1

Programa Oficial de postgrado.

Máster y Doctorado en Envejecimiento.

(2008-2010)

TESIS DE MÁSTER

“Efectos biológicos de la radiofrecuencia

monopolar capacitativa en su aplicación transcutánea.

Estudio experimental en cerdos minipig”

Antonio Fructuoso Martínez

2010

2

ÍNDICE

I. RESUMEN 3

II. INTRODUCCIÓN 5

III. OBJETIVOS 12

IV. MATERIAL Y MÉTODOS 14

a. MATERIAL 15

b. MÉTODOS 17

V. RESULTADOS 18

VI. DISCUSIÓN 37

VII. CONCLUSIONES 40

VIII. BIBLIOGRAFÍA 42

3

I. RESUMEN

4

La radiofrecuencia monopolar capacitativa (RFMC) trans-cutánea surge para

poder dar una respuesta adecuada a patologías con compromiso estético como la

celulitis, la flaccidez cutánea, etc.

En nuestro estudio, nos propusimos estudiar los efectos biológicos tras la

aplicación del prototipo de radiofrecuencia monopolar capacitativa (Exp.200703

I+D+i 0026) destinado a tratamientos de envejecimiento cutáneo, obesidad,

celulitis y sobrepeso localizado.

Para ello, se utilizaron 3 cerdos mini pig a los que aplicamos la radiofrecuencia

sobre un área cutánea de la zona dorsal superior de la pata trasera, controlando la

temperatura de la zona y del electrodo del aparato con un termómetro. Además, se

tomaron biopsias de las zonas tratadas para su estudio morfológico mediante

microscopía óptica y electrónica y se realizaron extracciones sanguíneas para

comprobar parámetros bioquímicos.

Tras el estudio de los resultados obtenidos, concluimos que se produjo una

disminución del espesor cutáneo a expensas fundamentalmente del tejido adiposo

“cavitación intraadipocitaria”, que el tratamiento provocó un aumento de

capilares sanguíneos y de células cebadas, así como activación de los fibroblastos

y síntesis de colágena y no se observaron alteraciones de los parámetros

bioquímicos estudiados (proteínas totales, albúmina, GOT, GPT, colesterol total,

HDL-colesterol, LDL-colesterol, triglicéridos, lipasa)

No observamos alteraciones morfológicas celulares ni tisulares relevantes

(M.O. / M.E.) respecto a los controles.

5

II. INTRODUCCIÓN

6

La demanda social actual que presenta el colectivo humano a partir de los

cincuenta años es el mantenimiento y cuidado, así como la prevención de su

salud, para que el paso de los años le haga sentir un envejecimiento pleno de

bienestar. Ante esta demanda social, se crean multitud de técnicas y medios

desde el campo de la medicina y ciencias próximas, como son la tecnología

electrónica (electromedicina), bioquímica, etc. (1-3).

Debido a que el deterioro físico del envejecimiento es más visible

externamente, mediante la alteración de las formas corporales (obesidad, celulitis,

etc.) y de la piel (arrugas, flaccidez, descolgamientos cutáneos y adelgazamiento,

entre otras) (1). La radiofrecuencia monopolar capacitativa (RFMC) en su

aplicación trans-cutánea, surge para poder dar una respuesta adecuada a este

tipo de patologías con compromiso estético (4).

Las primeras referencias históricas de los beneficios de la corriente eléctrica

aparecen con Tales de Mileto (600 a.C.), quien descubre que las descargas

eléctricas emitidas por el pez torpedo son efectivas contra las molestias de

enfermedades osteoarticulares.

Pero fue a mediados de 1.850, cuando las investigaciones en las aplicaciones

terapéuticas de las corrientes eléctricas avanzaron de manera importante con el

conocimiento del electromagnetismo. Estos descubrimientos fueron realizados por

Faraday, Gauss y Ampère, entre otros.

