Informe de Botanica General (1)

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UNIVERSIDAD NACIONAL Pedro Ruiz Gallo ---------------------------------------------------------- ----------------------------------------- Alumna: Yerusha arlet Sanjines Tellez Faultad: Agronomía - 2º ciclo Tema: Informe de laboratorio Botánica general

Transcript of Informe de Botanica General (1)

UNIVERSIDAD NACIONAL

Pedro Ruiz Gallo

-----------------------------------------------------------------------------------

----------------

Alumna:

Yerusha arlet Sanjines Tellez

Faultad:

Agronomía - 2º ciclo

Tema:

Informe de laboratorio

Botánica general

2013

INFORME DE LABORATORIO

PRACTICA N° 01

Forma y Tamaño de la Célula Vegetal

INTRODUCCION:

La Célula vegetal, contiene plastidios, estructuras rodeadas por una membrana, que sintetizan y almacenan

los alimentos de la célula, es un sistema muy complejo que se encarga de intercambios intenso de energía y

que presenta áreas extensas de la interfase. Sus formas y tamaños suelen ser muy variados.

Cuando las células se desarrollan libres en el medio en que viven, presentan formas más o menos esféricas o

poliédricas; pero generalmente están reunidas formando tejidos, presentando entonces formas muy variadas

de acuerdo al tejido a que pertenezcan. Las formas más comunes son: cúbicas, cilíndricas, estrelladas,

ovoides, fusiformes, discoideas, entre otras. Las células vegetales, generalmente, son microscópicas; para

medir su tamaño se ha creado la unidad de medida micra, equivalente a la milésima parte de un milímetro.

En algunos vegetales como el henequén, el ramié y otras plantas textiles, las células que forman sus fibras son

muy largas, aunque muy finas, alcanzando algunos centímetros de longitud.

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA:

El objetivo de esta práctica es: que los alumnos del segundo ciclo académico de la facultad de agronomía, al

finalizar la práctica sepan diferenciar el tamaño y forma de las células vegetales.

MATERIALES Y METODOS:

Material vegetal:

1. Lipia alba “pronto alivio”; familia: Verbenaceae.

2. Sorghum halepense “sorgo”; familia: Poaceae.

3. Gossypiun barbadense “algodón pardo”; familia: Malvaceae.

4. Tradescantia SP “tradescantia”; familia: Commeliaceae.

5. Bidens pilosa “cadillo”(amorceco) ; familia: Asteraceae.

Otros materiales:

Microscopio compuesto.

Laminas porta objeto y láminas cubre objeto.

Gillette, agua y gotero.

METODOLOGIA

Hacemos un corte transversal en la epidermis del material vegetal, las llevamos al microscopio en una lámina

porta objeto para las respectivas observaciones obteniendo los siguientes resultados que se muestran en el

siguiente capítulo

RESULTSDOS:

INFORME DE LABORATORIO

N° 01

Nº04

Nº02

Nº05

Nº03

CONCLUCION:

Después de haber realizado de una manera óptima los procesos inicialmente planteados en la práctica de

laboratorio, se puede llegar a determinar y comprender la importancia del avance de la ciencia en el campo de

INFORME DE LABORATORIO

la citología, éste convirtiéndose en un sinónimo del avance personal de quien quiere aprender y acomodarse a

las etapas de crecimiento del mundo, por lo tanto en ésta parte de finalización dejaremos claro el grande

interés en comprender el porqué de las cosas.

Al concluir la práctica hemos logrado diferenciar las formas y tamaños de las células vegetales, la cual es un

enriquecimiento en nuestra formación profesional.

LINCOGRAFIA:

http://www.ecured.cu/index.php/C%C3%A9lula_vegetal

BIBLIOGRAFIA:

Botánica Básica

Autor: Arthur Cronquist

Editorial: Campania Editorial Continental, S.A, de C.V

Primera edición- 1992

Biología

Autor: Martin Ortiz tenorio

Editorial: IMGRAFYP

Segunda edición - 2008

PRACTICA N ° 02

Sustancias Ergásticas: Granos de Almidón y Crisoles.

INTRODUCCION:

SUSTANCIAS ERGASTICAS

INFORME DE LABORATORIO

Las sustancias ergásticas son productos del metabolismo vegetal que se encuentran habitualmente incluidas

en el citoplasma o eventualmente en las vacuolas celulares. Son productos de reserva o de desecho

resultantes de la actividad celular como así también sustancias de tránsito de una parte a otra de la célula o del

organismo. Entre las sustancias ergásticas se encuentran los hidratos de carbono, como el almidón y la

celulosa, grasas y aceites. También se incluyen sustancias orgánicas, como taninos, resinas, gomas, caucho y

alcaloides. Se las puede definir como inclusiones celulares producidas por el protoplasto y frecuentemente

originadas por nueva formación.

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA:

El objetivo de esta práctica es: que los alumnos del segundo ciclo académico de la facultad de agronomía, al

finalizar la práctica puedan identificar las sustancias ergasticas, granos de almidón y crisoles en cada uno de

los vegetales en este caso de los vegetales que se han utilizado en la practica.

MATERIALES Y METODOS:

Material vegetal:

Tubérculos de: Solanun tuberosum “papa”; familia: Solanaceae.

Semillas de: Phasedus vulgaris “frejol”; familia: Fobaceae.

Raíz de: Manihot esculenta “yuca” familia: Euphorbiaceae.

