UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ

INSTITUTO DE BIOTECNOLOGÍA E INGENIERÍA GENÉTICA

FACULTAD DE AGRONOMÍA

LOS TRANSGENICOS EN EL PERÚ FORMACIÓN DE PLANTAS TRANSGÉNICAS DE PAPA

RESISTENTES A LAS POLILLAS CON GENES CRY 1A

(b) DE Bacillus thuringiensis UTILIZANDO CEPAS DE

Agrobacterium tumefasciens

NICOLÁS A. ROMÁN CABELLO

EMERSON C. LOZANO CARRASCO

ANTECEDENTES

*1996: SE CREA EL PROGRAMA DE BIOTECNOLOGÍA E INGENIERÍA

GENÉTICA DE LA FACULTAD DE AGRONOMÍA UNCP

1998: INICIO DE INVESTIGACIONES EN TRANSFORMACIÓN

BACTERIANA

* 2000: CREACIÓN DEL INSTITUTO DE BIOTECNOLOGÍA E

INGENIERÍA GENÉTICA (IBIG) DE LA UNCP-

* PRESENTACIÓN DE INVESTIGACIONES EN TRANSFORMACIÓN DE

E. COLI Y RHIZOBIUM: DE PISUM SATIVUM

IV CONGRESO PERUANO DE GENÉTICA: LIMA 2000

* PRESENTACIÓN DE INVESTIGACIÓN EN TRANSFORMACIÓN DE

AGROBACTERIM TUMEFASCIENS CON PLÁSMIDOS BACTERIANOS

PORTADORES DEL GEN CRY 1A (B) DE BACILLUS THURINGIENSIS: IV

CONGRESO INTERNACIONAL DE BIOTECNOLOGÍA. TACNA 2004

*TRANSFORMACIÓN DE EXPLANTES DE PAPA CON´ A. TUMEFASCIENS

CON PLÁSMIDOS TI PORTADORES DEL GEN CRY 1A (B) DE B.

THURINGIENSIS: PRODUCCIÓN DE PLANTAS TRANSGÉNICAS DE

PAPA. UNCP-FAC. AGRONOMÍA. TESIS. 2012

*

REFERENCIAS DEL INSTITUTO DE BIOTECNOLOGÍA

E INGENIERÍA GENÉTICA DE LA

UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ

MISION: FORMAR UNA MASA CRITICA DE INVESTIGADORES CAPACES DE

DESARROLLAR NUEVOS CONOCIMIENTOS Y NUEVAS TEORÍAS Y DE RESOLVER

PROBLEMAS UTILIZANDO LOS CONOCIMIENTOS DE LA BIOLOGÍA MOLECULAR.

LINEAS DE INVESTIGACION

L1: INGENIERÍA GENÉTICA L2: MICROBIOLOGÍA

L3: CITOGENÉTICA L4: MARCADORES MOLECULARES (DNA)

L5: BIOINGENIERÍA L6: PROYECTOS ESPECIALES

ELECTROFORÉSIS

BANDAS DNA

PROCEDIMIENTO ESPECÍFICO

INTRODUCCION

El desarrollo de la agricultura ha promovido el uso de sustancias

químicas para combatir plagas y enfermedades, que disminuyen

grandemente el rendimiento de las cosechas, destacándose los

insecticidas que son los de mayor uso. Sin embargo la

aparición de resistencia, la alta residualidad y

toxicidad inespecífica, ha motivado la búsqueda de

estrategias en el manejo de plagas. Es así que se esta utilizando el gen que

produce la δ-endotoxina, proteína Cry, inclusión

proteica o cuerpo parasporal, del Bacillus

thuringiensis (Bt) el cual presenta actividad

insecticida como un factor de control para las

polillas de la papa (Symmetrischema tangolia y

Phthorimaea operculella), dicho gen ha sido

incorporado a plantas de papa mediante

técnicas de ingeniería genética.

PROBLEMA

Sí, se exponen explantes de papa con cepas de

Agrobacterium tumefasciens portadores de gen

Cry1Ab de Bacillus thuringiensis, entonces se

transforman las células expuestas de los

explantes de papa.

