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INSTRUCTIVO PARA ADOPCION DE GUIAS DE PRACTICA CLINICA

FORMULACION CODIGO VERSION PAG

Subgerencia de Salud e Investigación IN- AGC 1.0 1

GUIA DE

COPROLOGICOS

VERSION 2.0

SAN JUAN DE PASTO

2014

GUIA DE COPROLOGICOS


Subgerencia de Salud e Investigación GU-COP 2.0 2

GUIA DE COPROLOGICOS PASTO SALUD E. S. E.

Elaborado por:

ANA ISABEL PAREDES CALPA

JORGE ENRIQUE RESTREPO SOLARTE

Bacteriólogos

San Juan de Pasto

2014




TABLA DE CONTENIDO

RESOLUCION 499 DEL 26 DE NOVIEMBRE DE 2014 ..................................................................................... 4

CONTROL DE CAMBIOS ................................................................................................................................... 9

INTRODUCCION ...............................................................................................................................................10

1. GENERALIDADES ........................................................................................................................................11

1.1 OBJETIVO ..............................................................................................................................................11

1.2 ALCANCE ...............................................................................................................................................11

1.3 RESPONSABILIDAD ..............................................................................................................................11

1.4 PERIODICIDAD PARA LA REVISION ....................................................................................................11

2. EXAMEN COPROLOGICO ............................................................................................................................12

2.1 MATERIALES NECESARIOS .................................................................................................................12

2.2 RECOLECCION DE LA MUESTRA ........................................................................................................12

2.3 CARACTERÍSTICAS FISICAS ................................................................................................................13

2.3.1 Consistencia ....................................................................................................................................13

2.3.2 Color ................................................................................................................................................13

2.3.3 Moco ................................................................................................................................................13

2.3.4 Sangre macroscópica ......................................................................................................................13

2.3.5 Pus ..................................................................................................................................................13

2.4 CARACTERISTICAS QUIMICAS ............................................................................................................14

2.4.1 pH ....................................................................................................................................................14

2.4.2 Sangre oculta ..................................................................................................................................14

2.5 RESTOS ALIMENTARIOS .....................................................................................................................14

2.6 EXAMEN PARASITOLÓGICO ................................................................................................................15

3. PROCEDIMIENTO .........................................................................................................................................12

3.1 EXAMEN FISICO ....................................................................................................................................17

3.2 EXAMEN MICROSCÓPICO ...................................................................................................................17

3.3 EXAMEN PARASITOLÓGICO ................................................................................................................18

3.3.1 Nemátodos ......................................................................................................................................18

3.3.2 Céstodos: Gusanos Planos .............................................................................................................20

3.3.3 Protozoarios: Amebas .....................................................................................................................21

3.3.4 Tremátodos: forma De Hoja Plana ..................................................................................................23

3.4 EXAMEN COPROSCOPICO ..................................................................................................................23

3.4.1 Procedimiento .................................................................................................................................23

3.5 COPROLOGICO POR CONCENTRACION ............................................................................................24

3.5.1 Procedimiento .................................................................................................................................24

4. EXAMEN COPROSCOPICO .........................................................................................................................23

BIBLIOGRAFIA




CONTROL DE CAMBIOS

E: Elaboración del Documento

M: Modificación del Documento

X: Eliminación del Documento

VERSIÓN CONTROL DE CAMBIOS AL DOCUMENTO

INFORMACIÓN DE CAMBIOS ACTO ADMINISTRATI

VO DE ADOPCIÓN E M X

ACTIVIDADES O JUSTIFICACIÓN

ELABORÓ /ACTUALIZÓ

2.0 GUÍA DE COPROLÓGICOS

X

La presente Guía se realizó como documento de apoyo y consulta en el desarrollo de las actividades diarias del Laboratorio Clínico, teniendo en cuenta la necesidad del servicio y el buen desempeño en pro del aseguramiento y mejoramiento continuo de la calidad.