Tallo (dadodio): Opuntia ficus-indica “tuna”; familia: Cactaceae.

Hojas de:; Boherhabía erecta “pega pega” familia: Nictaginaceae.

Hoja de: Ficus urbaniana “higuerón” familia: Moraceae.

Otros materiales:

Microscopio compuesto.

Laminas porta objetos y láminas cubre objeto.

Gillette, agua, goteros.

Metodología:

Haciendo un raspado de la parte comestible del Solanun tuberosum “papa”, Phasedus vulgaris “frejol”

y el Manihot esculenta “yuca” montaje con agua; las cuales han sido llevadas a un microscopio en una

lámina porta objeto para las respectivas observaciones, obteniendo los resultados que se muestran en

el siguiente capítulo. (experiencia u observación 1.2.3).

Se hace un corte transversal de la epidermis del tallo (cladodio) de Opuntia ficus-indica “tuna” montaje

con agua; la cual ha sido llevada a un microscopio en una lámina porta objeto para su respectiva

observación, obteniendo los resultados que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u

observación 4).

INFORME DE LABORATORIO

Aislamiento de la epidermis de la hoja de: Bhoerhavia erecta “paga pega” montaje con agua; la cual ha

sido llevada a un microscopio en una lámina porta objeto para su respectiva observación, obteniendo

los resultados que se muestran en el siguiente capitulo.( experiencia u observación 5).

Se hace un corte transversal de la hoja de: Ficus urbaniana “higuerón” montaje con agualas cuales

han sido llevadas a un microscopio para su respectiva observacion obteniendo los resultados que se

muestran en el siguiente capitulo.(experiencia u observación 6).

RESULTADOS:

N°01:

N°02:

N° 03:

N°04:

N° 05:

N° 06:

INFORME DE LABORATORIO

CONCLUSION:

Después de haber realizado de una manera óptima los procesos inicialmente planteados en la práctica de

laboratorio, se puede llegar a determinar y comprender la importancia del avance de la ciencia en el campo de

la citología, éste convirtiéndose en un sinónimo del avance personal de quien quiere aprender y acomodarse a

las etapas de crecimiento del mundo, por lo tanto en ésta parte de finalización dejaremos claro el grande

interés en comprender el porqué de las cosas.

Al finalizar la práctica, logramos reconocer las sustancias ergasticas, granos de almidón y los crisoles en los

vegetales que se utilizaron en la práctica.

PRACTICA N° 03

Reconocimientos de Plastos y Engrosamiento de Pared Celular

I.- INTRODUCCION:

Los plastos, plástidos o plastidios son orgánulos celulares eucarióticos, propios de las plantas y algas. Su

función principal es la producción y almacenamiento de importantes compuestos químicos usados por la célula.

Así, juegan un papel importante en procesos como la fotosíntesis, la síntesis de lípidos y aminoácidos,

determinando el color de frutas y flores, entre otras funciones.

INFORME DE LABORATORIO

Pared celular Es un componente típico de las células eucarióticas vegetales y fúngicas. Entre las Embriófitas,

las únicas células que no la tienen son los gametos masculinos y a veces los gametos femeninos. En las

células vivas las paredes tienen un papel importante en actividades como absorción, transpiración,

traslocación, secreción y reacciones de reconocimiento, como en los casos de germinación de tubos polínicos

y defensa contra bacterias u otros patógenos.

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA:

El objetivo de esta práctica es: que los alumnos del segundo ciclo académico de la facultad de agronomía, al

finalizar la práctica sepan reconocer e identificar los plastos en cada una de las células, de igual manera el

engrosamiento de las paredes celulares.

MATERIALES Y METODOS:

a). Material vegetal:

Crassula sp “pimpino”; familia: Crassulaceae.

Daucus carota “zanahoria”; familia: Alpiaceae.

Lycopersicon sculentm “tomate”; familia: Solanaceae.

Capsicum annuum “ceresito”; familia: solanaceae.

Capsicum longum “ají de causa”; familia: solanaceae

Otros materiales:

Microscopio compuesto.

Laminas porta objetos y láminas cubre objeto.

Gillette, agua, goteros.

Metodología:

Hacemos un corte transversal de la hoja de: Crassula sp “pimpino”; para luego ponerlo en una lámina

porta objeto montaje con agua y posteriormente llevarlo a un microscopio para la respectiva

observación, obteniendo los resultados que se muestra en el siguiente capítulo (experiencia u

observación 01).

Hacemos un corte fino de la raíz de: Daucus carota “zanahoria”, del fruto del: Lycoppersicon sculentum

“tomate” y del fruto del: Capsicum annuum “cerecito” montaje con agua; las cuales han sido llevadas a

un microscopio en una lámina porta objeto para su respectiva observación obteniendo los resultados

que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 2.1; 2.2; 2.3).

Aislamiento de la parte interna del fruto del: Capsicum longum “ají de causa” montaje con agua las

cuales han sido llevadas a un microscopio en una lámina porta objeto para su respectiva observación

obteniendo los resultados que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 03 ).

