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PARASITOLOGIA MEDICA Página 1

ASOCIACIÓN

UNIVERSIDAD PRIVADA SAN JUAN BAUTISTA

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD

ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANA

GUÍA DE PRÁCTICA

PARASITOLOGÍA MÉDICA

QUINTO CICLO

SEMESTRE ACADÉMICO 2013-II


INTRODUCCIÓN

Los diferentes procedimientos y técnicas de la enseñanza universitaria pueden

aplicarse en particular a la enseñanza de la Parasitología en concordancia con los

objetivos de esta última. En una ordenación lógica de hechos, primero deben

definirse claramente los objetivos y propósitos de la Parasitología, dentro del

conjunto orgánico de las materias que conforman un plan de enseñanza pre-

profesional, profesional o técnica, y más tarde realizar la selección de los métodos y

procedimientos más adecuados para alcanzar las metas fijadas.

De acuerdo con las tendencias actuales de la enseñanza Parasicológica, cualquiera

que sea la metodología escogida, ella supone la aplicación del principio del

aprendizaje activo en cuyo desarrollo el estudiante es un actor y no un mero

espectador del proceso enseñar-aprender, donde la incorporación de nuevos

conocimientos y su edificación conceptual se realiza a través de experiencias

personales, en un esfuerzo constante por descubrir nuevas relaciones hasta

alcanzar una comprensión integrada y madura de las materias del curriculum.

Algunos elementos parasitarios del tubo digestivo (los dibujos no guardan relación

de proporción entre ellas).

1. Trofozoito de Entamoeba histolytica

2. Quiste maduro de Entamoeba histolytica

3. Trofozoito de Entamoeba coli

4. Quiste maduro de Entamoeba coli

5. Quiste de Endolimax nana

6. Quiste de Iodamoeba bütschlii

7. Trofozoito de Giardia lamblia

8. Quiste de Chilomastix mesnili

9. Trofozoito de Chilomastix mesnili

10. Trofozoito de Trichomonas hominis

11. Trofozoito de Balantidium coli

12. Quiste de Balantidium coli


13. Trofozoito uninucleado de Dientamoeba fragilis

14. Trofozoito binucleado de Dientamoeba fragilis

15. Huevo de Taenia sp.

16. Proglótido grávido de Taenia saginata

17. Proglótido grávido de Taenia solium

18. Huevo de Diphyllobothrium pacificum

19. Proglótido grávido de Diphyllobothrium pacificum

20. Huevo de Hymenolepis diminuta

21. Huevo de Hymenolepis nana

22. Cápsula ovígera de Dipylidium caninum

23. Huevo de Fasciola hepatica

24. Huevo de Paragonimus mexicanus (=P. peruvianus)

25. Huevo de Schistosoma mansoni

26. Huevo lavado de Enterobius vermicularis

27. Huevo fértil de Ascaris lumbricoides

28. Huevo infértil de Ascaris lumbricoides

29. Huevo fértil decorticado de Ascaris lumbricoides

30. Huevo de Trichuris trichiura

31. Huevo de Ancylostoma duodenale o Necator americanus

32. Larva rabditoide de Strongyloides stercoralis

33. Huevo de Meloidogyne sp.

34. Huevo de Trichostrongylus sp.

Origen Vegetal:

35. Granos de almidón

36. Pelo vegetal

37. Pared celular vegetal

38. Gotas de grasa

39. Células vegetales en empalizada

40. Estructura vascular vegetal

41. Células vegetales

42. Grano de polen

43. Fibra de algodón


44. Hongos

45. Levaduras

Origen Mineral:

46. Fosfato amónico magnésica

47. Oxalato de calcio

48. Fosfato cálcico neutro

49. Ácido úrico

50. Cistina

51. Colesterol

52. Alucina

53. Sulfanilamida

54. Carbonato de calcio

55. Cristales de Charcot – Leyden

56. Ácidos grasos


AMEBIASIS

Definición:

Infección causada por el protozoario Entamoeba histolytica.

El parásito usualmente se localiza en la luz del intestino grueso del hombre,

pudiendo invadir la mucosa y por vía sanguínea alcanzar diversos órganos. Las

úlceras intestinales pueden ocasionar perforaciones. La infección es de distribución

cosmopolita.

El Parásito:

a. Morfología

Observe preparaciones microscópicas de heces coloreadas con hematoxilina

férrica y/o gomorritrichrome. Reconozca, con objetivo de inmersión, trofozoitos de

Entamoeba histolytica, distinguiendo la forma irregular del parásito, y la presencia

de núcleo esférico, con nucleolo central y cromatina fina en la pared interna de la

membrana nuclear (formas típicas). En algunas preparaciones pueden

observarse el ecto endoplasma, así como, pre quistes redondeados con un

núcleo.

Observe preparaciones microscópicas de heces coloreadas con lugol y con

objetivo de mayor aumento, reconozca quistes. En las prelaciones coloreadas

con hematoxilina férrica, pueden encontrar quistes con 1 a 4 núcleos y barras

cromidiales en el citoplasma.

b. Ciclo Biológico (estudie el esquema adjunto)

Relación hospedero-parásito: Observe la preparación microscópica de corte del

intestino grueso con una lesión ulcerativa. Reconozca la extensión y límites del

tejido sano y el lesionado. Ubique los trofozoitos de Entamoeba histolytica,

señalando las capas del intestino invadidas. Preste atención a los cambios de

tejido normal: necrosis, inflamación, etc. En algunas preparaciones pueden

observarse trofozoitos en el interior de los vasos sanguíneos.

La amibiasis extra intestinal más frecuente es el “absceso” (necrosis) hepático.


CICLO DE VIDA DE Entamoeba histolytica


GIARDIASIS

Definición:

Infección causada por el flagelado Giardia lamblia (=Giardia intestinalis). El trofozoito

se adhiere a la superficie de la mucosa del intestino delgado. En algunos casos se

puede producir el síndrome de mala absorción.

El Parásito:

a. Morfología

Observe trofozoitos vivos de Giardia. Preste atención al disco suctorio, y al

movimiento en vaivén. En preparaciones microscópicas coloreadas distinga los

núcleos, el funis (axostilo) y flagelos.

En preparaciones microscópicas de heces coloreadas con lugol observe los

quistes. Ponga atención a la forma, la posición de los núcleos, la presencia del

funis y flagelos.


Relación hospedero-parásito: La acción mecánica del parásito sobre la

superficie de la mucosa intestinal, explica en parte, el síndrome de mala

absorción.


CICLO DE VIDA DE Giardia lamblia


BALANTIDIASIS

Definición:

Infección causada por un protozoo, el Balantidium coli, cuyo hábitat es el intestino

grueso.

El Parásito:

a. Morfología

Observe, a menor aumento, trofozoitos vivos y móviles, procedentes de heces de

cerdo. Reconozca la forma y tamaño, las filas ordenadas de cilios, cuya agitación

permanente permite los desplazamientos del parásito. Por transparencia puede

reconocerse la vacuola contráctil. En preparaciones microscópicas de heces de

cerdo, en fresco y coloreadas, identifique y dibuje los quistes. Preste atención a

la presencia de un solo elemento parasitario en cada quiste.


Relación hospedero-parásito: Observe preparaciones microscópicas de intestino

grueso Balantidium coli. Preste atención a la presencia de los parásitos en las

diferentes capas del intestino. Observe la reacción inflamatoria en los bordes de

las lesiones, así como a la destrucción tisular.


CICLO DE VIDA DE Balantidium coli

OTROS PROTOZOARIOS INTESTINALES

Entamoeba sp.:

Trofozoitos: Observe preparaciones coloreadas de heces con Entamoeba coli.

Guiándose por el esquema adjunto, identifique la distribución de la cromatina nuclear

gruesa y adosada a la membrana; así como, la posición excéntrica del cariosoma.

Compare con sus observaciones de Entamoeba histolytica.


Quistes: En las mismas preparaciones anteriores y en otras de heces, teñidas con

lugol, identifique los quistes, redondeados, con 4 núcleos o más. En las

preparaciones coloreadas puede distinguir las características nucleares ya

mencionadas.

Iodamoeba bütschlii: Observe las preparaciones coloreadas de heces con

Iodamoeba bütschlii, guiándose por el esquema adjunto, identifique trofozoitos y

quistes ayudándose del esquema adjunto.

Endolimax nana: Observe preparaciones coloreadas de heces con Endolimax nana.

Identifique trofozoitos y quistes ayudándose del esquema adjunto.

Chilomastix mesnili: Observe preparaciones coloreadas de heces con Chilomastix

mesnili. Identifique quistes por la forma en “pera” de los mismos y los restos

flagelares en el citoplasma.


Cystoisospora belli (=Isospora belli)

La Isosporidiasis humana tiene como agente causal a Cystoisospora belli (=Isospora

belli), que es poco frecuente en nuestro medio.

Cystoisospora belli (=Isospora belli).

Parasita el intestino delgado del hombre. Es de ciclo de vida directo.

Ooquiste.- Se caracteriza por su forma ovoidea y la presencia de esporoblastos o de

dos esporoquistes. Su diámetro mayor oscila de 20 u por 10 u.

Cystoisospora belli (=Isospora belli): Observe preparaciones en fresco con

ooquistes, identifique los esporoquistes y los esporozoitos.


Cryptosporidium parvum

Es agente causal de la cryptosporidiasis en el hombre, siendo más afectados los

pacientes inmunoomprometidos, (SIDA).

El ooquiste es el elemento infectante, mide de 4 a 6 u de diámetro y contiene 4

esporozoitos.


Cyclospora cayetanensis

Coccidio causante de diarrea en niños y adultos. Es muy parecido a Cryptosporidium

parvum, pero de mayor tamaño.

Sarcocystis hominis

Es un parásito muy parecido a Toxoplasma sp. No se conoce con exactitud la

especie que parasita al hombre, pero es frecuente hallarlo en la musculatura del

ganado herbívoro.

Quiste.- Localizado en la musculatura en forma fusiforme o de “arrocillo”, mide de 1

a 5 cm de longitud, está rodeado de una pared gruesa, en la parte interna forma

numerosos tabiques y compartimientos, dentro de los cuales se encuentran

numerosos en forma de plátano que miden de 9 a 12 u por 2 a 4 u.

Ooquiste.- Mide 15 u en su diámetro mayor, tiene dos esporoquistes cada uno con

cuatro esporozoitos.


TRICOMONIASIS UROGENITAL

Definición:

Es una infección, esencialmente venérea causada por el protozoario flagelado

Trichomonas vaginalis, suele afectar a la mujer produciendo vulvovaginitis, y en el

hombre, en ocasiones, uretritis y prostatovesiculitis.

El Parásito: Trichomonas vaginalis

a. Morfología

Los trofozoitos: El protozoario sólo tiene estadio de trofozoito. Observe frotices

de secreción vaginal coloreados con Giemsa. Preste atención al núcleo, al

citoplasma finamente granulado, membrana ondulante, axostilo y flagelos.

Diferencie las células epiteliales vaginales de los parásitos, del polimorfo

nucleares y de las levaduras.

Observe las preparaciones microscópicas en fresco, preste atención a la forma

piriforme del parásito y al movimiento rápido, no direccional y rotatorio, cuando

se hace lento se puede observar la membrana ondulante.

b. Ciclo biológico (observe el esquema adjunto)

Relación hospedero-parásito: En el Papanicolaou (examen de células para el

diagnóstico precoz del cáncer uterino), se suele encontrar Trichomonas

vaginalis con células del tipo III, que luego de la eliminación de Trichomonas

vaginalis, dichas células pueden variar a Tipo II o Tipo IV.