JORGE ENRIQUE RESTREPO SOLARTE. ANA ISABEL PAREDES CALPA Contratistas Laboratorio Clínico

Resolución 499 del 26 de

noviembre de 2014




INTRODUCCION La función normal del intestino del hombre inicia con la degradación de algunos nutrientes por medio de enzimas digestivas después de su paso por el estómago, para que de esta forma sean absorbidos líquidos, nutrientes, electrolitos y agua en sus primeras porciones. Todo lo que necesita el cuerpo es absorbido y lo que no se utiliza se une en una masa que va siguiendo su tránsito desde el duodeno hasta la parte final del colon para que posteriormente sea excretado al exterior del cuerpo para evitar que estos compuestos sean tóxicos para el organismo. Uno de los principales objetivos del aparato digestivo es la eliminación de los desechos y residuos del proceso de adquisición de nutrientes. Estos desechos son reunidos en la materia fecal o heces fecales, las cuales están compuestas de todos los restos alimenticios que no fueron utilizados, agua, encimas, proteínas y bacterias presentes en el tracto intestinal inferior. Las características físicas, químicas y microscópicas de materia fecal nos pueden orientar hacia una infección y de acuerdo a las características se puede saber si esta es viral, parasitaria, micótica o bacteriana. El examen de las heces tiene su máxima indicación clínica en las diarreas crónicas y en general en aquellos procesos en que se busca el germen o parasito que ocasiona la enfermedad. Otro de los objetivos, además del hallazgo de entidades parasitarias (bacterias, hongos, parásitos) es apreciar la capacidad digestiva del intestino y buscar en los productos presentes en las heces las consecuencias de un eventual trastorno de la absorción o la digestión enzimática. Además de infecciones un análisis de materia fecal también nos puede llevar a saber si el paciente tiene una intolerancia a la lactosa, tiene sangrado digestivo o si tiene otro tipo de entidades que no necesariamente son infecciosas. Siempre que se intenta establecer en un paciente el diagnóstico diferencial de diarrea, la historia clínica es muy importante. Adicionalmente, también es muy útil establecer la presencia o ausencia de leucocitos polimorfo nucleares o mononucleares en las heces. Los leucocitos pueden estar presentes en la infección bacteriana intestinal provocada por organismos como Salmonella, Shiguella, Yersinia y E. coli invasora, así como en procesos inflamatorios de naturaleza no bacteriana, tales como colitis ulcerosa y ocasionalmente en colitis asociada con antibióticos. Los leucocitos no suelen estar presentes en las heces de la diarrea secundarias a los virus, bacterias productoras de toxinas y parásitos.




1. GENERALIDADES 1.1 OBJETIVO Facilitar al personal que labora en los distintos laboratorios clínicos de la E.S.E. Pasto Salud una guía que les permita realizar las diferentes pruebas coproparasitarias de una forma práctica, correcta y acertada que les permita correlacionar los resultados con la patología del paciente. 1.2 ALCANCE Para todo el personal de la red de laboratorios clínicos de la E.S.E. Pasto Salud y a los vinculados recientemente, que requieran de una descripción clara sobre las pruebas coproparasitarias y para las cuales el laboratorio ha demostrado su competencia técnica y analítica de las mismas. 1.3 RESPONSABILIDAD Bacteriólogos de la red de laboratorios de la E.S.E. Pasto Salud, y auxiliares de laboratorio. 1.4 PERIODICIDAD PARA LA REVISION La revisión de la guía será cada tres años, teniendo en cuenta la fecha de aprobación y la resolución, y cada vez, que se presente una variación en el desarrollo del procedimiento o técnica utilizada en las pruebas, se debe solicitar y registrarse en el listado de control de documentos.