RESULTADOS: 1. OBSERVACIÓN

INFORME DE LABORATORIO

2. OBSERVACIÓN

2.1. Observación:

2.2. Observación:

2.3. Observación:

OBSERVACIÓN N°03

CONCLUCION:

INFORME DE LABORATORIO

Después de haber realizado de una manera óptima los procesos inicialmente planteados en la práctica de

laboratorio, se puede llegar a determinar y comprender la importancia del avance de la ciencia en el campo de

la citología, éste convirtiéndose en un sinónimo del avance personal de quien quiere aprender y acomodarse a

las etapas de crecimiento del mundo, por lo tanto en ésta parte de finalización dejaremos claro el grande

interés en comprender el porqué de las cosas.

Al concluir con la práctica logramos identificar o conocer los plastos y el engrosamiento de las células

vegetales.

LINKOGRAFIA

http://es.wikipedia.org/wiki/Plasto

BIBLIOGRAFIA

Biología:

Autor: Martin Ortiz tenorio

Editorial: IMGRAFYP

Segunda edición - 2008

PRACTICA N°04

Reconocimiento de Epidermis, Estomas y Tricomas

INTRODUCCION:

La epidermis es la capa más externa del vegetal joven. Está formada generalmente por una capa de células

aplanada y fuertemente unidas. Las paredes de las células están recubiertas por una cutícula formada por

lípidos del tipo de las ceras, que protegen de la pérdida del agua. Intercaladas entre las células epidérmicas

aparecen otros tipos de células:

Los estomas están formados por una pareja de células clorofílicas arriñonadas, denominadas células

oclusivas. Estas células dejan un espacio entre ellas (ostíolo). Regulan el intercambio de gases entre el

interior y el exterior de la planta.

Los tricomas o pelos poseen funciones muy diversas. La absorción de agua y sales del suelo, función

secretora o defensoras de la planta.

La peridermis reemplaza a la epidermis en los tallos y raíces con crecimiento secundario. Está formada

fundamentalmente por súber, o corcho protector. Las células del súber están muertas (impregnadas de

suberina).

INFORME DE LABORATORIO

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA:

El objetivo de esta práctica es: que los alumnos del segundo ciclo académico de la facultad de agronomía, al

finalizar la práctica sepan reconocer e identificar la epidermis, los estomas y tricomas en cada uno de los

vegetales que se utilizaran en la práctica.

MATERIALES Y METODOS:

Material vegetal:

Nephrolipis cardifolia “helecho”; familia: Nephrolepidaceae

Raphanus sativus “rabanito”; familia: Brassicaceae.

Tradescantia sp “tradescantia”; familia: Commelinaceae.

Pelorgonium grandiflorum “geraneo”, familia: Geraneaceae.

Matthiola incana “ahleli”; familia: Brassicaceae.

Tillandsia latifolia “achupalla”; familia: Bromeliaceae.

Otros materiales:

Microscopio compuesto.

Lamina porta objeto y lamina cubre objeto.

Gillette, agua y gotero.

METODOLOGÍA:

Aislamiento de la epidermis del: Neprholipis cardifolia “helecho”, del Rapanus sativus “rabanito” y de la

Tradescantia sp “trdescantia” montaje con agua; las cuales han sido llevadas a un microscopio en una

lámina porta objeto para las respectivas observaciones, obteniendo los resultados que se muestran en

el siguiente capítulo (experiencia u observación 1.1; 1.2; 1.3)

Haciendo un raspado superficial del tejido foliar del: Pelorgonium grandiflorun “geraneo”, de la Mathiola

incana “alheli” y dela Tillandsia latifolia “achupalla” montaje con agua; las cuales han sido llevadas a un

microscopio para en una lámina porta objeto para las respectivas observaciones, obteniendo los

resultados que se muestran en el siguiente capítulo (experiencia u observación 2.1; 2.2; 2.3.)

RESULTADOS:

OBSERVACION N° 01:

1.1. Observación

1.2. Observación

INFORME DE LABORATORIO

1.3. Observación:

OBSERVACION N° 02:

2.1. Observación:

2.2. Observación: 2.3. Observacion:

CONCLUSIÓN:

Después de haber realizado de una manera óptima los procesos inicialmente planteados en la práctica de

laboratorio, se puede llegar a determinar y comprender la importancia del avance de la ciencia en el campo de

la citología, éste convirtiéndose en un sinónimo del avance personal de quien quiere aprender y acomodarse a

las etapas de crecimiento del mundo, por lo tanto en ésta parte de finalización dejaremos claro el grande

interés en comprender el porqué de las cosas.

Al concluir con la práctica: hemos logrado reconocer la epidermis, estomas y tricomas de los vegetales que se

utilizaron en la práctica lo cual es fundamental en nuestra formación académica.

INFORME DE LABORATORIO

BIBLIOGRAFIA O LINCOGRAFIA:

http://es.wikipedia.org/wiki/Tejido_epid%C3%A9rmico.

http://es.wikipedia.org/wiki/tricoma hora 11:20 del miércoles 16 de Octubre.

BIBLIOGRAFIA:

Botánica Básica

Autor: Arthur Cronquist

Editorial: Campania Editorial Continental, S.A, de C.V

Primera edición- 1992

Biología Moderna

Autor: Ernesto Zamudio León

Editorial: San Marcos

PRACTICA N° 05

Reconocimiento de Tejido Parenquimatico y Mecanico

INTRODUCCION:

TEJIDO PARENQUIMATICO: En botánica, se denomina parénquima a los tejidos vegetales fundamentales

que prevalecen en la mayoría de los órganos vegetales formando un tono continuo. Se localizan en todos los

órganos vegetales, llenan espacios libres que dejan otros órganos y tejidos. Las células parenquimáticas están

poco especializadas, y su forma puede ser muy variable: más o menos isodiamétricas y facetadas, casi

poliédricas o alargadas, lobuladas, etc. Las paredes celulares son flexibles y delgadas de celulosa, aunque

pueden presentar paredes secundarias lignificadas.