A finales del siglo XIX, d´Arsenval (1.891) descubre que corrientes alternas

superiores a 10 Khz producen calor al aplicarlas al organismo sin provocar

contracciones musculares, comenzando así la aplicación de la radiofrecuencia en

el campo médico.

7

En 1.910, Whitnay, junto con los Dres. Calatayud y Cirera en España, fueron

los precursores en el empleo de corrientes de alta frecuencia entre 0,5 MHz y 3

MHz (diatermia).

A finales del siglo XX, Schwan (1.988) da un gran avance al relacionar la

interacción de los campos electromagnéticos con los procesos biológicos,

apareciendo el concepto de “Bioelectromagnetismo”.

Chiabrera, en 1.995, descubre que las ondas de RF inducen desplazamientos

de iones estables, o bien provocan procesos vibratorios moleculares iónicos,

incluso en las capas de electrones de los elementos que las componen,

induciendo la reorientación de moléculas bipolares, como el agua, aminoácidos,

proteínas, etc.

Blundell, 1.996, observa la afectación de los campos de RF en los procesos

metabólicos celulares.

Los efectos biológicos vienen determinados por las características físicas de

las ondas electromagnéticas de radiofrecuencia aplicadas.

8

Características de las ondas electromagnéticas:

1. Frecuencia de la onda:

Alta frecuencia (> 1Mhz):

- Baja penetración de la onda

- Menor penetración de la onda

Los campos de RF superiores a 1 Mhz producen en los tejidos biológicos:

- Calentamiento por resistencia al paso de la onda.

- Provocan la formación de corrientes eléctricas.

- Afectan a la membrana y al metabolismo celular.

Baja frecuencia (próxima a 0,1 Mhz)

- No producen calentamiento de los tejidos.

- Inducen la formación de corrientes y campos eléctricos.

2. Propiedades dieléctricas de los tejidos:

Cuanto menor es el contenido en moléculas polares, se produce:

- Menor conducción eléctrica (huesos, piel y tejido graso).

- Mayor resistencia al paso de la corriente.

- Predomina el fenómeno calorífico (“Efecto Joule”)

Cuanto mayor es el contenido en moléculas polares (agua, aminoácidos, e iones),

se produce:

- Mayor conducción eléctrica (músculos, tejido conjuntivo).

- Predomina el fenómeno piezoeléctrico y vibratorio.

- Reorientación del colágeno.

9

3. Ángulo de incidencia de la onda de radiofrecuenc ia sobre el organismo:

Cuando las ondas de radiofrecuencia inciden perpendiculares a la piel,

aumenta la densidad o intensidad de energía en el organismo. Esto es lo que

ocurre en los equipos de RF monopolar.

En cambio, cuando las ondas inciden paralelas a la piel, disminuye la densidad

o intensidad de energía en el organismo, que es lo que ocurre con los equipos de

radiofrecuencia bipolar, tripolar, multipolar.

4. Profundidad de penetración:

La energía de RF aportada al organismo disminuye inversamente proporcional

al cuadrado de la distancia.

Mecanismos de actuación de las Ondas de Radiofrecue ncia :

Efecto piezoeléctrico: Origina una reorientación y retracción de las fibras de

colágena, que son inmediatas a la sesión de radiofrecuencia”.

Efecto vibratorio molecular: Estos movimientos vibratorios moleculares (agua,

proteinas, etc.) interfieren en los procesos metabólicos celulares, con respuesta

biológica.

Efecto térmico o efecto Joule: Es la dificultad al paso de la corriente eléctrica a

través de los cuerpos, transformándose la energía eléctrica en energía calorífica.

La energía calorífica altera las capas de electrones de los átomos de las

moléculas, transmitiéndose el calor por el mecanismo de conducción, molécula a

molécula.

Los efectos térmicos producidos por las ondas de radiofrecuencia se

manifiestan según las características de la onda:

10

Efectos no térmicos: No producen calor, no se eleva la temperatura.

Efectos térmicos: Hay producción de calor y se eleva la temperatura. Equipos

de Radiofrecuencia de uso clínico y estético.