2. EXAMEN COPROLOGICO Comprende un análisis físico, observando la consistencia, color, presencia de moco, pus, sangre macroscópica y formas adultas de parásitos. 2.1 MATERIALES NECESARIOS

Laminas Laminillas Palillos desechables Microscopio óptico Cinta medidora de pH Reactivo para sangre oculta en materia fecal 2.2 RECOLECCION DE LA MUESTRA

A los pacientes y/o a sus familiares hay que explicarles claramente la forma de recoger la muestra, el tiempo de recogida y de las precauciones que deben tener para evitar que las muestras se contaminen o se dañen. En lo posible se debe dar la información clara y sencilla por escrito para que los pacientes o sus familiares recuerden que de la forma como recojan la muestra depende ampliamente que no se entregue resultados erróneos, para ello el laboratorio clínico ha diseñado unos instructivos donde se explica claramente las condiciones en que se debe recoger la muestra. Estos son entregados por las auxiliares de enfermería en la post consulta como también en el laboratorio clínico. Debe recogerse en un recipiente limpio preferiblemente estéril, se debe tener cuidado de no mezclarse con orina, descartar los provenientes de pacientes tratados con bismuto, vario o cualquier otro medio de contraste. Las muestras obtenidas deben enviarse rápidamente al laboratorio especialmente si son liquidas o semilíquidas ya que las formas parasitarias como trofozoitos de los protozoos pierden movilidad y mueren poco después de enfriarse. En bebés, valerse de escobillón de algodón estéril para estimular reflejo de defecación al introducirlo cuidadosamente a través del orificio anal, colocar la boca del recipiente cerca del ano para recolectar la muestra. El escobillón puede servir para siembra en medio de cultivo y otros estudios, siempre y cuando recoja considerable cantidad de muestra a través del ano. Procesar la muestra antes de una (1) hora. Si esto no es posible, mantener la muestra en refrigeración o temperatura de 4° Centígrados. En lo posible debe evitarse el uso de laxantes, aceites o supositorios para la recolección de las muestras de materia fecal ya que estos pueden interferir con el diagnostico ya que pueden destruir y/o ocultar los paracitos y de esta forma puede desviar el diagnostico.




2.3 CARACTERÍSTICAS FISICAS

2.3.1 Consistencia: Normalmente la deposición debe ser solida y “formada”, es decir, cilíndricas y consistentes para conservar esa forma después de excretada. Parece una “papilla” la deposición de enfermos con insuficiencia gástrica descompensada. Es cremosa y pegajosa como “mantequilla” en las esteatorreas de origen biliar, pancreático o entérico. Pegajosa, oscura como el “alquitrán”, son generalmente heces de las melenas. Deposiciones acintadas en lápiz aparecen en las estenosis del colon distal o recto. Aspecto: ahí diferentes aspectos como son: diarreico, cremoso, mucoide, granuloso, pastoso. 2.3.2 Color: Normalmente las heces contienen estercobilina y estercobilinógeno que le dan su color normal. No debe existir ni bilirrubina, ni biliverdina en un individuo sano normalmente y con dieta mixta, la descomposición es de color pardo o marrón más o menos oscura en el adulto. En los lactantes es de color amarillo canario, (dieta láctea) con dieta cárnica se hace marrón oscuro. Una dieta rica en verdura especialmente espinacas y la presencia de hierro tiñen las heces de color verdoso mientras que si predominan la papa y el pan las haces se aclaran a un color amarillento. Un exceso de café oscurece la deposición. Anormalmente encontramos heces blancas, grisáceas a cólicas, en la acolia de las ictericias obstructiva y en la fase aguda de las hepáticas. Rojizas y regularmente, son las deposiciones que contienen sangre no transformada “de origen bajo”. Negruzcas o pastosas, son típicamente las heces de las melenas es decir hemorragias digestivas altas de color negro son las deposiciones después de la indigestión de la morcilla, sangre, vinotinto, bismuto, sales de plata, etc. 2.3.3 Moco: la presencia de moco es anormal y debe anotarse. Si esta finalmente dividido y mezclado con las heces, dándole un aspecto brillante procede del intestino delgado a diferencia del moco en copos visibles que tienen un origen más bajo. En caso de moco gelatinoso y translucido adherido a la superficie de las heces formada sugiere un estreñimiento espático o una colitis mucosa. El moco sanguinolento pegado a la masas fecal indica la posibilidad neoplasia, o de un proceso inflamatorio del canal rectal. El moco con sangre y pus se encuentra en pacientes con colitis ulcerosa, disentería bacilar, carcinoma ulcerado del colon, TBC intestinal. 2.3.4 Sangre macroscópica: son heces de color rojizo la sangre es de origen bajo y puede proceder de hemorroides, tumores de colon distal, ulceraciones del colon. 2.3.5 Pus: pacientes con colitis ulcerosa y disentería bacilar crónica al igual que en pacientes con abscesos, fistulas o abscesos localizados comunicantes con la sigma y el ano se presenta pus en las heces la cual debe ser comprobada con un examen microscópico. Rara vez existen grandes cantidades de pus en las heces de los pacientes con colitis amebiana. Por lo tanto su presencia es una prueba en contra de ese diagnóstico.