Diagnóstico: Mediante la observación, en fresco de la secreción vaginal o

prostática. Se recomienda hacer concomitantemente variar a Tipo II o Tipo IV.

Epidemiología: Es una infección cosmopolita. Entre el 15 y el 30% de mujeres

en periodo de actividad sexual están parasitadas. Ocasionalmente se han

encontrado Infecciones en recién nacidas, o niñas, lo cual indica otros

mecanismos, aparte del sexual, presentes.


CICLO DE VIDA DE Trichomonas vaginalis


TRIPANOSOMIASIS AMERICANA

Definición:

Zoonosis causada por Trypanosoma cruzi y Trypanosoma rangeli.

La infección por Trypanosoma cruzi es conocida como “Enfermedad de Chagas”.

Ambas parasitosis han sido demostradas en el país y son transmitidas por especies

de triatominos.

El Parásito: Tripanosoma cruzi

a. Morfología

El Trypomastigote: Observe preparaciones de frotis de sangre con

Trypanosoma cruzi. Preste atención al tamaño (compare con el tamaño del

glóbulo rojo), la forma de “c”. Distinga el núcleo central, quinetoplasto posterior,

prominente y subterminal, membrana ondulante y flagelo.

El Amastigote: Observe preparaciones de cortes histológicos de corazón, con

objetivo de inmersión. Preste atención a la presencia de “nidos de amastigotes”

en el interior de las fibras musculares. Distinga el tamaño muy pequeño del

amastigote, la forma redondeada ú ovoide del mismo, la presencia del núcleo y

quinetoplasto y la ausencia de membrana ondulante.

El Epimastigote: Observe preparaciones de cultivos de Trypanosoma cruzi (en

fresco). Preste atención a las “rosetas” de epimastigotes, al movimiento activo

de éstos, y a la pequeña membrana ondulante y flagelo. En las preparaciones

coloreadas, observe el tamaño variable del parásito, la presencia de núcleo,

quinetoplasto, membrana ondulante y flagelo. Repare que el quinetoplasto está

situado siempre próximo al núcleo.

b. Ciclo biológico: (Vea el esquema adjunto)

Relación hospedero-parásito: Observe preparaciones de cortes histológicos

de corazón con infección con Trypanosoma cruzi. Preste atención a los cambios

degenerativos de las fibras musculares parasitadas, y en ocasiones, en las no

parasitadas, así como el infiltrado linfomonocitario cerca y a distancia de los

nidos de amastigotes.


Diagnóstico:

a. Examen de sangre: En fresco (recién nacidos con sospecha de transmisión

transplacentaria), frotis y gota gruesa (etapa aguda).

b. Hemocultivo

c. Xenodiagnóstico

d. Biopsia de ganglios y músculo

e. Pruebas inmunobiológicas

(Ver métodos de diagnóstico)

Epidemiología: (Ver mapa de distribución geográfica de la infección en el Perú)

En nuestro país, el cobayo, parece ser el más importante reservorio de la

infección por Trypanosoma cruzi.


VECTORES DE LA TRIPANOSOMIASIS AMERICANA: LOS

TRIATOMINOS

Triatominae (Hemíptera – Reduvidae)

Caracteres generales:

a. Morfología:

1. Los adultos: Observe especimenes adultos, preste atención al tamaño,

color y ornamentación del cuerpo; la cabeza prolongada hacia delante

(prognatha); ojos compuestos, ocelos, aparato bucal (picador, chupador) con

tres segmentos cortos y rectos. Antenas filiformes y cortas. Tórax con

pronoto grande y escutellum triangular, un par de hemiélitros y un par de

alas membranosas, patas con uñas. Abdomen con conexivo. Diferencie

hembras de machos por la continuidad del conexivo en el segmento caudal

(macho) o discontinuo (hembra).

2. Los huevos: Observe los huevos, que se caracterizan por ser operculados.

3. Las niñas: Observe ninfas de diferentes estadíos. Diferéncielos de los

adultos (tamaño y ausencia de alas). Distinga los siguientes hemípteros:

hematófagos, entomófagos y fitófagos (Vea esquemas).

b. Ciclo biológico:

Tienen metamorfosis gradual (observe el esquema adjunto).

Clasificación:

Observe especímenes adultos de Triatoma sp., Panstrongylus sp. y Rhodnius sp.

Preste atención en la cabeza, al nivel de la inserción de las antenas. (Estudie el

esquema adjunto).


LEISHMANIASIS

Definición:

Infección producida por especies del género Leishmania.

Se reconocen las leishmaniasis cutánea, mucocutánea y visceral. El parásito es

transmitido por mosquitos del género Lutzomyia sp. (América) y Phlebotomus sp.

(Europa, Asia y África). Las leismaniasis cutáneas se caracterizan por lesiones

ulcerativas que por extensión o por metástasis pueden ocasionar lesiones en las

mucosas oronaso-faríngeas. La leishmaniasis visceral ocasiona hepato-

esplenomegalia.

El parásito:

a. Morfología:

1. El amastigote: Observe frotases de lesiones cutáneas y mucocutáneas

coloreadas con Giemsa. Preste atención al tamaño, núcleo y

quinetoplasto.

2. El promastigote: Observe preparaciones en fresco de cultivo de

Leishmania, preste atención al movimiento del parásito, flagelos y

“roestas”. En preparaciones microscópicas coloreadas con Giemsa

observe el núcleo, la posición del quinetoplasto y flagelo. En la misma

preparación trate de ubicar formas en reproducción.

b. Ciclo biológico: (Estudie el esquema adjunto)

Relación hospedero-parásito: Observe cortes histológicos de lesiones

cutáneas, y/o mucocutáneas de leishmaniasis. Preste atención a la

destrucción de los tejidos, la proliferación, linfocitaria, y a la presencia de

amastigotes.

Diagnóstico parasicológico: Frotis y/o biopsia de las lesiones cutáneas o

mucosas (Ver métodos de diagnóstico).

Intradermoreacción de Montenegro: Útil a partir del mes de la infección, y

menos importante son las reacciones sexológicas (ver Métodos

inmunobiológicos).

Epidemiología: (Ver mapa adjunto). Las formas “uta” y “espundia” tienen

zonas de distribución predominantes.


CICLO DE VIDA DE Leshmania sp.


VECTORES DE LA LEISHMANIASIS: LAS LUTZOMYIAS Y LOS

PHLEBOTOMUS

Lutzomyia sp. (Insecta – Díptera – Nematocera – Psychodidae)


a. Morfología:

Los adultos: En láminas con Lutzomyia sp. Observe el tamaño, color, cuerpo

piloso, cabeza pequeña con un par de ojos grandes compuestos, antenas

similares en ambos sexos, palpos pendulares, probosis gruesa. Tórax corto y

giboso, alas lanceoladas, cubiertas con pelos largos, sin venas transversas. La

extremidad posterior del macho presenta clárperes prominentes en forma de

garfios y en la hembra es roma.

(Vea mapa de distribución del vector en el Perú)


TOXOPLASMOSIS

Definición: Es una zoonosis causada por Toxoplasma gondii. Es la más difundida

de las zoonosis parasitarias. La infección en el adulto es usualmente asintomática.

La infección transparentaría es rara, pero puede producir graves alteraciones.

El parásito: Toxoplasma gondii

a. Morfología:

El trofozoito: Observe preparaciones microscópicas de frotices de exudado

peritoneal de ratón, inoculado con Toxoplasma gondii. Preste atención a las

formas intra y extracelulares del parásito. En los trofozoitos extracelulares repare

en la forma de “media luna”, presentando un extremo ensanchado, donde se

encuentra el núcleo. Las formas intracelulares se encuentran aglomeradas en el

citoplasma, en división, variando su forma a fusiforme (taquizoitos).

El quiste: Observe cortes histológicos de cerebro de ratón con quistes de

Toxoplasma gondii. Preste atención al tamaño, forma esférica, la presencia de

gran cantidad de bradizoitos, y la membrana quística.


Relación hospedero-parásito: El parásito es intracelular, la propagación (fase

aguda) se hace por invasión de células vecinas, hay destrucción de tejidos y

reacción inflamatoria periférica. Observe, en la preparación del frotis de exudado

peritoneal, la presencia de células polimorfonucleares y linfocitarias. En la fase

crónica (quistes) hay poca reacción inflamatoria por la evasión del parásito a la

respuesta inmunitaria del hospedero. En la lámina de corte histológico de cerebro,

preste atención a la falta de reacción inflamatoria periquística.

Diagnóstico:

a. Fase aguda: La demostración directa del parásito es difícil lograrse, inclusive

por la inoculación del ratón. Las muestras para examinarse lo constituyen el

L.C.R., la sangre, secreciones, macerado de ganglios, etc.

b. Las reacciones inmunológicas son más útiles en la fase crónica y en las

reactivaciones de las lesiones. (Ver métodos de diagnóstico).

c. En la transmisión transplacentaria, la detección de IgM antitoxoplasma es útil

para el diagnóstico y el seguimiento del tratamiento del niño.


Epidemiología:

En nuestro país similar a otros, se señalan tasas altas de infección humana (40-

50%), siendo más elevadas en poblados de nuestra selva y menos en los de

nuestra serranía.


CICLO DE VIDA DE Toxoplasma gondii


PALUDISMO

Definición:

Infección causada por esporozoarios del género Plasmodium (Plasmodium vivax,

Plasmodium ovale, Plasmodium malariae, Plasmodium falciparum) y que son

transmitidos por insectos anofelinos. La enfermedad se caracteriza por los accesos

palúdicos (escalofríos, fiebre y sudoración) producidos por la destrucción de los

glóbulos rojos que pueden dar lugar a la anemia. Además, Plasmodium falciparum

puede producir la obstrucción de los capilares viscerales y causar la muerte.

El parásito:

a. Morfología:

Ciclo eritrocítico: Observe frotices de sangre, coloreados con Giemsa. Distinga

los glóbulos blancos, de los rojos. El parásito se encuentra en el interior de los

glóbulos rojos. Diferéncielos de una plaqueta adherida al glóbulo. El citoplasma

del parásito se colorea de azul y su núcleo de rojo. En la misma lámina.

Compruebe, si el glóbulo rojo parasitazo es más grande que los no parasitazos

(P. vivax, P. ovale) ó es el de tamaño igual o menor (Plasmodium malariae,

Plasmodium falciparum). Precise, si el parásito tiene un solo núcleo (Trofozoito,

gametocito) o tiene más de dos núcleos (esquizonte). Identifique, si en los

glóbulos observados existe una sola especie de Plasmodium o más de una

(infección mixta). Ponga atención al pigmento malárico y a las granulaciones del

eritrocito, guiándose por el dibujo adjunto, señale el estadío y la especie de

Plasmodium que observa.

b. Ciclo biológico: (Estudie el esquema adjunto)

Relación hospedero-parásito:

a. Glóbulos rojos: Observe las alteraciones de forma y tamaño de los glóbulos

rojos parasitazos y no parasitazos.

b. Hígado y bazo: Observe en el corte histológico de hígado la presencia de

pigmento malárico en el interior de las células de Kupfner. Observe en el

corte histológico de bazo, la presencia de pigmento malárico en las células

mononucleares fagocitarias.Diagnóstico parasitológico: Usualmente se

realiza por el hallazgo del parásito en la sangre periférica frotis y gota

gruesa. (Vea métodos de diagnóstico de las hemohistoparasitosis).