HIPÓTESIS

¿Si se exponen explantes de papa con cepas de

Agrobacterium tumefasciens portadores del gen

Cry1Ab de Bacillus thuringiensis estas se

transformarán, es decir se incorporara el gen en

el genoma de la planta?

OBJETIVOS

• Transformar tejidos de papa con cepas de

Agrobacterium tumefasciens portadores del

gen Cry1A(b) de Bacillus thuringiensis.

• Obtener plántulas que porten el gen

Cry1A(b) a través del cultivo in vitro de

explantes.

MATERIALES Y METODOS

1) Lugar de ejecución

Fase II transformación de explantes

con Agrobacterium portadores del

gen Cry1A(b).

Se llevo a cabo en el laboratorio de

Cultivos in vitro de la Facultad de

Agronomía de la UNCP.

Fase I transformación de

Agrobacterium con plásmidos

portadores del gen Cry1A(b).

Se llevo a cabo en el laboratorio del

Instituto de Biotecnología e Ingeniería

Genética (IBIG) de la UNCP.

Ingeniería Genética

¿CÓMO SE HACE

UNA PLANTA TRANSGÉNICA?

a) Variedades de papa.

Se utilizaron plántulas de papa de las variedades. Perricholi y Única, de cultivo in vitro de la Facultad de Agronomía. Para la transformación fue necesario contar con una elevada cantidad de plántulas, por lo que se realizó la multiplicación de 500 plántulas de cada variedad.

b) Gen de resistencia

Se utilizaron plásmidos pKTi-4 con el gen Cry1A(b) obtenido de Sigma-Aldrich en el año 1999, que contiene como componentes básicos: un gen promotor de expresión (CaMV), gen marcador de selección para resistencia al antibiótico Kanamicina, y el gen Cry1A(b) de Bacillus thuringiensis.

2) Materiales biológicos

Fase I

T0 = 0 mg de Km

T1 = 50 mg de Km

T2 = 100 mg de Km

T3 = 150 mg de Km

4) Variables evaluadas

Fase I:

•Número de colonias de A. tumefasciens, portadoras del gen Cry1A(b).

Fase II:

•Explantes de papa

•Explantes regenerados y enraizados.

3) Metodología

Para la transformación de explantes de papa, se utilizó el método indirecto

intermediado por A. tumefasciens, propuesto por Horsch en 1984.

Fase II

T0 = 0 mg de Km

T1 = 50 mg de Km

T2 = 100 mg de Km

T3 = 150 mg de Km

Tratamientos

1) Cultivo bacteriano.

a) Las cepas transformadas, se llevaron a diluciones 10, 10-1, 10-2, 10-3, 10-4, 10-5 y 10-6.

b) Se preparó el medio ELMARC de levadura, manitol y rojo de Congo.

c) Cuando el medio tuvo entre 40 a 45 ºC, se añadió el marcador de selección (antibiótico

Kanamicina), de acuerdo a los tratamientos.

d) Se dispenso 20 ml/placa del medio ELMARC.

e) Se procedió a sembrar las cepas de A. tumefasciens (dilución 10-6), transformadas con los

plásmidos pKTi-4 portadoras del gen Cry1A(b).

f) Finalmente se llevaron las placas a la incubadora a 28º C durante 48 horas.

2) Evaluación.

Se realizó el conteo aplicando la técnica de recuento en placa, de las unidades formadoras de

colonias (UFC), resistentes a las diferentes dosis de antibiótico Kanamicina, incorporadoi en el

plásmido pKTi-4 como gen marcador de selección.

3) Amplificación.

Las bacterias sobrevivientes se re cultivaron para amplificar el plásmido bacteriano y el gen

Cry1Ab.

4) Conservación.

Las placas, con las bacterias se guardaron en la congeladora, a una temperatura de 4º C para evitar

su proliferación.