Los parénquimas pueden ser considerados como meristemas potenciales ya que sus células si bien, han

perdido su capacidad de división, pueden en determinadas condiciones, desdiferenciarse y retomar su división

celular.

Parénquima clorofílico o clorénquima: realiza la fotosíntesis. Se sitúa en las hojas y en los tallos verdes.

En las hojas puede tener dos disposiciones distintas.

Parénquima en empalizada: principal tejido que realiza fotosíntesis por lo tanto proporciona alimento a la

planta. Tiene cloroplastos y muchas vacuolas. No deja espacio extracelular, por fuera del haz. La

morfología de las células es alargada.

Parénquima esponjoso: Posee abundante espacio intercelular lo que le permite realizar intercambio de

gases, como dióxido de carbono, de esta forma disminuye la posibilidad de asfixia por exceso de agua, por

ejemplo. Posee grandes vacuolas y paredes celulares delgadas. Se encuentra en tallos, hojas y en la

porción carnosa de las frutas.

INFORME DE LABORATORIO

Parénquima amilífero o de reserva: almacena determinadas sustancias o nutrientes para la planta. Lo

hace en los plastidios (en los amiloplastos en el caso del parénquima amiláceo), en lasvacuolas, en la

propia pared celular o en el citoplasma. Es frecuente en raíces engrosadas, semillas, tubérculos

engrosados, etc. Las células que lo componen, son por lo general de mayor tamaño que las anteriores, y

no presentan espacios intercelulares.

Parénquima acuífero: sus células tienen una enorme vacuola llena de agua y mucílago, por lo que es

característico de la vegetación xerófita (plantas que habitan en medios áridos).

Parénquima aerífero: (aerénquima) tiene células parenquimales muy pequeñas que delimitan cavidades

llenas de aire (lagunas parenquimáticas). Es característico de la vegetación hidrofita (que habita en medios

acuáticos y por lo tanto, que son pobres en oxígeno).

Parénquima vascular: protege los tejidos conductores (xilema y floema) de la planta.

Parénquima de relleno: Es aquel que ocupa todo el resto del espacio, con el fin de "rellenar". La principal

característica es que las células son todas isodiamétricas (poseen el mismodiámetro).

TEJIDO MECÁNICO: también llamados de sostén, proporcionan un nivel de resistencia a los órganos adultos.

Se distinguen dos tipos de tejidos mecánicos: el colénquima y el esclerénquima.

El colénquima está constituido por un solo tipo de células vivas, algo alargadas, con cloroplastos y

con paredes desigualmente engrosadas.

El colénquima mas común es el colénquima angular, que proporciona resistencia y elasticidad frente

a las flexiones y los aplastamientos, tanto a los órganos en crecimiento como a las partes jóvenes del

tallo, los pecíolos y los nervios foliares.

El esclerénquina es el tejido de resistencia mecánica de los órganos adultos que ya han dejado de

crecer. A diferencia del colénquima, presenta células con paredes muy gruesas y duras, a menudo

lignificadas, que mueren al hacerse adultas.

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA:

El objetivo de esta práctica es: que los alumnos del segundo siclo académico de la facultad de agronomía, al

finalizar la práctica puedan reconocer e identificar el tejido parenquimatoso y mecánico en cada uno de los

vegetales

III.- MATERIALES Y METODOS:

a). Material vegetal:

Opuntia ficus-indica “tuna”; familia: Cactaceae.

Solanum tuberosum “papa”; familia: Solanaceae.

Aloe vera “sábila”; familia: Liliaceae.

Cyperus rotundus “coquito”; familia: Cyperaceae.

Althernantera peruviana “paja blanca”; familia: Amaranthaceae.

Yucca gloriosa “palmera”; familia: Agavaceae.

INFORME DE LABORATORIO

Otros materiales:

Microscopio compuesto.

Laminas porta objeto y láminas cubre objeto.

Gillette, agua y gotero.

METODOLOGÍA:

Haciendo un corte transversal y muy fino de: Opuntia ficus-indica “tuna”, del: Solanum tuberosum

“papa”, del: Aloe vera “sábila” y del: Cyperus rotundus “coquito” montaje con agua; las cuales han sido

llevadas a un microscopio en una lámina porta objeto para las respectivas observaciones, obteniendo

los resultados que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 1.1; 1.2; 1.3; 1.4).

Haciendo un corte transversal del tallo de la: Althernantera peruviana “paja blanca” montaje con agua;

para luego llevarlo a un microscopio en una lámina porta objeto para la respectiva observación,

obteniendo el resultado que se muestra en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 2).

Haciendo un corte transversal de haces vasculares y fibras de la: Yucca gloriosa “palmera” montaje

con agua; la cual ha sido llevada a un microscopio para su respectiva observación, obteniendo los

resultados que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 3).