La demostración de anticuerpos antiplasmodium (excluyendo la transferencia activa

y pasiva) puede ser útil para demostrar la presencia actual y/o pasada del parásito.


VECTORES DEL PALUDISMO: LOS ANOFELINOS

Anopheles sp. (Insecta – Díptera – Nematocera-Culicidae)


a. Morfología:

1. Los adultos: Anopheles (anophelin): Examine especimenes vivos. Preste

atención a la pigmentación de las alas, y a la posición que adoptan durante

el reposo. (Vea el esquema adjunto). Observe el cuerpo esbelto. En la

cabeza note que los palpos tienen el mismo tamaño que la proboscis. En

preparaciones en lámina, distinga las características morfológicas de las

antenas en los machos (“plumoso”), y además, el último segmento de los

palpos es dilatado, en los machos.

2. Los huevos: Observe las cámaras de aire laterales.

3. Las larvas: Observe los estigmas respiratorios posteriores. Preste atención

a los pelos palmeados.

4. Las pupas: En especimenes vivos, observe la forma (coma o signo de

interrogación); y el movimiento hacia la superficie del agua.

b. Ciclo biológico: El insecto metamorfosis completa (Estudie el esquema

adjunto).


TENIASIS Y CISTICERCOSIS

Teniasis

Definición.- Es la infección del intestino delgado del hombre por los adultos de los

céstodos. Los más importantes son Taenia solium, Taenia saginata,

Diphyllobothrium pacificum, Hymenolepis nana, Hymenolepis diminuta y Dipylidium

caninum.

El parásito. Taenia solium, Taenia saginata.

a. Morfología:

Los adultos: Observe escólices de Taenia solium, Taenia saginata, montados en

láminas portaobjetos. Preste atención a la presencia de las 4 ventosas en ambas

especies, rostelo provisto de ganchos en Taenia solium y su ausencia en Taenia

saginata.

Observe proglótidos grávidos de ambas especies. Preste atención a las

ramificaciones uterinas. Cuente las ramificaciones primarias. Repare que Taenia

solium tiene como máximo 12, y Taenia saginata, más de 12.

Los huevos.- Observe preparaciones microscópicas de heces humanas con

huevos de Taenia sp. Repare en la forma redondeada, embrióforo y embrión

hexacanto. No se establece la diferencia de especie por la morfología de los

huevos.

El cisticerco.- Observe trozos de músculo de cerdo con Cisticercos cellulosae.

Preste atención al tamaño macroscópico, a su color blanquecino y a la forma

ovoidea.

Diseque los cisticercos, y observe, por transparencia la presencia de la “mancha

blanca”, correspondiente al escólex invaginado.

Observe cisticercos tratados con bilis. Preste atención al evaginamiento del

escólex. Repare en el movimiento de las ventosas, y al rostelo con ganchos.

Observe cortes histológicos de tejido muscular de cerdo con cisticercos. Preste

atención a la pared del cisticerco, y al escólex invaginado.

b. Ciclo biológico: (Estudie el esquema adjunto).

Relación hospedero-parásito: La Taenia solium, Taenia saginata se fijan por su

escólex a la mucosa y el cuerpo está en la luz del intestino. No se han

demostrado alteraciones en la mucosa.


Cisticercosis humana

Definición.- Es la infección causada por los cisticercos de Taenia solium.

Diagnóstico: La teniasis se diagnostican por el hallazgo de huevos y/o proglótidos

en las heces (Vea métodos de diagnóstico).

La cisticercosis humana se diagnostica por medio de la biopsia (cisticercosis

subcutánea), examen de fondo de ojo (cisticercosis ocular), o por reacciones

inmunológicas de sangre y líquido céfalo-raquídeo (Ver métodos de diagnóstico).

Epidemiología.- La cisticercosis es una de las zoonosis más importantes en

nuestro país. La cisticercosis humana del sistema nervioso es frecuente como causa

de morbilidad y mortalidad en los servicios de neurología.

CICLO BIOLÓGICO DE Taenia solium – Taenia saginata


Diphyllobothrium pacificum

a. Morfología:

1. Los adultos: Pueden alcanzar hasta 2 metros de longitud: Observe el escólex

acorazonado con dos botrias (dorsal y ventral). Observe proglótidos a menos

aumento. Preste atención a la presencia de las aberturas genital y uterina en

la cara ventral y anteriormente a ellas, unas rugosidades o repliegues. Preste

atención a las asas uterinas y la presencia de huevos en el interior de las

mismas. Los testículos son numerosos y se sitúan en los campos laterales del

proglótido.

2. Los huevos: Observe en preparaciones microscópicas, el grosor de la

cáscara, la presencia de un engrosamiento en el polo opuesto al opérculo.

Dibuje.

3. Las larvas: (Vea el ciclo biológico).

b. Ciclo biológico

(Vea el esquema adjunto)

Los adultos parasitan a los lobos marinos (Otaria byronia, Arctocephalus

australis, etc.) que son los hospederos definitivos naturales.

El ciclo biológico se desarrolla en el ecosistema marino e incluye a 2 hospederos

intermediarios: el primero, en un copépodo aún no conocido, en el que se

desarrolla el procercoide. En el ciclo de este parásito también intervienen los

hospederos paratémicos o de transporte. En el Perú se han encontrado varios

peces comerciales infectados con plerocercoides de Diphyllobothrium pacificum.

El hombre se infecta al ingerir peces marinos insuficientemente cocidos, bajo la

forma de “cebiche”.

Relación hospedero-parásito: El parásito generalmente no causa molestias.


Hymenolepis diminuta

a. Morfología:

1. Los adultos.- Pueden medir 1 metro de longitud. Observe el escólex

provisto de 4 ventosas. A menor aumento observe proglótido maduro posee

3 testículos reconocibles. Los proglótido grávidos están ocupados totalmente

por el útero sacciforme lleno de huevos. Preste atención a las aberturas

genitales, las que se abren a un solo lado del estróbilo.

b. Vectores:

Tribolium sp.: (Insecta-Coleoptera)

En los Tribolium sp., que se le ha proporcionado identifique los caracteres de los

coleópteros como son los 2 pares de alas, el primer par de consistencia coriácea

(élitros) que no sobrepasan la línea media del cuerpo y el segundo par membranoso

doblado debajo de los élitros, preste atención al aparato bucal de tipo masticador.

2. Los huevos: Esféricos con un embrión hexacanto. Dibuje y compare con la

morfología de los huevos de las otras tenias, principalmente Hymenolepis

nana.


(Estudie el esquema adjunto). El hospedero intermediario es un artrópodo,

comúnmente gorgojos de los cereales como Tribolium confusum; en el Perú se

han descrito otros artrópodos.

Relación hospedero-parásito: Las infecciones humanas son raras, sin embargo,

en Cajamarca se ha observado una importante prevalencia del parasitismo.


CICLO BIOLÓGICO DE Hymenolepis diminuta


Hymenolepis nana

a. Morfología:

1. Los adultos: Son pequeños, pueden medir hasta 10 cm. De longitud.

Observe el escólex provisto de 4 ventosas y un rostelo retráctil armado de

ganchos. Compruebe que los proglótidos son más pequeños que

Hymenolepis diminuta pero con morfología similar.

2. Las larvas: Observe el cisticercoide en la preparación microscópica de las

vellosidades intestinales. Dibuje.

3. Los huevos: Observe que el embrióforo que encierra al embrión hexacanto

tiene una forma de “limón” con un engrosamiento en cada polo, de donde

emergen filamentos polares que se sitúan en el espacio comprendido entre el

embrióforo y la cubierta externa. Dibuje y compare con los huevos de

Hymenolepis diminuta.


(Estudie el esquema adjunto). El hospedero definitivo, natural, es el hombre,

aunque una raza llamada Hymenolepis nana var. fraterna se desarrolla en los

ratones. Hymenolepis nana no requiere del hospedero intermediario.

Relación hospedero-parásito: La presencia del cisticercoide en las vellosidades

intestinales induce reacciones inflamatorias de la mucosa intestinal (enteritis) que

pueden ser severas. En la preparación microscópica de las vellosidades intestinales

observe los infiltrados celulares próximos al parásito.


CICLO BIOLÓGICO DE Hymenolepis nana


Dipylidium caninum

a. Morfología:

1. Los adultos: Pueden llegar a medir hasta 80 cm. de longitud. Observe el

escólex con 4 ventosas y rostelo retráctil y armado de numerosos ganchos

que tienen la forma de espinas de rosal. Preste atención a la forma de “barril”

o “pepitas de zapallo” de los proglótidos. Los proglótidos maduros tienen

doble juego de aparatos reproductores: masculino y femenino. Los proglótidos

grávidos presentan cápsulas ovígeras, dentro de las cuales se hallan los

huevos.

2. Los huevos: Compruebe que los huevos conteniendo los embriones

hexacantos se translucen dentro de las cápsulas ovígeras.

3. Las larvas: Observe y dibuje el cisticercoide de contenido en una pulga.


(Estudie el esquema adjunto). Las pulgas se infectan cuando están en el estadío

larvario. El hombre es un hospedero definitivo accidental. Los niños se infectan

por su contacto con perros o gatos infectados.

Relación hospedero-parásito.- La infección por Dipylidium caninum, generalmente

pasa desapercibida.


ASCARIASIS

Definición.- Geohelmintiasis causada por Ascaris lumbricoides. Los adultos tienen

por hábitat la luz del intestino delgado del hombre. El parasitismo está difundido en

todo el país, siendo las regiones de la Sierra y la Selva las que presentan las más

altas prevalencias.

El Parásito:

a. Morfología:

1. Los adultos: Observe la morfología externa de ejemplares masculinos y

femeninos. Preste atención al tamaño, grosor y extremidad posterior (macho:

encorvada, hembra: recta y crónica). En la extremidad anterior, haga un corte

transversal, con ayuda de una hoja de afeitar y observe los tres labios de

parásito al microscopio.

Diseque, guiándose por el dibujo adjunto, un ejemplar hembra. Haga un corte

transversal de la porción distal del útero, y obsérvelo al microscopio, entre

lámina y laminilla: preste atención a la morfología de los huevos.

Observe las preparaciones microscópicas con cortes transversales del

parásito: reconozca los elementos de la estructura interna del parásito.

Guíese por el dibujo adjunto.

2. Los huevos: Establezca las semejanzas y diferencias de los siguientes

huevos: los observados en el útero, los incubados en el medio ambiente. Los

emitidos con las heces, los fértiles, los infértiles y los decorticados. Guíese por

el dibujo adjunto.

3. Las larvas: Observe y dibuje huevos larvados. Observe y dibuje cortes

transversales y/o longitudinales de larvas en la luz bronquial de preparaciones

microscópicas de pulmones de ratones experimentalmente infectados (Ciclo

de Loos).

Relación hospedero-parásito: Los adultos tienen poca interrelación morfológica

con el hospedero, excepto si ellos migran a los conductos pancreático, biliar y/o a

otras localizaciones extraintestinales.