En pacientes con gastroenteritis vírica, no se observa ningún exudado inflamatorio en las heces acusas. 2.4 CARACTERISTICAS QUIMICAS

2.4.1 pH: El pH de la materia fecal depende del régimen alimenticio o del tipo de infección que tenga si la tiene, una colonización bacteriana puede variar el valor del pH. Las heces normales presentan reacciones neutras o ligeramente alcalinas dependiendo de la dieta con un pH entre 6.8 a 7.2. Depende fundamentalmente de la menor o mayor cantidad de ácidos derivados de sustancias osmóticas no absorbibles como la lactosa. El más importante es el acido láctico. Presentan reacción acida las heces de los enfermos con trastornos a nivel de la absorción intestinal. Dispepsias de fermentación, enfermedad celiaca, etc. Son alcalinas en las diarreas de putrefacción, insuficiencia gástrica descompensada, etc. 2.4.2 Sangre oculta: tienen interés en todos los casos que se sospechen hemorragias digestivas sub clínicas, es decir, sin que observen visiblemente en formas de melenas. Específicamente tenemos tumores del tracto digestivo, sobre todo cáncer gástrico o de colon, enteritis y enterocolitis, ciertas diátesis hemorrágicas, algunas parasitosis intestinales, epistaxis hemorrágicas posteriores, hemorragias gingivales deglutidas. Debido a que las pruebas aplicadas para la delectación de sangre oculta, depende de la terminación de la actividad peroxidasica de la hemoglobina, se pueden presentar resultados falsos positivos por la mioglobina y la hemoglobina de la carne roja y el pescado, al igual que ciertos tipos vegetales ingeridos como el rábano picante, los nabos, y ciertas bacterias intestinales que contienen peroxidasas. Para evitar errores en los casos anteriormente citados, el paciente debe someterse a una dieta libre de carnes por lo menos de tres días antes del examen. Por otra parte las peroxidasas de origen vegetal y bacteriano, se pueden destruir calentando una suspensión fecal, pero corriendo el riesgo de destruir hemoglobina y por lo tanto su actividad peroxidasica; por lo anterior esto no es recomendable. Para que la prueba sea válida debe repetirse por lo menos tres veces y preferiblemente seis, manteniendo al paciente en una dieta desprovista de fuentes exógenas de actividad peroxidasica. 2.5 RESTOS ALIMENTARIOS Una digestión deficiente en alguno de los tramos del tubo gastrointestinal, se evidencia en el examen tropológico por la aparición de restos de alimentos ingeridos, siempre que el defecto no haya sido corregido en tramos inferiores. Prácticamente, sin embargo, señala trastorno “Anterior” al colon las siguientes deficiencias: Gástrica, Pancreática, del intestino delgado o linfomesenterial. En general, una aceleración global del tránsito gastrointestinal determina la presencia de restos




groseros de los alimentos en los heces (lientería); y la aparición en el examen microscópico de esteatorrea, creatorrea y amilorrea a un que no exista un déficit enzimático primitivo. a. Esteatorrea (Grasa neutras y ácidos grasos). La presencia de un exceso de grasas (esteatorrea) puede obedecer a: transito acelerado, déficit enzimático, déficit en la absorción o hipersecreción endógena.

