Presentacion gustavo prado

Problemas Patológicos Asociados al

Vaneamiento del Cultivo del Arroz en

Colombia

Gustavo Prado

Seminario Internacional Sobre Vaneamiento del Arroz

Villavicencio

Septiembre 15 y 16 de 2011

Greenhouse_Gas_by_Sector.png:Robert A Rohde

Enfermedades

Curvas de Desarrollo de Enfermedades del Arroz

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

1 11 21 31 41 51 61 71 81 91 101 111 121 131 141

Dias despues de Siembra

% d

e A

fec

cio

n

PYRIDR

CORTSS

RHYNOR

SARCOR

CERCOR

HELMSI

Hospedero Ambiente

Patógeno

Componentes de una epidemía

Tejidos y patógenos que los afectan

Raíces Nemátodos, Hongos

Tallos Hongos

Vainas Hongos

Hojas Hongos, Bacterias

Panículas Hongos, bacterias,

nemátodos

Enfermedades de Vainas y Tallos

Añublo de la vaina R. solani

Pudrición del Tallo Sclerotium

oryzae

Mal del Pie Gaeumannomyces

graminis var. graminis

Pudrición del Cuello Ascochyta oryzae

Mancha de la Vaina Pyrenochaeta oryzae

Enfermedades de Tallos

Añublo de la vaina

Centro américa y Sur América

Pudrición del Tallo

Sur de Brasil, Argentina y Uruguay

Mal del Pie

Colombia y Brasil

Síntomas

Añublo de la vaína

R. solani

Mal del Pie

G. graminis var

graminis

Síntomas Causados por Sclerotium oryzae

Signos

Añublo de la vaína

R. solani

Mal del Pie

G. graminis var

graminis

Pudrición del Tallo

Sclerotium oryzae

Signos Mal de Pie

Daños causados en campos comerciales

Daños en tallos y efectos en panículas

Síntomas y micelio en vainas

Condiciones para el desarrollo de patógenos de

tallos y vainas

Rhizoctonia solani

Humedad relativa > 80%

Temperatura 28-32oC

Bajo brillo solar

Suelos compactados

Sclerotium oryzae

Suelos compactados

Suelos con altos niveles de N y P

Suelos inundados

Suelos compactados

Gaeumannomyces graminis

Suelos compactados

Suelos deficientes en N, P y Cu

Suelos inundados

Suelos compactados

→Altas densidades de siembra

→Semilla contaminada

Consecuencias

Rhizoctonia solani

Vaneamiento

Semilla pierde peso

volcamiento

Sclerotium oryzae

Vaneamiento

Semilla pierde peso

Volcamiento


Vaneamiento

Semilla pierde peso

Volcamiento

Pérdidas de acuerdo al

avance de la enfermedad

Manejo

�Resistencia varietal

�Control cultural

�Control biológico

�Control Químico

Esclerocios Nivelación Nivelación Preparación

3 años

TDC

1 año TDC Convenciona

l

No./m2 74 278 503

No./kg de

suelo

2 7 15

Esclerocios de Rhizoctonia solani recuperados de los 5 cm superficiales del suelo en campos

con diferente preparación

TDC = tiempo después de la cosecha del arroz. Nivelación y

mantenimiento de lámina de agua por 15 días

Efecto de la fertilización en la

severidad de Rhizoctonia solani y entorchamiento

en el cultivo de arroz

Fertilización Rhizoctonia Entorchamiento

Grado % Grado

Tradicional 3.5 9.1 7

Análisis de suelo 2.2 3.4 3

Fuente: FEDEARROZ.

Efecto de la fertilización nitrogenada

en la incidencia del añublo de la vaina y en el rendimiento

Dosis de N/ha

Grado de severidad Rendimiento

Ton/ha

50 4.3 5.2

100 4.5 5.0

150 4.2 5.5

200 4.8 5.3

250 5.2 4.7

Fuente: FEDEARROZ.