Efectos atérmicos: Cuando el calor producido no es capaz de elevar la

temperatura en el organismo (disipación térmica mediante mecanismos biológicos,

como la circulación sanguínea de la piel (6, 7).

Es conocido que todas las especies celulares son sensibles al calor. A

determinadas temperaturas y tiempos, se presentan efectos biológicos positivos y

otros letales, pudiendo encontrarse una temperatura adecuada a cada uno de los

efectos que pretendemos.

Un fenómeno importante en la hipertermia es la termotolerancia , que se

define como un aumento de la dosis en la curva de supervivencia celular, inducido

por un precalentamiento que aparece durante una hipertermia y es dependiente

del tiempo de aplicación y de la temperatura alcanzada.

Al parecer, la termotolerancia desaparece después de 72 horas (hecho que

condiciona, que en la práctica médica, se efectúen únicamente dos sesiones de

hipertermia por semana). Los tejidos biológicos son sensibles al calor en diferente

medida, así el calor inducido por hipertermia, modifica las condiciones metabólicas

a nivel celular debido a cambios en la perfusión sanguínea, en el pH tisular, y en el

aporte de oxígeno.

Los cambios en la perfusión sanguínea de los tejidos sanos dependen del

equilibrio entre la ganancia del calor originado y la salida o pérdida de calor. Esta

última está representada principalmente por el flujo sanguíneo y en menor medida

por la conducción térmica.

11

Por otro lado, los tejidos biológicos pueden considerarse como dieléctricos,

interviniendo en esta interacción su constitución celular e intracelular (8, 9).

La Food and Drug Administration (FDA) estadounidense (1) aprueba la técnica

de la radiofrecuencia como un tratamiento no invasivo indicado para su uso en el

rejuvenecimiento de la piel en dermatología y medicina estética, ya que reduce la

flaccidez y las arrugas (2-4). Recientemente también se ha comenzado a utilizar

esta técnica para reducir el tejido adiposo y mejorar la celulitis, con resultados

satisfactorios (5, 6). Varios autores han demostrado que reduce significativamente

la circunferencia de muslos y nalgas y mejora la apariencia de la piel, tanto según

el criterio de los pacientes como según el de observadores independientes (5, 6).

12

III. OBJETIVOS

13

Objetivo general

Estudiar los efectos de la aplicación del prototipo de radiofrecuencia monopolar

capacitativa de la empresa Study TDES, investigación tecnológica, S.L (Grupo

Dercont) con (Exp.200703 I+D+i 0026), destinado a tratamientos de

envejecimiento cutáneo, obesidad, celulitis y sobrepeso localizado.

Objetivos específicos:

Estudiar morfológicamente, mediante microscopía óptica y electrónica, los

tejidos tratados (especialemente epidermis, dermis, tejido adiposo subcutáneo).

Comprobar si existe disminución del tejido adiposo subcutáneo tras el

tratamiento. la proliferación celular dérmica (fibroblastos, colágena, elastina).

Estudiar el efecto del tratamiento sobre los valores sanguíneos referentes al

metabolismo lipídico (colesterol, HDL, LDL, lipasa), hepático (transaminasas) y

factor de riesgo cardíaco, mediante análisis bioquímico.

14

IV. MATERIAL Y MÉTODOS

15

MATERIAL:

Animales:

Hemos utilizado 3 cerdos minipig procedentes del Servicio de Animales de

Experimentación de la Universidad de Córdoba. Han sido mantenidos (con comida

y bebida ad libitum) y tratados en el Servicio de Animales de Laboratorio de la

Universidad de Murcia (SAI, nº REGAES300305440012) siguiendo la guía

establecida por la Unión Europea sobre la protección de los animales utilizados en

experimentación (86/609/CEE).