Las larvas pueden ocasionar cambio titulares importantes. Observe en las

preparaciones microscópicas de pulmón, además de la localización de las larvas, las

hemorragias, las zonas de condensación y las reacciones inflamatorias próximas a

las larvas, así como la presencia de eosinófilos.

CICLO DE VIDA DE Ascaris lumbricoides


OXYURUS

Definición.- Es la infección causada por Enterobius vermicularis (=Oxyuris

vermicularis). El adulto se localiza en el intestino grueso: la hembra migra colocando

sus huevos en la margen del ano.

El parásito: Enterobius vermicularis

a. Morfología:

Los adultos.- Observe ejemplares hembras. Preste atención al color blanco

nacarado y a la cola larga y terminada en punta. Observe preparaciones de

hembras en láminas portaobjeto. Preste atención a la presencia de las aletas

cefálicas. Distinga el bulbo esofágico y la presencia de huevos ocupando casi todo

el cuerpo.

Los huevos.- Observe preparaciones microscópicas conteniendo huevos de

Enterobius vermicularis. Preste atención a la forma plano convexa, y a la

presencia de la larva en su interior.

b. Ciclo biológico: (Ver esquema adjunto)

Relación hospedero-parásito: Observe preparaciones microscópicas con cortes

transversales de apéndice. Distinga el parásito, identificando los cortes transversales

del mismo a diferentes alturas del cuerpo, en algunos de ellos, se observa al útero

con huevos. En todos los cortes transversales reconozca las aletas laterales (útil en

el diagnóstico del parásito).


TRICHURIASIS

Definición.- Es una goehelmintiasis causada por Trichuris trichiura (Trichocephalus

dispar). Los adultos se insertan en la mucosa del intestino grueso del hombre.

El parásito: Trichuris trichiura (Trichocephalus dispar)

a. Morfología:

Los Adultos: Observe ejemplares adultos. Preste atención a la porción anterior

delgada, y a la posterior gruesa (forma de látigo). Distinga la parte distal

(enrollada) del macho, de la terminación recta en la hembra. Calcule el tamaño

en ambos sexos. Observe preparaciones en lámina portaobjeto de ejemplares

adultos. Distinga el esófago (esticocitos) en la porción delgada anterior. En las

hembras, repare la presencia de la vulva en la unión de las porciones gruesa y

delgada. En los machos, observe en su extremidad posterior la presencia de la

espícula con su vaina espinosa.

Los huevos: Observe preparaciones de heces, en fresco, teñidas con lugol.

Preste atención a las características morfológicas, guiándose por el esquema

adjunto.

b. Ciclo biológico: (Ver esquema adjunto)

Relación hospedero-parásito: Observe preparaciones histológicas de corte de

intestino grueso parasitazo con adultos de Trichuris trichiura. Preste atención a la

presencia de la porción delgada del parásito en la mucosa del intestino, y la porción

gruesa en la luz intestinal.

HUEVO FECUNDO


CICLO DE VIDA DE Trichuris trichiura


UNCINARIASIS

Definición.- Geohelmintiasis causada por los nematodes Ancylostoma duodenale

y/o Necator americanus, también se considera al Ancylostoma braziliensis, no

señalado para nuestro país.

Los adultos se fijan en la mucosa del intestino delgado, produciendo micro

hemorragias, que en algunos casos llevan a la anemia. Frecuente en la región de

nuestra Selva.

El parásito:

a. Morfología:

1. Los adultos: Observe en el Ancylostoma duodenale y/o Necator americanus

las cápsulas bucales. Preste atención a la presencia de dientes ventrales en

el primero y de placas cortantes en el segundo.

2. Los huevos: Observe y dibuje huevos: preste atención a que son

segmentados.

3. Las larvas: Observe larvas filariformes (forma infectante) vivas, al

microscopio. Preste atención a la movilidad y a las envolturas.

b. Ciclo biológico: Estudie el mismo en el esquema adjunto.

Relación hospedero-parásito: En la piel (puerta de entrada) se producen lesione

inflamatorias, debido al ingreso de la forma infectante y a la respuesta del hospedero

observe en los cortes histológicos de piel de ratón experimentalmente infectado,

dichas lesiones.

Las lesiones provocadas en el hospedero son consecuencia de la destrucción

mecánica y lisis tisular por la inserción del parásito adulto en las vellosidades

intestinales, así como la hemorragia consiguiente. La anemia, en casos severos de

la infección es microcítica hipocrómica por la pérdida de hierro.


STRONGYLOIDIASIS

Definición.- Infección causada por el nematodo Strongyloides stercoralis.

Esencialmente es una geohelmintiasis, pero existen casos de auto infección. El

adulto se localiza en las vellosidades del intestino delgado. Frecuente en la región

de la Selva, pero no ausente en la Costa y Sierra.

El parásito:

a. Morfología:

1. Los adultos: La hembra parásita es pequeña, filiforme, mide

aproximadamente 2 mm. de longitud y difícilmente de observarse a simple

vista.

2. Las larvas: Larva rabditoide: cavidad bucal corta comparando con el grosor

del parásito, esófago con bulbo posterior notorio (Compare con larvas de

uncinarias, vea los dibujos).

Larva filariforme: forma infectante, con esófago filariforme (Compare con

larvas de uncinarias, vea los dibujos).

b. Ciclo biológico: Estudie el esquema adjunto.

Relación hospedero-parásito: En la fase de invasión cutánea, se puede distinguir

una erupción pápulo-eritomatosa ocasionada como respuesta de sensibilización en

la zona de penetración de la larva filariforme.

Durante su migración, las larvas ocasionan lesiones infiltrativas en pulmones (ciclo

de Los).

La localización de los adultos en las vellosidades intestinales produce inflamación de

la mucosa intestinal y puede producir el síndrome de mala absorción.


CICLO DE VIDA DE Strongyloides stercoralis


FASCIOLASIS

Definición.- Zoonosis ocasionada por el trematodo Fasciola hepatica. El adulto se

localiza en las vías biliares intra y extra hepáticas.

El parásito: Fasciola hepatica

a. Morfología:

Los adultos: Observe vísceras parasitadas con adultos de Fasciola hepatica. De

las vías biliares extraiga ejemplares adultos. Preste atención a la forma, color y

tamaño. Con ayuda de lupa trate de identificar las ventosas. Coloque un ejemplar

entre dos láminas portaobjetos y mírelo a través de la luz, trate de identificar las

ramificaciones del intestino y al útero lleno de huevos. Guiándose con el

esquema adjunto, identifique los órganos de la estructura interna del parásito.

Los huevos: Con ayuda de un mondadiente, raspe la superficie de las vías

biliares y haga una preparación directa, con suero fisiológico, en una lámina

portaobjeto, y cúbrala con una laminilla. Observe el tamaño del huevo (el huevo

más grande de los helmintos estudiados), el color, la forma, la superficie externa,

la presencia de opérculo en uno de los extremos.

Los miracidios: Observe huevos con miracidio en el interior de los mismos.

Puede observar la eclosión del miracidio. Preste atención al desplazamiento

veloz, movimiento de los cilios, mancha ocular y papila apical. En las láminas

coloreadas de miracidios, corrobore las características morfológicas señaladas.

Las metacercarias: Observe preparaciones microscópicas de metacercarias.

Preste atención a la forma, y a la cubierta de la larva.

b. Ciclo biológico: (Vea el esquema adjunto)

El hospedero intermediario: Observe conchillas de Lymnaea sp.

Relación hospedera-parásito: Observe cortes histológicos de hígado parasitazo

con formas juveniles de Fasciola hepatica. Preste atención a la destrucción celular,

hemorragia e infiltración inflamatoria aguda, alrededor del parásito, con presencia de

eosinófilos.

Observe el corte histológico del hígado parasitado con ejemplares adultos, en

canales biliares de Fasciola hepatica, preste atención a las alteraciones de la


mucosa (metaplasma), a la fibrosis pericanalicular y al exudado inflamatorio.

Reconozca al parásito.

Atención a la presencia de espinas en la superficie.

Diseque los canales biliares del hígado parasitazo y preste atención a la presencia

de formaciones calcáreas.

Diagnóstico

a. Fase aguda: Pruebas inmunobiológicas, es importante la inmunoelectroforesis.

Identifique el arco II en la lámina de inmunoelectroforesis.

b. Fase crónica: Hallazgo de huevos en heces, por la técnica de la sedimentación

rápida. En ocasiones se aconseja el tubaje duodenal.

Epidemiología: El parasitismo está ampliamente distribuido en el país. Los valles

interandinos parecen presentar más alta prevalencia de infección animal y humana.

CICLO DE VIDA DE Fasciola hepatica


PARAGONIMIASIS

Definición.- Infección causada por especies del trematodo Paragonimus mexicanus.

Generalmente el adulto se localiza en los pulmones, pero puede tener otras

localizaciones como el cerebro.

El parásito: Paragonimus mexicanus

a. Morfología:

Los adultos: Observe preparaciones de adultos de Paragonimus mexicanus,

montadas en láminas portaobjetos. Preste atención a las formas ovoide o

fusiforme del cuerpo. Distinga con lupa, o a menor aumento, las ventosas oral y

ventral, las dos ramas intestinales laterales zigzagueantes, no ramificadas,

testículos y ovarios ramificados. Repare que en el lado opuesto del ovario se

encuentra el útero lleno de huevos. Intente reconocer espinas en la superficie del

cuerpo.

Los huevos: Observe huevos de Paragonimus mexicanus en preparaciones de

heces de gato. Ponga atención a la asimetría de los huevos, a su superficie

ondulada y a la presencia de opérculo.

Las metacercarias: Observe metacercarias de Paragonimus mexicanus,

montadas en láminas portaobjeto y coloreadas. Repare en la ausencia de

membrana quística, la forma alargada del cuerpo, tamaño macroscópico,

presencia de ventosas, ponga atención a la ausencia de órganos genitales y a la

presencia de las ramas intestinales.

b. Ciclo biológico: (Ver el esquema adjunto)

El primer hospedero de Paragonimus mexicanus es un caracol Aroapyrgus sp.,

cuya especie aún no ha sido determinada para el Perú.

El segundo hospedero de Paragonimus mexicanus en el país es el cangrejo de

agua dulce Hypolobocera chilensis elgenmanni (=Pseudothelphusa chilensis).

Observe ejemplares de cangrejos colectados del valle de Condabamba

(Cajamarca).

Los reservorios naturales descritos, hasta ahora, en el Perú son: la “zarigueya” o

“muca” (Didelphys spp.), gato.

Relación hospedero-parásito: Observe preparaciones microscópicas de corte de

pulmón con el parásito adulto. Preste atención a la localización del adulto en el tejido


pulmonar y su relación con las vías aéreas. Distinga la membrana quística rodeando

al adulto. Observe preparaciones microscópicas de corte de pulmón con huevos de

Paragonimus mexicanus. Preste atención a la presencia de la cáscara (membrana

ondulante), a la gran infiltración celular (granuloma) con presencia de células

linfomonocitarias, eosinófilos, etc.

Diagnóstico:

a. Búsqueda de huevos en el esputo y/o heces (Ver métodos de diagnóstico)

b. Pruebas inmunobiológicas: intradermoreacción y fijación del complemento (Ver

métodos de diagnóstico).

Epidemiología: En nuestro país, la infección humana, en las zonas endémicas

(Departamentos de Cajamarca, La Libertad, Ucayali) se debería, a la inglesa de

cangrejos insuficientemente cocidos.