Una esteatorrea de grasas neutras habla a favor sobre todo de insuficiencia pancreática a, mientras que la esteatorrea de ácidos grasos (aunque existan grasas neutras), excluida la insuficiencia biliar (acolia) corresponde probablemente a un trastorno de absorción.

b. Creatorrea Es el defecto de aprovechamiento de la carne. En los individuos normales se encuentra unas pocas fibras musculares sueltas, que no presentan estriación transversal y su forma es redonda. Existe creatorrea (fibras musculares sin digerir), en los siguientes casos: Insuficiencia gástrica con aquilia Insuficiencia pancreática Transito acelerado c. Amilorrea

Restos de almidón sin digerir. No tienen tanto interés clínico como los dos anteriores. Sirve principalmente para atestiguar un defectuoso ataque de la celulosa en el ciego, ligado, a un tránsito acelerado a través del colon. Aparecen en los siguientes casos: Ingestión excesiva de feculento, con o sin defectos de masticación Insuficiencia pancreática En toda diarrea ayuda con tránsito acelerado desde tramos altos

2.6 EXAMEN PARASITOLÓGICO Entre lo protozoos se destacan las amebas, los flagelados del tipo de la Giardia lamblia, Trichomonas y los ciliados como Balantidium coli. Pueden aparecer las formas activas en heces diarreicas o los quistes en heces formes. El diagnostico helmintiasis intestinal se basa en el hallazgo del parásito o sus huevos en los heces. Las tenias pueden reconocerse por la aparición macroscópica de sus proglotides o mediante hallazgos microscópicos de sus huevos. Para la observación de parásitos se puede utilizar el método directo por concentración de las heces.




En cuanto a los hongos se pueden encontrar cándida albicans, en especial en tratamientos largos de antibióticoterapia. El hallazgo único de levaduras no tiene significado clínico. Se deben encontrar Pseudohifas y levaduras para que tengan valor diagnóstico.




3. PROCEDIMIENTO

3.1 EXAMEN FISICO

Consistencia: Liquida (acuosa), dura (no se puede disolver), pastosa (como masa de pan), blanda (como mantequilla), Semilíquida (diarreica).

Color: Acolica (sin color), Carmelita, Amarillo, roja, café, negro, blanquecino, etc.

Moco: si hay infórmelo escaso, por cruces 1+ a 3+

Sangre: si hay infórmela escaso, por cruces 1+ a 3+

pH: tome una pequeña cantidad de materia fecal con el aplicador y coloque sobre una pequeña tira de papel indicador de pH, quite el excedente, compare el color con la escala que provee la casa comercial.

3.2 EXAMEN MICROSCÓPICO

En una lámina portaobjetos se colocan dos gotas, en la parte izquierda solución salina y en la derecha lugol, luego se toma con un palillo la muestra de materia fecal, se debe escoger la parte que tenga elementos anormales con sangre, moco, etc. Y de otra parte para que así quede una muestra representativa, se homogeniza en la lámina primero en la solución salina y luego en el lugol, se le colocan los cubreobjetos. La suspensión no debe quedar muy gruesa pero tampoco muy delgada. Siempre debe observarse en 10X para evidenciar la presencia de elementos más grandes como huevos, larvas y los restos alimentarios para ver su cantidad. Pasar al objetivo de 40X y observar la morfología de quistes, trofozoitos, huevos, bacterias, levaduras, cristales y restos alimentarios. Siempre en el informe debe anotarse sin EXCEPCION color, consistencia, restos alimentarios, levaduras, Negativo o Positivo para parásitos intestinales. La presencia de restos alimentarios (lientería) se deben informar en cantidad: escasos, +, ++, +++; si existen macroscópicamente deben buscarse al examen microscópico:

Residuos alimenticios: fibras musculares: se presentan en forma de cilindros con estrías longitudinales y transversales. Gránulos de almidones.

Grasas neutras o ácidos grasos: aparecen como esferas o gotas amarillas o incoloras refringentes de diferentes tamaños.

Almidones: tienen formas irregulares y son refráctiles al agregar el lugol.

Fibras vegetales: se caracterizan por ser de doble pared, contienen clorofila y poseen un canal central muy marcado.

Productos de irritación de la mucosa: Moco: se observa en cualquier patología.

Glóbulos rojos: su hallazgo indica lesión en la parte baja del aparato digestivo.

Células epiteliales: indican una excesiva irritabilidad.