Equipos:

1. Equipo Prototipo de radiofrecuencia no ablativa monopolar capacitativo

(Exp.200703 I+D+i 0026) de la empresa STUDY TDES. Investigación Tecnológica

S.L., que cumple las normas EN 60601-1-2 (2007); EN 61000-6-1 (2007) & EN

61000-6-3 (200). La frecuencia fundamental de este aparato es una onda de 0.91

Mhz que es modulada por otra de baja frecuencia, encontrándose dicha OEM en el

espectro de radio de la FM. Su onda es modulada por una señal digital de baja

frecuencia en modo ASK (Amplitude Shift Keying).

Datos técnicos:

I.- Tensión de alimentación: 230 VAC – 50 Hz.

II.- Consumo: 100 W.

III.- Potencia de emisión: 80 W. sobre 1000 Ohms.

IV.- Control de energía: Por ancho de pulso (duty cicle).

V.- Por otra parte, el control de la energía entregada se regula digitalmente

mediante el ancho de pulso de la OEM, adaptándose a las necesidades del

tratamiento.

16

2. Termómetro RS Mini IR LASER (Raytek, Germany)

3. Analizador bioquímico Perfil VetScan®.

17

MÉTODOS

Procedimiento experimental

Aplicamos 10 sesiones de radiofrecuencia de 26 minutos (1 sesión/semana)

con el equipo (prototipo de radiofrecuencia, Exp. 200703 I+D+i 0026) sobre un

área cutánea de 15x15 cm de la zona dorsal superior de la pata trasera de cada

uno de los animales, controlando la temperatura de la zona y del electrodo del

aparato con un termómetro RS Mini IR LASER (Raytek, Germany) inmediatamente

antes y durante la sesión.

Realizamos biopsias punch de 8 mm de las zonas tratadas y control de cada

animal antes e inmediatamente después de cada sesión, y pasada una semana.

Todas las muestras cutáneas (tratadas y control) fueron medidas y, a

continuación, fijadas en formol neutro tamponado al 10% al menos durante 24

horas. Posteriormente fueron procesadas por el método habitual. Realizamos

secciones histológicas de 3 µm. y las teñimos con las siguientes técnicas:

hematoxilina-eosina (H.E.), tinción de van Gienson, tricrómico de Masson y tinción

de Verhoeff.

Para el estudio con microscopía electrónica de transmisión, las muestras

controles y tratadas de 1 mm3 fueron fijadas en formaldehído/glutaraldehído (8) y

procesadas por el método habitual del Servicio de Microscopía de la Universidad

de Murcia (SAI). Brevemente, las muestras fueron postfijadas en tetróxido de

osmio (1%), teñidas con acetato de uranilo (1,5%), deshidratadas en

concentraciones crecientes de alcohol e impregnadas en resina epoxi

18

V. RESULTADOS

19

TEMPERATURA

La temperatura cutánea del animal medida inmediatamente antes de la sesión

osciló entre 33,4 y 36,6ºC, con un valor medio de 34,8ºC. La aplicación del equipo

provocó una subida de la temperatura, que llegó hasta 42ºC (Tabla 1, Figura 1).

Tabla 1. Medida de la temperatura cutánea del animal y de la temperatura del electrodo inmediatamente antes y durante la sesión (5, 10, 20 y 25 minutos de comenzar la aplicación del aparato).

20

Figura 1. Evolución de la temperatura cutánea y del electrodo a lo largo de cada sesión y valor medio.

21

ESTUDIO BIOQUÍMICO

Los resultados obtenidos han demostrado que no existen alteraciones respecto

a los parámetros sobre la función hepática (proteínas totales, albúmina, GOT y

GPT) y la fracción lipídica (colesterol total, HDL-colesterol, LDL-colesterol,

triglicéridos y lipasa) (Tabla 2, Figuras 2 y 3). Los valores están dentro de los

intervalos normales de referencia dados por el laboratorio (Tabla 3) y no han

sufrido modificaciones cuando comparamos los resultados obtenidos antes y

después de la aplicación del equipo.

Tabla 2. Medida de los parámetros bioquímicos evaluados. *: muestra hemolizada; la hemolisis interfiere con la realización del test.