RESULATADOS:

OBSERVACION N° 01:

1.1. Observación:

1.2. Observación:

1.3. Observación:

INFORME DE LABORATORIO

1.4. Observación:

OBSERVACION N° 02:

OBSERVACION N° 03

CONCLUSION:

Después de haber realizado de una manera óptima los procesos inicialmente planteados en la práctica de

laboratorio, se puede llegar a determinar y comprender la importancia del avance de la ciencia en el campo de

la citología, éste convirtiéndose en un sinónimo del avance personal de quien quiere aprender y acomodarse a

las etapas de crecimiento del mundo, por lo tanto en ésta parte de finalización dejaremos claro el grande

interés en comprender el porqué de las cosas.

Al concluir con la práctica hemos logrado identificar

BIBLIOGRAFIA:

Botánica Básica

Autor: Arthur Cronquist

Editorial: Campania Editorial Continental, S.A, de C.V

Primera edición- 1992

Biología Moderna

Autor: Ernesto Zamudio León

Editorial: San Marcos

INFORME DE LABORATORIO

PRACTICA N°06

Reconocimiento de Haces Vasculares y Tejido Secretor

INTRODUCCION:

Haz vascular:

En el tallo de las plantas vasculares el xilema y el floema primarios se presentan asociados formando cordones

denominados haces vasculares.

El floema y el xilema muestran variaciones en su posición relativa, determinando diversos tipos de haces

vasculares.

Haz colateral. El floema está localizado en el lado externo o abaxial del haz, mientras el xilema está

ubicado en el lado interno o adaxial. Es el más frecuente en las angiospermas y gimnospermas. Los

haces colaterales pueden ser de dos tipos:

Haz colateral cerrado. En la mayoría de

las pteridófitas, monocotiledóneas y dicotiledóneas herbáceas, los haces vasculares no

conservan procámbium después que los tejidos vasculares primarios alcanzan el estado

adulto. Carecen por lo tanto de capacidad para un crecimiento ulterior. Los elementos

traqueales del protoxilema eventualmente se estiran y destruyen. En los haces vasculares de

muchas poáceas(gramíneas) la destrucción del protoxilema lleva a la formación de un espacio

abierto llamado laguna protoxilemática.

Haz colateral abierto. La mayoría de las dicotiledóneas y gimnospermas tienen haces abiertos,

con un meristema vascular persistente entre xilema y floema: el cámbium fascicular, que se

forma a partir de un remanente de procámbium.

Haz bicolateral. Los haces bicolaterales presentan floema a ambos lados del xilema, hacia afuera y

hacia adentro. Se encuentran en especies de algunas familias de dicotiledóneas, como

las convolvuláceas, apocináceas, solanáceas, cucurbitáceas y asclepiadáceas y de ciertas tribus

deasteráceas (compuestas). El cámbium fascicular se encuentra entre el xilema y el floema externo;

también hay algún cámbium entre el xilema y el floema interno. En los haces bicolaterales el floema

interno se diferencia después que el externo, y su diferenciación es centrífuga.

Haz concéntrico. En los haces concéntricos, uno de los tejidos vasculares rodea completamente al

otro. Los haces concéntricos son cerrados. El haz se denomina perixilemático o anfivasalsi el xilema

rodea al floema; este tipo de haz se encuentra en muchas monocotiledóneas; los haces medulares de

algunas dicotiledóneas también son de esta tipo. Si el floema rodea al xilema, el haz

es perifloemático o anficribal. Son comunes en pteridófitas y en flores y frutos de angiospermas.

INFORME DE LABORATORIO

tejido secretor es el tejido que "tapiza" el cáliz y por el cual se emanan las secreciones volátiles, básicamente

aceites esenciales, producidas por el osmóforo,1 y que dan el perfume de unaflor. Está formado por células

vivas especializadas en producir secreciones que se originan del metabolismo celular y que pueden ser

eliminadas al exterior o retenidas en cavidades de canales. Este tejido, de una o varias capas de profundidad,

comprende:

Células secretoras: células oloríferas, p. ej. el laurel.

Cavidades o bolsas de secreción, cavidades lisígenas del -clavo de olor-, cáscara de la naranja.

Canales secretores o esquizogenas (pino, casuarina): canales resiníferos de coníferas.

Tubos laticíferos: amapola, caucho, cardenal, etc.

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA:

El objetivo de esta práctica es: que los alumnos del segundo siclo académico de la facultad de agronomía, al

finalizar la práctica sepan reconocer e identificar los haces vasculares y el tejido secretor en los vegetales.

MATERIALES

Material vegetal:

1. Nephrolipis cardifolia “helecho”; familia: Nephrolepidaceae.

2. Cynodon dactylon “grama dulce”; familia: Poaceae.

3. Medicago sativa “alfalfa”; familia: Fabaceae.

4. Cucumes melo “melon”; familia: Cucurbitaceae.

5. Citrus aurantifolia “limon”; familia: Rutaceae.

6. Ruta graveolens “ruda”; familia: Rutaceae.

Otros materiales:

Microscopio compuesto.

Laminas porta objeto y láminas cubre objeto.

Gillette, agua y gotero.

METODOLOGÍA:

Realizamos un corte Transversal en el tallo, luego colocamos la muestra sobre un portaobjeto, con una Gota de agua y observamos,

RESULTADOS:

INFORME DE LABORATORIO

1.

2.

3.

4.

5.

6.

BIBLIOGRAFIA

Biología

Autor: Martin Ortiz tenorio

Editorial: IMGRAFYP

Segunda edición - 2008

PRACTICA N°07

Reconocimiento de Estructura Primaria y Secundaria en Raíz.