Fase I. Cultivo de las bacterias transformadas con plásmidos pKTi-4

5) Procedimiento

1) Co cultivo

a) Se cortaron discos de hoja y entrenudos para la var. Perricholi y entrenudo para la var. Única.

b) Se preparó el medio de cultivo propuesto por el PGS (Plant Genetics Systems), modificado de De Block, 1988.

c) En el medio PGS, se pusieron en contacto los explantes con las bacterias a una concentración de 3.85 x 106 cel/ml, para asegurar que la solución de bacterias entre en contacto con las heridas ocasionadas por el corte.

d) Las placas fueron selladas con parafilm y envueltas con papel aluminio para darles condiciones de baja intensidad de luz.

e) Así dispuestas, se mantuvieron en la incubadora a 23º C durante 24 horas.

2) Formación de callos

a) Después de las 24 horas se retiraron los explantes del co-cultivo.

b) Los explantes se colocaron sobre papel filtro estéril para quitar la presencia del medio líquido.

c) Luego se transfirieron a un medio de cultivo para la formación de callos (método Cardi et al., 1993).

d) Con la finalidad de eliminar la presencia del A. tumefasciens, se añadió el antibiótico Cefotaxima (Claforan) la dosis de 50 mg/l.

e) Los explantes fueron transferidos a medios frescos cada dos semanas, hasta obtener 4-5 cm de diámetro aproximadamente.

3) Regeneración

a) Cuando los callos tuvieron de 0,5 a 0,6 cm de diámetro aprox., fueron trasferidos a placas petri conteniendo el medio, propuesto por Cardi et al., 1993, para regeneración de brotes.

b) Los callos fueron transferidos a medios frescos cada dos semanas, hasta obtener brotes.

c) Los brotes se transfirieron a medios de cultivo para enraizamiento (Murashige & Skoog, 1962).

Los medios de cultivo para la regeneración contenían las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, con el objetivo de seleccionar aquellos brotes resistentes al antibiótico Kanamicina y por consiguiente el gen Cry1A(b).

Fase II. Transformación de los explantes de papa

RESULTADOS Y DISCUSION

TRANSFORMACIÓN

CEPAS DE Agrobacterium tumefasciens

Cuadro 1. Análisis de varianza del número de colonias por efecto de las diferentes

dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01.

En el Cuadro 1 se observa que,

en la fuente de tratamientos

existe diferencia estadística

altamente significativa (Prob. >

0,01); de lo que se infiere que la

formación de colonias varia por

efecto de las diferentes dosis del

antibiótico Kanamicina.

Fase I: Cultivo de las cepas de A. tumefasciens, portadores del gen

Cry1A(b) a diferentes dosis del antibiótico Kanamicina.

F. de V. GL SC CM Fc Sig.

Tratamientos

Error

Total

3

12

15

52,4733

2,5621

55,0374

17,4918

0,2135

81,93 * *

S = 0,46 C.V. = 8,19% x¯ = 5,64

Cuadro 2: Prueba de significación de los promedios del número de colonias por

efecto de las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01.

En el Cuadro 2 se observa que, el tratamiento con 0 mg/l de Km presento

mayor numero de colonias, diferiendo significativamente de los demás

tratamientos. Esto indica que no todas las bacterias del tratamiento 1,

tienen el plásmido recombinante con el gen Cry1A(b), por lo cual no

sobrevivieron al efecto del antibiótico Kanamicina.

Entre los tratamientos 2, 3 y 4 las diferencias estadísticas no son

significativas debido a que estas si tienen el plásmido recombinante, en el

cual esta el gen de resistencia al antibiótico Kanamicina, que sintetiza una

enzima que neutraliza el principio activo del antibiótico y

consecuentemente indica que el gen Cry1A(b) ingreso a la bacteria.

O.M. Tratamientos Promedio Significación

1

2

3

4

0 mg/l Km

50 mg/l Km

150 mg/l Km

100 mg/l Km

8,76

4,79

4,70

4,31

a

b

b

b

ALS(D)0,01 = 0,99 1,05 1,08

Fase II: Transformación de explantes.

2) Formación de callos

1) Co-cultivo.

Formación de callos de la variedad

Perricholi, sometidos a 100 mg/l de Km.

Formación de callos de la variedad

Única, sometidos a 75 mg/l de Km.