Efecto de la densidad de siembra en la incidencia del añublo

de la vaina y en el rendimiento

Kg de semilla/ha

Grado de severidad

Rendimiento

Ton/ha

100 4 6.2

150 3.5 5.7

200 4.5 5.7

250 4.07 5.2

300 5.5 4.3

Fuente: FEDEARROZ

Control Biológico

Foto: Alfredo Córdoba. LABERLAM

Evaluación en invernadero de especies silvestres de arroz y fuentes reportadas con tolerancia a R. solani

Especie

silvestre/cultivar

Número de

Aislamientos

Frecuencia

R-I

Oryza rufipogon 10 0.80

Oryza glaberrima 9 0.11

Oryza barthii 9 0.00

Remadja 5 0.80

Pankai 6 0.50

Tadukan 6 0.33

Ta-Po-Choo-Z 6 0.17

Tetep 6 0.17

R-I = Reacción resistente-intermedia.

Líneas de Arroz Tolerantes a Rhizoctonia solani en Evaluaciones de

Campo e Invernadero

Identificación %

APA

Identificación %

APA

Cruce O. rufipogon x Oryzica 3

Banco de Germoplasma

CT 14551-3-M-M-1-2-M 45 CT 7201-16-5P 38

CT 14534-12-M-4-1-2 31 AMAZONAS 40

CT 14537-21-M-6-4-2 43 CT 8455-1-24-1P-1X 48

CT 14546-6-M-M-M-8-M 43 CT 11014-10-1-2 47

Oryza rufipogon 43 PN-1 67

Oryzica 3 47 Colombia 1 100

APA= Area de plant afectada

Recomendación

Desarrollar variedades con tolerancia a este patógeno.

� Caracterizar las poblaciones del hongo, en su estructura genética y patotípica. Determinar si existen otras especies del genero Rhizoctonia.

� El manejo debe orientarse a disminuir los factores que contribuyen al desarrollo de la enfermedad (densidad de siembra, fertilización N, lámina de agua).

� Las prácticas de manejo también deben ser dirigidas a la reducción y destrucción de esclerocios en el suelo, pues existe una alta correlación entre el número de esclerocios en el suelo y la incidencia de la enfermedad.

Evadir el patógeno Reducir la población de patógenos

• región geográfica •control biológico

• sitio de siembra •rotación de cultivos

• fecha de siembra •remoción de plantas

• sistema de producción •eliminación hospederos

• semilla sana •tratamiento a la semilla

• practicas de cultivo •tratamiento al suelo

Excluir el patógeno Proteger la planta

• tratamiento semilla •control químico

• certificación semilla •fertilización

• cuarentena •control de vectores

• control vectores Resistencia de la planta

•resistencia genética

•resistencia inducida

Componentes Generales del Manejo Integrado de

Enfermedades

Factores bióticos asociados al

vaneamiento

Bacterias

Pseudomonas fuscovaginae

Burkholderia glumae

Burkholderia gladioli

Acidovorax avenae

Hongos

Rhizoctonia spp


Pyrenochaeta oryzae

Rhinchosporium oryzae

Sarocladium oryzae

Especies de bacterias que causan pudrición en la vaina y en las semillas del arroz

•En la actualidad se reportan 5 especies de Bacterias causando

Pudriciones en la vaina del arroz, grano manchado y esterilidad.

•Acidovorax avenae sub avenae Pudrición bacterial de la vainaPudrición bacterial de la vainaPudrición bacterial de la vainaPudrición bacterial de la vaina

Burkholderia glumae

Burkholderia gladioli Pudricion bacterial del granoPudricion bacterial del granoPudricion bacterial del granoPudricion bacterial del granoBrkholderia plantari

• Pseudomonas fuscovaginae Pudrición bacterial de la vaina Pudrición bacterial de la vaina Pudrición bacterial de la vaina Pudrición bacterial de la vaina del arrozdel arrozdel arrozdel arroz

Pudrición de la vainaSarocladium oryzae

Agente causal

• Sarocladium oryzae(Sawada / Gams y Hawks)

•Acrocylindrum oryzae

•Descrita por primera vez por Sawada en 1912 en Taiwan.

•En Colombia se reportó por primera vez en 1982, variedad Cica 8, en condiciones de riego y secano.Pérdidas del 26%.