INFORME DE LABORATORIO

INTRODUCCION:

La raíz es un órgano generalmente subterráneo y carente de hojas que crece en dirección inversa al tallo y

cuyas funciones principales son la fijación de la planta al suelo y la absorción de agua y sales minerales. La

raíz está presente en todas las plantas vasculares exceptuando algunas pteridófitas que presentan rizoides y

algunas plantas acuáticas.

Ramificándose e introduciéndose profundamente en el suelo, sirve, además, de soporte eficaz para la planta.

Un rasgo característico de este órgano es su incapacidad para producir hojas y flores. Carece de color verde,

pero puede verdear en presencia de la luz. En algunas plantas perennes o bienales sirva también de órgano

reservante (rábano, remolacha).

ESTRUCTURA PRIMARIA: Al ser observada al microscopio presenta dos zonas: la corteza y el cilindro

central.

La Corteza: Es la zona más externa y en ella se distinguen los siguientes tejidos: la epidermis, el

parénquima cortical y la endodermis. La epidermis (Tejido epidérmico). Está formada por una capa de

células que a nivel de la zona pilífera emiten prolongaciones llamadas pelos absorbentes. En las

demás zonas, las células epidérmicas almacenan suberina que les sirve como protección.

El parénquima cortical: (Tejido parenquimático). Está formado por una sola capa de células y marca

el límite entre la corteza y el cilindro central.

La endodermis: (Tejido parenquimático), constituida por una sola capa de células, marca el límite

interno de la corteza. Cilindro central: Es la zona interna de la raíz y en ella se distinguen las

siguientes partes. El periciclo, los vasos de conducción y la médula.

El periciclo: (Tejido parenquimático), Formado por células que se encuentran en contacto con la

endodermis y tienen como función producir las ramificaciones secundarias de la raíz.

Los vasos conductores: (Tejidos vasculares). Formados por células alargadas dispuestas en haces o

manojos formando los vasos leñosos y los liberianos que se colocan alternadamente. Al conjunto de

vasos leñosos se le denomina xilema; cada vaso de estos está constituido por células llamadas

traqueidas.

Los vasos liberianos (Floema) están formados por células llamadas cribosas; al conjunto de dichos

vasos se le denomina floema. La médula (Tejido parenquimático). Constituido por células de forma

poliédrica que se encuentran rodeadas por los vasos de conducción; tienen como función el

almacenamiento de alimentos

ESTRUCTURA SECUNDARIA DE LA RAÍZ: Difiere de la primaria porque presenta dos nuevos tejidos de

crecimiento que son el cambium y el felógeno. Típicamente la estructura secundaria se presenta en

Gimnospermas y Dicotiledóneas leñosas, sobre la raíz primaria y las raíces laterales principales, las

ramificaciones de último orden carecen de crecimiento secundario.

INFORME DE LABORATORIO

El cambium se inicia en forma de arcos sobre el borde interno del floema a partir de células pro cambiales

no diferenciadas. Luego se forman nuevos arcos por fuera de los polos de xilema, a partir de las células

más internas del periciclo. Estos arcos se unen a los anteriores y forman una capa continua, que en sección

transversal tiene aspecto sinuoso. Finalmente adquiere forma cilíndrica, debido a que el xilema secundario

se deposita más pronto sobre el lado interno del floema que en el exterior del protoxilema.

El felógeno puede aparecer cerca de la superficie en algunos árboles y herbáceas perennes en las que el

córtex cumple funciones de almacenamiento. En este caso la peridermis es superficial y el córtex se

conserva. En las raíces de la palmera Phoenix dactylifera (Monocotiledónea) hay estructuras lenticelares

que forman una especie de collar en torno a las raíces de menor orden.

OBJETIVO:

El objetivo de esta práctica es: que los alumnos del segundo ciclo académico de la facultad de agronomía, al

finalizar la práctica puedan reconocer e identificar las estructuras primarias y secundarias en raíces de los

vegetales.

MATERIALES:

Material vegetal:

1. Sorghum halepense “sorgo”; familia: Poaceae.

2. Ipomoea batatas “camote”; familia: Convulvolaceae.

3. Inga edulis “guaba”; familia: Fabaceae.

4. Concolor Paphiopedilum “Orquídea”; Familia: Orchidaceae

Otros materiales:

Microscopio compuesto.

Laminas porta objeto y láminas cubre objeto.

Gillette, agua y gotero.

Metodología:

Haciendo un corte transversal del nudo de: Sorghum halepense “sorgo” montaje con agua; la cual ha

sido llevada a un microscopio en una lámina porta objeto para la respectiva observación, obteniendo

los resultados que se muestra en el siguiente capítulo.(experiencia u observación 1).

Haciendo un corte transversal de la raíz del: Ipomoea batatus “camote” montaje con agua; la cual ha

sido llevada a un microscopio en una lámina porta objeto para la respectiva observación, obteniendo

los resultados que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 2).

Haciendo un corte transversal la raíz de la: Inga edulis “guaba” montaje con agua; la cual ha sido

llevada a un microscopio en una lámina porta objeto para la respectiva observación, obteniendo los

resultados que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 3)

INFORME DE LABORATORIO

Haciendo un corte transversal del nudo de la: Concolor Paphiopedilum “orquidea” montaje con agua; la

cual ha sido llevada a un microscopio en una lámina porta objeto para la respectiva observación,

obteniendo los resultados que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 4)

RESULATADOS:

1.