Co-cultivo de las variedades

Perricholi y Única.

La organogénesis comprendió el desarrollo de yemas o de

meristemas radicales a partir de los callos. En el proceso de

formación de callos, hubo variación en los requerimientos de los

reguladores de crecimiento para la organogénesis según el tipo de

tejido usado como explante (Litz et al., 1983), por lo cual la

concentración del AIA (Acido Indol Acetico) fue mayor con respecto

al BAP (Bencilaminopurina).

La variación en la respuesta del tipo de explante perteneciente a la

misma Variedad (Perricholi) fue considerable (Flick et al., 1983;

Murashige, 1974). El tamaño del explante afecto en la respuesta a

la organogénesis, los explantes grandes poseen un potencial

regenerador considerablemente mayor; la viabilidad y la capacidad

regenerativa de explantes muy pequeños tiende a ser baja, y a ser

dañados muy fácilmente. Asimismo el potencial organogenético del

tipo de explante fue inversamente proporcional a su edad fisiológica

(Alleweldt et al., 1962).

Cuadro 3. Análisis de varianza del número de explantes (entrenudo) de la var. Perricholi, por

efecto de las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01

Cuadro 4. Análisis de varianza del número de explantes (discos de hoja) de la var. Perricholi, por

efecto de las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01

Explantes sometidos a las diferentes dosis del antibiótico

Kanamicina

F. de V. GL SC CM Fc Sig.

Tratamientos

Error

Total

3

8

11

0,038

0,307

0,345

0,013

0,038

0,33 ns

S = 0,196 C.V. = 7,85% x¯ = 2,498

C.V. = 14,14% x¯ = 1,580 S = 0,2247

F. de V. GL SC CM Fc Sig.

Tratamientos

Error

Total

3

8

11

0,1978

0,4043

0,6021

0,0659

0,0505

1,30 ns

Cuadro 5. Análisis de varianza del número de explantes (entrenudo) de la var. Única, por

efecto de las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01

En el ANVA de las tres transformaciones sometidas a las diferentes dosis del

antibiótico Kanamicina, se observa que no existen diferencias estadísticas

significativas, sin embargo no todos los callos llegaron a generar brotes. Una de las

razones fue por la presencia del A. tumefasciens en el medio para la regeneración,

es decir que al momento de trasferir los explantes al medio para la formación de

callos, no se eliminaron las bacterias, lo cual afecto el desarrollo de algunos callos y

consecuentemente la regeneración de brotes. Se adiciono 50 mg/l del antibiótico

claforan para eliminar el exceso del A. tumefasciens, pero no se obtuvieron

resultados, posiblemente debido a que no era la dosis optima.

F. de V. GL SC CM Fc Sig.

Tratamientos

Error

Total

3

8

11

0,0294

0,3779

0,4073

0,0098

0,0472

0,21 ns

S = 0,217 C.V. = 11,67% x¯ = 1,86

Cuadro 6. Porcentaje de regeneración de explantes de las variedades Perricholi y Única.

COMO SE OBSERVA EN EL

CUADRO 6, EL EXPLANTE

ENTRENUDO PUEDE SER

REGENERADO CON MAYOR

FACILIDAD, CON RESPECTO AL

EXPLANTE DISCOS DE HOJA,

LUEGO DE LA TRANSFORMACIÓN.

3) Regeneración

Variedad Tipo de

explante

№ total

de

explantes

№ de

explantes

regenerados

% de

regeneración

Perricholi

Única

Entrenudo

Discos de hoja

Entrenudo

120

80

120

11

2

8

9,17

2,5

6,67

los resultados obtenidos, son corroborados por el trabajo de

investigación que se hizo en la universidad nacional agraria la

molina, donde se transformaron clones de papa con dos cepas de a.

tumefasciens portadoras del gen cry1ab, utilizando dos tipos de

explantes (entrenudo y discos de hoja), se obtuvieron 8 líneas

transgénicas del clon kw ptm29, 71 líneas del clon mi 4910 y 77

líneas transgénicas del cultivar desireé (cañedo, 2000).