PARAGONIMIASIS HUMANA EN EL PERÚ


CICLO BIOLÓGICO DE Paragonimus mexicanus


HIDATIDOSIS

Definición.- Presencia del estadío larval en las vísceras de los animales

susceptibles. El estadío adulto es la tenia del perro (Echinococcus granulosus). En

otros países se han encontrado casos humanos de hidatidosis por Echinococcus

vogeli (América), Echinococcus multilocularis (Alaska, Europa).

El parásito: Echinococcus granulosus

a. Morfología:

Los adultos: Observe al microscopio las láminas coloreadas de Echinococcus

granulosus. Fije su atención en el tamaño, en el escólex con ventosas y ganchos,

y el número de proglótidos. En el proglótido maduro trate de ubicar los testículos,

y la bolsa del cirro. En el proglótido grávido, observe los cambios producidos y el

desarrollo del útero sacular lleno de huevos.

Las larvas: (Quiste hidatídico). Observe las vísceras parasitadas. Preste atención

a los cambios morfológicos ocasionados por el crecimiento del quiste. Trate de

determinar si es un quiste único o múltiple. Usando una jeringa con su aguja,

haga la punción del quiste y extraiga el líquido. Viértalo en tubos de centrífuga

ponga atención a sus características. Deje sedimentar el líquido y observe los

ganchos, las ventosas y corpúsculos calcáreos de los mismos. Observe en la

“arenilla hidatídica” protoescolises invaginados. Abra un quiste que ha sido

evacuado y separe la cutícula. Preste atención a la facilidad de su

desprendimiento, al color blanco (clara de huevo cocido) y a la elasticidad de la

misma.

b. Ciclo biológico: (Observe el esquema adjunto)

Relación hospedero-parásito: Observe al microscopio, los cortes histológicos de

quiste hidatídico, e identifique la capa adventicia, resultante de la acción mecánica

del parásito y de la respuesta del hospedero. Preste atención a las membranas del

parásito: a) cunicular, cuya estructura es patognominica (anhista), b) germinativa,

capa nucleada sincitial que produce la capa cuticular, los protoescólices y el líquido

hidatídico.


Diagnóstico: Es infrecuente el diagnóstico directo (protoescólices y membranas en

la vómica), más frecuentemente se emplean los métodos indirectos. De ellos, el más

importante es la inmunoelectroferesis. En la lámina de inmunoelectroforesis

identifique que el Arco V. Una variación es la doble difución usando suero positivo al

Arco V como control (DD5).

Epidemiología: En el Perú, los departamentos de Junín y Puno, y áreas aledañas a

los mismos, son los que presentan los más altos índices de hidatidosis.


ACARINA I

Sarcoptes spp.

Tyrophagus sp.

Glycyphagus sp.

Dermatophagoides sp.

Sarcoptes scabiei var. hominis., otros

Son ácaros microscópicos que respiran por ósmosis. En preparaciones, observe los

estadíos evolutivos de Sarcoptes spp. Podrá diferenciar las larvas hexápodas, ninfas

octópodas y éstas de los adultos. Los machos presentan en el tercer par de patas,

una cerda larga, en la hembra, el tercer y cuarto par de patas terminan en cerdas.

Moviendo ligeramente el micrométrico del microscopio, apreciará fácilmente las

estructuras dorsales como escamas, pelos modificados y espinas (Ver esquemas).

Tyrophagus sp. y Glycyphagus sp.

Son ácaros que se encuentran contaminando los alimentos, y son productores de

dermatitis de contacto.

En preparaciones de adultos de Tyrophagus sp., en lámina, observe fácilmente, el

cuerpo ovalado, cubierto de escasos pelos largos. Dorsalmente se aprecia una línea

sutural.

En preparaciones de adultos de Glycyphagus sp, observe que el cuerpo está

cubierto de abundantes pelos largos, barbulados y tarsos de los cuatro pares de

patas delgadas y largas (Ver esquema).

Dermatophagoides sp.

Es el ácaro que se encuentra formando parte del polvo doméstico, de las

habitaciones, y es uno de los agentes etiológicos del asma bronquial, y otros tipos

de alergias. Note que su cuerpo está cubierto por una fina cutícula estriada y con

escasos pelos en su superficie (ver esquema).


Trombicula sp., Demodex folliculorum. (Acarina – Prostigmata)

Estos ácaros se caracterizan, porque tienen los estigmas respiratorios ubicados en

la porción anterior del cuerpo o base del gnatosoma.

Demodex folliculorum

En las preparaciones, observe los estadíos evolutivos de Demodex folliculorum,

podrá apreciar huevos, larvas hexápodas, ninfas octópodas y adultos, que presentan

la parte terminal del cuerpo fuertemente estriado y los 4 pares de patas sumamente

cortas, formados por 3 segmentos.

En las preparaciones de cortes histológicos de piel, observe el número variado de

especimenes que se encuentran contaminando los folículos pilosos o sebáceos.

Trombicula sp. (“I sangre”)

Sólo el estadío larval es patógeno para el hombre y algunos animales.

En las preparaciones en lámina, observe la larva haxápoda, dorsalmente lleva un

escudo pequeño del que parten un par de cerdas largas barbuladas, asimismo,

podemos apreciar el cuerpo cubierto totalmente por abundantes pelos barbulados.

Fíjese en el aparato bucal, donde se aprecian los quelíceros es iliformes.

La picadura produce prurito intenso en zonas de la piel, donde usualmente está mas

ajustada la vestimenta, también hay enrojecimiento (“chapetonada”) (Ver esquema).

TROMBÍCULA


ACARINA II

Ixodes sp., Boophilus sp. y Rhipicephalus sanguineus. Ixodidae “garrapatas

duras”.

Argas sp., Ornithodorus sp. y Otobius sp. (Mesostigmata – Argasidae

“garrapatas blandas”.

Estas garrapatas están incluidas en el suborden Metastigmata porque presentan

estigmas respiratorios localizados en la base del III y IV par de patas, protegidos por

una placa quitinosa.

Observe que los adultos de Ixodes sp., Boophilus sp. y Rhipicephalus sanguineus

“garrapatas duras” tienen el capítulo terminal, escudo dorsal que cubre totalmente el

cuerpo del macho y en las hembras sólo parcialmente, motivo por el cual alcanzan

un tamaño descomunal después de la ingesta de sangre.

Con ayuda de una lupa observe que Ixodes sp. presenta el capítulo muy visible,

carecen de ojos y festones en el borde del cuerpo, las coxas con espinas; en

Boophilus sp. preste atención a los palpos que son cortos y comprimidos, poseen

ojos; la coxa III redondeada; base del capítulo hexagonal; en Rhipicephalus

sanguineus los palpos cortos, con la base del capítulo hexagonal, presentan ojos y

festones; la coxa I es bífida.

En los adultos de Argas sp., Ornithodorus sp. y Otobius sp. “garrapatas blandas”,

observe la posición del capítulo ventral o subventral y la ausencia de escudo dorsal.

Con ayuda de una lupa observe en Argas sp. que el cuerpo es muy aplanado, con

estrías radiales o placas cuadrangulares; una línea sutural bien definida que separa

las superficies dorsal y ventral.

En Ornithodorus sp. observe que el capítulo es subterminal con el hipostoma con

dientes muy desarrollados, el cuerpo cubierto por una serie de granulaciones y el

lado dorsal de las patas son festonadas. Al hacer la observación de Otobius sp.

encontrará una gran semejanza con Ornithodorus sp por las granulaciones del

tegumento que al estadío ninfal está cubierto de espinas, ponga atención al

hipostoma poco desarrollado en el adulto.


Importancia Médica: Son vectores biológicos.

Ixodes sp.: Rickettsia rickettsii (fiebre manchada)

Coxiella burnetii (fiebre Q)

Boophilus sp.: Babesiosis sp. y Anaplasmosis sp.

Rhipicephalus sanguineus: Rickettsia conorii (fiebre bitonosa)

Borrelia recurrentis (fiebre recurrente)

Francisella tularensis (Tularemia)

Argas sp.: Virosis, heridas dolorosas.

CICLO BIOLÓGICO DE Boophilus sp.

http://es.wikipedia.org/wiki/Francisella


ARÁCNIDOS

(Arácnida – Araneida)

- Latrodectus mactans.

- Loxosceles laeta.

En los especimenes adultos de Latrodectus mactans (“viuda negra”) y Loxosceles

laeta (“araña casera”) que se les presenta, observe las siguientes características:

sexo, palpos dilatados en el extremo distal (machos), palpos delgados (hembra).

Queliceros quitinosos terminados en uña. Establezca diferencias entre ambos

géneros, observando los adultos y las ootecas según las características señaladas

en el cuadro adjunto.

Latrodectus mactans Loxosceles laeta

Color del cuerpo

Negro aterciopelado, brillante, con una mancha rojiza en forma de un reloj de arena, en la parte inferior del abdomen.

Pardo, o marrón claro, siendo más oscuro el céfalo-tórax.

Nº de Ojos

Son 8, dispuestos en 2 filas, pareados, en la parte anterior del céfalo-tórax.

Son 6 pareados y dispuestos en forma triangular, en la parte anterior del céfalo-tórax.

Ooteca

Esferoidales de consistencia papiracea.

Plano convexos.

En preparaciones de estadíos ninfales de Latrodectus mactans y Loxosceles laeta,

en láminas portaobjeto, corrobore las características de los ojos de los adultos.

Ciclo biológico: Metamorfosis gradual.

Importancia Médica: Observe las lesiones producidas en animales de

experimentación, con la inoculación del veneno de Loxosceles laeta. Preste atención

a los cambios de color de la piel (“Mancha livedoide”), edema, necrosis.


- Hadruroides lunatus (Aracnida – Scorpionida)

En el alacrán adulto que se le ha proporcionado, note la división del cuerpo en

céfalo-tórax, abdomen y post-abdomen terminado en una dilatación provista de

aguijón en forma de uña que aloja las glándulas venenosas.

Observe la parte anterior del céfalo-tórax, donde se insertan un par de quilíferos

cortos y un par de pedipalpos muy desarrollados terminados en tenazas.

Dorsalmente se encuentra 2 grupos de ojos, 4 laterales y 2 centrales.

En la casa ventral del abdomen observe la presencia de un par de peines situados

lateralmente.

En preparaciones de ninfas de Hadruroides lunatus observe las mismas

características señaladas para el adulto.

Ciclo biológico: Metamorfosis gradual.

Importancia Médica: La inoculación del veneno de los alacranes es un accidente

que produce, generalmente, reacciones locales moderadas (edema, dolor, rubor,

etc., y raramente manifestaciones generales).

Latrodectus mactans

Loxosceles laeta

Hadruroides lunatus


PULGAS DE IMPORTANCIA MÉDICA

(Siphonaptera – Pulicidae)

Pulex irritans; Xenopsylla cheopis; Ctenocephalides canis; Ctenocephalides

felis y Tunga penetrans.

Características Morfológicas:

Los adultos: Observe preparaciones de adultos de Pulex irritans; Xenopsylla

cheopis; Ctenocephalides canis; Ctenocephalides felis y Tunga penetrans,

guiándose por los dibujos adjuntos, preste atención a las siguientes características.

