Figura 7. Fotografía de un corte transversal del androceo y gineceo de una flor de Rosa spp. a: estigma, b: rudimentos seminales, c: ovario, d: estambre, e:estilo.

CÉLULAS, TEJIDOS Y ÓRGANOS

VEGETALES: COMPARACIÓN

ENTRE PLANTAS MONOCOTILEDÓNEAS

Y DICOTILEDÓNEAS

García López Alejandra, Gómez Rodríguez Lourdes, González

Monterosa Honorio, Gutiérrez Enrique, Muñoz Palomeque Alejandrina y Reyes Hernández Sandi Julissa

Práctica No. 1 de Cultivo de Tejidos Vegetales; Profesor: Leobardo Iracheta Donjuan; Tapachula, Chiapas, sábado / 22 enero / 2011

Materiales

Material

- Portaobjetos 5- Cubreobjetos 5- Placa Petri 1- Pipeta Pasteur 1- Microscopio estereoscópico 1 - Microscopio compuesto 1- Algodón 1- Esmalte transparente para uñas 1- Cinta adhesiva transparente 1- Navajas de rasurar nuevas 1

Reactivos

- Agua destilada. 1 L- Alcohol. 100 mL- Yodo Lugol 10 mL

Material biológico

Hojas de Dieffenbachia sp.

Una pera (Pyrus communis)Planta de palma africana (Elaeis guineensis)Planta arbustiva de especie no identificadaFlor de Rosa sp.Flor de gramínea de especie no identificada

Métodos

Células vegetales

Células guarda del estoma. Sobre una hoja colocar una capa fina de esmalte transparente para uñas y permitir que se seque. Colocar cinta adhesiva transparente sobre la película de esmalte y desprender tratando de no dejar huellas sobre la cinta. Montar en cubreobjetos y observar al microscopio compuesto para identificar las células estomáticas.

Células de fruto (de almacenamiento de carbohidratos). Utilizando navajas de rasurar realizar cortes delgados de frutos de pera. Sumergir los cortes en solución de yodo Lugol por alrededor de 15 segundos. Lavar con agua. Montar en un portaobjetos con una gota de agua. Colocar el cubreobjetos. Observar al microscopio compuesto para identificar las células de almacenamiento y granos de almidón, los cuales deberán verse teñidos en café oscuro.

Tejidos vegetales

Hojas. Utilizando navajas de rasurar realizar cortes transversales de hojas de diferentes plantas. Los cortes deben ser lo más fino posible. Colocar los cortes sobre un portaobjetos con una gota de agua tratando que la cara transversal del tejido vea hacia arriba. Colocar el cubreobjetos. También se puede utilizar un colorante para mejorar el contraste. Observar al microscopio compuesto para identificar los distintos tejidos que componen a la hoja. También identificar los tipos de nervaduras de la hoja.

Tallos. Utilizando navajas de rasurar realizar cortes transversales de tallos jóvenes de plantas herbáceas. Colocar los tejidos sobre un portaobjetos con una gota de colorante azul de metileno. Colocar el cubreobjetos y calentar ligeramente. Observar al microscopio compuesto para identificar los distintos tejidos que componen al tallo de las especies evaluadas. Identificar la distribución de los haces vasculares.

Órganos vegetales

Raíces. Con la ayuda de un estereoscopio, observar detalladamente raíces de diversas plantas e identificar las diferentes zonas que la componen. Verificar si la raíz es pivotante o fasciculada.

Flores. Con la ayuda de un estereoscopio observar detalladamente flores de diversas plantas e identificar las diferentes zonas que la componen. Examinar el número de estructuras florales

(sólo sépalos y pétalos) por cada verticilio de las flores. Registrar si están en grupos de tres (monocotiledóneas) y en grupos de cuatro o cinco (dicotiledóneas).

Resultados y discusión

La evaluación de las microfotografías obtenidas a partir de las distintas muestras de células, tejidos y órganos de las plantas empleadas se puntualiza a continuación.

Células vegetales

Células epidérmicas de una hoja de Dieffenbachia spp. La observación al microscopio de la epidermis del haz de una hoja tierna de Dieffenbachia sp. (monocotiledónea), muestra una disposición ordenada de células epidérmicas sin presencia de estomas. Las células observadas no poseen un ordenamiento uniforme, sino más bien forman un mosaico continuo de células isodiamétricas, muy compactas entre sí, con un haz de luz muy pronunciado en su interior y sin elementos especializados (tricomas, por ejemplo) visibles (Figura 1).

Figura 1. Microfotografía de tejido epidérmico del haz foliar de una Dieffenbachia sp. (10x). Se pueden observar células isodiamétricas, polimórficas, de aristas redondeadas y muy interdigitadas, con paredes celulares bien diferenciadas. a: Células epidérmicas.

En tanto, para la epidermis foliar del envés se pudieron estomas dispersos. Las células guarda son halteriformes (figura 2). Estos son rasgos presentes ciertos grupos de plantas monocotiledóneas, como en las hojas de las Aráceas y Marantáceas que presentan estomas dispersos (González, 2008) como sucede con la mayoría de las dicotiledóneas.

abc.