ASIMISMO, EN 1992 EL CENTRO INTERNACIONAL DE LA PAPA (CIP),

Y LA EMPRESA PRIVADA BELGA “PLANT GENETIC SYSTEMS”

(PGS), INICIARON UN PROYECTO EN COLABORACIÓN PARA

DESARROLLAR VARIEDADES TRANSGÉNICAS DE PAPA CON

RESISTENCIA A LA POLILLA EN EL CAMPO Y ALMACÉN. ESTA

ESTRATEGIA CONSISTIÓ EN INTRODUCIR EL GEN DE B.

THURINGIENSIS POR EL MÉTODO AGROBACTERIUM, SE

OBTUVIERON DIEZ VARIEDADES DE PAPA, LAS LÍNEAS

TRANSGÉNICAS MOSTRARON ALTA RESISTENCIA CONTRA EL

ATAQUE DE LAS LARVAS DE LA POLILLA EN HOJAS Y

TUBÉRCULOS, EN COMPARACIÓN CON PLANTAS DE LA MISMA

VARIEDAD NO TRANSFORMADAS (CIP, 1998).

CONCLUSIONES

SE TRANSFORMARON EXPLANTES DE PAPA, DE LAS VARIEDADES

PERRICHOLI Y ÚNICA, CON CEPAS DE A. tumefasciens PORTADORES

DEL GEN CRY1A(B) DE B. thuringiensis.

SE OBTUVIERON ONCE REGENERANTES (PLÁNTULAS) DE LA

VARIEDAD PERRICHOLI Y OCHO DE LA VARIEDAD ÚNICA, A PARTIR DE

LOS CALLOS TRANSFORMADOS CON CEPAS DE A. TUMEFASCIENS, ES

DECIR PORTADORES DEL GEN CRY1A(B) PARA RESISTENCIA A LA

POLILLA.

EN LAS CONDICIONES DEL EXPERIMENTO, EL EXPLANTE

ENTRENUDO, DE AMBAS VARIEDADES TUVO MAYOR HABILIDAD PARA

REGENERAR NUEVAS PLÁNTULAS.

SE AVANZÓ HACIA LA OBTENCIÓN DE UN SISTEMA DE

TRANSFORMACIÓN DE TEJIDOS DE PAPA PARA LAS VARIEDADES

PERRICHOLI Y ÚNICA.

RECOMENDACIONES

Realizar la caracterización molecular de las variedades

transformadas con el gen Cry1A(b), utilizando marcadores

moleculares de DNA.

Para evitar la contaminación microbiológica en el

laboratorio, aplicar estrictamente las normas de

bioseguridad y el uso de las Buenas Practicas de

Laboratorio (BPL).

Continuar la investigación con pruebas en invernadero y

campo.

ANEXOS

Fase I. Cultivo de cepas de A. tumefasciens.

A. tumefasciens observadas al microscopio

Antibióticos Cefotaxima y Kanamicina

Placas petri con A. tumefasciens, a

diferentes dosis del antibiótico Kanamicina

Siembra de cepas de A. tumefasciens

en la cámara de flujo laminar

Fase II. Transformación de los explantes de papa de la

variedad Perricholi.

Regeneración de brote a

partir del callo transformado

Cortes para el co-cultivo Formación de callos

sometidos a 100mg/l de Km

Regeneración de brote a

partir del callo transformado Plántulas de papa transformadas con el

gen Cry1A(b) de B. thuringiensis.

Plántulas de papa transformadas con el gen

Cry1A(b) de B. thuringiensis.

Fase II. Transformación de explantes de papa de la variedad

Única.

Callos con inicio de

formación de brotes

Formación de brotes

Formación de callos

TRANSGÉNICOS LA

OPORTUNIDAD PERDIDA

Crecimiento mundial de la población

CULTIVOS TRANSGÉNICOS EN EL MUNDO

En el año 2011, según el reporte del Servicio Internacional para la Adquisición de Aplicaciones

Agrobiotecnológicas (ISAAA, por su sigla en inglés) los cultivos transgénicos sumaron 160 millones de

hectáreas en 29 países, lo que evidencia un crecimiento sostenido en la adopción de esta tecnología.