En la cabeza, a los ojos simples, antenas cortas en el surco antenario, aparato bucal

picador chupador. En el tórax, ausencia de alas, segmentos del tórax “telescopados”,

y el tercer par de patas muy desarrollado. En el abdomen: el pigidium, los claspers

en el macho y espermateca en la hembra. Por transparencia, intente ubicar el

proventrículo. Para la diferenciación de las especies mencionadas, guíese por el

esquema adjunto.

Las larvas: Observe preparaciones con larvas de pulga. Preste atención a la forma

(vermiformes), carecen de patas, cerdas en todos los segmentos del cuerpo,

dirigidas hacia atrás siendo más abundantes en el último segmento.

Ciclo biológico: Metamorfosis completa (Vea el esquema adjunto), desarrollo

holometábolo.

Importancia Médica:

a. Dermatitis por las picaduras, produciendo reacción de la piel, la especie

importante para el hombre es Pulex irritans.

b. Hospedero intermediario de Dipylidium caninum, la infección, la adquiere la

pulga, al estadío larvario.

c. Vector biológico de Yersinia pestis, Salmonella typhimurium, Rickettsia maurer.

d. Tunga penetrans, produce la tunglasis, (“pique”) por la introducción de la hembra

en la piel.


CLAVE DE IDENTIFICACION DE PULGAS PARA LA PRÁCTICA

P U L G A S

SIN

CTENIDIO

CON

CTENIDIO

Longitud de la

cabeza inferior

al doble de la

altura. Diente I

genal mas corto

que diente II

Longitud de la

cabeza igual al

doble de la

altura. Diente I

genal casi igual

longitud diente

II

CABEZA

ANGULAR

CABEZA

REDONDEAD

A

Ctenocephalides

canis

Ctenocephalides

felis

MESOPLEUR

A DIVIDIDA

MESOPLEUR

A NO

DIVIDIDA

Tunga penetrans

Xenopsylla cheopis

Pulex irritans


CICLO DE VIDA DE Ctenophalides sp.


PEDICULOSIS

Definición: Infestación causada por piojos, las especies importantes para el hombre

son: (Anoplura – Pediculidae).

- Pediculus humanus var. vestimentis.

- Pediculus humanus var. capitis

- Pthirus pubis.

Características Morfológicas:

Los adultos: Observe adultos de Pediculus humanus y Pthirus pubis, en láminas

portaobjetos. Preste atención en Pediculus humanus, la forma del cuerpo. En la

cabeza: ojos simples, antenas cortas (5 segmentos) y aparato bucal invaginado. En

el tórax se nota la fusión de los tres segmentos. Patas con pretarso en forma de

gancho, que con un apéndice de la tibia forma una tenaza. En el abdomen los

segmentos están y se distinguen los estigmas respiratorios.

En la hembra, el último segmento es hendido o bilobulado, y en el macho, el mismo

segmento termina en forma redondeada, pudiendo observarse la espícula

sobresaliente.

Preste atención en Pthirus pubis que la cabeza pentagonal se encuentra “hundida”

en el tórax, y los otros elementos de la misma son similares a Pediculus humanus. El

tórax es ancho, corto y con segmentos fusionados. En las patas, el primer par es el

más pequeño, y el tercero el más grande. En el abdomen, los tres primeros

segmentos están fusionados y los estigmas respiratorios de estos segmentos se ven

en una sola fila, los demás segmentos presentan protuberancias cubiertas por pelos.

Dimorfismo sexual poco marcado. En las hembras suele verse huevos en el útero.

Los huevos o “liendres”: En preparaciones de huevos de Pediculus humanus en

láminas, preste atención a la manera como se adhiere al pelo. Repare en la

presencia de opérculo en el huevo.

Ciclo biológico: Metamorfosis gradual simple. (Ver esquema adjunto).


Diagnóstico: El diagnóstico de la pediculosis de la cabeza se hace por el hallazgo

de ejemplares adultos o ninfas en el cuero cabelludo, o de huevos “liendres”,

adheridos al pelo.

En la Pediculosis del cuerpo, la búsqueda de los adultos se hace en la vestimenta.

En la Pthiriasis, el diagnóstico se hace por el hallazgo de adultos y estadíos

evolutivos en el vello pubiano, y en ocasiones en otras zonas pilosas del cuerpo.

Importancia Médica:

a. Dermatitis por piojos: Las picaduras producen escozor y el rascado lesiones,

las que pueden infectarse, y si ello es masivo se puede observar la “piel de

vagabundo”.

b. Al Pediculus humanus var. vetimentis se le conoce como vector biológico de

Rickettsia prowazekii y Borrelia recurrentis.

Epidemiología: Tifus exantemático y recurrente se han señalado en nuestra zona

andina.

Pediculus humanus

ADULTO

HUEVO


EL CHINCHE DE CAMA

(Hemíptera – Cimicidae)

Cimex lectularius

Características Morfológicas: En preparaciones de adultos de Cimex lectularius,

observe el cuerpo cubierto de espinas cortas, cabeza pequeña, antenas filiformes,

ojos compuestos, piezas bucales plegados en la parte ventral de la cabeza. Aparato

bucal picador chupador. Tórax cuyo pronoto tiene expansiones anterolaterales que a

manera de aletas cubren la base de la cabeza. Carecen de alas membranosas,

presentan hemiélitros muy rudimentarios, patas terminadas en uñas. Abdomen con

segmentos anchos, los machos se diferencian de las hembras por presentar el

clasper sobresaliente, en el último segmento abdominal e incursado.

Ciclo biológico: (Ver esquema adjunto). Su metamorfosis es gradual.

Importancia Médica: Las picaduras producen dermatitis, en algunas personas.


VECTORES MECANICOS DE ENTEROPARASITOS: MOSCAS Y

CUCARACHAS

- Moscas (Díptera – Muscidae) - Cucarachas (Orthoptera-Blattidae)


Las Moscas:

a. Morfología:

1. Los adultos: Observe los especimenes adultos de Musca domestica. Preste

atención a la cabeza, distinga los ojos compuestos útil para la diferenciación

de sexos: machos con ojos más próximos a la línea media, y en la hembra,

alejados de la misma. Antenas aristadas. En tres segmentos. Observe las

alas membranosas y balancinos. En las preparaciones microscópicas de la

mosca, preste atención al aparato bucal (rostro, haustelo, labella). Observe

las características de las antenas y la presencia de excrecencias del

exoesqueleto. Las patas con sus polvillos.

2. Los huevos: Observe microscópicamente, la forma y color de los mismos.

3. Las larvas: En la preparación microscópica de larvas, observe el espiráculo

posterior y el aparato bucal quitinisado.

4. Las pupas: Observe microscópicamente pupas de M. domestica preste

atención a su morfología y color.


Las cucarachas:

a. Morfología:

1. Los adultos: Observe adultos de cucarachas. Preste atención a la cabeza,

distinguiendo el aparato bucal (masticador), las antenas largas y filiformes,

los ojos compuestos. Observe el primer par de alas entrecruzadas

(Terminas), y el segundo par de alas membranosas observe la terminación

posterior del abdomen. Identifique los cercos.


2. Los ootecas: Observe microscópicamente, la morfología y el color de las

mismas.

3. Las ninfas: En las preparaciones de láminas con ninfas de cucarachas,

ubique el aparato bucal, y los arolios de las patas. Preste atención a la

abundancia de excrecencias del exoesqueleto.


CICLO BIOLÓGICO DE LA Musca domestica

Espiráculos posteriores


CICLO BIOLOGICO DE Periplaneta americana

MIASIS

Definición.- Infecciones causadas por larvas de moscas pertenecientes a diferentes

géneros. Las lesiones son predominantemente cutáneas, cavitarias y

excepcionalmente, en otras localizaciones (ocular, auditiva, etc.). Las especies

causantes de miasis, más importantes en el país son:

Díptera : Cochliomyia hominivorax

Dermatobia hominis

Oestrus ovis.

Caracteres generales: En especímenes adultos de Cochliomyia hominivorax

observe: los ojos compuestos, las antenas aristadas, las bandas del tórax. El color

verde metálico del abdomen. Observe las pupas y note la forma y color de las

mismas.

En preparaciones en láminas con larvas de Cochliomyia hominivorax, preste

atención a la forma vermiforme, adelgazada en su parte anterior y ensanchada,

gradualmente, hacia la parte posterior. Repare en la presencia del esqueleto céfalo-

faríngeo de la parte anterior y en la posterior, los espiráculos respiratorios.

(Importantes para el diagnóstico).


Observe larvas de Dermatobia hominis, microscópicamente, preste atención a la

forma y tamaño (Compare con las larvas de Cochliomyia hominivorax) ponga

atención a la presencia y distribución de las espinas. En algunos ejemplares, se

puede apreciar los espiráculos respiratorios posteriores.

Ciclo biológico: (Ver esquema adjunto)

Tienen metamorfosis completa, desarrollo holometábolo.

Diagnóstico: Se hace por el estudio de las larvas y en caso necesario, su evolución

hasta el estadío adulto.

Epidemiología: Las miasis son frecuentes en todo el mundo. En nuestra Selva, la

infección por la larva de Dermatobia hominis se conoce con el nombre de “clavo”.

CICLO BIOLOGICO DE Cochliomyia hominivorax


CICLO BIOLOGICO DE Dermatobia hominis

MÉTODOS DE DIAGNOSTICO DE LOS ENTEROPARÁSITOS

Los parásitos intestinales del hombre son protozoarios y/o helmintos o gusanos

intestinales.

Los helminto o gusanos pueden ser cilíndricos (Nemátodos), anillados o

segmentados (Tenia).

Para observar a los protozoarios, así como larvas y huevos de helmintos, se debe

usar el microscopio, en cambio, la mayor parte de los gusanos o helmintos adultos

son macroscópicos y su morfología puede estudiarse directamente.

Los protozoos intestinales eliminan con las heces, las formas evolutivas de

trofozoito, quiste, ooquiste y espora.

Los helmintos intestinales adultos pueden salir al exterior, espontáneamente

(proglótidos de Taenia sp., adultos de Enterobius vermicularis, Ascaris lumbricoides),

con las heces, o luego del tratamiento.


Los gusanos intestinales se eliminan con las heces, según la especie de parásito,

huevos, larvas o proglótidos.

Los métodos de diagnóstico de los enteroparásitos tienen por objeto demostrar la

presencia de los parásitos, ya sea, directamente, observando microscópicamente las

formas adultas de los gusanos o microscópicamente, los trofozoitos, quistes,

ooquistes, huevos o larvas, así como, indirectamente, por la demostración de

anticuerpos circulantes en sangre o antígenos en heces (coproantígenos).

EXAMEN DE HECES

En la mayor parte de los enteros parasitismos, las formas parasitarias que permiten

el diagnóstico se encuentran en las heces de la persona a estudiarse.

En las heces podemos encontrar formas adultas, así como formas microscópicas

(huevos, larvas, trofozoitos, quistes y ooquistes de los parásitos intestinales por ello,

es importante una buena obtención de muestra fecal.

OBTENCION DE LA MUESTRA

La muestra (4-6 gramos) debe ser obtenida lo más fresca posible, y depositada en

frasco de boca ancha con tapa, rotulada, correctamente, con el nombre de la

persona de quien se obtiene la muestra y datos de identificación, edad, sexo, fecha,

procedencia, síntomas, etc.

La muestra debe obtenerse antes de la administración de medicamentos o 2-5 días

después.