Factores Asociados a

Sarocladium oryzae

La intensidad de la enfermedad esta altamente

relacionada con los siguientes agentes

entomológicos:

� Acaro (Steneotarsonemus spinki)

� Chinches

� Barrenadores del tallo

Condiciones que favorecen el vaneamiento en el

cultivo del arroz

→Temperaturas > 25 grados

→Humedad relativa > 80%

→Periodos secos seguidos de lluviosos

→Densidad de siembra alta

→Altas dosis de N

→Desbalance nutricional

→El impacto del complejo depende de las etapas

fenológicas del cultivo

→En cuanto al acaro, la temperatura y la humedad relativa

son factores que influyen mucho en su dinámica poblacional

Vaneamiento del arroz

Síntomas en campos comerciales

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

Raiz Tallo Vaina Semilla

B. gladioli

B. glumae

P. fuscovaginae

A. avenae sub.

Avenae

Presencia de especies bacterianas en diferentes tejidos de la planta de Arroz

B. gladioli

B. glumae Mayor

agresividad

Síntomas en panícula causados por Burkholderias(Invernadero)

•Grano decolorado con manchas color chocolate

definidas

•Vaneamiento > 90%

•Grano decolorado con manchas color chocolate

oscuras que pueden cubrir las glumas

completamente

•Vaneamiento < 60 %

Menor

agresividad

Tipo de síntoma

en la semillas

B. glumae

Frd (%)

B. gladioli

Frd

(%)

No

muestras

analizadas

No. de

muestras

positivas

No

muestras

analizadas

No. de

muestras

positivas

Síntoma típico a 89 80 90 85 8 9.4

Síntoma atípico b 45 7 15.5 34 2 5.8

Sin ningún tipo

de síntoma c347 67 19.3 67 16 23.8

Total 481 154 186 26

a Síntomas involucrados en la decoloración del grano causado por especies de Burkholderia spp.bSíntomas involucrados en la decoloración del grano causado otras especies

(P. fuscovagiane , A. avenae)CSin ningún tipo de síntoma aparente.dFr Frecuencia relativa (%)

Zhu y colaboradores (2008) Evaluaron 623 muestras de semilla de arroz (todas sin ningún tipo de síntoma) de las cuales solo 2 fueron positivas para B. glumae, con una frecuencia de aislamiento de 0.32%

Frecuencia de especies de Burkholderia en muestras de semillas de arroz

Colonias deBurkholderia glumae

en medio King B

Pigmentación producida por

Burkholderia glumae en medio

King B

Fisión binaria

Quorum Sensing

Burkholderia glumae

Toxoflavin esta asociada a la patogenisis de esta

bacteria

Quorum Sensing

Burkholderia glumae

Flagelos

Movilidad: Se desplazan a través del agua

Enjambres: Formación de nuevas colonias

Grupos genéticos de Burkholderiaglumae encontrados en Colombia

Centro Llanos

Meta Norte

Mixto

Variedad País Eval Variedad País Eval

Saavedra Boliva 5 Bamoa A75 México 5

San Pedro Bolivia 5 Culiacan A 82 México 5

Paititi (FL 00144) Bolivia 5 Chetumal A 86 México 5

BR Irga 410 Brasil 5 Palizada A 86 México 5

Epagri 108 Brasil 5 Altamira 7 Nicaragua 5

Oryzica Llanos 5 Colombia 4 Altamira 10 Nicaragua 5

Selecta 320 Colombia 5 Panamá 4721 Panamá 5

FL 03174 Colombia 4 Inti Perú 5

FL 03188 Colombia 5 Alto Mayo 88 Perú 4

CR 1707 C. Rica 5 San Martín 86 Perú 4

Perla Cuba 5 Centa A-6 Salvador 5

Iniap 11 Ecuador 5 Venezuela 21 Venezuela 5

Tikal 2 Guatemala 5 BG 90-2 Sri Lanka 5

Icta Pasos Guatemala 5 FL 00867 G. Francesa 5

Icta Motagua Guatemala 5 IR 36 Filipinas 5

FL 03197 Guatemala 5

FL 03232 Guatemala 5

Fuentes potenciales de tolerancia a Burkholderia glumae

Manejo Integrado de Enfermedades

• Variedades tolerantes

• Epoca de siembra

• Uso de semilla certificada

• Evitar el movimiento de semilla de las zonas

afectadas

• Evitar situaciones que causen estrés a las plantas

• No usar productos químicos de manera

indiscriminada

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