperatura del aire to-mada en un instante dado.

Temperatura Superficial: Es la temperatura cerca a la superficie de un cuerpo de agua, sea marino, estuarino o continental. La superficie varía según el método de medición utilizado, el cual puede oscilar entre 0,04 y 20 metros por debajo del nivel del mar.

Transparencia: Es el grado de visibilidad de un columna de agua, la cual depende del material particulado inmer-so en dicho cuerpo.

Útero: Estructura del aparato reproductivo en hembras de elasmobranquios; para ovíparos su función radica en la polimerización de la capsula, mientras que para viví-paros es usada para el desarrollo de los embriones du-rante el proceso de gestación.

80

PROTOCOLO DE CAPTURA DE INFORMACIÓN ......El Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural agradece...

Documents

Transcript of PROTOCOLO DE CAPTURA DE INFORMACIÓN ......El Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural agradece...