Las heces depositadas en el suelo no son las recomendadas para el diagnóstico,

debido a que pueden contaminarse con formas biológicas, larvas por ejemplo

similares a los enteroparásitos del hombre (larvas de nemátodos, huevos de ácaros,

etc.).

Si el paciente no es regular en sus deposiciones y ha evacuado en la noche, se

recomienda, guardar la muestra en la refrigeradora para que no se alteren las formas

parasitarias, cuando va a demorar en llegar al laboratorio varias horas o días se

recomienda adicionar el líquido fijador y/o conservador PAF, PVA, formalina 10%,

SAF, Acetato de sodio.


MÉTODOS DE EXAMEN

1. EXAMEN DIRECTO MACROSCOPICO

1.1 Fundamento: Las características morfológicas de los parásitos adultos, enteros

o fraccionados pueden observarse directamente, así como también se pueden

observar alteraciones en las heces eliminadas que pueden o no corresponder a

un parasitismo, pero que es importante ser registrada, como el cambio de color,

presencia de sangre, etc.

a. Se observan las características organolépticas de las heces (consistencia,

aspecto, color, etc.) que en condiciones anormales puede ser útil en el

diagnóstico de las parasitosis intestinales y otras etiologías.

b. Permite observar la presencia de elementos anormales como moco, sangre,

epitelio, etc.

c. Permite estudiar las características morfológicas de los gusanos o de sus

partes que son eliminados.

1.2 Material necesario:

Suero fisiológico (ver Anexo)

Aplicador (bajalengua)

Pinza de metal

Coladera de metal o plástico

1.3 Procedimiento:

Agregar suero fisiológico, en cantidad suficiente para homogenizar la muestra.

Tamizar o colar la muestra, en caso de presencia de formas adultas.

1.4 Lectura u Observación:

Observar las características organolépticas de las heces, útiles para la ayuda

diagnóstica consistencia, color, presencia de moco, sangre, alimento sin digerir.

Presencia de gusanos redondos o aplanados, enteros o parte de ellos.

1.5 Adicionar al informe del examen parasicológico, las características

macroscópicas de las heces que no sean normales y que sean útiles para el

diagnóstico.


2. EXAMEN DIRECTO MICROCOPICO

2.1 Fundamento:

Buscar, principalmente en muestras frescas, la presencia de formas evolutivas

móviles de parásitos: trofozoitos (Entamoeba spp., Giardia lamblia, Balantidium

coli, Trichomonas hominis, etc.), larvas de Strongyloides stercoralis, así como

los quistes, ooquistes y huevos.

2.2 Materiales necesarios:

Láminas portaobjetos

Laminillas cubreobjetos

Aplicador de vidrio o madera

Marcador de vidrio


Solución de Lugol (ver Anexo)

Verde brillante (ver Anexo)

Rojo Neutro (ver Anexo)

2.3 Procedimiento:

Colocar, en un extremo de la lámina una gota de suero fisiológico y con ayuda

de un aplicador.

Agregar 1-2 mgm. de material fecal de la muestra, emulsionarla y cubrirla con

una laminilla cubreojo.

Colocar, en el otro extremo de la lámina portaobjeto, una gota de lugol, y

proceder a la aplicación de la muestra fecal como en el párrafo anterior.

Con el suero fisiológico, los trofozoitos y quistes de los protozoarios se observan

en forma natural, y las estructuras internas, núcleos y vacuolas en las tinciones

con lugol.

En algunos casos, se recomienda el uso de colorantes vitales, que no alteran la

actividad del trofozoito, estos son: verde brillante al 0.2% y rojo neutro 0.01%.

2.4 Lectura u observación microscópica:

Se debe observar al microscopio, a menor (10x) o mediano (40x) aumentos. No

es aconsejable usar objetivo de inmersión (100x), pues se puede ensuciar el

microscopio.


Se debe recorrer la lámina siguiendo un sentido direccional, ejemplo: derecha,

izquierda, o de arriba abajo.

2.5 Se notará el nombre de la especie del parásito, y su estadío evolutivo.

3. MÉTODOS DE CONCENTRACION

Los trofozoitos, quistes, ooquistes, larvas y huevos, pueden concentrarse por

diversos procedimientos, lo cual permite corroborar el hallazgo del método

directo y conocer la intensidad del enteroparsitismo.

Los procedimientos de concentración pueden ser por Flotación, Sedimentación,

o por combinación de ambos métodos.

La elección de cada procedimiento dependerá de las facilidades de laboratorio

adiestramiento del personal del área geográfica y especie de parásito que se

desea investigar

Métodos de Concentración por Sedimentación:

Técnica de la Sedimentación Espontánea (Técnica de concentración por

sedimentación sin centrifugación)

1. Fundamento: Se basa en la gravidez que presentan todas las formas

parasitarias para sedimentar espontáneamente, en un medio menos denso y

adecuado, con la solución fisiológica. En este método es posible la detección de

huevos de Paragonimus mexicanus y Fasciola hepatica.

2. Material necesario:

Tubos de vidrio o plástico de 16x150 ó 20x180 mm, o mejor de 50 mL de

capacidad que terminen o no en forma cónica. En caso contrario usar tubos de

13x100.


Laminillas de celofán recortadas adecuadamente (2x2 í 2x6cm)

Cloruro de sodio o sal de cocina

Pipetas de vidrio o plástico

Agua destilada, hervida o de lluvia

Gasa recortada en trozos de 9x9 cm.


3. Procedimiento:

a. Tomar una porción de heces (2 a 3 grs) y homogenizarla con suero

fisiológico en un recipiente limpio, o en el mismo recipiente en que se ha

obtenido la muestra.

b. Colocar la gasa, hundiéndola en la abertura del tubo, y sujetándola con una

liga alrededor de ella.

c. Filtrar el homogenizado a través de la gasa, llenando el tubo hasta la cuarta

parte de su contenido.

d. Agregar suero fisiológico hasta 1 cm por debajo del borde del tubo.

e. Ocluir la abertura del tubo con la tapa o también con parafina platina o

celofán.

f. Agitar enérgicamente el contenido, por aproximadamente 15 segundos.

g. Dejar en reposo por 45 minutos. En caso que el sobrenadante esté muy

turbio, eliminarlo y repetir la misma operación con solución fisiológica.

h. Aspirar con la pipeta, la parte media del sedimento, y colocar unas 4 gotas

en la lámina portaobjeto. Aspirar nuevamente con la pipeta, del fondo del

sedimento y agregar 1 o 2 gotas de solución lugol.

i. Cubrir ambas preparaciones con las laminillas de celofán.

j. Observar al microscopio.

4. Lectura y observación microscópica:

Se observa primero la lámina con solución fisiológica para ver las formas

móviles (trofozoitos y larvas) y luego, la preparación con lugol, para observar

sus estructuras.

5. Resultado:

Se informará de la presencia de las formas evolutivas de los parásitos.

3.1.2 Método de Sedimentación Rápida (TSR, MSR) Lumbreras y Col. 1962

(Concentración por Sedimentación sin centrifugación)


1. Fundamento:

Se basa en la gravidez de los huevos que por su tamaño y peso, sedimentan

rápidamente, cuando se suspenden en agua. En este método también es

posible la detección de huevos de Paragonimus mexicanus y Fasciola hepatica.


Copia o vaso de vidrio o plástico, cónico de 200 a 300 mL. Gasa

Coladera de malla metálica o plástico Pipeta pasteur

Placas Petri o lunas de reloj

Aplicador de madera (1/3 de baja lengua)

Agua corriente o filtrada

3. Procedimiento:

a. Homogenizar 4 a 6 gr de heces con unos 10 a 20 mL de agua filtrada.

b. Colocar la coladera en la abertura del vaso y a través de ella filtrar la

muestra.

c. Retirar la coladera y llenar la copia con agua filtrada hasta 1 cm del borde,

esto es 15 a 20 veces el volumen de la muestra.

d. Dejar sedimentar la muestra durante 20 a 30 minutos.

e. Decantar las 2/3 partes del contenido del vaso y agregar nuevamente agua.

f. Repetir los pasos d) y e) cada 5-10 minutos por 3 a 4 veces más, hasta que

el sobrenadante quede límpido.

g. Transferir el sedimento a una placa Petri.

h. Observar al esteroscopio o microscopio, a menor aumento.

4. Lectura u observación microscópica:

Observar al esteroscopio o al microscopio la presencia de huevos,

especialmente útil para la búsqueda de Paragonimus mexicanus, Fasciola

hepatica y nematodos como Ascaris lumbricoides huevo fecundado o no

fecundado, Trichuris trichiura, Hymenolepis sp., Diphyllobothrium pacificum, etc.

5. Resultado:

Informe de la presencia de huevos del parásito.


3.1.3 Método de Sedimentación y Flotación por Centrifugación: Técnica de

Faust

1. Fundamento:

Esta técnica concentra, por flotación, los quistes y/o huevos de parásitos

aprovechando su menor densidad frente a una solución de mayor densidad

como es el sulfato de zinc al 33%.

Previamente, se les ha concentrado por sedimentación de la muestra mediante

centrifugación.

Es útil para la búsqueda de quistes y/o huevos de parásitos, excepcionalmente

se observan larvas.

Es conveniente controlar la densidad del sulfato de zinc. Se recomienda usar

agua filtrada para el lavado previo de la muestra.


Gradilla para tubos de ensayo

Tubos de prueba 15x150

Tubos de prueba 13x100

Solución de lugol


Embudo de vidrio


Gasa

Bajalengua de madera

Sulfato de zinc 33.3%, Densidad 1.180 (ver Anexo)

3. Procedimiento:

a. Colocar 1 a 2 gr de la muestra de heces en el tubo de prueba 13x100 y

agregar 7-8 mL de agua filtrada o destilada y hacer una buena

homogenización.

b. Colocar al tubo 13x100 el embudo de vidrio con dos capas de gasa y filtrar la

muestra homogenizada hasta alcanzar 1 cm del borde del tubo.

c. Retirar el embudo y centrifugar de 2.000 a 2.500 r.p.m. durante 2-3 min.

d. Decantar el sobrenadante, adicionar el agua al sedimento y repetir la

centrifugación 1 o 2 veces más, hasta que el sobrenadante se observe

limpio.


e. Eliminar el sobrenadante y agregar la solución del sulfato de zinc (3-4 mL)

homogenizar y completar con la misma solución hasta 1 cm del borde del

tubo.

f. Centrifugar por 1-2 minutos de 2.000 a 2.500 r.p.m.

g. Colocar el tubo en la gradilla y agregar con ayuda de un gotero, la solución

de sulfato de zinc hasta formar un menisco en la boca del tubo.

h. Colocar una laminilla cubreobjeto sobre el menisco y dejar en reposo por 30

minutos.

i. Depositar una gota de solución lugol en la lámina portaobjeto.

j. Retirar la laminilla cubreobjeto y colocarla sobre la gota de lugol, o tomar con

una asa de platino la superficie del menisco y colocar 3-4 asadas en la

lámina.

k. Observar al microscopio.


Se observan principalmente quiste y huevos de parásitos.

5. Resultado:

Se expresa por el hallazgo de quistes y/o huevos o larvas de parásitos y por

cruces, la cantidad de elementos observados sólo la nominación si hay 1-2 en

toda la lámina, +=escaso de 2-5 por lámina, ++=5-11 por campo y +++mayor de

11 por campo.