Bacterias: carecen de significación clínica

Leucocitos: Su presencia siempre se informa en cantidad en el coproscopico: 0 xc, 1-5 xc, 6-10 xc, 10-20 xc, o más 20 xc. Indica una patología inflamatoria o infecciosa. En




coloración de Wright debe informarse el % de cada tipo de leucocitos (Polimorfonucleares o Mononucleares).

Hematíes: Se informa igual que los leucocitos xc. Indican evacuación muy rápida o hemorragias en tramos intestinales bajos.

Cristales: Se informan igual que los restos alimentarios.

a. Cristales de Charcot-leyden: aguja con extremos finos, corresponde a producto de degradación de los eosinófilos presentes en parasitismo por helmintos o de enfermedad alérgica.

b. Cristales de Calcio: Iguales a los que se observan en el uroanálisis. Corresponde a ingestión de proteínas que no se han absorbido por infección bacteriana o parasitaria.

3.3 EXAMEN PARASITOLÓGICO

3.3.1 Nemátodos

a. Áscaris lumbricoides:

Se observan huevos miden aproximadamente 45-75 x 30-50 mm, presenta una célula rodeada por tres capas, producen una patología caracterizad por dolor de estómago y desnutrición.

b. Tricocéfalo

El huevo mide de 50-55 x 22-25mm. Tiene la forma de balón de futbol americano, produce anemia intensa, dolores abdominales, prolapso rectal ocasional. En las muestras de materia fecal también se pueden encontrar formas adultas del parasito en infecciones crónicas.




c. Uncinarias

Tienen una forma elíptica, están cubiertas de una membrana lisa transparente y fina, mi de de 60-40 x mm produce anemia la principal forma que se observa es el huevo que se informa por cruses.

d. Strongyloides stercolaris

Se observan larvas. Produce diarrea vómito, desnutrición. En el examen fresco no se observan huevos.

e. Enterobius vermiculares (oxiuros) Los huevos son ovoides con una cara convexa y una plana, presenta una membrana interna y delicada y otra gruesa hialina y mamelonada, mide de 50-60 x 20-30 mm. Produce prurito en la región peri anal, insomnio, cambios de conducta.




3.3.2 Céstodos: Gusanos Planos a. Tenia Los huevos miden 20-30 x 30-40 mm, son ovoides con membrana gruesa, amarillenta que se encuentra estriada en forma de empalizada y encierra un embrión de 6 ganchos poco visibles. Produce trastornos nerviosos. En infecciones graves también se pueden encontrar partes del parasito adulto

b. Hymenolepis nana Huevos ovoides mide aproximadamente 50mm, tiene una membrana interna y una externa, también puede causar trastornos nerviosos.




3.3.3 Protozoarios: Amebas

a. Entamoeba histolítica

Se observan quistes que miden aproximadamente 20mm, se observan con 4 núcleos. Pueden causar lesión de la mucosa intestinal. A pesar de que los quistes son la principal forma que se encuentra en las muestras de materia fecal, también se pueden encontrar trofozoitos. Se consideran que esta es la única ameba que es patógena.

b. Entamoeba coli

Son quistes más grandes que los de la histolitica, tiene más de 4 núcleos. Es considerada como no patógena.

c. Endolimax nana

Los quistes son ovalados miden de 6-10mm, presentan de uno a cuatro núcleos.




d. Iodamoeba butschlii Su quiste se caracteriza por la presencia de una vacuola de yodo, no es una ameba patógena.

e. Giardia duodenalis

Es un protozoario en forma de pera simétricamente lateral, con un extremo ancho y redondeado, el quiste representa cuatro núcleos y dos cuerpos parabasales, produce una diarrea amarillenta y vomito.




3.3.4 Tremátodos: forma De Hoja Plana

a. Fasciola hepática Daño en el hígado. Presencia de quistes

Si el examen microscópico directo es negativo para parásitos intestinales se debe practicar un examen parasitológico por concentración de la materia fecal. Observaciones: - Un coprologico Negativo para parásitos intestinales debe confirmarse con la

técnica de concentración. - Recuerde que el coproparasitario no es solo un examen de búsqueda de

parásitos, también nos permite evidenciar insuficiencias o enteropatías de otro origen.