Sin embargo, cuando estudiamos la CK total y la mioglobina (ambas proteínas

musculares), encontramos que existe un aumento de las mismas después del

tratamiento en comparación con los niveles obtenidos antes del tratamiento (Tabla

2, Figura 4). Además, al hacer determinaciones seriadas después de la

22

administración del tratamiento, observamos que los niveles encontrados siguen la

cinética descrita para estas proteínas (Tabla 4). También medimos la isoenzima

MB de la CK que no sufrió ninguna alteración por lo que el aumento de CK total se

debe, fundamentalmente, a la isoenzima MM de la CK.

Tabla 3. Valores de referencia de los parámetros estudiados para el cerdo y humanos.

Tabla 4. Cinética descrita para las proteínas CK y mioblogina.

23

Figura 2. Evolución de los marcadores bioquímicos de la función hepática.

24

Figura 3. Evolución de los marcadores bioquímicos del metabolismo lipídico.

25

Figura 4. Evolución de los marcadores cardiacos.

26

ESTUDIO MORFOLÓGICO

Macroscópìco. La aplicación del equipo no provocó daños ni quemaduras. En

muy pocas ocasiones provocó un eritema leve que desaparecía en 15-30 minutos.

Al medir las muestras cutáneas desde la epidermis hasta el músculo prefascial,

observamos una disminución progresiva a lo largo del estudio cada dos sesiones

(Tabla 5, Figura 5).

Tabla 5. Medida del espesor de la piel inmediatamente antes y después de cada sesión.

Figura 5. Evolución del espesor cutáneo a lo largo del experimento.

27

Microscópico. Las características más relevantes observadas al microscopio

óptico correspondieron a la ausencia de cambios patológicos tisulares y celulares.

No observamos respuesta inflamatoria aguda ni crónica a lo largo de todo el

experimento.

Las características estructurales y celulares de la piel del cerdo no sometida a

la aplicación del equipo son totalmente superponibles a las de la piel humana,

diferenciándose en pequeños aspectos, como el menor espesor de la dermis

papilar y, fundamentalmente, el aspecto más compacto de la dermis reticular. Esta

se encuentra constituida por densos haces de fibras colágenas y elásticas

firmemente organizadas en diversas direcciones (longitudinal, transversal y

oblicua) que le confieren un aspecto reticular compacto (Figura 6). El tejido celular

subcutáneo, como en la piel humana, se dispone en lóbulos separados por finos

tabiques conjuntivo-vasculares y muestra pequeñas proyecciones hacia la dermis

reticular. Por debajo del mismo se sitúa el músculo suprafascial, que hemos

considerado como referencia para las medidas del espesor.

La reducción del espesor cutáneo descrito en las zonas sometidas a la

aplicación del equipo ensayado era debida a una ligera reducción de la dermis

reticular y, fundamentalmente, a la disminución del tejido adiposo subyacente

(Figura 7).

La reducción de la dermis reticular es debida a la contracción de los fascículos

fibrilares, como se observa más detalladamente con las tinciones especiales

utilizadas (Figuras 8 y 9), mientras que, la del tejido adiposo se debe a la

reducción del volumen de los adipocitos. No hemos observado en las múltiples

secciones histológicas observadas destrucción o fragmentación de los adipocitos

ni la presencia de respuesta inflamatoria a cuerpo extraño.

28

Figura 6. Piel control. a) Aspecto de la piel control (H.E., 16x). b) Epidermis y dermis papilar (H.E., 100x). c) Dermis reticular (H.E., 100x). d) Tejido adiposo subcutáneo (H.E., 100x).

29

Figura 7. Piel tratada. a) Aspecto de la piel tratada; reducción del espesor de la dermis reticular y del tejido adiposo subcutáneo (H.E., 16x). b) Epidermis y dermis papilar (H.E., 100x). c) Dermis reticular (H.E., 100x). d) Tejido adiposo subcutáneo (H.E., 100x).