3.4 Métodos de Flotación:

3.4.1 Método de Flotación con solución de azúcar (Sheather sugar)

1. Fundamento:

Se basa en la flotación de quistes, ooquistes y huevos de parásitos en una

solución de azúcar que posee mayor densidad.

Esta técnica es útil para la concentración de quistes y ooquistes de protozoos y

huevos de helmintos, se usa como método preferencial en el diagnóstico de las

coccidias: Cryptosporidium parvum, Cyclospora cayetanensis, Cystoisospora

belli (=Isospora belli), etc.


2. Materiales necesarios:

Tubos de ensayo 13x100



Aplicador

Solución saturada de azúcar (ver Anexo)

Asa de platino

Gradilla para tubos de ensayo


Embudo de vidrio

Gasa

3. Procedimiento:

a. Homogenizar 1-2 g de material fecal en suero fisiológico.

b. Colocar el embudo de vidrio en la abertura del tubo de ensayo con una gasa

doblada, filtrar el material homogenizado.

c. Centrifugar el tubo con el material homogenizado a 1.500 r.p.m. durante 2-5

minutos.

d. Eliminar el sobrenadante y agregar la solución de azúcar hasta 1cm del

borde del tubo, agitarlo hasta disolver el sedimento, centrifugar como en el

paso c) y completar, con la solución de azúcar hasta el borde y formar un

menisco (esperar 2-5 minutos).

e. Con la ayuda del asa de platino tomar una muestra de la superficie del

menisco y colocarla en una lámina portaobjeto. Agregar lugol, en caso

necesario, cubrir con una laminilla y observar al microscopio.

f. En el caso de observar coccidias, de la superficie del preparado tomar con el

asa de platina o con una pinza curva preparar frotices para teñir con Ziehl-

Neelsen.

4. Lectura y observación microscópica:

Esta técnica es apropiada para la observación de ooquiste de Cystoisospora

belli (=Isospora belli), Cryptosporidium parvum, Cyclospora cayetanensis y

Sarcocystis hominis.


5. Resultado:

Se debe informar de la presencia de las formas evolutivas de los parásitos y su

densidad en la muestra examinada.

3.4.2 Método de Parodi Alcaraz (Concentración por Flotación, sin centrifugación)

1. Fundamento:

Se basa en la propiedad que tienen los quistes y/o huevos de flotar en la

superficie de una solución sobresaturada de azúcar, debido a su menor

densidad.


Tubos de 13x100 ó 15x150



Solución sobresaturada de azúcar (azúcar rubia) (ver Anexo)

Formol

Baguetas o aplicador de madera (1/3 de bajalengua)

Solución de lugol.

2. Procedimiento:

a. Colocar 1 a 2 g de heces en el tubo de ensayo.

b. Agregar 3 a 5 mL de la solución sobre saturada de azúcar y con un

aplicación, hacer una buena homogenización.

c. Completar el contenido del tubo con la misma solución de azúcar hasta

formar un menisco en la abertura del tubo.

d. Dejar en reposo 30 minutos.

e. Colocar en contacto con el menisco, en la abertura del tubo una laminilla

cubreobjeto que va a permitir la adherencia, por viscosidad, de los quistes y

huevos.

f. En la lámina portaobjeto colocar una gota de la solución de lugol.

g. Retirar la laminilla, con sumo cuidado de la abertura del tubo y colocarla

sobre la lámina portaobjeto.

h. Examinar al microscopio.


3. Lectura u observación al microscopio:

Es conveniente la observación inmediata a 100x y 400x, pues los quiste y/o

huevos, suelen deformarse si la densidad de la solución es demasiado alta.

4. Resultado:

Se debe informar los estados evolutivos de los parásitos encontrados. El método

es útil para quistes y huevos de nemátodos y tenias.

MÉTODO DE BAERMANN

1. Fundamento:

Se basa en los tropismos positivos: geotropismo, terinotropismo e indrotropismo

de los trofozoilos de protozoos y larvas de helmintos, principalmente para

Balantidium coli y larvas de Strongyloides stercoralis.

2. Materiales:

Copas cónicas de 200 a 300 mL

Rejilla o coladera metálica

Pipetas Pasteur

Gasa

Láminas escabadas



3. Procedimiento:

a. Verter solución salina caliente en la copa, cantidad suficiente que apenas

toque la coladera o rejilla.

b. Colocar la coladera o rejilla metálica con la base doblada dentro de la copa

(ver figura) y gasa (2 a 3 capas).

c. Colocar 4-6 gr de la muestra de heces en fresco, sobre la gasa.

d. Dejar todo el sistema a temperatura ambiente o en estufa a 28-37ºC durante

30-50 min.

e. Sacar la rejilla o coladera y con ayuda de una pipeta Pasteur obtener 1 mL

de sedimento.


f. Colocar el sedimento en una luna de reloj o lámina escabada. Observar al

microscopio o al estereoscopio.

4. Lectura y Resultados.

Se observan los trofozoilos y las larvas en movimiento. En caso del hallazgo de

larvas de nemátodos, hacer el diagnóstico diferencial, guiándose por las figuras.

En caso de duda y contando con las condiciones apropiadas, realizar el método

de Harada-Mori.

En algunas ocasiones se pueden observar formas adultas de Enterobius

vermicularis macho.

MÉTODO CUALITATIVO: Técnica de Kato

1. Fundamento:

Este método consiste en la aclaración de las heces por el uso de la glicerina, lo

que permite preparar una capa transparente y observable de las heces.

2. Materiales necesarios:


Aplicador

Papel celofán, cortado en pedazos de 4 x 3 cm y sumergirlos en la solución

glicerinada por un periodo no menor de 24 horas.

Malla metálica o nylon

Solución glicerina con verde de malaquita (ver Anexo)

3. Procedimientos:

a. Tamizar 0.5 g de la muestra de heces a través de una malla metálica o de

nylon fino.

b. El tamizado se extiende sobre la lámina portaobjeto.

c. Cubrir con la laminilla impregnada en glicerina

d. Envolver con papel filtro, toalla o periódico, la lámina, para comprimir la

muestra y secar el exceso de glicerina por 30 minutos.

e. Observar al microscopio.

4. Resultado:

Es una técnica apropiada para la observación de huevos de helmintos y algunos

protozoarios como Cystoisospora belli.


4.- MÉTODOS DE COLORACION

Método de Ziehl-Neelsen (modificado para observación de Coccidias)

1. Fundamento:

Se basa en el comportamiento ácido-resistente de la cubierta de estos

parásitos, los cuales se tiñen de rojo y destacan sobre un fondo verde y azul,

dependiendo del colorante de contraste usado.




Soporte de varillas de vidrio para coloración de láminas portaobjeto

Estiletes o pinzas curvas

Fucsina fenicada

Azul de Metileno acuoso

Metanol

Hidróxido de sodio al 4%

Alcohol ácido

3. Procedimiento:

a. Colocar las láminas portaobjeto sobre el soporte de las varillas de vidrio.

b. Con el estilete o pinza curva hacer 1 frotis en la lámina portaobjeto y dejar

secar.

c. Fijar la lámina con alcohol metílico por 2 a 5 minutos, y dejar secar

d. Agregar hidróxido de sodio sobre el preparado por un minuto, eliminar

exceso

e. Cubrir con la fucsina fenicada (previa agitación del frasco) la lámina por 5

minutos.

f. Lavar suavemente la lámina portaobjeto con agua corriente.

g. Decolorar con alcohol-ácido cubriendo el portaobjeto por unos segundos,

hasta quitar el colorante.

h. Lavar suavemente el portaobjeto con agua y enjuagarlo a chorro de agua

i. Colocar, como colorante de contraste, verde de malaquia 1% o azul de

metileno 1-1.4% durante 5 minutos.

j. Lavar la lámina, suavemente, con agua corriente, dejar secar al aire.


k. Realizar el montaje con bálsamo de Canadá y laminilla cubreobjeto.

l. Observar al microscopio.


Cubrir la lámina con una gota de aceite de inmersión y observar al microscopio

a 400x y 1000x.

5. Resultado:

Los ooquistes de Cystoisospora belli (=Isospora belli), Cryptosporidium parvum,

Cyclospora cayetanensis aparecen de un color rojo fucsia sobre un fondo

verdoso o azul; sólo en algunos casos no se colorean pero, permiten

diferenciarlos.

MÉTODOS DE RITCHE

1. Fundamento:

Concentración de quistes y huevos por sedimentación mediante la

centrifugación y con la ayuda de formol y éter para separar los elementos

parasitarios.

2. Materiales:

Gradilla de tubos de ensayo

Tubos de ensayo 15x150

Pipetas Psateur

Lámina portaobjetos


Hisopo

Solución de formol al 10%

Solución fisiológico (ver Anexo)

Eter etílico

Lugol

Baja lengua descartable


3. Procedimiento:

Colocar en el tubo de ensayo 1 a 2 g de muestra de heces, agregar 8 mL de

solución fisiológica, homogenizar y centrifugar a 2,000 rpm por 2-3 minutos.

Descartar el sobrenadante, y repetir el paso anterior hasta que se observe el

sobrenadante limpio.

Decantar el sobrenadante, agregar al sedimento 6 mL de solución de formol al

10%, homogenizar y dejar reposar 5 minutos, luego de los cuales se agrega 3

mL de éter.

Taponar el tubo y agitar cuidadosamente para evitar la salida del material.

Retirar la tapa, centrifugar el tubo a 2-3.000 rpm por 3 minutos.

Eliminar las capas formadas de sobrenadante; si es necesario, con la ayuda de

un hisopo.

Depositar una gota de lugol en la lámina portaobjeto, y con ayuda de la Pipeta

Pasteur, tomar una porción del sedimento y mezclarlo con la gota de lugol.

Cubrir con una laminilla cubreobjeto y observar al microscopio.

4. Lectura:

Se observan quiste y/o huevos de parásitos, ocasionalmente trofozoitos y

larvas.

5. Resultado:

Se expresan los nombres de los quistes y/o huevos observados. En ocasiones

se observan y deben señalarse la presencia de cristales de Charcot-Leyden.

MÉTODO CUANTITATIVO DE KATO - KATZ

1. Fundamento:

Se basa en la técnica de Kato para cuantificar la presencia de huevos de

helmintos y se expresa número de huevos por gramo de heces (nhpgh)

2. Materiales:

El kit del Kato-Katz contiene:

Aplicadores

Papel de celofán impregnado con glicerina y verde de malaquita

Molde de plástico con perforación

Malla metálica o de nylon

Además se requiere láminas portaobjetos 2.5x7.5


3. Procedimiento:

a. Con un aplicador (bajalengua) se transfiere la muestra fecal (5-10 mg) sobre

el papel absorbente.

b. Colocar la malla o nylon sobre la muestra que está en el papel absorbente,

comprimiendo la muestra con el aplicador del kit, y llenar el molde perforado

comprimiendo.

c. Transferir el molde sobre la lámina portaobjeto y dejar la muestra del

cilindro.

d. Colocar la laminilla glicerina y con ayuda de un tapón de jebe se extiende el

material sobre toda la laminilla.

e. Dejar a temperatura ambiente por 30-45 minutos, por diafanisación se

observará los huevos sobre toda la laminilla.

4. Resultado:

El número de huevos encontrados en la lámina se multiplica por 24, el resultado

es el número de huevos por gramo de heces (nhpgh). Se recomienda contar

todos los huevos que hay en el preparado.