Ilustración 1: corte transversal de tallo de

Figura 2. Micrografía de tejido epidérmico del envés foliar de Dieffenbachia sp. (40x). Se pueden apreciar los estomas y su distribución dispersa. a: ostiolo. b: células guarda c: células anexas.Tallo:

corte transversal de tallo de una planta monocotiledonea con tejidos de celulas epidermicas, parenquima fundamental y haces vazculares

Ilustración 2: vista cercana del corte de un tallo en forma tranversal de una dicotiledonea.

Hazes vasculares

Epidermis

Ilustración 3: corte transversal de tallo de una dicotiledonea.

Xilema primario

Xilema primario

procambium

Parenquima

Hazes vasculares

floema

procambium

floema

El tallo que presentan las dicotiledoneas tiene como caracteristicas con respecto a las cotiledoneas lo siguiente: 1.- xilema primario2.- floema 3.- procambium4.- hazes vasculares

Células del mesodermo de Pyrus communis. La tinción de yodo Lugol aplicada a un segmento del mesocarpio de una pera, permitió observar células ciertos tipos de células. Por un lado, se pudieron observar un tipo de células conocidas como esclereidas, las cuales se encontraban esparcidas formando idioblastos (Fahn, 1978). Estas células se caracterizan por poseer paredes secundarias engrosadas, atravesada por punteaduras radiales (Arbo, 1977). Se pueden apreciar como células cortas, isodiamétricas, redondeadas y pétreas (A, 1978) (figura 3).

Figura 3. Micrografía de un corte del mesocarpio de Pyrus spp. (40x). Puede visualizarse la estructura completa de una esclereida. a: Pared primaria. b: Pared secundaria. c: Lumen.

Además, con la misma tinción se pueden ver claramente ciertos sitios de acumulación de almidón, los cuales aparecen como manchas café-marrón oscuro (figura 4) debidas a la reacción entre el yodo y las moléculas de almidón de los gránulos de almidón de los amiloplastos (figura 5).

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Figura 4. Micrografía de un corte del mesocarpio de Pyrus communis (10x). A: idioblastos. B: células parenquimáticas con positivas a la reacción con yodo Lugol (y por tanto, con almacenamiento de almidón)

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Figura 5. Micrografía de un corte del mesocarpio de Pyrus communis (40x) teñida con yodo Lugol. Puede apreciarse una célula del paréquima de reserva con un gránulo de almidón.

Órganos vegetales

Estructura de la raíz de Elaeis guineensis. Esta raíz no posee una raíz pivotante, sino más bien un conjunto de grosor semejante, siendo éste un carácter distintivo de las monocotiledóneas. Las raíces poseen un conjunto de células parenquimatosas en el ápice de las raíces denominado caliptra, el cual tiene la función de proteger a las células del meristemo apical (Esau, 1976). Se observó la presencia de raíces secundarias muy pequeñas unidas a una raíz

primaria y unida a ésta por la base (figura 10). Sin embargo, la mayor parte de éstas no se observan en la fotografía, probablemente debido a que desprendieron al momento de retirarla del suelo.

Figura 6. Fotografía Elaeis guineensis. A: Porción apical que contiene a la caliptra.

Estructura de la raíz de una dicotiledónea de especie no identificada. En contraste con la anterior, esta raíz posee una raíz pivotante de la que dependen todas las demás y por su tamaño, sobresale de entre las otras que se originan a partir de ellas. También posee caliptra (figura 7). Esta raíz no presenta raíz secundaria debido a su estado de desarrollo.

Figura 7. Fotografía de una A: Porción apical que contiene a la caliptra.

Estructura de la flor de una dicotiledónea del género Rosa spp. La flor es parte de y posee un pedúnculo alargado con respecto a la parte aérea. Cuenta con 26 pétalos y 5.sépalos, esto es compatible con el número impar de sépalos por flor esperados para las angiospermas monocotiledóneas (Figura 8).

Figura 8. Fotografía de una flor de Rosa spp. a: pedúnculo, b: sépalos, c.pétalos, d: tálamo.

Figura 7. Fotografía de un corte transversal del androceo y gineceo de una flor de Rosa spp. a: estigma, b: rudimentos seminales, c: ovario, d: estambre, e:estilo.

Estructura de la inflorescencia de una flor gramínea de especie no identificada. En la figura 8, se puede observar una imagen de la inflorescencia y se pueden observar 8 receptáculos que constituyen 8 antecios distintos, rodeados de pequeñas hojas modificadas llamadas lemmas y paleas, que protegen al aparato reproductor que se encuentra al interior.

Fig. 8. Fotografía de una inflorescencia de una gramínea de especie no identificada. a:palea, b:lemma, c: pedúnculo.

Bibliografía

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González A. (2008). Botánica morfológica (en línea). Fecha de consulta 13 de agosto de 2010. Disponible en: http://www.biologia.edu.ar/botanica.

Arbo, M.M. (1977). Esclereidas foliares en Byttneria coriacea Britton (Sterculiaceae). Darwiniana 21(1): 42- 48.

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