30

31

Estudio ultraestructural

Las secciones semifinas demuestran la preservación arquitectural en todas

las muestras cutáneas de los dos grupos estudiados (controles y tratados), tanto

de la epidermis como la dermis (Fig. 1) y el tejido celular subcutáneo (Fig. 2).

Asimismo, no observamos modificaciones patológicas relevantes tisulares ni

celulares.

El estrato córneo de las muestras tratadas y controles estaba constituido por 8-10

láminas córneas sin alteraciones. La epidermis no presentaba variaciones

patentes en las zonas tratadas respecto a las controles (Fig. 1).

En cuanto al tejido adiposo , también destacaba la preservación de la

arquitectura tanto en los controles como en los tratados (Fig. 2), correspondiendo

las diferencias más relevantes entre ambos grupos al contenido y al tamaño de los

adipocitos. En los controles se mantenía el contenido celular preferentemente en

las células de la periferia de los grupos de adipocitos y ocupaba de manera

32

homogénea todo el citoplasma (Fig. 2a y b) , mientras que en las muestras

tratadas tanto la disposición como la homogeneidad del contenido celular eran

irregulares (Fig. 2c y d). En cuanto al tamaño celular, mientras que en los

controles era bastante uniforme, en las zonas tratadas existía una gran

variabilidad, predominando los de pequeño tamaño, así como la observación de

adipocitos multivacuolados.

Figura 2. Secciones semifinas de tejido adiposo subcutáneo de muestras control (a y b) y

tratada (c y d) (azul de toluidina, a y c: 100x; b y d: 200x).

33

En el estudio de las secciones ultrafinas destacaba también la conservación del

patrón arquitectural de los distintos componentes cutáneos en ambos grupos de

muestras estudiadas. En las muestras correspondientes a las zonas tratadas ,

destacaba la observación frecuente de vasos capilares en grupos de 3 a 5

situados en la dermis papilar, con varias células cebadas en su proximidad (Fig.

3).

Figura 3. Vasos en la dermis papilar de piel tratada. a) Grupo de 3 vasos (MET, 2850x); b)

Vaso; E: célula endotelial; P: pericito (MET, 3900x); c) Vaso (V) y célula cebada (CC)

(MET, 3900x); d) Detalle de la célula cebada (MET, 9700x).

34

También sobresalía la presencia de fibroblastos activos, de morfología

poligonal , con abundantes cisternas de retículo endoplasmático rugoso y

ribosomas; los fibroblastos se encontraban inmersos en abundante sustancia

intercelular de aspecto laxo (Fig. 4c y d). Los fibroblastos de las muestras

control, en contraste, presentaban morfología fusif orme y escaso

citoplasma , y se localizaban en íntimo contacto con los paquetes de fibras

colágenas (Fig. 4a y b), orientados en diversas direcciones.

Figura 4. Fibroblastos (F) entre las fibras de colágeno dérmicas (C) en secciones

ultrafinas de piel control (a y b) y tratada (c y d); en la figura c se observa parte de la

epidermis (E) (MET a, b y c:1850x;d:3900x).

35

Ultraestructuralmente, no se observaban diferencias arquitecturales ni celulares

en el tejido adiposo de ambos grupos, destacando en las células de las zonas

tratadas la deplección total o parcial de los citoplasmas y la microvacuolización.

Figura 5. Tejido adiposo subcutáneo en piel control. a) Adipocito con el contenido celular

distribuido homogéneamente (MET, 1450x); b) Adipocito tratado que ha perdido su

contenido celular y presenta una zona de microvacuolización del citoplasma

“fenómeno de cavitación” (MET, 1850x); c y d) Membranas de adipocitos (MET,

c:13500x;d:23000x).

36

Figura 6. Tejido adiposo subcutáneo en piel tratada. a) Adipocitos con el contenido celular distribuido no

homogéneamente (MET, 2850x); b) Microvacuolización del citoplasma de un adipocito (MET, 9700x); c y

d) Membranas de adipocitos (MET, 23 000x).

