Efectos de la luz artificial sobre la condición corporal, nivel de

estrés y alimentación de murciélagos insectívoros.

Carlos Canales-CerroDoctorado En Medicina De La Conservación

Facultad De Ecología Y Recursos Naturales

Universidad Andrés Bello

Marco Teórico

(Dirzo et al. 2014; Gehrt and Chelsvig 2003; Jones et al. 2009; Chazdon et al. 2009; Rodríguez-San Pedro and Simonetti 2013)

Control de Plagas Agricultura y Forestal Control Vectores de Enfermedades

25% a 100% de su masa corporal en insectos cada noche

Limitaciones en los estudios:

- Sesgo por artrópodos con cuerpo duro.

- Puede existir sección de abdómenes de las polillas

(Canals and Cattan 2008; Kalka, Smith, and Kalko 2008; Williams-Guillén, Perfecto, and Vandermeer 2008; Jones et al. 2009; Boyles et al. 2011; Kasso and Balakrishnan 2013)

Modificación de hábitat y Murciélagos

Relación Compleja Especie-Específica

Cambios en:Distribución Geográfica y Densidad Poblacional

(Gehrt et al 2003; Fukuda et al. 2009; Jones et al 2009; Phommexay et al., 2011; Threlfall et al. 2011; Rodríguez-San Pedro y Simonetti, 2013)

Especies básicamente oportunistas

Beneficiarse al depredar sobre insectos atraídos a las farolas

Requerimientos altos energéticos

Impacto a nivel Ecofisiológico

(Gehrt et al 2003; Boldogh et al. 2007; Oria y Machado 2007; Williams-Guillén et al. 2008; Jones et al. 2009; Rodríguez-San Pedro y Simonetti, 2013)

Pregunta de Investigación

¿Cómo la presencia de luz artificial modifica laalimentación, condición corporal y nivel de estrésfisiológico de murciélagos insectívoros?

Hipótesis

La dinámica alimentaria de murciélagos insectívoros serámodificada por la presencia de fuentes de luz artificial,concentrándola hacia algunos grupos de insectos másatraídos a la luz.

La luz artificial afectará de forma negativa a losmurciélagos insectívoros aumentando su estrés fisiológico,reflejado en la disminución en la condición corporal,aumento en cortisol y de la carga parasitaria.

Objetivos

Objetivo General

Evaluar los efectos causados por la presencia de luz artificialsobre murciélagos insectívoros, en función de estresoresfisiológicos, dieta y conducta de alimentación.

ObjetivosObjetivos Específicos

Comparar la dieta absorbida de murciélagos insectívoros bajo condiciones depresencia y ausencia de luz.

Evaluar la conducta forrajeadora y períodos de actividad de murciélagos insectívorosbajo condiciones de presencia y ausencia de luz.

Evaluar la condición corporal de murciélagos insectívoros bajo condiciones depresencia y ausencia de luz artificial.

Cuantificar los niveles de cortisol en fecas de murciélagos insectívoros para compararel grado de estrés crónico, entre condiciones de presencia y ausencia de luz artificial.

Comparar la carga parasitaria de murciélagos insectívoros en condiciones conpresencia y ausencia de luz.

Metodología: Área de Estudio y Diseño Experimental

3 niveles de intervención

3 áreas por nivel

6 estaciones por área dispuestas aleatoriamente

Parque Nacional Ambiente Sin Luz

Lugares Poblados Ambiente Con Luz

Santuario Experimental

PN La Campana

Olmué

SN Cerro el Roble

RN Río Clarillo

SN Las TorcazasPirque

Valdivia de Paine

SN Altos de Cantillana

PN las Palmas de Cocalan

Myotis chiloensis (Waterhouse, 1838) Histiotus macrotus (Poeppig, 1835) Histiotus montanus (Philippi & Landbeck, 1861)

Lasiurus varius (Poeppig, 1835) Lasiurus cinereus (Pasilot de Beauvois, 1796) Tadarida brasiliensis (I. Geoffroy Saint Hilaire, 1824)

Rodriguez-San Pero, A. et al, 2014

Metodología: Conducta – Forrajeo

2 noches seguidas,Cada 2 semanas,

Por 2 años

3 primeras horas post atardecer,10 minutos por estación

FLIR Serie BTS

Pettersson D240X + M-Audio MicroTrack II

𝑰𝑨𝑭 = 𝑵°𝑨𝒑𝒙𝒉

Metodología: Conducta – Período de Actividad

• 16 horas continuas

• Grabaciones de 10 min,

cada 1 hora

SongMeter SM2BAT+

• 2 noches seguidas, cada 2

semanas, por 2 años

Metodología: Captura - Murciélagos

2 Trampas Arpa por estación

2 noches seguidas,Cada 2 semanas,

Por 2 años18:30 – 8:30

• Identificación Especie• Muestras :

• Fecas• Pelo• Ectoparásitos

• Largo Antebrazo• Peso• Sexo• Estado Reproductivo

(Oria y machado 2007; Machado & Soriano, 2007)

Metodología: Captura - Insectos

Disponibilidad de alimento y muestras para Isotopos

(Kunz y Parsons, 1988)

2 noches seguidas,Cada 2 semanas,

Por dos años.

Metodología: Experimento de exposición a luz

Transcurrido 1 año

3 Estaciones al Azarde Santuarios

3 Estaciones al Azarde Santuarios

(Stone et al 2012)

Metodología: Evaluación Dietaria – Isótopos Estables

Espectrometría de Masas para Isótopos Estables (IRMS)

Muestra de pelaje

Considera δ13C y δ15N de

Pelo y muestras de posibles presas

Metodología: Estrés Fisiológico

(Bush et al, 1997; Keay et al, 2006; Allen et al 2011 Sheriff et al 2011; Jonasson y Willis, 2011)

Muestra homogenizada con metanol y acetona (8: 2) filtrada y almacenada

Cortisol

Cromatografía líquida de alta presión (HPLC) +

Inmunoensayo enzimático (EIA)anticuerpo policlonal (conejo)

ICC 𝐼𝐶𝐶 =𝑊

𝐴𝐿Donde W corresponde al peso del animal y AL corresponde a la longitud del antebrazo

Carga Parasitaria Aectop =

𝑁°𝑒𝑐𝑡𝑜𝑝 𝑑𝑒 𝑢𝑛𝑎 𝑠𝑝𝑝

𝑎𝑛𝑖𝑚𝑎𝑙

Considera tanto parasitados como no parasitados

Metodología: Análisis Estadístico

V/S

• Abundancia de Murciélagos por especie,• Índices de Diversidad,• Índice de Actividad de Forrajeo,• Registros de actividad por hora• Medidas de Estrés Fisiológico.

Modelos mixto de datos de isotópicos estables para estudio de dieta

Intra-áreas• Sexo • Estado reproductivo• Estacionalidad (Pre/Post invierno)

Dependiendo de la naturaleza de los datos:ANOVA / Mann-Whitney.

“No es la especie más fuerte ni la más inteligente la que sobrevive, sino la que mejor se adapta a los cambios”

- Charles Darwin (1809-1882)

Gracias