Top 10 de los países con cultivos biotecnológicos

Fuente: Clive James, 2013

DISMINUCIÓN DEL PROGRESO EN INCREMENTAR LOS RENDIMIENTOS DE NUEVAS VARIEDADES POR MEJORAMIENTO GENÉTICO CONVENCIONAL

ORGANIZACIONES INTERNACIONALES QUE SE

PRONUNCIARON FAVORABLEMENTE A LA

SEGURIDAD DE LOS TRANSGÉNICOS

• ORGANIZACIÓN MUNDIAL DE LA SALUD

• FOOD AND DRUG ADMINISTRATION EE.UU.

• ROYAL SOCIETY, UNITED KINGDOM

• ASOCIACIÓN DE ACADEMIAS DE CIENCIAS DE ALEMANIA

• ACADEMIA DE CIENCIAS DE CHINA

• NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES-NATIONAL RESEARCH

COUNCIL EE.UU.

• ACADEMIAS NACIONALES DE CIENCIAS DE INDIA, BRASIL,

MÉXICO

• ACADEMIA DE MEDICINA DE FRANCIA

• ASOCIACIÓN DE MÉDICOS BRITÁNICOS

• ASOCIACIÓN AMERICANA DE TOXICOLOGÍA

• FAO

• EL VATICANO

Evaluación de inocuidad de los OGM

o La evaluación de inocuidad del alimento sigue un método estructurado e

integrado que se aplica “caso por caso”, con anterioridad a su salida al

mercado.

o Los datos e informaciones deben estar basados en sólidos principios

científicos, obtenidos usando métodos apropiados y analizados mediante

adecuadas técnicas estadísticas, debiendo ser de calidad y cantidad

suficientes que permitan realizar una evaluación científica.

HASTA EL DÍA DE HOY NO SE HA ENCONTRADO UN SOLO CASO

COMPROBADO CIENTÍFICAMENTE DE DAÑO A LA SALUD EN

HUMANOS O ANIMALES DOMÉSTICOS POR EL USO DE OGMS.

Productos derivados de OGMs para alimento humano que no difieran significativamente de sus pares convencionales, pasarán a ser considerados “equivalentes sustanciales” (CODEX Alimentarius) y a ser no regulados.

NECESITAMOS CON URGENCIA UTILIZAR LAS

HERRAMIENTAS CIENTÍFICAS Y

TECNOLÓGICA QUE YA ESTAN A NUESTRO

ALCANCE

´¿DE QUE NOS SIRVE LA BIODIVERSIDAD

SIN BIOTECNOLOGÍA?

¿SEGUIREMOS GUARDANDO

Y PRESERVANDO NUESTROS CULTIVOS

PARA LA CODICIA DE LOS EXTRANJEROS?

¿NO HEMOS APRENDIDO LA LECCIÓN DEL YACóN, OCA,

MASHUA OLLUCO, PAPA, ARRACACHA, CHICURO,

QUINUA, KIWICHA, UÑA DE GATO ETC.?

Oportunidades que ofrece la Biotecnología en el Perú

MEJORAMIENTO GENÉTICO DE CULTIVOS (MAIZ, ALGODÓN, SORGO,

HORTALIZAS) FRUTALES TRANSGÉNICOS DE MADURACIÓN

RETARDADA (MANGO, CHIRIMOYA) CONTROL DE LA ROYA DEL CAFÉ,

“RANCHA” DE LA PAPA ETC.

INDUCCIÓN DE RESISTENCIA AL STRESS ABIÓTICO: SEQUÍA

(ALGARROBO, ESPÁRRAGO), HELADAS (HORTALIZAS), SALINIDAD

(VID)

MEJORAMIENTO GENÉTICO DE ALPACAS (RESISTENCIA, CALIDAD DE

FIBRA)

MEJORAMIENTO GENÉTICO DE ESPECIES ACUÍCOLAS (CAMARÓN, C.