3.4 EXAMEN COPROSCOPICO Examen de la materia fecal en pacientes pediátricos o adultos con diarrea aguda o crónica que indica la presencia de una función de digestión o absorción anormal. Nos habla de la existencia de un daño a nivel de la superficie de absorción y finalmente, no señala las posibles causas de la entidad. En el examen coproscopico determinamos: pH y sangre oculta grasas neutras leucocitos hematíes levaduras protozoarios 3.4.1 Procedimiento a. pH: (ver sección coprológico) b. Grasas (ver esteatorrea sección coprológico) c. Leucocitos (ver sección coprológicos).




En algunos procesos inflamatorios infecciosos o es evidente la presencia de leucocitos (pus), en el examen microscópico, sin embargo se puede encontrar leucocitos al hacer la observación microscópica.

. En coloración de Wright debe informarse el % de cada tipo de leucocitos (Polimorfonucleares o Mononucleares).

Informe Positivo +: menos de 10 leucocitos por campo. Positivo ++: de 10 a 30 leucocitos por campo. 3.5 COPROLOGICO POR CONCENTRACION La finalidad de los métodos por concertación es aumentar el número de parásitos en el volumen de materia fecal que se examina mediante procedimientos de sedimentación o flotación. En el material concentrado se encuentran más paracitos que en el resto de la materia fecal. La técnica utilizada es la del formol – éter, que se caracteriza por ser rápida, practica y sencilla. 3.5.1 Procedimiento Se toma un tubo de ensayo y se realiza una dilución 1 en 10 con formol de la siguiente manera: Tome un mililitro de formol y agregue 9 mililitros de agua destilada (Dilución 1 en 10). Agregue más o menos un gramo de materia fecal y mezcle muy bien. Se filtra utilizando una gasa doble. Agregue 3 ml de éter, tape y agite fuertemente más o menos 50 veces. Destape cuidadosamente y ponga a centrifugar durante 10 minutos a 2500 r.p.m. Decante, luego mezcle y monte el sedimento en una lámina porta objetos con solución salina y lugol. Ponga laminillas, observe al microscopio y reporte las formas parasitarias encontradas.




4. REPORTE ESTANDARIZADO DE LECTURA DE COPROLOGICOS LABORATORIO CLINICO

COLOR CARMELITA ASPECTO DURA MOCO: +

ROJO BLANDA ++

AMARILLO LIQUIDA +++

ACOLURICA SEMILIQUIDA

NEGRA

VERDE

PARAMETROS MICROSCOPICOS:

NO REPORTAR FLORA BACTERIANA

REPORTAR:

LEUCOCITOS: 1-5 WRIGHT: PMN %

6-10

MN%

11-20

MAYOR DE 30

HEMATIES: 1-5

6-10

11-20

MAYOR DE 30

CUANDO SE OBSERVEN LEVADURAS POR INGESTA DE ALIMENTOS NO REPORTARLAS

REPORTAR: BLASTOCONIDIAS Y ESCASO

PSEUDOMICELIOS MODERADO

ABUNDANTE INFORME DE PARASITOS:

BLASTOCISTYS HOMINIS: CUANTIFICAR: 1-5

6-10

MAYOR DE 10

LOS DEMAS PARASITOS REPORTARLOS COMO PRESENCIA

Y REPORTAR NO SE OBSERVAN PARASITOS INTESTINALES EN LA MUESTRA ANALIZADA




BIBLIOGRAFIA BALCELLS G, Alfonso. La Clínica y el Laboratorio. 14 ediciones. Barcelona: Marín; 1996. Diccionario de Medicina Océano Mosby. 4 ediciones. Barcelona: Océano; 2002. KONEMAN, Elmer W. Diagnóstico microbiológico. 3 ediciones. Buenos Aires: Panamericana; 1992. MONCADA, Ligia y CORREDOR, Augusto. Principales Helmintos en Colombia. 1 edición. ITALMEX; 1993. MURRAY, Patrick R. et al. Microbiología Médica. 4 ediciones. España: Times Mirror de España. S.A; 1998.

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