1.

2.

3.

4.

CONCLUSION:

Después de haber realizado de una manera óptima los procesos inicialmente planteados en la práctica de

laboratorio, se puede llegar a determinar y comprender la importancia del avance de la ciencia en el campo de

la citología, éste convirtiéndose en un sinónimo del avance personal de quien quiere aprender y acomodarse a

las etapas de crecimiento del mundo, por lo tanto en ésta parte de finalización dejaremos claro el grande

interés en comprender el porqué de las cosas.

Al concluir con la práctica hemos logrado identificar las estructuras primarias y secundarias en cada uno de los

vegetales que se utilizaron en la práctica lo cual es fundamental en nuestra formación académica.

VI.- BIBLIOGRAFIA:

Botánica Básica

Autor: Arthur Cronquist

INFORME DE LABORATORIO

Editorial: Campania Editorial Continental, S.A, de C.V

Primera edición- 1992

PRACTICA N°08

Estructura de Tallo

INTRODUCCION:

La estructura de los tallos puede variar a lo largo de su existencia los tallos jóvenes y los de las plantas

herbáceas poseen una estructura que denominamos primaria, mientras que los tallos leñosos presentan una

estructura que denominamos secundaria.

Estructura primaria: Los tallos con desarrollo primario suelen reconocerse fácilmente porque conservan una

epidermis de color verde y suelen ser mas flexibles. La estructura primaria suele ser un estado juvenil de los

tallos de las plantas leñosas que se sólo se mantiene durante los primeros meses de desarrollo, sin embargo

en las plantas herbáceas se conserva durante toda su existencia.

INFORME DE LABORATORIO

Estructura secundaria: Es la estructura de los tallos adultos de las plantas leñosas. En las plantas leñosas a

partir del 2º año de vida en la médula y en la zona cortical del tallo se diferencian dos capas monoestratificadas

de células meristemáticas que se denominan meristemos secundarios (cambium y felógeno).

En la zona medular aparece el cambium un tejido que es responsable del crecimiento en grosor de los tallos.

La división de las células del cambium produce exteriormente tejido conductor de la savia elaborada (floema) e

interiormente xilema que es el tejido conductor ascendente encargado de distribuir el agua y los nutrientes

absorbidos por las raíces por toda la planta. En las plantas leñosas, el xilema constituye la madera y es

responsable de la consistencia de los tallos maduros.

El meristemo cortical, llamado l felógeno, origina hacia adentro parénquima cortical, que sustituye a la

epidermis y hacia fuera produce súber, la pérdida del parénquima clorofílico cortical hace que los tallos

secundarios ya no sean verdes.

II.- OBJETIVO DE LA PRÁCTICA:

El objetivo de esta práctica es: que los alumnos del segundo siclo académico de la facultad de agronomía, al

finalizar la práctica sepan reconocer e identificar la estructura de los tallos.

MATERIALES

Material vegetal:

1. Neprolepis cardifolia “helecho”; familia: Nephrolepidaceae.

2. Cynodon dactilon “grama dulce”; familia: Poaceae.

3. Eucalyptus camoldulensis “eucalipto”; familia: Myrtaceae.

4. Cupressus semperviren “cipres”; familia: Cupressaceae.

Otros materiales:

Microscopio compuesto.

Laminas porta objeto y láminas cubre objeto.

Gillette, agua y gotero.

Metodología:

Para realizar esta práctica del tallo, hemos utilizado navaja, para hacer distintos cortes y raspados para obtener la muestra deseada para posteriormente mirar en montaje de agua en el microscopio óptico.

RESULTADOS:

N° 1

N°2:

INFORME DE LABORATORIO

N°3:

Nº4

CONCLUSION:

Al concluir con la práctica hemos logrado identificar la estructura del tallo de cada uno de los materiales que se

utilizaron en el laboratorio lo cual es fundamental en nuestra formación académica.

BIBLIOGRAFIA

. Biología Curtis, H. & Barnes, N.S. Quinta edición - 1994 Edit. Médica Panamericana.

PRACTICA N°09

Estructura Anatómica de la Hoja

INTRODUCCION:

Una hoja es una estructura o un órgano de las plantas especializado para la fotosíntesis. Para cumplir con su

propósito, una hoja es típicamente plana y fina, con el objetivo de exponer los cloroplastos que contienen las

células (chlorenchyma) a la luz sobre una amplia superficie, y permitir que la luz penetre completamente en los

tejidos finos. Es en las hojas donde, en la mayoría de las plantas, ocurre la fotosíntesis, la respiración y

la transpiración.

Las hojas pueden almacenar alimento y agua, y se hallan modificadas en algunas plantas para otros

propósitos.

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA:

El objetivo de esta práctica es: que los alumnos del segundo ciclo académico de la facultad de agronomía, al

finalizar la práctica sepan reconocer e identificar la estructura anatómica de la hoja. Y lograr entender el porqué

de tales cosas.

III.- MATERIALES

INFORME DE LABORATORIO

Material vegetal:

1. Estructura bifacial de: Cytrus aurantium “naranja”; familia: Rutaceae.

2. Estructura equifacial de: Heliotropiun curasavira “cola de alacran”; familia: Boraginaceae3. Estructura tipo kranz: Sorgum halepense “sorgo”; familia: Poaceae.

4. Estructura multiestratificado: Eucaliptus camaldulensis “eucalipto”; familia: Myrtaceae.

Otros materiales:

Microscopio compuesto.