ABANICO, ERIZO, PAICHE, PACO, TRUCHA)

SALUD ANIMAL Y ACUÍCOLA: DIAGNÓSTICOS Y VACUNAS

CLONACIÓN DE ESPECIES AMAZÓNICAS DE ALTO VALOR (CAOBA

, CEDRO, PALMAS, ORQUÍDEAS)

PRODUCCIÓN DE BIOCIDAS Y FERTILIZANTES MEJORADOS

BIOTRATAMIENTO Y BIORREMEDIACIÓN DE RESIDUOS

BIOLIXIVIACIÓN DE MINERALES CON BACTERIAS MG y NMG

(MINERALES DE Cu, As. Cr. Etc)

DESARROLLO DE VACUNAS PARA ENFERMEDADES

TROPICALES ENDÉMICAS (LEISHMANIASIS, MALARIA ETC)

DIAGNÓSTICOS MOLECULARES CON ANTÍGENOS LOCALES

PARA CÁNCER.

VALORIZACIÓN DE RECUSOS GENÉTICOS

CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DE GENES CON

PROPIEDADES MEDICINALES, INDUSTRIALES Y PRODUCCIÓN

BIOTECNOLÓGICA DE PRODUCTOS ACTIVOS

ALEGATOS EN CONTRA

Daños a la salud humana

No ha habido un solo caso reportado en 16 años de uso de

alimentos transgénicos de daño a la salud humana.

Los sistemas de análisis y manejo de riesgo se aplican y se

aplicarán caso por caso con la mayor prolijidad y usando de la

experiencia extranjera, como se hace para los medicamentos.

Alergias

El 8% de la población mundial sufre algún tipo de alergias

(O.M.S.)

Alergia, antibióticos, vacunas edulcolorantes, analgésicos, polen,

polvo, dentífricos (pasta dental), analgésicos.

Alergia a plantas cultivadas tratadas con fungicidas,

fitohormonas y agroquímicos en general.

Daños a la biodiversidad

Para los cultivos no nativos del Perú no hay problema: no hay a quien afectar:

ARROZ, CAÑA DE AZÚCAR, CAFÉ, CÍTRICOS, ESPÁRRAGOS, MANGO,

PALTO, FRUTALES DE CLIMA TEMPLADO, VID, OLIVO, HORTALIZAS,

MAÍZ AMARILLO DURO, ALGODÓN, TRIGO, CEBADA, ALFALFA,

FORRAJERAS, SORGO, HABAS, FRIJOL CASTILLA, PAPRIKA.

Para los cultivos nativos del Perú se aplicarán las normas de bioseguridad

más avanzadas por los Organismos Sectoriales Competentes.

Dependencia del extranjero

La dependencia del extranjero existe actualmente en alimentos; se trata de

disminuirla produciendo más en el Perú.

Los agricultores que no compran semillas a semilleristas son los mas

atrasados. No se puede mantener a la agricultura del Perú en estado

permanente de subdesarrollo. Hoy se compra semilla de maíz híbrido, arroz

certificado, hortalizas, etc. de fuentes locales o extranjeras; el espárrago es el

mejor ejemplo.

¿Acaso no somos dependientes en telefonía, informática, software,

automóviles, TV?

CASI SIEMPRE LOS ECOFUNDAMENTALISTAS:

DESCONOCEN LAS TÉCNICAS DE LA INGENIERÍA GENÉTICA.

SON PERSONAS NO INVOLUCRADAS EN LAS TECNOLOGÍAS DEL

DNA RECOMBINANTE.

CREEN QUE LOS ORGANISMOS TRANSGÉNICOS SON

“ARTIFICIALES” (NO NATURALES) Ó SINTÉTICOS.

SON FATALISTAS NO COMPRENDEN EL IR Y DEVENIR DE LA CIENCIA

A LO LARGO DE LA HISTORIA, SOBRE TODO DE LA T- DNAR.

MUCHOS DE ELLOS NO QUIEREN PERDER SU POSICIONAMIENTO EN

EMPRESAS, MINISTERIOS, UNIVERSIDADES, ETC. Y SE SIENTEN

SUPERADOS POR EL CAMBIO QUE NO ENTIENDEN.