37

VI. DISCUSIÓN

38

Las características estructurales y celulares de la piel del cerdo no sometida a la aplicación

del equipo son totalmente superponibles a las de la piel humana, diferenciándose en pequeños

aspectos, como el menor espesor de la dermis papilar y, fundamentalmente, el aspecto más

compacto de la dermis reticular. Esta se encuentra constituida por densos haces de fibras

colágenas y elásticas radomizadas en diversas direcciones (longitudinal, transversal y oblicua)

que le confieren un aspecto reticular compacto. El tejido celular subcutáneo, como en la piel

humana, se dispone en lóbulos separados por finos tabiques conjuntivo-vasculares y muestra

pequeñas proyecciones hacia la dermis reticular. Por debajo del mismo se sitúa el músculo

suprafascial, que hemos considerado como referencia para las medidas del espesor.

La radiofrecuencia, utilizada para el rejuvenecimiento de la piel (2-4), ha comenzado a

utilizarse en los últimos años en el tratamiento de la celulitis, con efectos satisfactorios (5-7). La

interacción de la radiofrecuencia con el cuerpo sólo genera efecto térmico (9), responsable de

inducir la desnaturalización, neoformación y reestructuración de las fibras colágenas (3,5,10,11),

así como un aumento local del flujo sanguíneo al tejido adiposo, que podría aumentar su

metabolismo (5,7).

En nuestro estudio, la aplicación de radiofrecuencia sobre la piel de cerdos minipig provocó

la reducción del espesor cutáneo a expensas, fundamentalmente, del tejido adiposo subcutáneo;

estos resultados concuerdan con la reducción de la circunferencia de muslos, nalgas y abdomen

descrita en humanos por otros autores (2,6,7).

En este trabajo no hemos observado fibrosis dérmica, al contrario de los descrito por

Goldberg et al. (6) en biopsias tomadas a humanos, ni la aparición de pseudoquistes en el tejido

adiposo ni la ruptura de la membrana de los adipocitos referida por de Felipe et al. (10) en un

estudio en cerdos. Por último, y al igual que otros autores (5,6,10), no hemos observado

inflamación, al contrario que Zelickson et al. (11) en humanos y Shumaker et al. (12) en cerdos.

En nuestro estudio, la aplicación de radiofrecuencia en condiciones similares a las usadas en

la clínica humana sólo causó eritema leve, que desaparecía espontáneamente a los 30-60

minutos. Este es un efecto secundario frecuente del uso de la radiofrecuencia tanto para el

rejuvenecimiento de la piel (1,3,13), como para la mejora de la celulitis.

39

Por otra parte, el estudio ultraestructural que hemos realizado revela la activación funcional

de los fibroblastos, lo que coincide con los resultados de otros estudios (13,14).

En resumen, la aplicación de radiofrecuencia de la empresa Study TDES, investigación

tecnológica, S.L (Grupo Dercont) con (Exp.200703 I+D+i 0026) sobre la piel de cerdos minipig

no originó respuesta patológica, y causó la disminución del espesor cutáneo a expensas del

tejido adiposo, sin rotura de los adipocitos.

40

VII. CONCLUSIONES

41

1.- Se ha producido una disminución del espesor cutáneo a expensas fundamentalmente del

tejido adiposo. Los adipocitos disminuyeron de volumen y contenido citoplasmático sin rotura de

las membranas celulares o “cavitación intraadipocitaria”.

2.- El tratamiento provocó un aumento de capilares sanguíneos y de células cebadas, así como

activación de los fibroblastos y síntesis de colágena.

3.- No se observaron alteraciones de los parámetros de la función hepática (proteínas totales,

albúmina, GOT y GPT) y fracción lipídica (colesterol total, HDL-colesterol, LDL-colesterol,

triglicéridos y lipasa), ni alteraciones morfológicas celulares ni tisulares relevantes (M.O. / M.E.)

respecto a los controles.

42

VIII. BIBLIOGRAFIA

43

1. Arturo Vera Hernández* REVISTA MEXICANA DE BIOINGENIERIA MÉDICA Vol. XXII,

Núm. 2 Abril-Septiembre 2001.