Laminas porta objeto y láminas cubre objeto.

Gillette, agua y gotero.

C). Metodología:

Haciendo un corte transversal de la hoja de: Cytrus aurantium “naranja” montaje con agua; la cual ha

sido llevada a un microscopio en una lámina porta objeto para la respectiva observación, obteniendo

los resultados que se muestra en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 1).

Haciendo un corte transversal de la hoja de: Heliotropiun curasavira “cola de alacrán” montaje con

agua; la cual ha sido llevada a un microscopio en una lámina porta objeto para la respectiva

observación, obteniendo los resultados que se muestra en el siguiente capítulo. (experiencia u

observación 2).

Haciendo un corte transversal de la hoja de: Sorgum halepense “sorgo” montaje con agua; las cuales

han sido llevadas a un microscopio en una lámina porta objeto para la respectiva observación,

obteniendo los resultados que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u observación 3).

Haciendo un corte transversal de la hoja de: Eucaliptus camaldulensis “eucalipto” montaje con agua;

las cuales han sido llevadas a un microscopio en una lámina porta objeto para la respectiva

observación, obteniendo los resultados que se muestran en el siguiente capítulo. (experiencia u

observación 4).

RESULTADOS:

N° 1:

.

N°2:

.

Nº3

INFORME DE LABORATORIO

Nº4

CONCLUSION:

Después de haber realizado de una manera óptima los procesos inicialmente planteados en la práctica de

laboratorio, se puede llegar a determinar y comprender la importancia del avance de la ciencia en el campo de

la citología, éste convirtiéndose en un sinónimo del avance personal de quien quiere aprender y acomodarse a

las etapas de crecimiento del mundo, por lo tanto en ésta parte de finalización dejaremos claro el grande

interés en comprender el porqué de las cosas.

Al concluir con la práctica hemos logrado identificar y reconocer la estructura anatómica de la hoja. Esto nos

llena de nuevos conocimientos las cuales es indispensable para la formación académica de cada uno de

nosotros los estudiantes de agronomía.

BIBLIOGRAFIA:

Botánica Básica

Autor: Arthur Cronquist

Editorial: Campania Editorial Continental, S.A, de C.V

Primera edición- 1992

Biología Moderna

Autor: Ernesto Zamudio León

Editorial: San Marcos

INFORME DE LABORATORIO

PRACTICA N°10

Morfología de las hojas

INTRODUCCION:

Las hojas son los órganos de las plantas verdes encargados de la asimilación del CO2 , ya que en ellas se

realiza la función fotosintética. También realizan funciones de respiración, transpiración, y en caso de lesión

pueden emitir yemas. Apice En una hoja se pueden identificar las siguientes partes: Nerviación Limbo: Cara

superior o haz o más apropiadamente cara adaxial Cara inferior es más opaca: envés o más apropiadamente

cara abaxial. Pecíolo: Es una estructura delgada, que une el limbo foliar y los haces vasculares al tallo. En su

parte inferior se suele ensanchar dando lugar a la vaina de las hojas de las gramíneas. Anisofilia: Desigualdad

foliar presente en las hojas de una misma rama en una misma región de la planta o en diferentes regiones en

la planta. Plantas con follaje caduco o deciduo: Las hojas caen durante el crecimiento de la planta o al final de

la estación de crecimiento. Las plantas se denominan caducifolias. Plantas con follaje persistente: Las hojas se

mantienen en la planta por más de una estación de crecimiento. Las plantas con follaje persistente se

denominan siempreverdes o perennifolias. En este caso las hojas caen pero nacen nuevas hojas manteniendo

el follaje intacto.

OBJETIVO DE LA PRÁCTICA:

Analizar los diferentes tipos de hojas que se presentan algunos géneros de Angiospermas, con sus debidas

especializaciones, y diferentes formas tamaños, funciones, grosor, posición.

a). Material vegetal:

1. SEGÚN EL LIMBO

1.1. Hojas simples: F. benjamina “Ficus”, familia Moráceae

INFORME DE LABORATORIO

2. SEGÚN LA FORMA

2.1. Hojas aciculares: Casuarina equisetifolia “Casuarina” familia Casuarinaceae

2.2. Hojas lineales: Cynodon dactylon “Pasto” familia poaceae

3. SEGÚN LA INERVACIÓN

3.1. Hojas palminervias:

Cannabis sativa “marihuana” familia cannabaceae

INFORME DE LABORATORIO

Pelargonium zonal “Gegeranio” familia geraniaceae

 

3.2. Hojas paralelinervia: gladiolus ssp “Gladiola” familia Iridaceae

4. TIPO DE INSERCION EN LOS TALLOS

4.1. Hojas pecioladas: rosa ssp “rosa” familia rosaceae

INFORME DE LABORATORIO

5. SEGÚN SU BORDE

5.1. Hojas enteras: Punica granatum “Granada” familia Lythraceae

6. POR SU DISPOSICIÓN EN EL TALLO

6.1. Hojas basales: Taraxacum officinale “Diente de león” familia Asteraceae

7. POR EL TIPO DE PECIOLO Hojas sésiles: tulipa ssp “Tulipán” familia Liliaceae

CONCLUSIÓN:

INFORME DE LABORATORIO

Al término de la práctica sabremos diferenciar los diferentes tipos de hojas en sus formas

tamaños y ubicacion