2. Rowbottom M, Susskind C (1984): Electricity and Medicine. History of Their Interaction, 303

pp. San Francisco Press, San Francisco.

3. Effect of controlled volumetric tissue heating with radiofrequency on cellulite and the

subcutaneous tissue of the buttocks and thighs.

4. From: Journal of Drugs in Dermatology | Date: 9/1/2006 | Author: Arguelles, Dinorah.

5. 1 -de Felipe I, Del Cueto SR, Pérez E, Redondo P. Adverse reactions after nonablative

radiofrequency: follow-up of 290 patients. J Cosmet Dermatol. 2007; 6(3): 163-6.

6. 2 -Sadick NS. Update on non-ablative light therapy for rejuvenation: a review. Lasers Surg

Med 2003; 32(2):120-8.

7. 3 -Sarradet MD, Hussain M, Goldberg DJ. Electrosurgical resurfacing: a clinical, histologic,

and electron microscopic evaluation. Lasers Surg Med 2003; 32(2): 111-4.

8. 4 -Alster TS, Tanzi E. Improvement of neck and cheek laxity with a nonablative

radiofrequency device: a lifting experience. Dermatol Surg 2004; 30(4 Pt 1): 503-7.

9. 5 -Emilia del Pino M, Rosado RH, Azuela A, Graciela Guzmán M, Argüelles D, Rodríguez C,

Rosado GM. Effect of controlled volumetric tissue heating with radiofrequency on cellulite and

the subcutaneous tissue of the buttocks and thighs. J Drugs Dermatol. 2006; 5(8): 714-22.

10. 6 -Goldberg DJ, Fazeli A, Berlin AL. Clinical, laboratory, and MRI analysis of cellulite

treatment with a unipolar radiofrequency device. Dermatol Surg. 2008; 34(2): 204-9.

11. 7 -Sadick NS, Mulholland RS. A prospective clinical study to evaluate the efficacy and safety

of cellulite treatment using the combination of optical and RF energies for subcutaneous tissue

heating. J Cosmet Laser Ther. 2004; 6(4): 187-90.

44

12. 8 -Karnovsky MJ. A formaldehyde-glutaraldehyde fixative of high osmolarity for use in

electron microscopy. J. Cell Biol. 1965; 27:137A.

13. 9 -Jauchem JR. The role of autacoids and the autonomic nervous system in cardiovascular

responses to radio-frequency energy heating. Auton Autacoid Pharmacol 2006; 26(2): 121-40.

14. 10 -de Felipe I, Redondo P. Animal model to explain fat atrophy using nonablative

radiofrequency. Dermatol Surg. 2007; 33(2): 141-5.

15. 11 -Zelickson BD, Kist D, Bernstein E, Brown DB, Ksenzenko S, Burns J, Kilmer S, Mehregan

D, Pope K. Histological and ultrastructural evaluation of the effects of a radiofrequency-based

nonablative dermal remodelling device: a pilot study. Arch Dermatol 2004; 140(2): 204-9.

16. 12 -Shumaker PR, England LJ, Dover JS, Ross EV, Harford R, Derienzo D, Bogle M,

Uebelhoer N, Jacoby M, Pope K. Effect of monopolar radiofrequency treatment over soft-tissue

fillers in an animal model: part 2. Lasers Surg Med 2006; 38(3): 211-7.

17. 13 -Alvarez N, Ortiz L, Vicente V, Alcaraz M, Sánchez-Pedreño P. The effects of

radiofrequency on skin: experimental study. Lasers Surg Med. 2008; 40(2): 76-82.

18. 14 -Hecht P, Hayashi K, Lu Y, Fanton GS, Thabit G 3rd, Vanderby R Jr, Markel MD.

Monopolar radiofrequency energy effects on joint capsular tissue: potential treatment for joint

instability. An in vivo mechanical, morphological, and biochemical study using an ovine model.

Am J Sports Med 1999; 27(6): 761-71.